JP6008740B2 - 変更されたFabシアル酸付加を有する抗体組成物 - Google Patents
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Description
免疫グロブリン(抗体としても知られる)は、免疫系の主要な分泌産物である。それらは典型的に基本的な構造単位から形成され−それぞれが2つの重鎖及び2つの軽鎖を含む−上記単位を1つ含むモノマー、2つの単位を含むダイマー、5つの単位を含むペンタマー、又は6つの単位を含むヘキサマーを形成する。抗体は先天免疫において重要な役割を果たす。病原体に対する天然の免疫応答において、病原体と抗体との間で複合体が形成される。これらの免疫複合体は、広範囲のエフェクター機能を活性化し、それ故病原体の殺傷、除去及び破壊をもたらす。抗体はまた身体自身の抗原とも反応し得、これにより自己免疫疾患をもたらし得、そして慢性炎症性症状に寄与し得る。抗体は、例えば炎症カスケードにおける種々のメディエーターを標的化及び中和することにより、抗炎症活性を有し得る。
従って本発明の一実施態様は、抗体調製物からの濃縮により得られる抗体集団であり、ここで濃縮された抗体集団は、濃縮前の抗体調製物と比較して抗体のFab領域において変更された量のシアル酸付加を有し、そしてFab領域における変更されたシアル酸付加に基づく濃縮により、濃縮前の抗体調製物と比較した場合に濃縮された集団の免疫調節特性が変更されている抗体の集団が生じたものである。
(a) 抗体調製物を、抗体のシアル酸付加されたFab領域に対する親和性を用いるアフィニティークロマトグラフィーにかける工程;
(b−i) 工程(a)において結合していない抗体集団を収集する工程;[ここで該抗体集団は、濃縮前の抗体調製物と比較して抗体のFab領域においてより少ない量のシアリル酸を有する(−SAフラクション)];及び/又は
(b−ii) 工程(a)において結合している抗体集団を溶離して収集する工程、[ここで該抗体集団(+SAフラクション)は、濃縮前の抗体調製物と比較して抗体のFab領域においてより多い量のシアリル酸を有する]、
を含み、
ここでFab領域におけるシアル酸付加の変更された量に基づく濃縮により、濃縮前の抗体調製物と比較した場合に、変更された免疫調節特性を有する抗体の集団が生じたものである、方法である。
本発明は、抗体調製物から濃縮された抗体集団に関し、ここで濃縮された抗体集団は、濃縮前の抗体調製物と比較して抗体のFab領域において変更された量のシアル酸付加を有する。好ましくは、抗体集団は、抗体調製物からの濃縮により得ることができ、ここで濃縮された抗体集団は、濃縮前の抗体調製物と比較して抗体のFab領域において変更された量のシアル酸付加を有し、そしてFab領域における変更されたシアル酸付加に基づく濃縮により、濃縮前の抗体調製物と比較した場合に、濃縮された集団の免疫調節特性が変更されている抗体の集団が生じたものである。
ここでFab領域におけるシアル酸付加の変更された量に基づく濃縮により、濃縮前の抗体調製物と比較した場合に、変更された免疫調節特性を有する抗体の集団が生じたものである。好ましくは、工程(a)におけるアフィニティークロマトグラフィーは、セイヨウニワトコ凝集素を用いる。好ましい実施態様において、−SAフラクション又は+SAフラクションのFc部分におけるシアル酸付加は、糖ペプチドの総量のうちシアル酸付加された糖ペプチドの%を測定した場合に、抗体調製物におけるFcシアル酸付加と、100%(2倍)未満、好ましくは50%未満、より好ましくは30%未満、最も好ましくは20%未満だけ異なる。
100ml tris緩衝化食塩水(TBS)(0.1mM CaCl2、pH 9−10)中の1g IVIGを100ml セイヨウニワトコ凝集素(SNA)カラムで1時間再循環させた。100ml TBS/CaCl2洗浄液と一緒にフロースルーを集めた。TBS 2X 200mlで洗浄した後、SNAカラムに結合したフラクション(+SA IVIG)を0.2M酢酸中0.5Mラクトース200mlで溶離した。二度目のフロースルーフラクションをカラムに流して−SA IVIGを得た(図1)。
シアル酸を酸性加水分解により放出させて、1,2−ジアミノ−4,5−メチレンジオキシベンゼン二塩酸塩(DMB)を用いて誘導体化を行った。定量はN−アセチルノイラミン酸(Neu5Ac)を標準として使用する逆相高速液体クロマトグラフィー(RP−HPLC)で行い、そしてIgGあたりのシアル酸(質量/質量又はMol/Mol)で表した。
分離前後のIVIGのグリコシル化プロフィールを調べるために、典型的なIVIG調製物のFc領域由来のトリプシン糖ペプチドを同定してプロファイリングし、そしてIVIGの総N−グリカン集団をグリカン放出及び分析によりプロファイリングした。
(a) ペプチドマッピングによるIgG1及びIgG2/3 Fcグリカンプロフィールの決定
IVIGサンプルを、トリプシン消化後に液体クロマトグラフィー−質量分析(LC−MS)により分析して、IgG1及びIgG2/3 Fc領域に特異的なグリカンプロフィールを決定した。IgG2 Fc領域についてモニタリングした糖ペプチドはIgG3 Fc領域にも見出され得、そのためこれらをIgG2/3と呼ぶ。血清中のIgGサブクラスの既知の相対的存在量に基づいて、IgG2/3ペプチドについて見られるシグナルの大部分はIgG2分子起源であると予想される。変性、還元(グアニジン−HCl及びDTTと共に加熱)及びアルキル化(ヨードアセトアミドを用いる)の後に、1:50の酵素対基質比を使用してトリプシン消化した。トリプシンペプチドを単離し、そしてC18固相抽出(SPE)スピンカラムで精製し、そして真空下でチューブ中にて乾燥した。LC−MS分析を、ペプチド分離にAgilent Proshell 300SB−C18カラムを使用するAgilent Q−TOFシステムで行った。クロマトグラムを抽出し、そして[M+2H]2+及び[M+3H]3+シグナルを合計し、そして推定構造の計算されたモノアイソトピック質量を使用して各IgG1及びIgG2/3糖ペプチドについて統合した。データを分析し、そしてAgilent MassHunterソフトウェア、バージョンB.02.00(Huddleston et al.Anal Chem 65,877,1993)を使用して処理した。
トリプシン消化物のLC−MS分析は複雑なクロマトグラムを生じた。有効な糖ペプチドを同定するために、IgGサブクラス1〜4について重鎖定常領域の配列をEntrezタンパク質データベースから得た(それぞれ受入番号12054072、12054074、12054076及び12054078)。配列をインシリコで消化した。表1に列挙されるペプチドを、N−連結グリコシル化コンセンサス配列の存在により有効な糖ペプチドと同定した。これらのペプチドの理論的質量を共通のIgGグリカンG0Fと結びつけて、予測[M+3H]3+イオンも計算した。
サンプルを以下のように分析して全体的なグリカンプロフィールを決定した。各サンプル250μgから誘導された乾燥トリプシンペプチドを50μL 100mM NH4HCO3で再構成し、そして250U N−グリコシダーゼF(PNGase F)と共に37℃で終夜インキュベートした。二回目のC18 SPE精製を行い、脱グリコシルしたトリプシンペプチドを放出されたグリカンから分離した。放出されたグリカンを、塩基性水素化ホウ素ナトリウム溶液を使用して、終夜45℃でインキュベートしてアルジトールに変換した。残りのボロハイドライドの分解後、グリカンアルジトールをDowex 50 WX4−400イオン交換樹脂スピンカラムで脱塩して乾燥した。残りのホウ酸を除去するためにメタノール中1%酢酸の添加及びエバポレーションを繰り返した。グリカンアルジトールを出発移動相(10mM NH4HCO3)で再構成し、そしてネガティブモードでLC−MSで繰り返して分析した。10mM NH4HCO3/アセトニトリル移動相系を使用する黒鉛化カーボン高速(high)HPLCカラムでグリカン分離を行った。クロマトグラムを抽出して、各グリカンについて統合した。グリカンアルジトールの[M−1H]1−、[M−2H]2−、及び[M−3H]3−シグナルからのシグナルを合計した。グリカンアルジトールの製造及び分析は、以前に報告された研究と同様である(Karlsson et al.Rapid Commun Mass Spectrom 18,2282,2004)。
Fcにおけるシアル酸付加のレベルは、IVIG及び−SA IVIGに比べて+SA
IVIGではあまり高くなかった。図2に示されるように、Fc領域における全ての糖ペプチドのうちシアル酸付加された糖ペプチドの%は20%未満(すなわち、全てのペプチドの10.3%〜12.1%)しか変わらなかった。他方で、全てのN−グリカンのシアル酸付加レベル(Fab領域及びFc領域におけるシアル酸付加を含む)は、+SA IVIGフラクションにおいて有意に高く(図2):ほとんど70%(すなわち、全てのグリカンの50.0%から84.5%)増加している。これらの結果に基づいて、それぞれより高い、より低いシアル酸付加レベルは、IVIGのFab領域における異なるシアル酸付加に主に起因すると結論づけることができる。
シアル酸付加されたFcの結合親和性に対する、レクチンアフィニティークロマトグラフィーにおいて適用される異なるpH条件の効果を比較するために、IVIGをパパインで消化した(パパイヤ(papay)ラテックス、0.7U/mg IgG 2時間37℃)。Fcフラグメントを、プロテインA、サイズ排除クロマトグラフィー(SEC)及びタンパク質Lを使用して(例えばCurrent protocols in Immunology:Unit 2.7及び2.8(Andrew et al) John Wiley and Sons (1997)に記載されるように)精製した。IVIGから生じたFcフラグメントをSNAカラムにロードして、pH7.5又はpH9.5のいずれかのTBSを使用したことを除いて上記のような方法を使用して分離した。得られたフラクションの等しいアリコートをSDS page(Nupage 10% BisTris Gels)を用いて分離し、そしてニトロセルロースにブロットし、これらのブロットをビオチン−SNA及びAP−ストレプトアビジンでプローブし、そして発色基質で可視化した(図3)。
F(ab')2はIVIGのペプシン消化により製造した。酢酸緩衝液中pH4.0で2時間37℃にてペプシン(0.5mg/g IVIG)を用いてIVIGを消化した。pH8に達するまで2M Tris塩基を加えることにより反応を停止させた。濃縮及び低分子消化生成物からの精製、そしてPBSへの緩衝液交換をCentricon(30’000 Mwカットオフ)を使用して(例えばCurrent protocols in Immunology:Unit 2.7及び2.8(Andrew et al) John Wiley and Sons (1997)に記載されるように)行った。シアル酸が濃縮及び減少されたF(ab')2をレクチンアフィニティークロマトグラフィーによりSNA−アガロースを使用して製造した。F(ab’)2(12ml TBS(0.1mM CaCl2、pH 9.5)中80mg)を1時間SNA−アガロース12mlにロードした。フロースルーフラクションを集めて−SA F(ab')2と名付けた。TBS 24mlで2回洗浄した後、+SA F(ab')2フラクションを0.2M酢酸中0.5Mラクトース24mlで溶離した。
16の異なるグリカン種の相対的な定量を、グリカン放出及びアルジトールへの変換後のサンプルについて行った。一般に、レクチンに結合したフラクションは、分画していないサンプルと比較して、非シアル酸付加グリカンの減少及びシアル酸付加グリカンの増加を示す。逆に、非結合フラクションは分画していないサンプルよりも、シアル酸付加グリカンが低く非シアル酸付加グリカンが高かった。レクチンに結合したF(ab')2は非シアル酸付加グリカンをほとんど含まない(図4、図5B及びC)。
IVIG由来のF(ab')2フラグメントから製造された+/−SAフラクションの特徴付けにより、レクチンベースの分離におけるFabシアル酸付加の寄与に取り組んだ。+SA F(ab')2において、より多い相対量のシアル酸付加N−グリカンがLC−MS分析で観察され、そしてより高い量の総シアル酸が、HPLCで酸放出シアル酸を定量した場合に検出された(図5B及びC)。抗B19ウイルス力価の差は、+SA 対 −SA F(ab')2フラクションが異なる抗原認識パターンを有するということを示す(図5A)。
サイトメガロウイルス(CMV)、破傷風毒素(TetTox)、B19ウイルス(B19V)、風疹及び麻疹に対する特異的抗体の分布を市販のELISAキットを使用して測定した(図6A)。ウサギ、ヒツジ及びヒトの赤血球に対する結合を、蛍光標識及び抗ヒトIgG二次抗体を使用してFACS分析により測定した。
アテローム性動脈硬化症は、先天性及び適応性の両方の免疫炎症(immunoinflammatory)機序が関与する動脈壁の慢性疾患である。炎症はアテローム性動脈硬化症の全ての段階において中心的である。これは初期の脂肪線条の形成に関与し、このときに内皮が活性化され、そしてケモカイン及び接着分子を発現させ、単球/リンパ球の動員、そして内皮下層への浸潤をもたらす。これは有害な臨床的血管事象の発生時も作用し、このときプラーク内の活性化された細胞はマトリックスプロアーゼを分泌し、これが細胞外マトリックスタンパク質を分解し、線維性被膜を弱らせ、そして破断及び血栓形成をもたらす。疾患の進行は、酸化されたリポタンパク質に対する自己抗体の形成並びに循環するサイトカイン及び炎症マーカーの増加に関連する。
ポリクローナル免疫グロブリン調製物(IVIG)はアテローム性動脈硬化を抑制する(Nicoletti,Clin.Invest.102:910−918,1998)。コレステロール誘導アテローム性動脈硬化症の遺伝モデルであるアポリポタンパク質Eノックアウト(ApoE KO)マウスで実証が行われており、ここでは先天性及び適応性の両方の免疫が中心的な役割を果たす。7週齢雄性apo EノックアウトマウスにIVIGを5日間の間注射すると、2ヶ月間のコレステロール食の間に脂肪線条形成を35%減少させることが示された。4ヶ月間の食事処理により誘導された繊維脂肪性病変は、その食事の2ヶ月後にIVIGを与えることにより50%減少した。これらの結果はいくつかのグループによって確認及び再検討されたが、IVIGがアテローム保護(atheroprotection)をもたらす正確な機序は大部分理解されないままである。
実施例1において上で記載されたように得られたIVIGの3つの調製物を使用した:全IVIG(total IVIG)(「全IVIG(IVIG total)」)、シアル酸濃縮IVIGフラクション(「IVIG+SA」)及びシアル酸減少IVIGフラクション(「IVIG−SA」)。これらの調製物を10mg/マウス/注射の用量で腹腔内注射した。マウス(6−7週齢)に連続して5日間注射を行った。コントロールマウスには食塩水を注射した(「PBS」)。合計で、ApoE KOマウス1グループあたり10匹のマウスが含まれる(n=10/グループ)。マウスを最初の注射の2ヶ月後に屠殺した。注射された製品のいずれかに応じたマウスの異常の反応は見られなかった。
アテローム性動脈硬化の発達を大動脈根でのレベルで評価した。大動脈の総表面積には統計学的な差は無く、IVIG注射は主要な血管リモデリングを誘導しなかったということを示した。しかし、IVIG調製物で処置されたマウスにおいて病変サイズは有意に減少した。全IVIG及びIVIG+SAは、これらのマウスグループにおいて病変密度の平均25%の減少を伴う同様の保護をもたらした。より少ないシアル酸付加のIVIG(IVIG−SA)調製物を与えられたマウスは、最も保護され、コントロールのサイズの半分の病変であった(図7)。
種々の自己免疫疾患及び神経変性疾患において、炎症状態はこれらの疾患と関連がある。インビトロ細胞培養アッセイにおいて、インビボで観察される炎症状態は、様々なシアル酸が濃縮されたIVIG及び減少したIVIG及びFabフラクションの抗炎症活性について試験するために作られたものである。
U937細胞(ATCC)をATCCにより提供される指示にしたがって培養で増殖させた。細胞をレチノイン酸(0.5μM)及び/又はビタミンDを用いて実験の1日前に分化させた。
ヒト単球の単離及び未熟単球誘導樹状細胞(iMoDC)の分化
末梢血単核細胞(PBMC)を1ドナーの提供全血の細胞部分を含有するバフィーコート(Blutspendedienst SRK,Bern,CH)から密度遠心分離により単離した。バフィーコートをPBSで1/1希釈した。希釈したバフィーコート25mlをFicoll Plaque (GE Healthcare Europe GmbH,Otelfingen,CH)15mlにロードし、そして35分間遠心分離した(室温、400g、停止用ブレーキなし)。PBMCを含有する細胞層を集めてプールした。洗浄(50ml PBSで2回)した後、単球をCD14−MACSビーズ(Miltenyi Biotech GmbH,Bergisch Gladbach,GER)を使用して磁気細胞分離(MACS)により単離した。PBMCの正確な数(10x必要な単球の数)をMACS緩衝液(PBS、0.5%BSA、2mM EDTA)中に取り、そして抗CD14 mAb被覆MACSビーズ(80μl/107 PBMCs;
Miltenyi Biotech GmbH)と共に20分間氷上で(暗所)インキュベートした。MACS緩衝液で洗浄(200gで10分間遠心分離)した後、ビーズで標識した細胞を予備洗浄した(3ml MACS緩衝液)LS MACSカラム(Miltenyi Biotech GmbH)にロードし、洗浄し(3ml MACS緩衝液を用いて3回)、そしてカラムを磁場から外した後5ml MACS緩衝液で洗い流した。PBSで洗浄した後、新しく単離した単球を、10%iFCS(Biochrom AG、Berlin、DE)、10000U/mlペニシリン及びストレプトマイシン(Amimed、BioConcept、Allschwil、CH)及び10mM HEPESを含有するRPMI−1640に入れて24ウェル(0.5x106単球/ウェル(ml))又は48ウェルプレート(0.25x106単球/ウェル(0.5ml))(BD Biosciences)に0.5x106単球/mlの濃度で分配した。単離された単球の純度をC14染色によりFACS分析で評価した。FACS分析の詳細を以下に記載する。
FACS緩衝液(PBS、2%iFCS)50μl中の約60,000〜100,000個の細胞を、すぐに使える(ready−to−use)mAb(抗−CD14、CD11c、CD1a、DC−SIGN、HLA−DR、CD80、CD86、CD83、CD64、CD32及びCD16;全ての抗体はBD Biosciencesの直接標識されたモノクローナル抗体である)1〜2μlを用いて染色し、そして30分間4℃(暗所)でインキュベートした。細胞をPBSで洗浄し、そしてPBS 50μlに入れて350μl 1xBD CellFix(BD Biosciences)で固定し、そして暗所にて4℃で採取するまで貯蔵した。サンプルあたり10,000個の細胞をFACS Caliburを用いて取得し、そしてBD CellQuestソフトウェア(両方ともBD Biosciences)により分析した。
未成熟(i)MoDCを、示されるような様々な量のIVIGフラクションF(ab’)2フラグメントと共に3時間プレインキュベートした。iMoDCを、示されるように0.1〜100μg/ml LPSを用いて刺激した。十分に補充されたRPMI(50ng/ml GM−CSF及び20ng/ml IL−4を含む)中で24ウェルにおいて分化させた0.5x106 iMoDCを、LPSと共に24時間の間37℃、5%CO2でインキュベートした。IC−媒介刺激(成熟化)の分析のために、FACS分析及びサイトカイン測定を行った。それらの細胞をウェルの底からピペット操作により洗い出すことにより採取した。細胞懸濁液を集めて直ぐに氷上で保存した。遠心分離(300g、10分、4℃)後に、上清を集めて後のサイトカイン測定のために−20℃で保存した。細胞をFACS緩衝液(PBS、2%iFCS)50μl中に入れてFACS分析を上記のように行った。2つの共起刺激分子CD80(B7−1)及びCD86(B7−2)の細胞表面発現を測定し、DC特異的成熟マーカーCD83(全て直接標識されたmAb、BD Biosciences)も同様に測定した。
iMoDC刺激実験の細胞培養上清を集めてサイトカイン測定まで−20℃で保存した。IL−12p70、IL−10、IL−6、IL−8、TNF−α及びIL−1βを製造者の指示書にしたがってBecton Dickinson(BD Biosciences)からのヒト炎症性サイトカイン用の細胞数測定ビーズアレイ(Cytometirc Bead Array)(CBA)により測定した。
IVIG+SAの抗炎症効果の評価は、自己免疫モデルで観察することができ、そして原因となる機序を調べることができる。このモデルにおいて、IVIGが調節性T細胞の増殖によりその抗炎症効果を及ぼすということが示された。EAEを使用して、Sial Fc、シアル酸付加F(ab’)2、シアル酸付加されたインタクトなIVIg及びIVIgの間での比較を行った。様々な用量のこれらの調製物を0日目から疾患のピークまで、又は5日目まで投与した。臨床スコア及び生存を測定した。
3であった。
Claims (3)
- 自己免疫疾患又は神経変性疾患の予防又は処置のための、抗体集団を活性成分として含む薬剤であって、当該抗体集団は血漿免疫グロブリンG調製物からの濃縮により得られ得、ここで濃縮された抗体集団は、濃縮前の血漿免疫グロブリンG調製物と比較して、抗体のFab領域において増加した量のシアル酸付加を有し、そしてここでFab領域における増加したシアル酸付加に基づく濃縮の結果、濃縮前の血漿免疫グロブリンG調製物と比較した場合に、濃縮された集団の免疫調節特性が変更されている抗体の集団が生じ、ここでFc部分におけるシアル酸付加の量が30%未満だけ変更されている、上記薬剤。
- 抗体集団が、血漿免疫グロブリンG調製物をセイヨウニワトコ凝集素カラム上のアフィニティークロマトグラフィーにかけること、並びに結合集団を酸性ラクトースを用いて溶離すること(+SAフラクション)により生産され、それにより、+SAフラクションがFab領域において増加した量のシアル酸付加を有し、そしてそれにより、Fab領域において増加した量のシアル酸付加を有するフラクションが、変更された免疫調節特性を有する、請求項1に記載の薬剤。
- 自己免疫疾患又は神経変性疾患が、関節リウマチ、全身性エリテマトーデス(SLE)、抗リン脂質抗体症候群、免疫性血小板減少症(ITP)、川崎病、ギラン・バレー症候群(GBS)、多発性硬化症(MS)、慢性炎症性脱髄性多発ニューロパシー(CIDP)、皮膚水疱疾患、皮膚筋炎、多発性筋炎、アルツハイマー病、パーキンソン病、ダウン症候群に関連するアルツハイマー病、脳アミロイド血管症、レビー小体型認知症、前頭側頭葉変性症及び血管性認知症から選択される、請求項1又は2に記載の薬剤。
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