JP6991528B2 - 異種酵素とメソポーラスシリカとの複合体 - Google Patents
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Description
本発明は、複数の異種酵素による共役酵素反応（同時にもしくは順次に共役して行われる酵素反応）の促進技術に関する。更に詳しくは、２種類以上の異種酵素とメソポーラスシリカ（シリカ系ナノ空孔材料）とを複合体化するための最適な条件を見いだしたことによる、酵素反応効率が高い複合体の形成方法、及び当該複合体を用いることによる、高効率な共役酵素反応技術に関するものである。
生体触媒である酵素を利用した低環境負荷型の物質変換プロセスとして、生成物と酵素の分離、酵素の再利用等に向けた様々な固定化支持体の研究・開発が国内外で精力的に進められている。また、固定化酵素を利用した反応系は、医薬品等の機能性化学品の高効率生産の他、バイオセンサーやバイオ燃料電池等への利用法が提案されている（非特許文献１）。
従来の固定化酵素に関する基礎研究では主に１種類の酵素が使用されてきたが、近年、２種類以上の酵素を用いた複雑な反応経路、すなわち、生体模倣反応を利用した反応システムの構築が、バイオ技術分野における触媒反応等の化学反応プロセスへの応用に期待されている（非特許文献２、３）。
しかし、複数の酵素を同時に利用する場合、酵素間の凝集体形成により酵素が失活し、反応が阻害されることが多い。
しかし、複数の酵素を同時に利用する場合、酵素間の凝集体形成により酵素が失活し、反応が阻害されることが多い。
そこで、真の生体模倣反応を実現するための技術的ブレーク・スルーとして、本発明者らは、シリカ系ナノ空孔材料（メソポーラスシリカ）の規則性細孔の内部に酵素やタンパク質を格納することで複数の異種酵素・タンパク質の高次構造を安定に保持した状態で高密度に配列化することによって、多段階反応の効率化を図る手法を開発している（特許文献１、非特許文献４，５）。しかし、複数の異種酵素の固定化に適用した場合の反応率の向上が大きな課題であった。
本発明者らは、最近本手法を、巨大なサブユニット構造を有するグルコースオキシダーゼ（二量体、分子量：約１９０ｋＤａ）とカタラーゼ（四量体、分子量：約２４０ｋＤａ）とのグルコースの酸化反応に適用したところ、カタラーゼによる中間副反応物（過酸化水素）の分解効率が高まったことが見いだされ、共役酵素反応における異種酵素の集積効果は確認できた（非特許文献６）。しかし、グルコースオキシダーゼによる最終目的物であるグルコノラクトンの生産収率は、未固定の遊離酵素と比較すると極めて低いものであった。このように、特に巨大なサブユニット構造又は多量体構造をとる２種以上の異種の酵素又はタンパク質の場合、メソポーラスシリカの細孔内部に高密度に安定的に配列化して複数の協調的な共役酵素反応を同時に起こさせることは実用的なレベルに達するまでには至っていない。
本発明者らは、最近本手法を、巨大なサブユニット構造を有するグルコースオキシダーゼ（二量体、分子量：約１９０ｋＤａ）とカタラーゼ（四量体、分子量：約２４０ｋＤａ）とのグルコースの酸化反応に適用したところ、カタラーゼによる中間副反応物（過酸化水素）の分解効率が高まったことが見いだされ、共役酵素反応における異種酵素の集積効果は確認できた（非特許文献６）。しかし、グルコースオキシダーゼによる最終目的物であるグルコノラクトンの生産収率は、未固定の遊離酵素と比較すると極めて低いものであった。このように、特に巨大なサブユニット構造又は多量体構造をとる２種以上の異種の酵素又はタンパク質の場合、メソポーラスシリカの細孔内部に高密度に安定的に配列化して複数の協調的な共役酵素反応を同時に起こさせることは実用的なレベルに達するまでには至っていない。
一方、異種酵素利用における反応の一つに補酵素（酵素駆動のエネルギー源）の再生系が挙げられ、例えば、カルボニル還元酵素とグルコース脱水素酵素の組み合わせによる光学活性アルコール合成の高効率化の可能性が示唆されている（非特許文献７）。
この補酵素再生系は、医農薬中間体などの高付加価値化学品の高生産プロセスへの応用が検討されているが、共役的な酵素反応における２種類の酵素間の凝集体形成に起因した酵素活性の低下が、補酵素の再生率、更には、目的物質の生産性に影響すること等の課題が残されており、実用化に至っていない。
この補酵素再生系は、医農薬中間体などの高付加価値化学品の高生産プロセスへの応用が検討されているが、共役的な酵素反応における２種類の酵素間の凝集体形成に起因した酵素活性の低下が、補酵素の再生率、更には、目的物質の生産性に影響すること等の課題が残されており、実用化に至っていない。
したがって、複数の異種酵素を用いた共役酵素反応において、異種酵素間の凝集を防止して、固定化支持体に固定化した状態の酵素の活性低下を極力抑制し、高効率で安定的に共役酵素反応を行わせることができる、異種酵素の集積反応場の開発・提供が強く要請されていた。
Carlsson, N., et al., Adv. Colloid Interface Sci. 205, 339-360（2014）
Fu, J., et al., J. Am. Chem. Soc. 134, 5516－5519（2012）
Ngo, T. A., et al., J. Am. Chem. Soc. 138, 3012-3021（2016）
Matsuura, S., et al., Bioconjugate Chem. 19, 10-14（2008）
Matsuura, S., et al., Chem. Commun. 46, 2941-2943（2010）
松浦俊一ら、メソポーラス材料を足場とした異種酵素の集積反応場の構築、第６６回日本生物工学会大会講演要旨集（２０１４年９月９日）
Zhou, X., et al., Process Biochem. 50, 1807-1813（2015）
本発明は、本発明者らが以前に開発したメソポーラスシリカ（シリカ系ナノ空孔材料）へ複数の異種酵素・タンパク質を複合化させる手法（特許文献１、非特許文献４、５、６）を改良して、メソポーラスシリカの細孔内へ共役酵素反応に関わる複数の異種酵素（酵素Ａ及び酵素Ｂとも称する。なお、「酵素Ａ」及び「酵素Ｂ」には特別な意味はなく、両者が異種酵素であることと共に、本発明の対象の共役酵素反応に関与する２種以上の異種酵素のうちの主要な酵素であることを示す用語として用いている。例えば還元酵素および脱水素酵素。）を安定に配置・集積化し、酵素機能を連動して発現させ共役酵素反応を起こさせることによって、高度な生体模倣反応による新しい反応場・化学反応システムを提供するものである。
具体的には、複数の異種酵素である酵素Ａ及び酵素Ｂ（例えばアゾ還元酵素とグルコース脱水素酵素）と、メソポーラスシリカとの複合体を用いた共役酵素反応において、共役酵素反応環境を整えることで、共役酵素反応中に双方の酵素と相互作用する各種反応基質（例えばメチルレッドおよびグルコース）および補酵素（例えば還元型ＮＡＤ（Ｐ）Ｈ及び酸化型ＮＡＤ（Ｐ）＋）に影響を与えることなく、異種酵素の非特異的相互作用による凝集体形成等に起因する酵素の活性低下を極力抑制し、かつ高い反応効率を達成できる共役酵素反応システムを提供することにある。あわせて、当該共役酵素反応システムに用いるための改良された異種酵素－メソポーラスシリカ複合体の製造方法も提供する。
また、さらに、酵素周辺における反応基質濃度の至適化を高めた共役酵素反応技術を提供し、高効率で安定な酵素反応場を提供することも本発明の目的とする。
具体的には、複数の異種酵素である酵素Ａ及び酵素Ｂ（例えばアゾ還元酵素とグルコース脱水素酵素）と、メソポーラスシリカとの複合体を用いた共役酵素反応において、共役酵素反応環境を整えることで、共役酵素反応中に双方の酵素と相互作用する各種反応基質（例えばメチルレッドおよびグルコース）および補酵素（例えば還元型ＮＡＤ（Ｐ）Ｈ及び酸化型ＮＡＤ（Ｐ）＋）に影響を与えることなく、異種酵素の非特異的相互作用による凝集体形成等に起因する酵素の活性低下を極力抑制し、かつ高い反応効率を達成できる共役酵素反応システムを提供することにある。あわせて、当該共役酵素反応システムに用いるための改良された異種酵素－メソポーラスシリカ複合体の製造方法も提供する。
また、さらに、酵素周辺における反応基質濃度の至適化を高めた共役酵素反応技術を提供し、高効率で安定な酵素反応場を提供することも本発明の目的とする。
本発明者らは、以前開発した異種タンパク質とメソポーラスシリカとの複合体の製造方法（特許文献１、非特許文献４、５、６）の手法を共役酵素反応に関わる複数の異種酵素に適用し、メソポーラスシリカの細孔内部に近接した状態に固定化し、異種酵素同士の共役酵素反応を効率的に起こさせることを想起した。
しかし、一般に有用な共役酵素反応に関わる異種酵素は、巨大なサブユニット構造又は多量体構造をとっているため、それぞれのサイズが大きく、異種酵素を細孔内に近接した状態に固定化することには困難が予想された。実際に共役的なカスケード反応によりグルコノラクトンを合成する多量体のグルコースオキシダーゼとカタラーゼを順次細孔へ固定化させた非特許文献６では、両酵素の集積化には成功し中間副反応物（過酸化水素）の分解効率は向上できたものの、最終目的物（グルコノラクトン）の生産収率は遊離酵素の場合よりも低い結果となっていた。
しかし、一般に有用な共役酵素反応に関わる異種酵素は、巨大なサブユニット構造又は多量体構造をとっているため、それぞれのサイズが大きく、異種酵素を細孔内に近接した状態に固定化することには困難が予想された。実際に共役的なカスケード反応によりグルコノラクトンを合成する多量体のグルコースオキシダーゼとカタラーゼを順次細孔へ固定化させた非特許文献６では、両酵素の集積化には成功し中間副反応物（過酸化水素）の分解効率は向上できたものの、最終目的物（グルコノラクトン）の生産収率は遊離酵素の場合よりも低い結果となっていた。
そこで、本発明者らは、共役酵素反応に関与する異種酵素を固定化するメソポーラスシリカを最適化することを考え、種々の細孔径を有する各種メソポーラスシリカを成形し、モデル的な共役酵素反応として補酵素再生系においてＮＡＤＨを利用する共役酵素反応である難分解性化学染料（アゾ染料：メチルレッド）の分解反応に適用することを試みた。
アゾ染料の分解には、物質変換反応を触媒するアゾ還元酵素（ＡｚｏＲ）と本酵素を持続的に駆動させるための補酵素（酵素のエネルギー源）の再生を担うグルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）との組み合わせによる異種酵素の集積反応場を構築し、高効率かつ持続的な分解反応を起こさせることが必要となる。すなわち、メソポーラスシリカの細孔内部に二量体のＡｚｏＲと四量体のＧＤＨとを立体構造を保持したまま近接した状態で安定的に固定化することで、ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体を形成させなくてはならない。
当該物質変換反応のみならず、本発明が対象とする共役酵素反応に関与する異種酵素は、サブユニット構造などで多量体化したバルキーな酵素が多いので、前記四量体のＧＤＨがメソポーラスシリカ細孔内のＡｚｏＲと近接した位置に高次構造を保持したまま安定かつ高密度に固定化できるか否かを検討することは、他の共役酵素反応に関与する異種酵素の安定な固定化の優れたモデルとなると考えられる。
アゾ染料の分解には、物質変換反応を触媒するアゾ還元酵素（ＡｚｏＲ）と本酵素を持続的に駆動させるための補酵素（酵素のエネルギー源）の再生を担うグルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）との組み合わせによる異種酵素の集積反応場を構築し、高効率かつ持続的な分解反応を起こさせることが必要となる。すなわち、メソポーラスシリカの細孔内部に二量体のＡｚｏＲと四量体のＧＤＨとを立体構造を保持したまま近接した状態で安定的に固定化することで、ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体を形成させなくてはならない。
当該物質変換反応のみならず、本発明が対象とする共役酵素反応に関与する異種酵素は、サブユニット構造などで多量体化したバルキーな酵素が多いので、前記四量体のＧＤＨがメソポーラスシリカ細孔内のＡｚｏＲと近接した位置に高次構造を保持したまま安定かつ高密度に固定化できるか否かを検討することは、他の共役酵素反応に関与する異種酵素の安定な固定化の優れたモデルとなると考えられる。
ＡｚｏＲ及びＧＤＨを固定化するメソポーラスシリカとしては、ＦＳＭ型、ＳＢＡ型及びＣ-ｍｅｓｏ型を選択し、８ｎｍ付近の細孔径と共に、３～５ｎｍ程度の小さい細孔径も検討した。
小さい細孔径を試すに当たり、二量体のＡｚｏＲはともかく、四量体の巨大な酵素であるＧＤＨの場合は、細孔内に立体構造を保持したまま吸着できるか、またＧＤＨが細孔を塞いでＡｚｏＲが細孔内部に吸着されるのを妨げるのではないか、仮に細孔内部に吸着できない場合は酵素の凝集失活は抑制できない、などが強く懸念された。しかし、実際には、驚くべきことに、一般的な異種タンパク質の固定に用いるメソポーラスシリカの細孔径（１０ｎｍ以上）と比較して極めて小さい細孔径のＳＢＡ５．４又はＣ２２-ｍｅｓｏ３．３を用いた場合に、凝集失活は起こらず、９６．４％又は１００％という高い脱色率（メチルレッドの分解率）を示した。
この結果は、メソポーラスシリカの小さな細孔内の入り口付近にＡｚｏＲ及びＧＤＨが近接して固定化できたため、反応基質との接触頻度が向上し、かつ異種酵素の凝集失活の抑制効果が維持できたと考えられる。
小さい細孔径を試すに当たり、二量体のＡｚｏＲはともかく、四量体の巨大な酵素であるＧＤＨの場合は、細孔内に立体構造を保持したまま吸着できるか、またＧＤＨが細孔を塞いでＡｚｏＲが細孔内部に吸着されるのを妨げるのではないか、仮に細孔内部に吸着できない場合は酵素の凝集失活は抑制できない、などが強く懸念された。しかし、実際には、驚くべきことに、一般的な異種タンパク質の固定に用いるメソポーラスシリカの細孔径（１０ｎｍ以上）と比較して極めて小さい細孔径のＳＢＡ５．４又はＣ２２-ｍｅｓｏ３．３を用いた場合に、凝集失活は起こらず、９６．４％又は１００％という高い脱色率（メチルレッドの分解率）を示した。
この結果は、メソポーラスシリカの小さな細孔内の入り口付近にＡｚｏＲ及びＧＤＨが近接して固定化できたため、反応基質との接触頻度が向上し、かつ異種酵素の凝集失活の抑制効果が維持できたと考えられる。
しかし、得られたＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体を洗浄してしまうと、急激にＧＤＨが除去され、補酵素再生能は失われてしまう結果を得た。
このことから、ＧＤＨとメソポーラスシリカとの結合性は十分ではないと考えられたので、さらに最適な細孔径の範囲、及びメソポーラスシリカの種類、及び固定化時の最適ｐＨ条件の検討を行った。
その結果、細孔径２～９ｎｍのメソポーラスシリカ、特に細孔径４～９ｎｍのＳＢＡ及び細孔径２～６ｎｍのＣ-ｍｅｓｏを用い、かつ固定化の際のｐＨ条件としてｐＨ５～８を選択することで、洗浄してもＧＤＨによる補酵素再生系能力を保持できることが確認できた。
すなわち、共役酵素反応に関与する異種酵素を固定化するメソポーラスシリカとして、細孔径２～９ｎｍのメソポーラスシリカ、特に細孔径４～９ｎｍのＳＢＡ及び細孔径２～６ｎｍのＣ-ｍｅｓｏを用いることで、また、異種酵素をｐＨ５～８の範囲で固定化することにより、異種酵素間の凝集反応を抑え、かつ反応効率の高い異種酵素－メソポーラスシリカ複合体が提供できた。
以上の知見を得たことで、本発明を完成することができた。
さらに、異種酵素の組み合わせとして、カルボニル還元酵素（ＲＣＲ）及びソルビトール脱水素酵素（ＳＤＨ）の組み合わせに適用した場合においても、異種酵素と細孔径２～９ｎｍのメソポーラスシリカ（ＳＢＡ、ＦＳＭ）との複合体を用いて共役酵素反応を起こさせたところ、同様に異種酵素の凝集体形成等に起因する酵素活性の低下を抑制し、かつ反応性を増強できることと共に、繰り返し耐久性（再利用性）も高いことが確認できた。
このことから、ＧＤＨとメソポーラスシリカとの結合性は十分ではないと考えられたので、さらに最適な細孔径の範囲、及びメソポーラスシリカの種類、及び固定化時の最適ｐＨ条件の検討を行った。
その結果、細孔径２～９ｎｍのメソポーラスシリカ、特に細孔径４～９ｎｍのＳＢＡ及び細孔径２～６ｎｍのＣ-ｍｅｓｏを用い、かつ固定化の際のｐＨ条件としてｐＨ５～８を選択することで、洗浄してもＧＤＨによる補酵素再生系能力を保持できることが確認できた。
すなわち、共役酵素反応に関与する異種酵素を固定化するメソポーラスシリカとして、細孔径２～９ｎｍのメソポーラスシリカ、特に細孔径４～９ｎｍのＳＢＡ及び細孔径２～６ｎｍのＣ-ｍｅｓｏを用いることで、また、異種酵素をｐＨ５～８の範囲で固定化することにより、異種酵素間の凝集反応を抑え、かつ反応効率の高い異種酵素－メソポーラスシリカ複合体が提供できた。
以上の知見を得たことで、本発明を完成することができた。
さらに、異種酵素の組み合わせとして、カルボニル還元酵素（ＲＣＲ）及びソルビトール脱水素酵素（ＳＤＨ）の組み合わせに適用した場合においても、異種酵素と細孔径２～９ｎｍのメソポーラスシリカ（ＳＢＡ、ＦＳＭ）との複合体を用いて共役酵素反応を起こさせたところ、同様に異種酵素の凝集体形成等に起因する酵素活性の低下を抑制し、かつ反応性を増強できることと共に、繰り返し耐久性（再利用性）も高いことが確認できた。
すなわち、本発明は以下の通りである。
〔１〕 共役酵素反応に関わる複数の異種酵素のうち少なくとも酵素Ａ及び酵素Ｂがメソポーラスシリカに固定化されている複合体であって、
メソポーラスシリカの中心細孔直径が２～９ｎｍであることを特徴とする、
酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体。
〔２〕 メソポーラスシリカが、「ＳＢＡ」、「ＦＳＭ」及び「Ｃ-ｍｅｓｏ」から選択されたいずれか１種のメソポーラスシリカであって、
ここで、「ＳＢＡ」の中心細孔直径は４～９ｎｍであり、「ＦＳＭ」の中心細孔直径は２～９ｎｍであり、「Ｃ-ｍｅｓｏ」の中心細孔直径は２～６ｎｍである、
前記〔１〕に記載の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体。
〔３〕 共役酵素反応が、補酵素再生系を利用する酸化還元反応であり、酵素Ａ及び酵素Ｂが、還元酵素及び脱水素酵素である、前記〔１〕又は〔２〕に記載の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体。
〔４〕 補酵素再生系がＮＡＤＨ又はＮＡＤＰＨを利用する系であって、
還元酵素がアゾ還元酵素（ＡｚｏＲ）、カルボニル還元酵素（ＣＲ）、イミン還元酵素（ＩＲ）、エノン還元酵素（ＥＲ）、アルドース還元酵素（ＡＲ）、キシロース還元酵素（ＸＲ）、ＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）から選択されたいずれか１つの酵素であり、
脱水素酵素がグルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）、グルコース-６-リン酸脱水素酵素（Ｇ６ＰＤＨ）、フルクトース脱水素酵素（ＦＤＨ）、アルコール脱水素酵素（ＡＤＨ）、ギ酸脱水素酵素（ＦＤＨ）、乳酸脱水素酵素（ＬＤＨ）、ソルビトール脱水素酵素（ＳＤＨ）、グリセロールリン酸脱水素酵素（ＧＰＤＨ）、リンゴ酸脱水素酵素（ＭＤＨ）、キシリトール脱水素酵素（ＸＤＨ）から選択されたいずれか１つの酵素である、前記〔３〕に記載の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体。
〔５〕 還元酵素及び脱水素酵素の組み合せがアゾ還元酵素（ＡｚｏＲ）及びグルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）である、前記〔４〕に記載の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体。
〔６〕 還元酵素及び脱水素酵素の組み合せがカルボニル還元酵素（ＣＲ）及びグルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）又はソルビトール脱水素酵素（ＳＤＨ）である、前記〔４〕に記載の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体。
〔７〕 共役酵素反応がＡＴＰ再生系を利用する反応であり、酵素Ａ及び酵素Ｂの組み合わせが、ＡＴＰ要求性酵素及びキナーゼであって、
ＡＴＰ要求性酵素が、リガーゼ、プロテアーゼ、ヌクレアーゼ、キナーゼ、ルシフェラーゼから選択されたいずれか１つの酵素であり、
キナーゼが、クレアチンキナーゼ（ＣＫ）、ピルビン酸キナーゼ（ＰＫ）、酢酸キナーゼ（ＡＫ）、ポリリン酸キナーゼ（ＰＰＫ）、アデニル酸キナーゼ（ＡＫ）から選択されたいずれか１つの酵素である、
前記〔１〕又は〔２〕に記載の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体。
〔８〕 共役酵素反応がカスケード反応であり、酵素Ａ及び酵素Ｂの組み合わせが、以下の（ａ）～（ｉ）から選択されたいずれか一組の組合せである、前記〔１〕又は〔２〕に記載の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体；
（ａ）ピルビン酸キナーゼ（ＰＫ）と乳酸脱水素酵素（ＬＤＨ）、
（ｂ）アルドース還元酵素（ＡＲ）とソルビトール脱水素酵素（ＳＤＨ）、
（ｃ）グリセロールキナーゼ（ＧＫ）とグリセロールリン酸脱水素酵素（ＧＰＤＨ）、
（ｄ）ピルビン酸脱炭酸酵素とアルコール脱水素酵素（ＡＤＨ）、
（ｅ）ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ（ＰＥＰＣ）とリンゴ酸脱水素酵素（ＭＤＨ）、
（ｆ）キシロース還元酵素（ＸＲ）とキシリトール脱水素酵素（ＸＤＨ）、
（ｇ）乳酸脱水素酵素（ＬＤＨ）とピルビン酸オキシダーゼ、乳酸オキシダーゼから選択されたいずれか１つの酸化酵素、
（ｈ）グルタミナーゼとグルタミン酸脱炭酸酵素（ＧＡＤ）、
（ｉ）グルタミン酸脱炭酸酵素（ＧＡＤ）とγ-アミノブチルアルデヒド脱水素酵素（ＡＢＡＬＤＨ）、及び
（ｊ）グルコースオキシダーゼ、ピルビン酸オキシダーゼ、乳酸オキシダーゼ、コレステロールオキシダーゼ、グルタミン酸オキシダーゼから選択されたいずれか１つの酸化酵素とペルオキシダーゼ及びカタラーゼから選択されたいずれか１つのヒドロペルオキシダーゼ。
〔９〕 共役酵素反応に関わる複数の異種酵素のうち酵素Ａ及び酵素Ｂのそれぞれが中心細孔直径２～９ｎｍのメソポーラスシリカに固定化された酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を製造する方法であって、
酵素Ａ及び酵素Ｂを、ｐＨ５～８に調整した緩衝液中でメソポーラスシリカに吸着させる工程を含む、方法。
〔１０〕 さらに、固定化終了後のメソポーラスシリカをｐＨ５～８に調整した緩衝液で複数回洗浄する工程を含む、前記〔９〕に記載の方法。
〔１１〕 メソポーラスシリカが、「ＳＢＡ」、「ＦＳＭ」及び「Ｃ-ｍｅｓｏ」から選択されたいずれか１種のメソポーラスシリカであって、
ここで、「ＳＢＡ」の中心細孔直径は４～９ｎｍであり、「ＦＳＭ」の中心細孔直径は２～９ｎｍであり、「Ｃ-ｍｅｓｏ」の中心細孔直径は２～６ｎｍである、
前記〔９〕又は〔１０〕に記載の方法。
〔１２〕 共役酵素反応に関わる複数の異種酵素のうち酵素Ａ及び酵素Ｂのそれぞれがメソポーラスシリカに固定化された酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を用いた共役酵素反応方法であって、下記（１）及び（２）の工程を含む方法；
（１）酵素Ａ及び酵素ＢをメソポーラスシリカにｐＨ５～８に調整した緩衝液中で固定化する工程、
（２）工程（１）で得られた酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を含むｐＨ５～８の緩衝液中に、酵素Ａ及び／又は酵素Ｂの基質を添加するか、又は
工程（１）で得られた酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を、酵素Ａ及び／又は酵素Ｂの基質を含むｐＨ５～８の緩衝液中に添加して、酵素Ａ及び酵素Ｂが関わる共役的な酵素反応を行う工程。
〔１３〕 共役酵素反応に関わる複数の異種酵素のうち酵素Ａ及び酵素Ｂのそれぞれがメソポーラスシリカに固定化された酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を用いた共役酵素反応方法であって、下記（１）～（３）の工程を含む方法；
（１）酵素Ａ及び酵素ＢをメソポーラスシリカにｐＨ５～８に調整した緩衝液中で固定化する工程、
（２）工程（１）で得られた酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体をｐＨ５～８の緩衝液で洗浄する工程、
（３）工程（２）で得られた洗浄後の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を、酵素Ａ及び／又は酵素Ｂの基質を含む反応液中で、酵素Ａ及び酵素Ｂが関わる共役的な酵素反応を行う工程。
〔１４〕 共役酵素反応方法が、反応基質から有用物質を製造する方法である、前記〔１２〕又は〔１３〕に記載の方法。
〔１５〕 共役酵素反応方法が、環境中に存在する反応基質となる環境汚染物質を分解する方法である、前記〔１２〕又は〔１３〕に記載の方法。
〔１６〕 共役酵素反応方法が、被検試料中に存在するか又は存在する可能性のある反応基質を検出又は定量する方法である、前記〔１２〕又は〔１３〕に記載の方法。
〔１７〕 前記〔１〕～〔８〕のいずれかに記載の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を含むことを特徴とする、酵素Ａ及び酵素Ｂが関わる共役酵素反応用キット、センサー又は装置。
〔１８〕 共役酵素反応用キット、センサー又は装置が、反応基質から有用物質を製造するためのものであることを特徴とする、前記〔１７〕に記載のキット、センサー又は装置。
〔１９〕 カルボニル還元酵素（ＣＲ）と脱水素酵素との共役酵素反応を利用した光学活性アルコールを製造するためのキット又はバイオリアクターである、前記〔１８〕に記載のキット、センサー又は装置。
〔２０〕 共役酵素反応用キット、センサー又は装置が、被検試料中に存在する可能性のある反応基質又は共役酵素反応後の産物を検出又は定量するためのものであることを特徴とする、前記〔１７〕に記載のキット、センサー又は装置。
〔２１〕 グルコースオキシダーゼ、ピルビン酸オキシダーゼ、乳酸オキシダーゼ、コレステロールオキシダーゼ又はグルタミン酸オキシダーゼとペルオキシダーゼとの共役酵素反応を利用した被検試料中のグルコース、ピルビン酸、乳酸、コレステロール、又はグルタミン酸を検出又は定量するための測定キットである、前記〔２０〕に記載のキット、センサー又は装置。
〔２２〕 グルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）、グルコース－６－リン酸脱水素酵素（Ｇ６ＰＤＨ）、フルクトース脱水素酵素（ＦＤＨ）、アルコール脱水素酵素（ＡＤＨ）、ギ酸脱水素酵素（ＦＤＨ）、乳酸脱水素酵素（ＬＤＨ）、ソルビトール脱水素酵素（ＳＤＨ）、グリセロールリン酸脱水素酵素（ＧＰＤＨ）、リンゴ酸脱水素酵素（ＭＤＨ）又はキシリトール脱水素酵素（ＸＤＨ）とＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）との補酵素再生系の共役酵素反応を利用した、被検試料中のグルコース、グルコース－６－リン酸、フルクトース、アルコール、ギ酸、乳酸、ソルビトール、グリセロールリン酸、リンゴ酸又はキシリトールを検出又は定量するための測定キットである、前記〔２０〕に記載のキット、センサー又は装置。
〔２３〕 ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ（ＰＥＰＣ）とリンゴ酸脱水素酵素（ＭＤＨ）とのカスケード反応を利用して、被検試料中の二酸化炭素濃度を測定するための測定キットである、前記〔２０〕に記載のキット、センサー又は装置。
〔２４〕 共役酵素反応用キット又は装置が、環境中に存在する反応基質となる環境汚染物質を分解するためのものであることを特徴とする、前記〔１７〕に記載のキット、センサー又は装置。
〔２５〕
アゾ還元酵素（ＡｚｏＲ）とグルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）とのＮＡＤ又はＮＡＤＨ補酵素再生系を利用した、環境中の難分解性化学染料分解のための装置である、前記〔２４〕に記載のキット、センサー又は装置。
〔１〕 共役酵素反応に関わる複数の異種酵素のうち少なくとも酵素Ａ及び酵素Ｂがメソポーラスシリカに固定化されている複合体であって、
メソポーラスシリカの中心細孔直径が２～９ｎｍであることを特徴とする、
酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体。
〔２〕 メソポーラスシリカが、「ＳＢＡ」、「ＦＳＭ」及び「Ｃ-ｍｅｓｏ」から選択されたいずれか１種のメソポーラスシリカであって、
ここで、「ＳＢＡ」の中心細孔直径は４～９ｎｍであり、「ＦＳＭ」の中心細孔直径は２～９ｎｍであり、「Ｃ-ｍｅｓｏ」の中心細孔直径は２～６ｎｍである、
前記〔１〕に記載の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体。
〔３〕 共役酵素反応が、補酵素再生系を利用する酸化還元反応であり、酵素Ａ及び酵素Ｂが、還元酵素及び脱水素酵素である、前記〔１〕又は〔２〕に記載の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体。
〔４〕 補酵素再生系がＮＡＤＨ又はＮＡＤＰＨを利用する系であって、
還元酵素がアゾ還元酵素（ＡｚｏＲ）、カルボニル還元酵素（ＣＲ）、イミン還元酵素（ＩＲ）、エノン還元酵素（ＥＲ）、アルドース還元酵素（ＡＲ）、キシロース還元酵素（ＸＲ）、ＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）から選択されたいずれか１つの酵素であり、
脱水素酵素がグルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）、グルコース-６-リン酸脱水素酵素（Ｇ６ＰＤＨ）、フルクトース脱水素酵素（ＦＤＨ）、アルコール脱水素酵素（ＡＤＨ）、ギ酸脱水素酵素（ＦＤＨ）、乳酸脱水素酵素（ＬＤＨ）、ソルビトール脱水素酵素（ＳＤＨ）、グリセロールリン酸脱水素酵素（ＧＰＤＨ）、リンゴ酸脱水素酵素（ＭＤＨ）、キシリトール脱水素酵素（ＸＤＨ）から選択されたいずれか１つの酵素である、前記〔３〕に記載の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体。
〔５〕 還元酵素及び脱水素酵素の組み合せがアゾ還元酵素（ＡｚｏＲ）及びグルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）である、前記〔４〕に記載の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体。
〔６〕 還元酵素及び脱水素酵素の組み合せがカルボニル還元酵素（ＣＲ）及びグルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）又はソルビトール脱水素酵素（ＳＤＨ）である、前記〔４〕に記載の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体。
〔７〕 共役酵素反応がＡＴＰ再生系を利用する反応であり、酵素Ａ及び酵素Ｂの組み合わせが、ＡＴＰ要求性酵素及びキナーゼであって、
ＡＴＰ要求性酵素が、リガーゼ、プロテアーゼ、ヌクレアーゼ、キナーゼ、ルシフェラーゼから選択されたいずれか１つの酵素であり、
キナーゼが、クレアチンキナーゼ（ＣＫ）、ピルビン酸キナーゼ（ＰＫ）、酢酸キナーゼ（ＡＫ）、ポリリン酸キナーゼ（ＰＰＫ）、アデニル酸キナーゼ（ＡＫ）から選択されたいずれか１つの酵素である、
前記〔１〕又は〔２〕に記載の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体。
〔８〕 共役酵素反応がカスケード反応であり、酵素Ａ及び酵素Ｂの組み合わせが、以下の（ａ）～（ｉ）から選択されたいずれか一組の組合せである、前記〔１〕又は〔２〕に記載の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体；
（ａ）ピルビン酸キナーゼ（ＰＫ）と乳酸脱水素酵素（ＬＤＨ）、
（ｂ）アルドース還元酵素（ＡＲ）とソルビトール脱水素酵素（ＳＤＨ）、
（ｃ）グリセロールキナーゼ（ＧＫ）とグリセロールリン酸脱水素酵素（ＧＰＤＨ）、
（ｄ）ピルビン酸脱炭酸酵素とアルコール脱水素酵素（ＡＤＨ）、
（ｅ）ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ（ＰＥＰＣ）とリンゴ酸脱水素酵素（ＭＤＨ）、
（ｆ）キシロース還元酵素（ＸＲ）とキシリトール脱水素酵素（ＸＤＨ）、
（ｇ）乳酸脱水素酵素（ＬＤＨ）とピルビン酸オキシダーゼ、乳酸オキシダーゼから選択されたいずれか１つの酸化酵素、
（ｈ）グルタミナーゼとグルタミン酸脱炭酸酵素（ＧＡＤ）、
（ｉ）グルタミン酸脱炭酸酵素（ＧＡＤ）とγ-アミノブチルアルデヒド脱水素酵素（ＡＢＡＬＤＨ）、及び
（ｊ）グルコースオキシダーゼ、ピルビン酸オキシダーゼ、乳酸オキシダーゼ、コレステロールオキシダーゼ、グルタミン酸オキシダーゼから選択されたいずれか１つの酸化酵素とペルオキシダーゼ及びカタラーゼから選択されたいずれか１つのヒドロペルオキシダーゼ。
〔９〕 共役酵素反応に関わる複数の異種酵素のうち酵素Ａ及び酵素Ｂのそれぞれが中心細孔直径２～９ｎｍのメソポーラスシリカに固定化された酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を製造する方法であって、
酵素Ａ及び酵素Ｂを、ｐＨ５～８に調整した緩衝液中でメソポーラスシリカに吸着させる工程を含む、方法。
〔１０〕 さらに、固定化終了後のメソポーラスシリカをｐＨ５～８に調整した緩衝液で複数回洗浄する工程を含む、前記〔９〕に記載の方法。
〔１１〕 メソポーラスシリカが、「ＳＢＡ」、「ＦＳＭ」及び「Ｃ-ｍｅｓｏ」から選択されたいずれか１種のメソポーラスシリカであって、
ここで、「ＳＢＡ」の中心細孔直径は４～９ｎｍであり、「ＦＳＭ」の中心細孔直径は２～９ｎｍであり、「Ｃ-ｍｅｓｏ」の中心細孔直径は２～６ｎｍである、
前記〔９〕又は〔１０〕に記載の方法。
〔１２〕 共役酵素反応に関わる複数の異種酵素のうち酵素Ａ及び酵素Ｂのそれぞれがメソポーラスシリカに固定化された酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を用いた共役酵素反応方法であって、下記（１）及び（２）の工程を含む方法；
（１）酵素Ａ及び酵素ＢをメソポーラスシリカにｐＨ５～８に調整した緩衝液中で固定化する工程、
（２）工程（１）で得られた酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を含むｐＨ５～８の緩衝液中に、酵素Ａ及び／又は酵素Ｂの基質を添加するか、又は
工程（１）で得られた酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を、酵素Ａ及び／又は酵素Ｂの基質を含むｐＨ５～８の緩衝液中に添加して、酵素Ａ及び酵素Ｂが関わる共役的な酵素反応を行う工程。
〔１３〕 共役酵素反応に関わる複数の異種酵素のうち酵素Ａ及び酵素Ｂのそれぞれがメソポーラスシリカに固定化された酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を用いた共役酵素反応方法であって、下記（１）～（３）の工程を含む方法；
（１）酵素Ａ及び酵素ＢをメソポーラスシリカにｐＨ５～８に調整した緩衝液中で固定化する工程、
（２）工程（１）で得られた酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体をｐＨ５～８の緩衝液で洗浄する工程、
（３）工程（２）で得られた洗浄後の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を、酵素Ａ及び／又は酵素Ｂの基質を含む反応液中で、酵素Ａ及び酵素Ｂが関わる共役的な酵素反応を行う工程。
〔１４〕 共役酵素反応方法が、反応基質から有用物質を製造する方法である、前記〔１２〕又は〔１３〕に記載の方法。
〔１５〕 共役酵素反応方法が、環境中に存在する反応基質となる環境汚染物質を分解する方法である、前記〔１２〕又は〔１３〕に記載の方法。
〔１６〕 共役酵素反応方法が、被検試料中に存在するか又は存在する可能性のある反応基質を検出又は定量する方法である、前記〔１２〕又は〔１３〕に記載の方法。
〔１７〕 前記〔１〕～〔８〕のいずれかに記載の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を含むことを特徴とする、酵素Ａ及び酵素Ｂが関わる共役酵素反応用キット、センサー又は装置。
〔１８〕 共役酵素反応用キット、センサー又は装置が、反応基質から有用物質を製造するためのものであることを特徴とする、前記〔１７〕に記載のキット、センサー又は装置。
〔１９〕 カルボニル還元酵素（ＣＲ）と脱水素酵素との共役酵素反応を利用した光学活性アルコールを製造するためのキット又はバイオリアクターである、前記〔１８〕に記載のキット、センサー又は装置。
〔２０〕 共役酵素反応用キット、センサー又は装置が、被検試料中に存在する可能性のある反応基質又は共役酵素反応後の産物を検出又は定量するためのものであることを特徴とする、前記〔１７〕に記載のキット、センサー又は装置。
〔２１〕 グルコースオキシダーゼ、ピルビン酸オキシダーゼ、乳酸オキシダーゼ、コレステロールオキシダーゼ又はグルタミン酸オキシダーゼとペルオキシダーゼとの共役酵素反応を利用した被検試料中のグルコース、ピルビン酸、乳酸、コレステロール、又はグルタミン酸を検出又は定量するための測定キットである、前記〔２０〕に記載のキット、センサー又は装置。
〔２２〕 グルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）、グルコース－６－リン酸脱水素酵素（Ｇ６ＰＤＨ）、フルクトース脱水素酵素（ＦＤＨ）、アルコール脱水素酵素（ＡＤＨ）、ギ酸脱水素酵素（ＦＤＨ）、乳酸脱水素酵素（ＬＤＨ）、ソルビトール脱水素酵素（ＳＤＨ）、グリセロールリン酸脱水素酵素（ＧＰＤＨ）、リンゴ酸脱水素酵素（ＭＤＨ）又はキシリトール脱水素酵素（ＸＤＨ）とＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）との補酵素再生系の共役酵素反応を利用した、被検試料中のグルコース、グルコース－６－リン酸、フルクトース、アルコール、ギ酸、乳酸、ソルビトール、グリセロールリン酸、リンゴ酸又はキシリトールを検出又は定量するための測定キットである、前記〔２０〕に記載のキット、センサー又は装置。
〔２３〕 ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ（ＰＥＰＣ）とリンゴ酸脱水素酵素（ＭＤＨ）とのカスケード反応を利用して、被検試料中の二酸化炭素濃度を測定するための測定キットである、前記〔２０〕に記載のキット、センサー又は装置。
〔２４〕 共役酵素反応用キット又は装置が、環境中に存在する反応基質となる環境汚染物質を分解するためのものであることを特徴とする、前記〔１７〕に記載のキット、センサー又は装置。
〔２５〕
アゾ還元酵素（ＡｚｏＲ）とグルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）とのＮＡＤ又はＮＡＤＨ補酵素再生系を利用した、環境中の難分解性化学染料分解のための装置である、前記〔２４〕に記載のキット、センサー又は装置。
本発明では、補酵素再生系などの共役酵素反応に関わる複数の異種酵素をメソポーラスシリカに固定化する際のメソポーラスシリカの細孔径範囲を２～９ｎｍに設定することで、異種酵素の凝集体形成等に起因する酵素の活性低下を抑制し、かつ高い反応効率を達成できた。さらに、その細孔径範囲内であれば、繰り返し耐久性（再利用性）も高いことが確認できた。
特にキット、センサーなどに利用する場合には、反応効率の増大と共に、異種酵素間の凝集失活が抑えられるため酵素投入量を極力抑えることができコストが低減できる。
特にキット、センサーなどに利用する場合には、反応効率の増大と共に、異種酵素間の凝集失活が抑えられるため酵素投入量を極力抑えることができコストが低減できる。
１．本発明で用いるメソポーラスシリカについて
（１－１）「メソポーラスシリカ（シリカ系ナノ空孔材料）」の種類
酵素の固定化用担体として用いられる「メソポーラスシリカ（シリカ系ナノ空孔材料）」は、二酸化ケイ素（シリカ）を材質とする、均一な細孔を持つ多孔質材料であって、一般的には、細孔の中心細孔直径が２～５０ｎｍ（メソ孔：ＩＵＰＡＣ）であり、全細孔容積が０．１～３．０ｍＬ／ｇで、比表面積が２００～１５００ｍ２／ｇである。メソポーラスシリカ内の細孔を規則的に形成させるための一般的合成方法には、（ａ）液晶の鋳型法と（ｂ）シート変形法の２種類あり、（ａ）では、界面活性剤をシリカ又はケイ酸ソーダと混和して縮合による自己組織化させ、焼成により界面活性剤を除去するのに対して、（ｂ）では界面活性剤を層状のカネマイト（ＮａＨＳｉ２Ｏ３・３Ｈ２Ｏ）に添加してイオン交換によりシート変形を起こさせてハニカム構造を形成させ界面活性剤を焼成除去する方法がある。（ａ）の方法で得られる典型的なものとして、「ＭＣＭ（ＭＣＭ-４１など）」、「ＳＢＡ-１５（中心細孔直径：４～３０ｎｍ）」などがあり、（ｂ）の方法で
得られる典型的なものとして、「ＦＳＭ-１６およびＦＳＭ-２２など（中心細孔直径：２～１２ｎｍ）」などがある。両法で得られる「メソポーラスシリカ」は、いずれも通常ハニカム構造の「ヘキサゴナル」型結晶構造を有している。（ａ）の方法で得られる「ＭＣＭ」及び「ＳＢＡ」などでは、「キュービック」型の結晶構造を採ることもある（ＭＣＭ－４８、ＳＢＡ-１６など）。
また、「Ｃ１６-ｍｅｓｏ（中心細孔直径：２～３ｎｍ）」又は「Ｃ２２-ｍｅｓｏ（中心細孔直径：３～１２ｎｍ）」などの「Ｃ-ｍｅｓｏ」も「ＦＳＭ」とはシリカ源が異なるが、（ｂ）の方法で製造される。
「ＦＳＭ」、「ＳＢＡ」及び「Ｃ-ｍｅｓｏ」などは、その合成過程の温度を調整したり、界面活性剤と共に膨張剤を混和して細孔径を拡大させるなど添加剤の配合量を調整することにより、所望の細孔径のメソポーラスシリカを得ることができる。
本発明において用いられる「メソポーラスシリカ」は、これらの各種の規則的な細孔構造を有する「メソポーラスシリカ」のうちでも、「ＦＳＭ」型、「ＳＢＡ」型及び「Ｃ-ｍｅｓｏ」型のメソポーラスシリカが好ましい。
（１－１）「メソポーラスシリカ（シリカ系ナノ空孔材料）」の種類
酵素の固定化用担体として用いられる「メソポーラスシリカ（シリカ系ナノ空孔材料）」は、二酸化ケイ素（シリカ）を材質とする、均一な細孔を持つ多孔質材料であって、一般的には、細孔の中心細孔直径が２～５０ｎｍ（メソ孔：ＩＵＰＡＣ）であり、全細孔容積が０．１～３．０ｍＬ／ｇで、比表面積が２００～１５００ｍ２／ｇである。メソポーラスシリカ内の細孔を規則的に形成させるための一般的合成方法には、（ａ）液晶の鋳型法と（ｂ）シート変形法の２種類あり、（ａ）では、界面活性剤をシリカ又はケイ酸ソーダと混和して縮合による自己組織化させ、焼成により界面活性剤を除去するのに対して、（ｂ）では界面活性剤を層状のカネマイト（ＮａＨＳｉ２Ｏ３・３Ｈ２Ｏ）に添加してイオン交換によりシート変形を起こさせてハニカム構造を形成させ界面活性剤を焼成除去する方法がある。（ａ）の方法で得られる典型的なものとして、「ＭＣＭ（ＭＣＭ-４１など）」、「ＳＢＡ-１５（中心細孔直径：４～３０ｎｍ）」などがあり、（ｂ）の方法で
得られる典型的なものとして、「ＦＳＭ-１６およびＦＳＭ-２２など（中心細孔直径：２～１２ｎｍ）」などがある。両法で得られる「メソポーラスシリカ」は、いずれも通常ハニカム構造の「ヘキサゴナル」型結晶構造を有している。（ａ）の方法で得られる「ＭＣＭ」及び「ＳＢＡ」などでは、「キュービック」型の結晶構造を採ることもある（ＭＣＭ－４８、ＳＢＡ-１６など）。
また、「Ｃ１６-ｍｅｓｏ（中心細孔直径：２～３ｎｍ）」又は「Ｃ２２-ｍｅｓｏ（中心細孔直径：３～１２ｎｍ）」などの「Ｃ-ｍｅｓｏ」も「ＦＳＭ」とはシリカ源が異なるが、（ｂ）の方法で製造される。
「ＦＳＭ」、「ＳＢＡ」及び「Ｃ-ｍｅｓｏ」などは、その合成過程の温度を調整したり、界面活性剤と共に膨張剤を混和して細孔径を拡大させるなど添加剤の配合量を調整することにより、所望の細孔径のメソポーラスシリカを得ることができる。
本発明において用いられる「メソポーラスシリカ」は、これらの各種の規則的な細孔構造を有する「メソポーラスシリカ」のうちでも、「ＦＳＭ」型、「ＳＢＡ」型及び「Ｃ-ｍｅｓｏ」型のメソポーラスシリカが好ましい。
（１－２）本発明のメソポーラスシリカの製造方法
本発明の「メソポーラスシリカ」は特許文献１又は非特許文献４，５等の記載の製造方法により製造することができる。本発明の実施例では、典型的な規則的な細孔構造を有する「メソポーラスシリカ」のうち、上記（ｂ）のタイプの典型的な「ＦＳＭ」、及び「Ｃ-ｍｅｓｏ」、上記（ａ）のタイプの典型的な「ＳＢＡ」を用いたが、これらに限定されるものではない。
具体的には、「ＳＢＡ」型メソポーラスシリカは、Ｚｈａｏらの方法（D. Zhao et al., Science, vol.279, pp.548-552 (1998)）の記載に従い、非イオン性界面活性剤を鋳型として用い、オルトケイ酸テトラエチルをシリカ源とした、酸性溶液でのシリカの脱水重縮合反応を行い、焼成により界面活性剤を除去する方法により得られる。
「ＳＢＡ」型の細孔径は、非イオン性界面活性剤とオルトケイ酸テトラエチルとの脱水重縮合反応時の温度条件を変化させることで、適宜の細孔径に調整できる。例えば、本発明の製造例１では、合成温度、３５℃、１００℃、１３０℃とすることで、中心細孔直径が５．４ｎｍ，８．１ｎｍ，１０．６ｎｍの「ＳＢＡ」を得ている。
本発明の「メソポーラスシリカ」は特許文献１又は非特許文献４，５等の記載の製造方法により製造することができる。本発明の実施例では、典型的な規則的な細孔構造を有する「メソポーラスシリカ」のうち、上記（ｂ）のタイプの典型的な「ＦＳＭ」、及び「Ｃ-ｍｅｓｏ」、上記（ａ）のタイプの典型的な「ＳＢＡ」を用いたが、これらに限定されるものではない。
具体的には、「ＳＢＡ」型メソポーラスシリカは、Ｚｈａｏらの方法（D. Zhao et al., Science, vol.279, pp.548-552 (1998)）の記載に従い、非イオン性界面活性剤を鋳型として用い、オルトケイ酸テトラエチルをシリカ源とした、酸性溶液でのシリカの脱水重縮合反応を行い、焼成により界面活性剤を除去する方法により得られる。
「ＳＢＡ」型の細孔径は、非イオン性界面活性剤とオルトケイ酸テトラエチルとの脱水重縮合反応時の温度条件を変化させることで、適宜の細孔径に調整できる。例えば、本発明の製造例１では、合成温度、３５℃、１００℃、１３０℃とすることで、中心細孔直径が５．４ｎｍ，８．１ｎｍ，１０．６ｎｍの「ＳＢＡ」を得ている。
また、本発明の「ＦＳＭ」型メソポーラスシリカは、稲垣らの方法（S. Inagaki et al., J. Chem. Soc. Chem. Commun., pp.680-682 (1993)）、及び卜部らの方法（Y. Urabe et al., ChemBioChem, vol.8, pp.668-674 (2007)を参考にして、合成した。具体的には、カチオン性界面活性剤を鋳型として用い、層状ケイ酸塩であるカネマイトをシリカ源とした、弱アルカリ性溶液でのシリカの脱水重縮合反応を行い、焼成により界面活性剤を除去する方法により得た。
「ＦＳＭ」型の細孔径は、鋳型となるカチオン性界面活性剤の炭素鎖の長さを調整するか、適宜膨張剤を配合することで調整できる。例えば、本発明の製造例１では、カチオン性界面活性剤としてヘキサデシルトリメチルアンモニウムクロライド、ドコシルトリメチルアンモニウムクロライド、又はドコシルトリメチルアンモニウムクロライドと１，３，５－トリイソプロピルベンゼン（膨張剤）を用いたことで、中心細孔直径が２．６ｎｍ、４．２ｎｍ，８．０ｎｍの「ＦＳＭ」を得ている。
「Ｃ-ｍｅｓｏ」型メソポーラスシリカは、上記稲垣ら又は卜部らの方法による「ＦＳＭ」型メソポーラスシリカ製造法において、シリカ源のカネマイトを高アルミニウム含有層状ケイ酸塩（Ａｌ-Ｋ-ＬＤＳ）とすることでも製造できるが、本実施例では池田らの方法（T. Ikeda et al., Microporous Mesoporous Mater., vol.191, pp.38-47 (2014)）に記載の手法に従って合成した。具体的には、カチオン性界面活性剤を鋳型として用い、弱アルカリ性溶液で高アルミニウム含有層状ケイ酸塩の脱水重縮合反応を行い、焼成により界面活性剤を除去する方法を用いた。
「Ｃ-ｍｅｓｏ」型の細孔径は、鋳型となるカチオン性界面活性剤の炭素鎖の長さを調整するか、適宜膨張剤を配合することで調整できる。例えば、本発明の製造例１では、カチオン性界面活性剤としてヘキサデシルトリメチルアンモニウムクロライド、ドコシルトリメチルアンモニウムクロライド、又はドコシルトリメチルアンモニウムクロライドと１，３，５－トリイソプロピルベンゼン（膨張剤）を用いたことで、中心細孔直径が２．７ｎｍ、３．３ｎｍ，６．１ｎｍの「Ｃ-ｍｅｓｏ」を得ている。
「ＦＳＭ」型の細孔径は、鋳型となるカチオン性界面活性剤の炭素鎖の長さを調整するか、適宜膨張剤を配合することで調整できる。例えば、本発明の製造例１では、カチオン性界面活性剤としてヘキサデシルトリメチルアンモニウムクロライド、ドコシルトリメチルアンモニウムクロライド、又はドコシルトリメチルアンモニウムクロライドと１，３，５－トリイソプロピルベンゼン（膨張剤）を用いたことで、中心細孔直径が２．６ｎｍ、４．２ｎｍ，８．０ｎｍの「ＦＳＭ」を得ている。
「Ｃ-ｍｅｓｏ」型メソポーラスシリカは、上記稲垣ら又は卜部らの方法による「ＦＳＭ」型メソポーラスシリカ製造法において、シリカ源のカネマイトを高アルミニウム含有層状ケイ酸塩（Ａｌ-Ｋ-ＬＤＳ）とすることでも製造できるが、本実施例では池田らの方法（T. Ikeda et al., Microporous Mesoporous Mater., vol.191, pp.38-47 (2014)）に記載の手法に従って合成した。具体的には、カチオン性界面活性剤を鋳型として用い、弱アルカリ性溶液で高アルミニウム含有層状ケイ酸塩の脱水重縮合反応を行い、焼成により界面活性剤を除去する方法を用いた。
「Ｃ-ｍｅｓｏ」型の細孔径は、鋳型となるカチオン性界面活性剤の炭素鎖の長さを調整するか、適宜膨張剤を配合することで調整できる。例えば、本発明の製造例１では、カチオン性界面活性剤としてヘキサデシルトリメチルアンモニウムクロライド、ドコシルトリメチルアンモニウムクロライド、又はドコシルトリメチルアンモニウムクロライドと１，３，５－トリイソプロピルベンゼン（膨張剤）を用いたことで、中心細孔直径が２．７ｎｍ、３．３ｎｍ，６．１ｎｍの「Ｃ-ｍｅｓｏ」を得ている。
本発明の実施の態様（製造例１）の手法では、微粒子の状態の「メソポーラスシリカ（シリカ系ナノ空孔材料）」が得られるため、「メソポーラスシリカ粒子」又は「シリカ微粒子粉末」などということもある。
しかし、本発明のメソポーラスシリカは、用途に合わせて膜状、中空糸状又はペレット状など既知の成型法により適宜の形状に成形して用いても、微粒子状のメソポーラスシリカ粒子と同様の効果を発揮できる。メソポーラスシリカの膜状成型法としては片岡らの方法（S. Kataoka et al., Appl. Catal. A-Gen., vol.342, pp.107-112 (2008)）など、中空糸状成型法としてはRownaghiらの方法（A. A. Rownaghi et al., ChemSusChem, vol.8, pp.3439-3450 (2015)）など、また、ペレット状成型法としてはMaheshwariらの方法（H. Maheshwari et al., J. Mater. Sci., vol.51, pp.4470-4480 (2016) (2016)）などが適用できる。
しかし、本発明のメソポーラスシリカは、用途に合わせて膜状、中空糸状又はペレット状など既知の成型法により適宜の形状に成形して用いても、微粒子状のメソポーラスシリカ粒子と同様の効果を発揮できる。メソポーラスシリカの膜状成型法としては片岡らの方法（S. Kataoka et al., Appl. Catal. A-Gen., vol.342, pp.107-112 (2008)）など、中空糸状成型法としてはRownaghiらの方法（A. A. Rownaghi et al., ChemSusChem, vol.8, pp.3439-3450 (2015)）など、また、ペレット状成型法としてはMaheshwariらの方法（H. Maheshwari et al., J. Mater. Sci., vol.51, pp.4470-4480 (2016) (2016)）などが適用できる。
（１－３）メソポーラスシリカの細孔径について
（１－１）で述べたように、一般的なメソポーラスシリカの細孔径は、中心細孔直径で２～５０ｎｍ（メソ孔）であるが、本発明で用いるメソポーラスシリカの場合は、特に細孔径が小さいもの（中心細孔直径２～９ｎｍ、より好ましくは２～８ｎｍ）が好ましく、「ＳＢＡ」型では中心細孔直径が４～９ｎｍ、好ましくは４～６ｎｍであり、「ＦＳＭ」型では中心細孔直径が２～９ｎｍ、好ましくは２～５ｎｍであり、「Ｃ-ｍｅｓｏ」型では２～６ｎｍ、好ましくは２～４ｎｍである。「ＳＢＡ」、「ＦＳＭ」及び「Ｃ-ｍｅｓｏ」細孔径は、（１－２）で述べたように、膨張剤の量や加熱温度を調整することで適宜調整できる。
（１－１）で述べたように、一般的なメソポーラスシリカの細孔径は、中心細孔直径で２～５０ｎｍ（メソ孔）であるが、本発明で用いるメソポーラスシリカの場合は、特に細孔径が小さいもの（中心細孔直径２～９ｎｍ、より好ましくは２～８ｎｍ）が好ましく、「ＳＢＡ」型では中心細孔直径が４～９ｎｍ、好ましくは４～６ｎｍであり、「ＦＳＭ」型では中心細孔直径が２～９ｎｍ、好ましくは２～５ｎｍであり、「Ｃ-ｍｅｓｏ」型では２～６ｎｍ、好ましくは２～４ｎｍである。「ＳＢＡ」、「ＦＳＭ」及び「Ｃ-ｍｅｓｏ」細孔径は、（１－２）で述べたように、膨張剤の量や加熱温度を調整することで適宜調整できる。
２．本発明が対象とする複数の異種酵素（酵素Ａと酵素Ｂ）の組合せ
本発明の共役酵素反応に関わる複数の酵素のうち、少なくとも２種類の異種酵素（酵素Ａと酵素Ｂ）は、いずれもが細孔径の小さいメソポーラスシリカ（中心細孔直径２～９ｎｍ）の細孔内に互いに近接して固定化されており、両酵素の酵素反応が補酵素再生系などにより供給されたエネルギーを利用して協調的かつ持続的に効率の良い共役酵素反応を行う。
特に、本発明の異種酵素－メソポーラスシリカ複合体の場合は、固定化時の最適なｐＨ範囲が中性付近（ｐＨ５～８）にあるため、同様な中性付近（ｐＨ５～８）のｐＨ範囲に至適ｐＨ範囲を有する共役酵素反応に関わる異種酵素の組合せが好ましい。当該異種酵素の場合は、固定化後に遠心分離工程、洗浄工程を経ずにそのまま反応液中に添加することができる。反対に、固定化に用いた緩衝液（ｐＨ５～８）中に直接反応基質を添加して、直ちに共役酵素反応を開始することもできる。
なお、異種酵素が関与する共役酵素反応の至適ｐＨ範囲がアルカリ側もしくは酸性側に偏る場合には異種酵素－メソポーラスシリカ複合体を固定化に用いた緩衝液と同じｐＨ値（ｐＨ５～８）の緩衝液で洗浄する工程を設ければよい。
本発明の共役酵素反応に関わる複数の酵素のうち、少なくとも２種類の異種酵素（酵素Ａと酵素Ｂ）は、いずれもが細孔径の小さいメソポーラスシリカ（中心細孔直径２～９ｎｍ）の細孔内に互いに近接して固定化されており、両酵素の酵素反応が補酵素再生系などにより供給されたエネルギーを利用して協調的かつ持続的に効率の良い共役酵素反応を行う。
特に、本発明の異種酵素－メソポーラスシリカ複合体の場合は、固定化時の最適なｐＨ範囲が中性付近（ｐＨ５～８）にあるため、同様な中性付近（ｐＨ５～８）のｐＨ範囲に至適ｐＨ範囲を有する共役酵素反応に関わる異種酵素の組合せが好ましい。当該異種酵素の場合は、固定化後に遠心分離工程、洗浄工程を経ずにそのまま反応液中に添加することができる。反対に、固定化に用いた緩衝液（ｐＨ５～８）中に直接反応基質を添加して、直ちに共役酵素反応を開始することもできる。
なお、異種酵素が関与する共役酵素反応の至適ｐＨ範囲がアルカリ側もしくは酸性側に偏る場合には異種酵素－メソポーラスシリカ複合体を固定化に用いた緩衝液と同じｐＨ値（ｐＨ５～８）の緩衝液で洗浄する工程を設ければよい。
本発明で用いることができる典型的な異種酵素の組み合わせとしては、補酵素再生系を利用する還元酵素及び脱水素酵素が挙げられる。例えば、補酵素ＮＡＤＨあるいはＮＡＤＰＨを利用した還元酵素（アゾ還元酵素（ＡｚｏＲ）、カルボニル還元酵素（ＣＲ）、イミン還元酵素（ＩＲ）、エノン還元酵素（ＥＲ）、アルドース還元酵素（ＡＲ）、キシロース還元酵素（ＸＲ）、ＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）等）及び脱水素酵素（グルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）、グルコース-６-リン酸脱水素酵素（Ｇ６ＰＤＨ）、フルクトース脱水素酵素（ＦＤＨ）、アルコール脱水素酵素（ＡＤＨ）、ギ酸脱水素酵素（ＦＤＨ）、乳酸脱水素酵素（ＬＤＨ）、ソルビトール脱水素酵素（ＳＤＨ）、グリセロールリン酸脱水素酵素（ＧＰＤＨ）、リンゴ酸脱水素酵素（ＭＤＨ）、キシリトール脱水素酵素（ＸＤＨ）等）による物質変換反応が挙げられる。
また、前記のＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）及び脱水素酵素（グルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）、グルコース-６-リン酸脱水素酵素（Ｇ６ＰＤＨ）等）の利用による、脱水素酵素の反応基質の高感度定量を目的とした測定キット、バイオセンサーおよびバイオ燃料電池のアノード電極への電子供給、等が挙げられる。
また、前記のＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）及び脱水素酵素（グルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）、グルコース-６-リン酸脱水素酵素（Ｇ６ＰＤＨ）等）の利用による、脱水素酵素の反応基質の高感度定量を目的とした測定キット、バイオセンサーおよびバイオ燃料電池のアノード電極への電子供給、等が挙げられる。
その他、ピルビン酸キナーゼ（ＰＫ）及び乳酸脱水素酵素（ＬＤＨ）、アルドース還元酵素（ＡＲ）及びソルビトール脱水素酵素（ＳＤＨ）、グリセロールキナーゼ（ＧＫ）及びグリセロールリン酸脱水素酵素（ＧＰＤＨ）、ピルビン酸脱炭酸酵素及びアルコール脱水素酵素（ＡＤＨ）、又、ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ（ＰＥＰＣ）及びリンゴ酸脱水素酵素（ＭＤＨ）等によるカスケード反応、キシロース還元酵素（ＸＲ）及びキシリトール脱水素酵素（ＸＤＨ）を組み合わせた補酵素再生系によるカスケード反応、また、補酵素ＡＴＰを利用したＡＴＰ要求性酵素（リガーゼ、プロテアーゼ、ヌクレアーゼ、キナーゼ、ルシフェラーゼ等）による物質変換反応において、キナーゼ（クレアチンキナーゼ（ＣＫ）、ピルビン酸キナーゼ（ＰＫ）、酢酸キナーゼ（ＡＫ）、ポリリン酸キナーゼ（ＰＰＫ）、アデニル酸キナーゼ（ＡＫ）等）によるＡＴＰ再生系を利用する方法等が挙げられる。
なお、本発明が適用可能な異種酵素による共役酵素反応系は、典型的には補酵素再生系と呼ばれる系であるがそれには限られない。２種以上の酵素のそれぞれ関わる反応系が同時にもしくは順次に共役して行われる酵素反応（共役酵素反応）であればよく、グルコースオキシダーゼとカタラーゼによるカスケード反応（非特許文献６）の他、乳酸又はピルビン酸を反応基質として用いる乳酸脱水素酵素（ＬＤＨ）、ピルビン酸オキシダーゼ（あるいは、乳酸オキシダーゼ）、ペルオキシダーゼの３酵素のカスケード反応による乳酸又はピルビン酸の定量方法や、グルタミンを反応基質として用いるグルタミナーゼ、グルタミン酸脱炭酸酵素（ＧＡＤ）、γ-アミノブチルアルデヒド脱水素酵素（ＡＢＡＬＤＨ）の３酵素のカスケード反応により、茶豆特有の香り成分（２-アセチル-１-プロリン）の原料となる「４-アミノブタナール」の生成反応なども含まれる。
２．異種酵素のメソポーラスシリカ細孔内への固定化
（２－１）異種酵素とメソポーラスシリカとの複合体
本発明は、メソポーラスシリカのうちでも中心細孔直径２～９ｎｍという細孔径の小さなメソポーラスシリカ（好ましくは「ＳＢＡ」、「ＦＳＭ」又は「Ｃ-ｍｅｓｏ」）の細孔内部に、共役酵素反応に関わる少なくとも二種類の異種酵素を備えた異種酵素内包複合体（「酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体」ともいう。）であって、両酵素はメソポーラスシリカの細孔内に吸着され、分散した状態で細孔内に安定に固定され、かつ当該各酵素が補酵素再生系などを介した高効率のエネルギーの受け渡しや電子伝達が可能なように近接した状態にあることを特徴とする。
ここで、各酵素について細孔内で近接した状態にあるとは、異種酵素同士の間に介在する補酵素（酸化型及び還元型）などを高効率に受け渡せる程度に近接していることを指し、具体的には１～１０ｎｍ程度の距離である。
（２－１）異種酵素とメソポーラスシリカとの複合体
本発明は、メソポーラスシリカのうちでも中心細孔直径２～９ｎｍという細孔径の小さなメソポーラスシリカ（好ましくは「ＳＢＡ」、「ＦＳＭ」又は「Ｃ-ｍｅｓｏ」）の細孔内部に、共役酵素反応に関わる少なくとも二種類の異種酵素を備えた異種酵素内包複合体（「酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体」ともいう。）であって、両酵素はメソポーラスシリカの細孔内に吸着され、分散した状態で細孔内に安定に固定され、かつ当該各酵素が補酵素再生系などを介した高効率のエネルギーの受け渡しや電子伝達が可能なように近接した状態にあることを特徴とする。
ここで、各酵素について細孔内で近接した状態にあるとは、異種酵素同士の間に介在する補酵素（酸化型及び還元型）などを高効率に受け渡せる程度に近接していることを指し、具体的には１～１０ｎｍ程度の距離である。
（２－２）基本的な固定化方法
典型的な固定化方法の実験手順の１例を図３（ｂ）に示したが、複数の異種酵素は、同時に固定化してもよいが、逐次的に固定化することもできるので、この手順には限定されない。
異種酵素の混合酵素溶液を、Ｔｒｉｓ-ＨＣｌなどの緩衝液で中性付近（ｐＨ ５～８）に調整し、予めマイクロチューブに量り取った微粒子粉末状の細孔径の小さなメソポーラスシリカと共に、一定温度（４～４０℃）にて一晩（１２～１８時間）穏やかに混和することで、異種酵素がメソポーラスシリカの細孔内部で近接した状態に安定して固定化できる。なお、逐次的な固定化の場合は、この工程を繰り返せばよい。
また、本発明の対象とする共役酵素反応が、３種類以上の異種酵素が関わるカスケード反応である場合、全ての酵素を同一のメソポーラスシリカに固定化してもよいが、カスケード反応の最初の２工程に関わる酵素のみを同一のメソポーラスシリカに固定化し、続く工程に関与する酵素は遊離状態で系に添加するか、又は別のメソポーラスシリカに固定化することが好ましい。
典型的な固定化方法の実験手順の１例を図３（ｂ）に示したが、複数の異種酵素は、同時に固定化してもよいが、逐次的に固定化することもできるので、この手順には限定されない。
異種酵素の混合酵素溶液を、Ｔｒｉｓ-ＨＣｌなどの緩衝液で中性付近（ｐＨ ５～８）に調整し、予めマイクロチューブに量り取った微粒子粉末状の細孔径の小さなメソポーラスシリカと共に、一定温度（４～４０℃）にて一晩（１２～１８時間）穏やかに混和することで、異種酵素がメソポーラスシリカの細孔内部で近接した状態に安定して固定化できる。なお、逐次的な固定化の場合は、この工程を繰り返せばよい。
また、本発明の対象とする共役酵素反応が、３種類以上の異種酵素が関わるカスケード反応である場合、全ての酵素を同一のメソポーラスシリカに固定化してもよいが、カスケード反応の最初の２工程に関わる酵素のみを同一のメソポーラスシリカに固定化し、続く工程に関与する酵素は遊離状態で系に添加するか、又は別のメソポーラスシリカに固定化することが好ましい。
その他の固定化方法としては、異種酵素と反応基質等を含んだ緩衝液を調製し、メソポーラスシリカと共に一定温度（４～４０℃）にて数分間から数時間混和することで、異種酵素をメソポーラスシリカの細孔内に固定化することができる。その際、酵素溶液から補酵素等のその他の反応因子の一部を抜いておくことで反応開始を抑制した状態で酵素の固定化を完了させ、次に、この反応因子を添加することによって反応を開始させる。
（２－３）固定化のための最適化条件
本発明のメソポーラスシリカ（中心細孔直径２～９ｎｍ）への異種酵素の固定化に際しては、酵素混合溶液を作成するための緩衝液のｐＨ範囲としては、ｐＨ５～８の範囲が好ましく用いられる。特にｐＨ６～７．５の中性付近が好ましい。
ｐＨ５～８のｐＨ範囲に調整するためには、ＭＥＳ-ＮａＯＨ（ｐＨ６）又はＴｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ７～９）緩衝液などを配合することで調整できる。
また、本発明の異種酵素－メソポーラスシリカ複合体の製造においては、固定化条件が中性付近で行われるため、一般には共役酵素反応条件の妨げにならないことが多く、洗浄工程を省略することができる。
しかし、異種酵素が関与する共役酵素反応の至適ｐＨ範囲がアルカリ側もしくは酸性側に偏る場合などは異種酵素－メソポーラスシリカ複合体を洗浄する工程が必要となる。
その場合の洗浄液としても、同様に、ｐＨ５～８の範囲の洗浄液が好ましく用いられる。特にｐＨ６～７．５の中性付近が好ましい。ｐＨ調整方法は、前記酵素混合溶液の場合と同様である。
本発明のメソポーラスシリカ（中心細孔直径２～９ｎｍ）への異種酵素の固定化に際しては、酵素混合溶液を作成するための緩衝液のｐＨ範囲としては、ｐＨ５～８の範囲が好ましく用いられる。特にｐＨ６～７．５の中性付近が好ましい。
ｐＨ５～８のｐＨ範囲に調整するためには、ＭＥＳ-ＮａＯＨ（ｐＨ６）又はＴｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ７～９）緩衝液などを配合することで調整できる。
また、本発明の異種酵素－メソポーラスシリカ複合体の製造においては、固定化条件が中性付近で行われるため、一般には共役酵素反応条件の妨げにならないことが多く、洗浄工程を省略することができる。
しかし、異種酵素が関与する共役酵素反応の至適ｐＨ範囲がアルカリ側もしくは酸性側に偏る場合などは異種酵素－メソポーラスシリカ複合体を洗浄する工程が必要となる。
その場合の洗浄液としても、同様に、ｐＨ５～８の範囲の洗浄液が好ましく用いられる。特にｐＨ６～７．５の中性付近が好ましい。ｐＨ調整方法は、前記酵素混合溶液の場合と同様である。
３．異種酵素の共役酵素反応効率の評価方法
本発明の異種酵素が関わる共役酵素反応が補酵素再生系であれば、補酵素の消費率、再生率を反応溶液中の吸光度の変化を観察することで評価できる。また、本発明で製造されるか、分解される物質の変換効率に着目して、評価することもできる。
本発明の実施態様では、典型的な例として、ＡｚｏＲとＧＤＨとの補酵素ＮＡＤＨ系での分解反応を評価するため、アゾ染料（メチルレッド）の分解効率、又はＮＡＤＨの消費率及び再生率を、反応溶液中の吸光度（測定波長：４３０ｎｍ、又は３４０ｎｍ）を経時的に測定することで評価した。
また、本発明においては、（Ｒ）-体の光学活性アルコールに還元することが可能なＮＡＤＨ依存型カルボニル還元酵素（ＲＣＲ）とＧＤＨ又はＳＤＨとを組み合わせ、２-ヒドロキシアセトフェノンを反応基質として、（Ｒ）-１-フェニル-１，２-エタンジオール（（Ｒ）-ＰＥＤ：フルオキセチン（抗鬱薬）のキラルビルディングブロック）を製造することができるが、その際は、３４０ｎｍの吸光度変化を経時的に測定する評価法の他、キラルカラムを搭載した高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）を用いて（Ｒ）-ＰＥＤの鏡像体過剰率（光学純度）および生産収率を評価できる。なお、本反応系の場合は９９％以上、Ｒ体が得られるため、ＯＤＳカラムを搭載したＨＰＬＣにより、直接（Ｒ）-ＰＥＤの分析が可能である。
本発明の異種酵素が関わる共役酵素反応が補酵素再生系であれば、補酵素の消費率、再生率を反応溶液中の吸光度の変化を観察することで評価できる。また、本発明で製造されるか、分解される物質の変換効率に着目して、評価することもできる。
本発明の実施態様では、典型的な例として、ＡｚｏＲとＧＤＨとの補酵素ＮＡＤＨ系での分解反応を評価するため、アゾ染料（メチルレッド）の分解効率、又はＮＡＤＨの消費率及び再生率を、反応溶液中の吸光度（測定波長：４３０ｎｍ、又は３４０ｎｍ）を経時的に測定することで評価した。
また、本発明においては、（Ｒ）-体の光学活性アルコールに還元することが可能なＮＡＤＨ依存型カルボニル還元酵素（ＲＣＲ）とＧＤＨ又はＳＤＨとを組み合わせ、２-ヒドロキシアセトフェノンを反応基質として、（Ｒ）-１-フェニル-１，２-エタンジオール（（Ｒ）-ＰＥＤ：フルオキセチン（抗鬱薬）のキラルビルディングブロック）を製造することができるが、その際は、３４０ｎｍの吸光度変化を経時的に測定する評価法の他、キラルカラムを搭載した高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）を用いて（Ｒ）-ＰＥＤの鏡像体過剰率（光学純度）および生産収率を評価できる。なお、本反応系の場合は９９％以上、Ｒ体が得られるため、ＯＤＳカラムを搭載したＨＰＬＣにより、直接（Ｒ）-ＰＥＤの分析が可能である。
４．本発明の異種酵素－メソポーラスシリカ複合体の用途
（４－１）共役酵素反応用のキット、センサー又は装置
本発明の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体は、酵素Ａ及び酵素Ｂが関与する共役酵素反応の酵素反応用のキット、センサー又は装置を構成する要素として用いることができる。ここで、装置とは、有用物質を合成するためのバッチ式もしくはフロー式の反応装置（バイオリアクター）又は検査、測定用の装置、器具などを含む。また、本発明のメソポーラスシリカは、一般には微粒子粉末状で使用することが好ましい。しかし、特にバイオリアクターなどの装置、器具の一部として用いる場合は、装置、器具またはその部品の形状、規模に合わせ、１．（１－２）で述べた既知の成型法に従い、膜状、中空糸状又はペレット状などに成形して用いることができる。
これら共役酵素反応キット、センサー又は装置の具体的な用途として、主なものは被検試料中の標的物質の検出もしくは測定、有用物質の生産、及び有害物質、汚染物質の無毒化もしくは除去などがある。以下、それぞれに用いられる酵素Ａ及び酵素Ｂを含む酵素の組合せの典型的な例について述べるが、あくまでも例示であり、本発明はこれら例示された組合せには限定されない。
（４－１）共役酵素反応用のキット、センサー又は装置
本発明の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体は、酵素Ａ及び酵素Ｂが関与する共役酵素反応の酵素反応用のキット、センサー又は装置を構成する要素として用いることができる。ここで、装置とは、有用物質を合成するためのバッチ式もしくはフロー式の反応装置（バイオリアクター）又は検査、測定用の装置、器具などを含む。また、本発明のメソポーラスシリカは、一般には微粒子粉末状で使用することが好ましい。しかし、特にバイオリアクターなどの装置、器具の一部として用いる場合は、装置、器具またはその部品の形状、規模に合わせ、１．（１－２）で述べた既知の成型法に従い、膜状、中空糸状又はペレット状などに成形して用いることができる。
これら共役酵素反応キット、センサー又は装置の具体的な用途として、主なものは被検試料中の標的物質の検出もしくは測定、有用物質の生産、及び有害物質、汚染物質の無毒化もしくは除去などがある。以下、それぞれに用いられる酵素Ａ及び酵素Ｂを含む酵素の組合せの典型的な例について述べるが、あくまでも例示であり、本発明はこれら例示された組合せには限定されない。
（４－２）被検試料中に存在する可能性のある標的物質の産物の検出又は定量、又は被検試料中の酵素活性の測定
本発明の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体は、被検試料中に存在する可能性のある標的物質を検出又は定量するために、又は血液など生体由来被検試料中の酵素活性を測定するために用いることができる。そして、その際に被検試料中の標的物質を検出又は定量するための、又は生体由来被検試料中の酵素活性を測定するためのキット、センサー又は装置として用いることができる。
具体的には、例えば各種疾病の診断、血液マーカー値検査など、被験体由来血液などの被検試料中に標的物質が存在するか否か、又はどの程度存在するかを測定し対象疾病への罹患可能性、罹患の有無又は程度を判定、診断するための標的物質検出又は定量用キットとして、本発明のキットを用いることができる。被検試料中に存在する可能性のある標的物質を酵素Ａの反応基質とし、測定対象物質前駆体を酵素Ｂの反応基質として系に存在させれば、共役酵素反応後に産生される酵素Ｂの反応産物量を検出又は定量することで被検試料中の酵素Ａの基質の標的物質量を測定できる。または、酵素Ａの基質を反応系に添加して被検血液など生体試料中の酵素Ａ活性を測定することもできる。その際、発光、蛍光物質またはその前駆体が反応基質となる酵素Ｂを選択して組合せれば、発光、蛍光物質からの発光、蛍光量として、より迅速、簡便かつ正確に測定できる。
これらをキット化する場合は、酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体と共に、酵素希釈用（及び酵素抽出用）緩衝液、酵素Ａ及び／又は酵素Ｂの反応基質、酵素Ａ及び／又は酵素Ｂの標準物質、反応測定用容器（ウエル）などを適宜組み合わせてキットとすることができる。
バイオ電池、又はバイオセンサーの場合はさらに、電極上あるいは電極近傍に酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を配置すると共に、キノン類及びフェロセン類など低分子の酸化還元物質（電子伝達メディエーター）を一方の基質に代えて組み合わせる必要がある。
本発明の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体は、被検試料中に存在する可能性のある標的物質を検出又は定量するために、又は血液など生体由来被検試料中の酵素活性を測定するために用いることができる。そして、その際に被検試料中の標的物質を検出又は定量するための、又は生体由来被検試料中の酵素活性を測定するためのキット、センサー又は装置として用いることができる。
具体的には、例えば各種疾病の診断、血液マーカー値検査など、被験体由来血液などの被検試料中に標的物質が存在するか否か、又はどの程度存在するかを測定し対象疾病への罹患可能性、罹患の有無又は程度を判定、診断するための標的物質検出又は定量用キットとして、本発明のキットを用いることができる。被検試料中に存在する可能性のある標的物質を酵素Ａの反応基質とし、測定対象物質前駆体を酵素Ｂの反応基質として系に存在させれば、共役酵素反応後に産生される酵素Ｂの反応産物量を検出又は定量することで被検試料中の酵素Ａの基質の標的物質量を測定できる。または、酵素Ａの基質を反応系に添加して被検血液など生体試料中の酵素Ａ活性を測定することもできる。その際、発光、蛍光物質またはその前駆体が反応基質となる酵素Ｂを選択して組合せれば、発光、蛍光物質からの発光、蛍光量として、より迅速、簡便かつ正確に測定できる。
これらをキット化する場合は、酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体と共に、酵素希釈用（及び酵素抽出用）緩衝液、酵素Ａ及び／又は酵素Ｂの反応基質、酵素Ａ及び／又は酵素Ｂの標準物質、反応測定用容器（ウエル）などを適宜組み合わせてキットとすることができる。
バイオ電池、又はバイオセンサーの場合はさらに、電極上あるいは電極近傍に酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を配置すると共に、キノン類及びフェロセン類など低分子の酸化還元物質（電子伝達メディエーター）を一方の基質に代えて組み合わせる必要がある。
そのような異種酵素の組合せを例示すると、これらに限定されるわけではないが、
（ａ）グルコースオキシダーゼとペルオキシダーゼとの共役酵素反応を利用して生成Ｈ２Ｏ２を測定し被検血漿試料中のグルコースを高感度に定量する血糖値測定用キット、
（ｂ）ピルビン酸オキシダーゼとペルオキシダーゼとの共役酵素反応を利用して生成Ｈ２Ｏ２を測定し被検血漿試料中のピルビン酸を高感度に定量するための血中のピルビン酸測定用キット、（なおピルビン酸測定用キットは、清酒の熟成度判定のためのキットとして用いることもできる。）
（ｃ）乳酸オキシダーゼとペルオキシダーゼとの共役酵素反応を利用して生成Ｈ２Ｏ２を測定し被検血漿試料中の乳酸を高感度に定量するための乳酸測定用キット、
（ｄ）コレステロールオキシダーゼとペルオキシダーゼとの共役酵素反応を利用して生成Ｈ２Ｏ２を測定し被検血液試料中のコレステロールを高感度に定量するためのコレステロール測定用キットなどが挙げられる。また、医療用ではないが、
（ｅ）グルタミン酸オキシダーゼとペルオキシダーゼとの共役酵素反応を利用して生成Ｈ２Ｏ２を測定し被検食品試料中のグルタミン酸を検出又は定量するための食品の旨味分析用キットも挙げられる。
（ａ）グルコースオキシダーゼとペルオキシダーゼとの共役酵素反応を利用して生成Ｈ２Ｏ２を測定し被検血漿試料中のグルコースを高感度に定量する血糖値測定用キット、
（ｂ）ピルビン酸オキシダーゼとペルオキシダーゼとの共役酵素反応を利用して生成Ｈ２Ｏ２を測定し被検血漿試料中のピルビン酸を高感度に定量するための血中のピルビン酸測定用キット、（なおピルビン酸測定用キットは、清酒の熟成度判定のためのキットとして用いることもできる。）
（ｃ）乳酸オキシダーゼとペルオキシダーゼとの共役酵素反応を利用して生成Ｈ２Ｏ２を測定し被検血漿試料中の乳酸を高感度に定量するための乳酸測定用キット、
（ｄ）コレステロールオキシダーゼとペルオキシダーゼとの共役酵素反応を利用して生成Ｈ２Ｏ２を測定し被検血液試料中のコレステロールを高感度に定量するためのコレステロール測定用キットなどが挙げられる。また、医療用ではないが、
（ｅ）グルタミン酸オキシダーゼとペルオキシダーゼとの共役酵素反応を利用して生成Ｈ２Ｏ２を測定し被検食品試料中のグルタミン酸を検出又は定量するための食品の旨味分析用キットも挙げられる。
また、典型的な蛍光・発色測定キットとしては、各種脱水素酵素とＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）と、ＤＴＤの基質となる発光物質もしくは蛍光物質又はそれらの前駆体を組み合わせた蛍光・発色測定キットが挙げられる。例えば、発色物質のMTTテトラゾリウム塩は、ＮＡＤＨで還元されると紫色（最大波長565 nm）の還元型に変化するので、発色度を測定すると標的物質量又は標的酵素活性が正確に測定できる。
主として疾患との関連で被験者の血液など体液試料に適用する測定キット、検査キットとしてはこれらに限定されるわけではないが、以下の様なキットが例示できる。
（ｆ）グルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）とＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）とのＮＡＤ（Ｐ）Ｈ／ＮＡＤ（Ｐ）＋再生系共役酵素反応を利用した、被検血液試料もしくは食品試料中のグルコースを定量するか、又は血中ＧＤＨ活性を測定するための測定キット、検査キット、
（ｇ）グルコース－６－リン酸脱水素酵素（Ｇ６ＰＤＨ）とＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）とのＮＡＤ（Ｐ）Ｈ／ＮＡＤ（Ｐ）＋再生系共役酵素反応を利用した、被検血液試料中のグルコース－６－リン酸を定量するか、又は血中Ｇ６ＰＤＨ活性を測定するための測定キット、検査キット、
（ｈ）アルコール脱水素酵素（ＡＤＨ）とＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）とのＮＡＤ（Ｐ）Ｈ／ＮＡＤ（Ｐ）＋再生系共役酵素反応を利用した、被検血液試料もしくは食品試料中のアルコールを定量するか、又は血中ＡＤＨ活性を測定するための測定キット、検査キット、
（ｉ）乳酸脱水素酵素（ＬＤＨ）とＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）とのＮＡＤ（Ｐ）Ｈ／ＮＡＤ（Ｐ）＋再生系共役酵素反応を利用した、被検血液試料もしくは食品試料中の乳酸を定量するか、又は血中ＬＤＨ活性を測定するための測定キット、検査キット、
（ｊ）ソルビトール脱水素酵素（ＳＤＨ）とＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）とのＮＡＤ（Ｐ）Ｈ／ＮＡＤ（Ｐ）＋再生系共役酵素反応を利用した、被検血液試料もしくは食品試料中のソルビトールを定量するか、又は血中ＳＤＨ活性を測定するための測定キット、検査キット、
（ｋ）グリセロールリン酸脱水素酵素（ＧＰＤＨ）とＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）とのＮＡＤ（Ｐ）Ｈ／ＮＡＤ（Ｐ）＋再生系共役酵素反応を利用した、被検血液試料中のグリセロールリン酸を定量するか、又は血中ＧＰＤＨ活性を測定するための測定キット、検査キット
（ｌ）リンゴ酸脱水素酵素（ＭＤＨ）とＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）とのＮＡＤ（Ｐ）Ｈ／ＮＡＤ（Ｐ）＋再生系共役酵素反応を利用した、被検血液試料もしくは食品試料中のリンゴ酸を定量するか、又は血中ＭＤＨ活性を測定するための測定キット、検査キットなどが挙げられる。
主として疾患との関連で被験者の血液など体液試料に適用する測定キット、検査キットとしてはこれらに限定されるわけではないが、以下の様なキットが例示できる。
（ｆ）グルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）とＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）とのＮＡＤ（Ｐ）Ｈ／ＮＡＤ（Ｐ）＋再生系共役酵素反応を利用した、被検血液試料もしくは食品試料中のグルコースを定量するか、又は血中ＧＤＨ活性を測定するための測定キット、検査キット、
（ｇ）グルコース－６－リン酸脱水素酵素（Ｇ６ＰＤＨ）とＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）とのＮＡＤ（Ｐ）Ｈ／ＮＡＤ（Ｐ）＋再生系共役酵素反応を利用した、被検血液試料中のグルコース－６－リン酸を定量するか、又は血中Ｇ６ＰＤＨ活性を測定するための測定キット、検査キット、
（ｈ）アルコール脱水素酵素（ＡＤＨ）とＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）とのＮＡＤ（Ｐ）Ｈ／ＮＡＤ（Ｐ）＋再生系共役酵素反応を利用した、被検血液試料もしくは食品試料中のアルコールを定量するか、又は血中ＡＤＨ活性を測定するための測定キット、検査キット、
（ｉ）乳酸脱水素酵素（ＬＤＨ）とＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）とのＮＡＤ（Ｐ）Ｈ／ＮＡＤ（Ｐ）＋再生系共役酵素反応を利用した、被検血液試料もしくは食品試料中の乳酸を定量するか、又は血中ＬＤＨ活性を測定するための測定キット、検査キット、
（ｊ）ソルビトール脱水素酵素（ＳＤＨ）とＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）とのＮＡＤ（Ｐ）Ｈ／ＮＡＤ（Ｐ）＋再生系共役酵素反応を利用した、被検血液試料もしくは食品試料中のソルビトールを定量するか、又は血中ＳＤＨ活性を測定するための測定キット、検査キット、
（ｋ）グリセロールリン酸脱水素酵素（ＧＰＤＨ）とＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）とのＮＡＤ（Ｐ）Ｈ／ＮＡＤ（Ｐ）＋再生系共役酵素反応を利用した、被検血液試料中のグリセロールリン酸を定量するか、又は血中ＧＰＤＨ活性を測定するための測定キット、検査キット
（ｌ）リンゴ酸脱水素酵素（ＭＤＨ）とＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）とのＮＡＤ（Ｐ）Ｈ／ＮＡＤ（Ｐ）＋再生系共役酵素反応を利用した、被検血液試料もしくは食品試料中のリンゴ酸を定量するか、又は血中ＭＤＨ活性を測定するための測定キット、検査キットなどが挙げられる。
また、下記の（ｍ）及び（ｎ）は、被検試料中のフルクトース、キシリトールの定量にも用いることができるが、むしろ主としてＮＡＤ（Ｐ）Ｈの電気化学酸化を利用した酵素電池（アノード電極）として期待される。酵素電池としては、（ｆ）～（ｌ）を用いることもできる。さらに、（ｆ）～（ｏ）はいずれも脱水素酵素の基質を検出、定量するバイオセンサーとしての用途もある。
（ｍ）フルクトース脱水素酵素（ＦＤＨ）とＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）とのメソポーラスシリカ複合体を含む系にＤＴＤの基質となるキノン類及びフェロセン類などの電子伝達メディエーターを添加して酵素電池のアノード電極とすることができる。同様に、
（ｎ）キシリトール脱水素酵素（ＸＤＨ）とＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）と前記電子伝達メディエーターとを組み合わせれば、酵素電池のアノード電極とすることができる。
さらに、
（ｏ）ギ酸脱水素酵素（ＦＤＨ）とＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）とのＮＡＤ（Ｐ）Ｈ／ＮＡＤ（Ｐ）＋再生系共役酵素反応を利用した、被検食品試料中のギ酸を定量するか、又は食品中ＦＤＨ活性を測定するための測定キット、検査キットとして用いられる。
（ｍ）フルクトース脱水素酵素（ＦＤＨ）とＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）とのメソポーラスシリカ複合体を含む系にＤＴＤの基質となるキノン類及びフェロセン類などの電子伝達メディエーターを添加して酵素電池のアノード電極とすることができる。同様に、
（ｎ）キシリトール脱水素酵素（ＸＤＨ）とＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）と前記電子伝達メディエーターとを組み合わせれば、酵素電池のアノード電極とすることができる。
さらに、
（ｏ）ギ酸脱水素酵素（ＦＤＨ）とＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）とのＮＡＤ（Ｐ）Ｈ／ＮＡＤ（Ｐ）＋再生系共役酵素反応を利用した、被検食品試料中のギ酸を定量するか、又は食品中ＦＤＨ活性を測定するための測定キット、検査キットとして用いられる。
その他、ホスホエノールピルビン酸の二酸化炭素によるカルボキシル化反応を触媒するホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ（ＰＥＰＣ）とリンゴ酸脱水素酵素（ＭＤＨ）とのカスケード反応を利用して、環境試料などの被検試料中の二酸化炭素濃度を測定するための測定キットを提供することができる。
（４－３）酵素Ａの反応基質から有用物質を製造するためのキット又はバイオリアクター（装置）
本発明の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を、有用物質の原料を基質とする酵素Ａの酵素反応に適用すれば、酵素Ｂの酵素反応と共役的に効率よく働かせることができるので、酵素Ａの基質から有用物質を大量生産できる。本発明の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体はそのためのキット又はバイオリアクター（装置）の構成要素として用いることができる。
具体的には、これらに限定されるわけではないが、例えばカルボニル還元酵素（ＣＲ）と脱水素酵素（グルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）、ソルビトール脱水素酵素（ＳＤＨ）等）の共役酵素反応による光学活性アルコールの高効率合成が可能となる。
典型的には、（Ｒ）-体の光学活性アルコールに還元することが可能なＮＡＤＨ依存型カルボニル還元酵素（ＲＣＲ）とＧＤＨ又はＳＤＨとを組み合わせ、２-ヒドロキシアセトフェノンを反応基質とすることで、（Ｒ）-１-フェニル-１，２-エタンジオールを製造することができる。（Ｒ）-１-フェニル-１，２-エタンジオールは、（Ｒ）-ＰＥＤ：フルオキセチン（抗鬱薬）のキラルビルディングブロックとして有用である。
本発明の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を、有用物質の原料を基質とする酵素Ａの酵素反応に適用すれば、酵素Ｂの酵素反応と共役的に効率よく働かせることができるので、酵素Ａの基質から有用物質を大量生産できる。本発明の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体はそのためのキット又はバイオリアクター（装置）の構成要素として用いることができる。
具体的には、これらに限定されるわけではないが、例えばカルボニル還元酵素（ＣＲ）と脱水素酵素（グルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）、ソルビトール脱水素酵素（ＳＤＨ）等）の共役酵素反応による光学活性アルコールの高効率合成が可能となる。
典型的には、（Ｒ）-体の光学活性アルコールに還元することが可能なＮＡＤＨ依存型カルボニル還元酵素（ＲＣＲ）とＧＤＨ又はＳＤＨとを組み合わせ、２-ヒドロキシアセトフェノンを反応基質とすることで、（Ｒ）-１-フェニル-１，２-エタンジオールを製造することができる。（Ｒ）-１-フェニル-１，２-エタンジオールは、（Ｒ）-ＰＥＤ：フルオキセチン（抗鬱薬）のキラルビルディングブロックとして有用である。
また、グルタミナーゼとグルタミン酸脱炭酸酵素（ＧＡＤ）との共役酵素反応を利用し、グルタミンを原料としてγ-アミノ酸（ＧＡＢＡ）を製造するためのキット又はバイオリアクターが提供できる。ＧＡＢＡは、脳内の抑制性神経伝達物質として機能する物質であり、脳内で不足するとＩＤＤＭの発症に繋がり、膵臓では、β細胞でインスリンやソマトスタチンなどの分泌制御に関わっているとされている有用物質であり、化成品原料（ポリアミド４）としての活用も期待されている。
グルタミナーゼ、グルタミン酸脱炭酸酵素（ＧＡＤ）にさらにγ-アミノブチルアルデヒド脱水素酵素（ＡＢＡＬＤＨ）を加えた３種類の酵素のカスケード反応を利用すれば、「４-アミノブタナール」を製造するためのキット又はバイオリアクターが提供できる。
「４-アミノブタナール」は、茶豆特有の香り成分（２-アセチル-１-プロリン）の原料となる。
グルタミナーゼ、グルタミン酸脱炭酸酵素（ＧＡＤ）にさらにγ-アミノブチルアルデヒド脱水素酵素（ＡＢＡＬＤＨ）を加えた３種類の酵素のカスケード反応を利用すれば、「４-アミノブタナール」を製造するためのキット又はバイオリアクターが提供できる。
「４-アミノブタナール」は、茶豆特有の香り成分（２-アセチル-１-プロリン）の原料となる。
（４－４）環境中の環境汚染物質や毒性物質を分解するためのキット又はバイオリアクター（装置）
本発明の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体は、環境中に存在する酵素Ａの反応基質となる環境汚染物質や毒性物質を効率的に分解することができ、そのためのキット又はバイオリアクター（装置）として用いることができる。
例えば、これらに限定されるわけではないが、産業排水中の難分解性化学染料であるアゾ染料（メチルレッドなど）を、アゾ還元酵素（ＡｚｏＲ）とグルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）とメソポーラスシリカ複合体を緩衝液などと組み合わせてアゾ染料（メチルレッドなど）分解用キットとすることができ、当該メソポーラスシリカ複合体をカラムなどに詰めてアゾ染料分解用バイオリアクターとすることもできる。
本発明の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体は、環境中に存在する酵素Ａの反応基質となる環境汚染物質や毒性物質を効率的に分解することができ、そのためのキット又はバイオリアクター（装置）として用いることができる。
例えば、これらに限定されるわけではないが、産業排水中の難分解性化学染料であるアゾ染料（メチルレッドなど）を、アゾ還元酵素（ＡｚｏＲ）とグルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）とメソポーラスシリカ複合体を緩衝液などと組み合わせてアゾ染料（メチルレッドなど）分解用キットとすることができ、当該メソポーラスシリカ複合体をカラムなどに詰めてアゾ染料分解用バイオリアクターとすることもできる。
以下に実施例により本発明をより詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例により限定されるものではない。
本発明におけるその他の用語や概念は、当該分野において慣用的に使用される用語の意味に基づくものであり、本発明を実施するために使用する様々な技術は、特にその出典を明示した技術を除いては、公知の文献等に基づいて当業者であれば容易かつ確実に実施可能である。また、各種の分析などは、使用した分析機器又は試薬、キットの取り扱い説明書、カタログなどに記載の方法を準用して行った。
なお、本明細書中に引用した先行技術文献、特許公報及び特許出願明細書中の記載内容は、本発明の記載内容として参照されるものとする。
本発明におけるその他の用語や概念は、当該分野において慣用的に使用される用語の意味に基づくものであり、本発明を実施するために使用する様々な技術は、特にその出典を明示した技術を除いては、公知の文献等に基づいて当業者であれば容易かつ確実に実施可能である。また、各種の分析などは、使用した分析機器又は試薬、キットの取り扱い説明書、カタログなどに記載の方法を準用して行った。
なお、本明細書中に引用した先行技術文献、特許公報及び特許出願明細書中の記載内容は、本発明の記載内容として参照されるものとする。
（製造例１）メソポーラスシリカ（シリカ系ナノ空孔材料）の製造
本実施例で用いる、２次元ヘキサゴナルの細孔配列構造を有していて、細孔径の異なる各種メソポーラスシリカ（「Ｃ-ｍｅｓｏ」、「ＳＢＡ」、及び、「ＦＳＭ」）を、それぞれ複数種類合成した。
本実施例で用いる、２次元ヘキサゴナルの細孔配列構造を有していて、細孔径の異なる各種メソポーラスシリカ（「Ｃ-ｍｅｓｏ」、「ＳＢＡ」、及び、「ＦＳＭ」）を、それぞれ複数種類合成した。
（１－１）Ｃ-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．７、３．３、６．１ｎｍ）の合成
中心細孔直径２．７、３．３、又は６．１ｎｍを有するＣ-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカは、池田らの方法（T. Ikeda et al., Microporous Mesoporous Mater., vol.191, pp.38-47 (2014)）を参考にして合成した。
具体的には、まずヘキサデシルトリメチルアンモニウムクロライド（３．２ｇ、東京化成工業社製）、ドコシルトリメチルアンモニウムクロライド（４．２４ｇ、ライオン・アクゾ社製）、或いは、ドコシルトリメチルアンモニウムクロライド（４．２４ｇ、ライオン・アクゾ社製）と１，３，５－トリイソプロピルベンゼン（７ｍＬ、アルファエイサー社製）を、それぞれ７０℃の水１００ミリリットルに添加し、１時間撹拌（７００ｒｐｍ）した。溶解後、前記池田らの方法により合成した高アルミニウム含有層状ケイ酸塩（Ａｌ-Ｋ-ＬＤＳ）０．２５ｇを更に添加し、ホットスターラーを用いて７０℃に加熱しながら、ｐＨ１０の状態で、５０時間撹拌（７００ｒｐｍ）した。
これを、遠心分離し、上清を除去した後、７０℃の熱水２５０ミリリットルに沈殿物を再分散して洗浄する工程を３回繰り返してから風乾した。これを、６０℃で４日間乾燥した後、時間あたり８７．５℃の速度で５５０℃まで昇温させ、更に、これを、５５０℃で１０時間焼成することにより、２．７ｎｍ（Ｃ１６-ｍｅｓｏ２．７）、３．３ｎｍ（Ｃ２２-ｍｅｓｏ３．３）、又は、６．１ｎｍ（Ｃ２２-ｍｅｓｏ６．１）の中心細孔直径を有するＣ-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカを得た。
中心細孔直径２．７、３．３、又は６．１ｎｍを有するＣ-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカは、池田らの方法（T. Ikeda et al., Microporous Mesoporous Mater., vol.191, pp.38-47 (2014)）を参考にして合成した。
具体的には、まずヘキサデシルトリメチルアンモニウムクロライド（３．２ｇ、東京化成工業社製）、ドコシルトリメチルアンモニウムクロライド（４．２４ｇ、ライオン・アクゾ社製）、或いは、ドコシルトリメチルアンモニウムクロライド（４．２４ｇ、ライオン・アクゾ社製）と１，３，５－トリイソプロピルベンゼン（７ｍＬ、アルファエイサー社製）を、それぞれ７０℃の水１００ミリリットルに添加し、１時間撹拌（７００ｒｐｍ）した。溶解後、前記池田らの方法により合成した高アルミニウム含有層状ケイ酸塩（Ａｌ-Ｋ-ＬＤＳ）０．２５ｇを更に添加し、ホットスターラーを用いて７０℃に加熱しながら、ｐＨ１０の状態で、５０時間撹拌（７００ｒｐｍ）した。
これを、遠心分離し、上清を除去した後、７０℃の熱水２５０ミリリットルに沈殿物を再分散して洗浄する工程を３回繰り返してから風乾した。これを、６０℃で４日間乾燥した後、時間あたり８７．５℃の速度で５５０℃まで昇温させ、更に、これを、５５０℃で１０時間焼成することにより、２．７ｎｍ（Ｃ１６-ｍｅｓｏ２．７）、３．３ｎｍ（Ｃ２２-ｍｅｓｏ３．３）、又は、６．１ｎｍ（Ｃ２２-ｍｅｓｏ６．１）の中心細孔直径を有するＣ-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカを得た。
（１－２）ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４、８．１、１０．６ｎｍ）の合成
中心細孔直径５．４、８．１、又は１０．６ｎｍを有するＳＢＡ型メソポーラスシリカは、Ｚｈａｏらの方法（D. Zhao et al., Science, vol.279, pp.548-552 (1998)）を参考にして、合成した。
具体的には、まず、Ｐｌｕｒｏｎｉｃ Ｐ１２３（ポリオキシエチレン（４２）ポリオキシプロピレン（６７）グリコール（ＢＡＳＦ社製））（１０ｇ）を、水３００ミリリットルに添加し、３５℃で一晩撹拌し溶解させた後、これに、塩酸２１．８７ｇ及びオルトケイ酸テトラエチル（和光純薬工業社製）２１．３２ｇを更に添加し、ホットスターラーを用いて３５℃に加熱しながら、約２０時間撹拌した。これを、異なる合成温度（ａ：３５℃、ｂ：１００℃、又は、ｃ：１３０℃）で２４時間静置した。
これを、吸引濾過した後、８０℃の熱水４００ミリリットルに再分散して濾過する工程を３～４回繰り返してから風乾した。これを、４５℃で３日間乾燥した後、時間あたり１０５℃の速度で５５０℃まで昇温させ、更に、これを、５５０℃で１０時間焼成することにより、５．４ｎｍ（ＳＢＡ５．４）、８．１ｎｍ（ＳＢＡ８．１）、又は、１０．６ｎｍ（ＳＢＡ１０．６）の中心細孔直径を有するＳＢＡ型メソポーラスシリカを得た。
中心細孔直径５．４、８．１、又は１０．６ｎｍを有するＳＢＡ型メソポーラスシリカは、Ｚｈａｏらの方法（D. Zhao et al., Science, vol.279, pp.548-552 (1998)）を参考にして、合成した。
具体的には、まず、Ｐｌｕｒｏｎｉｃ Ｐ１２３（ポリオキシエチレン（４２）ポリオキシプロピレン（６７）グリコール（ＢＡＳＦ社製））（１０ｇ）を、水３００ミリリットルに添加し、３５℃で一晩撹拌し溶解させた後、これに、塩酸２１．８７ｇ及びオルトケイ酸テトラエチル（和光純薬工業社製）２１．３２ｇを更に添加し、ホットスターラーを用いて３５℃に加熱しながら、約２０時間撹拌した。これを、異なる合成温度（ａ：３５℃、ｂ：１００℃、又は、ｃ：１３０℃）で２４時間静置した。
これを、吸引濾過した後、８０℃の熱水４００ミリリットルに再分散して濾過する工程を３～４回繰り返してから風乾した。これを、４５℃で３日間乾燥した後、時間あたり１０５℃の速度で５５０℃まで昇温させ、更に、これを、５５０℃で１０時間焼成することにより、５．４ｎｍ（ＳＢＡ５．４）、８．１ｎｍ（ＳＢＡ８．１）、又は、１０．６ｎｍ（ＳＢＡ１０．６）の中心細孔直径を有するＳＢＡ型メソポーラスシリカを得た。
（１－３）ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．６、４．２、８．０ｎｍ）の合成
中心細孔直径２．６、又は４．２ｎｍを有するＦＳＭ型メソポーラスシリカは、稲垣らの方法（S. Inagaki et al., J. Chem. Soc. Chem. Commun., pp.680-682 (1993)）を参考にして、合成した。
具体的には、まずヘキサデシルトリメチルアンモニウムクロライド（３．２ｇ、東京化成工業社製）、或いは、ドコシルトリメチルアンモニウムクロライド（４．２４ｇ、ライオン・アクゾ社製）を、７０℃の水１００ミリリットルに添加し、溶解後、カネマイト（トクヤマシルテック社製）５ｇを更に添加し、ホットスターラーを用いて７０℃に加熱しながら、３時間撹拌した。これに、２規定塩酸を約１時間かけて添加し、ｐＨ８．５の状態で、約３時間撹拌した。一方、８．０ｎｍの中心細孔直径を有するＦＳＭ型メソポーラスシリカについては、卜部らの方法（Y. Urabe et al., ChemBioChem, vol.8, pp.668-674 (2007)）を参考にして、ドコシルトリメチルアンモニウムクロライド（１０ｇ、ライオン・アクゾ社製）を、７０℃の水１２５ミリリットルに添加し、溶解後、１，３，５－トリイソプロピルベンゼン（７．５ｇ、アルファエイサー社製）を添加し、７０℃に加熱しながら、ホモミキサーで３０分間撹拌（３０００ｒｐｍ）した。これに、予め、カネマイト（トクヤマシルテック社製）６．６７ｇを溶解した８０℃の水１３１ミリリットルを更に添加し、７０℃に加熱しながら、ホモミキサーで２時間撹拌（３０００ｒｐｍ）した。これに、２規定塩酸を約１時間かけて添加し、ｐＨ８．５の状態で、約３時間撹拌（３０００ｒｐｍ）した。
これらを、吸引濾過した後、７０℃の熱水４００ミリリットルに再分散して濾過する工程を３～４回繰り返してから風乾した。これを、４５℃で３日間乾燥した後、５５０℃で６時間焼成することにより、２．６ｎｍ（ＦＳＭ２．６）、４．２ｎｍ（ＦＳＭ４．２）、又は、８．０ｎｍ（ＦＳＭ８．０）の中心細孔直径を有するＦＳＭ型メソポーラスシリカを得た。
中心細孔直径２．６、又は４．２ｎｍを有するＦＳＭ型メソポーラスシリカは、稲垣らの方法（S. Inagaki et al., J. Chem. Soc. Chem. Commun., pp.680-682 (1993)）を参考にして、合成した。
具体的には、まずヘキサデシルトリメチルアンモニウムクロライド（３．２ｇ、東京化成工業社製）、或いは、ドコシルトリメチルアンモニウムクロライド（４．２４ｇ、ライオン・アクゾ社製）を、７０℃の水１００ミリリットルに添加し、溶解後、カネマイト（トクヤマシルテック社製）５ｇを更に添加し、ホットスターラーを用いて７０℃に加熱しながら、３時間撹拌した。これに、２規定塩酸を約１時間かけて添加し、ｐＨ８．５の状態で、約３時間撹拌した。一方、８．０ｎｍの中心細孔直径を有するＦＳＭ型メソポーラスシリカについては、卜部らの方法（Y. Urabe et al., ChemBioChem, vol.8, pp.668-674 (2007)）を参考にして、ドコシルトリメチルアンモニウムクロライド（１０ｇ、ライオン・アクゾ社製）を、７０℃の水１２５ミリリットルに添加し、溶解後、１，３，５－トリイソプロピルベンゼン（７．５ｇ、アルファエイサー社製）を添加し、７０℃に加熱しながら、ホモミキサーで３０分間撹拌（３０００ｒｐｍ）した。これに、予め、カネマイト（トクヤマシルテック社製）６．６７ｇを溶解した８０℃の水１３１ミリリットルを更に添加し、７０℃に加熱しながら、ホモミキサーで２時間撹拌（３０００ｒｐｍ）した。これに、２規定塩酸を約１時間かけて添加し、ｐＨ８．５の状態で、約３時間撹拌（３０００ｒｐｍ）した。
これらを、吸引濾過した後、７０℃の熱水４００ミリリットルに再分散して濾過する工程を３～４回繰り返してから風乾した。これを、４５℃で３日間乾燥した後、５５０℃で６時間焼成することにより、２．６ｎｍ（ＦＳＭ２．６）、４．２ｎｍ（ＦＳＭ４．２）、又は、８．０ｎｍ（ＦＳＭ８．０）の中心細孔直径を有するＦＳＭ型メソポーラスシリカを得た。
なお、図１に、典型的なメソポーラスシリカ（ＳＢＡ型、ＦＳＭ型）及びＣ-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカの走査型電子顕微鏡（ＳＥＭ）の像を示す。
（実施例１）ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体の製造及び酵素反応
本実施例では、各種メソポーラスシリカに対するアゾ還元酵素（ＡｚｏＲ：配列番号１）及びグルコース脱水素酵素（ＧＤＨ：Bacillus sp.由来、和光純薬工業社）の固定化と酵素活性の評価を行った。図２に、メソポーラスシリカの規則性細孔（シリカ細孔）に固定化したＡｚｏＲ及びＧＤＨを備えたＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体のうちＡｚｏＲと難分解性化学染料（アゾ染料：メチルレッド）が相互作用し、更に、ＧＤＨによる補酵素（ＮＡＤＨ）の再生系を組み込み酸化型ＮＡＤ＋から還元型ＮＡＤＨに再生することができるようになった結果、アゾ染料が高効率かつ持続的に分解される様子を模式的に表した説明図を示す。
本実施例では、各種メソポーラスシリカに対するアゾ還元酵素（ＡｚｏＲ：配列番号１）及びグルコース脱水素酵素（ＧＤＨ：Bacillus sp.由来、和光純薬工業社）の固定化と酵素活性の評価を行った。図２に、メソポーラスシリカの規則性細孔（シリカ細孔）に固定化したＡｚｏＲ及びＧＤＨを備えたＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体のうちＡｚｏＲと難分解性化学染料（アゾ染料：メチルレッド）が相互作用し、更に、ＧＤＨによる補酵素（ＮＡＤＨ）の再生系を組み込み酸化型ＮＡＤ＋から還元型ＮＡＤＨに再生することができるようになった結果、アゾ染料が高効率かつ持続的に分解される様子を模式的に表した説明図を示す。
（１－１）ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体の製造
＜ＡｚｏＲ及びＧＤＨのメソポーラスシリカへの固定化＞
酵素の固定化支持体には、メソポーラスシリカとして、（製造例１）により得られた中心細孔直径の異なる３種類のメソポーラスシリカ：１）Ｃ-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．７、３．３、６．１ｎｍ）、２）ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．６、４．２、８．０ｎｍ）及び３）ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４、８．１、１０．６ｎｍ）を使用した。また、比較のためのメソポーラスシリカとして、ＭＣＭ-４１型メソポーラスシリカ（シグマ アルドリッチ社製、中心細孔直径：３．１ｎｍ）、又、非多孔質球状シリカとして、シーホスター ＫＥ-Ｓ１００（日本触媒社製、平均粒子径：０．７６μｍ）を使用した。
また、アゾ還元酵素としては、Escherichia coli由来のＡｚｏＲ（二量体、アミノ酸残基数：２０１、分子量（単量体）：約２３ｋＤ）を用いた。まず、Escherichia coliの染色体ＤＮＡから増幅したＡｚｏＲ遺伝子（配列番号１）をｐＥＴ１００／Ｄ-ＴＯＰＯベクターに挿入することによって、ＡｚｏＲ発現用の環状プラスミドＤＮＡを作製した。次に、前記環状プラスミドＤＮＡを組換え大腸菌に導入し、大腸菌タンパク発現系を利用してＡｚｏＲを製造した。
グルコース脱水素酵素としては、和光純薬工業社から購入したBacillus sp.由来のＧＤＨ（四量体、分子量（単量体）：約２８ｋＤ）を用いた。
＜ＡｚｏＲ及びＧＤＨのメソポーラスシリカへの固定化＞
酵素の固定化支持体には、メソポーラスシリカとして、（製造例１）により得られた中心細孔直径の異なる３種類のメソポーラスシリカ：１）Ｃ-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．７、３．３、６．１ｎｍ）、２）ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．６、４．２、８．０ｎｍ）及び３）ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４、８．１、１０．６ｎｍ）を使用した。また、比較のためのメソポーラスシリカとして、ＭＣＭ-４１型メソポーラスシリカ（シグマ アルドリッチ社製、中心細孔直径：３．１ｎｍ）、又、非多孔質球状シリカとして、シーホスター ＫＥ-Ｓ１００（日本触媒社製、平均粒子径：０．７６μｍ）を使用した。
また、アゾ還元酵素としては、Escherichia coli由来のＡｚｏＲ（二量体、アミノ酸残基数：２０１、分子量（単量体）：約２３ｋＤ）を用いた。まず、Escherichia coliの染色体ＤＮＡから増幅したＡｚｏＲ遺伝子（配列番号１）をｐＥＴ１００／Ｄ-ＴＯＰＯベクターに挿入することによって、ＡｚｏＲ発現用の環状プラスミドＤＮＡを作製した。次に、前記環状プラスミドＤＮＡを組換え大腸菌に導入し、大腸菌タンパク発現系を利用してＡｚｏＲを製造した。
グルコース脱水素酵素としては、和光純薬工業社から購入したBacillus sp.由来のＧＤＨ（四量体、分子量（単量体）：約２８ｋＤ）を用いた。
＜ＡｚｏＲ及びＧＤＨのメソポーラスシリカ複合体によるアゾ染料の還元分解反応の実験手順＞
アゾ還元酵素（ＡｚｏＲ）及びグルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）による補酵素再生系を利用したアゾ染料（メチルレッド）の還元分解反応の概略は、図３（ａ）に示すとおりである。
また、図３（ｂ）に、ＡｚｏＲ及びＧＤＨを固定化したシリカ微粒子（メソポーラスシリカ粒子、あるいは、非多孔質球状シリカ）の製造法、及び、メチルレッドの分解反応の手順の例を示す。
なお、本発明の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体の通常の製造方法及び共役酵素反応の手順は、図３（ｂ）に記載の手順のうちの、遠心操作と洗浄操作を除いた手順が１例となる。
アゾ還元酵素（ＡｚｏＲ）及びグルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）による補酵素再生系を利用したアゾ染料（メチルレッド）の還元分解反応の概略は、図３（ａ）に示すとおりである。
また、図３（ｂ）に、ＡｚｏＲ及びＧＤＨを固定化したシリカ微粒子（メソポーラスシリカ粒子、あるいは、非多孔質球状シリカ）の製造法、及び、メチルレッドの分解反応の手順の例を示す。
なお、本発明の酵素Ａ－酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体の通常の製造方法及び共役酵素反応の手順は、図３（ｂ）に記載の手順のうちの、遠心操作と洗浄操作を除いた手順が１例となる。
＜酵素－メソポーラスシリカ複合体の製造方法＞
図３（ｂ）に記載の手順のうち、遠心操作と洗浄操作を除いた手順、すなわち、ＡｚｏＲ（３μｇ）を含んだ酵素溶液（２５ｍＭ 酢酸－酢酸ナトリウム（ｐＨ ４）、２５ｍＭ ＭＥＳ-ＮａＯＨ（ｐＨ ６）、２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ７．５）、２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ９）から選択されたいずれか１つの緩衝液を使用）０．２ｍＬと、予めマイクロチューブに量り取ったシリカ微粒子粉末（Ｃ-ｍｅｓｏ、ＦＳＭ又はＳＢＡ）０．５ｍｇとを、ローテーターを用いて１７時間以上４℃で穏やかに混合することによって、ＡｚｏＲ－メソポーラスシリカ複合体（未洗浄）を得た。なお、本発明のＡｚｏＲ－メソポーラスシリカ複合体としては、未洗浄のままで用いる方が好ましいが、以下の実施例３では、異種酵素、特にサイズの大きい酵素（ＧＤＨ）の場合のメソポーラスシリカとの結合安定性を評価するために、以下の遠心分離工程と共に洗浄工程を行っている。
図３（ｂ）に記載の手順のうち、遠心操作と洗浄操作を除いた手順、すなわち、ＡｚｏＲ（３μｇ）を含んだ酵素溶液（２５ｍＭ 酢酸－酢酸ナトリウム（ｐＨ ４）、２５ｍＭ ＭＥＳ-ＮａＯＨ（ｐＨ ６）、２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ７．５）、２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ９）から選択されたいずれか１つの緩衝液を使用）０．２ｍＬと、予めマイクロチューブに量り取ったシリカ微粒子粉末（Ｃ-ｍｅｓｏ、ＦＳＭ又はＳＢＡ）０．５ｍｇとを、ローテーターを用いて１７時間以上４℃で穏やかに混合することによって、ＡｚｏＲ－メソポーラスシリカ複合体（未洗浄）を得た。なお、本発明のＡｚｏＲ－メソポーラスシリカ複合体としては、未洗浄のままで用いる方が好ましいが、以下の実施例３では、異種酵素、特にサイズの大きい酵素（ＧＤＨ）の場合のメソポーラスシリカとの結合安定性を評価するために、以下の遠心分離工程と共に洗浄工程を行っている。
具体的には、前記のＡｚｏＲ－メソポーラスシリカ複合体（未洗浄）の分散液に対して遠心分離（１５，０００～２０，０００Ｇ、１０分間）を行い、上清を全て除去した。続いて、洗浄用緩衝液（固定化時に選択した緩衝液を使用）１ｍＬを添加し、Ｖｏｒｔｅｘ Ｍｉｘｅｒを用いて約５秒間室温で攪拌し、前記ＡｚｏＲ－メソポーラスシリカ複合体を再懸濁した後、遠心分離（１５，０００～２０，０００Ｇ、１０分間）を行い、上清を全て除去する洗浄操作を行った。再び、前記洗浄用緩衝液１ｍＬを用いて洗浄操作を繰り返し、さらに２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ７．５）０．２ｍＬを用いて再分散させ、最終的に、ｐＨ値の異なる緩衝液を用いて固定化したＡｚｏＲ－メソポーラスシリカ複合体（洗浄済）を得た。以下、「ＡｚｏＲ－Ｃ-ｍｅｓｏ」、「ＡｚｏＲ－ＦＳＭ」又は「ＡｚｏＲ－ＳＢＡ」という。
さらに、同様の手順を、ＡｚｏＲ（３μｇ）及びＧＤＨ（３μｇ）を含んだ酵素溶液（２５ｍＭ 酢酸－酢酸ナトリウム（ｐＨ ４）、２５ｍＭ ＭＥＳ-ＮａＯＨ（ｐＨ ６）、２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ７．５）、２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ９）から選択されたいずれか１つの緩衝液を使用）０．２ｍＬと、シリカ微粒子粉末（Ｃ-ｍｅｓｏ、ＦＳＭ又はＳＢＡ）０．５ｍｇとに適用してＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体を得た。以下、「ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－Ｃ-ｍｅｓｏ」、「ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＦＳＭ」又は「ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＳＢＡ」という。
また、比較のためにＭＣＭ又は非多孔質球状シリカ（ＫＥ-Ｓ１００）を用いて、同様の手順によりそれぞれの複合体を得た。以下、「ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＭＣＭ」又は「ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＫＥ-Ｓ１００」という。
また、比較のためにＭＣＭ又は非多孔質球状シリカ（ＫＥ-Ｓ１００）を用いて、同様の手順によりそれぞれの複合体を得た。以下、「ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＭＣＭ」又は「ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＫＥ-Ｓ１００」という。
（１－２）メチルレッドの分解活性の評価
（１－１）で得られたＡｚｏＲ－メソポーラスシリカ複合体及びＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体などの各種複合体それぞれの酵素活性を、反応基質としてのアゾ染料（メチルレッド）及びグルコースを添加して補酵素再生系を働かせ、メチルレッドの分解率（脱色率）により評価した。
具体的には、（図３（ｂ））に示したように、（１－１）で得られた「ＡｚｏＲ－Ｃ-ｍｅｓｏ（ＦＳＭ、ＳＢＡ）」及び「ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－Ｃ-ｍｅｓｏ（ＦＳＭ、ＳＢＡ）」などの各種複合体それぞれに対して、以下の酵素反応を起こさせ、それぞれのメチルレッドの脱色率を測定した。
（１－１）で得られたＡｚｏＲ－メソポーラスシリカ複合体及びＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体などの各種複合体それぞれの酵素活性を、反応基質としてのアゾ染料（メチルレッド）及びグルコースを添加して補酵素再生系を働かせ、メチルレッドの分解率（脱色率）により評価した。
具体的には、（図３（ｂ））に示したように、（１－１）で得られた「ＡｚｏＲ－Ｃ-ｍｅｓｏ（ＦＳＭ、ＳＢＡ）」及び「ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－Ｃ-ｍｅｓｏ（ＦＳＭ、ＳＢＡ）」などの各種複合体それぞれに対して、以下の酵素反応を起こさせ、それぞれのメチルレッドの脱色率を測定した。
酵素反応は、分光光度計用セル内においてあらかじめマイクロ撹拌子を用いて撹拌（２５０ｒｐｍ）しながら３０℃で１０分間の予備加温を行ったメチルレッド、グルコース、また、補酵素を含んだ反応基質（２．８ｍＬ）に対して、上記ＡｚｏＲ－シリカ微粒子複合体の分散液０．２ｍＬ、又は、上記ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－シリカ微粒子複合体の分散液０．２ｍＬを添加することによって開始した。
その際、最終反応組成が、「２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ７．５）、０．１ｍＭ メチルレッド、０．１ｍＭ ＮＡＤＨ、１μＭ ＦＭＮ、１０ｍＭ グルコース、１μｇ／ｍＬ ＡｚｏＲ、１μｇ／ｍＬ ＧＤＨ、反応液量：３ｍＬ」となるように調整した。
反応条件は、マイクロ撹拌子を用いて撹拌（２５０ｒｐｍ）しながら３０℃で３０分間の加温状態を保持することとした。本反応には、分光光度計（島津製作所社製、ＵＶ-２４５０）を使用し、４３０ｎｍの吸光度変化を観測することによって、メチルレッド分解反応における反応開始後１～８分における初期反応速度、また、反応３０分後のメチルレッドの分解率（脱色率）を評価した。
その際、最終反応組成が、「２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ７．５）、０．１ｍＭ メチルレッド、０．１ｍＭ ＮＡＤＨ、１μＭ ＦＭＮ、１０ｍＭ グルコース、１μｇ／ｍＬ ＡｚｏＲ、１μｇ／ｍＬ ＧＤＨ、反応液量：３ｍＬ」となるように調整した。
反応条件は、マイクロ撹拌子を用いて撹拌（２５０ｒｐｍ）しながら３０℃で３０分間の加温状態を保持することとした。本反応には、分光光度計（島津製作所社製、ＵＶ-２４５０）を使用し、４３０ｎｍの吸光度変化を観測することによって、メチルレッド分解反応における反応開始後１～８分における初期反応速度、また、反応３０分後のメチルレッドの分解率（脱色率）を評価した。
次いで、固定化酵素サンプルを繰り返し再利用する場合は、反応後の固定化酵素を遠心分離（１５，０００～２０，０００Ｇ、５～１０分間）によって回収し、上清を除去した後、２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ７．５）０．２ｍＬを用いて再分散させた液を、新しい反応基質溶液（２．８ｍＬ）に添加することによって、反応２回目の酵素活性測定を行った（再利用性評価）。
（実施例２）異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）の活性評価（固定化後の洗浄操作を行わない場合）
（２－１）シリカ粒子固定化酵素における補酵素再生系の共役効果
単一酵素（ＡｚｏＲ）、又は異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を、遊離の状態で反応させた場合、及び各種シリカ粒子に固定化した場合のそれぞれについて、実施例１（１－２）の通り、メチルレッド及びグルコースを反応基質としたメチルレッド分解反応（３０℃、３０分間）を行い、メチルレッドの脱色率（反応１回目）を評価し、次いで同じ系を繰り返し再利用した場合のメチルレッドの脱色率（反応２回目）を評価した（図４（ａ））。その際、シリカ粒子としては、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：８．０ｎｍ）、及び、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：８．１ｎｍ）を用い、異種酵素を固定化する際には、図３（ｂ）に記載の手順に従い、ＡｚｏＲ及びＧＤＨを同時にシリカ粒子に一晩混和させて吸着させ、洗浄操作は行っていない。
（２－１）シリカ粒子固定化酵素における補酵素再生系の共役効果
単一酵素（ＡｚｏＲ）、又は異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を、遊離の状態で反応させた場合、及び各種シリカ粒子に固定化した場合のそれぞれについて、実施例１（１－２）の通り、メチルレッド及びグルコースを反応基質としたメチルレッド分解反応（３０℃、３０分間）を行い、メチルレッドの脱色率（反応１回目）を評価し、次いで同じ系を繰り返し再利用した場合のメチルレッドの脱色率（反応２回目）を評価した（図４（ａ））。その際、シリカ粒子としては、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：８．０ｎｍ）、及び、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：８．１ｎｍ）を用い、異種酵素を固定化する際には、図３（ｂ）に記載の手順に従い、ＡｚｏＲ及びＧＤＨを同時にシリカ粒子に一晩混和させて吸着させ、洗浄操作は行っていない。
その結果、未固定のＡｚｏＲを単独で用いた場合の脱色率（３３．８％）と比較して、未固定の異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を混和した直後にメチルレッドの分解反応を行った場合には反応３０分後の脱色率が１００％に達したことより、ＧＤＨの補酵素再生活性の発現に伴うメチルレッド分解反応の促進が認められた。しかしながら、異種酵素を混和して一晩放置後に分解反応に用いた場合には、異種酵素間の凝集体形成が引き起こされ、脱色率の大幅な低下が示された（脱色率：３６．１％）（図４（ａ））。
一方、固定化酵素の場合、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：８．０ｎｍ）では、未固定酵素と比較して脱色率が低く、異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を用いた共役酵素反応による反応の促進効果も小さかった（脱色率：１６．２％（ＡｚｏＲ－ＦＳＭ）、２０．９％（ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＦＳＭ））。ところが、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：８．１ｎｍ）では、酵素の固定化操作時に一晩、混和しているにもかかわらず、凝集体形成が抑制された結果、ＡｚｏＲを単独で固定化した場合（ＡｚｏＲ－ＳＢＡ）の脱色率（３１．５％）が未固定ＡｚоＲの脱色率（３３．８％）と同等であり、さらに、異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を固定化した場合（ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＳＢＡ）の脱色率（８９．６％）が著しく向上した（図４（ａ））。
また、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：８．１ｎｍ）を用いた場合、ＡｚｏＲ及びＧＤＨの両者を固定化した場合、ＡｚｏＲのみを固定化した場合と比較して３倍近いメチルレッドの脱色率が認められたことは、ＡｚｏＲ及びＧＤＨのいずれもがＳＢＡ細孔に近接した状態で固定化されたことで、両者の補酵素再生系の共役酵素反応が効率よく働いたことを示している。
一方、固定化酵素の場合、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：８．０ｎｍ）では、未固定酵素と比較して脱色率が低く、異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を用いた共役酵素反応による反応の促進効果も小さかった（脱色率：１６．２％（ＡｚｏＲ－ＦＳＭ）、２０．９％（ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＦＳＭ））。ところが、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：８．１ｎｍ）では、酵素の固定化操作時に一晩、混和しているにもかかわらず、凝集体形成が抑制された結果、ＡｚｏＲを単独で固定化した場合（ＡｚｏＲ－ＳＢＡ）の脱色率（３１．５％）が未固定ＡｚоＲの脱色率（３３．８％）と同等であり、さらに、異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を固定化した場合（ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＳＢＡ）の脱色率（８９．６％）が著しく向上した（図４（ａ））。
また、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：８．１ｎｍ）を用いた場合、ＡｚｏＲ及びＧＤＨの両者を固定化した場合、ＡｚｏＲのみを固定化した場合と比較して３倍近いメチルレッドの脱色率が認められたことは、ＡｚｏＲ及びＧＤＨのいずれもがＳＢＡ細孔に近接した状態で固定化されたことで、両者の補酵素再生系の共役酵素反応が効率よく働いたことを示している。
これらの実験結果は、ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＳＢＡが酵素の凝集体形成を抑制しながら異種酵素を安定的に固定化できるという、酵素の凝集失活の抑制能を有している結果、酵素活性が著しく向上した可能性を示している。
以上より、ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体のうち、特にＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＳＢＡは、ＳＢＡ細孔に異種酵素を近接した状態で固定化でき、極めて高い補酵素再生系の共役酵素反応活性を発現できることがわかった。
以上より、ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体のうち、特にＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＳＢＡは、ＳＢＡ細孔に異種酵素を近接した状態で固定化でき、極めて高い補酵素再生系の共役酵素反応活性を発現できることがわかった。
しかし、反応１回目の後に回収した固定化酵素（ＦＳＭ型、ＳＢＡ型）を再び反応に使用した結果、ＡｚｏＲのみを固定化した場合と同等のメチルレッドの脱色率にまで低下してしまった（図４（ａ））ことからみて、特に、四量体でサイズの大きいＧＤＨが脱離しやすく、２回目の反応のための回収工程で大半のＧＤＨが反応系外に排除されている可能性が示唆された。すなわち、反応２回目における固定化酵素の再利用性に関しては、ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＳＢＡの場合でも低かった。
（２－２）共役酵素反応におけるメソポーラスシリカの細孔径の影響
（２－１）では、８ｎｍ程度の中心細孔直径を有するメソポーラスシリカ（ＦＳＭ型、ＳＢＡ型）を適用したが、次に、より小さな細孔径を有するメソポーラスシリカ（ＦＳＭ型、ＳＢＡ型及びＣ２２-ｍｅｓｏ型）を用いた場合の固定化酵素の活性評価を行った。
具体的には、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：４．２ｎｍ）、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４ｎｍ）、及びＣ２２-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：３．３ｎｍ）に対して固定化した異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を用いて、（２－１）と同様の実験を行い、メチルレッドの脱色率（反応１回目）、また、固定化酵素を繰り返し再利用した場合のメチルレッドの脱色率（反応２回目）を評価した（図４（ｂ））。
（２－１）では、８ｎｍ程度の中心細孔直径を有するメソポーラスシリカ（ＦＳＭ型、ＳＢＡ型）を適用したが、次に、より小さな細孔径を有するメソポーラスシリカ（ＦＳＭ型、ＳＢＡ型及びＣ２２-ｍｅｓｏ型）を用いた場合の固定化酵素の活性評価を行った。
具体的には、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：４．２ｎｍ）、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４ｎｍ）、及びＣ２２-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：３．３ｎｍ）に対して固定化した異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を用いて、（２－１）と同様の実験を行い、メチルレッドの脱色率（反応１回目）、また、固定化酵素を繰り返し再利用した場合のメチルレッドの脱色率（反応２回目）を評価した（図４（ｂ））。
その結果、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：４．２ｎｍ）では、８ｎｍの中心細孔直径を有するＦＳＭの場合と比較して、脱色率（３１．０％）が１０％程度増大したが、未固定の異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を用いた場合の脱色率（３６．１％）よりも低く、共役酵素反応による反応の促進効果が小さかった。一方、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４ｎｍ）及びＣ２２-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：３．３ｎｍ）では、酵素の固定化操作時に一晩、混和しているにもかかわらず、凝集体形成が抑制された結果、極めて高い脱色率が示された（脱色率：９６．４％（ＳＢＡ型）、１００％（Ｃ２２-ｍｅｓｏ型））。
以上より、２種類のＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体（ＦＳＭ型、ＳＢＡ型）において、より細孔径が小さい場合にメチルレッドの脱色効率の向上が認められ、特に、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４ｎｍ）を用いたＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体において、極めて高いメチルレッドの脱色率が認められた。また、これと同等の酵素活性が、Ｃ２２-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：３．３ｎｍ）を用いた場合にも示された。これは、ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＳＢＡ（又は、Ｃ２２-ｍｅｓｏ）では、メソポーラスシリカの細孔内に近接した状態で固定化されたことで、ＡｚｏＲ及びＧＤＨそれぞれの補酵素再生系反応が効率よく働いたことを示している。
これらの実験結果は、ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体の細孔径が小さい場合に、より酵素の凝集体形成抑制能も高まり、異種酵素を安定的に固定化できて共役酵素活性を著しく向上できる可能性を示している。
また、ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体のうちでも特に、細孔径が小さい（８ｎｍ以下）メソポーラスシリカを用いる場合、とりわけ、ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＳＢＡ（５．４）及びＡｚｏＲ－ＧＤＨ－Ｃ２２-ｍｅｓｏ（３．３）の場合は、極めて異種酵素を細孔内に安定的に近接して固定化でき、高い共役酵素反応効率を達成できることがわかった。
これらの実験結果は、ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体の細孔径が小さい場合に、より酵素の凝集体形成抑制能も高まり、異種酵素を安定的に固定化できて共役酵素活性を著しく向上できる可能性を示している。
また、ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体のうちでも特に、細孔径が小さい（８ｎｍ以下）メソポーラスシリカを用いる場合、とりわけ、ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＳＢＡ（５．４）及びＡｚｏＲ－ＧＤＨ－Ｃ２２-ｍｅｓｏ（３．３）の場合は、極めて異種酵素を細孔内に安定的に近接して固定化でき、高い共役酵素反応効率を達成できることがわかった。
しかし、反応１回目の後で回収操作を行った固定化酵素を再び反応に使用した際には、ＦＳＭ型のみならず、ＳＢＡ型、Ｃ２２-ｍｅｓｏ型の場合も、メチルレッドの脱色率が著しく低下した。この結果は、特に、回収工程での洗浄操作により、サイズが大きいＧＤＨが脱離しやすく、大半のＧＤＨが反応系外に排除されている可能性が示唆された。
（実施例３）異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）の活性評価（固定化後の洗浄操作を行った場合）
（実施例２）の結果より、ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体のうち、ＳＢＡ型及びＣ２２-ｍｅｓｏ型では、酵素を遊離状態で反応させた場合と比較して、メチルレッドの脱色率（分解効率）が飛躍的に高いという驚くべき結果が得られた。これは、異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）のうちの一方のＡｚｏＲだけでもメソポーラスシリカ粒子細孔内に結合できたことで、ＡｚｏＲとＧＤＨとの凝集失活が抑制されたことによるものと考えられる。さらに、その細孔径を小さくする（８ｎｍ以下）ことで、さらに異種酵素の共役酵素活性（脱色率）を高めることができる可能性が示唆された。
しかし、当該酵素複合体の再利用性は十分に確保できなかったことから、シリカ粒子の細孔表面に対するＧＤＨの固定化の安定性が十分でなかった可能性が考えられた。
そこで、本実施例では、ＧＤＨの固定化の安定性を高め、補酵素再生活性を促進するための最適な固定化条件について検討した。
具体的には、メソポーラスシリカ粒子の細孔径の最適化を試みるとともに、シリカ粒子への異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）の固定化及び固定化後の洗浄操作時に用いる緩衝液のｐＨ値（ｐＨ範囲：４～９）の最適化を図った。
（実施例２）の結果より、ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体のうち、ＳＢＡ型及びＣ２２-ｍｅｓｏ型では、酵素を遊離状態で反応させた場合と比較して、メチルレッドの脱色率（分解効率）が飛躍的に高いという驚くべき結果が得られた。これは、異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）のうちの一方のＡｚｏＲだけでもメソポーラスシリカ粒子細孔内に結合できたことで、ＡｚｏＲとＧＤＨとの凝集失活が抑制されたことによるものと考えられる。さらに、その細孔径を小さくする（８ｎｍ以下）ことで、さらに異種酵素の共役酵素活性（脱色率）を高めることができる可能性が示唆された。
しかし、当該酵素複合体の再利用性は十分に確保できなかったことから、シリカ粒子の細孔表面に対するＧＤＨの固定化の安定性が十分でなかった可能性が考えられた。
そこで、本実施例では、ＧＤＨの固定化の安定性を高め、補酵素再生活性を促進するための最適な固定化条件について検討した。
具体的には、メソポーラスシリカ粒子の細孔径の最適化を試みるとともに、シリカ粒子への異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）の固定化及び固定化後の洗浄操作時に用いる緩衝液のｐＨ値（ｐＨ範囲：４～９）の最適化を図った。
（３－１）共役酵素反応におけるメソポーラスシリカの細孔径の影響
異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を各種シリカ粒子に固定化した場合について、実施例１（１－２）の通り、メチルレッド及びグルコースを反応基質としたメチルレッド分解反応（３０℃、３０分間）を行い、メチルレッド分解反応における反応開始後１～８分における初期反応速度（図５（ａ））、また、反応３０分後のメチルレッドの分解率（脱色率）（図５（ｂ））を評価した。なお、本実施例での酵素反応はｐＨ７．５で行っている。
その際、シリカ粒子としては、Ｃ-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．７、３．３、６．１ｎｍ）、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４、８．１、１０．６ｎｍ）、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．６、４．２、８．０ｎｍ）、ＭＣＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：３．１ｎｍ）、及び、非多孔質球状シリカ（ＫＥ-Ｓ１００）を用いた。図中、白四角印は、Ｃ-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカを用いた場合、黒菱形印は、ＳＢＡ型メソポーラスシリカを用いた場合、黒三角印は、ＦＳＭ型メソポーラスシリカを用いた場合、黒丸印は、ＭＣＭ型メソポーラスシリカを用いた場合、また、白丸印は、非多孔質球状シリカ（ＫＥ-Ｓ１００）を用いた場合、である。
異種酵素を固定化する際には、図３（ｂ）に記載の手順に従い、緩衝液に２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ７．５）を用いて、ＡｚｏＲ及びＧＤＨを同時にシリカ粒子に一晩混和させて吸着させ、同緩衝液を用いた洗浄操作を行うことでＡｚｏＲ－ＧＤＨ－シリカ微粒子複合体を得た。
異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を各種シリカ粒子に固定化した場合について、実施例１（１－２）の通り、メチルレッド及びグルコースを反応基質としたメチルレッド分解反応（３０℃、３０分間）を行い、メチルレッド分解反応における反応開始後１～８分における初期反応速度（図５（ａ））、また、反応３０分後のメチルレッドの分解率（脱色率）（図５（ｂ））を評価した。なお、本実施例での酵素反応はｐＨ７．５で行っている。
その際、シリカ粒子としては、Ｃ-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．７、３．３、６．１ｎｍ）、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４、８．１、１０．６ｎｍ）、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．６、４．２、８．０ｎｍ）、ＭＣＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：３．１ｎｍ）、及び、非多孔質球状シリカ（ＫＥ-Ｓ１００）を用いた。図中、白四角印は、Ｃ-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカを用いた場合、黒菱形印は、ＳＢＡ型メソポーラスシリカを用いた場合、黒三角印は、ＦＳＭ型メソポーラスシリカを用いた場合、黒丸印は、ＭＣＭ型メソポーラスシリカを用いた場合、また、白丸印は、非多孔質球状シリカ（ＫＥ-Ｓ１００）を用いた場合、である。
異種酵素を固定化する際には、図３（ｂ）に記載の手順に従い、緩衝液に２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ７．５）を用いて、ＡｚｏＲ及びＧＤＨを同時にシリカ粒子に一晩混和させて吸着させ、同緩衝液を用いた洗浄操作を行うことでＡｚｏＲ－ＧＤＨ－シリカ微粒子複合体を得た。
その結果、初期反応速度及び脱色率ともに、「ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＭＣＭ」又は「ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＫＥ-Ｓ１００」では低い値に留まったものの、「ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－Ｃ-ｍｅｓｏ」、「ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＳＢＡ」及び「ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＦＳＭ」ではより高い値が示され、かつ、それぞれのメソポーラスシリカについて細孔径が小さくなる程、酵素活性が高くなる傾向が認められた。
また、ＦＳＭと比較した場合は、Ｃ-ｍｅｓｏとＳＢＡでより高い活性が示され、特に、Ｃ１６-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．７ｎｍ）及びＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４ｎｍ）を用いた場合に最も高い活性（初期反応速度：約５×１０－８ｍｏＬ／ｍｉｎ、脱色率：約３０％）が認められ、Ｃ-ｍｅｓｏでは、６．１ｎｍ以上、ＳＢＡでは１０ｎｍ以上の細孔径では活性が極めて低いことが示された。
また、ＦＳＭと比較した場合は、Ｃ-ｍｅｓｏとＳＢＡでより高い活性が示され、特に、Ｃ１６-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．７ｎｍ）及びＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４ｎｍ）を用いた場合に最も高い活性（初期反応速度：約５×１０－８ｍｏＬ／ｍｉｎ、脱色率：約３０％）が認められ、Ｃ-ｍｅｓｏでは、６．１ｎｍ以上、ＳＢＡでは１０ｎｍ以上の細孔径では活性が極めて低いことが示された。
以上より、３種類のＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体（Ｃ-ｍｅｓｏ型、ＦＳＭ型、ＳＢＡ型）において、図４の結果と同様に、より細孔径が小さい場合にメチルレッドの脱色効率の向上が認められ、特に、Ｃ-ｍｅｓｏ型及びＳＢＡ型メソポーラスシリカを用いたＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体において、より高いメチルレッドの脱色率が認められた。これは、ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＳＢＡ（又は、Ｃ-ｍｅｓｏ）の場合は、固定化後の十分な洗浄操作によっても、異種酵素の双方共、あるいは、少なくともＡｚｏＲは安定にメソポーラスシリカ細孔内に保持され、酵素活性を発揮していることを示している。しかし、最も高い脱色率が３０％程度であり、洗浄操作を加えた本反応でのＧＤＨによる補酵素再生活性の寄与の程度については不明と考えられた。
（３－２）異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）の固定化における緩衝液のｐＨ値の影響
実施例１（１－１）の通り、シリカ粒子への異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）の固定化の際に洗浄操作を行う過程において、固定化及び固定化後の洗浄操作時に用いる緩衝液のｐＨ値を４条件（ｐＨ：４、６、７．５、９）とし、酵素活性に与えるｐＨの影響について検証した。
異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を各種シリカ粒子に固定化した場合について、実施例１（１－２）の通り、メチルレッド及びグルコースを反応基質としたメチルレッド分解反応（３０℃、３０分間）を行い、メチルレッド分解反応における反応開始後１～８分における初期反応速度（図６（ａ））、また、反応３０分後のメチルレッドの分解率（脱色率）（図６（ｂ））を評価した。その際、シリカ粒子としては、（３－１）の結果を受けて、Ｃ-ｍｅｓｏ型、ＳＢＡ型、及び、ＦＳＭ型メソポーラスシリカに限定し、その中でも各々のメソポーラスシリカについてより高い酵素活性を発現した、Ｃ１６-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．７ｎｍ）、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４ｎｍ）、及び、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．６ｎｍ）を適用した。図中、白四角印は、Ｃ１６-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．７ｎｍ）を用いた場合、黒菱形印は、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４ｎｍ）を用いた場合、黒三角印は、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．６ｎｍ）を用いた場合、である。
異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を固定化する際には、図３（ｂ）に記載の手順に従い、緩衝液に２５ｍＭ 酢酸－酢酸ナトリウム（ｐＨ ４）、２５ｍＭ ＭＥＳ-ＮａＯＨ（ｐＨ ６）、２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ７．５）、２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ９）から選択されたいずれか１つの緩衝液を用いて、ＡｚｏＲ及びＧＤＨを同時にシリカ粒子に一晩混和させて吸着させ、同緩衝液を用いた洗浄操作を行うことでＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体を得た。
実施例１（１－１）の通り、シリカ粒子への異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）の固定化の際に洗浄操作を行う過程において、固定化及び固定化後の洗浄操作時に用いる緩衝液のｐＨ値を４条件（ｐＨ：４、６、７．５、９）とし、酵素活性に与えるｐＨの影響について検証した。
異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を各種シリカ粒子に固定化した場合について、実施例１（１－２）の通り、メチルレッド及びグルコースを反応基質としたメチルレッド分解反応（３０℃、３０分間）を行い、メチルレッド分解反応における反応開始後１～８分における初期反応速度（図６（ａ））、また、反応３０分後のメチルレッドの分解率（脱色率）（図６（ｂ））を評価した。その際、シリカ粒子としては、（３－１）の結果を受けて、Ｃ-ｍｅｓｏ型、ＳＢＡ型、及び、ＦＳＭ型メソポーラスシリカに限定し、その中でも各々のメソポーラスシリカについてより高い酵素活性を発現した、Ｃ１６-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．７ｎｍ）、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４ｎｍ）、及び、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．６ｎｍ）を適用した。図中、白四角印は、Ｃ１６-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．７ｎｍ）を用いた場合、黒菱形印は、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４ｎｍ）を用いた場合、黒三角印は、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．６ｎｍ）を用いた場合、である。
異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を固定化する際には、図３（ｂ）に記載の手順に従い、緩衝液に２５ｍＭ 酢酸－酢酸ナトリウム（ｐＨ ４）、２５ｍＭ ＭＥＳ-ＮａＯＨ（ｐＨ ６）、２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ７．５）、２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ９）から選択されたいずれか１つの緩衝液を用いて、ＡｚｏＲ及びＧＤＨを同時にシリカ粒子に一晩混和させて吸着させ、同緩衝液を用いた洗浄操作を行うことでＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体を得た。
その結果、いずれのメソポーラスシリカ粒子においても、固定化及び洗浄時に用いた緩衝液のｐＨ値が６の場合に酵素活性（初期反応速度及び脱色率）の最大値が示され、ｐＨ６ ＞ ７．５ ＞ ９ ＞ ４の順序で酵素活性が高くなる傾向が認められた。ｐＨ４及び９の場合、「ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＦＳＭ」の脱色率（ｐＨ４：０％、ｐＨ９：約８％）が最も低く、次いで、「ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＳＢＡ」の脱色率（ｐＨ４：約５％、ｐＨ９：約１６％）が低かった。ところが、興味深いことに「ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－Ｃ１６-ｍｅｓｏ」の脱色率（ｐＨ４：約２５％、ｐＨ９：約２７％）は比較的高く、これは酵素の固定化及び活性発現におけるＣ１６-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカのｐＨ耐性がより高いことを示している。全体的には「ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＦＳＭ」では低い酵素活性に留まったのに対し、「ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－Ｃ１６-ｍｅｓｏ」及び「ＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＳＢＡ」ではより高い酵素活性が示され、特に、ｐＨ６では、Ｃ１６-ｍｅｓｏとＳＢＡを用いた場合に最も高い活性（初期反応速度：約６×１０－８ｍｏＬ／ｍｉｎ、脱色率：約３５％）が認められた。
以上より、本発明のＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ（Ｃ１６-ｍｅｓｏ型、ＳＢＡ型）複合体及びＡｚｏＲ－ＧＤＨ－ＦＳＭの酵素活性は、固定化及び洗浄用緩衝液のｐＨ値に大きく依存することが判明し、本発明のＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ（Ｃ１６-ｍｅｓｏ型、ＳＢＡ型）複合体の最適ｐＨ範囲は、ｐＨ５～８、好ましくはｐＨ６～７．５であることがわかった。とりわけｐＨ６において最大の酵素活性を発現し、最も高いメチルレッドの脱色率（約３５％）が認められた。この値は、（３－１）で行ったｐＨ７．５における共役酵素反応実験結果での脱色率（約３０％）を５％程度上回ったことからみて、ＧＤＨによる補酵素再生活性の寄与が高まったことが示唆された。
このことは、ｐＨ範囲を最適化したことで、共役酵素反応に関わる異種酵素の双方をメソポーラスシリカ細孔内で最適密度で集積できる可能性が示された。すなわち、本発明のメソポーラスシリカ複合体は、通常、遠心分離、洗浄工程を経ることなくそのまま共役酵素反応に供されることを考慮すると、（実施例２）の（図４ｂ）などで９６％以上の酵素活性を示した細孔径の小さいＳＢＡ又はＣ-ｍｅｓｏ複合体の場合、固定化時のｐＨをより最適化することでさらに共役酵素活性が高められる可能性が示されたことになる。また、本発明のメソポーラスシリカ複合体の最適ｐＨ範囲が中性付近（ｐＨ５～８）であることは、本発明のメソポーラスシリカ複合体が広範な共役酵素反応に適用できることが示されたことでもある。
このことは、ｐＨ範囲を最適化したことで、共役酵素反応に関わる異種酵素の双方をメソポーラスシリカ細孔内で最適密度で集積できる可能性が示された。すなわち、本発明のメソポーラスシリカ複合体は、通常、遠心分離、洗浄工程を経ることなくそのまま共役酵素反応に供されることを考慮すると、（実施例２）の（図４ｂ）などで９６％以上の酵素活性を示した細孔径の小さいＳＢＡ又はＣ-ｍｅｓｏ複合体の場合、固定化時のｐＨをより最適化することでさらに共役酵素活性が高められる可能性が示されたことになる。また、本発明のメソポーラスシリカ複合体の最適ｐＨ範囲が中性付近（ｐＨ５～８）であることは、本発明のメソポーラスシリカ複合体が広範な共役酵素反応に適用できることが示されたことでもある。
（３－３）単一酵素（ＡｚｏＲ）の固定化における緩衝液のｐＨ値の影響
実施例１（１－１）の通り、シリカ粒子への単一酵素（ＡｚｏＲ）の固定化の際に洗浄操作を行う過程において、固定化及び固定化後の洗浄操作時に用いる緩衝液のｐＨ値を４条件（ｐＨ：４、６、７．５、９）とし、酵素活性に与えるｐＨの影響について検証した。
単一酵素（ＡｚｏＲ）を各種シリカ粒子に固定化した場合について、実施例１（１－２）の通り、メチルレッド及びグルコースを反応基質としたメチルレッド分解反応（３０℃、３０分間）を行い、メチルレッド分解反応における反応開始後１～８分における初期反応速度（図７（ａ））、また、反応３０分後のメチルレッドの分解率（脱色率）（図７（ｂ））を評価した。その際、シリカ粒子としては、（３－２）と同様に、Ｃ１６-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．７ｎｍ）、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４ｎｍ）、及び、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．６ｎｍ）を適用した。図中、白四角印は、Ｃ１６-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．７ｎｍ）を用いた場合、黒菱形印は、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４ｎｍ）を用いた場合、黒三角印は、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．６ｎｍ）を用いた場合、である。
実施例１（１－１）の通り、シリカ粒子への単一酵素（ＡｚｏＲ）の固定化の際に洗浄操作を行う過程において、固定化及び固定化後の洗浄操作時に用いる緩衝液のｐＨ値を４条件（ｐＨ：４、６、７．５、９）とし、酵素活性に与えるｐＨの影響について検証した。
単一酵素（ＡｚｏＲ）を各種シリカ粒子に固定化した場合について、実施例１（１－２）の通り、メチルレッド及びグルコースを反応基質としたメチルレッド分解反応（３０℃、３０分間）を行い、メチルレッド分解反応における反応開始後１～８分における初期反応速度（図７（ａ））、また、反応３０分後のメチルレッドの分解率（脱色率）（図７（ｂ））を評価した。その際、シリカ粒子としては、（３－２）と同様に、Ｃ１６-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．７ｎｍ）、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４ｎｍ）、及び、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．６ｎｍ）を適用した。図中、白四角印は、Ｃ１６-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．７ｎｍ）を用いた場合、黒菱形印は、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４ｎｍ）を用いた場合、黒三角印は、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．６ｎｍ）を用いた場合、である。
単一酵素（ＡｚｏＲ）を固定化する際には、図３（ｂ）に記載の手順に従い、緩衝液に２５ｍＭ 酢酸－酢酸ナトリウム（ｐＨ ４）、２５ｍＭ ＭＥＳ-ＮａＯＨ（ｐＨ ６）、２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ７．５）、２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ９）から選択されたいずれか１つの緩衝液を用いて、ＡｚｏＲをシリカ粒子に一晩混和させて吸着させ、同緩衝液を用いた洗浄操作を行うことでＡｚｏＲ－メソポーラスシリカ複合体を得た。
その結果、ＦＳＭ型メソポーラスシリカにおいては、異種酵素を用いた場合の結果（図６）と同様に、固定化及び洗浄時に用いた緩衝液のｐＨ値が６の場合に酵素活性（初期反応速度及び脱色率）の最大値が示され、ｐＨ６ ＞ ７．５ ＞ ９ ＞ ４の順序で酵素活性が高くなる傾向が認められた。一方、Ｃ１６-ｍｅｓｏ型及びＳＢＡ型メソポーラスシリカにおいては、図６の結果とは異なり、緩衝液のｐＨ値が７．５の場合に酵素活性（初期反応速度及び脱色率）の最大値が示され、ｐＨ７．５ ＞ ６ ＞ ９ ＞ ４の順序で酵素活性が高くなる傾向が認められた。ｐＨ４及び９の場合、「ＡｚｏＲ－ＦＳＭ」の脱色率（ｐＨ４：４％、ｐＨ９：約６％）が最も低く、次いで、「ＡｚｏＲ－ＳＢＡ」の脱色率（ｐＨ４：約４％、ｐＨ９：約１１％）が低かった。ところが、興味深いことに「ＡｚｏＲ－Ｃ１６-ｍｅｓｏ」の脱色率（ｐＨ４：約１７％、ｐＨ９：約１９％）は比較的高く、これは酵素の固定化及び活性発現におけるＣ１６-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカのｐＨ耐性がより高いことを示している。全体的には「ＡｚｏＲ－ＦＳＭ」では低い酵素活性に留まったものの、「ＡｚｏＲ－Ｃ１６-ｍｅｓｏ」及び「ＡｚｏＲ－ＳＢＡ」ではより高い酵素活性が示された（脱色率：約３０％（ｐＨ６）、約３１％（ｐＨ７．５））。
以上より、３種類のＡｚｏＲ－メソポーラスシリカ複合体（Ｃ１６-ｍｅｓｏ型、ＦＳＭ型、ＳＢＡ型）の酵素活性は、異種酵素を用いた場合の結果（図６）と同様に、固定化用緩衝液及び洗浄用緩衝液のｐＨ値に大きく依存することが判明した。Ｃ１６-ｍｅｓｏ及びＳＢＡの場合にはｐＨ７．５、また、ＦＳＭの場合にはｐＨ６において最大の酵素活性を発現した（脱色率：約３１％（Ｃ１６-ｍｅｓｏ及びＳＢＡ）、約２３％（ＦＳＭ））。
また、ＡｚｏＲを単独で固定化した場合に、洗浄後の脱色率は最大でも３０％程度に留まることからみて、（３－２）でのＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ（Ｃ１６-ｍｅｓｏ型、ＳＢＡ型）複合体の最適ｐＨ範囲（ｐＨ５～８、好ましくはｐＨ６～７．５）での固定化実験でのＧＤＨ反応の共役的な寄与は確実であると考えられる。以下、ＦＳＭ型メソポーラスシリカも含め、本発明のメソポーラスシリカの種類別の固定化の最適なｐＨ条件を詳細に考察する。
また、ＡｚｏＲを単独で固定化した場合に、洗浄後の脱色率は最大でも３０％程度に留まることからみて、（３－２）でのＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ（Ｃ１６-ｍｅｓｏ型、ＳＢＡ型）複合体の最適ｐＨ範囲（ｐＨ５～８、好ましくはｐＨ６～７．５）での固定化実験でのＧＤＨ反応の共役的な寄与は確実であると考えられる。以下、ＦＳＭ型メソポーラスシリカも含め、本発明のメソポーラスシリカの種類別の固定化の最適なｐＨ条件を詳細に考察する。
（３－４）細孔に固定化した異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）と単一酵素（ＡｚｏＲ）の活性の比較
異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を用いた場合（図６）及び単一酵素（ＡｚｏＲ）を用いた場合（図７）の活性評価（初期反応速度及び脱色率）の結果について、メソポーラスシリカの種類別に整理した結果を図８～１０に示す。
図８は、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．６ｎｍ）を用いた場合であり、図中、黒三角印は、異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を固定化した場合、白三角印は、単一酵素（ＡｚｏＲ）を固定化した場合、である。図９は、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４ｎｍ）を用いた場合であり、図中、黒菱形印は、異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を固定化した場合、白菱形印は、単一酵素（ＡｚｏＲ）を固定化した場合、である。また、図１０は、Ｃ１６-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．７ｎｍ）を用いた場合であり、図中、白四角印は、異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を固定化した場合、黒四角印は、単一酵素（ＡｚｏＲ）を固定化した場合、である。
異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を用いた場合（図６）及び単一酵素（ＡｚｏＲ）を用いた場合（図７）の活性評価（初期反応速度及び脱色率）の結果について、メソポーラスシリカの種類別に整理した結果を図８～１０に示す。
図８は、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．６ｎｍ）を用いた場合であり、図中、黒三角印は、異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を固定化した場合、白三角印は、単一酵素（ＡｚｏＲ）を固定化した場合、である。図９は、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４ｎｍ）を用いた場合であり、図中、黒菱形印は、異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を固定化した場合、白菱形印は、単一酵素（ＡｚｏＲ）を固定化した場合、である。また、図１０は、Ｃ１６-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．７ｎｍ）を用いた場合であり、図中、白四角印は、異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を固定化した場合、黒四角印は、単一酵素（ＡｚｏＲ）を固定化した場合、である。
図８より、ＦＳＭ型メソポーラスシリカでは、固定化及び洗浄用緩衝液のｐＨ値が７．５と９の場合（中性から弱アルカリ性のｐＨ）に、異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）の活性が単一酵素（ＡｚｏＲ）の活性を上回った。一方、図９及び１０より、ＳＢＡ型及びＣ１６-ｍｅｓｏ型メソポーラスシリカでは、緩衝液のｐＨ値が４、６、又は、９の場合（弱酸性から中性、又は、弱アルカリ性のｐＨ）に、異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）の活性が単一酵素（ＡｚｏＲ）の活性を上回った。
以上より、メソポーラスシリカの種類の違いによって、メチルレッド分解反応における酵素活性（初期反応速度及び脱色率）を向上できる、固定化用緩衝液（及び洗浄用緩衝液）の最適なｐＨ値が異なることが判明した。全体的には、異種酵素（ＡｚｏＲ及びＧＤＨ）を固定化した場合の酵素活性（脱色率）の向上率は５～１０％程度であり、単一酵素（ＡｚｏＲ）を固定化した場合と比較して顕著な活性向上が認められた。このことから、ＳＢＡ型及びＣ-ｍｅｓｏ型以外のメソポーラスシリカであっても、最適な細孔径の範囲に成形し、かつ固定化の際のｐＨ値を最適化すれば、大きなサイズの異種酵素が関与する補酵素再生活性の寄与を高め異種酵素の共役酵素反応の高効率化を実現できる可能性が示された。
（実施例４）ＲＣＲ－ＳＤＨ－メソポーラスシリカ複合体の製造及び酵素反応
本実施例では、各種メソポーラスシリカに対するＲ体選択的カルボニル還元酵素（ＲＣＲ：配列番号２）及びソルビトール脱水素酵素（ＳＤＨ：配列番号３）の固定化と酵素活性の評価を行った。図１１に、メソポーラスシリカの規則性細孔（シリカ細孔）に固定化したＲＣＲ及びＳＤＨを備えたＲＣＲ－ＳＤＨ－メソポーラスシリカ複合体のうちＲＣＲとプロキラルカルボニル化合物（2-ヒドロキシアセトフェノン：２-ＨＡＰ）が相互作用し、更に、ＳＤＨによる補酵素（ＮＡＤＨ）の再生系を組み込み酸化型ＮＡＤ＋から還元型ＮＡＤＨに再生することができるようになった結果、光学活性アルコール（（Ｒ）-１-フェニル-１，２-エタンジオール：（Ｒ）-ＰＥＤ）が高効率かつ持続的に合成される様子を模式的に表した説明図を示す。
本実施例では、各種メソポーラスシリカに対するＲ体選択的カルボニル還元酵素（ＲＣＲ：配列番号２）及びソルビトール脱水素酵素（ＳＤＨ：配列番号３）の固定化と酵素活性の評価を行った。図１１に、メソポーラスシリカの規則性細孔（シリカ細孔）に固定化したＲＣＲ及びＳＤＨを備えたＲＣＲ－ＳＤＨ－メソポーラスシリカ複合体のうちＲＣＲとプロキラルカルボニル化合物（2-ヒドロキシアセトフェノン：２-ＨＡＰ）が相互作用し、更に、ＳＤＨによる補酵素（ＮＡＤＨ）の再生系を組み込み酸化型ＮＡＤ＋から還元型ＮＡＤＨに再生することができるようになった結果、光学活性アルコール（（Ｒ）-１-フェニル-１，２-エタンジオール：（Ｒ）-ＰＥＤ）が高効率かつ持続的に合成される様子を模式的に表した説明図を示す。
（４－１）ＲＣＲ－ＳＤＨ－メソポーラスシリカ複合体の製造
＜ＲＣＲ及びＳＤＨのメソポーラスシリカへの固定化＞
酵素の固定化支持体には、メソポーラスシリカとして、（製造例１）により得られた中心細孔直径の異なる４種類のメソポーラスシリカ：１）ＦＳＭ-１６（中心細孔直径：２．６ｎｍ）、２）ＦＳＭ-２２（中心細孔直径：８．０ｎｍ）、３）ＳＢＡ-１５（中心細孔直径：５．４ｎｍ）及び４）ＳＢＡ-１５（中心細孔直径：８．１ｎｍ）を使用した。また、比較のための非多孔質球状シリカとして、シーホスター ＫＥ-Ｓ１００（日本触媒社製、平均粒子径：０．７６μｍ）を使用した。
また、上記ＲＣＲ及びＳＤＨを遺伝子組換え大腸菌を利用したタンパク発現系により作製した。
具体的には、Ｒ体選択的カルボニル還元酵素としてCandida Parapsilosis由来のＲＣＲ（四量体、アミノ酸残基数：３３６、分子量（単量体）：約３７ｋＤ）の遺伝子（配列番号２）をサーモフィッシャーサイエンティフィック社の人工遺伝子合成サービス「Ｇｅｎｅ Ａｒｔ」により合成した。
ソルビトール脱水素酵素としては、Rhodobacter sphaeroides Si4由来のＳＤＨ（四量体、アミノ酸残基数：２５６、分子量（単量体）：約２９ｋＤ）の遺伝子（配列番号３）を上記「Ｇｅｎｅ Ａｒｔ」により合成した。
ＲＣＲ及びＳＤＨは、前記合成遺伝子を組換え大腸菌に導入し、大腸菌タンパク発現系を利用して製造した。
＜ＲＣＲ及びＳＤＨのメソポーラスシリカへの固定化＞
酵素の固定化支持体には、メソポーラスシリカとして、（製造例１）により得られた中心細孔直径の異なる４種類のメソポーラスシリカ：１）ＦＳＭ-１６（中心細孔直径：２．６ｎｍ）、２）ＦＳＭ-２２（中心細孔直径：８．０ｎｍ）、３）ＳＢＡ-１５（中心細孔直径：５．４ｎｍ）及び４）ＳＢＡ-１５（中心細孔直径：８．１ｎｍ）を使用した。また、比較のための非多孔質球状シリカとして、シーホスター ＫＥ-Ｓ１００（日本触媒社製、平均粒子径：０．７６μｍ）を使用した。
また、上記ＲＣＲ及びＳＤＨを遺伝子組換え大腸菌を利用したタンパク発現系により作製した。
具体的には、Ｒ体選択的カルボニル還元酵素としてCandida Parapsilosis由来のＲＣＲ（四量体、アミノ酸残基数：３３６、分子量（単量体）：約３７ｋＤ）の遺伝子（配列番号２）をサーモフィッシャーサイエンティフィック社の人工遺伝子合成サービス「Ｇｅｎｅ Ａｒｔ」により合成した。
ソルビトール脱水素酵素としては、Rhodobacter sphaeroides Si4由来のＳＤＨ（四量体、アミノ酸残基数：２５６、分子量（単量体）：約２９ｋＤ）の遺伝子（配列番号３）を上記「Ｇｅｎｅ Ａｒｔ」により合成した。
ＲＣＲ及びＳＤＨは、前記合成遺伝子を組換え大腸菌に導入し、大腸菌タンパク発現系を利用して製造した。
＜ＲＣＲ及びＳＤＨのメソポーラスシリカ複合体による光学活性アルコールの合成反応の実験手順＞
Ｒ体選択的カルボニル還元酵素（ＲＣＲ）及びソルビトール脱水素酵素（ＳＤＨ）による補酵素再生系を利用したプロキラルカルボニル化合物（２-ＨＡＰ）の不斉還元による光学活性アルコール（（Ｒ）-ＰＥＤ）の合成反応の概略は、図１２（ａ）に示すとおりである。
図１２（ｂ）の「実験手順」の後段に、得られたＲＣＲ及びＳＤＨのメソポーラスシリカ複合体を用いた（Ｒ）-ＰＥＤの合成反応、ＨＰＬＣ分析、固定化酵素サンプル回収及び再使用の開始までの手順を示す。
Ｒ体選択的カルボニル還元酵素（ＲＣＲ）及びソルビトール脱水素酵素（ＳＤＨ）による補酵素再生系を利用したプロキラルカルボニル化合物（２-ＨＡＰ）の不斉還元による光学活性アルコール（（Ｒ）-ＰＥＤ）の合成反応の概略は、図１２（ａ）に示すとおりである。
図１２（ｂ）の「実験手順」の後段に、得られたＲＣＲ及びＳＤＨのメソポーラスシリカ複合体を用いた（Ｒ）-ＰＥＤの合成反応、ＨＰＬＣ分析、固定化酵素サンプル回収及び再使用の開始までの手順を示す。
＜酵素－メソポーラスシリカ複合体の製造方法＞
図１２（ｂ）記載の酵素固定化による複合体の製造方法として、酵素の固定化及び洗浄のいずれもｐＨ８の緩衝液（２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ）を用いて行った。また、比較のために、一部の酵素複合体においてｐＨ６の緩衝液（２５ｍＭ ＭＥＳ-ＮａＯＨ）を適用した。
具体的には、図１２（ｂ）に記載の手順に従い、ＲＣＲ（２μｍｏｌ）又はＲＣＲ（２μｍｏｌ）と共にＳＤＨ（０．５μｍｏｌ）を含んだ酵素溶液（２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ８））１ｍＬと、予めマイクロチューブに量り取ったシリカ微粒子粉末（ＦＳＭ-１６、ＦＳＭ-２２又はＳＢＡ-１５）１０ｍｇとを、ローテーターを用いて１６時間以上４℃で穏やかに混合した後、遠心分離を行い、上清を全て除去することによって、酵素－シリカ微粒子複合体の前駆体を得た。
続いて、洗浄用緩衝液（２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ８））１ｍＬを添加し、Ｖｏｒｔｅｘ Ｍｉｘｅｒを用いて約５秒間室温で攪拌し、前記酵素－シリカ微粒子複合体の前駆体を再懸濁した後、遠心分離を行い、上清を全て除去する洗浄操作を行った。再び、前記洗浄用緩衝液１ｍＬを用いて洗浄操作を繰り返し、さらに前記洗浄用緩衝液１ｍＬを用いて再懸濁した後、遠心分離を行い、上清を全て除去し、最終的に、「ＲＣＲ－ＦＳＭ（ＳＢＡ）」、並びに、「ＲＣＲ－ＳＤＨ－ＦＳＭ（ＳＢＡ）」を得た。
比較のために非多孔質球状シリカ（ＫＥ-Ｓ１００）を用いて、同様の手順によりそれぞれの複合体を得た。以下、「ＲＣＲ－ＫＥ-Ｓ１００」または「ＲＣＲ－ＳＤＨ－ＫＥ-Ｓ１００」という。
図１２（ｂ）記載の酵素固定化による複合体の製造方法として、酵素の固定化及び洗浄のいずれもｐＨ８の緩衝液（２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ）を用いて行った。また、比較のために、一部の酵素複合体においてｐＨ６の緩衝液（２５ｍＭ ＭＥＳ-ＮａＯＨ）を適用した。
具体的には、図１２（ｂ）に記載の手順に従い、ＲＣＲ（２μｍｏｌ）又はＲＣＲ（２μｍｏｌ）と共にＳＤＨ（０．５μｍｏｌ）を含んだ酵素溶液（２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ８））１ｍＬと、予めマイクロチューブに量り取ったシリカ微粒子粉末（ＦＳＭ-１６、ＦＳＭ-２２又はＳＢＡ-１５）１０ｍｇとを、ローテーターを用いて１６時間以上４℃で穏やかに混合した後、遠心分離を行い、上清を全て除去することによって、酵素－シリカ微粒子複合体の前駆体を得た。
続いて、洗浄用緩衝液（２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ８））１ｍＬを添加し、Ｖｏｒｔｅｘ Ｍｉｘｅｒを用いて約５秒間室温で攪拌し、前記酵素－シリカ微粒子複合体の前駆体を再懸濁した後、遠心分離を行い、上清を全て除去する洗浄操作を行った。再び、前記洗浄用緩衝液１ｍＬを用いて洗浄操作を繰り返し、さらに前記洗浄用緩衝液１ｍＬを用いて再懸濁した後、遠心分離を行い、上清を全て除去し、最終的に、「ＲＣＲ－ＦＳＭ（ＳＢＡ）」、並びに、「ＲＣＲ－ＳＤＨ－ＦＳＭ（ＳＢＡ）」を得た。
比較のために非多孔質球状シリカ（ＫＥ-Ｓ１００）を用いて、同様の手順によりそれぞれの複合体を得た。以下、「ＲＣＲ－ＫＥ-Ｓ１００」または「ＲＣＲ－ＳＤＨ－ＫＥ-Ｓ１００」という。
（４－２）光学活性アルコールの合成活性の評価
（４－１）で得られたＲＣＲ－メソポーラスシリカ複合体などの各種複合体それぞれの酵素活性を、反応基質としてのプロキラルカルボニル化合物（2-ヒドロキシアセトフェノン：２-ＨＡＰ）及びＤ-ソルビトールを添加して補酵素再生系を働かせ、光学活性アルコール（（Ｒ）-１-フェニル-１，２-エタンジオール：（Ｒ）-ＰＥＤ）の生成効率（２-ＨＡＰから（Ｒ）-ＰＥＤへの転化率）により評価した。
具体的には、図１２（ｂ）に示したように、（４－１）で得られた「ＲＣＲ－ＦＳＭ（ＳＢＡ）」などの各種複合体それぞれに対して、以下の酵素反応を起こさせ、それぞれの（Ｒ）-ＰＥＤへの転化率を測定した。
（４－１）で得られたＲＣＲ－メソポーラスシリカ複合体などの各種複合体それぞれの酵素活性を、反応基質としてのプロキラルカルボニル化合物（2-ヒドロキシアセトフェノン：２-ＨＡＰ）及びＤ-ソルビトールを添加して補酵素再生系を働かせ、光学活性アルコール（（Ｒ）-１-フェニル-１，２-エタンジオール：（Ｒ）-ＰＥＤ）の生成効率（２-ＨＡＰから（Ｒ）-ＰＥＤへの転化率）により評価した。
具体的には、図１２（ｂ）に示したように、（４－１）で得られた「ＲＣＲ－ＦＳＭ（ＳＢＡ）」などの各種複合体それぞれに対して、以下の酵素反応を起こさせ、それぞれの（Ｒ）-ＰＥＤへの転化率を測定した。
酵素反応は、（４－１）で得られた、マイクロチューブ内の上記酵素－シリカ微粒子複合体に対して、２-ＨＡＰ、Ｄ-ソルビトール、また、補酵素を含んだ反応基質（１ｍＬ）を添加することによって開始した。
その際、最終反応組成が、「２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ８）、１ｍＭ ２-ＨＡＰ、０．１ｍＭ ＮＡＤＨ、１０ｍＭ Ｄ-ソルビトール、２μＭ ＲＣＲ、０．５μＭ ＳＤＨ、反応液量：１ｍＬ」となるように調整した。
反応条件は、定温恒温器内（ＳＡＮＹＯ社製、ＭＩＲ-１５４）においてローテーターを用いて穏やかに混和しながら３５℃で３０分間の加温状態を保持することとした。
その際、最終反応組成が、「２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ８）、１ｍＭ ２-ＨＡＰ、０．１ｍＭ ＮＡＤＨ、１０ｍＭ Ｄ-ソルビトール、２μＭ ＲＣＲ、０．５μＭ ＳＤＨ、反応液量：１ｍＬ」となるように調整した。
反応条件は、定温恒温器内（ＳＡＮＹＯ社製、ＭＩＲ-１５４）においてローテーターを用いて穏やかに混和しながら３５℃で３０分間の加温状態を保持することとした。
次いで、遠心分離後の上清を回収し、この回収液を８０℃で１０分間加熱処理し、上清に含まれる生成物（（Ｒ）-ＰＥＤ）の定量を行った。（Ｒ）-ＰＥＤの分析には、ＯＤＳカラムを搭載した高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）（日立ハイテクサイエンス社製、ＬａＣｈｒｏｍ ＥＬＩＴＥ）を使用した。
その際、分析条件は、「測定波長：２１０ｎｍ、カラムオーブン設定温度：３０℃、流速：０．３ｍＬ／ｍｉｎ、分析時間：１０分間、移動相組成：アセトニトリル／水＝６０／４０（Ｖ／Ｖ）」とした。
その際、分析条件は、「測定波長：２１０ｎｍ、カラムオーブン設定温度：３０℃、流速：０．３ｍＬ／ｍｉｎ、分析時間：１０分間、移動相組成：アセトニトリル／水＝６０／４０（Ｖ／Ｖ）」とした。
ここで、固定化酵素サンプルの再利用性を評価する場合には、上記の遠心分離後に回収された酵素－シリカ微粒子複合体に対して、洗浄用緩衝液（２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ８））１ｍＬを添加し、Ｖｏｒｔｅｘ Ｍｉｘｅｒを用いて約５秒間室温で攪拌し、酵素－シリカ微粒子複合体を再懸濁した後、遠心分離を行い、上清を全て除去する洗浄操作を行った。続いて、新しい反応基質溶液を添加することによって、反応２回目の酵素反応を開始した。上述の実験手順に従い、合計１０回の酵素反応を繰り返し、固定化酵素の繰り返し耐久性（再利用性）の評価も行った。
（実施例５）異種酵素（ＲＣＲ及びＳＤＨ）の活性評価
本実施例では、ＲＣＲ及びＳＤＨを含む緩衝液を用い、実施例（４－１）の方法に従って、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（ＦＳＭ８．０，中心細孔直径：８．０ｎｍ）、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（ＳＢＡ８．１，中心細孔直径：８．１ｎｍ）、及び非多孔質球状シリカ（ＫＥ-Ｓ１００）の各微粒子に対して固定化処理を行い、３種類の「ＲＣＲ－シリカ微粒子複合体」、又は、３種類の「ＲＣＲ－ＳＤＨ－シリカ微粒子複合体」を形成させた。
コントロールとして遊離の未固定「ＲＣＲ」及び「ＲＣＲ－ＳＤＨ」を用い、実施例（４－２）の方法に従って、光学活性アルコール（（Ｒ）-ＰＥＤ）の合成実験を行い、反応３０分後の（Ｒ）-ＰＥＤへの転化率（反応１回目）、固定化直後の上清に含まれるＲＣＲの活性（転化率）、また、固定化直後の上清に含まれるＳＤＨの活性（Ｕ／Ｌ）を評価した（図１３（ａ））。なお、未固定の遊離酵素による合成反応は、一晩、混和した後の転化率を測定した。
本実施例では、ＲＣＲ及びＳＤＨを含む緩衝液を用い、実施例（４－１）の方法に従って、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（ＦＳＭ８．０，中心細孔直径：８．０ｎｍ）、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（ＳＢＡ８．１，中心細孔直径：８．１ｎｍ）、及び非多孔質球状シリカ（ＫＥ-Ｓ１００）の各微粒子に対して固定化処理を行い、３種類の「ＲＣＲ－シリカ微粒子複合体」、又は、３種類の「ＲＣＲ－ＳＤＨ－シリカ微粒子複合体」を形成させた。
コントロールとして遊離の未固定「ＲＣＲ」及び「ＲＣＲ－ＳＤＨ」を用い、実施例（４－２）の方法に従って、光学活性アルコール（（Ｒ）-ＰＥＤ）の合成実験を行い、反応３０分後の（Ｒ）-ＰＥＤへの転化率（反応１回目）、固定化直後の上清に含まれるＲＣＲの活性（転化率）、また、固定化直後の上清に含まれるＳＤＨの活性（Ｕ／Ｌ）を評価した（図１３（ａ））。なお、未固定の遊離酵素による合成反応は、一晩、混和した後の転化率を測定した。
その結果、３種類のＲＣＲ－シリカ微粒子複合体のいずれもが未固定酵素の場合（９．３％）と同等の転化率を示し、３種類のＲＣＲ－ＳＤＨ－シリカ微粒子複合体のいずれもが未固定酵素の場合（７７．５％）の１割程度（転化率：平均９．６％）の活性しか示さなかった。しかし、単一酵素（ＲＣＲ）を固定化した場合と比較して、軽微ではあったが転化率の向上効果（ＦＳＭ８．０：８．８ → ９．７％，ＳＢＡ８．１：８．５ → ９．３％，ＫＥ-Ｓ１００：９．５ → ９．９％）が確認できたことから、補酵素再生効率が低いものの、ＲＣＲとＳＤＨによる共役酵素反応が構築できていることが判明した。
また、メソポーラスシリカ（ＦＳＭ８．０及びＳＢＡ８．１）の場合は、固定化後の上清において遊離のＲＣＲとＳＤＨの活性が全く認められず、これは、酵素が全量固定化されたことを示唆している。一方、ＫＥ-Ｓ１００では、相当のＲＣＲ及びＳＤＨ活性が示されたことより、酵素が全量固定化されていないことが判明した。特に、ＳＤＨに関しては、ほぼ１００％分の酵素が遊離していることが明らかとなった。
また、メソポーラスシリカ（ＦＳＭ８．０及びＳＢＡ８．１）の場合は、固定化後の上清において遊離のＲＣＲとＳＤＨの活性が全く認められず、これは、酵素が全量固定化されたことを示唆している。一方、ＫＥ-Ｓ１００では、相当のＲＣＲ及びＳＤＨ活性が示されたことより、酵素が全量固定化されていないことが判明した。特に、ＳＤＨに関しては、ほぼ１００％分の酵素が遊離していることが明らかとなった。
次に、前記の酵素複合体を用い、反応３０分後の（Ｒ）-ＰＥＤへの転化率を指標として、反応１０回分における固定化酵素の繰り返し耐久性（再利用性）を評価した。実験結果をまとめたグラフを図１３（ｂ）に示す。図中、白四角印は、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：８．０ｎｍ）を用いた場合、黒菱形印は、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：８．１ｎｍ）を用いた場合、また、白三角印は、非多孔質球状シリカ（ＫＥ-Ｓ１００）を用いた場合、である。また、図中、左図は、ＲＣＲのみを固定化した場合、右図は、ＲＣＲとＳＤＨを固定化した場合、である。
その結果、ＲＣＲ－メソポーラスシリカ（ＦＳＭ８．０及びＳＢＡ８．１）複合体のいずれもが、反応１～１０回の繰り返し使用の間に徐々に転化率が低下する傾向が示されたものの、１０回の繰り返し使用後もＦＳＭ８．０の場合で約１％、ＳＢＡ８．１の場合で約２％の低減のみでほとんど損なわれなかったことが確認できた（図１３（ｂ）左図）。
また、ＲＣＲ－ＳＤＨ－メソポーラスシリカ（ＦＳＭ８．０及びＳＢＡ８．１）複合体の場合もＲＣＲ－シリカ微粒子複合体の場合と同様であり、特にＦＳＭ８．０の場合は繰り返し耐久性（再利用性）が高いことが確認できた。全体的な固定化酵素の繰り返し耐久性（再利用性）の傾向は、ＦＳＭ８．０ ＞ ＳＢＡ８．１ ＞ ＫＥ-Ｓ１００の順である（図１３（ｂ）右図）。
メソポーラスシリカのうちでも細孔径が８ｎｍ程度のＦＳＭ８．０及びＳＢＡ８．１の場合は、ＫＥ-Ｓ１００の場合のようにＳＤＨが全く固定化されていないわけではなく、むしろ全量固定化されている（図１３（ａ））と解されるから、補酵素再生効率が極めて低かったことは、大半の酵素が失活した結果であると推察される。
メソポーラスシリカのうちでも細孔径が８ｎｍ程度のＦＳＭ８．０及びＳＢＡ８．１の場合は、ＫＥ-Ｓ１００の場合のようにＳＤＨが全く固定化されていないわけではなく、むしろ全量固定化されている（図１３（ａ））と解されるから、補酵素再生効率が極めて低かったことは、大半の酵素が失活した結果であると推察される。
以上より、非多孔質球状シリカ（ＫＥ-Ｓ１００）を用いた場合と比較して、メソポーラスシリカ（ＦＳＭ８．０及びＳＢＡ８．１）に異種酵素（ＲＣＲ及びＳＤＨ）を固定化した場合に、光学活性アルコールの合成効率および酵素の繰り返し耐久性（再利用性）がより高かったことより、メソポーラスシリカの細孔径が約８ｎｍ以下であれば補酵素再生系を組み込んだ共役酵素反応を可能にする異種酵素の集積組立場として好適である可能性が示唆された。
（実施例６）異種酵素の活性評価（メソポーラスシリカの細孔径及びｐＨの影響）
本実施例では、（実施例５）で使用したメソポーラスシリカ（ＦＳＭ８．０及びＳＢＡ８．１）よりも細孔径の小さいメソポーラスシリカを用いて、固定化異種酵素を用いた光学活性アルコールの合成活性に与えるメソポーラスシリカの細孔径の影響について検証した。具体的には、（実施例４）で検討した「ＲＣＲ－ＳＤＨ」を含む緩衝液を用い、実施例（４－１）の方法に従って、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（ＦＳＭ２．６，中心細孔直径：２．６ｎｍ）、及びＳＢＡ型メソポーラスシリカ（ＳＢＡ５．４，中心細孔直径：５．４ｎｍ）の各微粒子に対して固定化処理を行い、２種類の「ＲＣＲ－ＳＤＨ－ＦＳＭ２．６（ＳＢＡ５．４）」を形成させた。また、ＳＢＡ５．４においては、固定化および洗浄用緩衝液として、２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ８）の他に、２５ｍＭ ＭＥＳ-ＮａＯＨ（ｐＨ ６）を適用し、酵素複合体の形成における緩衝液のｐＨの影響について調べた。
次に、実施例（４－２）の方法に従って、光学活性アルコール（（Ｒ）-ＰＥＤ）の合成実験を行い、反応３０分後の（Ｒ）-ＰＥＤへの転化率（反応１回目）、固定化直後の上清に含まれるＲＣＲの活性（転化率）、また、固定化直後の上清に含まれるＳＤＨの活性（Ｕ／Ｌ）を評価した（図１４（ａ））。
本実施例では、（実施例５）で使用したメソポーラスシリカ（ＦＳＭ８．０及びＳＢＡ８．１）よりも細孔径の小さいメソポーラスシリカを用いて、固定化異種酵素を用いた光学活性アルコールの合成活性に与えるメソポーラスシリカの細孔径の影響について検証した。具体的には、（実施例４）で検討した「ＲＣＲ－ＳＤＨ」を含む緩衝液を用い、実施例（４－１）の方法に従って、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（ＦＳＭ２．６，中心細孔直径：２．６ｎｍ）、及びＳＢＡ型メソポーラスシリカ（ＳＢＡ５．４，中心細孔直径：５．４ｎｍ）の各微粒子に対して固定化処理を行い、２種類の「ＲＣＲ－ＳＤＨ－ＦＳＭ２．６（ＳＢＡ５．４）」を形成させた。また、ＳＢＡ５．４においては、固定化および洗浄用緩衝液として、２５ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ ８）の他に、２５ｍＭ ＭＥＳ-ＮａＯＨ（ｐＨ ６）を適用し、酵素複合体の形成における緩衝液のｐＨの影響について調べた。
次に、実施例（４－２）の方法に従って、光学活性アルコール（（Ｒ）-ＰＥＤ）の合成実験を行い、反応３０分後の（Ｒ）-ＰＥＤへの転化率（反応１回目）、固定化直後の上清に含まれるＲＣＲの活性（転化率）、また、固定化直後の上清に含まれるＳＤＨの活性（Ｕ／Ｌ）を評価した（図１４（ａ））。
その結果、２種類のＲＣＲ－ＳＤＨ－ＦＳＭ２．６（ＳＢＡ５．４）のいずれもが、ＲＣＲ－ＳＤＨ－ＦＳＭ８．０（ＳＢＡ８．１）での結果（実施例５）（ＦＳＭ８．０：９．７％，ＳＢＡ８．１：９．３％）と比較して、２～３％の転化率の増大が認められた（ＦＳＭ２．６：１１．４％，ＳＢＡ８．１：１２．１％）（図１４（ａ））。一方、ｐＨ６の緩衝液で固定化と洗浄を施したＲＣＲ－ＳＤＨ－ＳＢＡ５．４では、より低い転化率（７．５％）が示されたことより、酵素の調製時に用いる緩衝液のｐＨは６よりも８の方が効果的であることが判明した。
また、ＦＳＭ２．６及びＳＢＡ５．４共に、ＦＳＭ８．０及びＳＢＡ８．１での結果（実施例５）と同様に、固定化後の上清において遊離のＲＣＲとＳＤＨの活性がほとんど認められず、これは、酵素がほぼ全量固定化されたことを示唆している。
また、ＦＳＭ２．６及びＳＢＡ５．４共に、ＦＳＭ８．０及びＳＢＡ８．１での結果（実施例５）と同様に、固定化後の上清において遊離のＲＣＲとＳＤＨの活性がほとんど認められず、これは、酵素がほぼ全量固定化されたことを示唆している。
次に、前記の酵素複合体を用い、反応３０分後の（Ｒ）-ＰＥＤへの転化率を指標として、反応１０回分における固定化酵素の繰り返し耐久性（再利用性）を評価した。実験結果をまとめたグラフを図１４（ｂ）に示す。図中、黒四角印は、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．６ｎｍ）を用いた場合、白菱形印は、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４ｎｍ）を用いた場合、また、黒三角印は、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４ｎｍ）においてｐＨ６の緩衝液を用いて酵素の固定化と洗浄を行った場合、である。
その結果、２種類のＲＣＲ－ＳＤＨ－ＦＳＭ２．６（ＳＢＡ５．４）の反応１回目の転化率はそれぞれ１１．４％、１２．１％であって、いずれもが（実施例５）で使用したＦＳＭ８．０及びＳＢＡ８．１と比較して大幅に向上しており、全量のＳＤＨが固定化されていることが確認できた。また、繰り返し回数が増大するに従い転化率が低下する傾向が示されたものの、反応１０回目においても、それぞれ８．３％、７．２％という転化率を示した。
これらのことから、細孔径が小さい場合は、１回目の転化率も向上するとともに、繰り返し使用における残存活性も高くなることが示された。また、ＳＤＨの全量が固定化できた点ではＦＳＭ２．６、ＳＢＡ５．４の場合もＦＳＭ８．０、ＳＢＡ８．１の場合も同様であったことからみて、細孔径が小さい前者の場合の繰り返し使用後の転化率が大幅に向上した理由は、固定化状態のＳＤＨの補酵素再生効率が向上したためと推察される。
これらのことから、細孔径が小さい場合は、１回目の転化率も向上するとともに、繰り返し使用における残存活性も高くなることが示された。また、ＳＤＨの全量が固定化できた点ではＦＳＭ２．６、ＳＢＡ５．４の場合もＦＳＭ８．０、ＳＢＡ８．１の場合も同様であったことからみて、細孔径が小さい前者の場合の繰り返し使用後の転化率が大幅に向上した理由は、固定化状態のＳＤＨの補酵素再生効率が向上したためと推察される。
酵素の調製時に用いる緩衝液のｐＨ値については、ＳＢＡ５．４で、固定化と洗浄をｐＨ６の緩衝液で行った場合に、ｐＨ８の場合と比較して、反応１回目の転化率は１２．１％から７．５％に、また反応１０回目の転化率が７．２％から２．５％にまで低下した。このことから、緩衝液のｐＨは６よりも８の方が効果的であることが確認できた。
異種酵素（ＲＣＲ及びＳＤＨ）における前述の実験結果（図１３（ｂ）右図、また、図１４（ｂ））をまとめたグラフを図１５に示す。図中、黒四角印は、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：２．６ｎｍ）を用いた場合、白四角印は、ＦＳＭ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：８．０ｎｍ）を用いた場合、白菱形印は、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４ｎｍ）を用いた場合、黒菱形印は、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：８．１ｎｍ）を用いた場合、白三角印は、非多孔質球状シリカ（ＫＥ-Ｓ１００）を用いた場合、また、黒三角印は、ＳＢＡ型メソポーラスシリカ（中心細孔直径：５．４ｎｍ）においてｐＨ６の緩衝液を用いて酵素の固定化と洗浄を行った場合、である。
図１５によれば、光学活性アルコール（（Ｒ）-ＰＥＤ）の合成反応における６種類のＲＣＲ－ＳＤＨ－シリカ微粒子複合体の繰り返し耐久性（再利用性）は、固定化および洗浄用の緩衝液がｐＨ８の場合には、メソポーラスシリカの細孔径に反比例して高くなり、非多孔質球状シリカ（ＫＥ-Ｓ１００）ではより低い活性が示された。全体的には、ＦＳＭ２．６ ＞ ＳＢＡ５．４ ＞ ＦＳＭ８．０ ＞ ＳＢＡ８．１ ＞ ＫＥ-Ｓ１００の順に固定化酵素の繰り返し耐久性が高くなる傾向が示された。
これに対して、ｐＨ６の緩衝液で固定化と洗浄を施したＲＣＲ－ＳＤＨ－ＳＢＡ５．４では、ＫＥ-Ｓ１００よりも活性が低くなった。
４種類のメソポーラスシリカでは、いずれも異種酵素が全量固定化されているにもかかわらず、メソポーラスシリカの種類と細孔径の違いにより反応活性および再利用性の程度が変化した。メソポーラスシリカの細孔径が小さくなる程、酵素活性が高くなる傾向は、（実施例２）のメチルレッドの分解反応におけるＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体（ＦＳＭ型、ＳＢＡ型）における活性（初期反応速度及び脱色率）の結果 (図４及び５）と類似している。
一方、ＫＥ-Ｓ１００では、異種酵素（ＲＣＲ及びＳＤＨ）の固定化率が低く、特にＳＤＨに関しては全く固定化されておらず、これが反応活性および再利用性の低さの要因と考えられる。
これに対して、ｐＨ６の緩衝液で固定化と洗浄を施したＲＣＲ－ＳＤＨ－ＳＢＡ５．４では、ＫＥ-Ｓ１００よりも活性が低くなった。
４種類のメソポーラスシリカでは、いずれも異種酵素が全量固定化されているにもかかわらず、メソポーラスシリカの種類と細孔径の違いにより反応活性および再利用性の程度が変化した。メソポーラスシリカの細孔径が小さくなる程、酵素活性が高くなる傾向は、（実施例２）のメチルレッドの分解反応におけるＡｚｏＲ－ＧＤＨ－メソポーラスシリカ複合体（ＦＳＭ型、ＳＢＡ型）における活性（初期反応速度及び脱色率）の結果 (図４及び５）と類似している。
一方、ＫＥ-Ｓ１００では、異種酵素（ＲＣＲ及びＳＤＨ）の固定化率が低く、特にＳＤＨに関しては全く固定化されておらず、これが反応活性および再利用性の低さの要因と考えられる。
以上より、メソポーラスシリカの種類、細孔径、及び、固定化用緩衝液（及び洗浄用緩衝液）のｐＨ値の最適化によって、光学活性アルコール合成反応における酵素活性を向上でき、異種酵素が関与する補酵素再生活性の寄与を高め異種酵素の共役酵素反応の高効率化を実現できる可能性が示された。
また、非多孔質球状シリカ（ＫＥ-Ｓ１００）を用いた場合と比較して、メソポーラスシリカ（ＦＳＭ型及びＳＢＡ型）の微粒子粉末は繰り返し使用における溶液中での分散性（ハンドリング性）に優れ、さらに固定化した場合の酵素の繰り返し耐久性（再利用性）がより高かったことも勘案すれば、メソポーラスシリカ及びそのシリカ細孔は異種酵素の機能を最大限に発揮させることのできる酵素の集積組立場として好適であるといえる。
また、非多孔質球状シリカ（ＫＥ-Ｓ１００）を用いた場合と比較して、メソポーラスシリカ（ＦＳＭ型及びＳＢＡ型）の微粒子粉末は繰り返し使用における溶液中での分散性（ハンドリング性）に優れ、さらに固定化した場合の酵素の繰り返し耐久性（再利用性）がより高かったことも勘案すれば、メソポーラスシリカ及びそのシリカ細孔は異種酵素の機能を最大限に発揮させることのできる酵素の集積組立場として好適であるといえる。
Claims (18)
- ＮＡＤＨ又はＮＡＤＰＨ補酵素再生系を利用する酸化還元反応における共役酵素反応に関わる複数の異種酵素のうち少なくとも１つの還元酵素Ａ及び１つの脱水素酵素Ｂがメソポーラスシリカに固定化されている複合体であって、
メソポーラスシリカが、「ＳＢＡ」、「ＦＳＭ」及び「Ｃ-ｍｅｓｏ」から選択されたいずれか１種のメソポーラスシリカであり、
ここで、「ＳＢＡ」の中心細孔直径は４～６ｎｍであり、「ＦＳＭ」の中心細孔直径は２～９ｎｍであり、「Ｃ-ｍｅｓｏ」の中心細孔直径は２～６ｎｍであることを特徴とする、
還元酵素Ａ－脱水素酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体。 - 還元酵素Ａが、アゾ還元酵素（ＡｚｏＲ）、カルボニル還元酵素（ＣＲ）、イミン還元酵素（ＩＲ）、エノン還元酵素（ＥＲ）、アルドース還元酵素（ＡＲ）、キシロース還元酵素（ＸＲ）、ＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）から選択されたいずれか１つの酵素であり、
脱水素酵素Ｂが、グルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）、グルコース-６-リン酸脱水素酵素（Ｇ６ＰＤＨ）、フルクトース脱水素酵素（ＦＤＨ）、アルコール脱水素酵素（ＡＤＨ）、ギ酸脱水素酵素（ＦＤＨ）、乳酸脱水素酵素（ＬＤＨ）、ソルビトール脱水素酵素（ＳＤＨ）、グリセロールリン酸脱水素酵素（ＧＰＤＨ）、リンゴ酸脱水素酵素（ＭＤＨ）、キシリトール脱水素酵素（ＸＤＨ）から選択されたいずれか１つの酵素である、請求項１に記載の還元酵素Ａ－脱水素酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体。 - 還元酵素Ａ及び脱水素酵素Ｂの組み合せがアゾ還元酵素（ＡｚｏＲ）及びグルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）である、請求項２に記載の還元酵素Ａ－脱水素酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体。
- 還元酵素Ａ及び脱水素酵素Ｂの組み合せがカルボニル還元酵素（ＣＲ）及びグルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）又はソルビトール脱水素酵素（ＳＤＨ）である、請求項２に記載の還元酵素Ａ－脱水素酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体。
- ＮＡＤＨ又はＮＡＤＰＨ補酵素再生系を利用する酸化還元反応における共役酵素反応に関わる複数の異種酵素のうち少なくとも１つの還元酵素Ａ及び１つの脱水素酵素Ｂのそれぞれが中心細孔直径２～９ｎｍのメソポーラスシリカに固定化された還元酵素Ａ－脱水素酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を製造する方法であって、
ここで、メソポーラスシリカが、中心細孔直径は４～６ｎｍの「ＳＢＡ」、中心細孔直径は２～９ｎｍの「ＦＳＭ」及び中心細孔直径は２～６ｎｍの「Ｃ-ｍｅｓｏ」から選択されたいずれか１種のメソポーラスシリカであり、
還元酵素Ａ及び脱水素酵素Ｂを、ｐＨ５～８に調整した緩衝液中でメソポーラスシリカに吸着させる工程を含む、方法。 - さらに、固定化終了後のメソポーラスシリカをｐＨ５～８に調整した緩衝液で複数回洗浄する工程を含む、請求項５に記載の方法。
- ＮＡＤＨ又はＮＡＤＰＨ補酵素再生系を利用する酸化還元反応における共役酵素反応に関わる複数の異種酵素のうち少なくとも１つの還元酵素Ａ及び１つの脱水素酵素Ｂのそれぞれがメソポーラスシリカに固定化された還元酵素Ａ－脱水素酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を用いた共役酵素反応方法であって、
ここで、メソポーラスシリカが、中心細孔直径は４～６ｎｍの「ＳＢＡ」、中心細孔直径は２～９ｎｍの「ＦＳＭ」及び中心細孔直径は２～６ｎｍの「Ｃ-ｍｅｓｏ」から選択されたいずれか１種のメソポーラスシリカであり、
下記（１）及び（２）の工程を含む方法；
（１）還元酵素Ａ及び脱水素酵素ＢをメソポーラスシリカにｐＨ５～８に調整した緩衝液中で固定化する工程、
（２）工程（１）で得られた還元酵素Ａ－脱水素酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を含むｐＨ５～８の緩衝液中に、還元酵素Ａ及び／又は脱水素酵素Ｂの基質を添加するか、又は
工程（１）で得られた還元酵素Ａ－脱水素酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を、還元酵素Ａ及び／又は脱水素酵素Ｂの基質を含むｐＨ５～８の緩衝液中に添加して、還元酵素Ａ及び脱水素酵素Ｂが関わる共役的な酵素反応を行う工程。 - ＮＡＤＨ又はＮＡＤＰＨ補酵素再生系を利用する酸化還元反応における共役酵素反応に関わる複数の異種酵素のうち少なくとも１つの還元酵素Ａ及び１つの脱水素酵素Ｂのそれぞれがメソポーラスシリカに固定化された還元酵素Ａ－脱水素酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を用いた共役酵素反応方法であって、
ここで、メソポーラスシリカが、中心細孔直径は４～６ｎｍの「ＳＢＡ」、中心細孔直径は２～９ｎｍの「ＦＳＭ」及び中心細孔直径は２～６ｎｍの「Ｃ-ｍｅｓｏ」から選択されたいずれか１種のメソポーラスシリカであり、
下記（１）～（３）の工程を含む方法；
（１）還元酵素Ａ及び脱水素酵素ＢをメソポーラスシリカにｐＨ５～８に調整した緩衝液中で固定化する工程、
（２）工程（１）で得られた還元酵素Ａ－脱水素酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体をｐＨ５～８の緩衝液で洗浄する工程、
（３）工程（２）で得られた洗浄後の還元酵素Ａ－脱水素酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を、還元酵素Ａ及び／又は脱水素酵素Ｂの基質を含む反応液中で、還元酵素Ａ及び脱水素酵素Ｂが関わる共役的な酵素反応を行う工程。 - 共役酵素反応方法が、反応基質から有用物質を製造する方法である、請求項７又は８に記載の方法。
- 共役酵素反応方法が、環境中に存在する反応基質となる環境汚染物質を分解する方法である、請求項７又は８に記載の方法。
- 共役酵素反応方法が、被検試料中に存在するか又は存在する可能性のある反応基質を検出又は定量する方法である、請求項７又は８に記載の方法。
- 請求項１～４のいずれか一項に記載の還元酵素Ａ－脱水素酵素Ｂ－メソポーラスシリカ複合体を含むことを特徴とする、還元酵素Ａ及び脱水素酵素Ｂが関わる共役酵素反応用キット、センサー又は装置。
- 共役酵素反応用キット、センサー又は装置が、反応基質から有用物質を製造するためのものであることを特徴とする、請求項１２に記載のキット、センサー又は装置。
- カルボニル還元酵素（ＣＲ）と脱水素酵素との共役酵素反応を利用した光学活性アルコールを製造するためのキット又はバイオリアクターである、請求項１３に記載のキット、センサー又は装置。
- 共役酵素反応用キット、センサー又は装置が、被検試料中に存在する可能性のある反応基質又は共役酵素反応後の産物を検出又は定量するためのものであることを特徴とする、請求項１２に記載のキット、センサー又は装置。
- グルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）、グルコース－６－リン酸脱水素酵素（Ｇ６ＰＤＨ）、フルクトース脱水素酵素（ＦＤＨ）、アルコール脱水素酵素（ＡＤＨ）、ギ酸脱水素酵素（ＦＤＨ）、乳酸脱水素酵素（ＬＤＨ）、ソルビトール脱水素酵素（ＳＤＨ）、グリセロールリン酸脱水素酵素（ＧＰＤＨ）、リンゴ酸脱水素酵素（ＭＤＨ）又はキシリトール脱水素酵素（ＸＤＨ）とＤＴ-ジアホラーゼ（ＤＴＤ）との補酵素再生系の共役酵素反応を利用した、被検試料中のグルコース、グルコース－６－リン酸、フルクトース、アルコール、ギ酸、乳酸、ソルビトール、グリセロールリン酸、リンゴ酸又はキシリトールを検出又は定量するための測定キットである、請求項１５に記載のキット、センサー又は装置。
- 共役酵素反応用キット又は装置が、環境中に存在する反応基質となる環境汚染物質を分解するためのものであることを特徴とする、請求項１２に記載のキット、センサー又は装置。
- アゾ還元酵素（ＡｚｏＲ）とグルコース脱水素酵素（ＧＤＨ）とのＮＡＤ又はＮＡＤＨ補酵素再生系を利用した、環境中の難分解性化学染料分解のための装置である、請求項１７に記載のキット、センサー又は装置。
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