JP6807677B2

JP6807677B2 - 微生物培養液の濃縮方法及び微生物濃縮物

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Application number: JP2016140287A
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Inventors: 和典柏木; 智安田; 淳也石田
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Filing date: 2016-07-15
Publication date: 2021-01-06
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Description

本発明は、乳酸菌等の微生物培養液の濃縮方法，及びその濃縮方法を用いて得られた微生物濃縮物に関する。

乳酸菌は、ヨーグルト等の発酵乳製品の製造に用いられる。乳酸菌は、乳酸菌培養液から菌体を分離、濃縮し、その菌体濃度を高めた濃縮菌体として工業的に用いられる。

乳酸菌の濃縮方法としては、遠心分離による方法、分離膜を用いたクロスフロー濾過による方法などがある。また、特許文献１には、膜分離装置のフィルターの上方から乳酸菌培養液を供給し、フィルターでケーシング側に濾過された液体をケーシングに設けた排出口より系外に排出した後、乳酸菌を含む残液を回収して乳酸菌の濃縮液を得る乳酸菌の濃縮方法が開示されている。

特開２００１−２４５５８６号公報

微生物培養液を濃縮しようとした場合、特に、脱脂粉乳培地を用いた培養液や、培養中に多糖類を産生する菌株を用いた培養液で、濃縮が困難となる。本発明は、濃縮後に含まれる微生物の数が多くなる微生物培養液の濃縮方法を提供することを目的とする。また、本発明は、含有する微生物の数が多い微生物濃縮物を提供することも目的とする。

本発明の微生物培養液の濃縮方法は、１種または複数種の微生物を含む培養液を準備する第１の工程と、第１の工程で準備した培養液を、所定温度における培養液の粘度が予め定められた粘度まで低下するように、せん断処理する第２の工程と、第２の工程でせん断処理した培養液を遠心分離することにより、微生物を含む濃縮液を分離させる第３の工程と、を備え、微生物は、増粘多糖類を産生する乳酸菌である。

本発明によれば、濃縮後に含まれる微生物の数が多い微生物濃縮物を得ることができる。

図１は、乳酸菌の濃縮方法のフローチャートである。図２は、サンプル８〜１２の経時に対する乳酸酸度の変化を示すグラフである。

＜実施形態１＞
以下、本発明の好適な実施の形態について詳細に説明する。実施形態１では、微生物として乳酸菌を培養した乳酸菌培養液を工業的規模で濃縮し、乳酸菌濃縮物を得る方法について説明する。

乳酸菌培養液としては、例えば、発酵乳の製造に主として用いられているラクトバシルス属（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）、ストレプトコッカス属（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ）、ラクトコッカス属（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ）、ビフィドバクテリウム属（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）などの乳酸菌の培養液や、発酵乳以外の乳製品、肉製品の製造に用いられるロイコノストック属（Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ）、ペディオコッカス属（Ｐｅｄｉｏｃｏｃｃｕｓ）等の乳酸菌の培養液が挙げられる。

ラクトバシルス属の乳酸菌としては、例えば、ラクトバチルス・デルブルッキイ・サブスピーシス・ブルガリクス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉｓｕｂｓｐ．ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ）等が挙げられる。ストレプトコッカス属の乳酸菌としては、例えば、ストレプトコッカス・サーモフィルス（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ）等が挙げられる。

図１は、乳酸菌培養液の濃縮方法のフローチャートである。本実施形態の乳酸菌培養液の濃縮方法は、乳酸菌を培養する工程Ｓ１（本発明の「第１の工程」に相当。）、乳酸菌培養液をせん断処理する工程Ｓ２（本発明の「第２の工程」に相当。）、せん断処理した乳酸菌培養液を遠心分離する工程Ｓ３（本発明の「第３の工程」に相当。）、保護剤を添加する工程Ｓ４、及び乳酸菌培養液を凍結する工程Ｓ５を備える。以下、各工程について説明する。

初めに、工程Ｓ１において、乳酸菌を培養する。乳酸菌の菌種としては、例えば、ブルガリア菌ＯＬＬ１１７１、ブルガリア菌ＯＬＬ１０７３Ｒ−１、サーモフィラス菌ＯＬＳ３６１５、サーモフィラス菌ＯＬＳ３０７８を用いることができる。

ブルガリア菌ＯＬＬ１１７１（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｓｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉｓｕｂｓｐ．ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓＯＬＬ１１７１）は、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターに受託番号「ＮＩＴＥＢＰ−０１５６９」で寄託されているものである。ブルガリア菌ＯＬＬ１０７３Ｒ−１（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｓｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉｓｕｂｓｐ．ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓＯＬＬ１０７３Ｒ−１）は、独立行政法人産業技術総合研究所特許微生物寄託センターに受託番号「ＦＥＲＭＢＰ−１０７４１」で寄託されているものである。サーモフィラス菌ＯＬＳ３６１５（ＳｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓＯＬＳ３６１５）は、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターに受託番号「ＮＩＴＥＢＰ−０１６９６」で寄託されているものである。サーモフィラス菌ＯＬＳ３０７８（ＳｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓＯＬＳ３０７８）は、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターに受託番号「ＮＩＴＥＢＰ−０１６９７」で寄託されているものである。

また、乳酸菌培養液の製造に使用される培地は、通常微生物が増殖しうる栄養源を含有する。栄養源としては、乳由来の成分（ホエイ、カゼイン、脱脂粉乳、ホエイタンパク濃縮物（ＷＰＣ）、ホエイタンパク分離物（ＷＰＩ）等）、酵母エキス、大豆エキス、トリプチケース等のペプトン、ブドウ糖、乳糖等の糖類、乳清ミネラル等のミネラル類など、またはこれらを多く含有する食品である。栄養源として、とりわけ脱脂粉乳を用いるのが好ましいが、この例に制限されるものではない。

培地は、例えば、１２１℃以上で１分〜１０分の条件において滅菌を行う。そして、培地に対して、例えば０．０５〜１．００％程度の濃度で乳酸菌を接種した培地を、例えば３０〜４５℃の雰囲気においてｐＨが４．０〜６．０となるように中和しながら、４〜１６時間程度培養する。これにより、乳酸菌培養液が得られる。工程Ｓ１による培養を行った後の乳酸菌培養液において、乳酸菌の濃度は、例えば１０^７〜１０^１１ｃｆｕ／ｍＬである。また、例えば、栄養源として乳（脱脂粉乳）を使用した乳酸菌培養液では、工程Ｓ１において、乳酸菌から増粘多糖類などが産生される。このため、乳酸菌培養液の粘度は、乳酸菌の接種前における培地の粘度よりも高くなっている。工程Ｓ１による培養を行った後の乳酸菌培養液の粘度は、例えば、１５℃における測定で、５〜５０ｍＰａ・ｓである。

次に、工程Ｓ１で得られた乳酸菌培養液を、工程Ｓ２において、高せん断ミキサー等を用いてせん断処理する。乳酸菌培養液に加えるせん断応力は、７，５００〜１００，０００Ｐａであることが好ましい。これにより、後の工程Ｓ３において、遠心分離後の乳酸菌培養液における乳酸菌の回収率を高めることができる。

なお、一度に加えるせん断応力は、７，５００〜１３，０００Ｐａであることが好ましい。これにより、せん断力により乳酸菌が受ける損傷を抑制することができる。７，５００〜１３，０００Ｐａのせん断応力によるせん断処理を１回のみ行うか、あるいは、複数回に分けて行うことにより、乳酸菌培養液に対して７，５００〜１００，０００Ｐａのせん断応力を与えることができる。

工程Ｓ２においてせん断処理を行った後の乳酸菌培養液は、もとの乳酸菌培養液（工程Ｓ１による培養を行った後の乳酸菌培養液）よりも粘度が低下している。せん断処理を行った後の乳酸菌培養液の粘度は、例えば、１５℃における測定で１〜５ｍＰａ・ｓ程度である。

次に、工程Ｓ２において低粘度化した乳酸菌培養液に対して、工程Ｓ３において遠心分離する。遠心分離機としては、分離板型の遠心機を用いることができる。遠心分離は、例えば、５，０００〜２０，０００×Ｇの遠心力を加え、滞在時間を２〜１５分間程度として行う。

これにより、乳酸菌培養液が、高濃度で乳酸菌を含む下層の乳酸菌培養液と、乳酸菌をほとんど含まない上層の軽液に分離される。下層の乳酸菌培養液には、もとの乳酸菌培養液に含まれる乳酸菌を高効率で回収することが可能である。なお、工程Ｓ１〜工程Ｓ３の諸条件を使用する菌種等に応じて適宜調整することにより、９５％以上、さらには９９％以上の乳酸菌を回収することも可能である。濃縮後の乳酸菌培養液において、乳酸菌の濃度は、例えば、１０^９〜１０^１２ｃｆｕ／ｍＬとなる。

次に、工程Ｓ３で濃縮された乳酸菌培養液に対して、工程Ｓ４において、保護剤を添加する。保護剤は、後の工程Ｓ５の凍結によって受ける乳酸菌が受けるダメージ（特に、貯蔵初期段階に誘発されたダメージ）から乳酸菌を保護する機能を有する。このような保護剤としては、例えば、乳糖やショ糖といった糖質の水溶液、リン酸水素二カリウムやリン酸二水素カリウムの水溶液といったｐＨ緩衝剤、グルタミン酸などのアミノ酸類の水溶液、これらの混合物等が挙げられる。濃縮された乳酸菌培養液と保護剤との混合液における保護剤成分の固形分含量が、例えば、２〜２５％程度となるように、濃縮された乳酸菌培養液に対して保護剤を添加する。保護剤を添加した後、乳酸菌培養液を撹拌する。

次に、保護剤を添加した乳酸菌培養液を、工程Ｓ５において凍結する。凍結は、具体的には、乳酸菌培養液もしくはそれを缶に充填したものを−１８０℃以下の液体窒素中に投入し、５〜１０分程度保存することによって行う。これにより、固形またはペレット状の乳酸菌濃縮物が得られる。

得られた乳酸菌濃縮物は、例えば、−５５℃以下の冷凍庫で保存する。

保存された乳酸菌濃縮物は、解凍した後、滅菌済の生乳や脱脂粉乳還元液などの培地に接種して、ヨーグルト等の乳製品の製造に用いることができる。

＜その他の実施形態＞
実施形態１では、微生物の例として乳酸菌について説明したが、微生物として、酵母菌、麹カビ、納豆菌等の微生物であっても本発明を適用して微生物濃縮物を得ることができる。

酵母菌としては、例えば、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ、Ｚｙｇｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓｒｏｕｘｉｉ等が挙げられる。酵母菌を培養した酵母菌培養液を濃縮した酵母菌濃縮物は、例えば、清酒、味噌、醤油の製造に用いることができる。

麹カビとしては、例えば、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓｏｒｙｚｅａ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓｓｏｊａｅ等が挙げられる。麹カビを培養した麹カビ培養液を濃縮した麹カビ濃縮物は、例えば、日本酒、味噌、醤油、みりん等の製造に用いることができる。

納豆菌としては、例えば、Ｂａｃｉｌｌｕｓｓｕｂｔｉｌｉｕｓｎａｔｔｏ等が挙げられる。納豆菌を培養した納豆菌培養液を濃縮した麹カビ濃縮物は、例えば、納豆の製造に用いることができる。

（本実施形態の効果）
本実施形態の乳酸菌培養液の濃縮方法を用いることにより、従来の濃縮方法による乳酸菌濃縮物よりも多数の乳酸菌を含む乳酸菌濃縮物を得ることができる。換言すると、乳酸菌数あたりの乳酸菌濃縮物の体積を小さくすることができる。

乳酸菌数あたりの乳酸菌濃縮物の体積を小さくできることにより、乳酸菌培養液の保存スペースや保存コストを削減することができる。また、乳酸菌培養液の流通コストを削減することができ、その結果、環境負荷を低減することができる。

また、乳酸菌数あたりの乳酸菌濃縮物の体積を小さくできることにより、ヨーグルト等の食品へ加工するときに投入する乳酸菌培養液の量を減らすことができ、結果として、食品の微生物汚染リスクを低減することができる。さらに、乳酸菌自体が食品へ及ぼす風味への影響を抑制することができる。

また、本実施形態の濃縮方法によれば乳酸菌培養液を高い効率で濃縮できるので、乳酸菌濃縮物の生産性を向上させることができ、結果として、製造コストを低減することができる。

（評価試験１）
乳酸菌を含む培養液を低粘度化する方法について検討するため、サンプル１及び２の乳酸菌培養液を作製し、以下の実験を行った。サンプル１及び２の作製条件及び評価結果については、表１にも示す。

（サンプル１）
脱脂粉乳、乳糖、酵母エキスからなる培地を用いて、乳酸菌として明治ブルガリアヨーグルト（フルーツ入りソフトタイプヨーグルト）（株式会社明治製）用のブルカリア菌株（以下、「菌株Ｙ」という）を含む培養液を作製した。以下、全てのサンプルにおける乳酸菌の培養において、随時、炭酸カリウム又は水酸化ナトリウムを添加して、ｐＨを５．０〜６．０に制御する中和培養を行った。この培養液を、高圧ホモジナイザー（ＮｉｒｏＳｏａｖｉ社製、型番：Ｐａｎｄａ２Ｋ）を用いて低粘度化した。具体的には、１５℃における測定で、粘度が約４ｍＰａ・ｓとなるまで、２×１０^７Ｐａで１回処理を行った。乳酸菌培養液を低粘度化した結果、乳酸菌のうち４２％が死滅していることが分かった。なお、乳酸菌数は、「乳及び乳製品の成分規格等に関する省令」に記載の方法で測定した。

（サンプル２）
サンプル１と同様に、乳酸菌としてブルガリア菌（菌株Ｙ）を含む培養液を作製した。この培養液を、高せん断ミキサー（ＩＫＡ社製、型番：ｍａｇｉｃＬＡＢ）を用いて低粘度化した。なお、この高せん断ミキサーは、サンプル１で用いた高圧ホモジナイザーよりもせん断応力が弱い。具体的には、１５℃における測定で、粘度が約４ｍＰａ・ｓとなるまで、２０，０００ｒｐｍで３回処理を行った。乳酸菌培養液を低粘度化した結果、乳酸菌のうち８％が死滅していることが分かった。

サンプル１，２の結果から、せん断応力が小さい装置によって乳酸菌培養液を低粘度化することにより、乳酸菌の死滅を抑制できることが分かった。

（評価試験２）
遠心分離による濃縮の前後での乳酸菌の数の変化について検討するため、サンプル３〜７の乳酸菌培養液を作製し、以下の実験を行った。サンプル３〜７の作製条件及び評価結果については、表２にも示す。

（サンプル３）
脱脂粉乳、乳糖、酵母エキスからなる培地を用いて、乳酸菌としてブルガリア菌（ＯＬＬ１１７１）とサーモフィラス菌（ＯＬＳ３６１５）を含む培養液を作製した。この培養液を、高せん断ミキサー（ＩＫＡ社製、型番：ｍａｇｉｃＬＡＢ）を用いて、低粘度化した。具体的には、１５℃における測定で、粘度が約５ｍＰａ・ｓとなるまで、２０，０００ｒｐｍ以上で１回処理した。なお、この処理は、１０，０００Ｐａのせん断応力に相当する。続いて、低粘度化した培養液を回分式の遠心機（株式会社トミー精工製、型番：Ｓｕｐｒｅｍａ２５）を用いて１０，０００×Ｇで１２分間濃縮した。培養液を濃縮した結果、濃縮の前（せん断処理後、且つ濃縮する前）に対する濃縮後に含まれる乳酸菌数の割合（乳酸菌回収率）は９９％以上であった。

なお、乳酸菌回収率は、下式（１）にしたがって算出した（後述のサンプル４〜７についても同様）。式（１）において、軽液とは、培養液を遠心機にかけたときに上層側に分離した液を意味する。

（サンプル４）
サンプル３と同様に、乳酸菌としてブルガリア菌（ＯＬＬ１１７１）とサーモフィラス菌（ＯＬＳ３６１５）を含む培養液を作製した。この培養液を、高せん断ミキサー（ＩＫＡ社製、型番：ｍａｇｉｃＬＡＢ）を用いて、低粘度化した。具体的には、１５℃における測定で、粘度が約６ｍＰａ・ｓとなるまで、１５，０００ｒｐｍ以上で１回処理した。なお、この処理は、７，５００Ｐａのせん断応力に相当する。続いて、低粘度化した培養液を回分式の遠心機（株式会社トミー精工製、型番：Ｓｕｐｒｅｍａ２５）を用いて１０，０００×Ｇで１２分間濃縮した。培養液を濃縮した結果、濃縮の前後での乳酸菌回収率は９７％であった。

（サンプル５）
サンプル３と同様に、乳酸菌としてブルガリア菌（ＯＬＬ１１７１）とサーモフィラス菌（ＯＬＳ３６１５）を含む培養液を作製した。この培養液を、高せん断ミキサー（ＩＫＡ社製、型番：ｍａｇｉｃＬＡＢ）を用いて、低粘度化した。具体的には、１５℃における測定で、粘度が約４ｍＰａ・ｓとなるまで、２０，０００ｒｐｍ以上で２回処理した。なお、この処理は、２０，０００Ｐａのせん断応力に相当する。続いて、低粘度化した培養液を回分式の遠心機（株式会社トミー精工製、型番：Ｓｕｐｒｅｍａ２５）を用いて１０，０００×Ｇで１２分間濃縮した。培養液を濃縮した結果、濃縮の前後での乳酸菌回収率は９９％以上であった。

（サンプル６）
脱脂粉乳、乳糖、酵母エキスからなる培地を用いて、乳酸菌としてブルガリア菌（ＯＬＬ１０７３Ｒ−１）と明治ブルガリアヨーグルト（プレーンタイプ）（株式会社明治製）から分離したサーモフィラス菌（以下、菌株Ｚという）を含む培養液を作製した。この培養液を、高せん断ミキサー（ＩＫＡ社製、型番：ｍａｇｉｃＬＡＢ）を用いて、低粘度化した。具体的には、１５℃における測定で、粘度が約５ｍＰａ・ｓとなるまで、２０，０００ｒｐｍ以上で２回処理した。なお、この処理は、２０，０００Ｐａのせん断応力に相当する。続いて、低粘度化した培養液を回分式の遠心機（株式会社トミー精工製、型番：Ｓｕｐｒｅｍａ２５）を用いて１０，０００×Ｇで１２分間濃縮した。培養液を濃縮した結果、濃縮の前後での乳酸菌回収率は９５％であった。

（サンプル７）
サンプル６と同様に、乳酸菌としてブルガリア菌（ＯＬＬ１０７３Ｒ−１）とサーモフィラス菌（菌株Ｚ）を含む培養液を作製した。この培養液を、高せん断ミキサー（ＩＫＡ社製、型番：ｍａｇｉｃＬＡＢ）を用いて、低粘度化した。具体的には、１５℃における測定で、粘度が約４ｍＰａ・ｓとなるまで、２６，０００ｒｐｍ以上で３回処理した。なお、この処理は、３９，０００Ｐａのせん断応力に相当する。続いて、低粘度化した培養液を回分式の遠心機（株式会社トミー精工製、型番：Ｓｕｐｒｅｍａ２５）を用いて１０，０００×Ｇで１２分間濃縮した。培養液を濃縮した結果、濃縮の前後での乳酸菌回収率は９９％以上であった。

サンプル３とサンプル４の比較より、乳酸菌としてブルガリア菌（ＯＬＬ１１７１）とサーモフィラス菌（ＯＬＳ３６１５）を用いた場合には、せん断工程において与えるせん断応力の大きさが７，５００Ｐａをこえると、例えば、８，０００Ｐａや９，０００Ｐａにすると、９７％よりも大きい乳酸菌回収率（例えば、９８％以上や９９％以上の回収率）が得られることが分かった。また、サンプル３のようにせん断工程において与えるせん断応力の大きさを１０，０００Ｐａとすることにより、９９％以上の乳酸菌回収率が得られることが確認された。

サンプル５とサンプル６の結果より、せん断する工程において同一のせん断力を加える場合には、乳酸菌としてブルガリア菌（ＯＬＬ１１７１）とサーモフィラス菌（ＯＬＳ３６１５）を用いる方が、ブルガリア菌（ＯＬＬ１０７３Ｒ−１）とサーモフィラス菌（菌株Ｚ）を用いるよりも、濃縮したときの乳酸菌回収率が高くなることが分かった。

一方で、サンプル６とサンプル７の結果より、乳酸菌としてブルガリア菌（ＯＬＬ１０７３Ｒ−１）とサーモフィラス菌（菌株Ｚ）を用いる場合でも、３９，０００Ｐａ相当のせん断応力を与えることにより、濃縮したときの乳酸菌回収率を９９％以上に向上させることが可能であることが分かった。

以上のことから、乳酸菌の菌種に応じて、最適なせん断条件が存在することが確認できた。

（評価試験３）
得られた乳酸菌濃縮物の発酵活力について検討するため、サンプル８〜１２の乳酸菌培養液を作製し、以下の実験を行った。サンプル８〜１２の作製条件及び評価結果については、表３にも示す。サンプル８〜１２における乳酸酸度の経時変化を、図２に示す。

（サンプル８）
脱脂粉乳、乳糖、酵母エキスからなる培地を用いて、乳酸菌としてブルガリア菌（ＯＬＬ１０７３Ｒ−１）とサーモフィラス菌（菌株Ｚ）を含む培養液を作製した。この培養液を、高せん断ミキサー（ＩＫＡ社製、型番：ｍａｇｉｃＬＡＢ）を用いて、低粘度化した。具体的には、１５℃における測定で、粘度が約５ｍＰａ・ｓとなるまで、２０，０００ｒｐｍ以上で２回処理し、液体窒素に浸漬することで凍結した。サンプル８では、せん断処理を行った後、濃縮処理は行っていない。

得られた培養液を、脱脂粉乳１３．８％溶解液（９５℃達温殺菌）の培地に０．０７５％で接種し、４３℃で培養して乳酸菌を発酵させた。このときの発酵の度合いを調べるため、乳酸酸度を測定した。サンプル８では、酸度が０．８０に到達するまでに４時間１５分を要した。

乳酸酸度の測定は、０．１規定の水酸化ナトリウム、及び指示薬としてのフェノールフタレイン液を用いた中和滴定により行った。なお、中和に寄与した酸が全て乳酸に由来すると仮定している。後述のサンプル９〜１２においても、乳酸酸度の測定方法は同一である。

（サンプル９）
サンプル８と同様に、乳酸菌としてブルガリア菌（ＯＬＬ１０７３Ｒ−１）とサーモフィラス菌（菌株Ｚ）を含む培養液を作製した。この培養液を、高せん断ミキサー（ＩＫＡ社製、型番：ｍａｇｉｃＬＡＢ）を用いて、低粘度化した。具体的には、１５℃における測定で、粘度が約５ｍＰａ・ｓとなるまで、２０，０００ｒｐｍ以上で２回処理した。続いて、低粘度化した培養液を回分式の遠心機（株式会社トミー精工製、型番：Ｓｕｐｒｅｍａ２５）を用いて１０，０００×Ｇで１２分間濃縮し、液体窒素に浸漬することで凍結した。このとき、濃縮倍率は５倍であった。

得られた濃縮液を、脱脂粉乳１３．８％溶解液（９５℃達温殺菌）の培地に０．０１５％の濃度で接種し、４３℃で培養して乳酸菌を発酵させた。接種した濃縮液に含まれる乳酸菌の数は、サンプル８において接種した培養液に含まれる乳酸菌の数と同じになるように調整した。乳酸菌の発酵の度合いを調べるため、乳酸酸度を測定した。サンプル９では、酸度が０．８０に到達するまでに４時間３０分を要した。

（サンプル１０〜１２）
サンプル８と同様に、乳酸菌としてブルガリア菌（ＯＬＬ１０７３Ｒ−１）とサーモフィラス菌（菌株Ｚ）を含む培養液を作製した。この培養液を、高せん断ミキサー（ＩＫＡ社製、型番：ｍａｇｉｃＬＡＢ）を用いて、低粘度化した。具体的には、１５℃における測定で、粘度が約５ｍＰａ・ｓとなるまで、２０，０００ｒｐｍ以上で２回処理した。続いて、低粘度化した培養液を回分式の遠心機（株式会社トミー精工製、型番：Ｓｕｐｒｅｍａ２５）を用いて１０，０００×Ｇで１２分間濃縮した。このとき、濃縮倍率は５倍であった。

得られた濃縮液に、保護剤を添加して撹拌により混合した。保護剤としては、ショ糖３２重量％、リン酸水素二カリウム８重量％、リン酸二水素カリウム８重量％を含む水溶液を用いた。保護剤の添加量は、サンプル１０，１１及び１２のそれぞれにおいて、濃縮液１００ｇに対して２０ｇ、５０ｇ及び５ｇとした。保護剤を添加した濃縮液を、液体窒素に浸漬することで凍結した。

保護剤を添加した濃縮液（凍結後）のそれぞれを、脱脂粉乳１３．８％溶解液（９５℃達温殺菌）の培地に接種し、４３℃で培養して乳酸菌を発酵させた。接種した濃縮液に含まれる乳酸菌の数は、サンプル８において接種した培養液に含まれる乳酸菌の数と同じになるように調整した。乳酸菌の発酵の度合いを調べるため、乳酸酸度を測定した。サンプル１０では、酸度が０．８０に到達するまでに４時間１５分を要した。サンプル１１では、酸度が０．８０に到達するまでに４時間１５分を要した。サンプル１２では、酸度が０．８０に到達するまでに４時間３０分を要した。

サンプル８〜サンプル１２までの比較により、サンプル９とサンプル１２は、濃縮していないサンプル８と比較して、酸度０．８０に達するまでの時間がやや延びているが、発酵の状態はほぼ同じであった。

サンプル９〜サンプル１２の比較により、サンプル１０及びサンプル１１は、サンプル９及び１２よりも酸度０．８０に達するまでの時間が短くなっている。濃縮後の乳酸菌培養液と保護剤との比率を５：１以上２：１以下とすることにより、凍結の際に受ける乳酸菌のダメージを緩和することができ、乳酸菌の発酵活力が向上することが分かる。

（評価試験４）
本発明の乳酸菌培養液の濃縮方法を工業的に実施可能であることを確認するため、以下のサンプル１３を作製した。

（サンプル１３）
脱脂粉乳、乳糖、酵母エキスからなる培地を用いて、乳酸菌としてブルガリア菌（ＯＬＬ１１７１）とサーモフィラス菌（ＯＬＳ３６１５）を含む培養液を作製した。作製した培養液の体積は１，０００Ｌであった。この培養液を、高せん断ミキサー（ＩＫＡ社製、２０００／０５、型番：ＤＲＳ：２Ｇ−４Ｍ−８Ｆジェネレータ）を用いて、低粘度化した。具体的には、１１，５００ｒｐｍ以上で３回相当（滞在時間で換算）した。

続いて、低粘度化した培養液を連続式遠心分離機（ＷｅｓｔｆａｌｉａＳｅｐａｒａｔｏｒ社製、型番：ＣＦＤ１３０）を用いて給液流量１０００Ｌ／ｈｒ（滞在時間１０分に相当）で６，８００ｒｐｍの回転数（１０，０００×Ｇの遠心力に相当）で遠心濃縮した。その結果、乳酸菌回収率は９９％以上であった。

サンプル１３において９９％以上の乳酸菌回収率を実現できたことから、本発明は工業的に効果的な乳酸菌培養液の濃縮方法であることが確認できた。

以上、上述した実施の形態は本発明を実施するための例示に過ぎない。よって、本発明は上述した実施の形態に限定されることなく、その趣旨を逸脱しない範囲内で上述した実施の形態を適宜変形して実施することが可能である。

Claims

１種または複数種の微生物を含む培養液を準備する第１の工程と、
前記第１の工程で準備した培養液を、所定温度における前記培養液の粘度が予め定められた粘度まで低下するように、せん断処理する第２の工程と、
前記第２の工程でせん断処理した培養液を遠心分離することにより、前記微生物を含む濃縮液を分離させる第３の工程と、
を備え、
前記微生物は、増粘多糖類を産生する乳酸菌である、微生物培養液の濃縮方法。
請求項１に記載の微生物培養液の濃縮方法において、
前記第１の工程で準備した培養液は、さらに、保護剤を含む、微生物培養液の濃縮方法。
請求項１または２に記載の微生物培養液の濃縮方法において、
前記第２の工程でのせん断処理が、７，５００〜１３，０００Ｐａのせん断力で、１５℃での粘度が１〜５ｍＰａ・ｓになるまでせん断する処理である、微生物培養液の濃縮方法。
請求項１〜３のいずれか１項に記載の微生物において、
前記培養液が乳由来の成分を含む、微生物培養液の濃縮方法。
請求項１から４のいずれか１項に記載の微生物培養液の濃縮方法により得られた、微生物濃縮物。
１種または複数種の微生物を含む培養液を準備する第１の工程と、
前記第１の工程で準備した培養液を、所定温度における前記培養液の粘度が予め定められた粘度まで低下するように、せん断処理する第２の工程と、
前記第２の工程でせん断処理した培養液を遠心分離することにより、前記微生物を含む濃縮液を分離させる第３の工程と、
を備え、
前記微生物は、増粘多糖類を産生する乳酸菌である、微生物培養液の濃縮物の製造方法。
請求項６に記載の微生物培養液の濃縮物の製造方法において、
前記第１の工程で準備した培養液は、さらに、保護剤を含む、微生物培養液の濃縮物の製造方法。
請求項６または７に記載の微生物培養液の濃縮物の製造方法において、
前記第２の工程でのせん断処理が、７，５００〜１３，０００Ｐａのせん断力で、１５℃での粘度が１〜５ｍＰａ・ｓになるまでせん断する処理である、微生物培養液の濃縮物の製造方法。
請求項６〜８のいずれか１項に記載の微生物において、
前記培養液が乳由来の成分を含む、微生物培養液の濃縮物の製造方法。