JP6541589B2 - 化粧用組成物における機能的なチラコイドを含む光合成細胞抽出物の使用 - Google Patents
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Description
本発明にしたがって、抽出物0.01%を含むもの、および抽出物0.1%を含むものの、2つの局所用組成物を開発した。
本発明者らは、0.1%抽出物、0.01%抽出物、および抽出物なし(ビヒクル)を含む局所用組成物で処置したEHSを、非処置のEHS(対照)と比較した。EHSを10kJ/m2および25kJ/m2のUVBに曝露した。図1に示す通り、UVBに曝露したEHSの様々な層(胚芽層(germinativum)、顆粒膜、有棘層(spinosum)、および角質層)は、UVB非曝露の組織に比べて、相互に識別することが難しかった。UVB照射量を10 kJ/m2から25kJ/m2に増大すると、角質層の肥厚によって決定して表皮組織崩壊における増大、および表皮細胞層の数における低減が存在した(図1aおよび1e)。形態学的に分化したケラチノサイト(核が不鮮明で、細胞質が大きく、空胞の存在する大型の細胞)も、これらの照射した組織において誘発された。ビヒクル処置したEHSにおいて匹敵する変化が観察された(図1bおよび1f)。抽出物保護されたEHSは組織または細胞の損傷のわずかな低減を示した(図1c、1d、1g、および1h)。しかし、保護および非保護両方のEHSの様々な表皮層は依然として見ることができた。
本発明者らは、抽出物0.1%、抽出物0.01%、および抽出物なし(ビヒクル)を含む局所組成物で処置したEHSを、非処置のEHS(対照)と比較した。EHSを750kJ/m2および250kJ/m2のUVAに曝露した。図2に示す通り、UVAに曝露したEHSの様々な層(胚芽層、顆粒膜、有棘層、および角質層)は、UVA非曝露の組織に比べて完全に組織崩壊されており、相互に識別することが難しかった。組織崩壊は、角質層の肥厚および表皮細胞層の数の低減によって決定して(図2aおよび2e)、250kJ/m2に比べて750kJ/m2に曝露した後に高かった。形態学的に、本発明者らはUVA照射した表皮における細胞を同定することができなかった。ビヒクル処置したEHSにおいて、低い程度であるが、匹敵する変化が観察された(図2dおよび2f)。それとは反対に、抽出物保護したEHSは、UVAによって誘発される組織または細胞の損傷のわずかな低減を示した。保護されたEHSの様々な表皮層は、両方の抽出物濃度に対して(0.01%および0.1%)、依然として見ることができた(図2c、2d、2g、および2h)。これらの組織学的分析により、抽出物を含む組成物はUVA損傷から組織構造を保護することが明らかになった。
免疫蛍光顕微鏡検査法を用いて、本発明者らは、抽出物の、UVB曝露後のCPD形成および分布に対する効果を評価した。図3に示す通り、10kJ/m2および25kJ/m2の2つの照射量のUVBは、非保護の(対照)EHSにおける表皮細胞のほとんどにおいてCPDを誘発した(図3bおよび3f)。CPD陽性の核が表皮の全層にわたって分布し、基底層においてCPD染色された核の比率が高かった。ビヒクル処置の適用は、CPD陽性細胞の出現を妨げなかった(図3cおよび3g)。CPD染色された細胞の数は、抽出物保護した(図3d、3h、3e、および3i)組織に比べて、非保護の組織においてわずかに多く(図3b、3f、3c、および3g)、CPDの形成の防止は著しくなかった。
本発明者らはまた、中性グリオキサールゲル電気泳動を用いてCPD頻度に対するUVAの効果を測定した。FpgおよびendoIIIで消化したDNAの中性グリオキサールゲル電気泳動から得られた結果(図5)は、250kJ/m2および750kJ/m2のUVA照射の間のDNA損傷からのEHS細胞の保護において、いずれかの濃度の抽出物の著しい有効性を最終的に実証しなかった。
組織学的パラメータの評価は、抽出物を日焼け止め(SS)に加えてもUVAおよびUVB光線に対する日焼け止めの保護効果を低減せず、EHS組織に対する光感受性効果がないことを指摘している。しかし、抽出物を市販の日焼け止めに加えると、日焼け止め単独に比べた場合、UVAおよびUVBのDNA損傷からの保護において驚くべき著しい増大が実証される。
図6に示す通り、25kJ/m2のUVBへの曝露は組織崩壊を誘発した。UVBに曝露されたEHSの様々な層(胚芽層、顆粒膜、有棘層、および角質層)は、UVB非曝露の組織に比べて、相互に識別することが難しかった。形態学的に、照射した組織に存在する分化したケラチノサイト(核が不鮮明で、細胞質が大きく、空胞の存在する大型の細胞)は、UVB(25kJ/m2)の有害な効果を確証するものであった。図6f、6g、および6hは、UVB曝露の効果が、日焼け止め単独によって、およびSS-抽出物混合物によって妨げられたことを説明している。実際、日焼け止めと混合した抽出物の両方の濃度(0.01%および0.1%)に対して、保護されたEHSの異なる表皮層は依然として見ることができた(図6gおよび6h)。非照射の組織において、SS-抽出物混合物は人工組織に対して構造上の変化を誘発しなかった(図6cおよび6d)。
図7に表す結果は、非保護の組織を750kJ/m2のUVAに曝露すると組織崩壊を誘発することを示している。照射した組織において、角質層以外の非保護の組織(図7a)において層(胚芽層、顆粒膜、有棘層、および角質層)の分化は存在しなかった。角質層は非常に厚く、UVA照射による組織および細胞の壊死が確認された。図7gおよび図7hを検討すると、UVA曝露の効果が、日焼け止め単独によって、およびSS-抽出物混合物によって妨げられたことが明らかである。実際、保護されているEHSの様々な表皮層は、日焼け止めと混合した抽出物の両方の濃度(0.01%および0.1%)に対して依然として見ることができる(図7f、7g、および7h)。非照射の組織において、SS-抽出物混合物は、人工組織に対して構造上の変化を誘発しなかった(図7cおよび7d)。
免疫蛍光顕微鏡検査を用いて、本発明者らは、UVB曝露後のCPDの形成および分布に対するSS-抽出物の効果も評価した。図8に示す通り、UVBへの曝露(25kJ/m2)は、非保護(対照)のEHSにおける表皮細胞においてCPDを誘発した(図8e)。CPD陽性の核が表皮の全層にわたって分布し、基底層においてCPD染色された核の比率は高かった。日焼け止めおよび両方の濃度(0.01%および0.1%)のSS-抽出物の適用は、照射した細胞においてCPDの形成を妨げた。抽出物と日焼け止めとの間の相乗効果を評価するために、中性グリオキサールゲル電気泳動を用いて評価を行った。EHSの表皮におけるCPDの全体的な頻度に対するUVB(25kJ/m2)の効果を図9に示す。DNAフラグメント移動性分布の分析は、はるかに小型のDNAフラグメントが、非保護の、および日焼け止め保護したEHSにおいて著しく存在したことを実証していた。しかし、組織をSS-抽出物の混合物(0.01%および0.1%)で保護し、UVBに曝露した場合、高分子量のDNAスメアの存在によって判断すると、CPD頻度の著しい低減が存在した。
UVA照射は著しい量の光酸化損傷を生成することが知られているので、FpgおよびendoIIIで消化したDNAに対して中性グリオキサールゲル電気泳動を用いて評価を行った。DNAフラグメント移動性分布の分析は、はるかに小型のDNAフラグメントが非保護の組織中に著しく存在したことを示していた(図10)。日焼け止め単独で保護した組織において、高分子量のDNAスメアの位置によって判断して、光酸化損傷が妨げられた。SS-抽出物(0.1%)保護した組織において、非保護の組織および日焼け止め保護した組織に比べた場合、より高い分子量のDNAスメアが本質的に存在した。
両方の濃度の抽出物(0.01%および0.1%)を含む組成物は、UVBおよびUVAの両方によって誘発されるEHSの構造的損傷およびDNA損傷の修復において明らかな改善を実証した。本発明者らは、抽出物がUVB誘発性組織損傷を修復し、UVB誘発性CPDの修復を非常に著しく促進し、UVA誘発性DNA光酸化損傷の修復を促進することを実証した。
図11に示す通り、150J/m2のUVBへの曝露が誘発する組織崩壊は、照射3時間後に修復されなかった。UVBに曝露されたEHSの様々な層(胚芽層、顆粒膜、有棘層、および角質層)は、相互に容易に識別できず、基底層が完全に非存在であることが明らかになった。これは、この照射された組織における細胞は、UVB照射によって高度に影響を受け、UVB誘発性損傷を修復することができなかったことを示唆していた。同じことをビヒクル処置した組織に言うことができ、ビヒクル処置した組織は分化したケラチノサイト(核が不鮮明で、細胞質が大きく、空胞の存在する大型の細胞)であることが明らかになった。図11は、UVBの副作用は全て、抽出物を含む組成物で処置した組織において修復されたことを実証している。実際、保護されたEHSの様々な表皮層は、抽出物の両方の濃度(0.01%および0.1%)に対して依然として見ることができた。
図12は、非保護の組織(対照)およびビヒクル保護した組織に対する250kJ/m2のUVAへの曝露が誘発する組織崩壊は、基底層の非存在および角質層の肥厚によって実証される通り、3時間後に修復されなかったことを説明している。UVA誘発性の損傷は、基底層において特異的に、両方の濃度の抽出物(0.01%および0.1%)を含む組成物で処置した組織において修復された。これらの組織学的分析は、抽出物がUVA損傷した組織における修復過程を促進することを示唆している。
免疫蛍光顕微鏡検査法を用いて、UVB誘発性CPDの修復に対する抽出物の効果を評価した。図13に示す通り、CPD陽性細胞の数は、ビヒクル処置した組織に比べた場合、非保護の組織において非常に多かった。これとは反対に、両方の濃度の抽出物(0.01%および0.1%)を含む組成物で処置した組織中で3時間インキュベートした後、CPD陽性細胞は存在せず、UVB誘発性CPDの修復が著しく高かった(全体)ことを示していた。CPDの修復過程に対する抽出物の効果は、中性グリオキサールゲル電気泳動分析によって確認された。実際、図14は、抽出処置した組織におけるDNAスメアは、非処置(対照)およびビヒクル処置した組織に比べた場合、高分子量に局在していた。
抽出物の修復の有効性を、FpgおよびendoIIIで消化したDNA上の中性グリオキサールゲル電気泳動を用いてUVA照射に対してやはり評価した。図15に示す通り、DNAフラグメント移動性分布の分析により、抽出物処置したEHSにおけるよりも、非処置の組織(対照)およびビヒクル処置した組織においてはるかに小型のDNAフラグメントが明らかになった。実際、抽出物(0.01%および0.1%)を含む組成物で保護した組織、DNAスメアは高分子量に本質的に存在した。
本発明にしたがって、異なる3つの濃度の抽出物(0.01%、0.015%、および0.02%)を含む化粧用組成物を開発し、市販の複数の化粧用クリームと比較した。用いたパラメータは、皮膚に対する水和作用、弾性、および抗プロフィロメトリー効果であった。
スピラントールは、皮下の筋肉における収縮を阻害し、抗しわ製品として用いられていることが知られている、アクメラ・オレラシア(Acmella oleracea)抽出物である。スピラントールを光合成細胞抽出物と一緒に用いると、抗しわ化粧用組成物において相乗効果を引き起こす。
皮膚ドナーは、年齢15歳から20歳の健康な女性であった。先に記載されている乳房縮小手術(breast reduction surgery)の後、UV非曝露の正常ヒト皮膚生検からケラチノサイトおよび線維芽細胞を単離した。人工ヒト皮膚(EHS)を、仔ウシ皮膚I型およびIII型コラーゲン(2mg/ml、Sigma)を正常ヒト線維芽細胞(1.5×106細胞/ml)と混合して真皮を生成することによって生成した。組織を、5%ウシ胎仔血清補充培地で4日間培養し、次いでケラチノサイト(9×104/cm2)を接種してEHSを得た。EHSを7日間、水浸条件下で増殖させ、次いでさらに5日間、空気-液体界面に上げて表皮を様々な層に分化させた。各段階を、同じ皮膚の生検から単離したケラチノサイトおよび線維芽細胞を用いて行った。
2つの濃度の抽出物(A=0.1%およびB=0.01%)を試験した。抽出物ビヒクル単独(抽出物処置において見出されたのと同じ濃度)を第1対照とした。正常の非処置組織を第2対照とした。体積60□lの抽出物またはそのビヒクルを、照射30分前にEHSの角質層上に適用した。3つの実験条件(非処置、ビヒクル処置、または抽出物処置)を試験した。培地由来の毒性物質のUV誘発性の形成を避けるために、照射前に、培養培地を、フェノールレッドおよびヒドロコルチゾンなしの照射培地(ウシ下垂体抽出物を補ったDME)によって置き換えた。EHSを含むペトリ皿を氷上に配置し、覆いをせずにEHSをUV光線に直接曝露した。3つの照射量のUVA(0kJ/m2、250kJ/m2、および750kJ/m2)および3つの照射量のUVB(0kJ/m2、10kJ/m2、および25kJ/m2)を用いて、処置および比処置のEHSを照射した。UVA源は、およそ360nmのピークを含む発光スペクトルを有するネオンBLB光45cm(BL-18番、15WUV、Ateliers Albert Inc.、Montreal、QC)であった。UVB源は、290nmから320nmの間にピークを含む発光スペクトルを有するFS20T12/UVB/BPランプ(Philips、Somerset、NJ)であった。施した照射量は全て、YSI Kettering 65A放射計(Yellow Springe Instruments、OH)を用いてモニタリングした。
照射直後に各EHSから生検を採取した。これらを、ブアン溶液で固定し、次いでパラフィン中に包埋するか、または最適な切断温度で直接包埋し、液体窒素中凍結し、使用まで-80℃で貯蔵した。パラフィン包埋した生検の薄い切片(4□m)をマッソン3色染料で染色して、他所に記載した通り、組織の構造を評価した。CPD評価に対して、UVBで照射した組織のみを用いた。この目的では、UVB照射した凍結した生検の薄いクリオスタット切片(4□m)を、特異的なマウスモノクローナルCPD抗体(Biomedical Technologies、Stoughton、CA)と一緒に室温で45分間インキュベートした。CPD抗体は、2本鎖または1本鎖DNA中UV誘発したチミジンダイマーと特異的に反応する。次いで、切片を、1:100希釈したヤギ抗マウス免疫グロブリン(Chemicon、Temecula、Calif)に対してフルオレセインイソチオシアネートコンジュゲート(FITC)中、室温で30分間インキュベートした。切片を、インキュベートの間に、リン酸緩衝食塩水で大々的に洗浄した。これらに、50%グリセロール封入剤中カバーガラスとともに搭載し、落射蛍光顕微鏡を用いて観察し、写真撮影した。
照射直後、表皮細胞を、先に記載した通り単離した。ホモジナイズ後、細胞を遠心分離し、細胞ペレットを2mlの0.15M NaCl; 0.005M EDTA pH7.8および2mlの0.02M Tris-HCl pH8.0; 0.02M NaCl; 0.02M EDTA pH7.8; 1% SDS中に再懸濁した。先に記載した通りDNAを精製し、UVB照射に特異的であるCPD光産物の全体的な頻度、およびUVA照射に特異的である光酸化損傷を評価するのに用いた。
皮膚ドナーは、年齢15歳から20歳の健康な女性であった。先に記載されている乳房縮小手術の後、UV非曝露の正常ヒト皮膚生検からケラチノサイトおよび線維芽細胞を単離した。人工ヒト皮膚を、上記に記載した通り生成した。
2つの濃度の抽出物(0.01%および0.1%)を、別々にSPF15の日焼け止め(SS)と混合したv/v。抽出物(0.01%および0.1%)と混合した後、得られた日焼け止めのSPFは7.5であった。ビヒクル(SPF7.5を有する日焼け止め)を対照とした。正常の非保護の組織を第2対照とした。SS-抽出物またはSS-ビヒクルの60μlの体積を、照射30分前、EHSの角質層上に適用した。照射手順は上記に記載したのと同じであった。2つの照射量のUVA(0kJ/m2および750kJ/m2)および2つの照射量のUVB(0kJ/m2および25kJ/m2)を用いて、保護および非保護のEHSを照射した。
照射直後、各EHSから生検を採取した。これらを、ブアン溶液で固定し、パラフィン中に包埋するか、または最適な切断温度で直接包埋し、液体窒素中凍結し、使用まで-80℃で貯蔵した。組織学的(マッソン3色染料)および免疫蛍光(CPD)分析を、上記に記載した通りに行った。CPD評価に対して、UVBを照射した組織だけを用いた。
照射直後、表皮細胞を単離し、DNAを抽出するのに用いた。精製したDNAを用いて、UVB照射に特異的であるCPD光生成物の全体的な頻度、およびUVA照射に特異的である光酸化損傷を評価した。この目的では、本発明者らは、上記に記載した様々な段階を用いた。
皮膚ドナーは、年齢15歳から20歳の健康な女性であった。先に記載されている乳房縮小手術の後、UV非曝露の正常ヒト皮膚生検からケラチノサイトおよび線維芽細胞を単離した。人工ヒト皮膚を、上記に記載した通り生成した。
これらを生成した後、EHSを紫外線(UVAまたはUVB)源に曝露した。1照射量(250kJ/m2)のUVAおよび1照射量(150J/m2)のUVBを用いて非保護のEHSを照射した。照射手順はセクション1.2に記載したものと同じであった。照射直後、組織を抽出物で処置した。体積60μlの抽出物またはそのビヒクルを、分析前に3時間、EHSの角質層上に適用した。
インキュベート期間の後、各EHSから生検を採取した。これらを、ブアン溶液で固定し、パラフィン中に包埋するか、または最適な切断温度で直接包埋し、液体窒素中凍結し、使用まで-80℃で貯蔵した。組織学的(マッソン3色染料)および免疫蛍光(CPD)分析を、上記に記載した通りに行った。CPD評価に対して、UVBを照射した組織だけを用いた。
インキュベート期間の後、表皮細胞を単離し、DNAを抽出するのに用いた。精製したDNAを用いて、UVB照射に特異的であるCPD光生成物の全体的な頻度、およびUVA照射に特異的である光酸化損傷を評価した。
角質層の表皮の水分は、皮膚の電気的性質である静電容量に基づいた非侵襲性のin vivoの機器試験方法によって評価することができる。角質層は誘電体であり、水和状態における変化は全て静電容量における変化によって反映され、Corneomete(登録商標)によって任意の単位において表される。
皮膚の外観は、皮膚の弾性の性質に関連し、それによって非常に影響を受ける。皮膚の弾性は、化粧品の使用により変化を受けやすい。皮膚の機械的特性および粘弾性特性における変化は、皮膚の弾性を反映する。弾性に関連するパラメータは、Cutometer(登録商標)SEM575(Courage and Khazaka、ドイツ)によって測定される。機器に、1秒に4回繰り返す皮膚上の制御された吸引(400mbarの真空)を含むプローブ(アパチャーの直径2mm)を装着する。各々の頬の中央から2回測定を行った。
Ue=真空の適用による「伸展性」または「即時弾性変形」
Uf=皮膚の「全体の振幅」または「最大振幅」(Ue+Uv)
Ur=「緊張度」
Ur/Ue=「正味の弾性」または「純粋な弾性」またはファーミング
R9=「疲労性」
志願者がまっすぐであるが座った姿勢を維持している間に、シリコーンポリマーを目の輪郭ゾーンの「カラスの足跡」領域上に適用することによって、目の輪郭ゾーンのインプリント(皮膚表面のネガ)を得た。本試験に用いたシリコーンポリマーは、Silfo(登録商標)(Flexico-Developments Ltd.、Potters Bar、イングランドのシリコーン製歯科用印象材)からなっていた。
Claims (6)
- 有効成分としての機能的なチラコイドを含む、組成物の合計重量をベースにして0.01%から0.1%の量の光合成細胞抽出物を、脂肪、乳化剤および共乳化剤、親水性または親油性のゲル化剤、保存剤、溶媒、香料、色素、中和剤、および浸透促進剤から選択される添加剤と混合して含む、皮膚の弾性の増大、皮膚の水和作用の増大、又はこれらの組合せのための、局所用化粧用組成物。
- 前記抽出物が凍結乾燥されておらず、液体組成物中に製剤化されている、請求項1に記載の組成物。
- 前記抽出物が、凍結乾燥抽出物であり、該凍結乾燥抽出物は、固形物と混合して固体組成物となるか、又は水中、生理食塩水中、又はプロピレングリコール中に溶解又は懸濁される、請求項1に記載の組成物。
- 前記皮膚が紫外線(UV)照射によって損傷されたものである、請求項1から3のいずれか一項に記載の組成物。
- UV照射がUVA照射である、請求項4に記載の組成物。
- UV照射がUVB照射である、請求項4に記載の組成物。
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