JP7235334B2 - 癌の治療に用いる腫瘍溶解性単純ヘルペスウイルス(oHSV)偏性ベクター及びその構築体の構築 - Google Patents
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Description
〔1〕改変された単純ヘルペスウイルスI型(HSV-1)であって、
野生型HSV-1ゲノムにおけるUL56遺伝子のプロモーターからUS1遺伝子のプロモーターの間の配列を欠失させることにより、(i)すべての2コピー遺伝子における1つのコピーが存在せず、なお且つ(ii)前記欠失後のウイルスDNAに存在するすべてのオープンリーディングフレーム(ORF)を発現するために必要な配列が完全であることを含む改変されたHSV-1ゲノムを含み、細胞性遺伝子又はウイルス性遺伝子のベクターとして作用することができることを特徴とする改変された単純ヘルペスウイルスI型(HSV-1)。
〔2〕前記2コピー遺伝子は、ICP0、ICP4、ICP34.5、ORF P及びORF Oをコードする遺伝子及び欠失された領域を占める重複するノンコーディング配列を含むことを特徴とする上記〔1〕の改変されたHSV-1。
〔3〕前記HSV-1は、プロトタイプ(P)のゲノム異性体を備えることを特徴とする上記〔1〕の改変されたHSV-1。
〔4〕前記HSV-1は、Fウイルス株、KOSウイルス株及び17ウイルス株を含む既存のあらゆるHSVウイルス株から選択されることを特徴とする上記〔1〕の改変されたHSV-1。
〔5〕前記欠失により、Fウイルス株ゲノムにおけるヌクレオチド位置117005から132096が除去されることを特徴とする上記〔3〕の改変されたHSV-1。
〔6〕組み換え腫瘍溶解性単純ヘルペスウイルスI型(HSV-1)であって、
野生型HSV-1ゲノムにおけるUL56遺伝子のプロモーターからUS1遺伝子のプロモーターの間の配列を欠失させることにより、(i)すべての2コピー遺伝子における1つのコピーが存在せず、なお且つ(ii)前記欠失後のウイルスDNAに存在するすべてのオープンリーディングフレーム(ORF)を発現するために必要な配列が完全であることを含む改変されたHSV-1ゲノムと、
少なくとも前記改変されたHSV-1ゲノムの欠失された領域に安定的に導入され、免疫刺激剤及び/又は免疫治療剤をコードする外来核酸配列、とを含むことを特徴とする組み換え腫瘍溶解性単純ヘルペスウイルスI型(HSV-1)。
〔7〕前記免疫刺激剤はGM-CSF、IL 2、IL 5、IL 12、IL 15、IL 24及びIL 27から選択されることを特徴とする上記〔6〕の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
〔8〕前記免疫治療剤は抗PD-1剤及び抗CTLA-4剤から選択されることを特徴とする上記〔6〕の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
〔9〕IL-12をコードする外来核酸配列を含むことを特徴とする上記〔6〕の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
〔10〕抗PD-1剤をコードする外来核酸配列を含むことを特徴とする上記〔6〕の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
〔11〕抗CTLA-4剤をコードする外来核酸配列を含むことを特徴とする上記〔6〕の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
〔12〕IL-12をコードする第1の外来核酸配列及び抗PD-1剤をコードする第2の外来核酸配列を含むことを特徴とする上記〔6〕の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
〔13〕IL-12をコードする第1の外来核酸配列及び抗CTLA-4剤をコードする第2の外来核酸配列を含むことを特徴とする上記〔6〕の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
〔14〕抗PD-1剤をコードする第1の外来核酸配列及び抗CTLA-4剤をコードする第2の外来核酸配列を含むことを特徴とする上記〔6〕の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
〔15〕IL-12をコードする第1の外来核酸配列、抗PD-1剤をコードする第2の外来核酸配列及び抗CTLA-4剤をコードする第3の外来核酸配列を含むことを特徴とする上記〔6〕の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
〔16〕前記外来核酸配列に作動可能に連結されるプロモーター配列をさらに含むことを特徴とする上記〔6〕の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
〔17〕前記第1の外来核酸配列が前記改変されたHSV-1ゲノムの欠失された領域に挿入されており、且つ前記第2の外来核酸配列が前記改変されたHSV-1ゲノムにおけるUL成分のUL3とUL4遺伝子の間に挿入されていることを特徴とする上記〔12〕の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
〔18〕前記第1の外来核酸配列が前記改変されたHSV-1ゲノムの欠失された領域に挿入されており、且つ前記第2の外来核酸配列が前記改変されたHSV-1ゲノムにおけるUL成分のUL3とUL4遺伝子の間に挿入されていることを特徴とする上記〔13〕の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
〔19〕前記第1の外来核酸配列が前記改変されたHSV-1ゲノムの欠失された領域に挿入されており、且つ前記第2の外来核酸配列が前記改変されたHSV-1ゲノムにおけるUL成分のUL3とUL4遺伝子の間に挿入されていることを特徴とする上記〔14〕の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
〔20〕前記第1の外来核酸配列が前記改変されたHSV-1ゲノムの欠失された領域に挿入されており、前記第2の外来核酸配列が前記改変されたHSV-1ゲノムにおけるUL成分のUL3とUL4遺伝子の間に挿入されており、且つ第3の外来核酸配列が前記改変されたHSV-1ゲノムにおけるUL成分のUL37とUL38遺伝子の間に挿入されていることを特徴とする上記〔15〕の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
〔21〕前記第1の外来核酸配列が前記改変されたHSV-1ゲノムの欠失された領域に挿入されており、前記第2の外来核酸配列が前記改変されたHSV-1ゲノムにおけるUL成分のUL37とUL38の間に挿入されており、且つ第3の外来核酸配列が前記改変されたHSV-1ゲノムにおけるUL成分のUL3とUL4遺伝子の間に挿入されていることを特徴とする上記〔15〕の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
〔22〕前記プロモーター配列はCMVプロモーター又はEgrプロモーターであることを特徴とする上記〔16〕の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
〔23〕前記免疫刺激剤及び/又は免疫治療剤はヒト化されていることを特徴とする上記〔6〕の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
〔24〕前記抗PD-1剤又は前記抗CTLA-4剤は、それぞれPD-1又はCTLA-4エピトープに特異的結合するための抗体可変領域を含むことを特徴とする上記〔8〕の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
〔25〕前記抗体可変領域は、完全抗体、抗体フラグメント、又は前記抗体もしくは抗体フラグメントの組み換え誘導体であることを特徴とする上記〔24〕の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
〔26〕医薬組成物であって、
有効量の上記〔6〕~〔25〕いずれかの組み換え腫瘍溶解性HSV-1及び薬学的に許容可能な担体を含むことを特徴とする医薬組成物。
〔27〕前記組成物は腫瘍内投与用として調製されることを特徴とする上記〔26〕の医薬組成物。
〔28〕癌を治療又は寛解するための方法であって、
治療を必要とする対象に対する上記〔26〕又は〔27〕に記載の医薬組成物の有効量の投与を含むことを特徴とする癌を治療又は寛解するための方法。
〔29〕前記医薬組成物の投与前、投与中、投与後に第2の療法を実施することを特徴とする上記〔28〕の方法。
〔30〕前記第2の療法は、化学療法、放射的療法、免疫療法又は手術的介入から選択されることを特徴とする上記〔29〕の方法。
〔31〕前記対象はヒトであることを特徴とする上記〔28〕の方法。
〔32〕前記癌は、食道癌、肺癌、前立腺癌及び膀胱癌から選択されることを特徴とする上記〔28〕の方法。
本明細書における「一」又は「1つ」の実体という用語は、当該実体のうちの1つ又は複数を指す。例えば、「組み換え腫瘍溶解性HSV-1」は、1つ又は複数の組み換え腫瘍溶解性HSV-1ウイルスを表すものと理解される。よって、「1つ」、「1つ又は複数」及び「少なくとも1つ」といった用語は、本明細書で相互に置き換えて用いることができる。
本発明の一態様として、改変されたHSV-1ゲノムを含むHSV-1ウイルスを提供し、HSV-1偏性ベクターとも呼ばれる。HSV-1ゲノムは共有結合する2つの成分(LとSと称する)からなる。各成分はユニーク配列(L成分はUL、S成分はUS)からなり、両側は逆方向反復配列である。L成分の逆方向反復配列はabとb’a’と呼ばれ、S成分の逆方向反復配列はa’c’とcaと呼ばれる。逆方向反復領域には2コピーの転写単位が含まれている。本分野では、少なくとも5つの2コピーを有するオープンリーディングフレームが知られており、これらのタンパク質はそれぞれICP0、ICP4、ICP34.5、ORF P及びORF Oと名づけられる。逆方向反復配列b’a’とa’c’(b’a’-a’c’)が結合して内部逆方向反復領域を形成する。そして、逆方向反復配列abとcaは本明細書で外部反復領域と呼ばれる。
外来DNA配列を野生型ウイルスに挿入すると、DNAをビリオンにパッケージすることが干渉されるため、その挿入量に制限がある。所定の領域における正確な欠失により、外来DNA配列を挿入するのに好適なスペースが与えられる。本発明の一実施形態によれば、前記欠失により、腫瘍溶解性ウイルスベクターから少なくとも15Kbpが除去され、これにより相当量の外来DNA配列を受け入れることができる。また他の関連研究によると、野生型ゲノムは7KBのDNAをさらに受け入れることができる。
おける遺伝子が他の領域の調節から影響を受けないように保護する。Amelioらは、LAT領域の中からCTCFモチーフのクラスターを含有する1.5-kb領域を発見し、当該領域はインスレーター活性、特にエンハンサーを遮断し沈黙させる作用を有している(Amelio et al.. A Chromatin Insulator-Like Element in the Herpes Simplex Virus Type 1 Latency-Associated Transcript RegionBinds CCCTC-Binding Factor and Displays Enhancer-Blocking and Silencing Activities. Journal of Virology, Vol. 80, No. 5, Mar. 2006, p. 2358-2368)。
細胞/精原細胞・精巣上体細胞に対して特異的なプロエンケファリンプロモーター、結腸/直腸腫瘍及び膵臓/腎細胞に対して特異的なreg(膵石タンパク質)プロモーター、及び肝/盲腸腫瘍、神経鞘腫、腎細胞、膵細胞と副腎細胞に対して特異的な副甲状腺ホルモン関連タンパク質(PTHrP)プロモーターを含む。
いくつかの実施形態では、本発明によるoHSV-1は、サイトカイン(例えばIL-2、IL4、IL-12、GM-CSF、IFNγ)、ケモカイン(例えばMIP-1、MCP-1、IL-8)及び成長因子(例えばFLT3リガンド)を含む1種又は複数種の免疫刺激剤(免疫刺激分子とも呼ばれる)をコードする。
接種した細胞及び遠隔に確立された未接種の腫瘍細胞を死滅させることができる。腫瘍とその微小環境では、自然の抗腫瘍免疫応答を回避し、抑制し不活性化する機構が形成されている。例えば、腫瘍は標的受容体をダウンレギュレーションさせ、繊維性の細胞外マトリックスによってそれ自体を被覆させ、又は制御性免疫細胞の活性化や動員に関与する宿主受容体又はリガンドをアップレギュレーションさせる。自然及び/又は適応的な制御性T細胞(Treg)は腫瘍が仲介する免疫抑制に関与する。いかなる理論にも拘束されることを望むものではないが、PD-1遮断は、Tregの活性を抑制し腫瘍反応性CTLの効果を改善できると考えられる。当該技術の他の態様については、以下により詳しく記述する。PD-1遮断はまた、T細胞(CTLとヘルパー細胞)の遮断及びB細胞の非活性化によって抗腫瘍免疫応答を刺激することもできる。
本発明の一態様として、抗PD-1剤及び/又は抗CTLA-4剤をコードする外来核酸を含む腫瘍溶解性ウイルスを提供する。いくつかの実施形態では、抗PD-1剤又は抗CTLA-4剤には、PD-1又はCTLA-4エピトープに特異的結合する抗体可変領域が含まれている。抗体可変領域は、例えば完全抗体、抗体フラグメント及び抗体又は抗体フラグメントの組み換え誘導体に存在してもよい。「抗体」という用語は、天然、一部合成又は全体合成の免疫グロブリンを指すものである。よって、本発明の抗PD-1剤又は抗CTLA-4剤は、PD-1又はCTLA-4エピトープに特異的結合する結合ドメインを有するあらゆるポリペプチド又はタンパク質を含む。
腫瘍溶解性ウイルスは、適切な薬学的に許容可能な担体又は賦形剤の中で製造することができる。通常の保管と使用条件では、これらの製剤には微生物の成長を防止する防腐剤が含まれている。注射用に好適な投与剤型は、無菌水溶液や、分散液又は無菌注射溶液や分散液の仮調製に用いる無菌粉末(米国特許登録第5,466,468号)を含む。あらゆる場合において、製剤は無菌でなくてはならず、且つ注射を容易にするために流体としなければならない。製造と保管の条件において安定する状態を保たなければならず、且つ細菌と真菌などの微生物による汚染も防止しなければならない。
本発明のもう一つの態様は、治療を必要とする被験者に組み換え腫瘍溶解性HSV-1ウイルス又は上記組み換え腫瘍溶解性HSV-1ウイルスを含む医薬組成物の有効量の投与を含む、癌を治療又は寛解する方法を提供する。また本発明は、上記の癌を治療又は寛解する方法に用いる腫瘍溶解性HSV-1ウイルスを合わせて提供する。
細菌人工染色体(BAC)技術による偏性ベクター-IMMV201の生成において、3つの終止(STOP)コドンを生成するCMVプロモーターカセットであるATGCAGGTGCAGTAATAGTAAカセットをT-Easyベクターの中に挿入した。プロトタイプ(P)配置のHSV-1を用いられる。それぞれ2セットのプライマー(GAAGATCTAATATTTTTATTGCAACTCCCTG、CTAGCTAGCTTATAAAAGGCGCGTCCCGTGG)と(GCTCTAGATTGCGACGCCCCGGCTC、CCTTAATTAAGGTTACCACCCTGTAGCCCCGATGT)によってHSV-1ウイルスゲノムから、上流側がヌクレオチド117005に連結され、下流側がヌクレオチド132096に連結される遺伝子カセットをPCR増幅させ、上記CMVと3つの終止コドンを含むプラスミドの中に挿入し、そして当該遺伝子置き換えプラスミドをpKO5の中に構築することにより、pKO-CMV-STOPを得た。pKO-CMV-STOPを電気穿孔法によってBAC HSVを担持する大腸菌RecA +の中に導入することによりIMMV201を得た。
OptiMEM agency(Life Technologies社)を用いて説明書に従って、上記のように構築されたBAC-IMMV201の2~3μgを70%コンフルエント状態のVero細胞の中にトランスフェクトした。37℃、5%CO2のインキュベーターの中で4時間インキュベーション。インキュベーション後、新鮮な完全成長培地(5%新生仔ウシ血清/DMEM)4mLで置換。3~4日以内にウイルスのプラークが認められなかった。実験を3回繰り返すところ、ウイルスのプラークが認められなかった。
pKO遺伝子カセットを電気穿孔法によってIMMV201を担持する大腸菌RecA +の中に導入することにより、免疫刺激遺伝子(マウスIL12、ヒトIL12)又は免疫治療遺伝子(ヒトPD-1 scFV(配列番号1又は3))、ヒトCTLA-4 scFV(配列番号5)を駆動するCMVプロモーター遺伝子カセットを得た(図1参照)。
免疫刺激遺伝子(IL12)と免疫治療遺伝子(PD-1 scFV、CTLA-4 scFV)を駆動するCMVプロモーターカセットを、さらに、IMMV202、203、303、403ベクターにおけるUL3とUL4遺伝子の間に挿入することにより免疫刺激遺伝子(IL12)と免疫治療遺伝子の組み合わせを発現する組み換えoHSVを生成した(図2参照)。
IMMV503ベクター(図2参照)におけるUL37とUL38遺伝子の間にCTLA-4 scFVを挿入することにより、ヒトIL12、PD-1 scFVとCTLA-4 scFVをコードする3種の免疫刺激cDNA及び免疫治療cDNAを発現するIMMV603を構築した。
本明細書に記載の一連の実験では、モック又はプラスミドでトランスフェクトされる2×106個のH293T細胞は、CMVプロモーターにより駆動されHisタグscFV-抗-PD-1をコードするcDNA及び各種自然源に由来するシグナルペプチドコーディング領域を含む。トランスフェクト46時間後、細胞溶解物と上澄み液を収集し、SDS-PAGEを行って抗His抗体によってウェスタンブロッティングを行った。上澄み液2mLから40μL、細胞溶解物200μLから30μLを取り出して12%のPAGEゲルにロードした。細胞培養の上澄み液の中に蓄積されるPD-1 scFVの量(図3参照)は異なるシグナルペプチドの効率を反映している。
モック又はプラスミドでトランスフェクトされる2×106個のH293T細胞はCMVプロモーターにより駆動されHisタグscFV-抗PD-1をコードするcDNA及びHMM38シグナルペプチドを含む。トランスフェクト46時間後、上澄み液を収集し、そしてELISAアッセイを行い、抗His抗体を用いて検出した(図4参照)。分泌されたPD-1 scFVは用量依存的にPD-1と結合する。
モック(陰性対照)又はIMMV507(PD-1抗体及びCTLA-4抗体を発現するoHSV-1)を用いて、それぞれ各細胞に対する0.01、0.1、1、10、100の倍率のPFUで、96ウェルプレートに接種した5×103個の次に示すヒト腫瘍細胞を感染した。CCK-8キットを用いて、成長の細胞生存性を、96時間が経過するまで24時間ごとに測定した(図5参照)。マイクロプレートリーダー(BiotekEpoch社)を用いて450nmでの吸光度を測定した。
1. Andreansky, S., Soroceanu, L., Flotte, E. R., Chou, J., Markert, J. M., Gillespie, G. Y., Roizman, B., and Whitley, R. J. (1997). Evaluation of genetically engineered herpes simplex viruses as oncolytic agents for human malignant brain tumors. Cancer Res 57, 1502-1509.
2. Andreansky, S., He, B., van Cott, J., McGhee, J. V., Markert, J.M., e, Y., Roizman, B. and Whitley, R. J. Treatment of intracranial gliomas in immunocompetent mice using herpes simplex viruses that express murine interleukins. Gene Ther. 5:121-130, 1998.
3. Andtbacka, R. H., Kaufman, H. L., Collichio, F., Amatruda, T., Senzer, N., Chesney, J., Delman, K. A., Spitler, L. E., Puzanov, I., Agarwala, S. S., Milhem, M., Cranmer, L., Curti, B., Lewis, K., Ross, M., Guthrie, T., Linette, G. P., Daniels, G. A., Harrington, K., Middleton, M. R., Miller, W. H., Jr., Zager, J. S., Ye, Y., Yao, B., Li, A., Doleman, S., VanderWalde, A., Gansert, J., and Coffin, R. S. (2015). Talimogene Laherparepvec Improves Durable Response Rate in Patients With Advanced Melanoma. J Clin Oncol.
4. Brunda, M. J. (1994). Interleukin-12. J Leukoc Biol 55, 280-288.
5. Burgess, A. W., Camakaris, J., and Metcalf, D. (1977). Purification and properties of colony-stimulating factor from mouse lung-conditioned medium. J Biol Chem 252, 1998-2003.
6. Cassady, K. A., Gross, M., and Roizman, B. (1998a). The herpes simplex virus US11 protein effectively compensates for the gamma1(34.5) gene if present before activation of protein kinase R by precluding its phosphorylation and that of the alpha subunit of eukaryotic translation initiation factor 2. J Virol 72, 8620-8626.
7. Cassady, K. A., Gross, M., and Roizman, B. (1998b). The second-site mutation in the herpes simplex virus recombinants lacking the gamma134.5 genes precludes shutoff of protein synthesis by blocking the phosphorylation of eIF-2alpha. J Virol 72, 7005-7011.
8. Cheema, T. A., Wakimoto, H., Fecci, P. E., Ning, J., Kuroda, T., Jeyaretna, D. S., Martuza, R. L., and Rabkin, S. D. (2013). Multifaceted oncolytic virus therapy for glioblastoma in an immunocompetent cancer stem cell model. Proc Natl Acad Sci U S A 110, 12006-12011.
9. Chou, J., Chen, J. J., Gross, M., and Roizman, B. (1995). Association of a M(r) 90,000 phosphoprotein with protein kinase PKR in cells exhibiting enhanced phosphorylation of translation initiation factor eIF-2 alpha and premature shutoff of protein synthesis after infection with gamma 134.5- mutants of herpes simplex virus 1. Proc Natl Acad Sci U S A 92, 10516-10520.
10. Chou, J., Kern, E. R., Whitley, R. J., and Roizman, B. (1990). Mapping of herpes simplex virus-1 neurovirulence to gamma 134.5, a gene nonessential for growth in culture. Science 250, 1262-1266.
11. Chou, J., and Roizman, B. (1992). The gamma 1(34.5) gene of herpes simplex virus 1 precludes neuroblastoma cells from triggering total shutoff of protein synthesis characteristic of programed cell death in neuronal cells. Proc Natl Acad Sci U S A 89, 3266-3270.
12. Cozzi, P. J., Burke, P. B., Bhargav, A., Heston, W. D., Huryk, B., Scardino, P. T., and Fong, Y. (2002). Oncolytic viral gene therapy for prostate cancer using two attenuated, replication-competent, genetically engineered herpes simplex viruses. Prostate 53, 95-100.
13. Cozzi, P. J., Malhotra, S., McAuliffe, P., Kooby, D. A., Federoff, H. J., Huryk, B., Johnson, P., Scardino, P. T., Heston, W. D., and Fong, Y. (2001). Intravesical oncolytic viral therapy using attenuated, replication-competent herpes simplex viruses G207 and Nv1020 is effective in the treatment of bladder cancer in an orthotopic syngeneic model. FASEB J 15, 1306-1308.
14. Currier, M. A., Adams, L. C., Mahller, Y. Y., and Cripe, T. P. (2005). Widespread intratumoral virus distribution with fractionated injection enables local control of large human rhabdomyosarcoma xenografts by oncolytic herpes simplex viruses. Cancer Gene Ther 12, 407-416.
15. Dharmadhikari, N., Mehnert, J. M., and Kaufman, H. L. (2015). Oncolytic virus immunotherapy for melanoma. Curr Treat Options Oncol 16, 326.
16. Fife, B. T., and Pauken, K. E. (2011). The role of the PD-1 pathway in autoimmunity and peripheral tolerance. Ann N Y Acad Sci 1217, 45-59.
17. Fong, Y., Kim, T., Bhargava, A., Schwartz, L., Brown, K., Brody, L., Covey, A., Karrasch, M., Getrajdman, G., Mescheder, A., Jarnagin, W., and Kemeny, N. (2009). A herpes oncolytic virus can be delivered via the vasculature to produce biologic changes in human colorectal cancer. Mol Ther 17, 389-394.
18. Francisco, L. M., Sage, P. T., and Sharpe, A. H. (2010). The PD-1 pathway in tolerance and autoimmunity. Immunol Rev 236, 219-242.
19. Geevarghese, S. K., Geller, D. A., de Haan, H. A., Horer, M., Knoll, A. E., Mescheder, A., Nemunaitis, J., Reid, T. R., Sze, D. Y., Tanabe, K. K., and Tawfik, H. (2010). Phase I/II study of oncolytic herpes simplex virus NV1020 in patients with extensively pretreated refractory colorectal cancer metastatic to the liver. Hum Gene Ther 21, 1119-1128.
20. Goshima, F., Esaki, S., Luo, C., Kamakura, M., Kimura, H., and Nishiyama, Y. (2014). Oncolytic viral therapy with a combination of HF10, a herpes simplex virus type 1 variant and granulocyte-macrophage colony-stimulating factor for murine ovarian cancer. Int J Cancer 134, 2865-2877.
21. Hsieh, C. S., Macatonia, S. E., Tripp, C. S., Wolf, S. F., O'Garra, A., and Murphy, K. M. (1993). Development of TH1 CD4+ T cells through IL-12 produced by Listeria-induced macrophages. Science 260, 547-549.
22. Inaba, K., Inaba, M., Romani, N., Aya, H., Deguchi, M., Ikehara, S., Muramatsu, S., and Steinman, R. M. (1992). Generation of large numbers of dendritic cells from mouse bone marrow cultures supplemented with granulocyte/macrophage colony-stimulating factor. J Exp Med 176, 1693-1702.
23. Keir, M. E., Butte, M. J., Freeman, G. J., and Sharpe, A. H. (2008). PD-1 and its ligands in tolerance and immunity. Annu Rev Immunol 26, 677-704.
24. Kelly, K. J., Wong, J., and Fong, Y. (2008). Herpes simplex virus NV1020 as a novel and promising therapy for hepatic malignancy. Expert Opin Investig Drugs 17, 1105-1113.
25. Kemeny, N., Brown, K., Covey, A., Kim, T., Bhargava, A., Brody, L., Guilfoyle, B., Haag, N. P., Karrasch, M., Glasschroeder, B., Knoll, A., Getrajdman, G., Kowal, K. J., Jarnagin, W. R., and Fong, Y. (2006). Phase I, open-label, dose-escalating study of a genetically engineered herpes simplex virus, NV1020, in subjects with metastatic colorectal carcinoma to the liver. Hum Gene Ther 17, 1214-1224.
26. Krummel, M. F., and Allison, J. P. (1995). CD28 and CTLA-4 have opposing effects on the response of T cells to stimulation. J Exp Med 182, 459-465.
27. Markert, J. M., Cody, J. J., Parker, J. N., Coleman, J. M., Price, K. H., Kern, E. R., Quenelle, D. C., Lakeman, A. D., Schoeb, T. R., Palmer, C. A., Cartner, S. C., Gillespie, G. Y., and Whitley, R. J. (2012). Preclinical evaluation of a genetically engineered herpes simplex virus expressing interleukin-12. J Virol 86, 5304-5313.
28. Markert, J. M., Gillespie, G. Y., Weichselbaum, R. R., Roizman, B., and Whitley, R. J. (2000). Genetically engineered HSV in the treatment of glioma: a review. Rev Med Virol 10, 17-30.
29. Markowicz, S., and Engleman, E. G. (1990). Granulocyte-macrophage colony-stimulating factor promotes differentiation and survival of human peripheral blood dendritic cells in vitro. J Clin Invest 85, 955-961.
30. Meignier, B., Longnecker, R., and Roizman, B. (1988). In vivo behavior of genetically engineered herpes simplex viruses R7017 and R7020: construction and evaluation in rodents. J Infect Dis 158, 602-614.
31. Miest, T. S., and Cattaneo, R. (2014). New viruses for cancer therapy: meeting clinical needs. Nat Rev Microbiol 12, 23-34.
32. Mineta, T., Rabkin, S. D., Yazaki, T., Hunter, W. D., and Martuza, R. L. (1995). Attenuated multi-mutated herpes simplex virus-1 for the treatment of malignant gliomas. Nat Med 1, 938-943.
33. Russell, S. J., Peng, K. W., and Bell, J. C. (2012). Oncolytic virotherapy. Nat Biotechnol 30, 658-670.
34. Shen, Y., and Nemunaitis, J. (2006). Herpes simplex virus 1 (HSV-1) for cancer treatment. Cancer Gene Ther 13, 975-992.
35. Smith, K. D., Mezhir, J. J., Bickenbach, K., Veerapong, J., Charron, J., Posner, M. C., Roizman, B., and Weichselbaum, R. R. (2006). Activated MEK suppresses activation of PKR and enables efficient replication and in vivo oncolysis by Deltagamma(1)34.5 mutants of herpes simplex virus 1. J Virol 80, 1110-1120.
36. Topalian, S. L., Drake, C. G., and Pardoll, D. M. (2015). Immune Checkpoint Blockade: A Common Denominator Approach to Cancer Therapy. Cancer Cell 27, 450-461.
37. Valiante, N. M., Rengaraju, M., and Trinchieri, G. (1992). Role of the production of natural killer cell stimulatory factor (NKSF/IL-12) in the ability of B cell lines to stimulate T and NK cell proliferation. Cell Immunol 145, 187-198.
38. Walker, J. D., Sehgal, I., and Kousoulas, K. G. (2011). Oncolytic herpes simplex virus 1 encoding 15-prostaglandin dehydrogenase mitigates immune suppression and reduces ectopic primary and metastatic breast cancer in mice. J Virol 85, 7363-7371.
39. Walunas, T. L., Lenschow, D. J., Bakker, C. Y., Linsley, P. S., Freeman, G. J., Green, J. M., Thompson, C. B., and Bluestone, J. A. (1994). CTLA-4 can function as a negative regulator of T cell activation. Immunity 1, 405-413.
40. Weichselbaum, R. R., Roizman, B., and Whitley, R. J. (2012). Treatment of tumors with genetically engineered herpes virus. In, pp. 11-27.
41. Wong, R. J., Kim, S. H., Joe, J. K., Shah, J. P., Johnson, P. A., and Fong, Y. (2001). Effective treatment of head and neck squamous cell carcinoma by an oncolytic herpes simplex virus. J Am Coll Surg 193, 12-21.
Claims (24)
- 単純ヘルペスウイルス1型(HSV-1)ベクターであって、
野生型HSV-1ゲノムにおいて欠失改変を含み、
ここで、前記欠失改変は、HSV-1ゲノムのI L 異性体の場合に、U L 成分におけるU L 1のプロモーターからU S 成分におけるU S 1のプロモーターまでの欠失を含み、
a)前記野生型HSV-1ゲノムのすべての2コピー遺伝子における1コピーのみ、
b)前記野生型HSV-1ゲノムの重複するノンコーディング配列における1コピーのみ、及び、
c)前記野生型HSV-1ゲノムのすべてのシングルコピーのオープンリーディングフレーム(ORF)の発現に必要な配列であって、ORF自体と各ORFの発現に必要な調節配列を含み、前記調節配列は完全に維持されるプロモーターが含まれる、配列、を含む、HSV-1ベクター。 - 前記2コピー遺伝子は、ICP0、ICP4、ICP34.5、ORF P及びORF Oをコードする遺伝子を含む、請求項1に記載のHSV-1ベクター。
- 前記HSV-1は、F株、KOS株、及び、17株からなる群から選択される請求項1に記載のHSV-1ベクター。
- 前記欠失により、前記F株のゲノムにおけるヌクレオチド位置117005から132096が除去される請求項3に記載のHSV-1ベクター。
- 前記野生型HSV-1に感受性のある哺乳動物細胞において複製することができない請求項1に記載のHSV-1ベクター。
- 前記野生型HSV-1に感受性のある哺乳動物細胞では複製できないが、追加の細胞又はウイルスDNA配列の挿入後に複製できるようになる請求項1に記載のHSV-1ベクター。
- 前記重複するノンコーディング配列は、LATドメイン及び“a”配列を含む請求項1に記載のHSV-1ベクター。
- 組み換え腫瘍溶解性単純ヘルペスウイルス1型(HSV-1)であって、a)請求項1に記載のHSV-1ベクター、及び、
b)免疫刺激剤及び/又は免疫治療剤をコードする外来核酸配列であって、請求項1に記載のHSV-1ベクターの少なくとも欠失された領域に安定して組み込まれている、外来核酸配列、を含む、組み換え腫瘍溶解性HSV-1。 - 前記免疫刺激剤は、GM-CSF、IL-2、IL-12、IL-15、IL-24及びIL-27からなる群から選択される請求項8に記載の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
- 前記免疫治療剤は、抗PD-1剤及び/又は抗CTLA-4剤である請求項8に記載の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
- 前記外来核酸配列は、IL-12、抗PD-1剤及び/又は抗CTLA-4剤をコードする請求項8に記載の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
- IL-12をコードする第1の外来核酸配列、及び、抗PD-1剤又は抗CTLA-4剤をコードする第2の外来核酸配列を含む、請求項8に記載の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
- 抗PD-1剤をコードする第1の外来核酸配列、及び、抗CTLA-4剤をコードする第2の外来核酸配列を含む、請求項8に記載の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
- IL-12をコードする第1の外来核酸配列、抗PD-1剤をコードする第2の外来核酸配列、及び、抗CTLA-4剤をコードする第3の外来核酸配列を含む、請求項8に記載の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
- 前記外来核酸配列に作動可能に連結されるプロモーター配列をさらに含む、請求項8に記載の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
- 前記第1の外来核酸配列は改変されたHSV-1ゲノムの欠失された領域に挿入されており、前記第2の外来核酸配列は前記改変されたHSV-1ゲノムにおけるUL成分におけるUL3及びUL4遺伝子の間に挿入されている請求項12又は13に記載の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
- 前記第1の外来核酸配列は改変されたHSV-1ゲノムの欠失された領域に挿入されており、前記第2の外来核酸配列は前記改変されたHSV-1ゲノムのUL成分におけるUL3とUL4遺伝子の間に挿入されており、前記第3の外来核酸配列は前記改変されたHSV-1ゲノムのUL成分におけるUL37とUL38遺伝子の間に挿入されている、請求項14に記載の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
- 前記第1の外来核酸配列は改変されたHSV-1ゲノムの欠失された領域に挿入されており、前記第2の外来核酸配列は前記改変されたHSV-1ゲノムのUL成分におけるUL37とUL38遺伝子の間に挿入されており、前記第3の外来核酸配列は前記改変されたHSV-1ゲノムのUL成分におけるUL3とUL4遺伝子の間に挿入されている、請求項14に記載の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
- 前記プロモーター配列は、CMVプロモーター又はEgr-1プロモーターである請求項15に記載の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
- 前記免疫刺激剤及び/又は前記免疫治療剤は、ヒト化されている請求項8に記載の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
- 前記抗PD-1剤又は前記抗CTLA-4剤は、それぞれ、PD-1又はCTLA-4エピトープに特異的結合するための抗体の可変領域を含む請求項10に記載の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
- 前記抗体は、完全抗体、抗体フラグメント、又は、抗体又は抗体フラグメントの組み換え誘導体である請求項21に記載の組み換え腫瘍溶解性HSV-1。
- 有効量の請求項8~22のいずれか一項に記載の組み換え腫瘍溶解性HSV-1、及び、薬学的に許容可能な担体を含む医薬組成物。
- 腫瘍内投与用として調製される、請求項23に記載の医薬組成物。
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WO2014047350A1 (en) | 2012-09-20 | 2014-03-27 | Morningside Technology Ventures Ltd. | Oncolytic virus encoding pd-1 binding agents and uses of the same |
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Khalique H., "Transcriptional control of ICPO and its effect on herpes simplex virus-1 replication",A doctor thesis submitted the Autonomous University of Madrid [online], uploaded on 2015.06.18,pp. 5-8, 48-51, 57-69,<URL: https://repositorio.uam.es/bitstream/handle/10486/667411/k halique_hena.pdf?sequence=1&isAllowed=y >, [retrieved on 2020.02.04] which retrieved from the internet: <URL: https://repositorio.uam.es/handle/ 10486/667411 > |
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