JP6918308B2 - 核酸の検出方法及びそのためのキット - Google Patents
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Description
前記標的核酸とリポソーム結合一本鎖核酸をハイブリダイズさせて二本鎖核酸を形成する、二本鎖核酸形成段階であって、前記リポソーム結合一本鎖核酸は、標識されたリポソームが一本鎖核酸に結合されて、かつ、支持体に固定化された又は支持体に固定化可能なように修飾され、前記標的核酸と相補的な塩基配列を含むものである、二本鎖核酸形成段階と、
形成された二本鎖核酸に、二本鎖特異的ヌクレアーゼを作用させて核酸を切断し、前記リポソームを遊離させる、リポソーム遊離段階と、
遊離したリポソームが持つ前記標識を検出する、標識検出段階とを含み、
前記標識がナノポアを持つ物質であり、該物質が前記リポソームと融合して該リポソームにナノポアが形成されており、前記標識検出段階は、遊離したリポソームのみを選択的に脂質二重膜と融合させ、該脂質二重膜にナノポアを形成する、ナノポア形成段階と、形成されたナノポアにイオンを通過させ、その際の電流を測定する、電流測定段階とを含む、
標的核酸の検出方法を提供する。
まず、本発明の好ましい一実施形態である、二本鎖核酸形成段階と、リポソーム遊離段階とを第1の容器(例えば試験管)内で行い、ナノポア形成段階と電流測定段階とを第2の容器(例えばダブルウェルチャンバー(DWC))内で行う方法について説明する。
本発明の方法により検出すべき試料中の標的核酸としては、検出することが望まれる、特定の塩基配列を持つ核酸であれば特に限定されず、DNAでもRNAでもよいが、RNAは、後述する二本鎖特異的ヌクレアーゼにより切断されないのでRNAの方が好ましい。ここで、「特定の塩基配列」は、検出が望まれる核酸の既知の塩基配列である。ここで、「既知の塩基配列」とは、本発明の方法を実施する者にとって既知という意味であり、必ずしも公知である必要はない。「特定の塩基配列を持つ核酸」とは、その核酸の塩基配列が、その特定の塩基配列と同一であることを意味する。標的核酸のサイズは、特に限定されないが、検出特異性の観点から、塩基数が18〜40個のものが好ましく、特に20〜25個のものが好ましい。特にがんやその他の疾患のバイオマーカーとして注目を集めているmiRNAが好ましい。また、標的核酸を含む試料としては、特に限定されないが、生体から分離された体液又はその希釈物が好ましく、特に血液試料(全血、血清、血漿を包含する)又はその希釈物が好ましい。
本実施形態の方法では、ナノポアを有するリポソームに結合され、支持体に固定化可能なように修飾された、前記標的核酸と相補的な塩基配列を含む、リポソーム結合一本鎖核酸が用いられる。下記実施例で作製した、好ましいリポソーム結合一本鎖核酸の模式図を図1に示す。図1中、上段右側の図が、磁気粒子10に多数(図1では4個)のリポソーム結合一本鎖核酸12が結合されている様子を示す模式図であり、図1の下段が、各リポソーム結合一本鎖核酸12を拡大して示す模式図、図1の上段左側の図が、リポソーム結合一本鎖核酸12中のリポソーム部分を拡大して示す模式図である。なお、図示される各要素の形状や寸法比率は実物とは異なる。図1の下段の図に示されるように、一本鎖核酸12の末端(図示の例では5’末端)にはコレステロール14を介してリポソーム16が結合されている。このリポソーム16の拡大模式図が図1の上段左側に示されている。リポソーム16は、脂質二重膜18から成り、この脂質二重膜18に所々(図示の例では3箇所)、チャネルタンパク質であるα−ヘモリシン20が融合している。α−ヘモリシン20は、ナノポアを持つチャネルタンパク質であるので、α−ヘモリシン20が融合している部分には、ナノポア22が形成されている。これにより、このリポソーム16は、ナノポア22を有することになる。一方、一本鎖核酸12の、リポソーム16とは反対側の末端(図示の例では3’末端)には、ビオチン24が結合され、このビオチンと、磁性粒子10上に固定化されているストレプトアビジン26との特異的結合により、一本鎖核酸12が磁性粒子10に結合されている。
次に、標的核酸と前記リポソーム結合一本鎖核酸をハイブリダイズさせて二本鎖核酸を形成する。この二本鎖核酸形成段階では、標的核酸が二本鎖核酸である場合、まず、試料を標的核酸の変性温度(通常、94℃〜99℃、好ましくは98℃)に維持して変性処理を行う。標的核酸の変性を十分行うために、変性温度で、15秒〜60秒程度維持することが好ましい。なお、標的核酸が一本鎖核酸の場合には変性処理は不要であるが、一本鎖であっても、分子内ハイブリダイゼーション等によりループ等の二次的な構造を取ることが少なくないので、一本鎖核酸の場合でも変性処理を行うことが好ましい。
次に、形成された二本鎖核酸に、二本鎖特異的ヌクレアーゼを作用させて核酸を切断し、前記リポソームを遊離させる。この段階は、二本鎖特異的ヌクレアーゼの存在下、反応液の温度を二本鎖特異的ヌクレアーゼの作用温度範囲内に維持することにより行うことができる。反応液中の二本鎖特異的ヌクレアーゼの終濃度は、特に限定されないが、通常、1unit/ml〜500unit/ml程度、好ましくは10unit/ml〜100unit/ml程度である。リポソーム遊離段階の時間は、特に限定されないが、15分以上が好ましく、20分〜1時間程度が好ましい。
(i) 脂質二重膜の形成
次に、第2の容器(好ましくはDWC)内に脂質二重膜を形成する。脂質二重膜の形成方法は、周知であり、例えば、一般的な脂質二重膜形成法である液滴接触法により形成することができる。この方法は、有機溶媒中に形成した二つの脂質単分子膜を接触させることで、接触界面に脂質二重膜を形成する周知の方法であり、例えば特開2012-81405号公報、特開2014-100672号公報及び特開2015-077559号公報等に記載されており、下記実施例にも具体的に記載されている。好ましい具体例では、第2の容器として、下記実施例に記載するようなダブルウェルチャンバー(DWC)を用い、DWCの境界部分に脂質二重膜を形成することができる。すなわち、DWCの2つのチャンバーのそれぞれに脂質二重膜形成性脂質溶液を添加し、各チャンバーに水又は水溶液を添加して前記脂質溶液中に水又は水溶液の液滴を形成させ、この状態で放置して2つの液滴の接触部分に脂質二重膜を形成させることができる。DWCを用いて液滴接触法により形成された脂質二重膜の模式図を図2に示す。図2中、28a、28bは、DWCの各チャンバー内にそれぞれ形成された、脂質単分子膜で囲包された水性液滴であり、それらの周囲は、脂質32を含む有機溶媒である。DWCの各チャンバーの境界部分で、各脂質単分子膜が接触し、この部分に脂質二重膜30が形成される。なお、脂質二重膜の形成方法は、液滴接触法に限定されるものではなく、種々の公知の方法を包含するいずれの方法により形成されたものであってもよい。
次に、上記のようにして、脂質二重膜に形成されたナノポアを通過するイオン電流を測定する。イオン電流が生じるためには、上記のとおり、二本鎖核酸形成/リポソーム遊離段階に用いる緩衝液中に、カリウム塩のような水中で電離して陽イオンを生じる物質を含有させておくことが好ましい。なお、脂質二重膜に形成されたナノポアを通るイオン電流を測定することは、公知であり、例えば、上記した特開2014-100672号公報、特開2015-077559号公報等に記載されている。
上記した第1の実施形態では、リポソーム遊離段階までを試験管のような第1の容器内で行い、ナノポア形成段階以降をDWCのような第2の容器内で行ったが、全段階(ただし、試料の変性処理は除く)を1つの容器内で行うことも可能である。
DOPE:DOPS:DOPC:コレステロール= 5:3:3:1 (重量比)、合計1.2 mg になるように、以下の量にて脂質混合液をガラスバイアルにて調製した。脂質溶液は全てクロロホルムに溶解したものである。
DOPE:1,2-ジオレイル-sn-グリセロ-3-ホスフォエタノールアミン(25 mg/ml)を20μL
DOPS:1,2-ジオレイル-sn-グリセロ-3-ホスフォ-L-セリン(50 mg/ml)を6μL
DOPC:1,2-ジオレイル-sn-グリセロ-3-ホスフォコリン(25 mg/ml)を12μL
cccccccatctttaccagacagtgttaccccc (配列番号1)
なお、コレステロールとビオチンが結合された配列番号1の一本鎖DNAは、ユーロフィンジェノミクス社のカスタムオリゴ合成サービスにより外注した。更にクロロホルムを 50.4 μL、次いで、更にメタノールを10μL添加した。アルゴンガスを吹き付けて溶媒を揮発させ、ガラスバイアルの側壁に脂質フィルムを形成した。デシケータを用いてガラスバイアルを真空下にて2時間以上、保持した。
1の遠心沈殿に、α−ヘモリシン遺伝子(塩基配列は、GenBank Accession No. WP_000857483に記載したものを参考にした(シグナル配列を除外)。ユーロフィンゲノミクス社から購入(合成依頼))5 nMを混合したPURE frex 2.0(ジーンフロンティア社製商品名)溶液20μLを用いて懸濁した。37℃で6時間インキュベートし、ヘモリシンを合成すると同時にリポソームの脂質膜に組み込んだ。外液(組成は上記、以下同じ)500μLを用いてリポソーム液を懸濁、18000G、15分、4℃の遠心操作でリポソームを沈殿させ、上清を捨てて新しい外液1mLを用いて懸濁した。エクストルーダー装置(Avanti polar lipids社製)を用いてリポソームサイズを小さくした(フィルターサイズ100 nm)。
磁性ビーズ(dynabeads, myone streptavidin C1(商品名)、Thermo Fisher Scientific 社) 500μLを外液500μLで懸濁し、DynaMag装置(商品名、Thermo Fisher Scientific社)を用いてビーズをチューブ側壁に集め、外液を新たな外液1mLと交換してビーズを洗浄した。磁性ビーズ溶液500μLと2で得られたリポソーム溶液500μLを混和し、37℃で1時間インキュベートした。インキュベート中、数回の転倒混和を繰り返した。DynaMag装置を用いて外液を除去した。外液2(組成:Tris-HCl (pH7.0) 20mM、MgCl2 20mM、DTT 1mM, KCl 50mM, CaCl2 1m)500μLを用いて磁性ビーズを懸濁した。
標的miRNAは、miRNA-141(塩基配列:uaacacugucugguaaagaugg(配列番号2))であった。モック(mock)として、標的miRNA以外の以下のmiRNA及びDNAも用いた。
miRNA-16 :uagcagcacguaaauauuggcg (配列番号3)
DNA-20C141: ccatctttaccagacagtgttacccccccccccccccccccc (配列番号4)
百万種の混合microRNA:aucnnngugnnnugcnnnnauc (配列番号5)
*N: 4塩基(A, U, C, G)がランダムに入っている
miRNA-141、miRNA-16、DNA-20C141はSigma-Aldrich社のカスタム一本鎖RNA、カスタムオリゴDNAの合成サービスで発注、調製した。百万種の混合microRNAは、ジーンデザイン社のカスタムRNA合成サービスで発注、調製した。
上記miRNA又はDNA(濃度1μM、百万種の混合microRNAの場合は合計10μM)の溶液(溶媒は外液2(組成は上記、以下同じ))を、試験管内で、恒温槽を用いて98℃、30秒間、変性処理した。次に試験管を37℃の恒温槽に移し、上記のとおり調製したリポソーム結合一本鎖DNA(磁性ビーズ結合)を0.17nM(溶媒は外液2)と、二本鎖特異的ヌクレアーゼ(Evrogen社より購入、使用時の終濃度は10unit/ml)を添加し、37℃で30分間インキュベートした。
一方、DWC内に脂質二重膜を形成した。用いたDWCは、図3に示すものであり、円柱状の各チャンバーの直径は4mm、深さは3mmであった。片方のチャンバーの外縁部に、チャンバー内面から0.5mmの距離に、幅1.75mm、深さ3mmの磁性シート用の溝を構築した。この溝に、磁性シート(スガツネ社の超強力マグネットキャッチラバータイプNMS型)を挿入した。
電流の測定結果を図5及び図6に示す。図5中、(a)は、miRNAを添加しなかった場合(陰性対照)の結果を示し、電流は全く検出されなかった。(b)は、リポソーム結合一本鎖DNAを、磁性ビーズに結合せず、かつ、miRNAも添加せず、その他の処理を上記のとおり行った場合(陽性対照)の結果を示す。階段状の電流が検出された。(a)と(b)の比較から、磁性ビーズがチャンバー内面に固定化されていることが確認された。
12 一本鎖核酸
14 コレステロール
16 リポソーム
18 リポソームの脂質二重膜
20 α−ヘモリシン
22 ナノポア
24 ビオチン
26 ストレプトアビジン
28a 脂質単分子膜で囲包された水性液滴
28b 脂質単分子膜で囲包された水性液滴
30 脂質二重膜
32 脂質
33 ダブルウェルチャンバー(DWC)
34 リポソーム遊離段階後の反応液
36 有機溶媒中の脂質溶液
38 電極
40 パッチアンプ回路
42 DWCの一方のチャンバーの側壁内面
44 標的miRNA
46 標的miRNA以外のmiRNAやDNA
Claims (14)
- 特定の塩基配列を持つ、試料中の標的核酸の検出方法であって、
前記標的核酸とリポソーム結合一本鎖核酸をハイブリダイズさせて二本鎖核酸を形成する、二本鎖核酸形成段階であって、前記リポソーム結合一本鎖核酸は、標識されたリポソームが一本鎖核酸に結合されて、かつ、支持体に固定化された又は支持体に固定化可能なように修飾され、前記標的核酸と相補的な塩基配列を含むものである、二本鎖核酸形成段階と、
形成された二本鎖核酸に、二本鎖特異的ヌクレアーゼを作用させて核酸を切断し、前記リポソームを遊離させる、リポソーム遊離段階と、
遊離したリポソームが持つ前記標識を検出する、標識検出段階とを含み、
前記標識がナノポアを持つ物質であり、該物質が前記リポソームと融合して該リポソームにナノポアが形成されており、前記標識検出段階は、遊離したリポソームのみを選択的に脂質二重膜と融合させ、該脂質二重膜にナノポアを形成する、ナノポア形成段階と、形成されたナノポアにイオンを通過させ、その際の電流を測定する、電流測定段階とを含む、
標的核酸の検出方法。 - 前記標的核酸の塩基数が18個〜40個である請求項1記載の方法。
- 前記標的核酸がRNAである請求項1又は2記載の方法。
- 前記標的核酸がマイクロRNAである請求項3記載の方法。
- 前記一本鎖核酸がDNAである請求項1〜4のいずれか1項に記載の方法。
- 前記標的核酸がRNAであり、前記二本鎖特異的ヌクレアーゼがRNA−DNA二本鎖のDNAを切断する活性を持つ、請求項5記載の方法。
- 前記標識がナノポアを持つ物質であり、該物質が前記リポソームと融合して該リポソームにナノポアが形成されており、前記標識検出段階は、遊離したリポソームのみを選択的に脂質二重膜と融合させ、該脂質二重膜にナノポアを形成する、ナノポア形成段階と、形成されたナノポアにイオンを通過させ、その際の電流を測定する、電流測定段階とを含み、前記ナノポア形成段階及び電流測定段階は、リポソーム結合一本鎖核酸を内面に固定化した容器内で行う、請求項2〜6のいずれか1項に記載の方法。
- 前記リポソーム結合一本鎖核酸は、磁性粒子に結合され、前記容器内では、前記リポソーム結合一本鎖核酸は、前記容器の外部からかけられた磁場により、前記容器内の内面に固定化され、それによって前記脂質二重膜との接触が防止される、請求項7記載の方法。
- 前記二本鎖核酸形成段階及び前記リポソーム遊離段階を第1の容器内で単一の操作で行い、前記脂質二重膜は、第2の容器内に形成され、前記ナノポア形成段階及び前記電流測定段階を第2の容器内で行う、請求項1、7及び8のいずれか1項に記載の方法。
- 前記第2の容器がダブルウェルチャンバーであり、前記脂質二重膜は、両チャンバーの境界に形成される、請求項9記載の方法。
- 前記二本鎖核酸形成段階及び前記リポソーム遊離段階は、反応液の温度を標的核酸の変性温度から、標的核酸の融解温度よりも低くかつ二本鎖特異的ヌクレアーゼの作用温度範囲内まで低下させ、二本鎖特異的ヌクレアーゼの存在下、二本鎖特異的ヌクレアーゼの作用温度範囲内で維持することを含む、請求項1〜10のいずれか1項に記載の方法。
- 標識されたリポソームに結合され、支持体に固定化された又は支持体に固定化可能なように修飾された、標的核酸と相補的な塩基配列を持つ一本鎖核酸を含み、前記標識が、ナノポアを持つ物質である、請求項1記載の方法を行うためのキット。
- 二本鎖形成段階及びリポソーム遊離段階を行う緩衝液をさらに含む請求項12記載のキット。
- ダブルウェルチャンバーをさらに含む請求項13記載のキット。
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JP2016199123 | 2016-10-07 |
Publications (2)
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JP2018061503A JP2018061503A (ja) | 2018-04-19 |
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Family Applications (1)
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JP2017065483A Active JP6918308B2 (ja) | 2016-10-07 | 2017-03-29 | 核酸の検出方法及びそのためのキット |
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- 2017-03-29 JP JP2017065483A patent/JP6918308B2/ja active Active
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