JP6738411B2

JP6738411B2 - 骨間隙充填用複合材料

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Publication number: JP6738411B2
Application number: JP2018513486A
Authority: JP
Inventors: クルエイトマンス，セバスティアヌス・ジェラルドゥス・ヨハネス・マリア; ドンゲン，エリザベト・マリアンナ・ウィルヘルミナ・マリアファン; パヴェレク，ケンデル・マーリーン; クニチャラ，ヨナタン; ヴェルドゥエイン，デニス・アドリアヌス
Original assignee: Fujifilm Manufacturing Europe BV
Current assignee: Fujifilm Manufacturing Europe BV
Priority date: 2015-09-14
Filing date: 2016-09-14
Publication date: 2020-08-12
Anticipated expiration: 2036-09-14
Also published as: WO2017048120A1; EP3349809A1; US20190247543A1; ES2767632T3; EP3349809B1; GB201516179D0; JP2018529425A

Description

これらの結果につながる研究は、the People Programme (Marie Curie Action) of the European Union's Seventh Framework Programme FP7/2007-2013/からREA grant agreement n° 607051のもとに基金を受けた。

本発明は、骨間隙の充填材を含む、複合材料(composite)、スキャフォールド（足場）(scaffold)、および医療用途におけるそれらの使用に関する。多種多様な材料が骨置換材および骨代替材として用いられている。しかし、これまで用いられている材料は天然骨と同様に良好には機能しなかった。これらの骨代替材は著しく異なる機械的特性をもち、望ましいものより低い生体適合性を示す場合が多く、したがって新生骨形成のプロセスに対する高度の制御を発揮しないので、理想的ではなかった。

最近のアプローチのひとつがWO2007040574に記載されており、そこにはヒドロキシアパタイトナノクリスタル、天然ゼラチンおよび合成ポリマーを含む、架橋バイオミメティック(biomimetic)ナノ複合材料が提唱されている。天然ゼラチンおよび他の合成ポリマーが用いられているので、結合能を容易に制御することはできない。動物由来の成分、たとえばゼラチンの使用も好ましくない。

他のアプローチがUS8987204に記載されており、そこには骨生成を誘導するために特定の組換えゼラチンのみを投与することが記載されている。この文書は、バイオミメティックとして好ましいヒドロキシアパタイト、ならびにスキャフォールド形成および骨形成の目的のための再吸収性材料の併用については述べていない。

組換えゼラチンを用いるさらに他のアプローチがJP201302213に記載されており、そこにはリン酸カルシウムとの物理的混合物が記載されている。しかし、この文書はリン酸カルシウムと組換えゼラチンとの有益なバイオミメティック相互作用に関しては述べておらず、よってこの相互作用をどのようにして制御するかを教示していない。

WO2007040574 US8987204 JP201302213

本発明の第１側面によれば、少なくとも組換えゼラチンおよびヒドロキシアパタイトを含み、組換えゼラチンが、ゼラチン鎖に沿って均一に分布しているグルタミン酸およびアスパラギン酸の残基を含む、複合材料であって、ここで：
（ｉ）組換えゼラチンは６０アミノ酸の列あたり合計で少なくとも８％の量のグルタミン酸および／またはアスパラギン酸を最大１．６の標準偏差で含み；
（ｉｉ）ヒドロキシアパタイトは組換えゼラチンの存在下での沈殿により得られる、
前記複合材料が提供される。

本発明の複合材料は、たとえばそれらをバイオミメティック骨間隙充填用複合材料として用いることにより、骨形成の効率を改善し、かつ制御する。
好ましくは、標準偏差（ＳＤ_ＥＤ）は最大１．３０、より好ましくは最大１．１０である。

６０アミノ酸の列あたりのグルタミン酸および／またはアスパラギン酸の量％は、組換えゼラチンをＮ末端から出発して残りを無視してそれぞれ６０のアミノ酸を含むセグメントに分割し、グルタミン酸（Ｅ）および／または（好ましくは“および”）アスパラギン酸（Ｄ）残基の数を６０で割り、得られた数値に１００％を掛け、次いでその組換えゼラチン中の６０の列すべてについての平均を計算することにより計算できる。たとえば、後記に示す配列番号１の第１列には３つのＥ（グルタミン酸残基）および３つのＤ（アスパラギン酸残基）があり、合計６つのＥおよびＤ残基となり、６０アミノ酸の列あたりのグルタミン酸およびアスパラギン酸の量の合計は（（６／６０）×１００＝１０％になる（５％のＥ＋５％のＤ）。この計算を配列番号１中の６０の列すべてについて繰り返すと、後記の表１に示すように、６０アミノ酸の列あたりＧＬＵ＋ＡＳＰ量９．８％の数値が得られる。

好ましくは、組換えゼラチンは、組換えゼラチンの６０アミノ酸の列あたり合計で少なくとも８％のグルタミン酸およびアスパラギン酸、より好ましくは組換えゼラチンのＮ末端から出発して６０アミノ酸の列すべてにおいて、６０アミノ酸の列あたり合計で少なくとも８％のグルタミン酸およびアスパラギン酸を含む。

標準偏差（ＳＤ_ＥＤ）は下記に従って決定できる：ゼラチン鎖を、Ｎ末端から出発して残りを無視してそれぞれ６０のアミノ酸を含むセグメントに分割する。これらのセグメントそれぞれについて、グルタミン酸（Ｅ）とアスパラギン酸（Ｄ）の総量（合わせてｘ_ｉ）を決定し、下記に従って標準偏差を計算する：

本発明の第２側面によれば、本発明の第１側面による複合材料を含むスキャフォールドが提供される。
本発明の複合材料およびスキャフォールドは高度の生体適合性を提示し、一方で周囲の組織および構造体との迅速な統合を示す。そのスキャフォールドは、本発明の第１側面による複合材料を含み、ティッシュンジニアリング、たとえばインビトロ細胞培養またはインビボ移植に使用できる、いかなる物体であってもよい。一般に、スキャフォールドは造形された三次元物品である。一般に、スキャフォールドは細胞が付着する基盤として使用できる。

スキャフォールドは、本発明の第１側面による複合材料に加えて、場合によりさらに１以上のさらなる成分、たとえば１種類以上の充填材またはポリマー、たとえばキトサン、コラーゲン，ゼラチン、デンプン、ポリラクチド（ＰＬＡ）、ポリグリコリド（ＰＧＡ）、ポリ（ラクチドグリコリド）ランダムコポリマー（ＰＬＧＡ）、ポリカプロラクトン（ＰＣＬ）、ポリエチルオキシド（ＰＥＯ）および／またはポリエチルグリコール（ＰＥＧ）などを含有する。好ましい態様において、本発明の第２側面によるスキャフォールドは架橋スキャフォールド、たとえば脱水熱処理(dehydrothermal treatment)により、または架橋剤、たとえばヘキサメチレンジイソシアネートもしくは後記のいずれかの架橋剤による処理により、架橋したスキャフォールドである。

本発明の第３側面において、ヒドロキシアパタイトと組換えゼラチンの共沈、場合により続いてｐＨ７．０〜９．０におけるミネラリゼーションを含む、請求項１〜４のいずれか１項に記載の複合材料を調製する方法が提供される。

本発明の第２側面のスキャフォールドを製造するための方法は、好ましくは、水性条件下で本発明の第１側面に定めた組換えゼラチンの存在下での沈殿によりヒドロキシアパタイトを得ること、沈殿を造形し、次いで乾燥させてスキャフォールドを形成すること、場合により脱水熱処理により、または化学的架橋剤（たとえば、前記のもの）による処理により、そのスキャフォールドを架橋させることを含む。

水性条件下での沈殿は、たとえば水酸化カルシウム、リン酸、および本発明の第１側面に定めた組換えゼラチンを、水性条件下で混合することにより実施できる。
本発明の第４側面において、本発明の第１側面による複合材料（たとえば、バイオミメティックナノ複合材料の形態のもの）を、たとえば骨再生医療に使用する方法が提供される。この使用は、好ましくは本発明の第１側面による複合材料、本発明の第２側面によるスキャフォールド、または本発明の第２側面によるスキャフォールドを含む物品を、ヒトまたは動物の体内に移植することを含む。

本発明のこの第４側面において、好ましくはスキャフォールドは架橋スキャフォールドである。
１以上の本発明の態様の詳細を添付の図面および以下の詳細な記載において述べる。本発明の他の特徴、目的および利点はそれらの記載および図面ならびに特許請求の範囲から明らかになるであろう。

用語“含む(comprising)”は、指定した部品、工程または構成要素の存在を特定するが、１以上の追加の部品、工程または構成要素の存在を除外しないと解釈すべきである。
不定冠詞“a”または“an”によるある要素の表記は、１つかつ唯一の要素があることが内容から要求されない限り、１より多い要素が存在する可能性を除外しない。よって、不定冠詞“a”または“an”は通常は“少なくとも”を意味する。

しばしば、用語‘コラーゲン’なども当技術分野で用いられるが、用語‘ゼラチン’を本明細書の残りの箇所全体において用いる。天然ゼラチンは、５，０００から４００，０００ダルトン以上にまで及ぶ分子量をもつ個々のポリマーの混合物である。

本明細書中で用いる“ゼラチン”は、いずれかのゼラチン、すなわちゼラチンの少なくとも１つの構造的および／または機能的特徴をもついずれかの分子を表わす。“ゼラチン”には、単一コラーゲン鎖、そのいずれかのフラグメント、誘導体、オリゴマー、ポリマーおよびサブユニットであって少なくとも１つのコラーゲン性ドメイン（Ｇｌｙ−Ｘａａ−Ｙａａ領域；ここで、ＸａａおよびＹａａは独立していずれかのアミノ酸である）を含有するものが含まれる。用語“ゼラチン”には、自然界でみられない工学操作した配列、たとえば変異させたコラーゲン配列、たとえば天然コラーゲン配列から欠失、付加、置換または他の変化によって変異させたコラーゲン配列が含まれる。用語“組換えゼラチン”と‘ゼラチン”は互換性をもって用いられる。

用語“ＲＧＤ配列”と“ＲＧＤモチーフ”は互換性をもって用いられる。
用語“タンパク質”または“ポリペプチド”または“ペプチド”は互換性をもって用いられ、特定の作用様式、サイズ、三次元構造または起源に関係なく、アミノ酸の鎖からなる分子を表わす。

用語“バイオミメティック”は、自然界からインスピレーションを得て天然骨形成を再建することに関連した多相挙動および材料特性および解決策を記述するために用いられる。

説明のためだけに本発明を特定の好ましい態様に関して記載する；しかし、説明した態様に対して当業者が種々の変更、改変、追加および改善を行なうことができ、それらはすべて本発明の精神および範囲内に含まれると認識される。

図１：本発明による複合材料（後記の実施例に記載するサンプル１ｃ（ゼラチン／ヒドロキシアパタイト（“ＨＡ”）複合材料マイクロスフェアであって高度非晶質ＨＡを含むもの）−対−サンプル１ｇ（ゼラチン／ＨＡ複合材料マイクロスフェアであって実施例１ｃより結晶質であるＨＡを含むもの））のＸＲＤスペクトル。サンプル１ｃおよび１ｇの両方において、ＨＡはＲＣＰの存在下での沈殿により得られた。図２：マイクロスフェア形態の複合材料サンプルであるサンプル１ｃ（＝ａ）および１ｇ（＝ｂ）のＳＥＭ画像。図３：実施例に記載した複合材料サンプル１ｂ５、１ｂ４および１ｂ３の断面のＳＥＭ画像。これらのサンプルは、本発明の第１側面の複合材料を含む異方性多孔質スポンジ形態の本発明のスキャフォールドである。上図は細孔方向に対して横方向の断面であり、下図は細孔方向に対して縦方向の断面である。図４：複合材料サンプル１ｃ（２種類の濃度）および１ｐのＦＴＩＲスペクトルである。

組換えゼラチンは好ましくは非フィブリル状ゼラチンであり、好ましくは普通の天然ゼラチンより低い分子量をもつ。そのうえ、組換えゼラチンはさらに鎖に沿って均一に分布したグルタミン酸および／またはアスパラギン酸の残基を含むという特徴をもつ。

組換えゼラチンは、たとえば６０アミノ酸の列あたり少なくとも８％の総量のグルタミン酸および／またはアスパラギン酸を、最大１．６の標準偏差で含む。総ＨＡ結合能を増大させる目的のために、グルタミン酸および／またはアスパラギン酸の残基の絶対出現率は、好ましくは少なくとも９％、より好ましくは約１０％である。

組換えゼラチンは、好ましくは１５０ｋＤａ未満、好ましくは１００ｋＤａ未満の平均分子量をもつ。好ましくは、組換えゼラチンは少なくとも５ｋＤａ、好ましくは少なくとも１０ｋＤａ、より好ましくは少なくとも３０ｋＤａの平均分子量をもつ。組換えゼラチンについて好ましい平均分子量範囲には、５０ｋＤａ〜１００ｋＤａ、２０ｋＤａ〜７５ｋＤａ、および５ｋＤａ〜４０ｋＤａが含まれる。より高い質量濃度のゼラチンが必要な場合には、より低い粘度であるという理由で、より低い分子量が好ましい可能性がある。

組換えゼラチンは、たとえばＦＵＪＩＦＩＬＭから商品名Ｃｅｌｌｎｅｓｔ（商標）で購入できる。組換えゼラチンは、既知の方法により、たとえば特許出願EP 0 926 543およびEP 1 014 176の記載に従って調製することもできる；それらの内容を本明細書に援用する。組換えゼラチンを調製する方法は、刊行物‘High yield secretion of recombinant gelatins by Pichia pastoris’, M. W. T. Werten et al., Yeast 15, 1087-1096 (1999)にも記載されている。適切な組換えゼラチンはWO 2004/85473にも記載されている。

一態様において、組換えゼラチンは少なくとも２つのリジン残基を含み、それらのリジン残基は最端(extreme)リジン残基であり、第１の最端リジン残基はゼラチンのＮ末端に最も近いリジン残基であり、第２の最端リジン残基はゼラチンのＣ末端に最も近いリジン残基であり、それらの最端リジン残基はそのゼラチン中のアミノ酸の総数の少なくとも２５パーセントにより分離されている。そのような組換えゼラチンは、たとえばUS 2009/0246282に記載された方法により得ることができる。

好ましい態様において、組換えゼラチンは卓越した細胞付着特性をもち、好ましくは何ら健康関連リスクを示さない。有利には、これはＲＧＤエンリッチ(RGD-enriched)組換えゼラチン、たとえばアミノ酸の総数に対するＲＧＤモチーフのパーセントが少なくとも０．４である組換えゼラチンを用いて達成される。ＲＧＤエンリッチゼラチンが３５０以上のアミノ酸を含む場合、３５０アミノ酸の長さのものそれぞれが好ましくは少なくとも１つのＲＧＤモチーフを含む。好ましくは、ＲＧＤモチーフのパーセントは少なくとも０．６、より好ましくは少なくとも０．８、より好ましくは少なくとも１．０、より好ましくは少なくとも１．２、最も好ましくは少なくとも１．５である。

ＲＧＤモチーフのパーセント０．４は２５０アミノ酸につき少なくとも１つのＲＧＤ配列と一致する。ＲＧＤモチーフ数は整数であり、よって０．４％の特徴に適合するためには、２５１アミノ酸からなるゼラチンは２つのＲＧＤ配列を含むべきである。好ましくは、ＲＧＤエンリッチ組換えゼラチンは２５０アミノ酸につき少なくとも２つのＲＧＤ配列、より好ましくは２５０アミノ酸につき少なくとも３つのＲＧＤ配列、最も好ましくは２５０アミノ酸につき少なくとも４つのＲＧＤ配列を含む。

さらなる態様において、ＲＧＤエンリッチゼラチンは少なくとも４つのＲＧＤモチーフ、好ましくは少なくとも６、より好ましくは少なくとも８、より好ましくは少なくとも１２から１６までのＲＧＤモチーフを含む。

本発明に使用する組換えゼラチンは、好ましくはコラーゲン性配列に由来する。コラーゲンをコードする核酸配列は、当技術分野で一般的に記載されている（参照：たとえばFuller and Boedtker (1981) Biochemistry 20: 996-1006; Sandell et al. (1984) J Biol Chem 259: 7826-34; Kohno et al. (1984) J Biol Chem 259: 13668-13673; French et al. (1985) Gene 39: 311-312; Metsaranta et al. (1991) J Biol Chem 266: 16862-16869; Metsaranta et al. (1991 ) Biochim Biophys Acta 1089: 241-243; Wood et al. (1987) Gene 61 : 225-230; Glumoff et al. (1994) Biochim Biophys Acta 1217: 41-48 ; Shirai et al. (1998) Matrix Biology 17: 85-88; Tromp et al. (1988) Biochem J 253: 919-912; Kuivaniemi et al. (1988) Biochem J 252: 633640; およびAla-Kokko et al. (1989) Biochem J 260: 509-516)。

ＲＧＤモチーフに富む組換えゼラチンは、たとえばUS 2006/0241032に記載される一般法により調製することもできる。
複合材料またはスキャフォールドが医薬または医療用のものである場合、組換えゼラチンは好ましくは天然ヒトコラーゲンのアミノ酸配列と近縁または同一であるアミノ酸配列をもつ。より好ましくは、ゼラチンのアミノ酸配列は天然ヒトコラーゲン中にみられる反復アミノ酸配列、特にＲＧＤモチーフを含む配列を含む（ＲＧＤエンリッチ組換えゼラチンを作成するために）。そのような選択した配列中のＲＧＤモチーフのパーセントは選択した配列の選ばれた長さに依存し、より短い配列の選択は結果として最終的な組換えゼラチンにおいてより高いＲＧＤパーセントになるであろう。天然ゼラチンより高い分子量をもつ組換えゼラチンを得るために、選択したアミノ酸配列の反復使用を採用できる。さらに、組換えゼラチンは好ましくは非抗原性かつＲＧＤエンリッチ（天然ゼラチンと比較して）である。

よって、好ましい態様において、組換えゼラチンは天然ヒトコラーゲン配列の一部分を含む。好ましくは、組換えゼラチンは１以上の天然ヒトゼラチンアミノ酸配列の１以上の部分の少なくとも８０％を含む（または、からなる）ＲＧＤエンリッチゼラチンである。好ましくは、ヒトゼラチン配列のそのような部分はそれぞれ、少なくとも３０アミノ酸、より好ましくは少なくとも４５アミノ酸、最も好ましくは少なくとも６０アミノ酸、最大でたとえば２４０、好ましくは最大で１５０、最も好ましくは最大で１２０アミノ酸の長さをもち、それぞれの部分は好ましくは１以上のＲＧＤ配列を含む。好ましくは、ＲＧＤエンリッチゼラチンは１以上の天然ヒトコラーゲン配列の１以上の部分を含む（または、からなる）。

本発明に使用できる組換えゼラチンの適切な供給源の例はヒトＣＯＬ１Ａ１−１である。ＲＧＤ配列を含む２５０アミノ酸の部分がWO 04/85473に示されている。組換えゼラチン中のＲＧＤ配列は細胞表面のインテグリンと呼ばれる特異的受容体に接着できる。

ＲＧＤエンリッチゼラチンは、たとえばEP-A-0926543、EP-A-1014176またはWO 01/34646、特に最初に述べた２つの特許公報の例に記載された組換え法により製造できる。ＲＧＤエンリッチ組換えゼラチンを製造するための好ましい方法は、ＲＧＤアミノ酸配列を含むコラーゲンタンパク質の部分をコードする天然核酸配列から出発することを含む。この配列の反復により、ＲＧＤエンリッチ組換えゼラチンを得ることができる。

よって、組換えゼラチンはそのようなゼラチンをコードする核酸配列を適切な微生物により発現させることによって製造できる。このプロセスは、適切には真菌細胞または酵母細胞を用いて実施できる。適切には、宿主細胞はハンゼヌラ属(Hansenula)、トリコデルマ属(Trichoderma)、アスペルギルス属(Aspergillus)、ペニシリウム属(Penicillium)、サッカロミセス属(Saccharomyces)、クルイベロミセス属(Kluyveromyces)、アカパンカビ属(Neurospora)、またはピチア属(Pichia)のような高発現性宿主細胞である。真菌および酵母の細胞の方が反復配列の不適正発現を生じにくいので細菌より好ましい。最も好ましくは、宿主は発現するゼラチン構造を開裂する高レベルのプロテアーゼをもたないであろう。これに関して、ピチア属またはハンゼヌラ属はきわめて適切な発現系の例を提供する。発現系としてのピチア・パストリス(Pichia pastoris)の使用がEP 0 926 543およびEP 1 014 176に開示されている。それらの微生物は活性な翻訳後プロセシング機序、たとえば特にプロリンのヒドロキシル化および同様にリジンのヒドロキシル化を備えていない可能性がある。あるいは、宿主系は内因性プロリンヒドロキシル化活性をもつ可能性があり、それによりゼラチンはきわめて効率的にヒドロキシル化される。

さらなる態様において、組換えゼラチンは天然ゼラチンより低いグリコシル化度、たとえば２ｗｔ％未満、好ましくは１ｗｔ％未満、より好ましくは０．５ｗｔ％未満、特に０．２ｗｔ％未満、より特別には０．１ｗｔ％未満のグリコシル化度をもつ。好ましい態様において、組換えゼラチンはグリコシル化を含まない。

グリコシル化の程度またはｗｔ％は、たとえばＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ(Matrix Assisted Laser Desorption Ionization mass spectrometry(マトリックス支援レーザー脱離イオン化質量分析))またはデュボア(Dubois)による滴定法により決定した、ゼラチンの単位重量当たりの総炭水化物重量を表わす。用語‘グリコシル化’は、単糖類だけでなく、多糖類、たとえば二糖類、三糖類および四糖類をも表わす。

グリコシル化が低いかあるいは存在しないことを確実にするための種々の方法がある。グリコシル化は翻訳後修飾であり、それにより炭水化物がゼラチンのあるアミノ酸に共有結合する。よって、アミノ酸配列およびそのアミノ酸配列が産生される宿主細胞（および酵素、特にグリコシルトランスフェラーゼ）の両方がグリコシル化度を決定する。２タイプのグリコシル化がある：Ｎ−グリコシル化はＧＩｃＮＡｃ（Ｎ−アセチルグルコサミン（N-acetylglucosamine））がアスパラギン（ＮまたはＡｓｎ）のアミド基に連結することにより開始し、Ｏ−グリコシル化は一般にＧａＩＮＡｃ（Ｎ−アセチルガラクトサミン）をアミノ酸セリン（ＳまたはＳｅｒ）またはトレオニン（ＴまたはＴｈｒ）のヒドロキシル基に連結する。

したがって、グリコシル化は、適切な発現宿主を選ぶことにより、および／または宿主のグリコシルトランスフェラーゼにより認識されるコンセンサス部位を改変するか、もしくはそれを欠如する配列を選ぶことにより制御でき、特に低減または阻止できる。ゼラチンの化学合成も、グリコシル化を含まないゼラチンを調製するために採用できる。グリコシル化を含む組換えゼラチンを製造後に処理して全部または大部分の炭水化物を除去するか、あるいは非グリコシル化ゼラチンをグリコシル化ゼラチンから既知の方法により分離することもできる。

ヒドロキシアパタイト結晶は、カルシウムとリン酸源を混和し、沈殿させることにより形成できる。核形成が溶液中でランダムに起きる均一核形成と対照的に、不均一に核形成したヒドロキシアパタイトはカルシウムイオンと組換えゼラチン上のアスパラギン酸基および／またはグルタミン酸基からのカルボン酸基との初期会合により形成される。これらの結晶はさらに生長してマトリックス構造内へ埋め込まれ、それによりコラーゲンとヒドロキシルアパタイトが密に連結した人骨の性質に似たものになる。

意外なことに、本発明者らは、本発明の第１側面に記載した組換えゼラチンは効率的な
核形成および低結晶質ヒドロキシアパタイト結晶の生長をもたらし、それらが、再吸収性および骨形成増強に関して好ましいバイオミメティックな様式（またはバイオミネラリゼーションプロセス）でカルボン酸基に会合することを見出した。

本発明の第１側面に定める組換えゼラチンは、ヒドロキシアパタイトの効率的な無機質核形成を誘導してより大きな無機質結合能を可能にするので、有利に用いられる。好ましくは、前記の標準偏差は最大１．３、より好ましくは最大１．１である。

ヒドロキシアパタイト組換えゼラチン複合材料は、コラーゲン／ヒドロキシアパタイト複合材料の調製についての文献に記載された方法、たとえばS. Sprio et al によりJournal of Nanomaterials, Volume 2012, Article ID418281に記載された方法を用いて調製できる。

本発明の第１側面に定める組換えゼラチンの存在下で、たとえば組換えゼラチンを一般に１％〜３０％の濃度で水溶液に溶解し、リン酸を用いてその溶液を酸性にし、この溶液を水酸化カルシウムと混合することにより、たとえば酸性にした組換えゼラチン溶液を水酸化カルシウムの溶液に添加することにより、ヒドロキシアパタイトを沈殿させることができる。まず組換えゼラチンをカルシウム源（たとえば、水酸化カルシウム溶液）と混合し、その後にリン酸を添加することもできる。

ヒドロキシアパタイトを組換えゼラチンの存在下で沈殿させた後（一般に、組換えゼラチンの存在下で結晶化プロセスを行なわせる）、通常は複合材料スラリーが得られる。このスラリーを、所望により造形および乾燥によってさらに処理することができる。この方法で、スキャフォールドを形成することができる。そのような造形および乾燥プロセスの例には、乳化、噴霧乾燥、成形、氷晶テンプレート法(ice templating)または凍結乾燥が含まれる。加工法に応じて、スキャフォールド、たとえば多孔質または非孔質のスキャフォールドを形成できる。マイクロスフェアの形態のスキャフォールドは注入可能な骨充填材の形成に使用できるので特に好ましい。マイクロスフェアは多様なサイズであってよく、好ましくは１〜２０００μｍの直径であり、たとえば１〜２０００μｍの平均直径をもつマイクロスフェアの形態のスキャフォールドが好ましい。好ましくは、マイクロスフェアは骨再生を必要とする対象に注入できるサイズのものであり、たとえば好ましいスキャフォールドは１０〜２００μｍ、たとえば１０、３０、１００または２００μｍの平均直径をもつマイクロスフェアの形態である。

たとえばWO2013068722に記載された氷晶テンプレート法の採用は、異方性細孔配向をもつスキャフォールドの形成を可能にし、同様に好ましい。異方性細孔サイズは、好ましくは１〜１０００μｍの直径である。好ましくは、細孔サイズは細胞が透過できるのに十分なほど大きく、すなわち少なくとも１０、３０、１００μｍの直径である。より好ましくは、スキャフォールドは少なくとも１５０μｍ（平均）の直径の細孔を含む。好ましくは、スキャフォールドの（平均）細孔サイズは５００μｍ未満、より好ましくは４５０μｍ未満の直径である。

スキャフォールドは場合により単分散または多分散細孔サイズ分布をもつ。細孔サイズ分析のために、好ましくは少なくとも３つのＳＥＭマイクログラフをそれぞれのスキャフォールドから取得する。ＩｍａｇｅＪソフトウェア（ＩｍａｇｅＪはパブリックドメインＪａｖａイメージプロセシングプログラムである）を用いて概要を求め、次いで個々の細孔を測定することができる；細孔サイズは好ましくは少なくとも４０の細孔の平均フェレット直径(Feret's diameter)である。

天然骨の組成を模倣するために、本発明の複合材料およびスキャフォールドは、好ましくはヒドロキシアパタイト−対−組換えゼラチンの比１００：１〜１：１００、より好ましくは１０：１〜１：１０、よりさらに好ましくは５：１〜１：５を含む。最も好ましいヒドロキシアパタイト−対−組換えゼラチンの比は３：２〜２：３である。比率を選択することにより、ヒドロキシアパタイトがもたらす化学的役割を犠牲にすることなく良好な複合材料安定性を達成できる。

本発明の複合材料およびスキャフォールドのバイオミメティック性を増大させるために、ヒドロキシアパタイトはさらに添加物、たとえばＣＯ_３ ^２−、Ｎａ^＋、Ｍｇ^２＋、Ｓｒ^２＋、Ｓｉ^４＋、Ｚｎ^２＋、ＳｉＯ_４ ^４−および／またはＨＰＯ_４ ^２−イオンを含むことができる。一態様において、本発明の複合材料およびスキャフォールドは１種類以上のそのような添加物を０．０１％〜２５ｗｔ％の総量で含む。特に好ましいのは、天然の人骨のそのような添加物の量を模倣した添加物濃度である。

本発明の複合材料およびスキャフォールドの好ましいサイズは、その複合材料を使用する予定の用途に依存する。たとえば、多孔質複合材料およびスキャフォールドの平均サイズは、たとえば１ｍｍ×１ｍｍで厚さ１ｍｍの小さなものから１０ｃｍ×１０ｃｍで厚さ１ｃｍの大きなものにまで及ぶことができる。

完全な骨再生を可能にする複合材料滞留時間を得るために、好ましくは本発明の複合材料およびスキャフォールドを架橋させる。好ましくは、骨の再生と複合材料の再吸収は同時プロセスである。架橋は、好ましくは組換えゼラチン中に存在する反応基を用いて達成される。ポリペプチドを架橋させることができる方法は既に文献に広範に記載されている。大部分の場合、架橋はゼラチンのカルボン酸基またはアミン基により起きる。

本発明に使用できる架橋剤には特に制限はない。たとえば化学的架橋剤、たとえばホルムアルデヒド、グルタルアルデヒド、ヘキサメチレンジイソシアネート、カルボジイミドおよび／またはシアナミドを使用できる。

好ましくは、用いる架橋方法は複合材料またはスキャフォールドの生体適合性に影響を及ぼさず、かつ強い免疫応答を発生しない。それに関して、架橋方法として脱水熱処理を用いるのが好ましい。架橋剤としてヘキサメチレンジイソシアネートを用いるのも好ましい。

本発明の複合材料およびスキャフォールドは、場合によりさらに、骨形成プロセスをさらに刺激する骨充填材配合物を提供する賦形剤を含む。そのような賦形剤の例には、合成および天然のポリマー、薬物、増殖因子、架橋剤、天然骨、および無機成分（たとえば、他の結晶構造をもつリン酸カルシウム、リン酸三カルシウムなど）が含まれる。

本発明の複合材料およびスキャフォールドは、特に骨再生の分野で、たとえば疾患または外傷により形成された人骨欠損部を充填するために有用である。適用の部位および方法に応じて、複合材料またはスキャフォールドの組成を調整することが必要な場合がある。

複合材料およびスキャフォールドは、好ましくは他の成分との組成物の形態、またはマイクロスフェア、粒子もしくはスポンジの形態である。複合材料およびスキャフォールドについて、それらが配置される予定の骨欠損部に適した種々のサイズおよび形状を採用できる。

複合材料は、特にそれを用いて不規則な形状の骨欠損部を充填する際には、場合により注入可能なペーストまたはパテの形態である。
本発明の複合材料およびスキャフォールドを骨充填材として用いる際には、骨欠損部を安定化するためにそれらを他の整形外科的手法と組み合わせて、たとえばプレートおよびスクリューと組み合わせて用いることができる。複合材料およびスキャフォールドを骨充填材として適用する前に、体液、たとえば血液、血漿または骨髄吸引液と混合してもよい。

本発明を限定ではない実施例により説明する；別に特定しない限り、実施例中のすべての部およびパーセントは重量による。

組換えゼラチンの調製
ヒトＣＯＬｌＡｌ−Ｉのゼラチンアミノ酸配列の一部分をコードする核酸配列に基づき、EP-A-0926543、EP-A-1014176およびWO01/34646に開示された方法を用いてこの核酸配列を改変して、組換えゼラチン（配列番号１、２、３、４、５および６）を調製した。これらのゼラチンはヒドロキシプロリンを含有せず、本発明において配列番号１、２、３、４、５または６と同定したアミノ酸配列を含んでいた。配列１〜５は全般的に同じアミノ酸をもち、グルタミン酸（ＧＬＵ）およびアスパラギン酸（ＡＳＰ）残基の分布が異なる。最後の不完全な列を除いて、６０アミノ酸の列あたりのＧＬＵ＋ＡＳＰの総量を各列の右側に示す。

ゼラチン中のＧＬＵ＋ＡＳＰの分布を、列あたりの量の標準偏差により示す（参照：下記の表１）。これらの実施例に用いたアミノ酸配列において、標準偏差は配列番号１についての０．６から配列番号５についての１．９まで漸増する。配列番号６は、高い標準偏差に加えて、より少量のＧＬＵおよびＡＳＰ残基を含む。

配列番号１、２、３、４、５および６を用いて、下記の実施例に記載するように種々の複合材料およびスキャフォールドを調製した。

実施例１）組換えゼラチンの存在下でのヒドロキシアパタイトの沈殿による複合材料の調製
実施例１ｄについて、乾燥ゼラチンを脱イオン水に溶解することにより、１００グラムの溶液につき１０グラムのゼラチン（配列番号２）の溶液を調製した。その後、リン酸を添加した（２６４９マイクロリットル，８６．２ｍ％）。この酸性混合物を次いで、４．９グラムの水酸化カルシウムを含有する５４．９グラムの水酸化カルシウム懸濁液に滴加した。他の例を表２の条件に従って同様に調製した。

ある例では沈殿後に１Ｍ塩酸を用いてｐＨを調整し、１つの例ではそれを調整しないままにした（ｐＨ９，実施例１ｇ）。次いで周囲条件で２時間、ミネラリゼーション反応を進行させた。ゼラチンと比較したリン酸および水酸化カルシウムの添加量に応じて、種々のゼラチン対ＨＡ比をもつ複合材料が形成された。本発明の実施例配列番号１、配列番号２および配列番号３について、ならびに比較例配列番号４、配列番号５および配列番号６について用いたミネラリゼーション条件の例を表２に示す。さらに、下記の表２に示す基準サンプル１ｐも比較例である。このスラリーは、表２に示す条件下でリン酸カルシウム粉末（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈから入手）をゼラチン溶液に混入することにより得られる。よって、サンプル１ｐはリン酸カルシウムとゼラチンの物理的混合物であり、その場合、リン酸カルシウムはゼラチンの存在下で沈殿しない。この物理的混合法はJP2013202213に記載されている。

実施例２：スキャフォールドの形成
前記の実施例１でスラリーとして得た複合材料をさらに処理して種々のスキャフォールドを作成した。以下に、(コア−シェル)マイクロスフェア、等方性および異方性スポンジの作成を下記の実施例に記載する。

実施例２．１マイクロスフェアスキャフォールド
４５ｇのコーンオイルの試料を予め５０℃に加温し、５００ｒｐｍで撹拌した。次いで個別の実験で、実施例１に記載したスラリーそれぞれ３０ｇをコーンオイルに滴加して、約９０μｍの体積平均粒径(volume-weighted average particle size)（Ｄ［４，３］，Malvern Mastersizer 2000)が得られるまで２０分間乳化した。次いで、生じたエマルジョンを撹拌しながら５℃にまで冷却し、その後、それらの重量の１．３倍の氷冷アセトン中へ撹拌下で添加して、低温ゲル化粒子からの水抽出によりマイクロスフェアの形状およびサイズを固定した。得られたマイクロスフェアを、次いでマイクロスフェアが白色になり、上清が透明無色になるまで、等重量のアセトンで反復洗浄した。各アセトン洗浄に際して、マイクロスフェアを１０分間沈降させ、上清をデカント除去した。得られたマイクロスフェアを次いで濾過により採集し、６０℃で一夜、ストーブ内で乾燥させた。

その後、マイクロスフェアを脱水熱処理（４８時間，１６０℃，真空下）により架橋させた。マイクロスフェアスキャフォールドをｐＨ７．４のリン酸緩衝化生理食塩水に３７℃で２４時間入れる溶解度試験により、架橋効率を確認した。架橋はエタノール中でのヘキサメチレンジイソシアネート架橋（２４時間，エタノール中の１％ＨＭＤＩＣ）によって行なうこともできる。

実施例２．２コア−シェルマイクロスフェアスキャフォールド
複合材料を含有するスラリーを実施例１の記載に従って調製し、ＢｕｃｈｉＢ−２９０噴霧乾燥器を用いて噴霧乾燥させた。得られた粒子は２０マイクロメートル未満の体積平均粒径（Ｄ［４，３］，Malvern Mastersizer 2000)をもっていた。さらに処理する前に、これらの粒子を前記で実施例２．１に記載したように架橋させた。その後、１０％の組換えゼラチンを含む水相に架橋粒子を分散させ、再び噴霧乾燥させた。得られたコア−シェル粒子は、実施例１に記載した比率の組換えゼラチンおよびヒドロキシアパタイトの両方を含む１以上のコア粒子を収容した、組換えゼラチンからなるシェルを備えていた。最後にこれらの粒子を前記に従って再び架橋させた。他の実験において、２０マイクロメートル未満のサイズをもつ噴霧乾燥ゼラチン／ヒドロキシアパタイト粒子を、実施例１から得られたゼラチン／ヒドロキシアパタイトスラリー（粒子のゼラチン／ヒドロキシアパタイト比と異なるゼラチン／ヒドロキシアパタイト比をもつ）に分散させた。噴霧乾燥および架橋の後、マイクロスフェアのシェルのものと異なる（多様な）ゼラチン／ヒドロキシアパタイト比をもつコアを備えたコア−シェル粒子が得られた。

実施例２．３ランダムまたは等方性のスポンジスキャフォールド
実施例１ａ〜１ｎのスラリーをテフロン(Teflon)（登録商標）コートしたアルミニウム容器に注入し、−２０℃に予冷した凍結乾燥機（Ｚｉｒｂｕｓ３×４×５）に６時間入れて完全凍結させた。その後、サンプルを０．０５ｍｂａｒの圧力および−１０℃の温度で、乾燥するまで凍結乾燥させた。乾燥スポンジの目視検査および顕微鏡検査により、等方性およびランダムなスポンジ構造が明らかになった。

実施例２．４異方性スポンジスキャフォールド
実施例１ｂのスラリーをテフロンコートしたアルミニウム容器に注入し、WO2013068722に記載された凍結プロファイル法を施して異方性スポンジを得た。完全凍結後、サンプルを０．０５ｍｂａｒの圧力および−１０℃の温度で、乾燥するまで凍結乾燥させた。その後、実施例２．１の記載に従ってスポンジを架橋させた。こうして得た乾燥スポンジは完全異方性の細孔構造であることが明らかになった。特別な例において、細孔サイズに影響を及ぼすために、実施例１ｂの組成をもつスラリーに種々の凍結勾配を施した。この方法で、表３に示すように細孔サイズを８０〜６００マイクロメートルに調節することができた。細孔サイズは、３つのＳＥＭ画像からＩｍａｇｅＪソフトウェアを用いて決定した少なくとも４０の細孔の平均フェレット直径であった。表３は、細孔サイズがスポンジ１ｂ１〜１ｂ６の液体透過性に及ぼす影響も明らかにする。

異方性スポンジスキャフォールドの架橋後、標準的な変水位(falling-head)デザインに基づいて液体透過性を測定した。用いたスキャフォールドは、５ｍｍの直径、１０ｍｍの長さであった。試験前に、スキャフォールドを真空下にリン酸緩衝化生理食塩水で予め湿潤させた。気泡が結果に影響を及ぼさないことを確実にするために、それぞれの測定を３回繰り返した。

実施例３：ゼラチンのタイプがヒドロキシアパタイト（ＨＡ）の結合および構造に及ぼす影響
ゼラチンのタイプがヒドロキシアパタイト（ＨＡ）の結合およびそれの構造に及ぼす影響を分析するために、実施例２．１で得たゼラチン／ヒドロキシアパタイトマイクロスフェアスキャフォールドを、下記に示す走査型電子顕微鏡検査（ＥＤＸを含む）、ＦＴＩＲ、ＸＲＤおよびＴＧＡにより分析した。

走査型電子顕微鏡検査
マイクロスフェアスキャフォールドを接着スタブ(stub)上に固定し、１０ｎｍ厚の白金層でコートした。ＪｅｏｌＪＳＭ−６３３５Ｆ電界放出型走査型電子顕微鏡(Field Emission Scanning Electron Microscope)を用いてマイクロスフェアスキャフォールドのイメージを取得した。５ｋＶの電圧、×１００から×５００００までの倍率でイメージングを実施した。

ＥＤＸ
マイクロスフェアスキャフォールドをＬｅｉｃａ封入剤に包埋し、Ｒｅｉｃｈｅｒｔ−ＪｕｎｇＵｌｔｒａｃｕｔ−Ｅウルトラミクロトームで０．５、１および２μｍ厚の横断切片を切り取った。横断切片を４０ｎｍ厚のカーボンでコートし、ＯｘｆｏｒｄＩＮＣＡＸ−Ｍａｘ８０検出器を１５ｋＶの電圧で用いてカルシウムおよびリン酸のマッピングをイメージ作成した。

ＦＴ−ＩＲ
ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒＦｒｏｎｔｉｅｒＦＴ−ＩＲ分光計を用いてＦＴ−ＩＲ分析を実施した。マイクロスフェアスキャフォールドをダイヤモンドコンプレッションセル(diamond compression cell)で圧搾し、４０００〜６５０ｃｍ^−１の範囲でスペクトルを取得した。

熱重量分析(Thermo-gravimetric analysis)（ＴＧＡ）
ガスコントローラーＧＣ１０を備えたＤＳＣＭｅｔｔｌｅｒＴｏｌｅｄｏ８２３ｅを用いてＴＧＡ分析を実施した。実験を空気中で実施し、サンプル重量は８〜１２ｍｇを構成した。７０μＬのアルミナるつぼ内において１０℃／分の速度で８００℃まで加熱を行なった。

Ｘ線回折
Ｘ線回折パターン（ＸＲＤ）をＢｒｕｋｅｒＡＸＳＤ８Ａｄｖａｎｃｅ計測器により反射モード（Ｃｕ−Ｋα線）で記録した。サンプルをクライオミリング(cryo-milling)装置により摩砕して、比較的均一な粒径の粉末を得た。

結果
ＸＲＤは、本発明の沈殿工程により、骨形成に好ましいことが示されているヒドロキシアパタイトの形態のリン酸カルシウムが形成されることを示した。一例として、組成物１ｃのＸＲＤスペクトルを図１に示す。ヒドロキシアパタイトは２６および３２２θにおける特徴的形状のピークにより同定される。３２２θにおけるスミアリング付き(smeared)三重線上のショルダーのシャープさが小さいこと（図１の星印を参照）は、サンプル１ｃ中のヒドロキシアパタイトの結晶性が低いことの指標となる。低い結晶性は複合生体材料の生体再吸収性を増強し、よって新生骨形成のために好ましい。表４に、本発明の実施例はすべて、ゼラチン鎖に沿ってより均一にＧＬＵおよび／またはＡＳＰが分布していることの結果として、比較例より低い結晶化度をもつことが示される。また、このショルダーはｐＨを調整しない場合にはこれよりわずかに高い（複合材料１ｇ，図１を参照）。これらの結果はさらに、本発明の複合材料を製造する際の好ましい方向のｐＨ調整が７〜９、よりさらに好ましくは７．２〜８．０であることを示す。

結晶化度は前記のＸＲＤスペクトルから判定された。
ＴＧＡを用いて、マイクロスフェアスキャフォールドの実際のゼラチン／ヒドロキシアパタイト重量比を決定した。測定値は、沈殿反応に添加したリン酸および水酸化カルシウムの量と一致した。図２のＳＥＭ画像は、ヒドロキシアパタイト結晶の棒状形態およびそれらがサンプル１ｃのゼラチンマトリックスに良好に均一に埋め込まれていることを示す。比較例１ｌ（示していない）は、本発明の実施例より結晶の埋込みが少なくかつクラスタリングが多いことを明瞭に示す。本発明の実施例のうち、ｐＨ調整しなかったサンプル１ｇは最少の結晶埋込みおよび最多量のクラスタリングを示した（参照：図２）。

ＦＴＩＲ分析においてカルボニルシフトを分析することにより、有機相（ゼラチン生体材料）と無機ヒドロキシアパタイト相のカルシウムイオンとの相互作用の差を同定できる。グルタミン酸およびアスパラギン酸のカルボニル基とカルシウムイオンとの間に特異的相互作用がない場合、カルボニルピークは遊離カルシウムイオンのみを添加した基準と比較して影響を受けない。表５に、すべての組成物についてこのカルボニルシフトを示す；本発明の実施例と比較例の間に明瞭な差がある。

図４は、サンプル１ｃおよび１ｐについてＦＴＩＲスペクトルにおけるカルボニルシフトを示す。結合していないＣａ基準組成物１ｐは、リン酸カルシウムとゼラチンの物理的混合物を表わし、その場合、リン酸カルシウムはゼラチンの存在下で沈殿しない。この物理的混合方法はJP2013202213に記載されている。本発明の実施例はすべて、カルボニルピークの強いシフトにより立証されるように、ヒドロキシアパタイトまたはリン酸カルシウムとゼラチンのカルボニルとの間ではるかに強い相互作用を示し、これははるかに大きなバイオミメティック性および天然骨との類似性を指摘する。好ましくは、ＦＴＩＲにより観察されるように、主に結合していないリン酸カルシウムを含むマイクロスフェアスキャフォールドと比較して、マイクロスフェアにおけるグルタミン酸およびアスパラギン酸中のカルボン酸基のカルボニルシフトは少なくとも５ｃｍ^−１、より好ましくは少なくとも１０ｃｍ^−１、最も好ましくは少なくとも１５ｃｍ^−１である。観察されるピークシフトに対してｐＨ調整も影響をもち、複合材料製品に好ましいｐＨ調整は７．０〜９．０、よりさらに好ましくは７．０〜８．０である。

まとめると、前記の分析は、ゼラチンへのヒドロキシアパタイトの結合にとってゼラチン構造体におけるＧＬＵおよび／またはＡＳＰの分布がきわめて重要であることを指摘する。ＧＬＵおよび／またはＡＳＰの分布は、結晶性、ならびに生じる結晶の有機ゼラチンマトリックスへの埋込みおよび結合に影響を及ぼす。最もバイオミメティックな複合生体材料を生じる最良の相互作用は、アミノ酸ＧＬＵおよび／またはＡＳＰがアミノ酸鎖に沿って均一に分布しているゼラチンを用いて達成された。特に、最大１．６、好ましくは最大１．３の標準偏差をもつゼラチンについて、バイオミメティック相互作用は最良である。さらに、沈殿反応に際してのｐＨが、ゼラチンとヒドロキシアパタイトの相互作用に影響を及ぼすもうひとつの重要な側面であることが示された。

実施例５：マイクロスフェアスキャフォールド上における細胞培養
Ｃ２Ｃ１２細胞（マウス筋線維芽細胞ＣＲＬ−１７７２，ＡＴＣＣから）をルーティン条件下に３７℃および５％ＣＯ_２で、６０％コンフルエンスに達するまで、１０％のウシ胎仔血清（ＦＢＳ）（Ｓｉｇｍａ）および１％のペニシリン−ストレプトマイシン溶液×１００（Ｓｉｇｍａ）を補足したＤＭＥＭ（ダルベッコの改変イーグル培地(Dulbecco’s modified eagle’s medium)，Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎから）中で培養した。実施例２．１で得られ、ＤＨＴにより架橋したマイクロスフェアに、低接着(low attachment)２４ウェルプレート（Ｃｏｓｔａｒ，Ｃｏｒｎｉｎｇ）内で、１×１０^５個／ｍＬの細胞を含有する細胞懸濁液２ｍＬを播種した。３７℃および５％ＣＯ_２で作動しているインキュベーター内のオービタルシェーカーに３０ｒｐｍで一夜、プレートを乗せておいた。播種した後、付着していない細胞を除去するためにマイクロスフェアをＰＢＳ（リン酸緩衝化生理食塩水，Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎから）で洗浄し、静止条件で３７℃および５％ＣＯ_２においてプレートをインキュベートした。細胞培養状態を分析するために、細胞をＬｉｖｅ／Ｄｅａｄキット（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎから）で染色し、ＯｌｙｍｐｕｓＢＸ６０光学顕微鏡を用いてイメージングした。播種したマイクロスフェアをＰＢＳで十分にすすぎ、Ｌｉｖｅ／Ｄｅａｄ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）混合物と共に暗所で約４５分間インキュベートした。その後、マイクロスフェアを蛍光光線下で可視化した。その結果は、本発明のゼラチン／ヒドロキシアパタイトマイクロスフェアスキャフォールドすべてが細胞にとって卓越した基材であることを示す。

実施例６：異方性スポンジスキャフォールド上における細胞培養
ＭＣ３Ｔ３−Ｅ１骨芽細胞（マウス線維芽細胞ＣＲＬ−２５９３，ＡＴＴＣから）を、実施例２．４の異方性スキャフォールド上にスキャフォールド（５ｍｍの直径，２ｍｍの高さ）あたり細胞５×１０^５個の密度で、ダイナミックシェーカー法を用いて播種した（スキャフォールドを細胞懸濁液に入れ、２００ｒｐｍで４時間旋回させ、次いで培養プレート中の培地へ移した）。次いで細胞をミネラリゼーション培地中で４週間培養した。下記のスキャフォールドを用いた（実施例２．４で調製したもの）：１ｂ３、１ｂ４、１ｂ５。４週間後、ＤＮＡ定量（ＣｙＱｕａｎｔＰｉｃｏｇｒｅｅｎＡｓｓａｙ）により決定した細胞量を、１日後に付着した細胞の初期量と比較した。表６に細胞数の変化率を示す。これらのデータは、細孔サイズが細胞増殖速度に強い影響を及ぼすことを示す。細胞増殖は強い栄養素拡散によって刺激されるという仮説に基づけば、最大細孔サイズが最多の細胞を生じると予想されたであろう。しかし、このデータは、約３００μｍ付近に最適値があること、および複合材料の好ましい細孔サイズは１５０μｍ以上であることを示唆する。より大きい４５０μｍの細孔サイズでは細胞が増殖するのに利用できる表面積がより小さくなり、それによって、増大した栄養素拡散のポジティブ効果が差し引かれると推測できる。したがって、細胞培養のために最も好ましい細孔サイズ範囲は１００〜５００μｍである。

Claims

少なくとも組換えゼラチンおよびヒドロキシアパタイトを含む複合材料を調製する方法であって、組換えゼラチンの存在下でヒドロキシアパタイトを沈殿させることを含み、組換えゼラチンは、ゼラチン鎖に沿って均一に分布しているグルタミン酸およびアスパラギン酸の残基を含み、ここで：
組換えゼラチンは６０アミノ酸の列あたり合計で少なくとも８％の量のグルタミン酸および／またはアスパラギン酸を最大１．３の標準偏差で含む、
前記方法。
沈殿が、水性条件下で水酸化カルシウム、リン酸、および組換えゼラチンを混合することにより、水性条件下で実施される、請求項１に記載の方法。
ヒドロキシアパタイトがＣＯ_３ ^２−、Ｎａ^＋、Ｍｇ^２＋、Ｓｒ^２＋、Ｓｉ^４＋、Ｚｎ^２＋、ＳｉＯ_４ ^４−および／またはＨＰＯ_４ ^２−イオンをさらに含む、請求項１または２に記載の方法。
ヒドロキシアパタイトと組換えゼラチンの比が１００：１〜１：１００である、請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。
ヒドロキシアパタイトと組換えゼラチンの共沈、続いてｐＨ７．０〜９．０におけるミネラリゼーションを含む、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。