JP7126688B2 - オレンジ色乳酸菌 - Google Patents
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Description
乳酸菌は通性嫌気性細菌であるため、大腸菌や枯草菌などの好気性細菌に比べて酸素に対する耐性が低いが、この乳酸菌を好気培養することにより黄色カロテノイドが産出されることも、本発明者は既に報告(特許文献2)している。この乳酸菌が生産する黄色カロテノイド色素については、最近、免疫賦活作用や病原菌感染予防効果を有することが解明されつつある。
このように、乳酸菌が生産するカロテノイド色素は、その新たな機能性について関心が持たれているほか、安全性の高い食用色素としても大きく期待されている。
そこで、本発明は、これら黄色以外の色を呈するカロテノイド色素を生産する乳酸菌、当該乳酸菌を製造する方法を提供することを課題としている。
1.L*a*b*表色系における色相a*が4≦a*、及び、色相b*が27≦b*であるオレンジ色乳酸菌。
2.嫌気培養した乳酸菌を水で懸濁後、空気暴露することを特徴とする1.記載の乳酸菌の製造方法。
3.配列番号1に示す塩基配列からなる遺伝子を含む組み換えベクターを導入した乳酸菌を、酸素介在条件下で培養することを特徴とする1.記載の乳酸菌の製造方法。
4.1.記載の乳酸菌を含有する飲食品。
5.1.記載の乳酸菌を含有する化粧品。
6.1.記載の乳酸菌を含有する医薬品または医薬部外品。
以下、本発明について詳細に説明する。
本発明のオレンジ色乳酸菌は、嫌気培養した乳酸菌を水で懸濁後、空気暴露することにより得ることができる。この製造方法は、室温(25℃)で行うことができ、空気暴露してすぐにオレンジ色が観察され、概略数十分後にはオレンジ色乳酸菌を得ることができる。
本発明において乳酸菌の培養は、嫌気条件で行う通常の乳酸菌培養で用いられる培養条件に従って行えばよい。嫌気条件とは、培養系に酸素が供給されない環境下をいい、例えば、嫌気条件下での静置培養や撹拌培養などが挙げられる。
培養に用いる培地は、炭素源、窒素源、無機塩類等を含有し、乳酸菌が生育できる培地であれば、天然培地、合成培地のいずれを用いてもよく、当業者であれば使用する菌株に適切な公知の培地を適宜選ぶことができる。炭素源としてはグルコース、ラクトース、ガラクトース、フルクトース、トレハロース、スクロース、マンノース、廃糖蜜などを使用することができ、窒素源としては肉エキス、ペプトン、イーストエキストラクト、カゼイン加水分解物、ホエータンパク質加水分解物、大豆タンパク質加水分解物などを使用することができる。また無機塩類としては、リン酸塩、ナトリウム、カリウム、マグネシウムなどを用いることができる。乳酸菌の培養に適した培地としては、例えばM17培地(グルコース添加)、MRS液体培地、GYP培地、TYG培地、BL培地、GAM培地、Broth培地、Briggs Liver Broth、獣乳、脱脂乳、乳性ホエーなどが挙げられる。
培養条件は、乳酸菌が生育し得る条件であれば特に制限はないが、例えば、pHは5.0~8.0、好ましくは5.0~7.0、温度が20~45℃、好ましくは30~40℃で、時間は10~30時間、好ましくは18~24時間である。培養の形式は、静置培養、振とう培養、タンク培養などが挙げられる。
本発明のオレンジ色乳酸菌は、配列番号1に示す塩基配列からなる遺伝子を含む組み換えベクターを導入した乳酸菌を、酸素介在条件下で培養することにより、製造することができる。後述する実施例において詳しく説明するが、黄色カロテノイドを生産する乳酸菌として公知のエンテロコッカス属(Enterococcus)乳酸菌(E.mundtii)から、3つの遺伝子からなると予想されたオペロンを単離してからベクターに連結し、ラクトコッカス(Lactococcus)属乳酸菌(L.lactis)で発現したところ、配列番号1に示す塩基配列からなる遺伝子(以下、遺伝子1ともいう。)により、オレンジ色乳酸菌が得られることが明らかとなった。すなわち、本発明のオレンジ色乳酸菌の生成には、この遺伝子1が関与しているものと考えられる。
本発明における飲食品としては、例えば、清涼飲料、炭酸飲料、栄養飲料、果実飲料、乳飲料など飲料(これらの飲料の濃縮原液及び調整用粉末を含む)、加工乳、発酵乳、ヨーグルト、バター、チーズ等の乳製品、パン類、麺類、菓子類、水産・畜産加工食品、豆腐等の大豆加工食品、油脂及び油脂加工食品などが挙げられる。化粧品としては、例えば、化粧水、クリーム、ゲル剤、エッセンス、パック、洗浄剤、浴用剤、ファンデーション、口紅、軟膏等の皮膚に適用される皮膚外用剤とすることができる。また、医薬品または医薬部外品としては、例えば、散剤、顆粒剤、錠剤、カプセル剤、懸濁剤、液剤、乳剤、注射液等の製剤として使用することができる。本発明のオレンジ色乳酸菌を飲食品、化粧品、医薬品や医薬部外品に用いる場合には、それぞれの製造原料に配合してもよく、あるいは製造後の製品に配合してもよい。
さらに、本発明のオレンジ色乳酸菌をポリエチレン、ポリプロピレン、ポリ塩化ビニル等の樹脂に練り込んで、オレンジ色の色調を利用した飲食品用、化粧品用または医薬品用等の樹脂フィルムとすることも可能である。
<実施例1:オレンジ色乳酸菌の製造方法1a>
JCM8731(E.mundtii)を0.5%含有するM17液体培地を、30℃で48時間静置培養後(嫌気培養)、菌体を遠心機で分離した。培地を除去した後、水を加えてボルテックスで撹拌し、再度遠心機で菌体を沈殿させて水を除去した。得られた菌体ペレットをそのまま、あるいは水に懸濁して放置した。
図1に、水洗浄後菌体ペレットをそのまま空気暴露した実施例(右)と、嫌気静置培養(嫌気培養)を継続した比較例(左)の菌体の写真を示す。
一方、嫌気培養を続け、水による処理や空気暴露を行わなかった比較例の乳酸菌は、本発明のオレンジ色乳酸菌と相違することが確認された。
上記「実施例1:オレンジ色乳酸菌の製造方法1a」の方法に従い、乳酸菌株の種類や条件を変更し、得られるオレンジ色乳酸菌の色の変化を確認した。
試験検体a~cは漬物より分離した161株(E.mundtii)を、試験検体d~fはJCM8731(E.mundtii)を使用し、それぞれ48時間静置培養後(嫌気培養)、以下の条件に従い製造した。
試験検体a:水洗浄後、37℃24時間空気暴露した。
試験検体b:水洗浄後、30℃24時間空気暴露した。
試験検体c:M17培地で洗浄後、30℃24時間空気暴露した。
試験検体d:水洗浄後、37℃24時間空気暴露した。
試験検体e:水洗浄後、30℃24時間空気暴露した。
試験検体f:M17培地で洗浄後、30℃24時間空気暴露した。
図2に、試験検体a~fの6菌体の写真を示す。
(オレンジ色乳酸菌の色の検定)
製造方法1bにより得られた試験検体a、b、d、eの乳酸菌の色は、発明者3名それぞれが色見本(http://www.color-sample.com/)に基づき、目視による対比評価を行うことにより決定し、L*a*b*表色系における平均値を下記に示す。
試験検体a:L*≒78、a*≒27、b*≒27
試験検体b:L*≒83、a*≒15、b*≒36
試験検体d:L*≒85、a*≒ 9、b*≒34
試験検体e:L*≒81、a*≒16、b*≒44
また、試験検体bとc、試験検体eとfの結果より、水洗浄時に培地成分が存在すると得られるオレンジ色乳酸菌が呈する色が、薄くなる傾向にあることも確認された。
図3に、この製造方法2における遺伝子1~3を使用した発現ベクター作成の模式図を示す。詳しくは、NCBIデータベースにあるEnterococcus mundtii QU25のゲノム情報(NC_022878)より、カロテノイド生合成経路(squalene synthase)として推定される遺伝子を3つピックアップし、配列を基にプライマーを作製した。そのプライマーを用いて、JCM8731(E.mundtii)株のゲノムに対してPCRを行い、プロモーターを含む推定カロテノイド遺伝子のPCR産物を得、それを乳酸菌・大腸菌シャトルベクターであるpRH100に連結した。この時、黄色色素ジアポニューロスポレンを合成する遺伝子群crtNM (Enterococcus gilvus由来)も同時に連結した。上記ベクターに連結した遺伝子断片をシークエンサーで解析し、配列を決定した。下記配列番号1~3に示す塩基配列からなる遺伝子を、それぞれ遺伝子1(配列番号1)、遺伝子2(配列番号2)、遺伝子3(配列番号2)という。
図3に示すように、pRCSは、JCM8731由来推定カロテノイド遺伝子1を1つ含むものを、pRCSGは遺伝子1と遺伝子2の2つを含むもの、pRCSGAは遺伝子1と遺伝子2と遺伝子3の3つを含むものを意味する。
上記「オレンジ色乳酸菌の色の検定」と同様にして、製造方法2により得られた「pRCS」「pRCSG」「pRCSGA」由来の乳酸菌の色を検定した。L*a*b*表色系における平均値は以下のとおりである。
「pRCS」 :L*≒73、a*≒35、b*≒40
「pRCSG」 :L*≒76、a*≒27、b*≒41
「pRCSGA」:L*≒88、a*≒ 5、b*≒43
(1)試験検体
実施例1、2の製造方法で得られた本発明のオレンジ色乳酸菌を試験検体として使用した。
試験検体1:実施例3の「pRC」
試験検体2:実施例3の「pRCS」
試験検体3:実施例3の「pRCSG」
試験検体4:実施例3の「pRCSGA」
試験検体5:実施例1の空気暴露した「JCM8731(E.mundtii)」
試験検体6:実施例2の試験検体b
(2)カロテノイド色素の抽出
各試験検体を遠心分離後、菌体沈殿物を生理食塩水で2回洗浄した。これらの洗浄した菌体をメタノールで抽出した。色素を含むメタノール抽出物に、等量の酢酸エチルと半量の水を加えた。遠心分離(1500g、5分)後、カロテノイド色素を含む有機層を回収した。この有機層を窒素ガス下で乾燥した後、カロテノイド色素を1mlの酢酸エチルに再懸濁した。この懸濁液をTLCシリカゲル60プレート(メルク(株)製)上で、ヘキサン:アセトン(容量比9:1)で展開した。図5は、この展開後のTLCの写真である。
上記TLC展開したオレンジ色スポットを回収してヘキサン:アセトン(1:1)で抽出、窒素ガスで乾燥後、メタノールに溶解して、分光光度計(UV-VIS:バイオスペクトロメーター、エッペンドルフ社製)を用いて最大吸光度を測定した。その結果、本発明のオレンジ色乳酸菌から得られた主要なカロテノイド色素の最大吸収波長は、460~480nmの範囲内であることが明らかとなった。
(1)試験検体
実施例4の試験検体1~5を使用した。
(2)カロテノイド色素の抽出
実施例4の「カロテノイド色素の抽出」と同じ処理により得られた懸濁液をTLCシリカゲル60プレート(メルク(株)製)上で、石油エーテル:アセトン(容量比13:7)で展開した。図6は、この展開後のTLCの写真である。
上記TLC展開したオレンジ色素のスポットを回収してヘキサン:アセトン(1:1)で抽出、窒素ガスで乾燥後、石油エーテルに溶解して、分光光度計(UV-VIS:バイオスペクトロメーター、エッペンドルフ社製)を用いて吸光度を測定した結果、吸収波長は443nm、467nm、497nmであった。「pRCS」は、黄色色素ジアポニューロスポレンを合成する遺伝子群crtNM を保有することから、TLC上のオレンジ色素はジアポニューロスポレナールであると考えられる(参考:Journal of Bacteriology, 1981, 900-913. Table2)。
一方、黄色色素1、2は、それぞれジアポニューロスポレンと吸収スペクトルが類似している。さらに、「pRCSG」はGlycosyltransferaseをコードする遺伝子を、「pRCSGA」はGlycosyltransferaseにacyltransferaseをコードする遺伝子を有しており、公知技術(参考:Arch Microbiol, 2003, 179, 95-100. Fig.2)を考慮すると、黄色色素2はジアポニューロスポレングリコシドであり、黄色色素1はジアポニューロスポレングリコシド、アシルエステルであると考えられる。
これらの黄色色素1、2は、上記酵素をコードする遺伝子を有する乳酸菌を、好気培養することにより生産されることも、今回新たに確認された。
装置 :4000QTRAP LC/MS/MS system (Heated Nebulizer (APCI))
カラム:Zorbax XDBC18 2x150 mm
溶媒 :acetonitrile/methanol/isopropyl alcohol=80:15:5(容量比)
<オレンジ色素について>
図7の解析チャート図における、417.3(m/z)のピークは、公知技術(参考:J. BIOL. CHEM., 2012, 287, 21575-21583, Table2)を考慮すると、下記化学式で表される4,4'-Diaponeurosporen-4-alであると考えられる。
図8の解析チャート図における、581.5(m/z)のピークは、下記化学式で表される4-(D-Glucopyranosyloxy)-4,4'-diaponeurosporeneであると考えられる。
<黄色色素1について>
図9の解析チャート図における、834.6(m/z)のピークは、Hexadecanoyl-glucosyl-4,4-diaponeurosporenoic acidと推定される。これは、Acyltransferaseによって、上記化学式で表される4-(D-Glucopyranosyloxy)-4,4'-diaponeurosporeneに、脂肪酸(Hexadecane)が付加した化合物であると考えられる。公知技術(参考:Arch Microbiol., 2003, 179,95-100)を考慮すると、CH2が1つ外れた820m/zとされる化合物も存在すると考えられる。ピークには観察されないが、公知技術(参考:J. BIOL. CHEM., 2012, 287, 21575-21583, Fig. 7)を考慮すると、異なる脂肪酸が付加された化合物が複数種存在すると予想される。
以上のとおり、本発明のオレンジ色乳酸菌は、これら複数のカロテノイドを含む乳酸菌である。
Claims (5)
- L*a*b*表色系における、色相a*が4≦a*、及び、色相b*が27≦b*であるオレンジ色乳酸菌の製造方法であって、
配列番号1に示す塩基配列からなる遺伝子とcrtM遺伝子、crtN遺伝子を含む組み換えベクターを導入した乳酸菌を、酸素介在条件下で培養することを特徴とする乳酸菌の製造方法 。 - 配列番号1に示す塩基配列からなる遺伝子とcrtM遺伝子、crtN遺伝子を含む組み換えベクターを導入した
L*a*b*表色系における、色相a*が4≦a*、及び、色相b*が27≦b*であるオレンジ色乳酸菌。 - 請求項2記載の乳酸菌を含有する飲食品。
- 請求項2記載の乳酸菌を含有する化粧品。
- 請求項2記載の乳酸菌を含有する医薬品または医薬部外品。
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Eur. Food Res. Technol.,2001年,Vol. 213,p. 231-233 |
J. Biol. Chem.,2012年,Vol. 287, No. 26,p. 21575-21583 |
日本食品工業学会誌,1992年,第39巻, 第9号,p. 755-762 |
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