JP6739035B2 - 生体成分検出装置及び歯列マウスガード型センサ - Google Patents
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Landscapes
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Description
図1は、本発明に係る生体成分検出装置20を説明するための概略図である。図1の(A)は、生体成分検出装置20の模式図であり、図1の(B)は、(A)のA−A断面図である。
基材21を構成する材料は、歯列マウスガードの用途として用いられる材料であれば、特に限定されるものではない。歯列マウスガード材料の例として、ポリエチレンテレフタレートグリコール樹脂(PETG)、ポリエチレンテレフタレート樹脂(PET)、スチレン−ブタジエンブロック共重合樹脂(SBS)、エチレン−酢酸ビニル共重合樹脂(EVA)、ポリスチレン樹脂(PS)及び熱可塑性ポリウレタン樹脂(TPU)から選択される少なくとも1種の樹脂を含有するものが挙げられる。
作用電極材料層22は、作用電極材料を含有し、参照電極材料層23は、参照電極材料を含有する。
GOD
glucose+O2 → gluconolactone+H2O2 (1)
作用電極材料層22:2H2O2→4H++2O2+4e− (2)
参照電極材料層23:4H++O2+4e−→2H2O (3)
絶縁層24は、生体成分検出装置20のうち、作用電極22A及び参照電極23Aを含んで構成される電極領域20A、及び作用電極端子22B及び参照電極端子23Bを含んで構成される端子領域20B以外の領域を絶縁するために設けられる。
生体成分検出装置20の製造方法は、特に限定されるものでないが、例えば、以下のようにすることで製造できる。
プラチナ及び銀の成膜では、各電極パターンを形成するためのシールステンシルを作製する。例えば、ポリプロピレン(PP)等の樹脂シートにカッティングマシンを用いて、図2の(A)に示す作用電極材料層用パターン100及び図2の(B)に示す参照電極材料層用パターン101を切り出す。
次に、生体成分検出装置20の電極領域20A及び端子領域20Bに相当する領域以外の箇所を、ポジジメチルシロキサン(PDMS)等の絶縁材料で絶縁化する。
続いて、参照電極材料層23の表面のイオン化を防ぐため、参照電極材料層23の表面を、参照電極材料の塩化物(ここでは塩化銀)でメッキする。メッキは、参照電極材料層23を塩酸に浸漬し、一定電位を印加することによって得られる。
続いて、作用電極22A及び参照電極23Aにおいて、グルコースオキシダーゼを固定化するため、生体適合性ポリマーを調製する。生体適合性ポリマーの例として、PMEHを合成する場合、MPCとEHMAとをエタノールに溶解させ、これらのモノマー混合溶液に対して開始剤である2,2’−アゾビスイソブチロニトリル(AIBN,分子量:164.21g/mol)を添加し、その後、ラジカル重合反応を行うことによって得られる。
図4は、歯列マウスガード型センサ1の概略図である。特に、図4の(A)は、歯列マウスガード型センサ1の概略平面図であり、図4の(B)は、歯列マウスガード型センサ1の概略正面図であり、図4の(C)は、図4の(A)のB−B断面図である。
本体10は、歯列の少なくとも一部の内周に対応する内側壁部10Aと、歯列の少なくとも一部の外周に対応する外側壁部10Bとを有する。内側壁部10A及び外側壁部10Bは、歯列の少なくとも一部の内周及び外周に対応していれば特に限定されるものでなく、歯列は、上顎歯列であってもよいし、下顎歯列であってもよい。また、臼歯部分に対応していてもよいし、前歯及び犬歯に対応していてもよいし、前歯、犬歯及び臼歯の全てに対応していてもよい。
生体成分検出装置20の配置は、電極領域20Aが露出する態様であれば特に限定されるものではないが、生体成分検出装置20の腐食を最小限に抑えるため、露出は、最小限に抑えることが好ましい。
情報送信部30は、収容部10Cに収容されている。そのため、情報送信部30が口腔内で腐食し、情報送信部30を構成する材料が唾液を介して体内に流入することを防ぐことができる。
接続部40は、生体成分検出装置20と情報送信部30とを電気的に接続する機能を有する。接続部40は、導電性材料を含有するものであれば、特に限定されるものではない。
歯列マウスガード型センサ1の製造方法は、特に限定されるものでないが、例えば、以下のようにすることで製造できる。
まず、生体成分検出装置20を作成するにあたり、生体成分検出装置20の基材21のスクリーニングを行った。そして、一の基材21を例として、シート状の生体成分検出装置20を作製し、特性を評価した。
サンプル1A−1:エルコジュール,ポリエチレンテレフタレートグリコール樹脂(PETG)を含有するマウスガード材料,エルコデント社製
サンプル1A−2:スプリント,ポリエチレンテレフタレート樹脂(PET)を含有するマウスガード材料,山八歯材工業社製
サンプル1A−3:エルコジュールS,スチレン−ブタジエンブロック共重合樹脂(SBS)を含有するマウスガード材料,エルコデント社製
サンプル1A−4:エルコロックプロ(PETG面),ポリエチレンテレフタレートグリコール樹脂(PETG)を含有するマウスガード材料,エルコデント社製
サンプル1A−5:マウスガードハード,エチレン−酢酸ビニル共重合樹脂(EVA)を含有するマウスガード材料,山八歯材工業社製
サンプル1A−6:エルコロック(PS面),ポリスチレン樹脂(PS)を含有するマウスガード材料,エルコデント社製
サンプル1A−7:エルコフレックス95,エチレン−酢酸ビニル共重合樹脂(EVA)を含有するマウスガード材料,エルコデント社製
サンプル1A−8:エルコロックプロ(TPU面),熱可塑性ポリウレタン樹脂(TPU)を含有するマウスガード材料,エルコデント社製
サンプル1A−9:マウスガード,エチレン−酢酸ビニル共重合樹脂(EVA)を含有するマウスガード材料,山八歯材工業社製
サンプル1A−10:エルコロック,エチレン−酢酸ビニル共重合樹脂(EVA面)を含有するマウスガード材料,エルコデント社製
サンプル1A−11:エルコフレックス,エチレン−酢酸ビニル共重合樹脂(EVA)を含有するマウスガード材料,エルコデント社製
(プラチナ薄膜)
Pressure:1.0Pa
Plasma source:Ar
Discharge power:50W(RF)
Deposition time:60min
Thickness:200nm
(銀薄膜)
Pressure:1.0Pa
Plasma source:Ar
Discharge power:40W(DC)
Deposition time:30min
Thickness:300nm
[生体成分検出装置20の作成]
上記サンプル1A−1に係る材料を基材21とし、この基材21に作用電極材料層(プラチナ薄膜)22及び参照電極材料層(銀薄膜)23を形成した。作用電極材料層(プラチナ薄膜)22の膜厚は200nmとし、参照電極材料層(銀薄膜)23の膜厚は300nmとした。
電極領域20Aをリン酸緩衝液(20mmol/l,pH:7.4)20mlで満たしたビーカに浸漬し、ポテンシオスタットにてPt電極に+400mV(vs.Ag/AgCl)の定電位を印加し、各濃度の標準過酸化水素溶液(0.1〜20000μmol/l)の滴下に伴う出力電流値の変化を計測した。なお、リン酸緩衝液は、リン酸二水素ナトリウム(CAS No. 169−04245,MW: 141.96 g/mol,Wako Pure Chemical Industries社製)2.8392g及びリン酸水素二カリウム(CAS No.196−02865,MW:136.09g/mol)2.7218gをそれぞれ1000mlの純水に溶解させ、20mmol/lのリン酸二水素ナトリウム水溶液とリン酸水素二カリウム水溶液を調製し、これら2つの溶液を混合し、pHメータ(D−51S,S704006,HORIBA社製)を用いてpHを7.4に調整することによって得られた。結果を図11に示す。
[グルコースオキシダーゼの固定化]
(生体適合性ポリマーPMEHの合成)
試験1Bで作成した生体成分検出装置20の作用電極22A及び参照電極23Aにおいて、グルコースオキシダーゼを固定化するため、生体適合性ポリマーPMEHを合成した。この合成では、MPC147.6mgとEHMA396.6gとをエタノールに溶解させ、これらのモノマー混合溶液に対して開始剤である2,2’−アゾビスイソブチロニトリル(AIBN,分子量:164.21g/mol)を2.05mg添加した。
作用電極22A及び参照電極23Aに10重量%のPMEH溶液20μlとGODを各ユニット数(7,15,30,45,60)になるように混合した溶液を塗布した後、4℃の冷蔵庫で2時間乾燥させることで酵素を包括固定化した。次に、作用電極22A及び参照電極23Aを〔試験1B〕で用いたリン酸緩衝液(20mmol/l,pH7.4)20mlで満たしたビーカに浸漬し、ポテンシオスタットにてPt電極に+400mV(vs.Ag/AgCl)の定電位を印加し、グルコース溶液(100μmol/l)滴下に伴う出力電流値を計測した。結果を図13に示す。図13の(A)は、定電位印加後の経過時間と電極領域20Aでの出力電流値の変化量との関係を示す。また、図13の(B)は、グルコースオキシダーゼの酵素活性と電極領域20Aでの出力電流値の変化量との関係を示す。
電極領域20Aに各濃度の標準過酸化水素溶液を滴下する代わりに、電極領域20Aに各濃度の標準グルコース溶液(5〜20000μmol/l)を滴下したこと、及び生体成分検出装置20として、〔試験1C〕の手法によって30unitsのグルコースオキシダーゼを固定化した物を用いたこと以外は、〔試験1B〕と同じ手法により、生体成分検出装置20のグルコース濃度に対する定量特性を調べた。結果を図14に示す。図14の網掛けは、ヒトの唾液に含まれるグルコース濃度の範囲を示す。ヒトの唾液に含まれるグルコース濃度は、20μmol/l〜200μmol/lである。
各種糖類への選択性を調べるため、〔試験1C〕で用いたGOD固定化後(酵素量:30ユニット)の生体成分検出装置20の作用電極22A及び参照電極23Aを、〔試験1B〕で用いたリン酸緩衝液(20mmol/l,pH7.4)20mlで満たしたビーカに浸漬し、ポテンシオスタットにてPt電極に+400mV(vs.Ag/AgCl)の定電位を印加し、グルコースの他、各種の糖(フルクトース、ソルビトール、マンニトール、キシリトール、ガラクトース)を滴下したときの出力を計測し比較した。糖の濃度は、それぞれ100μmol/lとした。結果を図15に示す。
〔試験1C〕で用いたGOD固定化後(酵素量:30ユニット)の生体成分検出装置20の作用電極22A及び参照電極23Aを、複数種類のpH(5.0,6.0,7.0,7.4,8.0,9.0)に調製したリン酸緩衝液20mlで満たしたビーカに浸漬し、ポテンシオスタットにてPt電極に+400mV(vs.Ag/AgCl)の定電位を印加し、グルコース溶液(100μmol/l)滴下に伴う出力電流値を計測した。結果を図16に示す。
〔試験1C〕で用いたGOD固定化後(酵素量:30ユニット)の生体成分検出装置20の作用電極22A及び参照電極23Aを、複数種類の温度(30,38,40,45,50,55,60℃)に加熱したリン酸緩衝液(20mmol/l,pH7.4)20mlで満たしたビーカに浸漬し、ポテンシオスタットにてPt電極に+400mV(vs.Ag/AgCl)の定電位を印加し、グルコース溶液(100μmol/l)滴下に伴う出力電流値を計測した。結果を図17に示す。
まず、基材21の材料を評価したところ、複数種類のマウスガード材料において、作用電極材料層(プラチナ膜)22及び参照電極材料層(銀膜)23と良好な密着性を有することが確認された(試験1A)。また、基材21と、作用電極材料層22と、参照電極材料層23とを含んで構成される生体成分検出装置20は、過酸化水素に対して0.1μmol/l〜5000μmol/lの濃度範囲で定量が可能であり(試験1B)、グルコースに対しては唾液中グルコース濃度(20μmol/l〜200μmol/l)を含む1μmol/l〜5000μmol/lの濃度範囲で定量が可能であった(試験1D)。また、バラツキが小さい生体成分検出装置20の作製が可能であることが確認された(試験1D)。また、生体成分検出装置20が唾液中グルコースの選択性に優れた測定が可能と考えられた(試験1E)。そして、口腔内で起こり得るあらゆるpH及び温度条件下で生体成分検出装置20を使用できることが確認された(試験1F及び1G)。
〔試験2A〕情報送信部30を用いたグルコース濃度の計測
[ハードウェアの設計]
無拘束のグルコース計測を目的として、ポテンシオスタット、A/Dコンバータ及び無線機能を有する情報送信部30を設計した。情報送信部30及び外部端末50の仕様を表2に示す。
続いて、情報送信部30と生体成分検出装置20とを電気的に接続し、情報送信部30を用いたグルコース濃度の測定を行った。生体成分検出装置20の電極領域20Aをリン酸緩衝液(20mmol/l,pH7.4)20mlで満たしたビーカに浸漬し、電圧印加部31からPt電極に+400mV(vs.Ag/AgCl)の定電位を印加し、各濃度の標準グルコース溶液(5μmol/l〜20000μmol/l)の滴下に伴う出力電流値の変化を計測した。結果を図18に示す。
出力電流値のノイズを低減させるため、回路にコンデンサを設け、生体成分検出装置20から送られてくるアナログデータをデジタルデータに変換する前段階において、アナログデータからノイズを除去することを試みた。コンデンサとして、1μF〜1000μFのコンデンサを使用し、ブランクでの出力電流値の変動係数を比較した。試験2Cでは、リン酸緩衝液(20mmol/l,pH7.4)20mlで満たしたビーカに浸漬し、電圧印加部31からPt電極に+400mV(vs.Ag/AgCl)の定電位を印加し、生体成分検出装置20からの出力電流値の変動係数を調べた。また、過酸化水素100μmol/lを滴下し、ブランク定常値からの出力差が90%になるまでのセンサの応答時間も確認した。結果を図19に示す。
試験1で検討した生体成分検出装置20と、表2に記載の仕様の情報送信部30とを用いて、グルコース濃度を測定した結果、唾液中グルコース濃度(20μmol/l〜200μmol/l)を含む10μmol/l〜5000μmol/lの濃度範囲でグルコースの定量が可能であり、唾液中グルコースの無拘束計測の可能性が示唆された(試験2A)。そして、回路にコンデンサを介すことで出力電流値のノイズの除去が可能であることが確認された(試験2B)。
〔歯列マウスガード型センサ1の構築〕
まず、歯型を吸引型成型器(装置名:Vacuum adapter I,Yamahachi Dental社製)に設置し、サンプル1A−1に係るマウスガードシート材料(厚さ:0.5mm)から第1本体11を3次元成型した。成型した第1本体11の外側壁部11Bに、第一小臼歯から第三大臼歯の頬側に位置するように情報送信部30をポリイミドテープで固定し、情報送信部30を付加した第1本体11を吸引型成型器に設置した。その後、第1本体11の成型と同様の手法にて第2本体12を3次元成型した。
作製した歯列マウスガード型センサ1にてグルコースに対する定量性の評価を行った。試験は、歯列マウスガード型センサ1をリン酸緩衝液(20 mmol/l,pH7.4)20 mlで満たしたビーカに浸漬して行った。そして、情報送信部30からPt電極に+400mV(vs.Ag/AgCl)の定電位を印加し、グルコース溶液の滴下に伴う出力電流値の変化を計測した。結果を図20に示す。
<試験3>では、歯列マウスガード型センサ1によるリン酸緩衝液中のグルコース濃度の無線計測が可能であることが確認された(定量範囲:5μmol/l〜2000μmol/l)。
歯列マウスガード型センサ1を浸漬する媒体が人工唾液をもとに作製した標準グルコース溶液であること以外は、<試験3>と同様の手法にて出力電流を測定した。その結果、歯列マウスガード型センサ1を浸漬する媒体がリン酸緩衝液である場合に比べ、出力電流値が約1/4〜1/7程度にまで低下し、定量範囲についても10μmol/l〜1000μmol/lとなった。これは、人工唾液に含まれるタンパク質が電極領域20Aに吸着することが原因と考えられる。
そこで、電極領域20Aへの生体適合性ポリマーPMEHによるオーバーコートの効果を検討した。オーバーコート用のPMEH濃度として、1,3,5,7,10重量%を電極領域20Aに3μl塗布し、グルコース溶液(1000μmol/l)に対する出力電流値を評価した。結果を図21に示す。
出力電流値を高め、無線計測を最適化することを目的に、電極領域20Aの面積の拡大を図った。本試験では、電極領域20AのPt及びAg/AgClの面積が4倍(4.2mm2から16.8mm2)になるように成膜を行った。ポテンシオスタットを用いた有線計測における、グルコースに対する定量特性の検討結果を図22に示す。なお、固定化したグルコースオキシダーゼの量は、電極領域20AのPt及びAg/AgClの面積が4.2mm2である場合と同じく30ユニットとした。また、オーバーコート用のPMEH溶液の塗布量についても、電極領域20AのPt及びAg/AgClの面積が4.2mm2である場合と同じく3μlとした。
次に、人工唾液を用い、種々の条件で口腔内環境を模倣した歯科用ファントム(装置名:SIMPLE MANIKIN III,Nissin Dental Products社製)にて歯列マウスガード型センサ1のグルコース計測を行った。
人工唾液中における歯列マウスガード型センサ1のグルコースに対する定量特性を調べたところ、出力電流値がリン酸緩衝液時と比べ約1/4〜1/7程度にまで低下し、定量範囲についても、10μmol/l〜1000μmol/lとなった。これは、人工唾液に含まれるタンパク質のセンサ感応部への吸着が原因と考えられ、電極領域20AへのPMEH固定化濃度を適切にすることで改善できる。また、電極領域20Aの面積をできるだけ大きくすることで、出力電流値が高まり、結果として測定精度が向上する。
10 本体
10A 内側壁部
121 穴
10B 外側壁部
10C 収容部
11 第1本体
11A 第1本体の内側壁部
11B 第1本体の外側壁部
12 第2本体
12A 第2本体の内側壁部
12B 第2本体の外側壁部
20 生体成分検出装置
20A 電極領域
20B 端子領域
21 基材
22 作用電極材料層
22A 作用電極
23 参照電極材料層
23B 参照電極
24 絶縁層
30 情報送信部
31 電圧印加部
32 電流検出部
33 検出結果送信部
40 接続部
50 外部端末
Claims (10)
- 口腔内設置型の生体成分検出装置であって、
歯列マウスガード材料からなる基材と、
前記基材の少なくとも一方の面に積層され、作用電極材料を含有する作用電極材料層と、
前記基材の前記少なくとも一方の面に積層され、参照電極材料を含有する参照電極材料層と、
歯列マウスガード材料からなり、歯列の少なくとも一部に対応する壁部を有する本体とを備え、
前記作用電極材料層の少なくとも一部が作用電極であり、
前記参照電極材料層の少なくとも一部が参照電極であり、
前記作用電極及び前記参照電極は、前記基材と直接接しているとともに、口腔内に露出するように設けられ、
前記作用電極及び前記参照電極とは異なる部分は、前記本体によって被覆されている、生体成分検出装置。 - 前記基材は、ポリエチレンテレフタレートグリコール樹脂、ポリエチレンテレフタレート樹脂、スチレン−ブタジエンブロック共重合樹脂、エチレン−酢酸ビニル共重合樹脂、ポリスチレン樹脂及び熱可塑性ポリウレタン樹脂から選択される少なくとも1種の樹脂を含有する、請求項1に記載の生体成分検出装置。
- 前記作用電極材料がプラチナであり、前記参照電極材料が銀であり、前記参照電極は、銀の表面が塩化銀によって覆われている銀/塩化銀電極である、請求項1又は2に記載の生体成分検出装置。
- 前記基材がシート状であり、前記作用電極材料層及び前記参照電極材料層が膜状であり、前記生体成分検出装置が可撓性を有する、請求項1から3のいずれかに記載の生体成分検出装置。
- 前記作用電極及び前記参照電極が露出する領域は、接着剤不使用領域であり、
JIS K5600−5−6に準じてクロスカット法により測定される、前記基材と前記作用電極又は前記参照電極との間の密着性が80%以上である、請求項1から4のいずれかに記載の生体成分検出装置。 - 前記生体成分検出装置は、唾液に含まれるグルコースを検出する唾液中グルコース検出装置であり、
前記作用電極及び前記参照電極の表面において、グルコースオキシダーゼが固定化されている、請求項1から5のいずれかに記載の生体成分検出装置。 - 口腔内設置型の歯列マウスガード型センサであって、
歯列マウスガード材料からなり、歯列の少なくとも一部に対応する壁部を有する本体と、
前記本体、作用電極及び参照電極をそれぞれ備える生体成分検出装置と、
前記生体成分検出装置での検出結果を外部装置に送信する情報送信部と、
前記生体成分検出装置と前記情報送信部とを電気的に接続する接続部とを含んで構成され、
前記生体成分検出装置は、前記壁部において前記作用電極及び前記参照電極が口腔内に露出するように設けられ、
前記壁部は、前記情報送信部を収容する収容部を有し、
前記情報送信部は、前記収容部に収容されており、
前記接続部は、未露出状態で設けられている、歯列マウスガード型センサ。 - 前記本体は、下顎歯列の臼歯部分に対応する形状である、請求項7に記載の歯列マウスガード型センサ。
- 前記本体は、前記歯列の少なくとも一部の形状と略同じ形状である第1本体と、前記第1本体を被覆する第2本体とを有し、
前記第2本体の前記壁部は、前記情報送信部の大きさと略同じ大きさの凹部を有し、
前記収容部は、前記第1本体の前記壁部と前記第2本体の前記凹部とによって囲まれる領域であり、
前記接続部は、前記第1本体と前記第2本体との間に設けられる、請求項7又は8に記載の歯列マウスガード型センサ。 - 前記情報送信部は、前記生体成分検出装置に電圧を印加する電圧印加部と、前記生体成分検出装置での出力電流を検出する電流検出部と、前記電流検出部での検出結果を外部に送信する検出結果送信部とを有し、
前記検出結果送信部は、前記電流検出部での検出結果を外部に無線で送信する、請求項7から9のいずれかに記載の歯列マウスガード型センサ。
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