JP6069480B2 - 複製可能偽型レトロウイルスベクターシステム - Google Patents
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Description
本発明は、ベクターシステムで細胞株をトランスフェクションさせて生産されたレトロウイルスを提供することである。
本発明は、前記レトロウイルスを含む異常増殖細胞標的性遺伝子伝達用の組成物を提供することである。
本発明は、前記異常増殖細胞治療遺伝子で癌治療遺伝子を挿入した前記ベクターシステムで細胞株をトランスフェクションさせて生産されたレトロウイルスを含む癌予防または治療用組成物を提供することである。
また、本発明は、MuLV−Gag遺伝子及びMuLV−Pol遺伝子を含む第1組換え発現ベクターを製造する段階と、GaLV−Env遺伝子を含む第2組換え発現ベクターを製造する段階と、を含む複製可能偽型レトロウイルスベクターシステムの製造方法を提供することである。
以下、本発明を詳しく説明する。
一例として、前記第2組換え発現ベクターとして、MuLV外被タンパク質を含んだベクター(sRCR)と、本発明のGaLV外被糖タンパク質を含むベクター(spRCR)と、を製作して、比較した結果、GaLV−Env遺伝子を含んだ発現ベクターを使う場合、さらに高いウイルス感染率と誘電体伝達効率とを有しうる。
本発明は、前記レトロウイルスを含む異常増殖細胞標的性遺伝子伝達用の組成物を提供する。
前記第2組換え発現ベクターは、その種類において、特に限定されるものではないが、図2の開裂地図のベクターを含みうる。
前記第1組換え発現ベクターまたは第2組換え発現ベクターは、癌細胞標的とする外来遺伝子を挿入し、前記外来遺伝子は、癌治療遺伝子を含みうる。
前記癌治療遺伝子を含む発現ベクターの例としては、図3の開裂地図のベクターを含みうる。
293T(human embryonic kidney)細胞、U−87MG(human glioma)細胞は、10%ウシ胎児血清(Invitrogen)と抗生剤(Invitrogen)とを入れたDulbecco´ミニマムエッセンシャル培地(DMEM、Thermo Hyclone)で培養した。あらゆる実験で、細胞は、細胞培養容器(100mm dish、6well plate)に5% CO2培養器で培養され、細胞頻度が70〜80%程度満ちれば、1:5で継代培養した。
マーカー遺伝子、RFPが入っているsRCRgp−RFPベクター(図4、図5参照)を作るために、pRCR(FvGEL199Env)のFvGel199EnvをScaIとPmeIとに切り、pLenti M1.4−momomerRFPベクターのmCMVプロモーターからRFPまで部分をPpuMIとNotIとに切って、非粘着末端連結(blunt end ligation)を行った。
マーカー遺伝子、GFPが入っているspRCRe(GaLV−Env)−GFPベクター(図6参照)を作るために、MFG−eGFP−Puro vectorのgag後のXhoI siteと3‘LTRの前のClaI siteとを切り、pLenti M1.4−eGFPのmCMVからeGFPまでPCRして切り取った位置に貼り付けた(Forward:SalI−PmeI−mCMV、Reverse:ClaI−GFP)。作られたMFG−mCMV−GFP2ベクターのGagとmCMVとの間にGaLV−Env配列を入れるために、MYK−ef1−GaLV−Envを鋳型(template)で両側プライマーいずれもPmeI位置が含まれたプライマーを用いてPCRし、前で作られたベクターをPmeIに切って挿入体(Insert)と結合(ligation)した。
マーカー遺伝子の代わりに、所望の治療遺伝子を入れるために、eGFPをBamHIとClaIとに切り取り、マルチクローニング位置(Multi cloning site)を入れて、spRCR(GaLV−Env)−MCSベクターを作った。
spRCR(GaLV−Env)−MCSにTK遺伝子(図7参照)を入れるために、pSXLC−TK vectorをNcoIとXhoIとに切ってT4 DNAポリメラーゼ(TAKARA)でblunt endを作り、spRCR(GaLV−Env)−MCSをPmeIに切ってCIAP処理後、挿入体と結合した。
sRCRe(MuLV−Env)ベクターを作るために、前で作ったMFG−mCMV−GFP2のmCMV前部をPmeIに切った。Amphotropic MuLV−Env insertを作るために、EQPAM−AmのMuLV−Env部分を前方(forward)、逆方(reverse)2つともPmlI位置を含んだプライマーでPCRして結合した。
sRCR(MuLV−Env)−RFPでTK遺伝子を入れるために、RFPをHpaIに両側を切り、spRCR(GaLV−Env)−TKでHpaI、ClaIにTKを切って非粘着(blunt)に作った後、結合した。
293T細胞をトランスフェクション(transfection)一日前6ウェルプレートに6×105個/wellの細胞を接種した。翌日培地をFBSが入っていないDMEMで1mlずつ取り替えた。細胞培養器にプレート(plate)を再び入れ、2個の1.5mlチューブにそれぞれDMEMを100μl/wellずつ入れた。1つのチューブ(tube)に前記の表にあるDNA(total 1μg)とPLUS reagent(Invitrogen)5μl/well、他の1つには、リポフェクタミン(Invitrogen)3μl/wellを入れ、10秒間ボルテックス(vortex)する。15分間常温で培養した後、リポフェクタミンが入っているチューブの溶液をPLUSが入っているチューブに入れ、再び10秒間ボルテックスした。20分間常温で培養した後、細胞が敷かれているプレートを取り出して208μl/wellを細胞が落ちないようにぽたぽた落とした。細胞培養器に入れた後、4時間後で細胞培地を除去し、3% FBSが入っているDMEMを気をつけて入れた。動物実験に使われるウイルスは、FBSを添加しなかった。48時間後、培地を収穫してチューブに集めた。ウイルス濃縮と精製とのために、Amicon 100K(Millipore)に収穫したウイルスを入れ、4℃で3,000rpmで10×になるまで遠心分離(centrifugation)した。1.5mlチューブに作った日付を表示し、100μlずつ分周して、−80℃に保管した。
ウイルス定量のために、リアルタイムPCRのためのレトロウイルス力価セット(Retrovirus Titer Set for Realtime PCR、TaKaRa)を利用した。このキット(kit)のプライマーは、MuLVパッキング信号部分(packaging signal region)を認識し、SYBR GreenIをマーカープローブ(marker probe)で有している。ウイルスをトランスフェクション時、過量のDNAを使うので、これを除去するために、次のようにDNaseI過程[総25μl(Virus Supernatant 12.5μl、10×DNase Buffer 2.5μl、DNase(5U/μl)2.0μl、RNase Inhibitor(40U/μl)0.5μl、RNase−Free Water 7.5μl);37℃、30分/70℃、10分]を経た。
Kitに入っているRNA対照群鋳型(Control Template)で一連に希釈(serial dilution)して、基準サンプル(standard sample)を準備した(103、104、105、106、107、108copies/μl)。次のようにリアルタイム(real time)PCRを行った[総25μl(2×One Step SYBR RT−PCR BufferIII 12.5μl、TaKara Ex Taq HS(5u/μl)0.5μl、PrimeScript RT Enzyme MixII 0.5μl、Forwaard Titer Primer FRT−1(10pmol/μl)0.5μl、Reverse Titer Primer FRT−1(10pmol/μl)0.5μl、Virus supernatantまたはstandard sample 2μl、RNase−Free Water 8.5μl;Reverse transcription、42℃、5分/95℃、10秒;PCR、40cycle、95℃、5秒/60℃ 30秒;Dissociation、95℃、15秒/60℃、30秒/95℃、15秒]。
基準カーブ(Standard curve)を、そして、サンプル(sample)値を計算した。
既存に使うMuLVに基づいたRCRベクターは、1つのベクターでGag−Pol、MuLV−Env、そして、その後で、レポーター遺伝子(または、治療遺伝子)が発現するものであった。しかし、本研究で使われたセミ−複製可能偽型レトロウイルス(semi−pseudotyped replication competent retrovirus;spRCR)は、Gag−PolとGaLV−Env、レポーター遺伝子(または、治療遺伝子)が2つのベクターで分けて発現される。sRCRgpベクターは、Gag−Pol遺伝子を発現し、RFPで細胞内発現を確認することができる。sRCRe(MuLV−Env)、spRCRe(GaLV−Env)ベクターは、それぞれMuLV−Env、GaLV−Envが発現され、GFPで確認することができる(図8)。
ウイルスは、2つのベクターを293T細胞に一時的トランスフェクト(transient transfect)もさせて、上層培地を通じて生産された。このウイルスでquantitative real time PCRを行って、ゲノムコピー(genomic copy)を算出した。2.5×107、1.5×106gc(0.01MOI、0.0005MOI)のspRCR−FLとsRCR−FLとをU−87MG細胞に感染させて、2〜3日ごとに継代培養する前に蛍光写真を撮り、培養し、残った細胞は、FACS分析を行った。FACSデータによれば、まず、高い力価(genome copy、gc)を感染させた時を見れば、感染速度や蛍光強度がspRCR(GaLV−Env)がsRCR(MuLV−Env)よりも比較的高かった。感染後、12日目のsRCR(MuLV−Env)は、まだ80%線に留まっている一方、spRCR(GaLV−Env)は、ほぼ100%の感染率に行っていた(図9〜図12)。低い力価で感染させれば、spRCR(GaLV−Env)とsRCR(MuLV−Env)との感染速度差がさらに顕著であった。低い力価で感染させた時の初期感染速度は、2つとも遅れるが、感染後、20日になった時、sRCR(MuLV−Env)は、2%しか感染されない一方、spRCR(GaLV−Env)は、94%まで占有されていた(図13〜図16)。
レポーター遺伝子を発現するEnvベクターでGFP遺伝子を除去し、治療遺伝子であるチミジンキナーゼ遺伝子をクローニングした(図17)。spRCR−TKベクターで実際にTKタンパク質が発現されるかを確認するために、ウェスタンブロッティング(western blotting)を行った。
図18で示すように、何らの処理もしていないA549細胞では、バンドが出ず、TK遺伝子を発現するspRCR−TK、sRCR−TK、pRCR−TKを感染させた細胞やトランスタクション(transduction)させた細胞では、バンドを観察することができた。
実験室(In vitro)でspRCR−TKに感染された細胞がGCVを処理した時、ある程度の細胞毒性を示すかを測定するために、MTTアッセイを行った。まず、EnvベクターのGFPの代わりに、治療遺伝子であるTKが入ったベクターを作って、293T細胞にGag−polベクターと共にトランスフェクションさせて、spRCR−TKを作った。U−87MG細胞に、これらウイルスを感染させて、14日間保持させた後、96ウェルプレートに感染させた細胞と感染させていない細胞とを接種した。翌日GCVの濃度を0、10、20、30、40、50、60、70μg/mlに漸次的に増やして処理した。GCVを処理した期間を1、2、3、4日に分けて、その度にMTTアッセイを進行した。
GCV 10μg/mlの濃度処理一日目、sRCR−TKに感染された細胞でGCV処理一日のみ細胞数が40%減少し、spRCR−TKに感染された細胞では、60%減少した。正常細胞では、GCV 70μg/mlの濃度から細胞毒性を表わした(図19、図20)。
spRCR−FL、sRCR−FLが、実際ヌードマウスの癌組織で広がる態様を調べるために、ヌードマウス脳の線条体に3×105 U−87MG細胞を植えた。癌移植7日後、1.5×107gc(≒104 TU)/10μlウイルスベクターが癌に注入(injection)させた。ウイルス注入後、18日後、癌組織を蛍光顕微鏡で観察した。
正常細胞と癌細胞とを境界にして鮮明に癌細胞にのみ蛍光が観察され、脳(brain)のどちらでもウイルスの感染された所はなかった。sRCR−FL感染された癌細胞では、蛍光強度も非常に弱く、ウイルスが局所的に感染されている一方、spRCR−FLが感染された細胞では、ウイルスが癌細胞の形状に全体的に鮮明に発現された(図21)。
前記のような方法でヌードマウスの線条体にU−87MG細胞を移植した。一週間後、1.5×107gc(≒104 TU)/10μlのspRCR−TKと10μl PBS(control)とを癌内注入(intratumoral injection)した。癌細胞移植後、21日後から51日までPBSまたはGCV(100mg/kg)を腹腔注射した。
対照群のマウス(N=13)は、癌移植後、40日前後でいずれも死亡し、治療群のマウス(N=21)は、毎日100mg/kg GCV注射を受け、観察を終了した癌移植後、70日までいずれも生存しているだけではなく、体重も正常に保持した(図22)。
6週齢、雌ヌードマウスの線条体に3×105個のU−87MG細胞を移植してから7日後、107gc spRCR−FLベクターを腫瘍内注入する。注入後、7日後、マウスを貫流(perfusion)し、癌(tumor)横の正常な脳、腫瘍(tumor)、心臓、肺、肝、腎臓、脾臓、腸、卵巣、骨髄(bone marrow)、手術部位の皮膚を滅菌された条件で取り外した。組織フリーキット(Tissue prep kit、GeneAll)でゲノムDNAをprepした。
Quantitative PCRのために、表5のようにプライマー(primer)をデザインした。
CFX real time PCR C1000 Thermo(Bio−Rad)で95℃で3分、95℃で20秒、58℃で60秒で40サイクル(cycle)反応を進行し、反応終了後、データを分析した。
前記と同じ組織の一般PCR遂行のために、0.5μgサンプルDNA、0.5μM各プライマー(each primer)、5units TaKaRa Ex Taqポリメラーゼを20μl準備し、30サイクル、94℃1分、60℃30秒、72℃1分PCRした。ベクターのpolとGFPとを認識するプライマーを用いた。生産物のサイズは、3.5kbであり、プライマー配列は、表6のようである。
正常脳、脳腫瘍、心臓、肺、肝、腎臓、脾臓、腸、卵巣、骨髄、手術部位の皮膚でのゲノムDNAを抜き出して、qPCRとPCR分析を行った結果、腫瘍組織でのみGFP配列が確認され、他のあらゆる組織では、GFP配列が確認されなかった(図23〜図25)。
前記のような方法でヌードマウスの線条体にU−87MG細胞を移植した。(n=6)一週間後、1.5×107gc(≒104 TU)/10μlの比較群spRCRe−TK(複製不能)または複製可能spRCR−TKウイルスを癌組織内に注入(intratumoral injection)した。ウイルスを注入した後、3、7、10、14、17日に、次のようにPET−CT撮影を行った。[18F]FHBGをマウス一匹当たり500μCi/50μlをしっぽ静脈(tail vein;i.v.)注入した後、1時間後で、animal PET−CT(eXplore VISTA CT、GE)を撮影する過程に進められた。CTの撮影条件は、250μA、40KAであり、PET撮影は、5分間映像を得た後、2D OSEM再構造(reconstruction)過程を経て完成することができた。このように得られた映像は、Osirix imagingソフトウェア(The Osirix Foundation,Geneva,Switzerland)を使って分析及び具現した(図26)。
図26に表われたように、複製不能ウイルスの場合、癌組織への拡散がほとんど起こっていない一方に、複製可能spRCR−TKウイルスは、非常に効率的に癌組織内での拡散が起こるということが分かった。
Claims (14)
- MuLV−Gag遺伝子及びMuLV−Pol遺伝子を含む第1組換え発現ベクターと、
GaLV−Env遺伝子を含む第2組換え発現ベクターと、
を含む複製可能偽型レトロウイルスベクターシステムであって、
前記第1組換え発現ベクターは、図1の開裂地図のベクターであり、かつ、
前記第2組換え発現ベクターは、図2の開裂地図のベクターである
複製可能偽型レトロウイルスベクターシステム。 - 前記第1組換え発現ベクターまたは第2組換え発現ベクターは、異常増殖細胞治療遺伝子を含む請求項1に記載の複製可能偽型レトロウイルスベクターシステム。
- 前記第2組換え発現ベクターは、図3の開裂地図のベクターである請求項2に記載の複製可能偽型レトロウイルスベクターシステム。
- 請求項1ないし請求項3のうち何れか一項に記載の複製可能偽型レトロウイルスベクターシステムを含む異常増殖細胞標的性遺伝子伝達用の組成物。
- 前記異常増殖細胞は、癌細胞である請求項4に記載の異常増殖細胞標的性遺伝子伝達用の組成物。
- 前記癌細胞は、粘液状細胞癌腫、丸い細胞癌腫、局所的進行腫瘍、転移性癌、ユーイング肉腫、癌転移、リンパ性転移、扁平上皮細胞癌腫、食道扁平上皮細胞癌腫、経口癌腫、多発性骨髄腫、急性リンパ球性白血病、急性非リンパ球性白血病、慢性リンパ球白血病、慢性骨髄球白血病、毛様細胞性白血病、流出リンパ腫(体腔系リンパ腫)、胸腺リンパ腫肺癌、小細胞肺癌腫、皮膚T細胞リンパ腫、ホジキンリンパ腫、非ホジキンリンパ腫、副腎皮質癌、ACTH生成腫瘍、非小細胞肺癌、乳房癌、小細胞癌腫、導管癌腫、胃癌、結腸癌、結腸直腸癌、結腸直腸腫瘍の形成と関連した茸腫、膵臓癌、肝癌、膀胱癌、1次表面膀胱腫瘍、膀胱の侵襲性転移細胞膀胱癌腫、筋浸潤性膀胱癌、前立腺癌、大腸癌、腎臓癌、肝癌、食道癌、卵巣癌腫、子宮頸部癌、子宮内膜癌、絨毛癌、卵巣癌、原発性腹膜上皮新生物、子宮頸管癌腫、膣癌、外陰部癌、子宮癌、卵胞中の固形腫瘍、睾丸癌、陰茎癌、腎臓細胞癌腫、脳癌、頭頸部癌、口頸部癌、神経芽細胞腫、脳幹神経膠腫、神経膠腫、中枢神経系中の転移性腫瘍細胞浸潤、骨腫、骨肉種、悪性黒色腫、ヒト皮膚ケラチノサイトの腫瘍進行、扁平上皮細胞癌腫、甲状腺癌、網膜芽腫、神経芽細胞腫、中皮腫、ウィルムス腫瘍、胆嚢癌、栄養芽細胞腫瘍、血管周囲細胞腫、またはカポジ肉腫由来の細胞である請求項5に記載の異常増殖細胞標的性遺伝子伝達用の組成物。
- 前記異常増殖細胞は、炎症性疾患または異常増殖血管疾患由来の非癌性異常増殖細胞である請求項4に記載の異常増殖細胞標的性遺伝子伝達用の組成物。
- 前記炎症性疾患由来の非癌性異常増殖細胞は、炎症−誘導骨疾患、退行性関節炎、糖尿病、自己免疫筋肉炎、動脈硬化、脳卒中、肝硬化、脳膜炎、炎症性胃潰瘍、胆嚢結石、腎臓結石、副鼻腔炎、鼻炎、結膜炎、喘息、皮膚炎、炎症性腸疾患、炎症性コラーゲン血管疾患、糸球体腎炎、炎症性皮膚疾患、リウマチ関節炎、全身性紅斑性ループス、強直性脊椎炎、ベーチェット病、潰瘍性大腸炎、クローン病、乾癬、アトピー性皮膚炎、接触性皮膚炎、湿疹性皮膚炎、脂漏性皮膚炎、扁平苔癬、慢性単純苔癬、天疱瘡、ブルース天疱瘡、表皮水泡症、蕁麻疹、血管浮腫、脈管炎、紅斑、皮膚好酸球増多、貨幣状皮膚炎、全身性剥脱皮膚炎、うっ滞性皮膚炎、皮脂腺の疾患、口周囲皮膚炎、ひげ仮性毛嚢炎、薬物発疹、多形紅斑、結節性紅斑、環状肉芽腫、または骨盤炎症性疾患(PID)由来の異常増殖細胞である請求項7に記載の異常増殖細胞標的性遺伝子伝達用の組成物。
- 前記異常増殖血管疾患由来の非癌性異常増殖細胞は、動脈硬化症、アテローム性動脈硬化症、再発狭窄症及び狭窄症、血管奇形、血液透析と関連した血管通路狭窄、移植後動脈病症、脈管炎、血管炎症疾患、ディジョージ症侯群、遺伝性出血性毛細管拡張症(HHT)、ケロイド性瘢痕、水泡疾患、過増殖性硝子体症侯群、未熟児網膜症、脈絡膜新生血管、黄斑変性、糖尿病性網膜症、眼内新生血管増殖、原発性肺高血圧症、喘息、鼻ポリープ、炎症性腸及び歯周疾患、子宮内膜症、卵巣嚢、卵巣過剰刺激症候群、関節炎、リウマチ性関節炎、慢性関節リウマチ、潤滑膜炎、骨関節炎、骨髄炎、骨増殖、敗血症、または血管漏出症侯群由来の異常増殖細胞である請求項7に記載の異常増殖細胞標的性遺伝子伝達用の組成物。
- 異常増殖細胞治療遺伝子、例えば、癌細胞治療遺伝子を挿入した請求項2に記載の複製可能偽型レトロウイルスベクターシステムを含む癌予防または治療用組成物。
- 前記癌治療遺伝子は、細胞自殺遺伝子、細胞死滅誘導遺伝子、免疫遺伝子、新生血管形成抑制遺伝子、及び癌細胞を死滅させることができる遺伝子沈黙(RNAi)を誘導するshRNA、miRNAまたはsiRNAを発現する塩基配列からなる群から選択された1つ以上を含む請求項10に記載の癌予防または治療用組成物。
- 前記細胞自殺遺伝子は、前駆体薬物を活性化させる請求項11に記載の癌予防または治療用組成物。
- 前記細胞自殺遺伝子は、ヘルペスシンプレックスウイルスのチミジンキナーゼであり、前駆体薬物であるGCVを活性化させる請求項12に記載の癌予防または治療用組成物。
- MuLV−Gag遺伝子及びMuLV−Pol遺伝子を含む第1組換え発現ベクターを製造する段階と、
GaLV−Env遺伝子を含む第2組換え発現ベクターを製造する段階と、を含む複製可能偽型レトロウイルスベクターシステムの製造方法であって、
前記第1組換え発現ベクターは、図1の開裂地図のベクターであり、かつ、
前記第2組換え発現ベクターは、図2の開裂地図のベクターである複製可能偽型レトロウイルスベクターシステムの製造方法。
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