JP6374682B2 - 筋萎縮抑制剤 - Google Patents
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しかしながら、斯かる大豆レシチンに、アトロジン−1の発現抑制作用があること、筋萎縮抑制作用があることはこれまで全く知られていない。
(1)大豆レシチンを有効成分とするアトロジン−1発現抑制剤。
(2)大豆レシチンを有効成分とする筋萎縮抑制剤。
上記大豆レシチンとしては、大豆油を製造する工程で得られる粗レシチン、粗レシチンを溶剤で分別して得られる分別レシチン(抽出レシチン)、これらを精製した精製レシチンの他、酵素処理レシチン等が包含される。
酵素処理レシチンとしては、酵素によりリン脂質のβ位の脂肪酸残基を加水分解して除去し、リゾレシチンとした酵素分解レシチン、及びリン脂質のリン酸に結合している塩基を酵素によりグリセリンと置換してフォスファチジルグリセロールにした酵素転移レシチンが挙げられる。
上記大豆レシチン中に含まれるリン脂質としては、例えば、ホスファチジルコリン、ホスファチジルエタノールアミン、ホスファチジルイノシトール、ホスファチジルセリン、ホスファチジン酸や、これらのリゾ体を含むアシルグリセロ型リン脂質が挙げられる。
また、大豆レシチンは、アトロジン−1発現抑制剤等を製造するために使用することができる。
より具体的には、フォークヘッド型転写因子であるFoxoを介したアトロジン−1のプロモーター活性の抑制(試験例1)、デキサメタゾン処理培養筋管細胞におけるアトロジン−1の発現抑制(試験例2)、及びマウスにおける尾懸垂による筋委縮の抑制(試験例3)が挙げられる。
また、デキサメタゾンが、骨格筋においてアトロジン−1の発現を上昇させ、筋萎縮を誘導し(Crit. Care. Med. 35: S602-S608, 2007、J. Cell Biochem. 105: 353-364, 2008)、培養筋管細胞においてもデキサメタゾン処理により、アトロジン−1の発現が上昇することから、デキサメタゾン処理培養筋管細胞におけるアトロジン−1の発現抑制は、筋萎縮抑制の指標となる。
<1>大豆レシチンを有効成分とするアトロジン−1発現抑制剤。
<2>大豆レシチンを有効成分とする筋萎縮抑制剤。
<3>アトロジン−1発現抑制剤を製造するための、大豆レシチンの使用。
<4>筋萎縮抑制剤を製造するための、大豆レシチンの使用。
<5>アトロジン−1発現抑制に使用するための、大豆レシチン。
<6>筋萎縮抑制に使用するための、大豆レシチン。
<7>大豆レシチンの有効量を投与又は摂取することによるアトロジン−1発現抑制方法。
<8>大豆レシチンの有効量を投与又は摂取することによる筋萎縮抑制方法。
<9>上記<5>〜<6>において、使用は非治療的使用である。
<10>上記<7>又は<8>において、方法は非治療的方法である。
<11>上記<7>又は<8>において、投与又は摂取の対象は、筋萎縮抑制を必要とする若しくは希望する動物又はヒトである。
(1)SLP−ホワイト(商品名、辻製油より入手)を、99.5%エタノールに濃度7.8mg/mLとなるように溶解した。
(2)SLP−ホワイトリゾ(商品名、辻製油より入手)を、DMSOに濃度5.2mg/mlとなるように溶解した。
(1)マウスアトロジン−1プロモーター領域のクローニング及びレポータープラスミド構築
マウスアトロジン−1プロモーター領域としてエキソン1上流の約3.5kbの長さの領域をクローニングするために、フォワードプライマー(attggtacctcggtggaaggtctctgta[配列番号1])、リバースプライマー(attctcgagacggattgacagccaggaa[配列番号2])を利用し、マウスBACクローン(RP23−391D2;Children’s Hospital Oakland)を鋳型にし、DNAポリメラーゼ(TaKaRa LA−taqTM;宝酒造社)を用い、94℃1分間の後、94℃30秒、60℃30秒、及び72℃4分のサイクルを25回。続いて72℃5分間の条件でPCRを行った。得られたPCR産物をクローニングベクター(pGEMR−T Easy Vector Systems;プロメガ社)にサブクローニングし、制限酵素(Kpn1、Xho1:宝酒造社)処理によりDNA断片を調整した。調整したDNA断片をpGL3−Basicベクター(Promega)のマルチクローニングサイト(Kpn1/Xho1)に挿入し、pGL3−アトロジン−1を得た。
マウスFoxo1は、pENTR223.1ベクターに挿入されたFoxo1のCDS(Open Biosystems)をpcDNA−DEST40ベクター(Invitrogen)にLRクロナーゼ(Invitrogen)により挿入した。
PBSにて洗浄後、デュアルルシフェラーゼアッセイシステム(Promega)を用いて細胞を溶解、溶解液にルシフェリンを含む基質溶液を加え、ルミノメーターにてホタル及びウミシイタケルシフェラーゼ活性を各々測定した。ルシフェラーゼ活性は、ホタルルシフェラーゼ活性/ウミシイタケルシフェラーゼ活性とし、Foxo1刺激を行っていない群を100とした際の相対値を計算した。統計は、unpaired student's t-testを用い、有意水準はP<0.05とした。その結果を図1(a)(b)に示す。
図1(a)(b)の結果に示すように、Foxo1により、アトロジン−1のプロモーター活性は有意に増加した。大豆レシチン及び大豆リゾレシチンは、Foxo1による活性化を有意に抑制した。
マウス骨格筋細胞株C2C12(ATCC)をDMEM培地(10% ウシ胎児血清)にて培養し、DMEM培地(2%馬血清)で分化誘導を行った。2日ごとに培地を交換し、分化誘導5日目にデキサメタゾン終濃度1μMを含む分化培地に交換し、24時間培養した。上記製造例で調製した大豆レシチン(デキサメタゾン添加時の終濃度:78μg/mL)及び大豆リゾレシチン(デキサメタゾン添加時の終濃度:52μg/mL)で同時に添加した。デキサメタゾン処理後24時間後にRNAを回収した。
細胞のRNA抽出は、RNeasy mini kit(QIAGEN)を用いて、添付のプロトコール通りに行った。
各RNAは濃度を揃えた後、65℃で10分間の熱処理を行い、急冷後に1μgのRNAを用いて逆転写反応を行った。逆転写反応はHigh Capacity RNA−to−cDNA Kit(アプライドバイオシステム社)を用いて、添付のプロトコールどおりに行った。反応後は4℃で急冷した。サンプルは使用まで−20℃で保存した。
逆転写反応によって得られたcDNAを鋳型として、ABI PRISM7700 Sequence Detector(アプライドバイオシステムズ社)によりリアルタイムPCRを行った。リアルタイムPCRの反応液組成は、10μL Fast SYBR Green PCR Master Mix(アプライドバイオシステムズ社)、0.1μlの100μM 5’−プライマー及び3’−プライマー、4.8μL dH2Oとして、これに5μLのcDNAを加えて20μLの反応系で行い、得られた解析結果は36B4 mRNAの発現量を基準として補正し、相対的mRNA発現量として示した。用いたプライマーは表1に示した。統計は、unpaired student's t-testを用い、有意水準はP<0.05とした。その結果を図2(a)(b)に示す。
10週齢のBALB/cマウスを2週間予備飼育した後、体重(約27g)が等しくなるように、コントロール−対照食群(n=8)、尾懸垂−対照食群(n=9)、尾懸垂−大豆レシチン食群(n=8)、尾懸垂−大豆リゾレシチン食群(n=7)の4群に群わけした。
製造例で調製した大豆レシチン及び大豆リゾレシチンを用いて、表2に示す組成(単位は質量%)の各食餌を作成して、各食餌を7日間飼育した後に、尾懸垂処置を施した。尾懸垂処置は、マウスの尾に両面テープなどにより針金を固定し、この針金をケージの金網に固定することにより、マウス後肢が宙に浮いた状態にさせ7日間放置した。尾懸垂処置終了後、マウス後肢のヒラメ筋重量を測定した。なお、尾懸垂処置期間中も各食餌を自由摂餌させた。統計は、unpaired student's t-testを用い、有意水準はP<0.05とした。その結果を図3(a)(b)に示す。
Claims (4)
- リン脂質を20質量%以上含有する大豆レシチンを有効成分とするアトロジン−1発現抑制剤。
- リン脂質を20質量%以上含有する大豆レシチンを有効成分とする筋萎縮抑制剤。
- リン脂質を20質量%以上含有する大豆レシチンを有効成分とするアトロジン−1発現抑制用食品又は食品組成物。
- リン脂質を20質量%以上含有する大豆レシチンを有効成分とする筋萎縮抑制用食品又は食品組成物。
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