JP7094893B2 - エンドシアリン結合抗体 - Google Patents
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Description
大規模な研究にもかかわらず、多くの抗癌剤は、重大な非特異的毒性を有する。細胞周期を標的とし、それにより急速に増殖する細胞を殺すことによって、それらは正常組織と腫瘍組織とを明確に区別せず、悪性細胞に対する限定的な選択性を獲得するにすぎない。選択性を欠くことために、腫瘍を根絶し得る濃度の薬物を使用することができないことがある。さらに、長期間の治療後、腫瘍は抗がん剤に対する薬剤耐性を発現し得る。従って、癌細胞に対する細胞傷害性薬物の標的化による腫瘍選択性の向上が必要である。
(i)以下を含む重鎖:
- 配列番号2に示されるアミノ酸配列又はそれから1若しくは2アミノ酸が異なるアミノ酸配列を有する重鎖相補鎖決定領域1(CDRH1)、
- 配列番号3に示されるアミノ酸配列又はそれから1若しくは2アミノ酸が異なるアミノ酸配列を有する重鎖相補鎖決定領域2(CDRH2)、及び
- 配列番号4に示されるアミノ酸配列又はそれから1若しくは2アミノ酸が異なるアミノ酸配列を有する重鎖相補鎖決定領域3(CDRH3)、
(ii)以下を含む軽鎖:
- 配列番号5に示されるアミノ酸配列又はそれから1若しくは2アミノ酸が異なるアミノ酸配列を有する軽鎖相補鎖決定領域1(CDRL1)、
- 配列番号6に示されるアミノ酸配列又はそれから1若しくは2アミノ酸が異なるアミノ酸配列を有する軽鎖相補鎖決定領域2(CDRL2)、及び
- 配列番号7に示されるアミノ酸配列又はそれから1若しくは2アミノ酸が異なるアミノ酸配列を有する軽鎖相補鎖決定領域3(CDRL3)、
あるいはヒトエンドシアリン上で同じエピトープを認識するモノクローナル抗体を含む。
配列番号22(SEQ ID NO:22)、配列番号23(SEQ ID NO:23)、配列番号24(SEQ ID NO:24)若しくは配列番号25(SEQ ID NO:25)に示されるアミノ酸、又はそれらに対して少なくとも90%の配列同一性を有するヒトアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域を含む、抗体に関する。
(a)本明細書に記載の抗体、抗体断片又はその誘導体をコードする核酸配列、好ましくは配列番号14(SEQ ID NO:14)、15(SEQ ID NO:15)及び配列番号16(SEQ ID NO:16)、17(SEQ ID NO:17)又は配列番号18~25のいずれか一つに示される核酸配列、
(b) (a)に記載のいずれかの配列に相補的な核酸配列、及び、
(c) ストリンジェントな条件下で(a)又は(b)にハイブリダイズすることができる核酸配列
から成る群から選択される。
4週齢のBalb/cマウスを、完全フロインドアジュバント(Complete Freund's Adjuvan:CFA)又は不完全フロインドアジュバント(Incomplete Freund's Adjuvant:IFA)中のエマルションとして腹腔内注射により免疫化した。7日後、さらなる免疫原をマウスに腹腔内注射した。さらに7日後、マウスを免疫原の静脈内投与で追加免疫し、その3日後に脾臓を細胞融合のために取り出した。免疫脾細胞とマウス非分泌性骨髄腫細胞株NS-1との融合によって、体細胞ハイブリッドを調製した。ハイブリドーマ上清を、それぞれのペプチドに対するELISAアッセイで選択した。すべての陽性ハイブリドーマ細胞コロニーを、限界希釈によって2回クローン化し、さらに特性決定した。
材料と方法:(図2)(A)。96穴プレート(NUNC Maxisorp modules)をヒト組み換えエンドシアリン(1μg/ml)で、4°C、一晩プレコートした。1%BSA/PBS+0.1%Tween-20で4°C、1時間ブロッキングした後、mMP-E-8.3、cMP-E-8.3、hMP-E-8.3及びエンドシアリンに対する市販の抗体を指示濃度で添加し、室温で2時間インキュベートした。PBS + 0.1% Tween-20で数回洗浄した後、ヤギ抗マウス又は抗ヒトIgG-HRP溶液を各ウェルに添加し、37°Cで1時間インキュベートした。洗浄後、安定化した色原体を各ウェルに添加し、少なくとも10分間暗所に置き、その後1N H2SO4を添加して反応を停止させ、450nmでの吸光度をELISAリーダーで読み取った。(B) Sjsa-1ヒト骨肉腫細胞株を、1μg/mlのmMP-E-8.3抗体、又は、100 ng/ml (青線)及び1μg/ml (緑線)のcMP-E-8.3及びhMP-E-8.3、又は1μg/mlのエンドシアリンに対する市販の抗体で、氷上で30分間染め、ヤギ抗マウス/抗ヒトAlexa-488コンジュゲート抗体と氷上で1時間インキュベートした後、細胞をフローサイトメーター(FACS)で分析した。(C) Sjsa-1ヒト骨肉腫細胞をガラスカバースリップ上で24時間培養した。その後細胞を4%パラホルムアルデヒドで、15分間室温で固定し、0.25%Triton X-100で5分間浸透させ、0.1% BSAで、室温で1時間ブロッキングした。カバースリップをmMP-E-8.3又は市販の抗体と共に、室温で2時間インキュベートした後、ヤギ抗マウス2次抗体Alexa-488コンジュゲートでインキュベートした。DRAQ5を用いて核を可視化した。画像は、488及び633nmのレーザーを使用するZeiss LSM 510メタ共焦点顕微鏡で取得した。黄色矢印は、mMP-E-8.3が細胞原形質膜上に存在するエンドシアリンを認識することを示す。
材料と方法:(図3)。Sjsa-1細胞を12ウェルプレートに播種し、10%FBS RPMI-1640中で24時間培養した。その後、細胞を10μg/mlのmMP-E-8.3と共に氷上で30分間インキュベートし、37℃に戻して6時間インキュベートした。(A)6時間後、細胞をヤギ抗マウスAlexa488コンジュゲート二次抗体で染め、FACSで分析した。(B)6時間後、細胞を4%パラホルムアルデヒドで固定し、0.2%Triton X-100/PBSで浸透させた後、蛍光標識したヤギ抗マウス/抗ヒト抗体で染色した(緑染色)。細胞核を青でカウンターステインした。黄色矢印及び白矢印は、それぞれ、細胞膜及び細胞質における抗体の局在化を示す。
材料と方法:(図4)。12ウェルプレートにT/G HA-VSMC、ヒト血管平滑筋細胞株を播種し、24時間後、血清及び成長因子を欠く周皮細胞培養培地中で、2時間血清飢餓状態にした。細胞を10μg/mlのmMP-E-8.3抗体又は陰性対照抗体と共に2時間インキュベートした後、PDGF-BB (100 ng/mL)で15分間刺激した。細胞をRIPA緩衝液で直接的に溶解し、30μgの全溶解物をウェスタンブロット分析に供し、エンドシアリン、リン酸化形態のAkt及びMAPKを検出した。アクチンをローディングコントロールとして使用した。
非ヒト抗体をヒト化するための方法は、当技術分野で周知である。好ましくは、ヒト化抗体は、非ヒトである供給源から導入された一つ以上のアミノ酸残基を有する。これらの非ヒトアミノ酸残基は、「インポート」残基としばしば称され、典型的には「インポート」可変ドメインから取られている。ヒト化は、本質的には、以下のWinter及び共同研究者らの方法に従って、げっ歯類のCDR又はCDR配列で、ヒト抗体の対応する配列を置換することにより実施される。従って、このような「ヒト化」抗体は、実質的に無傷のヒト可変ドメインが非ヒト種由来の対応する配列で置換されているキメラ抗体である(U.S. Pat No.4816567)。実際には、ヒト化抗体は、典型的には、いくつかのCDR残基及び場合によりいくつかのフレームワーク領域(FR)残基がげっ歯類抗体における類似部位に由来する残基で置換されている。
8.3-LIBR-H1L1 (No. E02999)
8.3-LIBR-H1L2 (No. E03000)
8.3-LIBR-H1L3 (No. E03001)
8.3-LIBR-H1L4 (No. E03002)
8.3-LIBR-H2L1 (No. E03003)
8.3-LIBR-H2L2 (No. E03004)
8.3-LIBR-H2L3 (No. E03005)
8.3-LIBR-H2L4 (No. E03006)
8.3-LIBR-H3L1 (No. E03007)
8.3-LIBR-H3L2 (No. E03008)
8.3-LIBR-H3L3 (No. E03009)
8.3-LIBR-H3L4 (No. E03010)
8.3-LIBR-H4L1 (No. E03011)
8.3-LIBR-H4L2 (No. E03012)
8.3-LIBR-H4L3 (No. E03013)
8.3-LIBR-H4L4 (No. E03014)
材料と方法: 175人の患者からの、リンパ節転移又は遠隔転移がないと診断されたヒト原発性結腸直腸癌において、組織マイクロアレイ(Tissue Micro Array:TMA)上の免疫組織化学法によってエンドシアリン発現を分析した。結果は、患者の転帰と相関していた。142人(81.1%)の患者は結腸癌を有し、33人(18.9%)の患者は直腸癌を有していた。112人(64.0%)の患者が男性で、63人(36.0%)の患者が女性であった。診断時における患者の年齢の中央値は70歳であった(36~90歳の範囲)。経過観察期間の中央値は54.0か月(3~238か月の範囲)であった。免疫化学染色のために5μmのTMA切片を調製した。抗エンドシアリン(TEM1)ウサギポリクローナル抗体(Novus Biological)及び抗LGALS3BPマウスモノクローナル抗体1A422を使用して染色した。抗原回収は、クエン酸緩衝液(pH 6.0)中750W(10分)でのマイクロ波処理によって行った。抗ウサギ又は抗マウスEnVision kit (Dako)をシグナル増幅に用いた。非特異的な染色を除くために、非免疫血清を含めた。エンドシアリン発現と患者の臨床病理学的特徴との関係をカイ二乗検定によって評価した。生存分析は、Kaplan-Meier法によって行い、群を対数ランク検定で比較した。統計的手順は、SPSSバージョン15.0(SPSS Inc.)を用いて行った。 P <0.05は統計的に有意であると考えた。
材料と方法:(図6)。T/G HA-VSMC、ヒト血管平滑筋細胞を、5x104細胞/ウェルの密度でF12K無血清培地に播種した。20又は40μg/mlの濃度のcMP-E-8.3の存在下又は非存在下で、10μg/ml の組み換えLGALS3BPを含むF12K無血清培地で細胞を維持した。PDGF (100 ng/ml)を陽性対照として使用した。(A)Cultrex(マトリゲル)コートしたチャンバースライド上の、T/G HA-VSMCによる、毛細血管様管形成の代表的な位相差写真。(B) ヒストグラムは、4つの異なる視野における分岐点の数をカウントすることによって管形成の定量的決定を示す。データは、3回の独立した実験の平均±SEMとして表される。 * p <0.05。
材料と方法:(図7)。ヒト骨肉腫癌移植片を、5週齢のCD1雌ヌードマウスに5x106個のSjsa-1細胞を皮下注射することにより確立した。細胞注射の3日後、マウスを無作為に10匹ずつ4つの群に分けた。一つの群に対して、PBS緩衝液中、15mg/kgの1959(LGALS3BPに対するヒト化抗体)、若しくは15 mg/kgのcMP-E-8.3抗体又は両方の抗体の各15mg/kgの組合せを週2回皮下注射した。
ADC調製: hMP-E-8.3/ADCを、hMP-E-8.3を部分的に還元し、酵素的に切断可能なリンカー(バリン-シトルリン)を有するデュオカルマイシンの強力なマイナーグルーブアルキル化誘導体である薬物を利用可能な制限された鎖間システイン残基にコンジュゲートすることにより生成した。生産されたhMP-E-8.3/ADCを、還元及び非還元条件下でSDS-PAGEによって特性決定した。還元(R)及び非還元(NR)の3μgのネイキッドmAb又はADCの両方をロードした(図9A)。サイズ排除クロマトグラフィー(Size Exclusion Chromatography:SEC)を実施し、凝集状態を決定した。抗体及び薬物をそれぞれモニターするための二つの異なる波長220nm(青)及び320nm(赤)でシグナルを検出した(図9B)。疎水性相互作用クロマトグラフィー(Hydrophobic interaction chromatography:HIC)を実施し、自然条件でロードされたアイソフォームの異なる存在を評価した。薬物抗体比(DAR)を決定するために、還元条件下でのPLRP LC/MSを実施した。
材料と方法: (図10)。Sjsa-1細胞を12ウェルプレートに播種し、10% FBS RPMI-1640中で24時間培養した。細胞を、10μg/mlのhMP-E-8.3/ADCで、氷上で30分間インキュベートした後、37°Cに6時間戻した。(A)2時間後、ヤギ抗ヒトAlexa88コンジュゲート二次抗体で細胞を染色し、FACSで分析した。(B)2時間後、細胞を4%パラホルムアルデヒドで固定し、0.2%Triton X-100/PBSで浸透させた後、蛍光標識したヤギ抗ヒト抗体で染色した(緑染色)。細胞質をAlexa Fluor phalloidinを用いて、赤でカウンターステインした。白色矢印は、37°Cに戻した細胞の細胞質における抗体の局在化を示す。
材料と方法:ヒト骨肉腫癌(SjSa-1)、ユーイング肉腫(A673)、神経芽腫(SKNAS)及びメラノーマ(A375)細胞を24ウェルに播種(1x103細胞/ウェル)し、漸増量のhMP-E-8.3/ADC (0.03~1.6μg/ml)の存在下又は非存在下、10%血清を補充した培地中で培養した。処理開始から144時間後、細胞を回収し、MTT染色を行った。結果は、対照(PBS処理した細胞)に対する割合(%)で示す。
材料と方法: SJSA-1細胞におけるTEM-1発現を、Zhang及び共同研究者らにより開発されたプロトコルに従ったCRISPR-Cas9システムのゲノム編集33により、除去した。一過性トランスフェクション後、エンドシアリンを発現していない細胞をFACSで選別し、単細胞クローンを単離して拡大した。FACS及びWBを使用して、クローンのエンドシアリン発現を分析した。クローン#3では、エンドシアリン発現が完全にノックダウンされた。両アレルの遺伝子破壊を、ゲノムDNAシーケンシングにより確認した。
材料と方法: ヒト骨肉腫癌異種移植片を、5週齢のCD1雌ヌードマウスに2.5x106個のSjsa-1細胞を皮下注射することにより確立した。腫瘍が触診可能になると(腫瘍体積範囲100mm3)、マウスを無作為に6匹ずつ2つの群に分けた。1つの群には、10mg/kgのPBSバッファー中hMP-E-8.3/ADCを週に1回二週間静脈注射したが、対照群にはPBSのみを注射した。腫瘍体積をキャリパーで毎週モニターした。Kaplan Meier生存曲線について、この試験のカットオフ値は、体積1500mm3であった。
材料と方法: ヒト骨肉腫癌異種移植片を、5週齢のCD1雌ヌードマウスに2.5x106個のSjsa-1細胞を皮下注射することにより確立した。腫瘍が触診可能になると(腫瘍体積範囲100mm3)、マウスを無作為に6匹ずつ3つの群に分けた。1つの群には、10 mg/kgのPBSバッファー中のhMP-E-8.3/ADC又はPBSバッファー中のネイキッドhMP-E-8.3抗体を週に2回二週間静脈注射したが、対照群にはPBSのみを注射した。腫瘍体積をキャリパーで毎週モニターした。Kaplan Meier生存曲線について、この試験のカットオフ値は、体積1500mm3であった。
[参考文献]
Claims (27)
- 配列番号1(SEQ ID NO: 1)に記載のヒトエンドシアリンのアミノ酸477~488の間のエピトープに対する抗体又はその機能性断片であって、
(i) 配列番号2に示されるCDRH1、配列番号3に示されるCDRH2及び配列番号4に示されるCDRH3を含む重鎖、並びに
(ii) 配列番号5に示されるCDRL1、配列番号6に示されるCDRL2及び配列番号7に示されるCDRL3を含む軽鎖、
を含む、抗体又はその機能性断片。 - 配列番号8(SEQ ID NO:8)に示されるアミノ酸配列若しくはそれに対して少なくとも90%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む重鎖可変領域、及び、配列番号9(SEQ ID NO:9)に示されるアミノ酸配列若しくはそれに対して少なくとも90%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域、
を含む、請求項1に記載の抗体又はその機能性断片。 - Fab断片、Fab’断片、F(ab’)断片、Fv断片、ダイアボディ(二重特異性抗体)、ScFv、又は小モジュール免疫薬(SMIP)である、請求項1又は2に記載の抗体又はその機能性断片。
- IgG1、IgG2、IgG3若しくはIgG4型、又はIgM、IgA1、IgA2、IgAsec、IgD若しくはIgE型抗体である、請求項1~3のいずれか一項に記載の抗体又はその機能性断片。
- モノクローナル抗体である、請求項1~4のいずれか一項に記載の抗体又はその機能性断片。
- 配列番号18(SEQ ID NO:18)、配列番号19(SEQ ID NO:19)、配列番号20(SEQ ID NO:20)若しくは配列番号21(SEQ ID NO:21)に示されるアミノ酸配列又はそれらに対して少なくとも90%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む重鎖可変領域、及び
配列番号22(SEQ ID NO:22)、配列番号23(SEQ ID NO:23)、配列番号24(SEQ ID NO:24)若しくは配列番号25(SEQ ID NO:25)に示されるアミノ酸配列又はそれらに対して少なくとも90%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域、
を含む、請求項1、3、4又は5のいずれか一項に記載の抗体又はその機能性断片。 - 標識基(a labelling group)又はエフェクター基に結合している、請求項1~6のいずれか一項に記載の抗体又はその機能性断片。
- イメージング時に検出可能な常磁性イオン、放射性イオン又は蛍光発生イオンに結合している、請求項7に記載の抗体又はその機能性断片。
- 抗細胞薬、特に内皮細胞を死滅させることができる又は内皮細胞の成長若しくは分裂を抑制することができる抗有糸分裂剤又はDNA傷害剤に結合している、請求項7に記載の抗体又はその機能性断片。
- 抗細胞薬が化学療法剤、放射性同位体又は細胞毒を含む、請求項9に記載の抗体又はその機能性断片。
- 抗細胞薬が、代謝拮抗物質、アントラサイクリン、ビンカアルカロイド、抗生物質、アルキル化剤、又は、植物由来、真菌由来若しくは細菌由来の毒素を含む、請求項10に記載の抗体又はその機能性断片。
- 抗細胞薬が、DNA傷害剤、特にマイナーグルーブバインダーデュオカルマイシン誘導体を含む、請求項9に記載の抗体又はその機能性断片。
- 細胞毒が、A鎖毒素、リボソーム不活性化タンパク質、α-サルシン、アスペルギリン、レストリクトシン、リボヌクレアーゼ、ジフテリア毒素又はシュードモナス外毒素を含む、請求項10に記載の抗体又はその機能性断片。
- 細胞毒は脱グリコシル化リシンA鎖を含む、請求項10に記載の抗体又はその機能性断片。
- (a)請求項1~14のいずれか一項に記載の抗体、もしくはその機能性断片をコードする核酸配列、及び
(b) (a)に記載のいずれかの配列に相補的な核酸配列、
から成る群から選択される、単離された核酸分子。 - (a)配列番号14~配列番号17のいずれかに示される配列を含む核酸配列、及び
(b) (a)に記載のいずれかの配列に相補的な核酸配列、
から成る群から選択される、請求項15に記載の単離された核酸分子。 - 核酸配列が作動可能に制御配列に連結している、請求項15に記載の核酸配列を含むベクター。
- 請求項15又は16に記載の核酸分子又は請求項17に記載のベクターを含む宿主。
- 請求項1~14のいずれか一項に記載の抗体又はその機能性断片の製造方法であって、請求項18に記載の宿主から当該抗体又はその機能性断片を得る工程を含む、方法。
- 請求項1~14のいずれか一項に記載の抗体又はその機能性断片、請求項15又は16に記載の核酸分子、請求項17に記載のベクター、請求項18に記載の宿主又は請求項19に記載の方法により生成された抗体又はその機能性断片を、任意選択により薬学的に許容可能な担体、希釈剤及び/又は賦形剤と組み合わせて含む医薬組成物。
- 抗腫瘍剤である、抗体又は抗体断片をさらに含む、請求項20に記載の医薬組成物。
- 正常内皮細胞表面よりも腫瘍血管細胞の細胞表面で多く発現されるヒトエンドシアリンを認識する、請求項1から14のいずれか一項に記載の抗体又はその機能性断片。
- ヒト腫瘍関連抗原LGALS3BPを認識する二重特異的抗体である、請求項1から14及び22のいずれか一項に記載の抗体又はその機能性断片。
- 腫瘍性疾患又は癌の予防又は治療において使用するための、請求項20又は21に記載の医薬組成物。
- 腫瘍性疾患又は癌が、神経芽腫、肉腫、滑膜肉腫、線維肉腫、悪性線維性組織球腫(MFH)、脂肪肉腫及び骨肉腫、高悪性度神経膠腫、脳腫瘍、癌腫、膀胱癌、乳癌、結腸癌、腎癌、胃癌、子宮内膜癌、肺癌、卵巣癌、及び、腫瘍血管系、腫瘍間質若しくは腫瘍細胞においてエンドシアリンを発現する腫瘍からなる群から選択される、請求項24に記載の医薬組成物。
- 静脈内、筋肉内又は皮下に投与される、請求項24又は25に記載の医薬組成物。
- さらなる治療用組成物又は放射線治療と組み合わせて投与するための、請求項24から26のいずれか一項に記載の医薬組成物。
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