JP6145538B2 - 触媒を用いたシクロヘキサン−１，２−ジカルボン酸ジメチルの生物学的分割による（３ａＳ，７ａＲ）−ヘキサヒドロイソベンゾフラン−１（３Ｈ）−オンの製造方法 - Google Patents
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Description
本発明は、（２Ｓ，３ａＲ，７ａＳ）−ベンジルオクタヒドロ−１Ｈ−インドール−２−カルボン酸塩酸塩の合成中間体である（３ａＳ，７ａＲ）−ヘキサヒドロイソベンゾフラン−１（３Ｈ）−オン（１）の製造方法に関する。
従来の合成方法ではブタ肝臓エステラーゼを用いている。この方法のブタ肝臓エステラーゼの代わりに非哺乳類由来酵素を用いるほうが望ましい。また、上記ブタ肝臓エステラーゼを用いた生物学的分割によって得られた（１Ｒ，２Ｓ）−２−（メトキシカルボニル）シクロヘキサンカルボン酸（４）のエナンチオマー過剰率はたったの８０％ｅｅであり、これは、９８％ｅｅよりも高い物質を得るには塩の改質が必要なことを意味する。高ｅｅ物質をもたらし、そのためプロセス中での塩の改質ステップが必要ない代替の酵素は、単純で製造コストが低いものが相当であろう。また、固定化酵素を用いれば生体触媒が再利用しやすくなるであろう。
様々な特許文献や学術論文に、光学純度の高い２−（メトキシカルボニル）シクロヘキサンカルボン酸の製造方法が開示されている。特許文献１と非特許文献１及び２には、ブタ肝臓エステラーゼを触媒として用いたシクロヘキサン−１，２−ジカルボン酸ジメチル（２）の生物学的分割が記載されている。
Ｆ．Ｂｒｉｏｎら，"Ｓｔｅｒｅｏｓｅｌｅｃｔｉｖｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｏｆ ａ ｔｒａｎｓ−Ｏｃｔａｈｙｄｒｏｉｎｄｏｌｅ Ｄｅｒｉｖａｔｉｖｅ， Ｐｒｅｃｕｒｓｏｒ ｏｆ Ｔｒａｎｄｏｌａｐｒｉｌ， ａｎ Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ ｏｆ Ａｎｇｉｏｔｅｎｓｉｎ Ｃｏｎｖｅｒｔｉｎｇ Ｅｎｚｙｍｅ，"Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ Ｌｅｔｔｅｒｓ，Ｖｏｌ．３３，Ｎｏ．３４，４８８９〜４８９２頁，１９９２
Ｒ．Ｍ．Ｂｏｒｚｉｌｌｅｒｉら，"Ｔｏｔａｌ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｕｎｕｓｕａｌ Ｍａｒｉｎｅ Ａｌｋａｌｏｉｄ （−）−Ｐａｐｕａｍｉｎｅ Ｕｔｉｌｉｚｉｎｇ ａ Ｎｏｖｅｌ Ｉｍｉｎｏ Ｅｎｅ Ｒｅａｃｔｉｏｎ，"Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｔｈｅ Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ，Ｖｏｌ．１１７，１０９０５〜１０９１３頁，１９９５
本願の一態様は、（３ａＳ，７ａＲ）−ヘキサヒドロイソベンゾフラン−１（３Ｈ）−オン（１）の合成方法を提供する。ある態様において、本願は、（１）の製造中間体である（１Ｓ，２Ｒ）−２−（メトキシカルボニル）シクロヘキサンカルボン酸（３）の製造方法を提供する。
本発明は、哺乳類由来でない配列番号１、配列番号２、または配列番号３に記載のアミノ酸配列を含む酵素の存在下でシクロヘキサン−１，２−ジカルボン酸ジメチルを加水分解することを含む、（３ａＳ，７ａＲ）−ヘキサヒドロイソベンゾフラン−１（３Ｈ）−オンの製造方法に関する。
前記酵素が配列番号３に記載のアミノ酸配列を含むことが好ましい。
前記酵素が配列番号１または２に記載のアミノ酸配列を含むことが好ましい。
前記酵素は固定化された形態であることが好ましい。
少なくとも９５％ｅｅの（３ａＳ，７ａＲ）−ヘキサヒドロイソベンゾフラン−１（３Ｈ）−オンを製造することが好ましい。
少なくとも９８％ｅｅの（３ａＳ，７ａＲ）−ヘキサヒドロイソベンゾフラン−１（３Ｈ）−オンを製造することが好ましい。
また、本発明は、哺乳類由来でない配列番号１、配列番号２、または配列番号３に記載のアミノ酸配列を含む酵素の存在下でシクロヘキサン−１，２−ジカルボン酸ジメチルを加水分解することを含む、（１Ｓ，２Ｒ）−２−（メトキシカルボニル）シクロヘキサンカルボン酸の製造方法に関する。
前記酵素が配列番号３に記載のアミノ酸配列を含むことが好ましい。
前記酵素が配列番号１または２に記載のアミノ酸配列を含むことが好ましい。
前記酵素は固定化された形態であることが好ましい。
９５％ｅｅ以上の（１Ｓ，２Ｒ）−２−（メトキシカルボニル）シクロヘキサンカルボン酸を製造することが好ましい。
９８％ｅｅ以上の（１Ｓ，２Ｒ）−２−（メトキシカルボニル）シクロヘキサンカルボン酸を製造することが好ましい。
本願の一態様は、シクロヘキサン−１，２−ジカルボン酸ジメチル（２）の酵素的加水分解を含む、（１Ｓ，２Ｒ）−２−（メトキシカルボニル）シクロヘキサンカルボン酸（３）の合成方法を提供する。
本願の一態様は、（３）の還元的環化を含む、（３ａＳ，７ａＲ）−ヘキサヒドロイソベンゾフラン−１（３Ｈ）−オン（１）の製造方法を提供する。
本願の一態様は、酵素的加水分解において固定化酵素調製物を用いる方法を提供する。
本願の一態様は、グルタルアルデヒド処理等によって架橋されたマトリクスを有する固定化酵素調製物を用いる方法を提供する。
本願の一態様は、酵素的加水分解において、特に限定されないが、カイロテックエステラーゼ（Ｃｈｉｒｏｔｅｃｈ Ｅｓｔｅｒａｓｅ）Ｋ又はカイロテックエステラーゼ（Ｃｈｉｒｏｔｅｃｈ Ｅｓｔｅｒａｓｅ）Ｎ（それらの配列表及び有用な野生型ＣＡＬ-Ｂ酵素の配列表を図１に示す）、Ｎｏｖｏｚｙｍｅｓ Ａ／Ｓ製のＮｏｖｏｚｙｍ（登録商標）（ノボザイム）４３５、ＮＺＬ−１０７ ＬＹＯ及び４２０４４、Ｃｏｄｅｘｉｓ製のＩＣＲ−１１０ ＣＡＬＢ、Ｃｈｉｒａｌｖｉｓｉｏｎ製のＣＶ−ＣＡＬＢ及びＣＡＬＢ−Ｙ、並びに、セリンエステラーゼクチナーゼのいずれかのリパーゼ等の酵素を用いる方法を提供する。複数種の酵素の混合物も使用できる。酵素は、例えば、溶解させたり、酵素を固定化する樹脂中に分散させたりするなど、任意の物理的形態で使用できる。
なかでも有用な酵素としては、カンジダ・アンタークティカ（Ｃａｎｄｉｄａ ａｎｔａｒｃｔｉｃａ）由来のものが挙げられ、例えば、Ｊ．Ｕｐｐｅｎｂｅｒｇら，“Ｔｈｅ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ， Ｃｒｙｓｔａｌ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ Ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｒｅｆｉｎｅｍｅｎｔ ｏｆ Ｔｗｏ Ｃｒｙｓｔａｌ Ｆｏｒｍｓ ｏｆ Ｌｉｐａｓｅ Ｂ ｆｒｏｍ Ｃａｎｄｉｄａ Ａｎｔａｒｃｔｉｃａ，”Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ，Ｖｏｌ．２（４），２９３〜３０８頁，１９９４；及び、Ｊ．Ｕｐｐｅｎｂｅｒｇら，“Ｃｒｙｓｔａｌｌｏｇｒａｐｈｉｃ ａｎｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ−Ｍｏｄｅｌｉｎｇ Ｓｔｕｄｉｅｓ ｏｆ Ｌｉｐａｓｅ Ｂ ｆｒｏｍ Ｃａｎｄｉｄａ Ａｎｔａｒｃｔｉｃａ Ｒｅｖｅａｌ ａ Ｓｔｅｒｅｏｓｐｅｃｉｆｉｔｙ Ｐｏｃｋｅｔ ｆｏｒ Ｓｅｃｏｎｄａｒｙ Ａｌｃｏｈｏｌｓ，”Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，Ｖｏｌ．３４（５１），１６８３８〜１６８５１頁，１９９５に記載のもの等が含まれる。
本願のいくつかの実施形態によれば、酵素的加水分解においてＮｏｖｏｚｙｍ（登録商標）（ノボザイム）４３５酵素を用いる方法が提供される。
本願のいくつかの実施形態によれば、基質濃度が約１０〜２００ｇ／Ｌである方法が提供される。
本願のいくつかの実施形態によれば、基質濃度が少なくとも約７５ｇ／Ｌである方法が提供される。
本願のいくつかの実施形態によれば、酵素担持量が基質の重量に対して約１％〜約２０％である方法が提供される。
本願のいくつかの実施形態によれば、酵素担持量が基質の重量に対して約１０％未満である方法が提供される。
本願のいくつかの実施形態によれば、酵素的加水分解温度が約１０℃〜約５０℃の範囲である方法が提供される。
本願のいくつかの実施形態によれば、酵素的加水分解温度が約４０℃である方法が提供される。
本願のいくつかの実施形態によれば、酵素的加水分解ｐＨが約６〜約９の範囲である方法が提供される。
本願のいくつかの実施形態によれば、酵素的加水分解ｐＨが約７〜約８の範囲である方法が提供される。
本願の一態様は、反応容器に加水分解酵素を直接添加し、生物学的分割終了後に濾過して回収した後、新品のバッファで洗浄し、新品の基質／バッファバッチに添加する方法を提供する。
いくつかの実施形態によれば、新品のバッファはリン酸バッファである。
本願の一態様は、加水分解酵素がカラムリアクター内に内包されており、上記カラムを通して生物学的分割バッチを連続的に循環させ、生物学的分割終了後に上記カラムを新品のバッファで洗浄し、次の基質／バッファバッチを上記カラムを通して循環させることができる方法を提供する。
いくつかの実施形態によれば、新品のバッファはリン酸バッファである。
本願の一態様は、（１Ｓ，２Ｒ）−２−（メトキシカルボニル）シクロヘキサンカルボン酸（３）の還元的環化において、クロロギ酸Ｃ１−Ｃ６アルキルを用い、水素化ホウ素で還元する方法を提供する。
本願の一態様は、クロロギ酸Ｃ１−Ｃ６アルキルがクロロギ酸エチルである方法を提供する。
本願の一態様は、水素化ホウ素が水素化ホウ素ナトリウムである方法を提供する。
本明細書では、酵素的加水分解の方法を例証するために、Ｎｏｖｏｚｙｍ（登録商標）４３５酵素を用いている。この製品は、固定化された顆粒状のカンジダ・アンタークティカ リパーゼＢ（Ｃａｎｄｉｄａ ａｎｔａｒｃｔｉｃａ Ｌｉｐａｓｅ Ｂ）であって、マクロ多孔質アクリル樹脂製高分子マトリクスを有する。Ｎｏｖｏｚｙｍ ４３５は哺乳類由来ではなく、９８％ｅｅの物質を生成させることができるため、上記方法中で塩の改質ステップが不要である。この酵素源は、実験では少なくとも８回再利用できた。
本願のいくつかの実施形態によれば、まず、（１Ｓ，２Ｒ）−２−（メトキシカルボニル）シクロヘキサンカルボン酸（３）をクロロギ酸エチルで処理して中間体混合無水物を得、次に水素化ホウ素ナトリウムで還元して対応のヒドロキシエステルを得、これがｉｎ ｓｉｔｕ環化して所望のｃｉｓ−ラクトン物質が形成することによって、（３ａＳ，７ａＲ）−ヘキサヒドロイソベンゾフラン−１（３Ｈ）−オン（１）は製造される。
Ｎｏｖｏｚｙｍ（登録商標）４３５を触媒として用いたシクロヘキサン−１，２−ジカルボン酸ジメチル（２）の生物学的分割によって、（１Ｒ，２Ｓ）−ではなく（１Ｓ，２Ｒ）−２−（メトキシカルボニル）シクロヘキサンカルボン酸が生成する。しかしながら、下記合成ステップにおいて、エステル部分ではなく、酸部分が還元されると、ブタ肝臓エステラーゼを用いた場合に得られるものと同様の立体化学を有するｃｉｓ−ラクトンが生じる。また、生物学的分割によって、従来法よりも著しくｅｅの高い物質が生成する（９８％対８０％）。Ｎｏｖｏｚｙｍ（登録商標）４３５は固定化酵素製剤であり、生体触媒の再利用が可能である。非哺乳類酵素は再利用しやすく、高ｅｅ物質をもたらす。これにより、物質のｅｅを高めるために塩の改質を行う必要がない。
定義
特に断りのない限り、本願の化合物に関して以下の定義を用いる。特定の基に含まれる炭素原子の数は、通常、「Ｃｘ−Ｃｙ」（ｘ及びｙはそれぞれ下限及び上限）で表される。例えば、「Ｃ１−Ｃ６」で表される基は１〜６つの炭素原子を含む。本明細書中の定義においては、炭素数は主鎖部炭素及び枝部炭素をいうが、アルコキシ置換基などの置換基の炭素原子は含まない。
特に断りのない限り、本願の化合物に関して以下の定義を用いる。特定の基に含まれる炭素原子の数は、通常、「Ｃｘ−Ｃｙ」（ｘ及びｙはそれぞれ下限及び上限）で表される。例えば、「Ｃ１−Ｃ６」で表される基は１〜６つの炭素原子を含む。本明細書中の定義においては、炭素数は主鎖部炭素及び枝部炭素をいうが、アルコキシ置換基などの置換基の炭素原子は含まない。
「アルキル（基）」は、直鎖又は分枝鎖であってもよい、記載された炭素数の炭化水素鎖をいう。特に数が示されてなければ、「アルキル」は、炭素数１〜６（境界値を含む）の直鎖又は分枝鎖である。Ｃ１−Ｃ６アルキル基としては、特に限定されないが、例えば、メチル、エチル、プロピル、ブチル、ペンチル、ヘキシル、イソプロピル、イソブチル、ｓｅｃ−ブチル、ｔｅｒｔ−ブチル、イソペンチル、ネオペンチル及びイソヘキシルが挙げられる。
「クロロギ酸Ｃ１−Ｃ６アルキル」は、一般式：Ｒ−Ｏ−Ｃ（Ｏ）−Ｃｌ（ＲはＣ１−Ｃ６アルキル基）で表される化合物をいう。
「水素化ホウ素」は還元剤であり、エステルの存在下で酸を還元する。その例として、特に限定されないが、水素化ホウ素ナトリウム、水素化ホウ素亜鉛、ジボラン、ＢＨ３／ＴＨＦ、及び、９−ＢＢＮが挙げられる。
「ｅｅ」という用語は、物質のエナンチオマー過剰率を意味し、各エナンチオマー間のモル分率の差の絶対値として定義するものであり、％で表す。
Ｃｅｌｉｔｅ（登録商標）として販売されている物質は融剤焼成珪藻土である。Ｃｅｌｉｔｅ（登録商標）はＷｏｒｌｄ Ｍｉｎｅｒａｌｓ Ｉｎｃ．の登録商標である。ＧＣはガスクロマトグラフィである。ＮＭＲは核磁気共鳴分析法である。ＭＴＢＥはメチルｔ−ブチルエーテル又は２−メトキシ−２−メチルプロパンである。Ｎｏｖｏｚｙｍ（登録商標）ＮＺＬ−１０７ ＬＹＯは真菌由来リパーゼである。Ｎｏｖｏｚｙｍ（登録商標）４３５は、カンジダ・アンタークティカ（Ｃａｎｄｉｄａ ａｎｔａｒｃｔｉｃａ）由来のＬｉｐａｓｅ Ｂが固定化された形態である。Ｎｏｖｏｚｙｍ（登録商標）は、Ｎｏｖｏｚｙｍｓ Ａ／Ｓ、Ｎｏｖｏ Ｉｎｄｕｓｔｒｉ Ａ／Ｓ（デンマーク、Ｂａｇｓｖａｅｒｄ ＤＫ−２８８０）の登録商標である。ＰＬＥはブタ肝臓エステラーゼである。Ｃｈｉｒｏｔｅｃｈ Ｅｓｔｅｒａｓｅ Ｋ３１０−９０３は、エステル、特にカルボン酸エステルの立体選択的加水分解を触媒する。カイロテックエステラーゼ（Ｃｈｉｒｏｔｅｃｈ Ｅｓｔｅｒａｓｅ）Ｋ３１０−９０３は、元はオフィオストマ（Ｏｐｈｉｏｓｔｏｍａ）属真菌から単離された組み換え酵素である。カイロテックエステラーゼ（Ｃｈｉｒｏｔｅｃｈ Ｅｓｔｅｒａｓｅ）Ｎ３１０−９０２は、エステル、特にカルボン酸エステルの立体選択的加水分解を触媒するものであり、元はオフィオストマ（Ｏｐｈｉｏｓｔｏｍａ）属真菌から単離された組み換え酵素である。
本願の方法の特定の態様について、以下の実施例１及び２を参照して詳細に説明する。これらの実施例は例示のために記載したにすぎず、本開示の範囲を決して限定するものではない。
実施例１：（１Ｓ，２Ｒ）−２−（メトキシカルボニル）シクロヘキサンカルボン酸（３）の製造
ジャケット付１００ｍＬ容容器にシクロヘキサン−１，２−ジカルボン酸ジメチル（（２）、４ｇ、２０ｍｍｏｌ）と０．１Ｍリン酸カリウムバッファ（３９ｍＬ、ｐＨ８）を入れた。その混合液を４０℃で連続的に撹拌し、Ｎｏｖｏｚｙｍ（登録商標）４３５（３２０ｍｇ）を添加した。４０℃で４３時間撹拌し続け、２Ｍ ＮａＯＨ溶液を添加してｐＨを８に維持した。反応液のサンプルをＧＣで分析して出発物質が５％未満しか残っていないことを確認した。反応混合液を濾過して酵素を除去し、濾液をトルエン（２０ｍＬ）で抽出して残った出発物質を除去した。２Ｍ ＨＣｌを用いて水相のｐＨを３．５に再調整し、ＭＴＢＥ５０ｍＬで２回抽出した。抽出物を合わせて、硫酸マグネシウムで乾燥し、減圧濃縮して、３．２ｇ（８６％）の（１Ｓ，２Ｒ）−２−（メトキシカルボニル）シクロヘキサンカルボン酸（３）をｅｅ＝９８％の無色油状物として得た。分離した酵素は、次の基質／バッファバッチとともに再利用するために新品のバッファで洗浄する。
ジャケット付１００ｍＬ容容器にシクロヘキサン−１，２−ジカルボン酸ジメチル（（２）、４ｇ、２０ｍｍｏｌ）と０．１Ｍリン酸カリウムバッファ（３９ｍＬ、ｐＨ８）を入れた。その混合液を４０℃で連続的に撹拌し、Ｎｏｖｏｚｙｍ（登録商標）４３５（３２０ｍｇ）を添加した。４０℃で４３時間撹拌し続け、２Ｍ ＮａＯＨ溶液を添加してｐＨを８に維持した。反応液のサンプルをＧＣで分析して出発物質が５％未満しか残っていないことを確認した。反応混合液を濾過して酵素を除去し、濾液をトルエン（２０ｍＬ）で抽出して残った出発物質を除去した。２Ｍ ＨＣｌを用いて水相のｐＨを３．５に再調整し、ＭＴＢＥ５０ｍＬで２回抽出した。抽出物を合わせて、硫酸マグネシウムで乾燥し、減圧濃縮して、３．２ｇ（８６％）の（１Ｓ，２Ｒ）−２−（メトキシカルボニル）シクロヘキサンカルボン酸（３）をｅｅ＝９８％の無色油状物として得た。分離した酵素は、次の基質／バッファバッチとともに再利用するために新品のバッファで洗浄する。
１Ｈ−ＮＭＲ（ｄ６−ＤＭＳＯ）：１２．１７（ｂｒｓ；１Ｈ），３．５７（ｓ；３Ｈ），２．８２−２．７２（ｍ；２Ｈ），１．９７−１．７９（ｍ；２Ｈ），１．７９−１．５９（ｍ；２Ｈ），１．４８−１．２６（ｍ；４Ｈ）；１３Ｃ−ＮＭＲ（ｄ６−ＤＭＳＯ）：１７４．６１，１７３．６２，５１．１６，４１．６３，２５．９６，２５．６０，２３．３４，２３．１７．
ＧＣ分析条件は以下の通り。Ｃｈｉｒａｓｉｌ Ｄｅｘ−ＣＢ ２５ｍ×０．２５ｍｍカラム；ヘリウムキャリアガス２０ｐｓｉ；オーブンプログラム：１４０℃で３０分間保持した後、５℃／分で２００℃まで昇温し、５分間保持（ランタイム約４７分間）；検出器及びインジェクタ温度２００℃；２−（メトキシカルボニル）シクロヘキサンカルボン酸（１Ｓ，２Ｒ）の保持時間３６．９９分、２−（メトキシカルボニル）シクロヘキサンカルボン酸（１Ｒ，２Ｓ）の保持時間３７．２８分。
実施例２：（３ａＳ，７ａＲ）−ヘキサヒドロイソベンゾフラン−１（３Ｈ）−オン（１）の製造
ジャケット付２５ｍＬ容容器を０℃未満に冷却し、（１Ｓ，２Ｒ）−２−（メトキシカルボニル）シクロヘキサンカルボン酸（（３）、８８０ｍｇ、４．７２ｍｍｏｌ）とトリエチルアミン（６５９μＬ、４．７２ｍｍｏｌ）をＴＨＦ（６．６ｍＬ）に溶解させた溶液を入れた。クロロギ酸エチル（５１２μＬ、４．７２ｍｍｏｌ）のＴＨＦ（１．２ｍＬ）溶液を数分かけてゆっくり添加し、得た混合液を３０分間撹拌した。析出したトリエチルアミン塩酸塩を濾別し、水素化ホウ素ナトリウムを水（４．６ｍＬ）に懸濁した懸濁液に１２℃で濾液を滴下した。滴下終了後、反応混合液をさらに３．５時間２０℃で撹拌した。その後、反応混合液を１０℃未満に冷却し、２Ｍ ＨＣｌ溶液でｐＨ４まで酸性化し、ジクロロメタン１５ｍＬで２回抽出した。有機抽出物を合わせて、硫酸マグネシウムで乾燥し、溶媒を減圧留去して、無色油状物４５０ｍｇを得た。この物質を短行程蒸留により精製して、無色油状物１７０ｍｇをｅｅ＝９８％及び［α］Ｄ ２０＝−３９．３°（ｃ１、メタノール）で得た。
ジャケット付２５ｍＬ容容器を０℃未満に冷却し、（１Ｓ，２Ｒ）−２−（メトキシカルボニル）シクロヘキサンカルボン酸（（３）、８８０ｍｇ、４．７２ｍｍｏｌ）とトリエチルアミン（６５９μＬ、４．７２ｍｍｏｌ）をＴＨＦ（６．６ｍＬ）に溶解させた溶液を入れた。クロロギ酸エチル（５１２μＬ、４．７２ｍｍｏｌ）のＴＨＦ（１．２ｍＬ）溶液を数分かけてゆっくり添加し、得た混合液を３０分間撹拌した。析出したトリエチルアミン塩酸塩を濾別し、水素化ホウ素ナトリウムを水（４．６ｍＬ）に懸濁した懸濁液に１２℃で濾液を滴下した。滴下終了後、反応混合液をさらに３．５時間２０℃で撹拌した。その後、反応混合液を１０℃未満に冷却し、２Ｍ ＨＣｌ溶液でｐＨ４まで酸性化し、ジクロロメタン１５ｍＬで２回抽出した。有機抽出物を合わせて、硫酸マグネシウムで乾燥し、溶媒を減圧留去して、無色油状物４５０ｍｇを得た。この物質を短行程蒸留により精製して、無色油状物１７０ｍｇをｅｅ＝９８％及び［α］Ｄ ２０＝−３９．３°（ｃ１、メタノール）で得た。
比較例：（１Ｒ，２Ｓ）−２−（メトキシカルボニル）シクロヘキサンカルボン酸の製造
３０℃に設定したジャケット付２Ｌ容容器にシクロヘキサン−１，２−ジカルボン酸ジメチル（（２）、８４．６ｇ、０．４２ｍｏｌ）と０．１Ｍリン酸カリウムバッファ（９００ｍＬ、ｐＨ８）を入れた。その混合液を３０℃で連続的に撹拌し、ＰＬＥ（６００ｍｇ、１０２００ユニット）を添加した。混合液を９１時間撹拌し、５Ｍ ＮａＯＨ溶液を添加してｐＨを８に維持した。混合液の一部をＧＣで分析して出発物質が５％未満しか残っていないことを確認した。その後、反応混合液をＣｅｌｉｔｅ（登録商標）ベッドを通して濾過し、濾液をＭＴＢＥ（２５０ｍＬ）で抽出して残った出発物質を除去した。その後、濃ＨＣｌで水相をｐＨ４まで酸性化し、ＭＴＢＥ５００ｍＬで３回抽出した。抽出物を合わせて、硫酸マグネシウムで乾燥し、溶媒を減圧留去して、６９．２８ｇ（収率８８％）の（１Ｒ，２Ｓ）−２−（メトキシカルボニル）シクロヘキサンカルボン酸（４）をｅｅ＝７９％の無色油状物として得た。
３０℃に設定したジャケット付２Ｌ容容器にシクロヘキサン−１，２−ジカルボン酸ジメチル（（２）、８４．６ｇ、０．４２ｍｏｌ）と０．１Ｍリン酸カリウムバッファ（９００ｍＬ、ｐＨ８）を入れた。その混合液を３０℃で連続的に撹拌し、ＰＬＥ（６００ｍｇ、１０２００ユニット）を添加した。混合液を９１時間撹拌し、５Ｍ ＮａＯＨ溶液を添加してｐＨを８に維持した。混合液の一部をＧＣで分析して出発物質が５％未満しか残っていないことを確認した。その後、反応混合液をＣｅｌｉｔｅ（登録商標）ベッドを通して濾過し、濾液をＭＴＢＥ（２５０ｍＬ）で抽出して残った出発物質を除去した。その後、濃ＨＣｌで水相をｐＨ４まで酸性化し、ＭＴＢＥ５００ｍＬで３回抽出した。抽出物を合わせて、硫酸マグネシウムで乾燥し、溶媒を減圧留去して、６９．２８ｇ（収率８８％）の（１Ｒ，２Ｓ）−２−（メトキシカルボニル）シクロヘキサンカルボン酸（４）をｅｅ＝７９％の無色油状物として得た。
以上、本願の特定の実施形態を例証し、説明したが、本開示の趣旨及び範囲を逸脱することなく様々な変更及び改変が可能であることは当業者に明らかであろう。従って、添付の特許請求の範囲では本開示の範囲内のそのようなあらゆる変更及び改変を包含することを意図している。
Claims (8)
- 配列番号３に記載のアミノ酸配列を含む酵素の存在下でシクロヘキサン−１，２−ジカルボン酸ジメチルを加水分解することを含む、（３ａＳ，７ａＲ）−ヘキサヒドロイソベンゾフラン−１（３Ｈ）−オンの製造方法。
- 前記酵素は固定化された形態である、請求項１に記載の製造方法。
- 少なくとも９５％ｅｅの（３ａＳ，７ａＲ）−ヘキサヒドロイソベンゾフラン−１（３Ｈ）−オンを製造する、請求項１または２に記載の製造方法。
- 少なくとも９８％ｅｅの（３ａＳ，７ａＲ）−ヘキサヒドロイソベンゾフラン−１（３Ｈ）−オンを製造する、請求項１〜３のいずれか１項に記載の製造方法。
- 配列番号３に記載のアミノ酸配列を含む酵素の存在下でシクロヘキサン−１，２−ジカルボン酸ジメチルを加水分解することを含む、（１Ｓ，２Ｒ）−２−（メトキシカルボニル）シクロヘキサンカルボン酸の製造方法。
- 前記酵素は固定化された形態である、請求項５に記載の製造方法。
- ９５％ｅｅ以上の（１Ｓ，２Ｒ）−２−（メトキシカルボニル）シクロヘキサンカルボン酸を製造する、請求項５または６に記載の製造方法。
- ９８％ｅｅ以上の（１Ｓ，２Ｒ）−２−（メトキシカルボニル）シクロヘキサンカルボン酸を製造する、請求項５〜７のいずれか１項に記載の製造方法。
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