JP7040701B2

JP7040701B2 - 抗がん腫瘍溶解性ウイルス併用療法および優良レスポンダー選択プラットフォーム

Info

Publication number: JP7040701B2
Application number: JP2019503388A
Authority: JP
Inventors: フー，ミンジエ; リ，ユー; リュー，シャオリン; フー，レベッカ
Original assignee: スーチョウプラジュナバイオテックカンパニーリミテッド
Priority date: 2016-03-28
Filing date: 2017-03-28
Publication date: 2022-03-23
Anticipated expiration: 2037-03-28
Also published as: CN108770344B; JP2019515948A; WO2017172713A1; WO2017172713A8; US20220331385A1; EP3436065B1; CA3019546A1; AU2017241684A1; CN108770344A; EP3436065A1; CA3019546C; US11433108B2; US20190000899A1; AU2017241684B2; EP3436065A4

Description

CCTCC

CCTCC V201713

関連出願
本出願は、米国特許法第１１９条（ｅ）条の下で、２０１６年３月２８日に出願された米国仮特許出願第６２／３９０，３９５号に対し優先権を主張する。本出願の内容は、参照によって完全に本明細書へ組み込まれる。

本開示は、腸内微生物叢および腫瘍溶解性ウイルスを対象へ投与する方法を提供する。ウイルスと腸内微生物叢との組み合わせ、ならびにがん治療およびがん予防のためのその使用もまた提供される。

がんは、悪性細胞の制御できない増殖を特徴とする一群の疾患からなる。１００超のがんは、大部分の人々に影響を及ぼし、全死亡者数の約１３％を占める。がんは２０１２年に世界で８２０万人超の死亡原因であって、この数は２０３０年までに１３００万人に急増すると予測されている。世界中で２０１２年に診断された新規がん患者の数は１４１０万人であり、新規がん患者の５８％は米国の様な先進国で発見されている。０～１４歳の小児では、推定１６３，３００人の新規患者が２０１２年に診断され、そのうち約８万人が死亡した（ＷＨＯ、世界保健報告２０１４年度版；国立健康統計センター、２０１４年；ACS、Global Cancer Facts & Figures、2015）。

現在の既存のがん治療には、放射線照射、外科手術、化学療法、標的療法、免疫療法、腫瘍溶解性ウイルス（ｏｎｃｏｌｙｔｉｃ‐ｖｉｒｕｓ：ＯＶ）ベース治療、またはこれらの併用が挙げられる（ACS、Global Cancer Facts & Figures、2015）。治療に対する患者の反応は、特定のがんのタイプ、病期、および使用されている特定の治療法に依存し、このことが患者の総生存期間を決定し得る（国立健康統計センター、２０１４年）。残念ながら、上記の治療法の１つで完全に治癒できる患者はごく少数である（ＷＨＯ、世界保健報告２０１４年度版）。原発性がんがその起点から体の他の部位へ転移するがん転移は、しばしばがんの後期段階と関連しており、がん死亡の原因である（全米総合がんネットワーク、What is Metastasized Cancer?、2016）。がんは高齢と強く関係している（Coleman & Rubinas、Elsevier Academic Press、p 66、2009）ため、老年人口による効果的な治療法を開発する緊急性が強調される。

ＤＮＡ塩基配列決定および生物情報学における最近の技術的進歩は、異なる患者由来の試料のゲノム異常特性を入念に分析することを可能にした。これらの分析は、ヒト腫瘍における広範な患者間および腫瘍内の不均一性、ならびに進行中のクローン適応を明らかにし、そして異なるドライバおよびパッセンジャー変異の景観を有する、空間的および時間的に分離された役割変更サブクローンを含有する（Lipinski、Trends Cancer 2（1)：49-63、2016）。この発見は、がんがランダム化されかつ進化過程であり、その突然変異負荷が、所与の腫瘍内において数および組成が、クローン対クローンでも、または細胞対細胞ですら変化することを示す（Shlien et al.、Nat. Genet. 47、257-262、2015）。これは個々のがんの治療に対する様々な反応に影響を及ぼす可能性があり、薬剤耐性および特定の臨床的失敗の発生過程を説明する。この現象により、正確な分子標的化によって動的に進化する腫瘍「生物」を治療する、広く用いられている治療戦略の実現可能性がほぼ疑われ、より体系的なアプローチの必要性が生じる。「精密治療（precise therapy）」とは
、ほとんどの化学療法、モノクローナル抗体を用いた液性免疫療法、および最近の進歩したキメラ抗原受容体Ｔ（ＣａｒＴ）細胞療法を含む、定義された分子標的を伴う治療で
ある。一方で、「体系的治療（systematic treatment）」とは、その有効性が、免疫細胞療法（ＣＩＫ、ＮＫ、ＴＩＬなど）、チェックポイント阻害剤療法、およびＯＶ療法を含む、宿主免疫システムの全身性活性化に依存する治療である。「精密治療」からの反応は比較的一過性である傾向にあるが、一方で「体系的治療」は通常良好なレベルの長期応答を示すため、長期生存につながる可能性がある。

チェックポイント阻害剤療法は、宿主の全身性免疫反応を調節することによって作用する（La-Beck, Pharmacotherapy35(10): 963-76, 2015; Rubin, Clin J Oncol Nurs. 19(6):709-17, 2015; Sharma & Allison, Science 348(6230): 56-61, 2015）。重要なＴ細胞プライミングプレーヤーである、細胞傷害性Ｔリンパ球抗原－４（ＣＴＬＡ－４）、または主要なＴ細胞機能抑制因子である、プログラム細胞死たんぱく質－１（ＰＤ－１）およびそのリガンドＰＤＬ－１のいずれかの制御におけるチェックポイント阻害剤療法の臨床効果により、転移性メラノーマ（ＭＭ）およびその他の固形腫瘍の治療に対するこれらの抗体がＦＤＡ承認された（Hodi et al., N. Engl. J. Med. 363, 711-23, 2010; Prieto et al., Nat. Rev. Gastroenterol. Hepatol. 12, 681-700, 2015）。しかしながら、抗
体治療に反応するのは患者のサブセットのみであり、いかなる単独療法でも有効性は限られている（Chodon et al., Immunol Invest. 44(8): 817-36, 2015）。くわえて、腫瘍溶解性ウイルスＴ－Ｖｅｃ（Puzanov et al., J. Clin. Oncol. 33, S9063, 2015）と併用
した場合であっても、５０％の有効率（完全奏効率にすると２２％）しか報告されていない。一方で、治療前に腫瘍内Ｔ細胞反応が進行している患者は通常、抗体治療に対しより頻繁に反応する（Ji, Cancer Immunol Immunother. 61(7): 1019-31, 2012; Gajewski, Cancer J.16(4): 399-403, 2010; Tumeh, Nature515(7528): 568-71, 2014）。そのうえ、抗体を与えたマウスは、ＣＤ４^＋Ｔエフェクター細胞およびＣＤ８^＋腫瘍浸潤リンパ球（ＴＩＬ）の両方の活性化において有意な低下を示した。これらは抗体開始腫瘍殺傷中の適応免疫応答において重要な役割を果たす。腫瘍内空間における免疫応答を増強することによってこの治療を改善する必要性が、当技術分野に残っている。したがって、本発明の目的のうち、対象の免疫システムを抗腫瘍反応のためにあらかじめ調整し、既存の抗がん「体系的治療」の抗がん活性を増大させる治療方法を提供することが目的である。

腫瘍溶解性ウイルス（ＯＶ）は、毒性を予防しながら悪性腫瘍を排除するため、がん細胞に優先的に感染し複製する、治療的に使用される微生物（自然発生のものであるか、または遺伝子操作されたもの）である（Seymour & Fisher, Br. J. Cancer 114(4): 357-61, 2016; Kaufman et al., Nat. Rev. Drug Discov. 14(9): 642-62, 2015; Turnbull et al., Viruses 7(12): 6291-312, 2015; Larissa et al., Trends Cancer1(4): 266-77, 2015）。腫瘍溶解性ウイルスが腫瘍細胞を標的とするのは、悪性腫瘍細胞の増殖および生
存を可能にするのと同じ遺伝子変化が、溶解性ウイルスの増殖もまた促進するからである（Hanahan & Weinberg, Cell144(5): 646-74, 2011; Miest & Cattaneo, Nat. Rev. Microbiol. 12(1): 23-34, 2014; Burke et al., Curr. Opin. Virol. 13: 55-60, 2015）。
さらに、薬物耐性がん細胞およびがん幹細胞は、ＯＶに対する感受性を保持しており、固形腫瘍に特徴的な低酸素環境において有効である（Shen & Hermiston, Gene Ther. 12, 902-10, 2005）。感染したＯＶは、ウイルスのライフサイクル内の好適な時点でがん細胞
死を調整する能力を有し、これにより感染性ウイルス粒子が放出される（Seymour & Fisher, Br. J. Cancer 114(4): 357-61, 2016）。ＯＶ開始腫瘍細胞死は、より多くの腫瘍細胞に感染する活性腫瘍内ウイルス量を増加させるだけでなく、活性化ＤＣのような腫瘍内抗原提示細胞（ＡＰＣ）によって提示され得る、有意な量の腫瘍特異的新抗原を放出する。これらの細胞は、腫瘍の直接インサイツウイルス溶解を超えたがん細胞殺傷の第２の機構である、宿主の全身性抗腫瘍免疫応答を刺激する（Kaufman et al., Nat. Rev. Drug Discov. 14(9): 642-62, 2015）。この第２の機構は、これまでウイルスには見られなかった遠隔部位の転移性がん細胞や、感染部位の外側に位置する腫瘍内バイスタンダー（bystander）も殺すため、効果的な抗腫瘍反応に重要である。

ＯＶの治療可能性に対する調査は１９５０年代から開始され（Huebner et al., Cancer9, 1211-218, 1956）、調査では臨床治験ががん期間（例えば、メラノーマ、頭頚部扁平
上皮がん（ＳＣＣＨＮ）、膵がん、卵巣がん、結腸直腸がん、グリオーマ、非小細胞肺がん（ＮＳＣＬＣ）、ミエローマ、乳がん、前立腺がん、膀胱がん、中皮腫、肝細胞がん、および小児腫瘍）の直後に、過去十年の間に実証された治療効果によって行われた（Kirn, Gene Ther.8(2): 89-98, 2001; Kelly & Russell, Mol. Ther. 15(4), 651-59, 2007; Eisenstein et al., Oncolytic Virother.3: 83-91, 2014; Miest & Cattaneo, Nat. Rev. Microbiol. 12(1): 23-34, 2014; Patil et al., J. Contemp. Dent. Pract. 16(8): i-ii, 2015; Burke et al., Curr. Opin. Virol.13: 55-60, 2015; Kaufman et al., Nat.
Rev. Drug Discov. 14(9): 642-62, 2015）。その一例がＴ－Ｖｅｃ臨床治験であり、切除不能なメラノーマの患者において、統計的に有意である改善された持続的反応および高い生存率が得られたため、最初のＯＶ薬のＦＤＡ承認が早まった（Andtbacka et al., J.
Clin. Oncol. 33.25: 2780-00, 2015）。最良のＯＶＴ－Ｖｅｃ試験は有望な結果を示したが、解決すべき問題は依然として数多く存在する。４３６回の第ＩＩＩ相試験では、１６．３％の持続的有効率および２６．４％の奏効率のみが観察され、完全寛解を達成した参加者はわずか１０．９％であった（Kaufman et al., Nat. Rev. Drug Discov. 14(9): 642-62, 2015）。

ＯＶはヒト悪性腫瘍のスペクトル治療に４０超の臨床治験で使用されており、１つの特定の治療法が晴れて最初のＦＤＡ承認ＯＶ薬となった（Harrington et al., Expert Rev.
Anticancer Ther. 15(12): 1389-403, 2015）。その初期の成功例にもかかわらず、全ＯＶ試験の有効性および有効率は、特に全生存率を考慮すると、期待に反して低いままである（Buijs et al., Hum. Vaccin. Immunother. 11(7): 1573-84, 2015; Burke et al., Curr. Opin. Virol. 13: 55-60, 2015; Harrington et al., Expert Rev. Anticancer Ther. 15(12): 1389-403, 2015; Kaufman et al., Nat. Rev. Drug Discov. 14(9): 642-62,
2015; Patil et al., J. Contemp. Dent. Pract. 16(8): i-ii, 2015; Puzanov et al.,
J. Clin. Oncol.33, S90632015; Turnbull et al., Viruses7(12): 6291-312, 2015）。これは、部分的には、固形腫瘍内の高度に抑制された微小環境に由来する可能性があり（de Vries et al., Cancer Gene Ther. 22(4):169-71, 2015; Church & Galon, Immunity 43(4): 631-3, 2015; Clarke, Immunotherapy 8(2): 103-6, 2016）、ＯＶが開始する適
応性免疫応答および自然全身性免疫応答を阻害する。これはまた、高い割合の患者によってあらかじめ調整した抗腫瘍免疫の欠如に起因して、ほとんどの全身性抗がん療法の有効率が低くなっている可能性がある。したがって、全ての集団の有効率を高める方法を開発する必要がある。

共生腸内細菌は、グラム陽性放線菌門（actinobacteria phylum）のビフィドバクテリ
ウム属（Bifidobacterium genus）を含有する、発酵食品中のプロバイオティクスといっ
た栄養補助食品として使用されてきた（Hill et al., Nat. Rev. Gastroenterol. Hepatol.11: 506-14, 2014）。糞便微生物相移植（ＦＭＴ）を介した臨床外科学の手順決定にもまた使用されている（NICE Interventional Procedure Guidance: 485, 2014）。腸内微
生物叢の組成は、宿主の適応免疫系である成分分泌型免疫グロブリンＡ（ｓＩｇＡ）によって調節される（Fransen et al., Immunity43(3): 527-40, 2015）。Human Microbiome Project（ＨＭＰ）（Backhed et al., 2012）およびInternational Human Microbiome Consortium（ＩＨＭＣ）のような、いくつかの大規模プロジェクトの支援により、ヒト腸内微生物叢の組成および機能の理解はメタゲノム時代後に劇的に増加した（Segata et al.,
Genome Biol.13:R42, 2012; Segata et al., Nat. Methods, 9(8): 811-14, 2012）。ヒトの腸には約１００兆の細菌細胞が存在し、これらは５つの主要な門に分類することができ、そのうちのおおよそ１６０種はあらゆる個体の大腸にも生息する（Rajilic-Stojanovic et al., FEMS Microbiol. Rev. 38: 996-1047, 2014; Segata et al., Genome Biol.
13:R42, 2012）。

非血縁個体は通常、同様の腸内微生物叢プロファイルを共有しない（Segata et al., Genome Biol.13:R42, 2012; Segata et al., Nat. Methods, 9(8): 811-14, 2012）が、これらの違いは免疫反応の違いを反映している可能性がある。個々の腸内微生物は、１６ＳリボソームＲＮＡ配列決定（Eckburg et al., Science, 308(5728): 1635-38, 2005; Hayashi et al., Microbiol. Immunol. 46(8): 535-48, 2002; Turnbaugh et al., Nature 457(7228): 480-84, 2009）またはメタゲノム配列決定（Segata et al., Nat. Methods, 9(8): 811-14, 2012）という、２つの方法論的アプローチによって分析することができる
。さらなるデータ分析は、エンテロタイプクラスタのクラスタ特徴を生成するために使用することができる（Culligan et al., Virulence5, 399-412, 2014; Koren et al., PLoS
Comput. Biol. 9: e10028632013）。

本発明の重要な態様は、共生腸内細菌を使用して、対象の免疫システムをＯＶ療法の抗がん活性に対してあらかじめ調整することである。本明細書では、ＯＶ療法の抗がん可能性を増大させるために、腸内微生物叢を使用する方法および併用療法を提供する。本明細書にて開示された増強共生腸微生物叢アプローチを使用することによって、本発明は、持続的応答および完全応答速度に必要とされる増強を行うことができる。

本開示は、これらに限定されるものではないが、ビフィドバクテリウム属（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）およびバクテロイデス属（Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ）を含むある種の共生腸内細菌属を介して体系的治療を増強することによって、がんを治療および予防するための治療方法を提供する。これにより、宿主内で全身的免疫応答を潜在的に高めることができる。これらの種は、メラノーマおよび結腸がんモデルにて試験された場合、またはメラノーマ患者試料を用いて分析された場合、チェックポイント阻害剤ＣＴＬＡ－４、ＰＤ－１／またはＰＤＬ－１抗体と有意な抗腫瘍相乗作用を示す。チェックポイント阻害剤療法は、ＯＶベースの治療の基礎となる２つの機構のうち１つである、全身免疫応答を調節することによって作用する。本発明は、ＯＶおよび共生腸内細菌種を用いた新規の方法および併用療法を提供し、その患者の腸内での組成は、生薬または抽出物によってさらに調節することができる。本発明はまた、ヒト腸内微生物のゲノム特性の階層クラスター分析を介して、優良レスポンダー選択プラットフォームを構築するための方法も提供する。本発明は、有効性が宿主免疫システムの全身活性化に依存する、その他のライブセラピー（ｌｉｖｅｔｈｅｒａｐｙ）（例えば、体細胞および幹細胞治療）に適用可能である。

いくつかの態様において、本開示は、有効量の腸内微生物叢を対象へ投与すること、抗がん活性を有し、選択的に腫瘍細胞を標的にする、有効量の腫瘍溶解性ウイルスを対象へ投与すること、を含み、がんを治療および／または予防する方法を提供し、腸内微生物叢は、抗腫瘍反応に対する対象の免疫システムをあらかじめ調整し、そして腫瘍溶解性ウイルスの抗がん活性を増大させる。ある実施形態において、腫瘍溶解性ウイルスは、ポックスウイルス科（ｐｏｘｖｉｒｉｄａｅｆａｍｉｌｙ）のウイルスである。腫瘍溶解性ウイルスは、これらに限定されるものではないが、オーフウイルス（ｏｒｆｖｉｒｕｓ）、牛丘疹性口炎ウイルス（ｂｏｖｉｎｅｐｏｐｕｌａｒｓｔｏｍａｔｉｔｉｓｖｉｒｕｓ）、偽牛痘ウイルス（ｐｓｅｕｄｏｃｏｐｏｘｖｉｒｕｓ）、またはワクシニアウイルス（ｖａｃｃｉｎｉａｖｉｒｕｓ）であってもよい。好ましい実施形態において、腸内微生物叢は、ビフィドバクテリウム属である。

腫瘍治療および炎症状態の治療を含む、がんの治療および／または予防のために、治療方法が提供される。いくつかの実施形態において、がんは、高度なデノボ突然変異を有す
るタイプのがんである。好ましくは、がんは、メラノーマ、肺がん、腎臓がん、グリオーマ、トリプルネガティブ乳がん、または腎がんである。

いくつかの実施形態において、腫瘍溶解性ウイルスは、腸内微生物叢が投与されてから約１週間～２ヶ月後に対象へ投与される。好ましくは、腫瘍溶解性ウイルスは、腸内微生物叢が投与されてから約１ヵ月後に投与される。本明細書にて提供される方法および使用において、対象は、動物である。動物は、非ヒト動物であり得るか、哺乳類であり得るか、またはヒトを含み得る。いくつかの実施形態において、腸内微生物叢は、有効量約１０^９～１０^１１ｃｆｕでヒト対象へ投与される。ＯＶは、有効量約１０^５～１０^１０ｐｆｕでヒト対象へ投与してもよい。

本明細書にて提供される方法およびキットは、腫瘍溶解性ウイルスの抗がん活性を増強するため、腸内微生物叢によって作成されたあらかじめ調整した条件に依存する。いくつかの実施形態において、ＯＶの抗がん活性は、腸内微生物叢によって相乗的に増強される。効果的な抗腫瘍反応のための重要なあらかじめ調整した条件とは増強された免疫応答であり、これは本発明のキーコンセプトのひとつである共生腸内微生物叢増大によって達成することができる。

ある実施形態において、プラットフォームは、対象の特定の腸内微生物叢の存在量に基づくがん治療に対する、潜在的に優良なレスポンダーを同定するために使用される。プラットフォームは、ヒト腸内微生物のゲノム特性の階層クラスター分析によって構築される。プラットフォームは腫瘍増殖を抑制する腸内微生物叢を同定する。事前スクリーニングした対象は、対象の特定の腸内微生物叢の存在量に基づく腫瘍溶解性ウイルスに対して好ましく応答すると予測される。

いくつかの実施形態において、腸内微生物叢およびＯＶ療法を用いる併用療法は、キットとしてパッケージ化される。パッケージ化されたキットは、投与のための説明書、および投与のためのその他の試薬を含有してもよい。ある実施形態において、キットは、抗腫瘍反応に対する対象の免疫システムをあらかじめ調整し、腸内微生物叢を含む医薬組成物、抗がん活性を有し選択的に腫瘍細胞を標的化する腫瘍溶解性ウイルスを含む医薬組成物、腸内微生物叢および腫瘍溶解性ウイルスを順次投与するための説明書を含みここで腸内微生物叢は、腫瘍溶解性ウイルスの抗がん活性を増大させる、がんの治療を提供する。いくつかの実施形態において、キットは、がんが高度なデノボ突然変異を有するタイプのがんである場合に使用される。がんは、メラノーマ、肺がん、腎臓がん、グリオーマ、トリプルネガティブ乳がん、または腎がんであってもよい。キットはまた、ビフィドバクテリウム属である腸内微生物叢を含んでもよい。

図１は、腫瘍増殖が腸内微生物の消失に影響されることを示す。図２は、１６ＳｒＲＮＡ遺伝子配列決定のヒートマップを示す。図３は、抗生物質による治療を受けなかったマウスの腫瘍増殖曲線を示す。図４Ａは、腫瘍溶解性ウイルスが宿主に対して毒性を有しないことを示す。図４Ｂは、腫瘍溶解性ウイルスが宿主に対して毒性を有しないことを示す。図４Ｃは、腫瘍溶解性ウイルスが宿主に対して毒性を有しないことを示す。図５は、マウスメラノーマ腫瘍モデルにおけるＯＶ／ＧＭ併用の抗腫瘍活性の評価において、試験群間の平均体重に有意差がないことを示す。図６は、同一遺伝子のマウスメラノーマ腫瘍モデルにおける、ＯＶ／ＧＭ（ＰＯＶ－８０１＋ＰＧＭ－００１）併用の相乗的抗腫瘍活性を示す。図７は、同一遺伝子のマウスメラノーマ腫瘍モデルにおける、ＯＶ／ＧＭ（ＰＯＶ－６０１＋ＰＧＭ－００１）併用の相乗的抗腫瘍活性を示す。図８は、同一遺伝子のマウスメラノーマ腫瘍モデルにおける、種々のＯＶ／ＧＭ併用の相乗的抗腫瘍効果を示す。図９は、マウス肺腫瘍モデルにおけるＯＶ／ＧＭ併用の抗腫瘍活性の評価において、試験群間の平均体重に有意差がないことを示す。図１０は、マウス肺腫瘍モデルにおけるＯＶ／ＧＭ併用の抗腫瘍活性の評価において、試験群間の平均脾臓重量に有意差がないことを示している。図１１は、マウス肺腫瘍モデルにおける、ＯＶ／ＧＭ（ＰＯＶ－６０１＋ＰＧＭ－００１）併用の相乗的抗腫瘍活性を示す。

以下の詳細な説明および実施例は、本発明の特定の実施形態を示す。当業者であれば、本開示の範囲に包含される、本開示の多数の変形例および修正例が存在することを認識するであろう。したがって、特定の実施形態の説明は、限定的なものとみなされるべきではない。

本明細書中で引用される全ての参考文献は、これらに限定されるものではないが、公開された出願および未公開の出願、特許、ならびに文献参照を含み、その全体が参照により本明細書に組み込まれ、これにより本明細書の一部とされる。

４０種超の腫瘍溶解性ウイルス（ＯＶ）が、前臨床および臨床研究においてその治療可能性について評価されている（Miest & Cattaneo, Nat. Rev. Microbiol. 12(1): 23-34,
2014; Buijs et al., Hum. Vaccin. Immunother. 11(7): 1573-84, 2015; Patil et al., J. Contemp. Dent. Pract. 16(8): i-ii, 2015; Kaufman et al., Nat. Rev. Drug Discov. 14(9): 642-62, 2015）。本明細書では、腸内共生細菌種を含有するＯＶ併用療法を開示する。ある実施形態において、併用療法は、安全性プロファイルが文書化されていること、および再感染を引き起こすその独特の能力のために、オーフウイルス（ＯＲＦＶ）を含む。くわえて、ＯＲＦＶはナチュラルキラー（ＮＫ）細胞と樹状細胞（ＤＣ）との特別な関与によって強い刺激免疫応答を誘導する能力を示し、ＯＲＦＶの複製「ニッチ」は、その抗腫瘍活性に有益な効果を有する腫瘍微小環境に類似する、広範な脈管構造を有する（Rintoul et al., Mol. Ther. 20(6): 1148-57, 2012; Rziha et al., Methods Mol. Biol. 2016; 1349:177-200, 2016）。さらに、ＯＲＦＶは免疫適格性マウス肺がんモデルおよびヒト肺がん異種移植モデルにおいて、優れたインビボ抗腫瘍活性を示す。いくつかの実施形態において、レポーター遺伝子または抗腫瘍増強遺伝子のいずれかを含有するＯＲＦＶ組換え体は、ＯＲＦＶ組織分布および生検分析を容易にし、ＯＲＦＶの抗腫瘍活性を高めるように設計される。別の実施形態において、ＯＲＦＶは、増強剤を含有する併用抗腫瘍療法の主成分である。

いくつかの実施形態において、インビボＯＲＦＶモニタリングは、血中におけるＯＲＦＶウイルス負荷およびそのゲノムの遅延した再興を迅速に検出する、近年開発された技術（Rziha et al., Methods Mol. Biol. 2016; 1349:177-200, 2016）によって実施される
。ＯＲＦＶ投与後の延長時点での正の読取りは、腫瘍内ウイルス複製、およびそれに続く体循環への漏出を示し、より強力な抗腫瘍反応を示唆する。好ましい実施形態において、ＯＲＦＶ含有併用治療の治療可能性は、試験対象の腫瘍負荷および動物生存率の分析によって評価される。評価のためのその他のウイルス種としては、ポックスウイルス科の種、例えば、本発明においてＰＯＶ－８０１と命名されたワクシニアウイルス（ＶＡＣＶ）が挙げられるが、これらに限定されない。

ＯＶ療法単独では通常、抗腫瘍効果は低く、母集団有効率および個々の患者の回復の両方の点において、前臨床治験および臨床治験の両方で観察されている（Kirn, Gene Ther.8(2): 89-98, 2001; Kelly & Russell, Mol. Ther. 15(4), 651-59, 2007; Burke et al., Curr. Opin. Virol. 13:55-60, 2015; Harrington et al., Expert Rev. Anticancer Ther. 15(12): 1389-403, 2015; Kaufman et al., Nat. Rev. Drug Discov. 14(9): 642-62, 2015; Patil et al., J. Contemp. Dent. Pract. 16(8): i-ii, 2015; Seymour & Fisher, Br. J. Cancer 114(4): 357-61, 2016）。したがって、本明細書に開示されている
のは、このあらかじめ調整した条件を作成するために、腸内共生細菌といった薬剤を用いて、被験者体内に好ましい抗腫瘍免疫条件を作成する方法である。特定の実施形態において、種々の腸内共生細菌種が、選択されたＯＶの抗腫瘍活性の増大について評価される。好ましい実施形態において、腸内細菌属はビフィドバクテリウム属である。この属のある種の細菌もまた、腸内微生物叢のバランスを調節する能力に基づき、過敏性腸症候群、ならびに炎症性および壊死性腸炎（Ng et al., Inflamm. Bowel Dis. 15, 300-10, 2009; Gareau et al., Nat. Rev. Gastroenterol. Hepatol. 7, 503-14, 2010）の臨床症状を改
善するためにも使用されている（Etzold et al., Environ. Microbiol. 16, 888-903, 2014）。予防医学におけるビフィドバクテリウム属の安全性および利点は充分に実証されており、その組成は約６％から約３６％の範囲で変動し得る。

いくつかの実施形態において、選択されたＯＶに対するビフィドバクテリウム属の潜在的な増大効果を、前臨床治験で評価する。その他の実施形態において、ビフィドバクテリウム属のインビボモニタリングは、被検体の糞便試料の修正末端制限断片長多型（Ｔ－ＲＦＬＰ）解析を用いて実施される（Nagashima et al., Biosci. Microflora. 25: 99-107, 2006）。ビフィドバクテリウム属の生理学的影響はまた、種々のインビトロ分析を用いて評価することもできる。ある実施形態において、ビフィドバクテリウム属の増大効果は、ＯＶそのものだけでなく、ビフィドバクテリウム属を伴うＯＶで処置した被験者の腫瘍負荷および生存率を比較することによって評価される。評価のためのその他の腸内共生細菌種には、世界消化器病学会によって公表されたもの、または開示された階層クラスター試験によって発見されたものが含まれるが、これらに限定されない。

その他の実施形態において、腸内共生細菌種の組成および機能を調節することができる薬草エキスまたは生薬の免疫調節作用を試験する。

ある実施形態において、有効な薬剤含有併用ＯＶ療法のヒト臨床治験は、前臨床治験の完了後にデザインされる。好ましい実施形態において、登録された患者は、現在の抗腫瘍療法に反応せず、開示された階層クラスター分析のプラットフォームに基づく潜在的な「優良レスポンダー」である。

ある実施形態において、ＯＶは、腸内共生細菌が投与されてから約１週間～２ヶ月後にヒト被験者へ投与される。好ましい実施形態において、ＯＶは、腸内共生細菌が投与されてから約１ヶ月後にヒト対象へ投与される。マウスの場合、腸内共生細菌を投与してから約１～２週間後に腫瘍溶解性ウイルスを投与する。いくつかの実施形態において、腸内微生物叢の有効量は、約１０^９～１０^１１ｃｆｕである。さらに他の実施形態において、腫瘍溶解性ウイルスの有効量は、約１０^５～１０^１０ｐｆｕである。

本開示の一部として、ウイルスＰＯＶ－６０１を含むオーフウイルスの少なくとも２つのチューブが寄託され、中国において、中国典型培養物保蔵センター（ＣＣＴＣＣ、中国武漢大学、武漢４３００７２、中国）により制限なく公衆に利用可能となった（しかしながら、特許権の対象である）。ＣＣＴＣＣ寄託番号第Ｖ２０１７１３号として指定された寄託物は、２０１７年３月２８日、ＭｉｎｊｉｅＨｕ氏の代理で作成された。この寄託は、特許手続上の目的のため、シード寄託に関してブダペスト条約に従って、かつ同条約
に基づいて作成され、維持される。

いくつかの実施形態において、併用療法は、ヒト疾患、特にがんにおいて評価される。２００種類以上のヒトがんが存在する（ACS (2015) Global Cancer Facts & Figures）。一部のがんの種類には、臨床的失敗の重要な要因である新抗原をコードする、高度なデノボ突然変異を含有する。固形腫瘍内で空間的に分離された腫瘍内サブクローンの細胞内に存在するある種の新抗原は、ＯＶの腫瘍溶解時に放出される。放出された新抗原は、樹状細胞（ＤＣ）のような一組の抗原提示細胞（ＡＰＣ）によって提示されることがあり、これらの新抗原に対する免疫の全パネルが開始されることで、異なる新抗原を有する既存のがん細胞の全てに対する強力な排除作用につながる。本明細書にて開示される方法は、選択された増強剤で宿主の免疫システムをあらかじめ調整し、強力な全身性抗腫瘍反応を生成することによって、新抗原提示および免疫誘導の効力を増大させる方法である。いくつかの実施形態において、本方法は、メラノーマ、肺がん、腎臓がん、グリオーマ、トリプルネガティブ乳がん、および腎がんを含む高変異がんのタイプに対して使用されるが、これらに限定されるものではない。メラノーマおよび肺がん患者は、その他の種類のがん患者と比較して、免疫チェックポイント阻害剤（イピリムマブ、ニボルマブ、およびペンブロリズマブ）、ならびに腫瘍溶解性ウイルス療法であるＴ－ＶＥＣに対し良好に反応する。これは生存率の延長を通じて表れる。好ましい実施形態において、併用療法は、肺がんを治療するために使用される。その他の実施形態において、併用療法は、高変異がんのタイプを治療するために使用される。さらに他の実施形態において、併用療法は、正常突然変異率または低突然変異率を有するがんのタイプを治療するために使用される。

いくつかの実施形態において、抗腫瘍反応は、選択された動物モデルを用いた前臨床研究において評価される。開発されている種々のマウスモデルが、開発中の治療に対する反応を調べるために、本明細書において使用され得る。これらの実験的マウスモデルには、移植可能な腫瘍、遺伝子操作／トランスジェニックモデル、およびヒト化マウス異種移植モデルという３つの主なカテゴリーに分類されるモデルが含まれるが、これらに限定されない。移植可能な腫瘍モデルは、迅速な結果が得られるために、がんの前臨床研究において最も広く使用されている。一方で、トランスジェニックモデルはより大きな表現型多様性を提供し、異種移植実験は通常、適応免疫が欠損したヌードまたは重症複合免疫不全（ＳＣＩＤ）マウスのいずれかで行われる。ある実施形態において、開示された併用療法の前臨床評価は、複数の腫瘍モデルにおいて評価される。その他の実施形態において、移植可能モデルは、適応免疫応答を観察するように設計される。これらのモデルにおいて、マウス株は、移植されたがん細胞株と同一の遺伝的背景を有する。この移植可能モデルの一例は、マウスＢ１６－Ｆ１０メラノーマがん細胞株を静脈内投与し、適応免疫応答をモニターできる肺転移がんモデルの作成を検討された、Ｃ５７ＢＬ／６マウスである。ある実施形態において、移植可能なモデル試験の腫瘍担持動物は、本発明の図１１に示すように、選択された増強剤の有無にかかわらず投与され、次いで試験用ＯＶを適用し、そして腫瘍負荷分析のために肺を採取および処理する。その他の実施形態において、Ａ５４９を含むがこれに限定されない蛍光標識ヒト肺がん細胞株を、ＣＤ１を含むがこれに限定されないヌードマウス株の側面に皮下移植して、ヒト肺がん異種移植片モデルを作製する。ある実施形態において、マウスＢ１６－Ｆ１０メラノーマ細胞株をＣ５７ＢＬ／６マウスの右脇腹に皮下注射し、そして腫瘍量を、図６、図７、図８に示すように、増強剤および試験用ＯＶの投与後にデジタルキャリパーで測定した。ある実施形態において、免疫応答の増強は、脾臓ＮＫ、ＤＣ、およびＣＤ８^＋Ｔ細胞の総数をカウントすることによって、または特定のリンパ球活性化マーカー（例えば、ＣＤ６９、ＣＤ８０、およびＣＤ８６）、ならびに免疫応答サイトカイン（例えば、インターロイキン－１β（ＩＬ－１β）、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ－ＣＳＦ）、ＩＬ－２、ＩＬ－６、ＴＮＦ－α、およびＩＦＮ－α）の発現レベルを、薬剤投与の前後に分析することによって、最初に評価される。いくつかの実施形態において、腫瘍負荷および動物生存分析が評価される。そ
の他の実施形態において、他のタイプのがんに対する前臨床腫瘍モデルが作成され、開示された併用療法を評価するために使用される。前臨床治験から得られたデータは、開示された併用療法に関する有用な安全性および有効性の情報を提供し、ヒト臨床治験のデザインを導く。

全ての選択された増強剤および腫瘍溶解性ウイルスは、優良試験所基準（ＧＬＰ）、および適正製造基準（ＧＭＰ）ガイドラインに従って処方される。ある実施形態において、増強細菌剤は、市販の資源またはヒト糞便試料から得られる。いくつかの実施形態において、生存形態で市販されている細菌を、嫌気的条件下において還元クロストリジウム寒天培地（ＲＣＭ）上で増殖させる。得られた細菌は、５×１０^６ｃ．ｆ．ｕ．／μｌでリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）中に製剤化することができる。ＯＶを適用する前に、開始用量２００μｌの製剤化細菌を、公表されているデータ（Sivan et al., Science350(6264): 1084-89, 2015）に基づいて、経口摂取により各マウスへ投与する。製剤化細菌の総量
は、単回投与または数日間（例えば、１４日間）にわたる複数回投与のいずれかで得られ、そして投与の頻度および期間が決定される。

腫瘍溶解性ウイルスは、ＰＢＳ中において１０％ｖ／ｖのグリセロールを用いるか、または３０ｍＭトリス中において１０％（ｗ／ｖ）のスクロースを用いて、ウイルス濃度１０^５ｐ．ｆ．ｕ．／μｌで製剤化する。ＯＶの正確な投与量は、その標的腫瘍の毒性および性質に依存するものの、初回投与量１０^７ｐ．ｆ．ｕ．は、公表されているデータ（Rintoul et al., Mol. Ther.20(6): 1148-57, 2012）に基づいて各マウスに投与される。ウイルス製剤は、動物モデルに応じて、局所的または全身的のいずれかで投与される。第１のＯＶ薬であるＴ－Ｖｅｃは局所注射（Harrington et al., Expert Rev. Anticancer Ther. 15(12): 1389-403, 2015）によって良好に送達されたので、本発明において同一のアプローチを使用することができる。ある実施形態において、１００μｌのウイルス製剤を最大５回、異なる時点で腫瘍内に注射し、処置した腫瘍をデジタルキャリパーで週に２～３回測定する。全身送達には、転移性腫瘍の治療に不可欠な適応免疫応答を評価するという利点がある。その他の実施形態において、マウスを５用量の１００μｌウイルス製剤で静脈内投与処置し、臓器障害の徴候をモニターする。臨床治験における投与を補助するために、選択された細菌性薬剤および選択された腫瘍溶解性ウイルスは、医薬組成物中の成分として別々に処方してもよい。したがって、いくつかの場合において、組成物は、薬学的に許容可能な濃度の塩、緩衝剤、保存剤、および種々の適合性担体を常に含有し得る。薬学的に許容可能な希釈剤の割合および同一性は、選択された投与経路、生ウイルスとの適合性、および適用可能な場合、免疫増強剤の安定性との適合性に依存する。開始用量は、選択された細菌剤が３×１０^７ｃ．ｆ．ｕ．ｋｇ－１、および選択されたウイルスが１×１０^７ｐ．ｆ．ｕ．ｋｇ－１であり、公表されている臨床治験（Kaufman et al., Nat.
Rev. Drug Discov. 14(9): 642-62, 2015; Waller et al.,. Scand. J. Gastroenterol.
46: 1057-64, 2011）に基づいて使用される。全身送達検査のために、製剤化ウイルスを、静脈内注入直前に総注入量５０ｍｌの重炭酸緩衝生理食塩水で希釈し、６０分間かけて注入する。腫瘍反応は、造影コンピュータ断層撮影（ＣＴ）画像、最大腫瘍径、およびハンスフィールド単位により評価する（Breitbach et al., Nature477, 99-102, 2011）。

本発明はまた、個々のＯＶ療法に対する優良レスポンダー選択のためのプラットフォームを構築することも目的とする。ある実施形態において、糞便試料は、がん患者、高リスク集団における非疾患対象、および低リスク集団における健常対象の３つのカテゴリーに分けられた、同意済み対象６０人の群から収集される。各試料中の微生物ＤＮＡを、ＡｍｅｒｉｃａｎＨｕｍａｎＭｉｃｒｏｂｉｏｍｅＰｒｏｊｅｃｔ（ＨＭＰ）のプロトコルを改変した方法で精製した（Wesolowska-Andersen et al.,Microbiome,2,19,2014）
。ＤＮＡ精製後、ＤＮＡの品質を分光光度計でチェックし、２６０ｎｍ／２８０ｎｍ比が１．８より高いＤＮＡのみを、１６ＳリボソームＲＮＡ標的配列決定またはメタゲノム配
列決定の対象とする。

１６ＳＲＮＡ遺伝子のＰＣＲ増幅は、全ての菌種の保存領域に基づいて設計されたプライマーを用いて行われ、ＰＣＲ産物は、Ｑｉａｇｅｎ社より購入したＱｉａＱｕｉｃｋ
ＰＣＲ精製キットで精製されるが、これに限定されない。ある実施形態において、ＰＣＲ増幅１６ＳリボソームＲＮＡ（ｒＲＮＡ）標的配列決定が行われる。その他の実施形態において、ｒＲＮＡの可変領域の種特異的配列の存在量は、クラスター分析に利用される。１６ＳｒＲＮＡ配列決定と比較して、メタゲノム配列決定は、何千もの種の探索を可能にする。いくつかの実施形態において、メタゲノム配列決定からの読取りは、３０００の参照ゲノムより構築された細菌ゲノムデータベースからの菌株特異的配列にマッピングされる（Grice & Segre, Annu. Rev. Genomics Hum. Genet., 13, 151-70, 2012; Human Microbiome Jumpstart Reference Strains et al., 2010）。参照ゲノムにはバローズ・
ホイーラー（Ｂｕｒｒｏｗｓ－Ｗｈｅｅｌｅｒ）指標をつける。マッピングデータは、参照配列の長さおよび総読取りカウントに基づいて正規化される。算出された菌種の存在量は、さらにクラスター分析に供される。

ある実施形態において、Ｒ統計プログラミングによって開発された生物情報学ツールを使用して、各個人の系統樹（Segata et al., Nat. Methods, 9(8): 811-14, 2012）およ
びエンテロタイプクラスタを生成する。その他の実施形態において、腫瘍担持マウスは、収集されたヒト糞便試料で個別に前処理され、次いで選択されたＯＶ（例えば、ＯＲＦＶ）で処理される。各試験マウスにおける腫瘍負荷および動物生存率をモニターおよび分析して、一連の抗腫瘍効力データを生成する。陽性の抗腫瘍効果データおよび特定の数学的算出を有する人からの全ての「陽性」系統樹およびエンテロタイプクラスタの比較分析に続いて、１つのプラットフォームを、選択されたＯＶに対する潜在的な優良レスポンダー選択のために構築した。その他の実施形態において、ヒト参加者の数を増やして、他のＯＶ療法のための同様のプラットフォームを構築した。いくつかの実施形態において、新規の腸内共生細菌種は、比較分析中に同定され得る。本開示によれば、優良レスポンダー選択プラットフォームによって、個別化された精密医療の開発を促進することができる。

「腸内微生物叢」、「腸内共生細菌」、「腸内微生物」、または「ＧＭ」とは、種々の器官、好ましくは腸および／または胃に生息する微生物の集合体を指す。腸内微生物叢は数十兆の微生物を含有する。いくつかの実施形態において、腸内微生物叢はほとんどの個体に共通である一方で、その他の実施形態において、腸内微生物叢は個体に特異的である。

「抗がん活性」または「抗腫瘍活性」とは、がん細胞を殺傷したり、がんの重症度を低下させたり、またはがんの拡がりを阻止もしくは予防したりする薬剤の能力を指す。

腫瘍溶解性ウイルスの「有効量」とは、単回または複数回投与の際に、がん細胞を治療したり、がんの進行を延長または予防（例えば、がんのさらなる腫瘍増殖の予防、さらなる炎症反応の予防）したり、がん患者の症状を、そのような治療がない場合に予想される症状を超えて寛解、緩和、軽減、もしくは改善したりするのに充分な量を意味する。必要とされる腫瘍溶解性ウイルスの量は、投与される特定のウイルス、治療されるがんの種類、投与経路、およびがんを治療するのに必要な時間の長さに依存し得る。また、あらゆる特定の患者に対する特定の用量および治療レジメンは、腫瘍溶解性ウイルスの活性、年齢、体重、一般的な健康状態、性別、患者の食事、投与時間、排泄速度、配合製剤、治療する医師の判断、および治療される特定のがんの重症度を含む、種々の因子に依存するということも理解されたい。腫瘍溶解性ウイルスが腸内微生物叢と組み合わせて投与される特定の態様において、本発明の組成物中に存在するさらなる腫瘍溶解性ウイルスの量は、典型的には、唯一の活性剤として腫瘍溶解性ウイルスを含む組成物中に通常投与される量以
下であろう。

「あらかじめ調整した条件」とは、ＯＶ療法に先立って被験者を試験するために、１セットの腸内微生物を投与するプロセスを指す。腸内微生物の摂取は、病理学的に腫瘍増殖を支持する対象の免疫学的平衡を妨害する。腸内微生物はまた、対象の免疫システムを増強して、ＯＶ標的細胞から放出される腫瘍特異的シグナルを認識する。腫瘍遺伝子座に対する体系的免疫応答は、腸内微生物の投与後に増強する。

用語「腫瘍内」とは、腫瘍内の空間を指す。あらかじめ調整することのメカニズムは、効果的な抗腫瘍反応に重要である。ある実施形態において、「あらかじめ調整した」状態は、ウイルス、および感染領域の外側に局在する腫瘍内バイスタンダーによって、以前は見られなかった遠隔部位での転移性がん細胞の殺傷を促進する。

腸内微生物叢の「有効量」とは、「あらかじめ調整した条件」を作るのに充分な量であるため、効果的な抗腫瘍反応を促進する。

以下の実施例は例示的なものであり、本開示の範囲を何ら限定するものではない。

実施例１－腸内微生物叢実験

Ａ．微生物菌株の単離
Ｐｒａｊｎａの微生物菌株の単離および精製
特定の菌種を、細菌培養物から単一の細菌コロニーを分離することによって精製する。いくつかの菌種を含有するプロバイオティクス出発原料を、固体寒天培養プレート上において連続希釈で培養した。これらのプレートはよく分離したコロニーを含有し、ここから単一コロニーを採取し、各々が個々の株を示した。採取した各コロニーを新鮮なプレート上に画線し、３７℃で２４～７２時間（株依存性）インキュベートして、新しい個々のコロニーを形成させた。コロニー内の細菌が単一クローンに由来することを確認するために、このプロセスを複数回繰り返した。最終コロニーを用いて、選択した菌種を増殖させた。

Ｂ．微生物培養
装置の組み立ておよび配置
嫌気培養を開始するために、ワークステーションの培養室を混合ガスで満した。混合ガスの成分は、窒素（８０～９０％）、二酸化炭素（５～１０％）、および水素（５～１０％）である。触媒パラジウム（Ｐｄ）を用いて、酸素と水素との間の反応を可能にすることによって、微量酸素を除去した。

脱気ブロスの調製
高圧滅菌した培養ブロスを、酸素指示薬（レサズリン０．３％）の色がピンクから無色に変化するまで、３０～６０分間、ろ過窒素ガスで連続的にフラッシュした。その後脱気したブロス瓶をキャップし、空気漏れを防止するためにパラフィルムで密封した。すべてのブロスはワークステーションの培養室内で使用した。

株ストック調製
個々に選択したコロニー由来である１４ｍｌの細菌培養液を、水中の３０％グリセロール１４ｍｌと混合し、２ｍｌのストックに分画した。ストックを－８０℃で維持した。

Ｃ．選択した株の増殖および微生物生育の試験
１００μｌの株ストックを、５０ｍｌの液体培養ブロスを含有する５０ｍｌ遠心チューブに播種し、続いて３７℃で２４～７２時間（株依存性）インキュベートした。その後５０ｍｌの培養液を、１０００ｍｌの液体培養ブロスを含有する１リットルのガラスびんに移し、３７℃で２４～７２時間増殖を続けた。選択した各株の成長特性を、成長曲線実験により評価した。３ｍｌの試料を、連続した時間点において、５０ｍｌの細菌培養液を含有する５０ｍｌチューブから採取し、６００ｎｍにてＯＤ（光学密度）値をプレートリーダーで測定した。各株の成長曲線をプロットし（ＯＤ読み出し対時間）、各株の対数成長相を決定した。各株の対数相培養液を、動物投与溶液の調製に用いた。

Ｄ．選択した微生物菌株の定量
選択した微生物菌株の力価を定量するために、連続希釈培養液をセットした。微生物菌株のグリセロールストックを１０×、１０^２×、１０^３×、１０^４×、１０^５×、１０^６×の濃度へと連続的に希釈した。希釈した細菌を固体寒天プレート上で培養した。各プレート上のコロニー数をカウントし、カウント数と希釈係数とを掛けることによって、元の細菌ストックの力価を算出した。

Ｅ．動物試験用細菌投与溶液の調製
ＰＧＭ－００１
２ｍｌの滅菌ＰＢＳを、１カプセル（４４０ｍｇ／カプセル）のプロバイオティクス粉末を含有する５０ｍｌ遠心チューブに加え、滅菌ガラススティックで６分間撹拌して、粉末を再懸濁した。次いで、懸濁液を５００ｒｐｍで２分間遠心分離して、壁に付着した懸濁液を管底部まで落とした。これは、５×１０^９／ｍｌのｃｆｕを有するＰＧＭ－００１投与溶液である。

個々の投与溶液を含有する全てのチューブを窒素ガスで満たし、動物への投与前の６０分未満は室温に保った。

Ｆ．微生物種の分子検出および種分化
ＰＣＲおよび１６ＳサンガーＤＮＡ配列決定による菌種の検出
異なる種由来のゲノム配列は、種分化のための識別的な特徴を提供することができる。１６ＳｒＲＮＡ遺伝子配列は、その超可変領域（Ｖ１～Ｖ９）の統合的相同およびクラスター分析によってタスクを遂行することができる。１６ＳｒＲＮＡ遺伝子を、５’ＣＧＧＧＧＧＴＧＣＴＧＣＣＣＡＣＴＴＴＣＡＴＧ３’および５’ＧＣＴＴＧＴＴＧＧＴＧＡＧＧＴＡＡＣＧＧＣＴ３’のプライマーを用いたポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）によって増幅した。次いで、ＰＣＲ産物をサンガー配列決定した。両端から開始した配列を処理して１６ＳｒＲＮＡ遺伝子を組み立てた。配列を、Ｂｌａｓｔｎ計算プログラムによってＮＣＢＩ（国立衛生研究所国立生物工学情報センター）からの微生物ゲノムデータベースと比較して、超可変領域におけるクエリー配列と高い配列同一性および相同性（９９％超）を有する種を同定した。

ｑＰＣＲ：プライマーおよび試験デザイン
ｑＰＣＲは、株特異的プライマーの同定されたパネルを用いた、あらかじめ調整した条件のスクリーニングとして使用される。糞便中のｒＲＮＡ遺伝子の存在量の定量化により、消化管における細菌組成を推定することができた。糞便中の菌種組成の評価には、菌種パネルのＰＣＲ増幅曲線を利用する。この組成物は、腫瘍を有する患者のサブタイプを分類するために使用される。

ゲノムＤＮＡを、ＭｏＢｉｏＰｏｗｅｒｓｏｉｌ（登録商標）ｈｔｐ９６Ｗｅｌｌ
ＳｏｉｌＤＮＡＩｓｏｌａｔｉｏｎＫｉｔ（ＭｏＢｉｏＬａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社、カリフォルニア州カールスバッド）、またはＱＩＡａｍｐＤＮＡＳｔｏｏ
ｌＭｉｎｉＫｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ社、カリフォルニア州バレンシア）を用いて、試料から抽出する。熱サイクル条件は以下のように設定される：９５℃で２分間、続いて９５℃で３秒間を４５サイクル、６０℃で３０秒間、続いてＦＡＭチャンネル蛍光読取り値の測定。

Ｇ．微生物１６ＳｒＲＮＡ遺伝子配列決定および高処理能力データセットの生物情報学分析
微生物１６ＳｒＲＮＡ遺伝子の超可変領域（Ｖ３、Ｖ４、およびＶ５）は、微生物系統の研究に利用できるユニークな菌株特異的配列を含有する。組込み生物情報学分析により、腸内微生物種の系統発生および分類を解明することができる。

微生物ゲノムＤＮＡを、実験用マウスから収集した糞便ペレットより精製して、Ｉｌｌｕｍｉｎａ配列決定プラットフォームによる高処理量１６ＳリボソームＲＮＡ（ｒＲＮＡ）遺伝子配列決定に供した。以下、配列決定データ処理について説明する。

１６ＳｒＲＮＡ遺伝子配列決定のための試料選択
腫瘍担持マウス由来の糞便試料を、細菌ＤＮＡ精製のために収集した。腫瘍の処置に対する腸内微生物存在量の影響を評価するために、糞便試料を、対照、処理済微生物、および腫瘍溶解性ウイルス処理マウスとして、正常未処理マウスから採取した。各マウスの糞便試料は、微生物投与前、Ｂ１６接種前、およびＢ１６接種後２週間の３時点で選択される。次いで、ＤＮＡを、品質管理および濃度測定のために評価した。品質管理を通過した試料は、下流で１６ＳｒＲＮＡ遺伝子配列決定を受ける。

１６ＳｒＲＮＡ遺伝子配列決定、データ転送、および保存
１６ＳｒＲＮＡ遺伝子の超可変領域を、以下のプライマーを用いて増幅した。

配列決定プラットフォームは、サンプル当たり平均１０，０００の読取りで２５０ｂｐの対末端（ＰＥ）を有する読取りを生成した。ｇｚ圧縮データｇｚｉｐは、ｆｔｐ（ファイル転送プロトコル）サーバを介して転送した。

生データ処理
配列決定生読取りは、読取りのデマルチプレクス工程、バーコード、プライマーおよびアダプタークリップのクリップ工程、端部対読取りの連結工程によって前処理した。ｆａｓｔｑフォーマットは、ｒａｗ読取り用に生成し、前処理した。

配列決定読取りＱＣ
品質管理ツールであるＦａｓｔＱＣを使用して、塩基配列の品質、ＧＣ含量、Ｎ塩基レベル、配列重複レベル、配列過剰表現レベル、およびＫｍｅｒ含量を報告するために配列ファイルを評価する。

ＯＴＵ（操作的分類単位（Operational Taxonomic Unit））分類の分析
前処理された配列読取りを、クラスタリングのためにＱＩＩＭＥパイプラインに供した。次いで配列類似性比較の下において、パイプラインへの入力としての配列読取りを、Ｇｒｅｅｎｇｅｎｅｓデータベースを用いてＯＴＵ（操作的分類単位（Operational Taxonomic Unit））に分類した。Ｇｒｅｅｎｇｅｎｅｓ参照に対する配列アラインメントデータを用いて、分類単位の存在量を評価する。腫瘍増殖に対する異なる微生物処理による、試料間の異なる存在量を比較することによって、ＯＴＵと各処理の効率との相関を同定する。

実施例２－動物注射用腫瘍溶解性ウイルスの調製

Ａ．腺がんヒト肺胞基底上皮細胞株Ａ５４９培養
Ａ５４９細胞の解凍
Ａ５４９細胞（Ｐｒａｊｎａコード：Ｃ１；元々はＢｅＮａＣｕｌｔｕｒｅＣｏｌｌｅｃｔｉｏｎ社より購入したもの、カタログ＃ＢＮＣＣ３３７６９６）を、２×１０^６細胞／ｍｌを含有する凍結バイアルを液体窒素タンクから３７℃の水浴中へ移すことによって、解凍する。細胞培養液（ＤＭＥＭ中１０％ＦＢＳ）を３７℃の水浴中で温める。バイアル表面を７５％アルコールで徹底的に拭く。バイアルを細胞培養フード中で開き、Ｐ１０００ピペットで１．５ｍｌ滅菌チューブに移す。予備加温した細胞培養培地１０ｍｌをゆっくり加え、室温（ＲＴ）で５分間、２３０×ｇで遠心分離する。上清をデカントし、細胞を細胞培養培地中に再懸濁させる。細胞を、０．７～２×１０^６／フラスコの細胞密度で７５ｃｍ^２フラスコに播種し、３７℃の細胞培養インキュベーターに入れて、細胞増殖を可能にした。培地は翌日に交換する。

Ａ５４９細胞の継代培養
培養細胞を倒立顕微鏡で観察し、細胞の集密度を評価する。細胞集密度が５０～８０％の間である場合、次の段階に進む。培地を吸引し、細胞単層を１０ｍｌのＤＰＢＳ（Ｃａ^２＋／Ｍｇ^２＋なし）ですすぐ。５ｍｌの０．２５％トリプシン／ＥＤＴＡを、すすいだフラスコに加える。フラスコを回転させて、加えたトリプシン／ＥＤＴＡが細胞単層を覆うようにする。フラスコをインキュベーター内に４～６分間置く。細胞を倒立顕微鏡で調べて、全細胞が分離し浮遊していることを確認する。１０ｍｌの新鮮細胞培養培地を加えて、トリプシンを不活性化する。細胞を１０ｍｌピペットで再懸濁させる。細胞懸濁液を５０ｍｌのコニカルチューブに移し、室温で５分間、２３０×ｇで遠心分離する。上清をデカントし、約５ｍｌの細胞培養液に再懸濁させる。細胞の小さなアリコート（１００～２００μｌ）を除去し、細胞をＬｉｆｅの細胞計数器で計数する。細胞密度を、細胞培養液で１×１０^６細胞／ｍｌに調整する。再懸濁した細胞を、２×１０^６／フラスコの細胞密度でＴ１７５フラスコ中に播種する。フラスコを３７℃の細胞培養インキュベーターに入れて細胞を増殖させ、培地を１日おきに交換する。必要に応じて継代培養を繰り返す。

Ａ５４９細胞の冷凍保存
培養細胞を倒立顕微鏡で観察して、細胞集密度が８０％に近いことを確認する。Ａ５４９細胞を回収し、上記の「Ａ５４９細胞の継代培養」にある工程を用いてトリプシン／ＥＤＴＡで再懸濁する。細胞の小さなアリコート（１００～２００μｌ）を除去し、細胞をＬｉｆｅの細胞計数器で計数する。細胞生存率を、細胞計数中に調べた（細胞生存率は、
理想的には、凍結後の良好な回復を達成するために、９０％を超えるべきである）。細胞を室温で５分間、２３０×ｇで遠心分離し、細胞凍結培地中に１×１０^６細胞／ｍｌの密度で再懸濁させる。細胞懸濁液を２ｍｌの低温貯蔵バイアル中１ｍｌアリコートに分注し、バイアルを－８０℃の冷凍庫に４時間入れる。バイアルを液体窒素貯蔵タンクの気相に移送し、各バイアルの位置を記録する。

Ｂ．ウイルス産生
ウイルス感染
ウイルス感染を、元々ＣｈｉｎａＣｅｎｔｅｒｆｏｒＴｙｐｅＣｕｌｔｕｒｅ
Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ社から購入したカタログ＃ＧＤＶ１１７である、Ｐｒａｊｎａコード：ＰＯＶ－８０１を用いて実施する。１７５ｃｍ^２のフラスコ中で培養したＡ５４９細胞を倒立顕微鏡で観察し、細胞が集密していることを確認する。培地を交換し、ウイルスストック２００μｌをフラスコに移す。フラスコを回転させて、加えたウイルス溶液が細胞単層を完全に覆うようにする。フラスコを３７℃の細胞培養インキュベーターに入れて、Ａ５４９細胞のウイルス感染を可能にする。ウイルス処理された細胞は、倒立顕微鏡下で毎日検査する。９０％超の細胞が平ら形から丸に形態を変化させた場合、感染プロセスは完了する。

ウイルスの冷凍保存
感染したＡ５４９細胞を倒立顕微鏡で観察して、感染プロセスが完了していることを確認する。培地を５０ｍｌのコニカルチューブに移し、ＤＰＢＳで洗浄する。３ｍｌの０．２５％トリプシン／ＥＤＴＡを加え、フラスコを３７℃のインキュベーターに３分間入れる。少量の新鮮な細胞培養培地を加えて、トリプシンを不活性化する。細胞を室温で１０分間、３０００ｒｐｍで遠心分離し、上清を吸引する。ペレットをＰＢＳ中で１０ｍＭＥＤＴＡにより再懸濁し、ウイルスストックを－８０℃で保存する。

感染細胞からのウイルス放出
ウイルスストックの凍結および解凍を３回繰り返す。処理したウイルス試料を３×１分間超音波処理する。超音波処理した試料を、４℃で１０分間、２３０×ｇで遠心分離する。上清を１５ｍｌのチューブに移し、残りのペレットをＰＢＳで再懸濁する。上清および懸濁液を－８０℃のフリーザーに入れる。

ウイルス力価測定のための細胞の調製
細胞培地をＡ５４９が集密しているＴ１７５フラスコから吸引する。細胞単層を１０ｍｌのＤＰＢＳ（Ｃａ２＋／Ｍｇ２＋なし）ですすぐ。５ｍｌの０．２５％トリプシン／ＥＤＴＡをすすいだフラスコに加え、フラスコを回転させて、加えたトリプシン／ＥＤＴＡが細胞単層を確実に覆うようにする。フラスコをインキュベーター内に４～６分間置く。細胞を倒立顕微鏡で調べて、全細胞が剥離し浮遊していることを確認する。５ｍｌの新鮮な細胞培養培地を加えて、トリプシンを不活性化する。細胞を１０ｍｌピペットで再度懸濁させる。細胞懸濁液を５０ｍｌのコニカルチューブに移す。細胞を室温で５分間、２３０×ｇで遠心分離し、細胞を５ｍｌの細胞培養培地中に再懸濁させる。細胞の少量のアリコート（１００～２００μｌ）を抜き取り、細胞をＬｉｆｅの細胞計数器で計数する。細胞密度を細胞培養液で１×１０^６細胞／ｍｌに調整する。細胞懸濁液を細胞培養液で１×１０^５細胞／ｍｌに希釈する。２ｍｌの細胞懸濁液を６ウェルプレートの各ウェルに移し、プレートを旋回させて、各ウェルにおける細胞の均一な分布を確保する。細胞を３７℃のインキュベーター中で２日間培養する。

ウイルス力価測定
滴定されるウイルスのストックを氷の上で解凍する。１０^２、１０^３、１０^４、・・・１０^８の段階希釈を調製する。細胞播種した６ウェルプレートの各ウェルを、対応する希
釈で標識する。培地を各ウェルから吸引する。１ｍｌのウイルス希釈液を対応するウェルに移し、プレートを３７℃のインキュベーター中で６０分間インキュベートする。ウイルス接種物を各ウェルから除去する。２ｍｌの新鮮な培地（ＤＭＥＭ中２％ＦＢＳ）を各ウェルに加えて、プレートを３７℃のインキュベーター中で２日間インキュベートする。２日間のインキュベーションの後、２ｍｌのクリスタルバイオレット色溶液を各ウェルに添加する。色素を細胞上に１０分間放置する。各ウェルのプラーク数をカウントする。プラーク形成単位（ｐｆｕ）の計算には以下の式を用いる。

（カウントしたプラーク数）／（ウェルあたりの接種量ｍＬ）×希釈因子＝ｐｆｕ／ｍｌ

実施例３－腸内微生物の消失が腫瘍増殖に及ぼす影響
腫瘍増殖に対する腸内微生物叢の阻害機能性を評価するために、高いビフィズス存在量がより遅い腫瘍進行と相関することを示したアッセイを開発した。Ｃ５７ＢＬ／６マウスを２群に分けた。Ｔ０：抗生物質処置なし、およびＴ１：抗生物質処置済。両群のマウスを４日間ＳＰＦ施設に収容し、２週間抗生物質の有無で処置し、その後１０Ｅ６Ｂ１６－Ｆ１０細胞を皮下接種した。接種１０日後から、腫瘍を毎日測定した。糞便ペレットをＢ１６接種から２週間後に採取した。データによると、腫瘍は一般に、ほとんどのＴ０マウスよりもＴ１マウスでは速く増殖する（図１）。これは、腸内微生物の消失が腫瘍増殖を促進し、さらに微生物が腫瘍進行を抑制することを示唆する。

高処理量１６ＳｒＲＮＡ遺伝子配列決定を用いて、異なる微生物属を評価した。糞便ＤＮＡから微生物ゲノムＤＮＡを精製した。配列決定読取りを処理し、Ｇｒｅｅｎｇｅｎｅｓデータベースにマッピングした。各微生物属の１６ＳｒＲＮＡ遺伝子存在量を評価した。さらに異なる存在量を、ＲプログラムＤＥＳｅｑを用いて分析した。正規化した読取りカウントを用いて、階層クラスター法でヒートマップをプロットした（図２）。図２は、２つの試料が、未処理群Ｔ０において低レベルのビフィズス菌（Ａ９およびＡ２３）を示したということを示す。分析は盲検試料標識で行った。

この腫瘍増殖に関する情報で、試料Ａ９および試料Ａ２３は、例外的な腫瘍増殖を有する２匹のマウスと一致した（図３）。実験はビフィズス菌が腫瘍抑制に役立つことを明らかにした。

実施例４－健常マウスを用いたＰＯＶ８０１およびＰＯＶ６０１の急性毒性の評価

Ａ．実験デザイン
実験デザインを以下の表１に要約する。

Ｂ．手順および評価
被験物質および動物
被験物質として、腫瘍溶解性ウイルス（ＯＶ）が挙げられる：ＰＯＶ－６０１：１×１０^８ＰＦＵ／ｍＬ；ＰＯＶ－８０１：１×１０^８ＰＦＵ／ｍＬ。ＰＯＶ－６０１は、ＣＣＴＣＣ寄託番号Ｖ２０１７１３。ＰＯＶ－８０１は、ＣｈｉｎａＣｅｎｔｅｒｆｏｒ
ＴｙｐｅＣｕｌｔｕｒｅＣｏｌｌｅｃｔｉｏｎ社（中国武漢市、カタログ＃ＧＤＶ１１７）から入手した。４９～６２日齢のＣ５７ＢＬ／６雌マウスを、ＢｅｉｊｉｎｇＶｉｔａｌＲｉｖｅｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＡｎｉｍａｌＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社より購入し、動物のケアと獣医サービス（ＡｎｉｍａｌＣａｒｅａｎｄＶｅｔｅｒｉｎａｒｙＳｅｒｖｉｃｅｓ）標準実施要綱に従い標準化動物施設にて飼育した。

手順
試験物質を、表１に示す用量で皮下または静脈内にて試験動物に注射した。各試験用マウスの体重を測定し、屠殺するまで毎日、全試験用マウスの体重を記録した。死亡率、行動、および体重を毎日評価した。

結果
試験中、ウイルス注射後に死亡したマウスはなかった。電子天秤（Ｍｅｔｔｌｅｒ社製、モデル：ＭＬ１６０２Ｔ）を使用して、ＯＶを注射する１日前に体重を測定し、毎日続けた。試験群間で平均体重に有意差は認められなかった。５％を超える意図しない体重減少が認められた群はなかったため、毒性試験の結果として、ウイルスは宿主に対して毒性を示さなかった（図４Ａ～Ｃ）。

実施例５－マウスメラノーマ腫瘍モデルにおける、ＯＶ／ＧＭ併用療法の抗腫瘍活性の評価

Ａ．実験デザイン
実験デザインを表２に要約する。

Ｂ．手順
被験物質および対象物質
試験－
腫瘍溶解性ウイルス（ＯＶ）：ＰＯＶ－６０１：１×１０^８ＰＦＵ／ｍＬ；ＰＯＶ－８０１：１×１０^８ＰＦＵ／ｍＬ
腸内微生物叢（ＧＭ）：ＰＧＭ－００１：１×１０^９ＣＦＵ／ｍＬ
対照－リン酸緩衝食塩水
ＰＯＶ－６０１はＣＣＴＣＣ寄託番号Ｖ２０１７１３番による。ＰＯＶ－８０１は、ＣｈｉｎａＣｅｎｔｅｒｆｏｒＴｙｐｅＣｕｌｔｕｒｅＣｏｌｌｅｃｔｉｏｎ社（中国武漢市、カタログ＃ＧＤＶ１１７）から得た。ＰＧＭ－００１は、Ｓｅｅｋｉｎｇ
Ｈｅａｌｔｈ社（ワシントン州ベリンガム、米国、ＳＫＵ：ＰＢＩＦＩＤＯ－６０－ＣＡＰＳ）から得た。

Ｃ．動物モデルおよびアッセイ
動物
４９～６２日齢のＣ５７ＢＬ／６雌マウスを、ＢｅｉｊｉｎｇＶｉｔａｌＲｉｖｅｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＡｎｉｍａｌＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社より購入し、動物のケアと獣医サービス（ＡｎｉｍａｌＣａｒｅａｎｄＶｅｔｅｒｉｎａｒｙＳｅｒｖｉｃｅｓ）標準実施要綱に従い標準化動物施設にて飼育した。

マウス皮下メラノーマ腫瘍モデルにおける抗腫瘍活性試験
ＧＭを、被験物質および対照物質に応じた濃度で製剤化し、２００μｌのＧＭをＢ１６－Ｆ１０細胞注射の前日に各試験動物に経口投与し、その後表２に示すスケジュールを続けた。皮下メラノーマモデルを確立するために、接着培養物から採取したマウスＢ１６－Ｆ１０メラノーマ細胞を、２×１０^６／細胞の密度でＰＢＳ中に製剤化し、１００μｌの製剤化細胞を０日目に各試験マウスの右側腹部へ皮下注射すると、皮下腫瘍の増殖が認められた。グループの平均腫瘍体積がおおよそ２０～４０ｍｍ^３（注射後約８～１０日）に達すると、各腫瘍部位に、対照（ＰＢＳ）または検査用ＯＶ（ＰＯＶ－６０１またはＰＯＶ－８０１）のいずれか２０μｌを、被験物質および対照物質に応じた濃度で注射し、その後表２に示すスケジュールにある時点でさらなる注射を行った。全ての試験動物をＢ１６－Ｆ１０注射後２４日目に安楽死させた。腫瘍体積が３５００ｍｍ^３以上の動物は安楽死日前に屠殺した。

評価
予定した屠殺日前に死亡した動物は、評価せずに廃棄した。死亡率を評価するために臨床観察を毎日行った。行動観察を毎日行った。各ＯＶ注射の２４時間後に体重測定を行った。腫瘍量をキャリパーで毎日測定し、式：腫瘍量＝Ｌ×Ｗ^２／２によって計算した。

データ分析
収集した全データ（腫瘍の大きさ、体重、および脾臓の重量）を、Ｅｘｃｅｌで分析した。抗腫瘍効果を、全ての異なる試験群間で比較した。

Ｄ．結果
臨床的日常観察
対照群について、６匹が１５／１６／２１／２２／２３日目に死亡した。ＰＯＶ－８０１のみの群では、２匹の動物が２０／２２日目に死亡した。ＰＯＶ－８０１＋ＰＧＭ－００１群では、２１日目に１匹が死亡していた。肉眼的病変はいずれの動物にも認められなかった。

体重
体重測定を、実験中に５回行えるように、ＯＶ注射前に１回、そして各ＯＶ注射後に４回実施した。試験群間で平均体重に有意差は認められなかった（図５）。

ＰＯＶ－８０１＋ＰＧＭ－００１抗腫瘍効果および分析
図６は、同一遺伝子マウスメラノーマ腫瘍モデルにおけるＯＶ／ＧＭ併用の抗腫瘍活性を示す（合計マウス数：対照、９匹；ＰＯＶ－８０１のみ、１３匹；ＰＯＶ－８０１＋ＰＧＭ－００１、１４匹、平均±標準誤差）。あらかじめ調整した条件としてＰＧＭ－００１を、Ｂ１６－Ｆ１０細胞注射の前日に、ＰＧＭ－００１のみ群およびＰＯＶ－８０１＋ＰＧＭ－００１群に経口投与し、Ｂ１６－Ｆ１０を０日目に各試験動物へ注射した。次いで、腫瘍担持動物を、対照としてリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）で４回皮下（ｓ．ｃ．）処置するか、またはＰＯＶ－８０１のみで４回処置するか、またはＰＯＶ－８０１で４回皮下処置およびＰＧＭ－００１（経口投与）で４回処置した。腫瘍量を、キャリパー（Ｓｔａｎｌｅｙ社製、モデル３６－１１１）を用いて１０日目に測定し、その後は毎日測定した。ＯＶを１１日目に注射し、７２時間間隔で続けた（Ｂ１６－Ｆ１０細胞注入後、１１、１４、１７、２０日目）。Ｂ１６‐Ｆ１０注射後２４日目に動物を安楽死させた。試験期間中、予定された屠殺日の前に死亡した動物は評価せずに廃棄した（図６）。異なる群由来の腫瘍量を比較し、式［腫瘍量＝Ｌ×Ｗ^２／２］によって計算した。棒は各群の平均を表す。

ＰＯＶ－６０１＋ＰＧＭ－００１抗腫瘍効果および分析
図７は、同一遺伝子マウスメラノーマ腫瘍モデルにおけるＯＶ／ＧＭ併用の抗腫瘍活性を示す（合計マウス数：対照、９匹；ＰＯＶ－６０１のみ、１３匹；ＰＯＶ－６０１＋ＰＧＭ－００１、１３匹、平均±標準誤差）。あらかじめ調整した条件としてＰＧＭ－００１を、Ｂ１６－Ｆ１０細胞注射の前日に、ＰＧＭ－００１のみ群およびＰＯＶ－６０１＋ＰＧＭ－００１群に経口投与し、Ｂ１６－Ｆ１０－Ｆ１０を０日目に各試験動物へ注射した。次いで、腫瘍担持動物を、対照としてリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）で４回皮下（ｓ．ｃ．）処置するか、またはＰＯＶ－６０１のみで４回処置するか、またはＰＯＶ－６０１で４回皮下処置およびＰＧＭ－００１で４回処置した。腫瘍量を、キャリパー（Ｓｔａｎｌｅｙ社製、モデル３６－１１１）を用いて１０日目に測定し、その後は毎日測定した。ＯＶを１１日目に注射し、７２時間間隔で続けた（細胞注入後、１１、１４、１７、２０日目）。試験期間中、予定された屠殺日の前に死亡した動物は評価せずに廃棄した（図７）。動物はＢ１６－Ｆ１０注射後２４日目に安楽死させた。異なる群由来の腫瘍量を比較し、式［腫瘍量＝Ｌ×Ｗ^２／２］によって計算した。棒は各群の平均を表す。

抗腫瘍効果
異なる群由来の腫瘍量を比較し、式［平均値（対照群）－平均値（試験群）］／平均値（対照群）×１００％］によって計算した。腫瘍量データを２４日目に収集した。抗腫瘍効果を図８および以下の表３に示す。

実施例６－マウス肺腫瘍モデルにおけるＯＶ／ＧＭ併用療法の抗腫瘍活性の評価

Ａ．試験デザイン
試験デザインを表４に要約する。

Ｂ．手順
被験物質および対象物質
試験－
腫瘍溶解性ウイルス（ＯＶ）：ＰＯＶ－６０１：１×１０^８ＰＦＵ／ｍＬ
腸内微生物叢（ＧＭ）：ＰＧＭ－００１：１×１０^９ＣＦＵ／ｍＬ
対照－リン酸緩衝食塩水
ＰＯＶ－６０１はＣＣＴＣＣ寄託番号Ｖ２０１７１３番による。ＰＯＶ－８０１は、ＣｈｉｎａＣｅｎｔｅｒｆｏｒＴｙｐｅＣｕｌｔｕｒｅＣｏｌｌｅｃｔｉｏｎ社（中国武漢市、カタログ＃ＧＤＶ１１７）から得た。ＰＧＭ－００１は、Ｓｅｅｋｉｎｇ
Ｈｅａｌｔｈ社（ワシントン州ベリンガム、米国、ＳＫＵ：ＰＢＩＦＩＤＯ－６０－ＣＡＰＳ）から得た。

マウス肺腫瘍モデルにおける抗腫瘍活動試験
ＧＭを濃度に応じて製剤化し、Ｂ１６－Ｆ１０細胞注射の前に２００ｕｌのＧＭを各試験動物に週２回経口投与し、その後表４に示すスケジュールを続けた。肺腫瘍モデルを確立するために、接着培養物から採取したマウスＢ１６－Ｆ１０メラノーマ細胞を、３×１０^６／細胞の密度でＰＢＳ中に製剤化し、１００μｌの製剤化細胞を０日目に各試験マウスへ静脈注射した。１０日目または１４日目に肺を切除し、表面転移を計数した。１日目に、各試験動物へ１００μｌの対照（ＰＢＳ）または試験用ＯＶ（ＰＯＶ－６０１）を、
「被験物質および対象物質」の項で示した力価で注射し、その後表４に示すスケジュールにある時点でさらなる注射を行った。１０日目に、対照群から１匹のマウスを安楽死させ、その肺を採取し、腫瘍形成について調べた。肺表面に腫瘍がほとんど形成されていなかった場合、試験動物は全て１４日目に安楽死させる。

評価
予定した屠殺日前に死亡した動物は、評価せずに廃棄した。死亡率を評価するために臨床観察を毎日行った。行動観察を毎日行った。初回のＯＶ注射の前の２回（－９日目および０日目）、および２、５、７、１１、１５日目の５回、体重測定を行った。各試験動物の脾臓を安楽死当日に採取し、電子天秤（Ｍｅｔｔｌｅｒ社製、モデル：ＭＬ１６０２Ｔ）で重量を測定した。肺転移を評価するために，各試験動物由来の肺を安楽死当日に採取し、肺転移（黒色腫瘍斑）を計数した。

データ分析
収集した全データ（肺転移、体重、および脾臓の重量）を、Ｅｘｃｅｌで分析した。抗腫瘍効果を、全ての異なる試験群間で比較した。

Ｄ．結果
臨床的日常観察
対照群について、１匹の動物を１０日目に安楽死させて、腫瘍形成を評価した。充分な腫瘍斑点は観察されなかったため、全ての試験動物を１４日目まで継続して飼育した。

体重
体重測定を、実験中に７回行えるように、ＯＶ注射前に２回（－９日目および０日目）、および２、５、７、１１、１５日目に５回実施した。試験群間で平均体重に有意差は認められなかった（図９）。

脾臓重量
全ての群のマウスを、Ｂ１６－Ｆ１０注射後１４日目に安楽死させた。解剖を通して、全マウスの脾臓を摘出し、それぞれ（グラムで）測定した。試験群間で平均脾臓重量に有意差は認められなかった（図１０）。

ＰＯＶ－６０１＋ＰＧＭ－００１抗腫瘍効果
全ての群のマウスをＢ１６－Ｆ１０注射後１４日目に安楽死させ、肺を採取して冷たいＰＢＳに入れ、肺転移を計数した。各マウスの肺表面上の黒色腫瘍斑点の量を肉眼で計数した。試験中、対照群の動物を１０日目に屠殺し、この動物由来のデータは図１１の分析データに含めなかった。図１１は、対照、ＰＧＭ－００１のみ、ＰＯＶ－６０１のみ、およびＰＯＶ－６０１＋ＰＧＭ－００１処置群の結果を示す。

Claims

がんを治療または予防するための組み合わせ医薬であって：
腸内微生物叢；および、
抗がん活性を有し、選択的に腫瘍細胞を標的にする、腫瘍溶解性ウイルス、を含み、
前記腸内微生物叢は、抗腫瘍反応に対する対象の免疫システムをあらかじめ調整し、前記腫瘍溶解性ウイルスの抗がん活性を増大させるものであり、前記腸内微生物叢がビフィドバクテリウム属であり、および前記腫瘍溶解性ウイルスがオーフウイルス（ｏｒｆｖｉｒｕｓ）である、組み合わせ医薬。
がんを治療または予防するための組み合わせ医薬であって：
腸内微生物叢；および、
抗がん活性を有し、選択的に腫瘍細胞を標的にする、腫瘍溶解性ウイルス、を含み、
前記腸内微生物叢は、抗腫瘍反応に対する対象の免疫システムをあらかじめ調整し、前記腫瘍溶解性ウイルスの抗がん活性を増大させるものであり、前記腸内微生物叢がビフィドバクテリウム属であり、および前記腫瘍溶解性ウイルスがＣＣＴＣＣ寄託番号第Ｖ２０１７１３号として寄託されたＰＯＶ－６０１である、組み合わせ医薬。
がんを治療または予防するための組み合わせ医薬であって：
腸内微生物叢および、
抗がん活性を有し、選択的に腫瘍細胞を標的にする、腫瘍溶解性ウイルス、を含み、
前記腸内微生物叢は、抗腫瘍反応に対する対象の免疫システムをあらかじめ調整し、前記腫瘍溶解性ウイルスの抗がん活性を増大させるものであり、前記腸内微生物叢がビフィドバクテリウム属であり、および前記腫瘍溶解性ウイルスがＰＯＶ－８０１である、組み合わせ医薬。
前記がんが、高度なデノボ突然変異を有するタイプのがんである、請求項１～３のいずれか一項に記載の組み合わせ医薬。
前記がんが、メラノーマ、肺がん、腎臓がん、グリオーマ、トリプルネガティブ乳がん、または腎がんである、請求項１～４のいずれか一項に記載の組み合わせ医薬。
前記腫瘍溶解性ウイルスが、前記腸内微生物叢が投与されてから１週間～２ヶ月後に投与される、請求項１～５のいずれか一項に記載の組み合わせ医薬。
前記腫瘍溶解性ウイルスが、前記腸内微生物叢が投与されてから１ヵ月後に投与される、請求項１～６のいずれか一項に記載の組み合わせ医薬。
前記対象が、哺乳類である、請求項１～７のいずれか一項に記載の組み合わせ医薬。
前記対象が、ヒトである、請求項１～８のいずれか一項に記載の組み合わせ医薬。
前記腸内微生物叢の有効量が、１０^９～１０^１１ｃｆｕである、請求項１～９のいずれか一項に記載の組み合わせ医薬。
前記腫瘍溶解性ウイルスの有効量が、１０^５～１０^１０ｐｆｕである、請求項１～１０のいずれか一項に記載の組み合わせ医薬。
前記腸内微生物叢によって作成した、あらかじめ調整した条件が、前記腫瘍溶解性ウイルスの前記抗がん活性を相乗的に増強する、請求項１～１１のいずれか一項に記載の組み合わせ医薬。
プラットフォームを使用して、対象の特定の腸内微生物叢の存在量に基づく前記がん治療に対して潜在的な優良レスポンダーを同定する、請求項１～１２のいずれか一項に記載の組み合わせ医薬。
前記プラットフォームが、ヒト腸内微生物のゲノム特性の階層クラスター分析を通じて構築され、腫瘍増殖を抑制する前記腸内微生物叢を同定する、請求項１３に記載の組み合わせ医薬。
前記潜在的な優良レスポンダーが、前記対象の特定の腸内微生物叢の存在量に基づく前記腫瘍溶解性ウイルスに対して好ましく応答すると予測される、請求項１４に記載の組み合わせ医薬。
腫瘍溶解性ウイルスの抗がん活性を増大させるための組み合わせ医薬であって：
抗腫瘍反応に対する対象の免疫システムをあらかじめ調整するための腸内微生物叢；および、
腫瘍細胞を選択的に標的化する腫瘍溶解性ウイルス、を含み、
前記腸内微生物叢によって作成した、あらかじめ調整した条件が、前記腫瘍溶解性ウイルスの抗がん活性を増大させるものであり、前記腸内微生物叢がビフィドバクテリウム属であり、および前記腫瘍溶解性ウイルスがオーフウイルス（ｏｒｆｖｉｒｕｓ）である、組み合わせ医薬。
腫瘍溶解性ウイルスの抗がん活性を増大させるための組み合わせ医薬であって：
抗腫瘍反応に対する対象の免疫システムをあらかじめ調整するための腸内微生物叢；および、
腫瘍細胞を選択的に標的化する腫瘍溶解性ウイルス、を含み、
前記腸内微生物叢によって作成した、あらかじめ調整した条件が、前記腫瘍溶解性ウイルスの抗がん活性を増大させるものであり、前記腸内微生物叢がビフィドバクテリウム属であり、および前記腫瘍溶解性ウイルスがＣＣＴＣＣ寄託番号第Ｖ２０１７１３号として寄託されたＰＯＶ－６０１である、組み合わせ医薬。
腫瘍溶解性ウイルスの抗がん活性を増大させるための組み合わせ医薬であって：
抗腫瘍反応に対する対象の免疫システムをあらかじめ調整するための腸内微生物叢；および、
腫瘍細胞を選択的に標的化する腫瘍溶解性ウイルス、を含み、
前記腸内微生物叢によって作成した、あらかじめ調整した条件が、前記腫瘍溶解性ウイルスの抗がん活性を増大させるものであり、前記腸内微生物叢がビフィドバクテリウム属であり、および前記腫瘍溶解性ウイルスがＰＯＶ－８０１である、組み合わせ医薬。
請求項１～１５のいずれか一項に記載の組み合わせ医薬を含む、がんを治療および予防するためのキットであって、
任意で、前記腸内微生物叢および前記腫瘍溶解性ウイルスを投与するための説明書、を含む、キット。