JP7187036B2 - 外因性ミトコンドリアを細胞内に送達する方法 - Google Patents

Description

本発明は外因性ミトコンドリアを細胞内に送達する方法に関する。より詳細には、本発明はドナー細胞から単離したミトコンドリアをレシピエント細胞の細胞質内に効率的に送達する方法に関する。

ミトコンドリアは、真核細胞の生存のために不可欠なオルガネラであり、エネルギー源としてのアデノシン三リン酸（ＡＴＰ）の合成および調整に関与している。ミトコンドリアは、インビボにおける種々の代謝経路、たとえば細胞シグナルのプロセッシング、細胞の分化、細胞死、ならびに細胞周期および細胞の増殖の制御に関連している。

したがって、ミトコンドリアへの損傷は種々の疾患の原因となることがあり、最もよく知られたミトコンドリアの障害は、ミトコンドリアＤＮＡで起こる遺伝性または後天性の変異によって引き起こされる。たとえば、ミトコンドリアの機能は、ミトコンドリアの膜電位の異常による膨潤、反応性酸素種や遊離ラジカル等による酸化ストレス、エネルギー産生のためのミトコンドリアの酸化的リン酸化機能の欠陥等によって障害されることがある。

具体的には、ミトコンドリアの機能障害は、種々の疾患、たとえば多発性硬化症、脳脊髄炎、脳神経根炎、末梢神経障害、ライ症候群、アルパー症候群、ＭＥＬＡＳ、偏頭痛、精神病、うつ病、てんかんおよび認知症、卒中発作、視神経萎縮症、視神経症、網膜色素変性症、白内障、高アルドステロン症、副甲状腺機能低下症、ミオパチー、筋萎縮症、ミオグロビン尿症、筋緊張阻害、筋肉痛、運動耐性の低下、腎細尿管症、腎不全、肝不全、肝機能障害、肝腫大、鉄赤血球貧血、好中球減少症、血小板減少症、下痢、絨毛萎縮症、多回嘔吐、嚥下障害、便秘、感音難聴、てんかん、精神発達遅滞、アルツハイマー病、パーキンソン病、およびハンチントン病の直接的または間接的原因であることが知られている。

そのようなミトコンドリア関連疾患を治療するため、ミトコンドリアを保護するかまたはミトコンドリアの機能障害を回復するために用いることができる材料、そのような材料を効率的に標的に送達することを可能にする方法等に関する研究が続けられてきた。しかし、治療範囲がかなり限定されていることや、副作用の出現等の問題があるという観点から、ミトコンドリア関連疾患の画期的な治療はまだ開発されていない。

さらに、ミトコンドリア関連疾患を抜本的にブロックする方法として、ミトコンドリアの変異を有する卵母細胞から核遺伝物質を抽出し、正常なミトコンドリアを有する卵母細胞に核遺伝物質を移植する技術が出現している。しかし、生物学的な論争や倫理的な論争により、関連する法律の通過が妨げられてきた。

したがって、生命倫理に抵触することなく細胞内ミトコンドリア活性を効果的に増大させる方法を発見する努力をする過程で、本発明者らは、細胞に損傷を起こさずに健常なミトコンドリアを注入することができる技術を考案し、本発明を完成させた。

技術的課題

本発明の目的は、細胞から単離したミトコンドリアを特定の細胞に注入する方法を提供することである。さらに、本発明の別の目的は、改善されたミトコンドリア機能を有する細胞であって、ミトコンドリアが投与される細胞に損傷を与えることなく高い送達率で正常なミトコンドリアを細胞内に送達することによって得られる細胞を提供することである。

課題の解決

上記の目的を達成するため、本発明の一側面によれば、外因性ミトコンドリアをレシピエント細胞に送達する方法であって、ａ）レシピエント細胞を、ドナー細胞から単離したミトコンドリアと混合する工程、およびｂ）得られた混合物を遠心分離する工程を含む方法が提供される。

さらに本方法は、工程ｂ）の前に、界面活性剤を添加する工程またはインキュベーションを行う工程をさらに含んでいてもよい。

本発明の別の側面によれば、上記の方法によって外因性ミトコンドリアが導入された細胞が提供され得る。

発明の有利な効果

本発明の方法によって、正常細胞から単離したミトコンドリアをレシピエント細胞に効果的に注入することができる。特に、本発明の方法は、細胞に送達されるミトコンドリアの量を調整することが可能なので、細胞の損傷を起こさずに極めて高い注入収率を示すという利点がある。

図１は、細胞内ミトコンドリアをＸ線蛍光撮影で観察することにより得られた結果を示す。 図２は、単離したミトコンドリアをＸ線蛍光撮影で観察することにより得られた結果を示す。 図３は、ミトコンドリアの単離プロセスの概略図を示す。 図４は、ドナー細胞型によるミトコンドリア活性を比較することにより得られたグラフを示す。 図５は、単離したミトコンドリア中のＡＴＰ含量の測定によってミトコンドリア機能を確認することにより得られたグラフを示す。 図６は、単離したミトコンドリアの高い純度をミトコンドリアマーカーおよび核マーカーの発現の解析によって確認することにより得られた結果を示す。 図７Ａは、ミトコンドリア染色パターンを用いてミトコンドリアのＵＣ－ＭＳＣへの送達を確認することにより得られた結果を示す。 図７Ｂは、ミトコンドリア染色パターンを用いてミトコンドリアのＵＣ－ＭＳＣへの送達を確認することにより得られた結果を示す。 図７Ｃは、ミトコンドリア染色パターンを用いてミトコンドリアのＵＣ－ＭＳＣへの送達を確認することにより得られた結果を示す。 図７Ｄは、３Ｄ Ｚスタックでミトコンドリアの送達を確認することにより得られた結果を示す。 図７Ｅは、３Ｄ Ｚスタックでミトコンドリアの送達を確認することにより得られた結果を示す。 図７Ｆは、３Ｄ Ｚスタックでミトコンドリアの送達を確認することにより得られた結果を示す。 図７Ｇは、単離したミトコンドリアの生存率をミトコンドリア特異的ＭｉｔｏＴｒａｃｋｅｒプローブを用いて確認することにより得られた結果を示す。 図７Ｈは、単離したミトコンドリアの生存率をミトコンドリア特異的ＭｉｔｏＴｒａｃｋｅｒプローブを用いて確認することにより得られた結果を示す。 図７Ｉは、単離したミトコンドリアの生存率をミトコンドリア特異的ＭｉｔｏＴｒａｃｋｅｒプローブを用いて確認することにより得られた結果を示す。 図８は、ＵＣ－ＭＳＣに送達されたミトコンドリアの送達率をＦＡＣＳ解析で確認することにより得られた結果を示す。 図９は、レシピエント細胞（Ｌ６細胞）へのＵＣ－ＭＳＣ由来のミトコンドリアの送達をｑＰＣＲを用いて確認することにより得られた結果を示す。 図１０は、ミトコンドリアの送達が遠心分離によって効果的に行われることをリアルタイムＰＣＲを用いて確認することにより得られた結果を示す。 図１１は、種々の細胞へのミトコンドリアの送達をＦＡＣＳ解析で確認することにより得られた結果を示す。 図１２は、ドナー細胞由来のミトコンドリアをレシピエント細胞に送達し、次いで得られたレシピエント細胞を用いるプロセスを示す。 図１３は、その含量に応じた、混合される外因性ミトコンドリアの送達率をＦＡＣＳで解析することにより得られた結果を示す。 図１４は、その含量に応じた、混合される外因性ミトコンドリアの送達率をＦＡＣＳで解析して得られたグラフを示す。 図１５は、混合されるミトコンドリアの濃度に応じた、レシピエント細胞に送達された外因性ミトコンドリアの量を示す。 図１６は、レシピエント細胞に送達された外因性ミトコンドリアを共焦点走査顕微鏡で撮影することにより得られた写真を示す。 図１７は、ミトコンドリア送達の最適条件をＦＡＣＳ解析で確認することにより得られた結果を示す。 図１８Ａは、ミトコンドリア送達の最適条件下でミトコンドリアを送達し、次いで送達されたミトコンドリアを共焦点顕微鏡で確認することにより得られた結果を示す。 図１８Ｂは、ミトコンドリア送達の最適条件下でミトコンドリアを送達し、次いで送達されたミトコンドリアを共焦点顕微鏡で確認することにより得られた結果を示す。 図１９は、界面活性剤の添加後のインキュベーション時間に応じたミトコンドリア送達率をＦＡＣＳで解析することにより得られた結果を示す。 図２０は、界面活性剤の添加後のインキュベーション時間に応じたミトコンドリア送達率をＦＡＣＳで解析することにより得られた結果を棒グラフとして模式的に示す。 図２１は、界面活性剤をレシピエント細胞に添加し、遠心分離のプロセスなしにインキュベーションを行うプロセスで得られたミトコンドリア送達率を測定することにより得られた結果を示す。 図２２は、レシピエント細胞を種々の濃度および処理時間で界面活性剤で処理し、次いで遠心分離でミトコンドリアをレシピエント細胞に送達した場合のミトコンドリア送達率を測定することにより得られた結果を示す。

発明の詳細な説明

これ以降、本発明を詳細に説明する。

本発明の一側面において、外因性ミトコンドリアをレシピエント細胞に送達する方法であって、ａ）レシピエント細胞を、ドナー細胞から単離したミトコンドリアと混合する工程、およびｂ）得られた混合物を遠心分離する工程を含む方法が提供される。

最初に、レシピエント細胞を、ドナー細胞から単離したミトコンドリアと混合する工程が提供される。

ここで、「ドナー細胞」は、ミトコンドリアを提供する細胞を意味する。さらに、ドナー細胞は正常なミトコンドリアを含む正常細胞であってもよい。具体的には、ドナー細胞は動物またはヒトを含む哺乳類から単離された細胞であってもよい。さらに、ドナー細胞は動物細胞であってもよく、それぞれ独立に、体細胞、幹細胞、およびそれらの組合せからなる群から選択される何れか１つであってもよい。

さらに、体細胞は筋細胞、肝細胞、線維芽細胞、上皮細胞、神経細胞、脂肪細胞、骨細胞、白血球、リンパ球、粘膜細胞、およびそれらの組合せからなる群から選択される何れか１つであってもよいし；筋細胞、肝細胞、線維芽細胞、およびそれらの組合せからなる群から選択される何れか１つであってもよいし；あるいは筋細胞または肝細胞であってもよい。好ましくは、ドナー細胞は優れたミトコンドリア活性を有する筋細胞であってもよい。

さらに、幹細胞は種々の型の組織細胞に分化する能力を有する未分化の細胞を意味する。幹細胞は任意の型の幹細胞、たとえば成体幹細胞、間葉系幹細胞、誘導多能性幹細胞、および組織由来幹細胞であってもよい。

さらに、がん細胞は扁平上皮細胞癌、小細胞肺がん、非小細胞肺がん、肺がん、腺癌、腹膜がん、結腸がん、胆管腫瘍、鼻咽頭がん、喉頭がん、気管支がん、口腔がん、骨肉腫、胆嚢がん、腎がん、白血病、膀胱がん、黒色腫、脳がん、グリオーマ、脳腫瘍、皮膚がん、膵がん、乳がん、肝がん、骨髄腫瘍、食道がん、結腸直腸がん、胃がん、子宮頸がん、前立腺がん、卵巣がん、頭頸部がん、および直腸がんからなる群から選択される何れかの細胞であってもよい。

一方、「レシピエント細胞」はその中にミトコンドリアが導入される細胞を意味する。さらに、レシピエント細胞は正常細胞であってもよく、免疫関連細胞である白血球およびリンパ球の何れか１つであってもよい。さらに、レシピエント細胞は先天的または後天的要素による異常なミトコンドリアを含む異常な細胞であってもよい。

さらに、ドナー細胞とレシピエント細胞は互いに同種または異種であってもよい。ドナー細胞とレシピエント細胞は同じ対象からまたは異なった対象から得られたものでもよい。

工程ａ）において、ドナー細胞からミトコンドリアを単離する方法は種々の公知の方法、たとえば特定の緩衝溶液を用いてミトコンドリアを単離する方法、または電位差および磁場を用いてミトコンドリアを抽出する方法から選択することができる。

ミトコンドリア活性を維持するために、ミトコンドリアを単離する方法の一態様として、細胞を破壊し遠心分離を行うことによってミトコンドリアを得てもよい。一態様においては、ミトコンドリアの単離は、ドナー細胞を培養し、この細胞を含む組成物の一次遠心分離を行ってペレットを作成する工程、ペレットを緩衝溶液中に再懸濁し、ホモジナイゼーションを行う工程、ホモジナイズされた溶液を二次遠心分離して上清を調製する工程、および上清を三次遠心分離してミトコンドリアを精製する工程によって行ってもよい。ここで細胞の活性を維持する観点から、二次遠心分離を行う時間は一次および三次遠心分離を行う時間より短くなるように調整することが好ましい。工程が一次遠心分離から三次遠心分離へと進行するにつれて速度を増大させることが可能である。

具体的には、一次から三次への遠心分離は０℃～４０℃の温度、好ましくは３℃～５℃の温度で行ってもよい。さらに、遠心分離は０．５分～５０分、１分～２０分、または２分～３０分、好ましくは５分間、行ってもよい。さらに、遠心分離を行う時間は遠心分離の回数、試料の含量などによって適当に調節することができる。遠心分離は１×ｇ～２，４００×ｇ、３５０×ｇ～２，０００×ｇ、または６００×ｇ～１，６００×ｇ、好ましくは１，５００×ｇの速度で行ってもよい。

さらに、一次遠心分離は１００～１，０００×ｇ、２００～７００×ｇ、または３００～４５０×ｇの速度で行ってもよい。さらに、二次遠心分離は１～２，０００×ｇ、２５～１，８００×ｇ、または５００～１，６００×ｇの速度で行ってもよい。さらに、三次遠心分離は１００～２０，０００×ｇ、５００～１８，０００×ｇ、または８００～１５，０００×ｇの速度で行ってもよい。

次に、外因性ミトコンドリアをレシピエント細胞に送達する工程であって、得られた混合物を遠心分離する工程を含む工程が提供される。

ここで、遠心分離は１００×ｇ、３００×ｇ、５００×ｇ、８００×ｇ、１，０００×ｇ、１，２００×ｇ、１，５００×ｇ、１，８００×ｇ、２，０００×ｇ、２，４００×ｇ、３，０００×ｇ、５，０００×ｇ、または１０，０００×ｇで行ってもよい。さらに、遠心分離を行う時間は０．１分～６０分でもよいが、それに限定されない。具体的には、時間は１分、２分、３分、５分、１０分、２０分、または３０分でもよい。

遠心分離は０℃～４０℃、２０℃～３８℃、または３０℃～３７℃の温度で行ってもよい。

したがって、レシピエント細胞とドナー細胞から単離されたミトコンドリアとの両方に遠心力を印加することによって、レシピエント細胞への損傷を少なくしながら高い効率でミトコンドリアをレシピエント細胞に送達することができる。さらに、レシピエント細胞が欠陥のあるミトコンドリアを有する場合に、正常なミトコンドリアを含むドナー細胞から単離されたミトコンドリアをレシピエント細胞に注入することができ、それによりミトコンドリアの欠陥によるレシピエント細胞の機能を回復することができる。

さらに工程ｂ）において、混合物の遠心分離をその直径が底に向かって徐々に狭くなっている試験管内で行うことが、レシピエント細胞とミトコンドリアに印加される遠心力およびそれらの間の接触効率の観点でより効果的である。遠心分離は同じ条件下で１～３回、さらに行ってもよい。

本発明の一態様において、１，５００×ｇの速度で５分の遠心分離を行う場合には、ミトコンドリアが最もよくレシピエント細胞に送達されることが見出された。

さらに工程ａ）において、ミトコンドリアは種々の量でレシピエント細胞と混合してもよい。具体的には、ミトコンドリアは、レシピエント細胞１×１０^５個あたり、０．００５～２５μｇ、０．０１～２３μｇ、または０．１～２０μｇの量で含まれていてもよい。具体的には、ミトコンドリアは、レシピエント細胞１×１０^５個あたり、０．１μｇ、１μｇ、３μｇ、５μｇ、１０μｇ、１５μｇ、または１８μｇの量で含まれていてもよい。ミトコンドリアがレシピエント細胞１×１０^５個あたり０．００５μｇより少ない量で含まれている場合には、やや少ない送達収率が得られることがある。

さらに本方法は工程ｂ）を行う前に、工程ａ）で得られた混合物に界面活性剤を添加する工程をさらに含んでいてもよい。界面活性剤はレシピエント細胞の細胞膜透過性を増大させるために用いられる。界面活性剤を添加する時点はレシピエント細胞とミトコンドリアを混合する前、その間、その後のいずれでもよい。さらに、界面活性剤をレシピエント細胞に添加した後で、レシピエント細胞の細胞膜透過性を増大させるためにレシピエント細胞をある時間の間、インキュベートしてもよい。レシピエント細胞を放置しておく時間は０．１～６０分でもよい。具体的には、その時間は１分、５分、１０分、２０分、または３０分でもよいが、それらに限定されない。

具体的には、界面活性剤は、好ましくは、非イオン性界面活性剤であり、ポロキサマーであってもよい。ここで、ポロキサマーは２つの親水性ポリオキシエチレン鎖に挟まれた中央の疎水性ポリオキシプロピレン鎖から構成されるトリブロックコポリマーである。さらに、混合物中の界面活性剤は１～１００ｍｇ／ｍｌ、３～８０ｍｇ／ｍｌ、または５～４０ｍｇ／ｍｌ、好ましくは１０～３０ｍｇ／ｍｌの濃度を有していてもよい。

さらに本方法は工程ｂ）を行う前に、工程ａ）で得られた混合物を所定の時間および温度条件下でインキュベートする工程をさらに含んでいてもよい。インキュベーションは０℃～４０℃、２０℃～３８℃、または３０℃～３７℃の温度で行ってもよい。さらに、インキュベーションは０．１～４時間、０．５～３．８時間、または０．８～３．５時間、行ってもよい。さらに、インキュベーションは、ミトコンドリアをレシピエント細胞に送達させるように、工程ｂ）を行った後で所定の時間、行ってもよい。さらに、インキュベーション時間は細胞型およびミトコンドリアの量に応じて適当に選択することができる。

さらに本方法は工程ｂ）を行う前に、工程ａ）で得られた混合物に界面活性剤を添加し、インキュベーションを行う工程をさらに含んでいてもよい。ここで、界面活性剤およびインキュベーションの条件は上述のものと同じである。

本発明の別の側面においては、上述の方法によって外因性ミトコンドリアが送達された細胞が提供される。

細胞はミトコンドリア機能障害疾患を治療するための組成物中に含まれていてもよい。具体的には、外因性ミトコンドリアが上述の方法によって送達された細胞を活性成分として含む組成物を、疾患を治療するために投与することができる。ここで、本発明の細胞を、標的の疾患に直接関連するかまたは関連しない健康状態を有する哺乳類に有効量で投与することができる。

したがって、本発明による送達方法は、外因性ミトコンドリアが導入される細胞のミトコンドリア機能を改善することができ、本発明によって得られた細胞は、ミトコンドリア機能を改善するため、およびミトコンドリア機能障害疾患を治療または予防するために用いることができる。

これ以降、本発明の理解を助けるために本発明の好ましい例を説明する。しかし、以下の例は本発明をより容易に理解する目的のみに提供され、本発明は以下の例に限定されない。

調製例１．細胞の調製
ヒト脂肪細胞由来間葉系幹細胞（ＡＤ－ＭＳＣ；ＰＣＳ－５００－０１１、パッセージ＃７）、ヒト乳がん細胞株（ＭＣＦ－７；ＨＴＢ－２２、パッセージ＃２０）、ヒト腺癌肺胞上皮細胞（Ａ５４９；ＣＣＬ－１８５、パッセージ＃２０）、ヒト白血病細胞株（Ｋ５６２；ＣＣＬ－２４３、パッセージ＃２０）、ヒト肝細胞株（ＷＲＬ－６８；ＣＬ－４８、パッセージ＃９）、ヒト皮膚線維芽細胞（ＨＤＦ；ＰＣＳ－２０１－０１２、パッセージ＃９）およびヒトナチュラルキラー細胞株（ＮＫ－９２；ＣＲＬ－２４０７、パッセージ＃１０）はＡｎｉｍａｌ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ社（Ｍａｎａｓｓａｓ、ＶＡ）より購入した。ヒト骨髄由来間葉系幹細胞（ＢＭ－ＭＳＣ；ＭＳＣ－００１Ｆ、パッセージ＃７）はＳＴＥＭＣＥＬＬ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｉｎｃ．（Ｖａｎｃｏｕｖｅｒ、Ｃａｎａｄａ）より購入した。細胞型による送達効率（％）を比較するため、完全に解凍するまで全ての細胞株を３７℃の浴に保存した。その後、直ちに細胞株をミトコンドリア送達に用いた。

ＵＣ－ＭＳＣは、１０％のウシ胎児血清（ＦＢＳ；Ｈｙｃｌｏｎｅ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ Ｉｎｃ．）、１００μｇ／ｍｌのストレプトマイシンおよび１００ＩＵ／ｍｌのペニシリン（Ｐ／Ｓ；Ｈｙｃｌｏｎｅ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ Ｉｎｃ．）、ならびに１０ｎｇ／ｍｌの塩基性線維芽細胞増殖因子（ＣＨＡ Ｍｅｄｉｔｅｃｈ Ｃｏ．，Ｌｔｄ．、Ｄａｅｊｅｏｎ、Ｋｏｒｅａ）を補充したα－ＭＥＭ培地（Ｈｙｃｌｏｎｅ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ Ｉｎｃ．、Ｌｏｇａｎ、ＵＴ）の中で培養した。細胞のコンフルエンシーが８０％～９０％に達した時、パッセージ＃５～＃７のステージのＵＣ－ＭＳＣを用いた。参考までに、本実験はＣＨＡ大学のＩｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎａｌ Ａｕｄｉｔ Ｃｏｍｍｉｔｔｅｅ（Ｓｅｏｎｇｎａｍ、Ｋｏｒｅａ；ＩＲＢ Ｎｏ．２０１４１２－ＢＲ－００３－０２）の承認の下に行った。

ラット骨格筋由来細胞株Ｌ６（ＣＲＬ－１４５８）はＡｎｉｍａｌ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ社（Ｍａｎａｓｓａｓ、ＶＡ）より購入した。細胞は１０％のＦＢＳおよび１％のＰ／Ｓを補充したＤＭＥＭ培地（ＤＭＥＭ；Ｈｙｃｌｏｎｅ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ Ｉｎｃ．）の中で培養し、パッセージ＃６～＃１０のステージのＬ６細胞を用いた。

調製例２．蛍光イメージ解析
以下の例では、ミトコンドリアの送達を追跡するために１０×および２０×の開口数を有するＴＣＳ ＳＰ５ ＩＩ共焦点顕微鏡（Ｌｅｉｃａ、Ｈｅｉｄｅｌｂｅｒｇ、Ｇｅｒｍａｎｙ）を用いた。デジタルイメージはＬｅｉｃａ ＬＡＳ ＡＦソフトウェア（Ｌｅｉｃａ Ｍｉｃｒｏｓｙｓｔｅｍｓ、Ｍａｎｎｈｅｉｍ、Ｇｅｒｍａｎｙ）の２．６バージョンを用いて確認した。

例１
ミトコンドリアの単離
１．１．Ｌ６細胞中のミトコンドリアの単離
調製例２で培養したＬ６を緑色のミトコンドリア特異的マーカー（Ｍｉｔｏｔｒａｃｋｅｒ ｇｒｅｅｎ）で染色した。緑色蛍光が細胞内ミトコンドリアで良好にラベルされるかを確認するために蛍光顕微鏡を用いて観察を行った。

ミトコンドリアを抽出するため、ヘモサイトメーターを用いて細胞数を測定し、約２×１０^７細胞／ｍｌの量の細胞を収集した。その後、細胞株を３５０×ｇの速度で、約４℃の温度で１０分、一次遠心分離に供した。ここで、得られたペレットを収集し、ディスポーザブルの１ｍｌシリンジを用いてプロテアーゼインヒビター（Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ、Ｍａｎｎｈｅｉｍ、Ｇｅｒｍａｎｙ）を補充したＳＨＥ緩衝溶液（０．２５Ｍのスクロース、２０ｍＭのＨＥＰＥＳ（ｐＨ７．４）、２ｍＭのＥＧＴＡ、１０ｍＭのＫＣｌ、１．５ｍＭのＭｇＣｌ_２および０．１％のＢＳＡ（脱脂肪したウシ血清アルブミン））中で再懸濁し、ホモジナイズした。ペレットを含む組成物を１，１００×ｇの速度で、約４℃の温度で３分、二次遠心分離に供して上清を得た。次いで、上清を１２，０００×ｇの速度で、約４℃で１５分、三次遠心分離に供して細胞株からミトコンドリアを単離した。

単離したミトコンドリアを確認するため、単離を行う前に緑色蛍光でラベルした細胞内ミトコンドリアを通常の顕微鏡および蛍光顕微鏡で撮影し、その結果を図１に示し；単離したミトコンドリアを通常の顕微鏡および蛍光顕微鏡で撮影し、その結果を図２に示す。ミトコンドリア単離実験のフローチャートを図３に示す。

図１および２に示すように、単離前にＬ６細胞中に存在していたミトコンドリアが単離されたことが確認された。

１．２．ヒト臍帯由来間葉系幹細胞中のミトコンドリアの単離
ヒト臍帯由来間葉系幹細胞（ＵＣ－ＭＳＣ、ＣＨＡ ｂｕｎｄａｎｇ ｍｅｄｉｃａｌ ｃｅｎｔｅｒより提供、ＩＲＢ Ｎｏ．２０１４１２－ＢＲ－００３－０２）からミトコンドリアを単離するため、分別遠心分離を用いた。ミトコンドリアを抽出するため、ヘモサイトメーターを用いて細胞数を測定し、約２×１０^７細胞の量の細胞を収集した。

細胞株を３５０×ｇの速度で、約４℃の温度で１０分、一次遠心分離に供した。ここで、得られたペレットを収集し、ディスポーザブルの１ｍｌシリンジを用いてプロテアーゼインヒビター（Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ、Ｍａｎｎｈｅｉｍ、Ｇｅｒｍａｎｙ）を補充したＳＨＥ緩衝溶液（０．２５Ｍのスクロース、２０ｍＭのＨＥＰＥＳ（ｐＨ７．４）、２ｍＭのＥＧＴＡ、１０ｍＭのＫＣｌ、１．５ｍＭのＭｇＣｌ_２および０．１％のＢＳＡ（脱脂肪したウシ血清アルブミン））中で再懸濁し、ホモジナイズした。

ペレットを含む組成物を１，１００×ｇの速度で、約４℃の温度で３分、二次遠心分離に供して未溶解の細胞および細胞片を除去し、上清を得た。次いで、ミトコンドリアをペレット化するため、上清を１２，０００×ｇの速度で、約４℃の温度で１５分、三次遠心分離に供した。ミトコンドリアのペレットを５００μｌのＳＨＥ緩衝液に再懸濁し、２０，０００×ｇの速度で、約４℃で５分、遠心分離に供した。上清を除去した後、ペレットを５０μｌのＰＢＳに再懸濁し、測定を行うまで氷上に保存した。全ての解析は新たに単離したミトコンドリアについて行った。

例２
ドナー細胞から単離したミトコンドリアの活性および機能の確認
２．１．ドナー細胞から単離したミトコンドリアの活性の測定
例１の方法に従ってヒト肝細胞株、ＷＲＬ－６８、ヒト皮膚線維芽細胞、ＨＤＦ、およびヒト臍帯由来間葉系幹細胞、ＵＣ－ＭＳＣからミトコンドリアをさらに単離した。このようにして単離したミトコンドリアの活性を測定するため、シトクロムｃ酸化活性アッセイキット（ＢｉｏＶｉｓｉｏｎ Ｉｎｃ．）を用いた。それぞれの細胞中のミトコンドリアをキットに含まれた還元型シトクロムｃと反応させ、１分間隔で３０分間、５５０ｎｍの吸光度を測定した。経時的に測定した吸光度の変化から、還元型に対するミトコンドリアの酸化能を計算した。それぞれの細胞株から得られたミトコンドリアのシトクロムｃ酸化活性を測定し、図４に示す。

図４に示すように、単離されたミトコンドリアのＡＴＰ活性能は筋細胞、肝細胞、臍帯由来幹細胞、線維芽細胞の順であると思われた。このことから、組織によって異なったミトコンドリア活性が示されていることが分かる。

２．２．ドナー細胞から単離したミトコンドリアの機能の確認
ＵＣ－ＭＳＣから単離したミトコンドリアの機能を確認するため、単離したミトコンドリアについてビシンコニン酸（ＢＣＡ）アッセイを用いてミトコンドリアタンパク質の濃度を定量し、種々の濃度（０．０５μｇ、０．５μｇ、および５μｇ）でＡＴＰを測定した。ミトコンドリア中のＡＴＰの量は、ＡＴＰの量に比例して発光シグナルを発生するＣｅｌｌＴｉｔｅｒ－Ｇｌｏル発光キット（Ｐｒｏｍｅｇａ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ、Ｍａｄｉｓｏｎ、ＷＩ）を用いて測定した。

それぞれの濃度のミトコンドリアを５０μｌのＰＢＳと混合し、次いで９６ウェルのプレート中で調製した。キットに含まれている試験溶液５０μｌをこれに均等に添加し、室温で３０分、反応させた。次いで、発光マイクロプレートリーダーを用いて発光シグナルを測定することによってＡＴＰの量を測定した。この結果を図５に示す。

図５に示すように、ＡＴＰの量はミトコンドリアの濃度により、またこれに比例して増大し、これからミトコンドリアの機能を確認することができた。

例３
ドナー細胞から単離したミトコンドリアの純度の測定
ＵＣ－ＭＳＣから単離したミトコンドリアの純度を測定するため、ミトコンドリアの単離プロセスで得られたサイトゾル分画とミトコンドリア分画中のミトコンドリアマーカー［シトクロムＣオキシダーゼ（ＣＯＸ ＩＶ）およびシトクロム］ならびに核マーカー［増殖細胞核抗原（ＰＣＮＡ）およびβ－アクチン］の発現をウェスタンブロット解析で確認した。結果を図６に示す。

図６に示すように、単離したミトコンドリア分画中でＣＯＸ ＩＶとシトクロムｃが発現されている一方、ＰＣＮＡとβ－アクチンはそこでは発現されていないことが確認された。このことから、単離したミトコンドリアは高い純度を有することが確認された。

例４
ドナー細胞から単離したミトコンドリアの送達の確認
４．１．ＷＲＬ－６８から単離したミトコンドリアの送達および活性の確認
ミトコンドリア特異的ＭｉｔｏＴｒａｃｋｅｒプローブを用いて、ＷＲＬ－６８から単離したミトコンドリアの送達および送達されたミトコンドリアの活性を確認した。ミトコンドリアの生存率および呼吸能を、赤色蛍光を有するＭｉｔｏＴｒａｃｋｅｒ Ｒｅｄ ＣＭＸＲｏｓ（ＣＭＸＲｏｓ）プローブがミトコンドリア膜電位（ＭＭＰ）に応じて集積するという特徴によって確認した。さらに、レシピエント細胞であるＵＣ－ＭＳＣ中のミトコンドリアをＭｉｔｏＴｒａｃｋｅｒ Ｇｒｅｅｎ（ＭＴＧ）プローブで染色した。ＭｉｔｏＴｒａｃｋｅｒ Ｒｅｄ ＣＭＸＲｏｓプローブで染色したＷＲＬ－６８から単離した外因性ミトコンドリアを、ＭｉｔｏＴｒａｃｋｅｒ Ｇｒｅｅｎプローブで染色したＵＣ－ＭＳＣと混合した。次いで遠心分離を開始した。ＭｉｔｏＴｒａｃｋｅｒ Ｒｅｄ ＣＭＸＲｏｓ（ＣＭＸＲｏｓ）プローブおよびＭｉｔｏＴｒａｃｋｅｒ Ｇｒｅｅｎ（ＭＴＧ）プローブのそれぞれによる観察で得られたイメージをそれぞれ図７Ａおよび７Ｂに示し、２つのイメージが合体したイメージを図７Ｃに示す。

図７Ａ～７Ｃに示すように、送達された外因性ミトコンドリア（赤色蛍光）は、ＵＣ－ＭＳＣに固有のミトコンドリア（緑色蛍光）と合体したイメージ（黄色蛍光）として現われた。このことから、本発明のミトコンドリア単離方法によって未変性のミトコンドリアが得られることが見出された。

さらに、ＭｉｔｏＴｒａｃｋｅｒ Ｒｅｄ ＣＭＸＲｏｓ（ＣＭＸＲｏｓ）プローブで染色した外因性ミトコンドリアを有するＵＣ－ＭＳＣの３次元ｚ－スタックイメージを観察した。これらの結果を図７Ｄ～７Ｆに示す。図７Ｅを基礎として、図７Ｄは２μｍ低い位置にある部分のイメージであり、図７Ｆは２μｍ高い位置にある部分のイメージである。

図７Ｅ～７Ｆに示すように、レシピエント細胞であるＵＣ－ＭＳＣに送達されたミトコンドリアを、合体した場合に起こる黄色の蛍光によって確認した。このことから、ミトコンドリアは遠心分離によってレシピエント細胞に効果的に送達されることが見出された。さらに、送達されたミトコンドリアの活性が維持されていることが見出された。

４．２．ＵＣ－ＭＳＣから単離したミトコンドリアの送達および活性の確認
ミトコンドリア特異的ＭｉｔｏＴｒａｃｋｅｒ Ｒｅｄ ＣＭＸＲｏｓ（ＣＭＸＲｏｓ）プローブを用いて、ＵＣ－ＭＳＣから単離したミトコンドリアの送達および送達されたミトコンドリアの活性を確認した。さらに、細胞内ミトコンドリアをＭｉｔｏＴｒａｃｋｅｒ Ｇｒｅｅｎ（ＭＴＧ）プローブで染色した。さらに、ミトコンドリアの単離の前にＵＣ－ＭＳＣをＭｉｔｏＴｒａｃｋｅｒプローブで染色し、３７℃で３０分インキュベートした。ミトコンドリアの単離プロセスを行った後、ミトコンドリアペレットを１０μｌのＰＢＳと混合し、スライドに載せ、カバースライドで覆い、蛍光顕微鏡で観察した。ＭｉｔｏＴｒａｃｋｅｒ Ｒｅｄ ＣＭＸＲｏｓ（ＣＭＸＲｏｓ）プローブおよびＭｉｔｏＴｒａｃｋｅｒ Ｇｒｅｅｎ（ＭＴＧ）プローブのそれぞれによる観察で得られたイメージをそれぞれ図７Ｇおよび７Ｈに示し、２つのイメージが合体したイメージを図７Ｉに示す。

図７Ｇ～図７Ｉより、本発明のミトコンドリア単離方法によって未変性のミトコンドリアが得られることが見出された。

４．３．ＦＡＣＳ解析を用いてミトコンドリア送達の確認
ミトコンドリア送達率を確認するため、ＭｉｔｏＴｒａｃｋｅｒ Ｇｒｅｅｎを用いて例５．１と同じ方法でＦＡＣＳを行った。これらの結果を図８に示す。

図８に示すように、ＵＣ－ＭＳＣに送達されたミトコンドリアの量（０．０５、０．５、および５μｇ）に比例して緑色蛍光中に現われる送達率は、それぞれ３３．１±０．８％、７７．１±１．１％、および９２．７±５．９％に増大した。このことから、送達率はレシピエント細胞に送達されたミトコンドリアの量（ミトコンドリアタンパク質の濃度（μｇ））に比例して増大することが見出された。

４．４．ｑＰＣＲ解析によるミトコンドリア送達の確認
ミトコンドリアの送達を実証するため、ミトコンドリア送達の後のドナー細胞またはレシピエント細胞を、特異的プライマーを用いる従来のＰＣＲに供し、レシピエント細胞中におけるｍｔＤＮＡの発現を実証した。

ドナー細胞としてのヒト臍帯由来間葉系幹細胞、ＵＣ－ＭＳＣから抽出したミトコンドリアをラットＬ６細胞に送達し、次いで定量的ポリメラーゼ連鎖反応（ｑＰＣＲ）アッセイを用いて、ヒトｍｔＤＮＡ、ラットｍｔＤＮＡ、およびラットＧＡＰＤＨの発現を確認した。ここで、ヒトＵＣ－ＭＳＣおよびラットＬ６細胞に特異的なプライマーを用いた。この結果を図９に示す。

図９に示すように、ラット細胞におけるヒトｍｔＤＮＡの発現はＬ６細胞に送達されたミトコンドリアの量に応じて増大した。一方、ラットｍｔＤＮＡの発現には変化がなかった。このことから、ミトコンドリアが送達されるべきレシピエント細胞に外因性ミトコンドリアが送達されたことが見出された。

４．５．リアルタイムＰＣＲ解析によるミトコンドリア送達の確認
例４．４で確認した定性的結果とともに定量的結果を得るため、外因性ミトコンドリアが送達されたＬ６細胞において、送達されたミトコンドリアに特異的なヒトｍｔＤＮＡコピーの数とミトコンドリア送達の前のヒトｍｔＤＮＡコピーの数との比較を行った。この結果を図１０に示す。図２１において、黒色の棒（上から１番目）は、ミトコンドリアを抽出した後の送達すべきミトコンドリアの濃度に対するｍｔＤＮＡのコピー数を確認することにより得られた結果を表わす。明灰色の棒（上から２番目）は、遠心分離によってレシピエント細胞にミトコンドリアを送達した後のレシピエント細胞中のｍｔＤＮＡのコピー数を確認することにより得られた結果を表わす。暗灰色の棒（上から３番目）は、遠心分離でなく共インキュベーション（２４時間）によるミトコンドリア送達の後のｍｔＤＮＡのコピー数を確認することにより得られた結果を表わし、これは遠心分離法によって得られた送達率に対する比較の数値を示すことを意図している。

図１０に示すように、遠心分離によって得られたミトコンドリア送達率は約８０％～８５％であると思われた。さらに、共インキュベーションによって得られたミトコンドリア送達率は１０％未満と顕著に低い数値であると思われた。このことから、遠心分離によるミトコンドリア送達法は効果的であることが見出された。

４．６．種々の細胞へのミトコンドリア送達の確認
レシピエント細胞の性質によるミトコンドリア送達の相違を比較するため、種々の細胞へのミトコンドリアの送達率をＦＡＣＳ解析によって測定した。３つの細胞株（幹細胞、がん細胞、および体細胞）を選択した。細胞を付着性および浮遊性細胞型に分類し、ＵＣ－ＭＳＣ由来のミトコンドリアを遠心分離によってそれぞれの細胞型に送達した。その後、ＦＡＣＳ解析を行った。結果を図１１に示す。

図１１から、細胞による送達率の相違はあるが、ミトコンドリアは広範囲の細胞に送達できることが見出された。

例５
レシピエント細胞へのミトコンドリアの送達
例１に従って単離した外因性ミトコンドリアをレシピエント細胞に効果的に送達するため、図１２に示した迅速かつ簡単な遠心分離法を用いた。図１２に示すように、本方法は良好なミトコンドリア活性能を有するドナー細胞からミトコンドリアを迅速に単離するプロセス（工程１）、単離したミトコンドリアをレシピエント細胞に送達するプロセス（工程２）、および得られた細胞を種々の用途（インビトロ、インビボ（臨床および前臨床））に適用するプロセス（工程３）に大別することができる。

５．１．ミトコンドリア送達の確認（１）
例１に従ってＷＲＬ６８から抽出したミトコンドリアをレシピエント細胞である１×１０^５個のＵＣ－ＭＳＣと混合することによって得られた組成物を例２の方法で処理して、０．０５、０．１、０．２５、０．５、１、２、５、１０、および２０μｇのミトコンドリアがＵＣ－ＭＳＣと混合されるようにした。ここで、ＦＡＣＳ解析を行ってミトコンドリアの濃度による送達率を測定し、その結果を図１３および１４に示す。

図１３および１４から、ＷＲＬ－６８由来のミトコンドリアがレシピエント細胞ＵＣ－ＭＳＣに送達されたことが確認された。

５．２．ミトコンドリア送達の確認（２）
ヒト肝細胞株、ＷＲＬ－６８から抽出したミトコンドリアと、ヒト臍帯由来間葉系幹細胞、ＵＣ－ＭＳＣとを例１の方法で混合し、１，５００×ｇの速度、約４℃の温度で１５分の遠心分離に供した。上清を除去し、ＰＢＳで洗浄し、約４℃の温度で５分の遠心分離に供した。洗浄は同じ条件下で２回行った。レシピエント細胞１×１０^５個あたりミトコンドリア重量６．２５、１２．５、および２５μｇで送達されたドナー細胞のミトコンドリアを確認するため、レシピエント細胞中のＤＮＡを抽出し、ＰＣＲで確認した。

ドナー細胞である肝細胞、ＷＲＬ－６８に特異的なミトコンドリア遺伝子のプライマーセット（フォワードプライマー：配列番号１、リバースプライマー：配列番号２）を、それぞれ抽出されたＤＮＡと混合し、所望のＤＮＡ部分を増幅した。ＤＮＡ産物を確認するため、１．５％アガロースゲル上の電気泳動を行ない、次いでＬｏａｄｉｎｇ Ｓｔａｒ（ＤＹＮＥＢＩＯ ＩＮＣ．，Ｓｅｏｎｇｎａｍ、Ｋｏｒｅａ）による染色を行った。ＵＶ分光計（Ｃｈｅｍｉ－Ｄｏｃ ＸＲＳ；Ｂｉｏ－Ｒａｄ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，Ｈｅｒｃｕｌｅｓ，ＣＡ，ＵＳＡ）を用い、増幅されたＤＮＡバンドを図１５に示す。

共焦点走査顕微鏡を用いてレシピエント細胞に送達されたミトコンドリアを確認するため、ドナー細胞のミトコンドリアとレシピエント細胞のミトコンドリアをそれぞれ、ＭｉｔｏＴｒａｃｋｅｒ ｇｒｅｅｎとＭｉｔｏＴｒａｃｋｅｒ ｒｅｄでラベルした。２４時間後、核を青色に染色できるＤＡＰＩを含む固定液を用いて細胞をスライド上に固定し、共焦点走査顕微鏡（Ｚｅｉｓｓ ＬＳＭ８８０ Ｃｏｎｆｏｃａｌ顕微鏡）を用いて細胞内ミトコンドリアを観察した。結果を図１６に示す。

図１６に示すように、ドナー細胞中のミトコンドリアがレシピエント細胞に送達されたことを目視で確認することができる。

５．３．ミトコンドリア送達の最適条件の確認：遠心分離
種々の遠心速度（５００×ｇ、１，０００×ｇ、１，５００×ｇ、および２，０００×ｇ）および種々の遠心時間（５分、１０分、および１５分）によるそれぞれの濃度（０．０５μｇ、０．５μｇ、および５μｇ）でのミトコンドリアの送達を評価した。それぞれの条件によってレシピエント細胞に送達されたミトコンドリアを、ＦＡＣＳ解析による緑色蛍光の割合によって確認した。結果を図１７に示す。

図１７から、ミトコンドリアをレシピエント細胞に送達するための最適条件は、遠心速度１，５００×ｇ、遠心時間５分であることが見出された。

５．４．ミトコンドリア送達のための最適条件によるミトコンドリア送達の確認
ドナー細胞、ＵＣ－ＭＳＣから単離したミトコンドリアをレシピエント細胞Ｌ６細胞と混合した。例５．３で確認したミトコンドリア送達の最適条件によって、得られた混合物を速度１，５００×ｇ、約４℃の温度で５分の遠心分離に供した。上清を除去し、ＰＢＳによる洗浄を２回行ない、約４℃の温度で５分の遠心分離を行った。レシピエント細胞１×１０^５個あたり送達されたドナー細胞のミトコンドリアを確認するため、レシピエント細胞中のＤＮＡを抽出し、ＰＣＲで確認した。

ＮｕｃｌｅｏＳｐｉｎ Ｔｉｓｓｕｅキット（ＭＡＣＨＥＲＥＹ－ＮＡＧＥＬ ＧｍｂＨ ＆ Ｃｏ．ＫＧ、Ｄｕｅｒｅｎ、Ｇｅｒｍａｎｙ）を用いてレシピエント細胞からゲノムＤＮＡ（ｇＤＮＡ）を単離し、以下の条件下でＰＣＲを行った。前変性９５℃で５分、変性９５℃で３０秒、２５周期、アニーリング５８℃で３０秒、伸長７２℃で３０秒、および最終伸長７２℃で５分。ＤＮＡ産物を確認するため、ＥｔＢｒで染色した１．５％（ｗ／ｖ）アガロースゲル上の電気泳動を行ない、次いでＬｏａｄｉｎｇ Ｓｔａｒ（ＤＹＮＥＢＩＯ ＩＮＣ．，Ｓｅｏｎｇｎａｍ、Ｋｏｒｅａ）による染色を行った。ＵＶ分光計（Ｃｈｅｍｉ－Ｄｏｃ ＸＲＳ；Ｂｉｏ－Ｒａｄ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，Ｈｅｒｃｕｌｅｓ，ＣＡ，ＵＳＡ）を用いて解析を行った。

レシピエント細胞に送達されたミトコンドリアを共焦点走査顕微鏡で確認した。ここで、ドナー細胞のミトコンドリアとレシピエント細胞のミトコンドリアを予めＭｉｔｏｔｒａｃｋｅｒ ｇｒｅｅｎとＭｉｔｏｔｒａｃｋｅｒ ｒｅｄでそれぞれ染色しておいた。次いで、ミトコンドリアにミトコンドリア送達プロセスを施し、レシピエント細胞に基づいて観察した。結果を図１８Ａおよび１８Ｂに示す。

図１８Ａおよび１８Ｂに示すように、緑色蛍光と赤色蛍光はミトコンドリアが送達されたレシピエント細胞の中で合体し、黄色のミトコンドリアパターンを生じた。このことから、ドナー細胞中のミトコンドリアがレシピエント細胞に送達されたことを目視で確認することができた。

例６
界面活性剤処理後のミトコンドリア送達率の測定
６．１．界面活性剤処理およびインキュベーション後のＷＲＬ－６８由来のミトコンドリアの送達率の測定
チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞を小径チューブに採取した。次いで細胞の上層に、Ｍｉｔｏｔｒａｃｋｅｒ ｇｒｅｅｎで染色した肝細胞株ＷＲＬ－６８由来のミトコンドリアを少量添加した。界面活性剤（ＰＦ－６８；ＢＡＳＦ ＳＥ）を組成物中それぞれ０、１０、および３０ｍｇ／ｍｌになるようにチューブに添加し、３７℃の温度で０、１、２、および４時間、インキュベーションプロセスを行ない、全部で１２種の実験群を構成するようにした。次いで遠心分離プロセスを行ない、例５の方法でＷＲＬ－６８由来のミトコンドリアをＣＨＯ細胞に送達した。これをＦＡＣＳで解析し、結果をそれぞれ図１９および２０に示す。

図１９および２０に示すように、インキュベーションによって外因性ミトコンドリアを導入した場合には、外因性ミトコンドリアの送達率は、インキュベーションを行わない方法（図１２の２番目のヒストグラムの９．１％、図１４の上左のヒストグラムの８．９％）と比較して９９％まで改善していることが確認された。

６．２．界面活性剤処理およびインキュベーション後のＵＣ－ＭＳＣ由来のミトコンドリアの送達率の測定
チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞を小径チューブに採取した。次いで細胞の上層に、Ｍｉｔｏｔｒａｃｋｅｒ ｇｒｅｅｎで染色したドナー細胞、ＵＣ－ＭＳＣのミトコンドリアを少量添加した。界面活性剤（ＰＦ－６８；ＢＡＳＦ ＳＥ）を組成物中それぞれ０ｍｇ／ｍｌ、１０ｍｇ／ｍｌ、２０ｍｇ／ｍｌ、および３０ｍｇ／ｍｌになるようにチューブに添加し、３７℃で０、１、および２時間、インキュベーションプロセスを行ない、全部で１２種の実験群を構成するようにした。遠心分離プロセスを行っていない実験群のミトコンドリア送達率をＦＡＣＳ解析によって測定することにより得られた結果を図２１に示す。

一方、ＵＣ－ＭＳＣのミトコンドリアをＣＨＯ細胞に送達するように例５の方法によって遠心分離プロセスを行った実験群のミトコンドリア送達率をＦＡＣＳ解析によって測定することにより得られた結果を図２２に示す。

図２１に示すように、実験群ではそれぞれの条件で１０％未満のミトコンドリア送達率が示された。一方、図２２では、２０ｍｇ／ｍｌのＰＦ－６８を２時間処理する条件下で、９０％までまたはそれ以上のミトコンドリア送達率が示された。このことは、遠心分離によるミトコンドリアの送達が、ミトコンドリアが細胞膜を通過することによってレシピエント細胞に送達されるようなものであり得ることを意味している。さらに、上の結果から、界面活性剤、たとえばＰＦ－６８による処理が細胞膜の透過性を調整し、それにより、外部から導入されたミトコンドリアが細胞内に入ることができる割合を増大させることが見出された。
以下に、出願当初の特許請求の範囲に記載された発明を付記する。
［１］ 外因性ミトコンドリアをレシピエント細胞に送達する方法であって、
ａ）前記レシピエント細胞を、ドナー細胞から単離したミトコンドリアと混合する工程、および
ｂ）得られた混合物を遠心分離する工程
を含む方法。
［２］ 前記工程ａ）において、前記ミトコンドリアが前記レシピエント細胞の細胞１×１０ ^５ 個あたり０．００５～２５μｇの重量で含まれるように、前記ミトコンドリアおよび前記レシピエント細胞が前記混合物中に存在する、［１］に記載の方法。
［３］ 前記工程ｂ）において、前記遠心分離が１～２，４００×ｇで０℃～４０℃の温度で０．５～２０分間行われる、［１］に記載の方法。
［４］ 前記工程ｂ）の前に界面活性剤を添加する工程をさらに含む、［１］に記載の方法。
［５］ 前記混合物中の前記界面活性剤が１および１００ｍｇ／ｍｌの濃度を有する、［４］に記載の方法。
［６］ 前記工程ｂ）の前にインキュベーションを行う工程をさらに含む、［１］に記載の方法。
［７］ 前記インキュベーションが０℃～４０℃の温度で０．１～４時間行われる、［６］に記載の方法。
［８］ 前記ドナー細胞および前記レシピエント細胞がそれぞれ、体細胞、幹細胞、がん細胞、およびそれらの組合せからなる群から選択される何れか１つである、［１］に記載の方法。
［９］ 前記体細胞が筋細胞、肝細胞、線維芽細胞、上皮細胞、神経細胞、脂肪細胞、骨細胞、白血球、リンパ球、粘膜細胞、およびそれらの組合せからなる群から選択される何れか１つである、［８］に記載の方法。
［１０］ 前記ドナー細胞が前記レシピエント細胞と同種または異種である、［１］に記載の方法。
［１１］ 前記ドナー細胞および前記レシピエント細胞が同じ対象からまたは異なった対象から得られたものである、［１］に記載の方法。
［１２］ ［１］～［１１］の何れか１つに記載の方法によって外因性ミトコンドリアが送達された細胞。

Claims (11)

1. 外因性ミトコンドリアをレシピエント細胞に送達する方法であって、
   ａ）前記レシピエント細胞を、ドナー細胞から単離したミトコンドリアと混合する工程、
   ｂ）非イオン性界面活性剤を添加する工程、ここで、前記非イオン性界面活性剤はポロキサマーである、および
   ｃ）得られた混合物を遠心分離する工程
   を含む方法。
2. 前記工程ａ）において、前記ミトコンドリアが前記レシピエント細胞の細胞１×１０^５個あたり０．００５～２５μｇの重量で含まれるように、前記ミトコンドリアおよび前記レシピエント細胞が前記混合物中に存在する、請求項１に記載の方法。
3. 前記工程ｃ）において、前記遠心分離が１～２，４００×ｇで０℃～４０℃の温度で０．５～２０分間行われる、請求項１に記載の方法。
4. 前記混合物中の前記界面活性剤が１ｍｇ／ｍｌ～１００ｍｇ／ｍｌの濃度を有する、請求項１に記載の方法。
5. 前記工程ｃ）の前にインキュベーションを行う工程をさらに含む、請求項１に記載の方法。
6. 前記インキュベーションが０℃～４０℃の温度で０．１～４時間行われる、請求項５に記載の方法。
7. 前記ドナー細胞および前記レシピエント細胞がそれぞれ、体細胞、幹細胞、がん細胞、およびそれらの組合せからなる群から選択される何れか１つである、請求項１に記載の方法。
8. 前記体細胞が筋細胞、肝細胞、線維芽細胞、上皮細胞、神経細胞、脂肪細胞、骨細胞、白血球、リンパ球、粘膜細胞、およびそれらの組合せからなる群から選択される何れか１つである、請求項７に記載の方法。
9. 前記ドナー細胞が前記レシピエント細胞と同種または異種である、請求項１に記載の方法。
10. 前記ドナー細胞および前記レシピエント細胞が同じ対象からまたは異なった対象から得られたものである、請求項１に記載の方法。
11. 前記ポロキサマーがＰＦ－６８である、請求項１に記載の方法。

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