JP6697968B2 - Ｄｎａ抽出法及び細菌の検出方法 - Google Patents
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Description
本発明は、１６ＳｒＲＮＡ遺伝子アンプリコンのマルチプレックスシーケンスに供するＤＮＡの抽出法及び、該抽出法で得られたＤＮＡを用いた細菌の検出方法に関する。
従来、遺伝子解析の手法を用いて食品等の試料から細菌を検出することが一般に行われている。この遺伝子解析に供するＤＮＡ溶液を調製するために、種々の方法が知られている。
例えば、特許文献１にはマルチプレックスＰＣＲにより食品中の微生物を解析して検出するため、溶菌酵素及び／又は溶菌活性を持つバクテリオシンと界面活性剤とタンパク質変性剤とで処理することにより、検出対象微生物のＤＮＡを抽出する方法が記載されている。
例えば、特許文献１にはマルチプレックスＰＣＲにより食品中の微生物を解析して検出するため、溶菌酵素及び／又は溶菌活性を持つバクテリオシンと界面活性剤とタンパク質変性剤とで処理することにより、検出対象微生物のＤＮＡを抽出する方法が記載されている。
また特許文献２には、ＴＲＦＬＰ法とＳＳＣＰ法とを組み合わせた微生物群集構造解析方法に供するＤＮＡを、シリカ／ジルコニアビーズを用いて抽出することが記載されている。
上述したように、特許文献１に記載の技術は、マルチプレックスＰＣＲによる特定微生物の検出方法であり、特許文献２に記載の技術は、ＴＲＦＬＰ法とＳＳＣＰ法とを組み合わせた微生物検出方法である。
これらに対し、近年、１６ＳｒＲＮＡ遺伝子アンプリコンのマルチプレックスシーケンスにより試料中の細菌を検出することが行われている。１６ＳｒＲＮＡ遺伝子アンプリコンのマルチプレックスシーケンスとは、特許文献１及び２に記載された細菌検出方法とは異なり、試料中から抽出されたＤＮＡにおける１６ＳｒＲＮＡ遺伝子の特定領域を増幅させてなるアンプリコンを得、これをマルチプレックスシーケンスに供することにより試料中の細菌を網羅的に検出する方法である。このアンプリコンの生成には、１６ＳｒＲＮＡ遺伝子における多数菌種間で共通に保存された領域に結合するユニバーサルプライマーを用いる。このユニバーサルプライマーは通常、１６ＳｒＲＮＡ遺伝子における突然変異が起こりやすい可変領域を含む領域を増幅するために用いられる。マルチプレックスシーケンスは、サンプル由来のＤＮＡにサンプルごとに識別可能な配列を加えることで、複数サンプルを同時にシーケンスすることを可能とした技術であり、一般に、いわゆる次世代シーケンサーにより行われる。
これらに対し、近年、１６ＳｒＲＮＡ遺伝子アンプリコンのマルチプレックスシーケンスにより試料中の細菌を検出することが行われている。１６ＳｒＲＮＡ遺伝子アンプリコンのマルチプレックスシーケンスとは、特許文献１及び２に記載された細菌検出方法とは異なり、試料中から抽出されたＤＮＡにおける１６ＳｒＲＮＡ遺伝子の特定領域を増幅させてなるアンプリコンを得、これをマルチプレックスシーケンスに供することにより試料中の細菌を網羅的に検出する方法である。このアンプリコンの生成には、１６ＳｒＲＮＡ遺伝子における多数菌種間で共通に保存された領域に結合するユニバーサルプライマーを用いる。このユニバーサルプライマーは通常、１６ＳｒＲＮＡ遺伝子における突然変異が起こりやすい可変領域を含む領域を増幅するために用いられる。マルチプレックスシーケンスは、サンプル由来のＤＮＡにサンプルごとに識別可能な配列を加えることで、複数サンプルを同時にシーケンスすることを可能とした技術であり、一般に、いわゆる次世代シーケンサーにより行われる。
１６ＳｒＲＮＡ遺伝子アンプリコンのマルチプレックスシーケンスは、幅広い菌種に由来する多数の遺伝子配列を短時間で解析できるため、従来の検出方法に比べ、多数の菌種の検出を同時且つ短時間で行うことができる。
しかしながら、従来のＤＮＡ抽出方法を用いて試料から細菌ＤＮＡを抽出した場合、菌種によってＤＮＡの抽出効率が異なることによって、抽出したＤＮＡを１６ＳｒＲＮＡ遺伝子アンプリコンのマルチプレックスシーケンスに供しても、実際の分布が反映される結果が得難い場合がある、という課題が存在した。
これに対し、上記の特許文献１及び２においては、１６ＳｒＲＮＡアンプリコンのマルチプレックスシーケンスを用いる際のそのような課題は何ら記載も示唆もされておらず、ましてその課題を解決するためのＤＮＡ抽出方法は何ら記載も示唆もされていない。
しかしながら、従来のＤＮＡ抽出方法を用いて試料から細菌ＤＮＡを抽出した場合、菌種によってＤＮＡの抽出効率が異なることによって、抽出したＤＮＡを１６ＳｒＲＮＡ遺伝子アンプリコンのマルチプレックスシーケンスに供しても、実際の分布が反映される結果が得難い場合がある、という課題が存在した。
これに対し、上記の特許文献１及び２においては、１６ＳｒＲＮＡアンプリコンのマルチプレックスシーケンスを用いる際のそのような課題は何ら記載も示唆もされておらず、ましてその課題を解決するためのＤＮＡ抽出方法は何ら記載も示唆もされていない。
したがって、本発明の目的は、試料中からＤＮＡ抽出するに当たり、従来であれば抽出されにくい細菌のＤＮＡ、特に１６ＳｒＲＮＡ遺伝子の抽出精度を高めることができ、１６ＳｒＲＮＡアンプリコンのマルチプレックスシーケンスに供した場合に実際の細菌分布に近い検出結果を得やすい簡便なＤＮＡの抽出方法、及びそれを用いた細菌検出方法を提供することにある。
本発明者は、１６ＳｒＲＮＡアンプリコンのマルチプレックスシーケンスによる細菌の検出感度と、ＤＮＡ抽出方法との関係について鋭意検討した。その結果、特定酵素による処理とビーズ処理との組み合わせにより、検出されにくい細菌の検出感度を効果的に向上させることができることを見出した。
本発明は、上記知見に基づくものであり、試料中の細菌のＤＮＡを抽出して、１６ＳｒＲＮＡ遺伝子アンプリコンのマルチプレックスシーケンスに供するＤＮＡ溶液を調製するＤＮＡ抽出方法であって、
前記ＤＮＡ溶液の調製に際し、前記試料に対して、以下の処理（Ａ）及び処理（Ｂ）を行う、ＤＮＡ抽出法を提供するものである。
（Ａ）アクロモペプチダーゼで処理することにより、試料中の細菌を溶菌する。
（Ｂ）ビーズで処理することにより、試料中の細菌を物理的に破砕する。
本発明は、上記知見に基づくものであり、試料中の細菌のＤＮＡを抽出して、１６ＳｒＲＮＡ遺伝子アンプリコンのマルチプレックスシーケンスに供するＤＮＡ溶液を調製するＤＮＡ抽出方法であって、
前記ＤＮＡ溶液の調製に際し、前記試料に対して、以下の処理（Ａ）及び処理（Ｂ）を行う、ＤＮＡ抽出法を提供するものである。
（Ａ）アクロモペプチダーゼで処理することにより、試料中の細菌を溶菌する。
（Ｂ）ビーズで処理することにより、試料中の細菌を物理的に破砕する。
また本発明は、試料中の細菌を網羅的に検出する方法であって、
前記試料に対して、以下の処理（Ａ）及び処理（Ｂ）を行ってＤＮＡ溶液を調製し、該ＤＮＡ溶液から、１６ＳｒＲＮＡ遺伝子における可変領域の増幅物であるアンプリコンを得、得られたアンプリコンをマルチプレックスシーケンスに供する、細菌の検出方法を提供するものである。
（Ａ）アクロモペプチダーゼで処理することにより、試料中の細菌を溶菌する。
（Ｂ）ビーズで処理することにより、試料中の細菌を物理的に破砕する。
前記試料に対して、以下の処理（Ａ）及び処理（Ｂ）を行ってＤＮＡ溶液を調製し、該ＤＮＡ溶液から、１６ＳｒＲＮＡ遺伝子における可変領域の増幅物であるアンプリコンを得、得られたアンプリコンをマルチプレックスシーケンスに供する、細菌の検出方法を提供するものである。
（Ａ）アクロモペプチダーゼで処理することにより、試料中の細菌を溶菌する。
（Ｂ）ビーズで処理することにより、試料中の細菌を物理的に破砕する。
本発明によれば、１６ＳｒＲＮＡアンプリコンのマルチプレックスシーケンスにより試料中の細菌を検出するに当たり、従来検出されにくかった細菌の検出感度を効果的に向上させることができ、且つ簡便なＤＮＡの抽出方法、及びそれを用いた細菌検出方法が提供される。
以下、本発明をその好ましい実施形態に基づいて説明する。
本発明のＤＮＡ抽出方法は、試料中の細菌のＤＮＡを抽出して、１６ＳｒＲＮＡ遺伝子アンプリコンのマルチプレックスシーケンスに供するＤＮＡ溶液を調製するＤＮＡ抽出方法である。
本発明のＤＮＡ抽出方法は、試料中の細菌のＤＮＡを抽出して、１６ＳｒＲＮＡ遺伝子アンプリコンのマルチプレックスシーケンスに供するＤＮＡ溶液を調製するＤＮＡ抽出方法である。
試料としては、食品、食品工場の環境中より採取した拭き取り試料、ペットフード、家畜の飼料、医薬品、医薬部外品、土壌、上水、下水、土壌、体内臓器やそれらからの浸出物、血液、皮膚、糞便等を挙げることができる。中でも、食品、及び、食品工場の環境中より採取した拭き取り試料が好ましい。食品には、飲料も含まれる。また、食品には、それに含まれる細菌の種類が既知の食品（例えば発酵食品）だけでなく、含まれる細菌の種類が未知である食品（例えば発酵食品以外の食品）や細菌が含まれているか否か不明の食品も含まれる。本発明は、食品等の試料中における特定の細菌を検出するだけでなく、試料中にどのような細菌が含まれているかが未知である場合であっても、試料中の細菌を網羅的に検出することができる。このような本発明の細菌の検出方法は、例えば、食品中に混入した細菌の検出手段として有用である。上記の食品には、その原料及び製造過程における中間生成物も含まれる。
また試料が液状の場合は、そのまま下記の（Ａ）の処理及び（Ｂ）の処理を施してもよいが、試料が粉状等の固形状である場合は、溶媒への分散や、溶媒を用いた抽出、及び、ろ過などを適宜組み合わせて試料を液状又はゲル状等としたものに対し、下記の（Ａ）の処理及び（Ｂ）の処理を施すことが好ましい。この場合の溶媒としては、水や各種の緩衝液などが挙げられる。
また試料が液状の場合は、そのまま下記の（Ａ）の処理及び（Ｂ）の処理を施してもよいが、試料が粉状等の固形状である場合は、溶媒への分散や、溶媒を用いた抽出、及び、ろ過などを適宜組み合わせて試料を液状又はゲル状等としたものに対し、下記の（Ａ）の処理及び（Ｂ）の処理を施すことが好ましい。この場合の溶媒としては、水や各種の緩衝液などが挙げられる。
試料中の細菌の属や種に限定はなく、グラム陰性菌及びグラム陽性菌の何れであってもよく、その両方であってもよい。グラム陽性菌を含む試料、とりわけＳｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ属、Ｋｏｃｕｒｉａ属、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ属、Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ属の少なくとも一種を含む試料については、試料中の細菌を網羅的に検出するという本発明の効果が一層得られやすい。
本発明のＤＮＡ抽出方法は、１６ＳｒＲＮＡ遺伝子アンプリコンのマルチプレックスシーケンスに供するＤＮＡ溶液を調製するに当たり、以下の処理（Ａ）及び処理（Ｂ）を行う。
（Ａ）アクロモペプチダーゼで処理することにより、試料中の細菌を溶菌する。
（Ｂ）ビーズで処理することにより、試料中の細菌を物理的に破砕する。
（Ａ）アクロモペプチダーゼで処理することにより、試料中の細菌を溶菌する。
（Ｂ）ビーズで処理することにより、試料中の細菌を物理的に破砕する。
（Ａ）アクロモペプチダーゼは細胞の細胞壁のペプチドグリカンを分解する作用を有する。アクロモペプチダーゼによる処理は、通常、容器内の試料にアクロモペプチダーゼを添加して行う。アクロモペプチダーゼの添加後に容器内の試料を適宜撹拌することが好ましい。この酵素による処理は、３５℃以上５５℃以下程度で行うことが好ましい。この酵素による処理時間は１５分以上６０分以下程度であることが好ましい。本発明のＤＮＡ抽出方法では、アクロモペプチダーゼに加えて他のペプチドグリカン分解酵素を用いてもよく用いなくてもよく、また用いる際には、アクロモペプチダーゼによる処理と同時であっても異なっていてもよいが、他のペプチドグリカン分解酵素を用いる場合には、ペプチドグリカン分解酵素のうちアクロモペプチダーゼの酵素量（Ｕ）が最も多いことが好ましい。
（Ｂ）のビーズ処理は、試料とビーズとの混合物に物理的衝撃を与えて細胞破砕する処理である。物理的衝撃を与える方法としては、試料とビーズとの混合物入り密閉容器を振動させる方法や、試料とビーズとの混合物入りの容器を超音波処理する方法などが挙げられる。試料とビーズとの混合物入り密閉容器を振動させる方法としては、各種のビーズ式ホモジナイザーやビーズ式細胞破砕装置を用いる方法を挙げることができる。
試料及びビーズ入り密閉容器を振動させる場合、その振動の形態としては、互いに直交する３方向である上下方向、前後方向、左右方向の何れの方向に振動させるものであってもよく、２方向の動きを組み合わせたものであってもよく、３方向の動きを組み合わせたものであってもよい。３方向の動きを組み合わせた振動の形態としては、例えば、容器を、上下に動かしながら水平面における軌道が８の字を描くように振動させる形態が挙げられる。８の字を描くようにとは、容器の何れか一か所の軌道が、上下方向からみたときに８の字であればよい。このように３方向の動きを組み合わせた形態の振動によれば、ビーズと細菌との接触が活発になり、細胞破砕をより一層効果的に行うことができるため好ましい。振動とは、一の位置から他の位置に移動し、前記一の位置に戻ることをいい、例えば容器支持体の旋回に伴う振動であれば、その支持体の１回の旋回に伴う動きをいう。
試料及びビーズ入り密閉容器の振動が容器支持体の旋回に伴うものである場合、広範な細菌種を効果的に破砕する点からこの旋回の回転数は３，０００ｒｐｍ以上が好ましく、ＤＮＡの断片化を最小限とする点から、５，０００ｒｐｍ以下であることが好ましい。また、振動時間は広範な細菌種を効果的に破砕する点から３０秒以上が好ましく、ＤＮＡの断片化を最小限とする点から６０秒以下が好ましい。この振動時間は、振動を複数回に分けて行う場合は合計の振動時間である。
ビーズ処理の際、ビーズの容積／ビーズ以外の内容液の容積の比率は、１／１０以上１以下が好ましい。また密閉容器中の内容積に対する当該容器の内容液（ビーズを含む）の容積の割合は、概ね、５容量％以上４０容量％以下が好ましく、１０容量％以上２０容量％以下がより好ましい。
ビーズ処理の際における密閉容器中の内容液には外添による界面活性剤が含まれていてもよく、含まれていなくてもよい。ここでいう外添による界面活性剤とは、処理対象の試料に由来せず、ＤＮＡ抽出する過程で用いる試薬に含まれた界面活性剤をいう。界面活性剤の例としては、ラウリル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）などが挙げられる。
ビーズ処理に用いるビーズの材質としては、非金属であることが好ましく、ジルコニアビーズ、ガラスビーズが挙げられる。特に、グラム陽性菌等の細胞破砕効果に優れるため、ジルコニアビーズが好ましい。
ビーズの粒径としては、φ（直径）０．１ｍｍ以上φ１ｍｍ以下、特にφ０．３ｍｍ以上φ０．８ｍｍ以下、とりわけφ０．５ｍｍ程度であることが、広範な細菌種を効果的に破砕する点から好ましい。
（Ａ）の処理と、（Ｂ）の処理とは、どちらを先に行ってもよく、また同時に行ってもよいが、特に、（Ａ）の処理の後に、（Ｂ）の処理を行うことが、アクロモペプチダーゼ処理により柔軟化させた細胞壁をビーズ処理により効果的に破砕できる点から好ましい。
本発明のＤＮＡ抽出方法は、前記試料をタンパク質分解酵素で処理する工程を含むことが好ましい。
これにより、ＤＮＡ結合タンパク質を分解し、ＤＮＡ抽出効率を高めることができる点や、試料中のＤＮＡを分解するヌクレアーゼを失活させやすい点から好ましい。タンパク質分解酵素として、例えばプロテイナーゼＫなどが挙げられる。（Ａ）の処理の後に（Ｂ）の処理を行う場合は、タンパク質分解酵素は（Ａ）の処理の後であって（Ｂ）の処理の前に添加することが、タンパク質分解酵素の作用によるアクロモペプチダーゼの失活を防止できる点や、試料中のＤＮＡの分解防止の点から好ましい。
これにより、ＤＮＡ結合タンパク質を分解し、ＤＮＡ抽出効率を高めることができる点や、試料中のＤＮＡを分解するヌクレアーゼを失活させやすい点から好ましい。タンパク質分解酵素として、例えばプロテイナーゼＫなどが挙げられる。（Ａ）の処理の後に（Ｂ）の処理を行う場合は、タンパク質分解酵素は（Ａ）の処理の後であって（Ｂ）の処理の前に添加することが、タンパク質分解酵素の作用によるアクロモペプチダーゼの失活を防止できる点や、試料中のＤＮＡの分解防止の点から好ましい。
また、後述するスピンカラムを用いたＤＮＡ抽出においては、（Ａ）の処理及び（Ｂ）の処理の後に、ＲＮＡ分解酵素を添加してサンプル中のＲＮＡを分解すると、純度の高いＤＮＡを精製することができるため好ましい。「ＲＮＡ分解酵素」としては核酸中ＲＮＡを選択的に分解する作用を有する酵素を特に制限なく用いることができ、例えばＲＮａｓｅＡなどが挙げられる。
本発明のＤＮＡ抽出方法においては、ＤＮＡの抽出は、前記処理（Ａ）及び処理（Ｂ）後の試料を、スピンカラムを有するＤＮＡ抽出キットで処理することにより該試料から前記ＤＮＡ溶液を得ることが、純度の高いＤＮＡ溶液が得られる点で好ましい。スピンカラムとは、例えば核酸吸着性の担体を有し、かつ遠心機により遠心操作が可能なカラムをいう。核酸吸着性の担体としては、シリカ等が挙げられる。核酸吸着性の担体は、通常カラムの底部に配置されている。担体の形状としては例えばメンブレン状が挙げられる。
前記のキットは、スピンカラムのほか、例えば、カオトロピックイオンを含む核酸吸着液、スピンカラムの核酸結合性担体に吸着されたＤＮＡを溶出するための溶出液などを備えている。カオトロピックイオンの例としては、グアニジニウムイオン、ヨウ化物イオンなどが挙げられる。カオトロピックイオンはカオトロピック塩により供給され、このカオトロピック塩としては、例えば、塩酸グアニジン、チオシアン酸グアニジン、ヨウ化ナトリウム等が挙げられる。これに加えて、前記のキットは、ＳＤＳ等の界面活性剤及びタンパク質分解酵素を含有し細胞を溶解させるための溶出バッファーや、担体に吸着されたＤＮＡ以外の成分を洗浄除去する洗浄液などを更に備えていてもよい。スピンカラムを有するＤＮＡ抽出キットのうち商業的に入手可能なものとしては、例えば、ＮｕｃｌｅｏＳｐｉｎ（登録商標）Ｔｉｓｓｕｅ（ＴａＫａＲａ）、Ｑｕａｎｔｕｍ Ｐｒｅｐ プラスミド（ＢＩＯ−ＲＡＤ）が挙げられる。
上記（Ｂ）の処理後の試料に（Ｂ）の処理で用いたビーズが混在している場合であって、当該（Ｂ）の処理後の試料を、スピンカラムに供する場合、このビーズが混在した試料のからビーズを除いたものをスピンカラムに供することが好ましい。（Ｂ）の処理の後に試料からビーズを除去する方法としては、例えば、ビーズが混在した試料に、必要に応じて遠心分離や溶媒による分離等を行う方法が挙げられる。遠心分離によりビーズを除去する場合、遠心分離の遠心力は１０，０００×ｇ以上１５,０００×ｇ以下であることが好ましい。スピンカラムを有する抽出キットでＤＮＡを抽出する場合は、得られた上清液をスピンカラムに供すればよい。
スピンカラムから溶出させたＤＮＡは必要に応じて適宜精製し、濃度を測定することが好ましい。以上のようにして、１６ＳｒＲＮＡ遺伝子のアンプリコンのマルチプレックスシーケンスに供するＤＮＡ溶液が調製される。この溶液の溶媒は特に限定されず、公知のものが用いられる。
（２：細菌検出）
１６ＳｒＲＮＡ遺伝子アンプリコンの作製は、上記で調製したＤＮＡ溶液を鋳型とし、ユニバーサルプライマーを用いたｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ ｃｈａｉｎ ｒｅａｃｔｉｏｎ，ＰＣＲ）により行うことが好ましい。１６ＳｒＲＮＡ遺伝子は、突然変異の起こりやすい可変領域Ｖ１〜Ｖ９が、その他の領域（多数の菌種間で高度に保存された保存領域）に挟まれている。ユニバーサルプライマーの設計は、例えば、このＶ１〜Ｖ９領域のうち何れか１以上を特異的に増幅させるように設計される。ユニバーサルプライマーは可変領域Ｖ１〜Ｖ９の何れか１つのみを増幅させるように設計されてもよいが、複数の可変領域をまたがって増幅させるように設計されたものである方が、細菌の検出効率が向上するため好ましい。ユニバーサルプライマーの例としては、図１及び図２に示すものが挙げられるが、それ以外に、上記可変領域を増幅させるための任意のプライマーを用いることが可能である。
１６ＳｒＲＮＡ遺伝子アンプリコンの作製は、上記で調製したＤＮＡ溶液を鋳型とし、ユニバーサルプライマーを用いたｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ ｃｈａｉｎ ｒｅａｃｔｉｏｎ，ＰＣＲ）により行うことが好ましい。１６ＳｒＲＮＡ遺伝子は、突然変異の起こりやすい可変領域Ｖ１〜Ｖ９が、その他の領域（多数の菌種間で高度に保存された保存領域）に挟まれている。ユニバーサルプライマーの設計は、例えば、このＶ１〜Ｖ９領域のうち何れか１以上を特異的に増幅させるように設計される。ユニバーサルプライマーは可変領域Ｖ１〜Ｖ９の何れか１つのみを増幅させるように設計されてもよいが、複数の可変領域をまたがって増幅させるように設計されたものである方が、細菌の検出効率が向上するため好ましい。ユニバーサルプライマーの例としては、図１及び図２に示すものが挙げられるが、それ以外に、上記可変領域を増幅させるための任意のプライマーを用いることが可能である。
上記ＰＣＲで得られたアンプリコンは、マルチプレックスシーケンスに供される。マルチプレックスシーケンスは、上述した通り、複数種のサンプルそれぞれにおけるＤＮＡにサンプル間で異なる識別用配列を付加することで、同時にシーケンスすることを可能とする技術である。識別用配列は、インデックス等と呼ばれ、この用途のための公知のキット等を用いて付加することができる。
マルチプレックスシーケンスは、通常、次世代シーケンサーを用いて行われる。次世代シーケンサーとは、サンガー法を利用した蛍光キャピラリーシーケンサーである「第１世代シーケンサー」と対比させて用いられている用語であり、次世代シーケンサーでは、ジデオキシヌクレオチドを用いてＤＮＡポリメラーゼの伸長を止めるサンガー法を用いた第１世代シーケンサーと異なるシーケンシング原理が用いられている。このような原理としては例えば、合成シーケンシング法、パイロシーケンシング法、リガーゼ反応シーケンシング法などが挙げられる。次世代シーケンサーとしては、ＤＮＡポリメラーゼ又はＤＮＡリガーゼによる逐次的ＤＮＡ合成法を用いて、数千万から数億のＤＮＡ断片に対して数十〜数千ｂｐのリード長の断片を網羅的に解析することによって並列的に塩基配列を決定するための装置が挙げられる。次世代シーケンサーの具体例としては、ＨｉＳｅｑ（登録商標）２５００ （ｉｌｌｕｍｉｎａ社）、ＭｉＳｅｑ（登録商標） （ｉｌｌｕｍｉｎａ社）、５５００ｘｌ ＳＯＬｉＤＴＭ （Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社）、Ｉｏｎ ＰｒｏｔｏｎＴＭ （Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社）、Ｉｏｎ ＰＧＭＴＭ （Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社）、ＧＳ ＦＬＸ＋ （Ｒｏｃｈｅ社）などが挙げられるが、本発明に用いることができる次世代シーケンサーはこれらに限定されず、今後開発されるものも含む。
マルチプレックスシーケンスは、通常、次世代シーケンサーを用いて行われる。次世代シーケンサーとは、サンガー法を利用した蛍光キャピラリーシーケンサーである「第１世代シーケンサー」と対比させて用いられている用語であり、次世代シーケンサーでは、ジデオキシヌクレオチドを用いてＤＮＡポリメラーゼの伸長を止めるサンガー法を用いた第１世代シーケンサーと異なるシーケンシング原理が用いられている。このような原理としては例えば、合成シーケンシング法、パイロシーケンシング法、リガーゼ反応シーケンシング法などが挙げられる。次世代シーケンサーとしては、ＤＮＡポリメラーゼ又はＤＮＡリガーゼによる逐次的ＤＮＡ合成法を用いて、数千万から数億のＤＮＡ断片に対して数十〜数千ｂｐのリード長の断片を網羅的に解析することによって並列的に塩基配列を決定するための装置が挙げられる。次世代シーケンサーの具体例としては、ＨｉＳｅｑ（登録商標）２５００ （ｉｌｌｕｍｉｎａ社）、ＭｉＳｅｑ（登録商標） （ｉｌｌｕｍｉｎａ社）、５５００ｘｌ ＳＯＬｉＤＴＭ （Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社）、Ｉｏｎ ＰｒｏｔｏｎＴＭ （Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社）、Ｉｏｎ ＰＧＭＴＭ （Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社）、ＧＳ ＦＬＸ＋ （Ｒｏｃｈｅ社）などが挙げられるが、本発明に用いることができる次世代シーケンサーはこれらに限定されず、今後開発されるものも含む。
マルチプレックスシーケンスにおいて得られたシークエンスは、公知のデータベースを用いた解析にかけられ、細菌が特定される。例えば、一の種の細菌の検出率は、試料中から抽出されたＤＮＡをシークエンスして得られた総リード数中、当該種の細菌として特定されたリード数として検出される。
以上の通り本発明では、本発明のＤＮＡ抽出方法で調製したＤＮＡ溶液を用いることにより、幅広い菌種のＤＮＡを効率よく抽出でき、実際の細菌分布を反映した細菌検出が可能となる。
以上の通り本発明では、本発明のＤＮＡ抽出方法で調製したＤＮＡ溶液を用いることにより、幅広い菌種のＤＮＡを効率よく抽出でき、実際の細菌分布を反映した細菌検出が可能となる。
以下、実施例により本発明を更に詳細に説明する。本発明は、以下の実施例により何ら制限されるものではない。
〔実施例１：アクロモペプチダーゼ及びビーズを用いたＤＮＡ溶液の調製〕
Ｉ）菌液の調製
一般的に食品から検出されやすい１０種類の細菌（それぞれＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ、Ｋｏｃｕｒｉａ、Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ、Ｌｉｓｔｅｒｉａ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ、Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ、Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃの各属のもの）について、以下の（１）〜（５）の手順に従って、細菌数が等量となるように混合し、細菌液を調製した。
（１）各細菌について、適切な液体培地及び温度条件で培養し、対数増殖期後期に培養液を採取した。
（２）（１）の培養液を適宜希釈し、適切な培地に塗抹した後、適切な条件で培養することにより、（１）の培養液中の菌数を計測した。
（３）（１）の培養液を１０，０００×ｇで２０分間遠心した後、上清を除去し、細菌ペレットを得た。得られた細菌ペレットを−２０℃で保管した。
（４）（２）の培養終了後、計測した菌数に基づき、各細菌の菌数が１×１０６／ｍｌとなるよう、（３）の細菌ペレットを蒸留水で適宜希釈した。
（５）１０種類の細菌について、（４）で希釈した菌液を等量ずつ混合し、細菌数等量混合細菌液とした。
〔実施例１：アクロモペプチダーゼ及びビーズを用いたＤＮＡ溶液の調製〕
Ｉ）菌液の調製
一般的に食品から検出されやすい１０種類の細菌（それぞれＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ、Ｋｏｃｕｒｉａ、Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ、Ｌｉｓｔｅｒｉａ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ、Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ、Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃの各属のもの）について、以下の（１）〜（５）の手順に従って、細菌数が等量となるように混合し、細菌液を調製した。
（１）各細菌について、適切な液体培地及び温度条件で培養し、対数増殖期後期に培養液を採取した。
（２）（１）の培養液を適宜希釈し、適切な培地に塗抹した後、適切な条件で培養することにより、（１）の培養液中の菌数を計測した。
（３）（１）の培養液を１０，０００×ｇで２０分間遠心した後、上清を除去し、細菌ペレットを得た。得られた細菌ペレットを−２０℃で保管した。
（４）（２）の培養終了後、計測した菌数に基づき、各細菌の菌数が１×１０６／ｍｌとなるよう、（３）の細菌ペレットを蒸留水で適宜希釈した。
（５）１０種類の細菌について、（４）で希釈した菌液を等量ずつ混合し、細菌数等量混合細菌液とした。
ＩＩ）細菌ＤＮＡの抽出及び精製
上記Ｉで得られた細菌数等量混合細菌液について、以下の（i）〜（xi）の手順に従って、アクロモペプチダーゼ及びビーズによる前処理、及び、スピンカラムタイプのキットであるＮｕｃｌｅｏＳｐｉｎ Ｔｉｓｓｕｅ（ＴａＫａＲａ）を用いたＤＮＡ抽出を行った。
（i） 細菌数等量混合細菌液１ｍｌをマイクロチューブに入れ、１０，０００×ｇで１０分間遠心した後、上清を除去し、細菌のペレットを用意した。
（ii）アクロモペプチダーゼ（１，２００Ｕ／ｍＬ）１００μｌを（i）で得られた細菌のペレットに添加し、攪拌した後、５５℃で１５分間インキュベートした。
（iii）（ii）の処理後の溶液に、Ｂｕｆｆｅｒ Ｔ１ ８０μｌ， ＰｒｏｔｅｉｎａｓｅＫ溶液２５μｌを添加し、攪拌した後、５６℃で１時間インキュベートして酵素処理済サンプルを得た。
（iv） ２．０ｍｌサンプルチューブにφ０．５ｍｍのジルコニアビーズ２００ｍｇを入れ、（iii）で得られたサンプルを加え、ビーズ式細胞破砕装置ＭｉｃｒｏＳｍａｓｈ（登録商標）（トミー精工）で、４,５００ｒｐｍの条件で３０秒間ビーズ破砕処理を行った。ビーズの容積／ビーズ以外の内容液の容積の比率は、１／７であった。ビーズ処理時の密閉容器中の内容積に対する当該容器の内容液（ビーズを含む）の容積の割合は１１容量％であった。
（v）（iv）の処理後のサンプルチューブに、ＲＮａｓｅＡ（２０ ｍｇ／ｍｌ）溶液２０μｌを添加し、室温で５分インキュベートし、撹拌した。
（vi）（v）で得られた懸濁液にＢｕｆｆｅｒＢ３ ２００μｌを添加し、撹拌したのち、７０℃で１０分間インキュベートした。
（vii）（vi）で得たマイクロチューブを１１，０００×ｇ、５分間遠心し、上清を回収し、ビーズを除去した。
（viii）（vii）で得た上清に１００％エタノール２１０μｌを添加し、混合した。
（ix） （viii）で得られた溶液をカラムに添加し、１１，０００×ｇ、１分間遠心した。ろ液除去後、ＢｕｆｆｅｒＢＷ ５００μｌをカラムに添加し、同一条件で遠心し、ろ液を除去した。ＢｕｆｆｅｒＢ５ ６００μｌをカラムに添加し、同一条件で遠心し、ろ液を除去した。再度同一条件で遠心し、カラムのメンブレンを乾燥させた。
（x） （ix）で得たカラムをマイクロチューブにセットし、７０℃に温めたＢｕｆｆｅｒＢＥ １００μｌを添加し、室温で１分間インキュベートして抽出ＤＮＡを溶出させた後、１１，０００×ｇで１分間遠心して、溶出したＤＮＡをマイクロチューブの底に集めた。
（xi） 上記（x）で抽出したＤＮＡをＤｙｅＥｘ２．０ ＳｐｉｎＫｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ）を用いて精製し、ＤＮＡ溶液を得た。
上記Ｉで得られた細菌数等量混合細菌液について、以下の（i）〜（xi）の手順に従って、アクロモペプチダーゼ及びビーズによる前処理、及び、スピンカラムタイプのキットであるＮｕｃｌｅｏＳｐｉｎ Ｔｉｓｓｕｅ（ＴａＫａＲａ）を用いたＤＮＡ抽出を行った。
（i） 細菌数等量混合細菌液１ｍｌをマイクロチューブに入れ、１０，０００×ｇで１０分間遠心した後、上清を除去し、細菌のペレットを用意した。
（ii）アクロモペプチダーゼ（１，２００Ｕ／ｍＬ）１００μｌを（i）で得られた細菌のペレットに添加し、攪拌した後、５５℃で１５分間インキュベートした。
（iii）（ii）の処理後の溶液に、Ｂｕｆｆｅｒ Ｔ１ ８０μｌ， ＰｒｏｔｅｉｎａｓｅＫ溶液２５μｌを添加し、攪拌した後、５６℃で１時間インキュベートして酵素処理済サンプルを得た。
（iv） ２．０ｍｌサンプルチューブにφ０．５ｍｍのジルコニアビーズ２００ｍｇを入れ、（iii）で得られたサンプルを加え、ビーズ式細胞破砕装置ＭｉｃｒｏＳｍａｓｈ（登録商標）（トミー精工）で、４,５００ｒｐｍの条件で３０秒間ビーズ破砕処理を行った。ビーズの容積／ビーズ以外の内容液の容積の比率は、１／７であった。ビーズ処理時の密閉容器中の内容積に対する当該容器の内容液（ビーズを含む）の容積の割合は１１容量％であった。
（v）（iv）の処理後のサンプルチューブに、ＲＮａｓｅＡ（２０ ｍｇ／ｍｌ）溶液２０μｌを添加し、室温で５分インキュベートし、撹拌した。
（vi）（v）で得られた懸濁液にＢｕｆｆｅｒＢ３ ２００μｌを添加し、撹拌したのち、７０℃で１０分間インキュベートした。
（vii）（vi）で得たマイクロチューブを１１，０００×ｇ、５分間遠心し、上清を回収し、ビーズを除去した。
（viii）（vii）で得た上清に１００％エタノール２１０μｌを添加し、混合した。
（ix） （viii）で得られた溶液をカラムに添加し、１１，０００×ｇ、１分間遠心した。ろ液除去後、ＢｕｆｆｅｒＢＷ ５００μｌをカラムに添加し、同一条件で遠心し、ろ液を除去した。ＢｕｆｆｅｒＢ５ ６００μｌをカラムに添加し、同一条件で遠心し、ろ液を除去した。再度同一条件で遠心し、カラムのメンブレンを乾燥させた。
（x） （ix）で得たカラムをマイクロチューブにセットし、７０℃に温めたＢｕｆｆｅｒＢＥ １００μｌを添加し、室温で１分間インキュベートして抽出ＤＮＡを溶出させた後、１１，０００×ｇで１分間遠心して、溶出したＤＮＡをマイクロチューブの底に集めた。
（xi） 上記（x）で抽出したＤＮＡをＤｙｅＥｘ２．０ ＳｐｉｎＫｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ）を用いて精製し、ＤＮＡ溶液を得た。
〔比較例１：アクロモペプチダーゼ及びビーズを用いないＤＮＡ抽出〕
（ii）〜（iv）の処理の代わりに、ＢｕｆｆｅｒＴ１ １８０μｌ，ＰｒｏｔｅｉｎａｓｅＫ溶液２５μｌを細菌のペレットに添加し、攪拌した後、５６℃で１時間インキュベートした。
その点以外は、実施例１と同様にして、ＤＮＡ溶液を得た。
（ii）〜（iv）の処理の代わりに、ＢｕｆｆｅｒＴ１ １８０μｌ，ＰｒｏｔｅｉｎａｓｅＫ溶液２５μｌを細菌のペレットに添加し、攪拌した後、５６℃で１時間インキュベートした。
その点以外は、実施例１と同様にして、ＤＮＡ溶液を得た。
実施例１及び比較例１で得たＤＮＡ溶液それぞれについて、以下の（ａ）〜（ｆ）の方法による評価を実施した。
〔評価方法〕
（ａ：ＰＣＲによる目的領域の増幅）
上記（x）で得たＤＮＡ溶液２．５μｌ、１２．５μｌの２×ＫＡＰＡ Ｈｉｆｉ ＨｏｔＳｔａｒｔ Ｒｅａｄｙ Ｍｉｘ（ＫＡＰＡ）、１μＭの各プライマー５μｌを混合し、ＰＣＲ反応ミックスを調製した。９８℃２分の変性反応を実施した後、９８℃１０秒のＤＮＡ変性反応、６０℃１５秒のアニーリング反応及び６８℃１分のＤＮＡ伸長反応を含むサイクルを２５サイクル繰り返した後、７２℃５分で全てのＤＮＡ伸長反応を完了させ、１６ＳｒＲＮＡ遺伝子における特定領域の増幅物（アンプリコン）を含む反応溶液を得た。この方法により、プライマーとして、図１に記載のプライマーを用い、これよりＶ１領域及びＶ２領域の両方を含む領域を増幅させた反応溶液を得たほか、この反応溶液とは別に、図２に記載のプライマーを用い、Ｖ３領域及びＶ４領域の両方を含む領域を増幅させた反応溶液を得た。
〔評価方法〕
（ａ：ＰＣＲによる目的領域の増幅）
上記（x）で得たＤＮＡ溶液２．５μｌ、１２．５μｌの２×ＫＡＰＡ Ｈｉｆｉ ＨｏｔＳｔａｒｔ Ｒｅａｄｙ Ｍｉｘ（ＫＡＰＡ）、１μＭの各プライマー５μｌを混合し、ＰＣＲ反応ミックスを調製した。９８℃２分の変性反応を実施した後、９８℃１０秒のＤＮＡ変性反応、６０℃１５秒のアニーリング反応及び６８℃１分のＤＮＡ伸長反応を含むサイクルを２５サイクル繰り返した後、７２℃５分で全てのＤＮＡ伸長反応を完了させ、１６ＳｒＲＮＡ遺伝子における特定領域の増幅物（アンプリコン）を含む反応溶液を得た。この方法により、プライマーとして、図１に記載のプライマーを用い、これよりＶ１領域及びＶ２領域の両方を含む領域を増幅させた反応溶液を得たほか、この反応溶液とは別に、図２に記載のプライマーを用い、Ｖ３領域及びＶ４領域の両方を含む領域を増幅させた反応溶液を得た。
（ｂ：精製）
上記（ａ）で得たＤＮＡ溶液をＡｇｎｃｏｕｒｔ ＡＭＰｕｒｅ ＸＰ（ＢＥＣＫＭＡＮ ＣＯＵＬＴＥＲ）を用いて精製した。
上記（ａ）で得たＤＮＡ溶液をＡｇｎｃｏｕｒｔ ＡＭＰｕｒｅ ＸＰ（ＢＥＣＫＭＡＮ ＣＯＵＬＴＥＲ）を用いて精製した。
（ｃ：インデックスの付加）
上記（ｂ）で得たＤＮＡ溶液５μｌ、２５μｌの２×ＫＡＰＡ Ｈｉｆｉ ＨｏｔＳｔａｒｔ Ｒｅａｄｙ Ｍｉｘ（ＫＡＰＡ）、各５μｌのＮｅｘｔｒａ ＸＴ Ｉｎｄｅｘ Ｐｒｉｍｅｒ１，２、１０μｌの蒸留水を混合し、ＰＣＲ反応ミックスを調製した。９５℃３分の変性ステップを実施した後、９５℃３０秒の変性反応、５５℃３０秒のアニーリング反応及び７２℃３０秒のＤＮＡ伸長反応を含むサイクルを８サイクル繰り返した後、７２℃５分で全てのＤＮＡ伸長反応を完了させた。付加するインデックスは、実施例１と比較例１との間で異ならせただけでなく、Ｖ１及びＶ２領域含む領域を増幅させた反応溶液と、Ｖ３及びＶ４領域を含む領域を増幅させた反応溶液との間でも異ならせた。
上記（ｂ）で得たＤＮＡ溶液５μｌ、２５μｌの２×ＫＡＰＡ Ｈｉｆｉ ＨｏｔＳｔａｒｔ Ｒｅａｄｙ Ｍｉｘ（ＫＡＰＡ）、各５μｌのＮｅｘｔｒａ ＸＴ Ｉｎｄｅｘ Ｐｒｉｍｅｒ１，２、１０μｌの蒸留水を混合し、ＰＣＲ反応ミックスを調製した。９５℃３分の変性ステップを実施した後、９５℃３０秒の変性反応、５５℃３０秒のアニーリング反応及び７２℃３０秒のＤＮＡ伸長反応を含むサイクルを８サイクル繰り返した後、７２℃５分で全てのＤＮＡ伸長反応を完了させた。付加するインデックスは、実施例１と比較例１との間で異ならせただけでなく、Ｖ１及びＶ２領域含む領域を増幅させた反応溶液と、Ｖ３及びＶ４領域を含む領域を増幅させた反応溶液との間でも異ならせた。
（ｄ：精製）
上記（ｃ）で得たインデックス付加後のＤＮＡを、上記（ｂ）に従って、精製し、精製後のＤＮＡ溶液を得た。
上記（ｃ）で得たインデックス付加後のＤＮＡを、上記（ｂ）に従って、精製し、精製後のＤＮＡ溶液を得た。
（ｅ：ＤＮＡのクオリティー確認及び希釈）
上記（ｄ）で精製したＤＮＡについて、ＭｕｌｔｉＮＡ（島津製作所）で増幅領域の長さを測定した。更に（ｄ）で得たＤＮＡ溶液において、Ｑｕａｎｔｕｓ（登録商標） Ｆｌｕｏｒｏｍｅｔｅｒ（Ｐｒｏｍｅｇａ）で二本鎖ＤＮＡの濃度を測定した。ＤＮＡの濃度が４ｎＭとなるように１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．５）でＤＮＡを希釈した。
上記（ｄ）で精製したＤＮＡについて、ＭｕｌｔｉＮＡ（島津製作所）で増幅領域の長さを測定した。更に（ｄ）で得たＤＮＡ溶液において、Ｑｕａｎｔｕｓ（登録商標） Ｆｌｕｏｒｏｍｅｔｅｒ（Ｐｒｏｍｅｇａ）で二本鎖ＤＮＡの濃度を測定した。ＤＮＡの濃度が４ｎＭとなるように１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．５）でＤＮＡを希釈した。
（ｆ：ＮＧＳ用サンプル調製及びＮＧＳ解析）
上記（ｅ）で濃度を測定したＤＮＡ溶液から、Ｎｅｘｔｅｒａ（登録商標） ＸＴ ＤＮＡ Ｌｉｂｒａｒｙ Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（ｉｌｌｕｍｉｎａ）を用いてサンプルを調製した。得られたサンプルを、Ｍｉｓｅｑ（ｉｌｌｕｍｉｎａ）に供し１６Ｓメタゲノミクス解析を行った。データ解析には、Ｂａｓｅ Ｓｐａｃｅ（登録商標）を用いた。総リード数における特定属と判断されたリード数の割合を、その属の細菌の検出率とした。検出率は、Ｖ１及びＶ２領域を含む領域を増幅させたサンプルにおける検出率と、Ｖ３及びＶ４領域含む領域を増幅させたサンプルにおける検出率との平均値として求めた。
上記（ｅ）で濃度を測定したＤＮＡ溶液から、Ｎｅｘｔｅｒａ（登録商標） ＸＴ ＤＮＡ Ｌｉｂｒａｒｙ Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（ｉｌｌｕｍｉｎａ）を用いてサンプルを調製した。得られたサンプルを、Ｍｉｓｅｑ（ｉｌｌｕｍｉｎａ）に供し１６Ｓメタゲノミクス解析を行った。データ解析には、Ｂａｓｅ Ｓｐａｃｅ（登録商標）を用いた。総リード数における特定属と判断されたリード数の割合を、その属の細菌の検出率とした。検出率は、Ｖ１及びＶ２領域を含む領域を増幅させたサンプルにおける検出率と、Ｖ３及びＶ４領域含む領域を増幅させたサンプルにおける検出率との平均値として求めた。
〔評価結果〕
実施例１及び比較例１のＤＮＡ溶液それぞれについて１６ＳｒＲＮＡ遺伝子アンプリコンのマルチプレックスシーケンスに供した解析結果を図３〜図５に示す。図３及び図４は、遺伝子解析により同定された属のうち検出率０．１％以上の細菌を抜粋し、それらの検出率を記載した表である。図５は、実際に添加した１０種の細菌について、実施例１及び比較例１の検出率を比較して示すグラフである。図４及び図５に示すように、比較例１のＤＮＡ溶液では、一部のグラム陽性菌（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ、Ｋｏｃｕｒｉａ、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ、Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ）の検出率が２％以下であった。一方図３及び図５に示すように、実施例１のアクロモペプチダーゼ及びビーズによる処理を行うことで、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓは２．５倍、Ｋｏｃｕｒｉａは８．３倍、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓは２．５倍、Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃは１．６倍まで検出率が向上した。特定酵素による溶菌及びビーズによる物理的破砕処理を行うことにより、ＤＮＡを抽出しにくい細菌の抽出効率が上昇し、検出率が向上したと考えられる。
１６ＳｒＲＮＡアンプリコンのマルチプレックスシーケンス解析においては、試料中に存在する未知の細菌を網羅的に検出することが求められる。本発明のＤＮＡ抽出法を用いることにより、実際に存在している細菌をより正確に検出することが可能になると考えられる。
なおＰＣＲ増幅領域の違い（Ｖ１−Ｖ２／Ｖ３−Ｖ４）は、解析結果に大きな影響を与えなかった。また図３及び図４には、実際に添加した菌と異なる菌名が検出されているが、ＰＣＲ増幅領域の塩基配列が近いため、正しく分類ができなかったものと考えられる。
実施例１及び比較例１のＤＮＡ溶液それぞれについて１６ＳｒＲＮＡ遺伝子アンプリコンのマルチプレックスシーケンスに供した解析結果を図３〜図５に示す。図３及び図４は、遺伝子解析により同定された属のうち検出率０．１％以上の細菌を抜粋し、それらの検出率を記載した表である。図５は、実際に添加した１０種の細菌について、実施例１及び比較例１の検出率を比較して示すグラフである。図４及び図５に示すように、比較例１のＤＮＡ溶液では、一部のグラム陽性菌（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ、Ｋｏｃｕｒｉａ、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ、Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ）の検出率が２％以下であった。一方図３及び図５に示すように、実施例１のアクロモペプチダーゼ及びビーズによる処理を行うことで、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓは２．５倍、Ｋｏｃｕｒｉａは８．３倍、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓは２．５倍、Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃは１．６倍まで検出率が向上した。特定酵素による溶菌及びビーズによる物理的破砕処理を行うことにより、ＤＮＡを抽出しにくい細菌の抽出効率が上昇し、検出率が向上したと考えられる。
１６ＳｒＲＮＡアンプリコンのマルチプレックスシーケンス解析においては、試料中に存在する未知の細菌を網羅的に検出することが求められる。本発明のＤＮＡ抽出法を用いることにより、実際に存在している細菌をより正確に検出することが可能になると考えられる。
なおＰＣＲ増幅領域の違い（Ｖ１−Ｖ２／Ｖ３−Ｖ４）は、解析結果に大きな影響を与えなかった。また図３及び図４には、実際に添加した菌と異なる菌名が検出されているが、ＰＣＲ増幅領域の塩基配列が近いため、正しく分類ができなかったものと考えられる。
Claims (6)
- 試料中の細菌のＤＮＡを抽出して、１６ＳｒＲＮＡ遺伝子アンプリコンのマルチプレックスシーケンスに供するＤＮＡ溶液を調製するＤＮＡ抽出方法であって、
前記ＤＮＡ溶液の調製に際し、前記試料に対して、以下の処理（Ａ）、処理（Ｃ）及び処理（Ｂ）を、処理（Ａ）からこの順に行う、ＤＮＡ抽出法。
（Ａ）アクロモペプチダーゼで処理することにより、試料中の細菌を溶菌する。
（Ｂ）ビーズで処理することにより、試料中の細菌を物理的に破砕する。
（Ｃ）試料をタンパク質分解酵素で処理する。 - 前記処理（Ａ）、処理（Ｃ）及び処理（Ｂ）後の試料を、スピンカラムを有するＤＮＡ抽出キットで処理して、該試料から前記ＤＮＡ溶液を得る、請求項１に記載のＤＮＡ抽出法。
- 前記ビーズが、ジルコニアビーズ及びガラスビーズから選ばれる少なくとも１種である、請求項１又は２に記載のＤＮＡ抽出法。
- 前記試料が食品であるか、又は食品工場の環境中から採取した拭き取り試料である、請求項１〜３の何れか１項に記載のＤＮＡ抽出法。
- 試料中の細菌を網羅的に検出する方法であって、
前記試料に対して、以下の処理（Ａ）、処理（Ｃ）及び処理（Ｂ）を、処理（Ａ）からこの順に行ってＤＮＡ溶液を調製し、該ＤＮＡ溶液におけるＤＮＡを鋳型として、１６ＳｒＲＮＡ遺伝子におけるユニバーサルプライマーを用いたＰＣＲ反応に供することにより、アンプリコンを得、得られたアンプリコンをマルチプレックスシーケンスに供する、細菌の検出方法。
（Ａ）アクロモペプチダーゼで処理することにより、試料中の細菌を溶菌する。
（Ｂ）ビーズで処理することにより、試料中の細菌を物理的に破砕する。
（Ｃ）試料をタンパク質分解酵素で処理する。 - 検出対象とする細菌に、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ属、Ｋｏｃｕｒｉａ属、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ属及びＬｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ属の少なくとも一種の属の細菌が含まれる、請求項５に記載の細菌の検出方法。
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