JP6277684B2 - 細胞積層体の製造方法 - Google Patents
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Description
(1)細胞積層体の製造方法であって、
a)培養した細胞を、細胞間接着タンパク質が残存するような穏和な酵素処理に付す工程と、
b)細胞非接着性の内底面を有する培養容器に、工程a)で酵素処理した細胞を添加する工程と、
c)培養容器に添加された細胞に内底面方向への遠心力を作用させながら細胞培養を行い、細胞積層体を形成する工程と、
d)工程c)において得られた細胞積層体を回収する工程と
を含む、前記方法。
(2)穏和な酵素処理が、5分以上の酵素処理により細胞が剥離する処理である、(1)に記載の方法。
(3)穏和な酵素処理が、酵素処理しない場合と比較して、細胞外に流出するタンパク質量が9.5倍以下となるような酵素処理である、(1)または(2)に記載の方法。
(4)穏和な酵素処理が、酵素処理しない場合と比較して、細胞外に流出するタンパク質量が1.8〜3.5倍となるような酵素処理である、(3)に記載の方法。
(5)細胞が軟骨細胞であり、酵素がトリプシンであり、穏和な酵素処理がトリプシン濃度0.0005〜0.1000質量%での処理である、(1)〜(4)のいずれかに記載の方法。
酵素処理工程は、培養した細胞を、細胞間接着タンパク質が残存するような穏和な酵素処理に付す工程である。
細胞添加工程は、上記工程で酵素処理した細胞を、細胞非接着性の内底面を有する培養容器に添加する工程である。
遠心処理工程は、培養容器に添加された細胞に内底面方向への遠心力を作用させながら細胞培養を行い、細胞積層体を形成する工程である。本工程では、遠心力により細胞が内底面の形状に応じて内底面に密着した状態で、細胞同士が接着し、所望の形状の組織が形成される。
回収工程は、遠心操作終了後に、得られた細胞積層体を回収する工程である。例えばピペッティング操作などの簡単な物理的な操作よって、培養容器の内底面から細胞を剥離することができる。遠心処理工程で用いる培養容器は内底面が細胞非接着性であることから、この操作は容易であり短時間の培養で細胞積層体の作製および剥離回収が可能である。培養容器の内底面が刺激応答性高分子などの、細胞非接着性に変化する表面である場合には、細胞非接着性となるような環境(例えば下限臨界温度以下の温度)において剥離操作を行う。得られる細胞積層体は、好ましくは層構造、より好ましくは3層以上の層構造を有する細胞シートの形状であり、容易に回収可能な強度を有する。したがって、ハンドリングの際に破れにくく、移植用途に好ましい。
繊維芽細胞であるCCL163細胞を細胞培養用の10cmポリスチレン製ディッシュ(Thermo Fisher Scientific社)中で、10%のウシ胎児血清(FBS)およびストレプトマイシン/ペニシリン(ライフテクノロジーズ社)を加えたDMEM培地(Sigma社)で増殖および維持させた。続いてコンフルエントに達した繊維芽細胞をCaイオンおよびMgイオンが含まれていないDPBS(−)溶液(Life Technologies社)で1度洗浄した後にトリプシン溶液(Life Technologies社)を用いて図1に示した酵素処理条件1〜7でそれぞれ剥離した。なおトリプシン溶液を希釈する際には上記DPBS(−)溶液を用いた。
生細胞を染色するCalcein(濃度1μg/ml;和光純薬工業社)および死細胞を染色するPropidium iodide(PI;濃度1μg/ml;和光純薬工業社)を含ませたPBS溶液中で、実施例1の酵素処理条件3で作製した細胞シートを、37℃で15分間インキュベートさせた。その後、封入剤で封入した後に共焦点顕微鏡(Zeiss社)により観察および撮影を行った。
実施例1と同様の方法で増殖させ、コンフルエントに達したCCL163細胞に、Accutase原液(Innovative Cell Technologies社;EDTA濃度0.5mM)をDPBS(−)により10倍希釈したものを3ml添加し、37℃のインキュベータ内で加温することでCCL163細胞を剥離した。酵素反応を止めるためにDPBS(−)による希釈そして遠心を2回繰り返した。上清をアスピレーターにより吸引し、10%のFBS入りDMEM培地に再懸濁させ、3.5cmポリスチレン製ペトリディッシュ(Becton Dickinson社)に約3×107個播種した。培地を3ml加えて側面をパラフィルムにより封をした上で、37℃、CO2濃度5%、遠心力190Gで3時間遠心することで、ディッシュの内底面方向へ遠心力を作用させ、細胞を積層化させた。
遠心処理工程で用いる培養容器として、以下の樹脂製ディッシュを用いた。
ディッシュ2:表面がポリエチレングリコールでコーティングされたポリスチレン製ディッシュ
ディッシュ3:表面がジメチルアクリルアミドでコーティングされたポリスチレン製ディッシュ(セルシード社、HydroCell)
ディッシュ4:細胞接着性向上のために酸素プラズマ処理による親水性処理を施したディッシュ(サーモフィッシャーサイエンティフィック社)
これらは全て3.5cmサイズのものを用いた。
実施例1と同様に、CCL163細胞を3.5cmポリスチレン製ディッシュ内でコンフルエントになるまで増殖させた。培地をアスピレーターで回収後、DPBS(−)で洗浄した後に実施例1における酵素処理条件1〜7で酵素処理を行った。なお酵素処理停止は500μlのDPBS(+)(Sigma社)を添加することによって行った。溶液を回収し1000rpmで5分間遠心した上で上澄みを回収し各種測定用サンプルとした。
正常ラット軟骨由来のMK442細胞(タカラバイオ社)を用いて細胞積層体を作製した。培地は10%FBSを含んだRPMI 1640培地(Sigma社)に25μg/mlのアスコルビン酸(和光純薬工業社)およびストレプトマイシン/ペニシリン(ライフテクノロジーズ社)を添加した物を用いた。
実施例1記載の方法に倣って軟骨細胞の場合でも細胞培養後の酵素処理条件によって、回収される細胞シートに差が見られるかどうかを検討した。
実施例7で用いた軟骨細胞の場合について、細胞外へのタンパク質の流出量を解析した。
実施例1および実施例6で作製した細胞シートをパラフィン包埋機(Leica社)により包埋した。薄切機で厚さ5μmの切片を作製した上でヘマトキシリン・エオジン染色(HE染色)を所定のプロトコールに従い、染色した。染色の様子は光学顕微鏡(オリンパス社)により観察した。
Claims (3)
- 細胞積層体の製造方法であって、
a)培養した細胞を、細胞間接着タンパク質が残存するような穏和な酵素処理に付す工程と、
b)細胞非接着性の内底面を有する培養容器に、工程a)で酵素処理した細胞を添加する工程と、
c)培養容器に添加された細胞に内底面方向への遠心力を作用させながら細胞培養を行い、細胞積層体を形成する工程と、
d)工程c)において得られた細胞積層体を回収する工程と
を含み、
穏和な酵素処理が、酵素処理しない場合と比較して、細胞外に流出するタンパク質量が1.8〜3.5倍となるような酵素処理である、前記方法。 - 穏和な酵素処理が、5分以上の酵素処理により細胞が剥離する処理である、請求項1に記載の方法。
- 細胞が軟骨細胞であり、酵素がトリプシンであり、穏和な酵素処理がトリプシン濃度0.0010〜0.0500質量%での処理である、請求項1又は2に記載の方法。
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