JP5940538B2

JP5940538B2 - ２，４−ジクロロフェノキシ酢酸に対する抵抗性をもたらす酵素に対するモノクローナル抗体および検出方法

Info

Publication number: JP5940538B2
Application number: JP2013529169A
Authority: JP
Inventors: エンブリー，ショーナ，ケー．; リン，ガオフェン; シャン，グオミン
Original assignee: ダウアグロサイエンシィズエルエルシー
Priority date: 2010-09-15
Filing date: 2011-08-26
Publication date: 2016-06-29
Anticipated expiration: 2031-08-26
Also published as: AR082983A1; AU2011302508A1; KR20130107299A; KR101934542B1; EP2616488A2; CN103209993A; BR112013006146B1; WO2012036870A2; BR112013006146B8; MX337137B; US20120064542A1; WO2012036870A3; CL2013000697A1; EP2616488A4; JP2013541525A; EP2616488B1; US8673583B2; MX2013002867A; BR112013006146A2; CN103209993B

Description

関連出願の相互参照
本出願は、２０１０年９月１５日出願の米国特許仮出願第６１／３８３，０１５号の利益を主張するものであり、すべての図面、表およびアミノ酸または核酸の配列を含むこの開示は、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。

２，４−ジクロロフェノキシ酢酸（２，４−Ｄ）は、フェノキシ酸系除草剤であり、多くの単子葉作物、例えばコーン、コムギおよびコメにおいて、所望の作物に深刻な損害を与えない、広葉雑草の選択防除に使用されている。２，４−Ｄは、正常な細胞ホルモンの恒常性を調節解除し、バランスのとれた、調節された成長を妨害するように作用する合成のオーキシン誘導体であるが、６０年を超えるフィールド適用にもかかわらず、除草剤のこの系の作用の正確な作用様式は未だ完全に理解されていない。トリクロピルおよびフルロキシピル（ｆｌｕｒｏｘｙｐｙｒ）もまた、合成オーキシンとして作用するピリジルオキシ酢酸除草剤である。

これらの除草剤は、特定の植物に対して異なるレベルの選択性を有する（例えば、双子葉植物は単子葉側物より感受性である）。異なる植物による代謝の差異が、選択性のさまざまなレベルに関する１つの説明である。一般に、植物は２，４−Ｄを緩慢に代謝し、それ故２，４−Ｄに対するさまざまな植物の応答は、標的部位における異なる活性により説明される可能性がより高いと思われる（WSSA, 2002; Herbicide Handbook 8^th edition; Weed Science Society of America; Lawrence, KS pp. 492）２，４−Ｄの植物の代謝は、概して、通常水酸化、その後のアミノ酸またはグルコースとの共役の二相の機序を介して起こる（WSSA, 2002）。

時間とともに、２，４−Ｄでチャレンジされた特定の微生物個体群は、２，４−Ｄの完全な無機化をもたらす、この生体異物を分解する代替経路を発達させた。除草剤の連続適用は、除草剤を成長のための炭素源およびエネルギー源として利用できる微生物を選択し、土壌においてそれらに競争上の優位性をもたらす。この理由のため、現在製剤化された２，４−Ｄは、比較的短い土壌半減期を有し、次作物に対して有意な持越し効果を有さない。

２，４−Ｄを分解するその能力に関して幅広く研究されている１つの生物は、ラルストニア・ユートロファ（Ｒａｌｓｔｏｎｉａｅｕｔｒｏｐｈａ）である（Streber et al; 1987; Analysis, cloning, and high-level expression of 2,4-dichlorophenixyacetic monooxygenase gene tfdA of Alcaligenes eutrophus JMP134. J. Bacteriol. 169: 2950-2955）。無機化経路の最初のステップにおいて酵素をコードする遺伝子はｔｆｄＡである。米国特許第６，１５３，４０１号およびＧＥＮＢＡＮＫ受託番号Ｍ１６７３０を参照されたい。ＴｆｄＡ遺伝子産物は、α−ケトグルタレート依存性ジオキシゲナーゼ反応を介した２，４−Ｄのジクロロフェノール（ＤＣＰ）への変換を触媒する（Smejkal; et al.; 2001. Substrate specificity of chlorophenoxyalkanoic acid-degrading bacteria is not dependent upon phylogenetically related tfdA gene types. Biol. Fertil. Sols 33: 507-513）。ＤＣＰは、２，４−Ｄと比較して除草活性をほとんど有さない。ｔｆｄＡは、天然には２，４−Ｄに感受性である双子葉植物、例えば綿花およびタバコなどに２，４−Ｄ抵抗性をもたらすために、トランスジェニック植物に使用されている（Streber; et al.; 1989. Transgenic tobacco plants expressing a bacterial detoxifying enzyme are resistant to 2,4-D. Bio/Technology 7:811-816.)および米国特許第５，６０８，１４７号）。

２，４−Ｄを分解できる酵素をコードする数多くのｔｆｄＡ型遺伝子は、土壌細菌から単離されており、それらの配列はＧｅｎｂａｎｋデータベースに寄託されている。ｔｆｄＡの多数のホモログ（＞８５％のアミノ酸同一性）は、ｔｆｄＡに対して同様の酵素特性を有する。しかし、ｔｆｄＡに対して有意に低い同一性（２５〜５０％）を有し、α−ケトグルタレートジオキシゲナーゼＦｅ^＋２ジオキシゲナーゼに関連する特徴的な残基をさらに有するホモログも多数存在する。したがって、いくつかある生化学的特性の中で、これらの多岐にわたるジオキシゲナーゼの基質特異性が何であるか明らかではない。

ｔｆｄＡに対する低い相同性（２８％アミノ酸同一性）の１つの特有の例は、スフィンゴビウム・ハービシドボランス（Sphingobium herbicidovorans)由来のrdpAである(Kohler, H. P. E. 1999. Sphingobium herbicidovorans MH: a versatile phenoxyalkanoic acid herbicide degrader. J. Ind Microbiol and Biotech. 23: 336-340, Westendorf A., D. Benndorf, R. Muller, W. Babel. 2002. The two enantiospecific dichlorprop/α-ketoglutarate-dioxygenases from Delftia acidovorans MC1-protein and sequence data of RdpA and SdpA., Microbiol. Res. 157: 317-22.）。この酵素は、（Ｒ）−ジクロルプロップ（および他の（Ｒ）−フェノキシプロピオン酸）および２，４−Ｄ（フェノキシ酢酸）の無機化における最初のステップを触媒することが示されている（Westendorf, A., R. H. Muller, and W. Babel. 2003. Purification and characterization of the enantiospecific dioxygenases from Delftia acidovorans MC1 initiating the degradation of phenoxypropionates and phenoxyacetate herbicides. Acta Biotechnol. 23:3-17）。フェノキシプロピオン酸を分解する生物は以前にも記載されているが、この経路の特徴付けはほとんど進展していなかった（Horvath, M., G. Ditzelmuller, M. Lodl, and F. Streichsbier 1990). Isolation and characterization of a 2-(2,4-dichlorophenoxy)propionic acid-degrading soil bacterium. Appl. Microbiol. Biotechnol. 33:213-216.）。ジクロルプロップ分解に対する追加の複雑な要因は、ジクロルプロップの取り込み（Kohler, 1999）および初期酸化（Westendorf et al., 2003）の両方に関連する立体特異性（Ｒ対Ｓ）である。他の微生物におけるｒｄｐＡの異種発現またはこの遺伝子の植物への形質転換は、これまでに報告されていない。文献は主に、アキラルフェノキシ酢酸（例えば２，４−Ｄ）を主に分解する、ｔｆｄＡの密接なホモログに焦点を当てていた。

もともとはデルフチア・アシドボランス（Ｄｅｌｆｔｉａａｃｉｄｏｖｏｒａｎｓ）から単離された酵素をコードする、植物コドン最適化アリールオキシアルカノエート・ジオキシゲナーゼ遺伝子、ＡＡＤ−１は、国際公開第２００５／１０７４３７号において、除草剤抵抗性の形質としての使用に関して最初に記載され、これは本明細書に参照により組み込まれる。この形質は、２，４−Ｄおよびピリジルオキシアセテート除草剤に対する耐性をもたらす。ＡＡＤ−１遺伝子を担持する形質転換されたトウモロコシの最初の報告は、米国特許仮出願第６１／２３５２４８号中にあり、これは本明細書に参照により組み込まれる。

植苗製品に関する組み換えＤＮＡ形質を開発し、市販する会社は、厳格な製品の総合安全管理（ｐｒｏｄｕｃｔｓｔｅｗａｒｄｓｈｉｐ）計画を策定し、実施し、厳守する。これらの安全管理計画は、形質遺伝子移入および種子生産活動を追跡するための、組み換え形質に関する有効な定量的および定性的タンパク質検出方法の使用ならびに形質に関する穀物収穫高のモニタリングを必要とする。これらの検出方法は、ＧＬＰおよび非ＧＬＰ条件下の使用に対して十分に簡易であり、強固でなければならない。さらにこの方法は、畑の農業従事者、サイロにおける穀物取引業者および国境の税関職員により容易に用いられるように十分使いやすく、問題なくなければならない。したがって、強固で、高品質で使いやすいタンパク質検出方法および市販のキットが重要であり、組み換え植物形質製品の発売に必須である。

当分野において免疫アッセイが周知であるが、実験室および現場環境の両方の植物組織のアレイにおいて特定のトランスジェニック産物の検出のために十分再現可能であり、感受性である、強固で有効なＥＬＩＳＡ（酵素結合免疫吸着測定法）法の開発は、簡単でも、日常的でもない。さらにより困難なことは、ＡＡＤ−１トランスジェニック事象の産物を検出するための側方流動ストリップＥＬＩＳＡ法の開発に適切な相補的抗体対を見出すことである。

本発明のモノクローナル抗体を用いたアッセイ系を使用して作製した標準曲線を示す。

本発明は、モノクローナル抗体（ｍＡｂ）のパネルおよび特許請求される抗体を産生するハイブリドーマ細胞系を提供する。ハイブリドーマは、ブダペスト条約の条項に従ってアメリカ合衆国培養細胞系統保存機関（ＡｍｅｒｉｃａｎＴｙｐｅＣｕｌｔｕｒｅＣｏｌｌｅｃｔｉｏｎ）に寄託された。請求項に記載のｍＡｂは、驚いたことに、さまざまな植物および植物組織中の特定のＡＡＤ−１トランスジェニック事象遺伝子産物の検出に非常に適している。本発明は、本発明の特許請求される免疫グロブリンを使用する、定量的および定性的免疫アッセイをさらに提供する。

本発明は、ＡＡＤ−１に反応性の抗体および特許請求されるｍＡｂを産生するハイブリドーマを包含する。下記の表は、ハイブリドーマ系の名称およびそれらの対応するＡＴＣＣ寄託名称を記載する。

本発明はｍＡｂを使用してＡＡＤ−１を単離または検出する方法であって、ａ）前記抗体を表面に固定化するステップ、ｂ）前記固定化された抗体と、ＡＡＤ−１を含有する混合物とを接触させるステップ、ｃ）ＡＡＤ−１と結合した前記固定化された抗体を、前記混合物から分離するステップ、およびｄ）抗体結合ＡＡＤ−１を、前記固定化された抗体から取り外すことによりＡＡＤ−１を回収するステップを含む方法もまた含む。
本発明は特許請求される抗体を使用する、生体試料中のＡＡＤ−１の存在を同定する方法であって、ａ）前記抗体をアッセイ表面に固定化するステップ、ｂ）前記アッセイ表面とＡＡＤ−１を含有するとされる液体とを接触させ、前記アッセイ表面を適切な溶液で洗浄するステップ、ｃ）前記アッセイ表面を、リポーティング基で標識された抗ＡＡＤ−１抗体と接触させ、前記アッセイ表面を適切な溶液で洗浄するステップ、ｄ）前記リポーティング基の存在を検出するステップを含む方法もまた含む。

本発明は、トランスジェニック植物、特にトウモロコシおよび綿花植物において発現されるＡＡＤ−１酵素の定量的決定の分析方法をさらに含む。ＡＡＤ−１タンパク質は、トウモロコシ試料からＰＢＳＴ（０．０５％Ｔｗｅｅｎ（登録商標）−２０を含むリン酸緩衝生理食塩水）溶液により抽出される。抽出液を遠心分離にかけ、水性上清を回収し、希釈する。希釈された試料のアリコートを、酵素コンジュゲート抗ＡＡＤ−１モノクローナル抗体とともに、抗ＡＡＤ−１ポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体によりコーティングされたプレートのウェルにおいて、サンドイッチＥＬＩＳＡフォーマットにおいてインキュベートする。サンドイッチ対中の両方の抗体は、試料中のＡＡＤ−１タンパク質を捕捉する。インキュベーション期間の終わりに、未結合の試薬を、ＰＢＳＴで洗浄することによってプレートから除去する。ＡＡＤ−１の存在は、酵素コンジュゲートを酵素基質とともにインキュベートし、有色生成物を発生させることによって検出される。ＡＡＤ−１は抗体サンドイッチ中に結合されるので、発色のレベルは試料中のＡＡＤ−１の濃度に比例する（すなわち、タンパク質濃度が低いほど発色が低い）。４５０ｎｍにおける吸光度（または標識に依存して４０５ｎｍ）−参照波長（例えば６５０ｎｍ）における吸光度を、プレートリーダーを使用して測定する。較正曲線は、７種の標準濃度から二次回帰方程式を使用して推定される。このＡＡＤ−１ＥＬＩＳＡは、植物組織試料抽出液中のＡＡＤ−１の定量化に特異的であり、十分感受性である。さらに本発明の抗体は、公知のウエスタンブロッティング技術を使用してＡＡＤ−１の存在を確認するために使用できる。

対象となるタンパク質に対するモノクローナル抗体の調製は、当分野において周知である。GalfreおよびMilstein, Methods in Enzymology, Vol. 73, Academic Press, New York(1981年); James W. Goding, Monoclonal Antibodies:Principles and Practice, Academic Press, Orlando, Florida(1986年); Current Protocols in Molecular Biolopy, F. M. Ausubelら編,Wiley Interscience, New York,(1987年)を参照されたい。所与の免疫原に反応性のｍＡｂのスコアをつけることは日常であり得るが、それらを分類し、特定の用途に適切な非常に少ないｍＡｂを見出すことおよびそれらを安定して分泌し、連続培養しやすいハイブリドーマを確保することは困難である。

対象となるタンパク質に反応性の抗体を調製するために、タンパク質はまず濃縮されているか、または精製されていなければならない。相対的に粗製のタンパク質抗原調製物は、免疫化目的に使用できる。しかし、ハイブリドーマがモノクローナル抗体を求めて作製される、または特異血清の抗体力価をアッセイするために作製される場合、正確な決定のためには高度に精製されたタンパク質が必要とされる。

ＡＡＤ−１がひとたび単離されたら、ＡＡＤ−１に特異的な抗体は、当分野において周知の既存の方法により産生され得る。数週間または数ヶ月間にわたる選択された宿主への繰り返し注入は、免疫反応を誘発し、有意な抗ＡＡＤ−１血清力価をもたらし得る。好ましい宿主は哺乳動物種であり、さらにより好ましい種はウサギ、ヤギ、ヒツジおよびマウスである。このような免疫化された動物から採取された血液は、ＡＡＤ−１に反応性の抗血清（ポリクローナル抗体）を得るための確立された方法によって処理されてよい。抗血清はその後、当分野において公知の技術に従ってＡＡＤ−１への吸着により親和性精製されてよい。親和性精製された抗血清は、当分野において公知の手順を使用して、抗血清内の免疫グロブリン分画を単離することによってさらに精製できる。得られた材料は、ＡＡＤ−１に反応性の免疫グロブリンの異種集団であり得る。

抗ＡＡＤ−１ｍＡｂは、精製ＡＡＤ−１を使用して容易に調製される。ｍＡｂを作製する方法は数十年間実践されており、当業者には周知である。アジュバント中のＡＡＤ−１の腹腔内または皮下への繰り返し注入は、大部分の動物、特にマウスにおいて免疫反応を誘発し得る。過免疫化されたＢリンパ球は動物から取り出され、無限に培養可能な適切な融合パートナー細胞系と融合される。多数の哺乳動物細胞系がハイブリドーマの作製に適切な融合パートナーである。多数のこのような系は、ＡＴＣＣおよび商業的供給業者から市販されている。

ひとたび融合されたら、得られたハイブリドーマは選択的成長培地において、１から２週間培養される。２種の周知の選択系が、非融合骨髄腫細胞の除去または混合されたハイブリドーマ培養液由来の骨髄腫細胞間の融合に利用可能である。選択系の選択は、免疫化されるマウスの系統および使用される骨髄腫融合パートナーに依存する。Taggart and Samloff, Science 219, 1228(1982年)により記載されたＡＡＴ選択系を使用できるが、Littlefield, Science145, 709(1964)により記載されたＨＡＴ（ヒポキサンチン、アミノピリテン、チミジン）選択系は、上記のマウス細胞および融合パートナーとのその適合性により好ましい。

使用済みの成長培地はその後、免疫特異性ｍＡｂ分泌に関してスクリーニングされる。酵素結合免疫吸着測定法の手順は、本目的にもっとも適しているが、大容積のスクリーニングに適合させた放射免疫アッセイもまた許容可能である。無関係な、またはあまり望ましくない相当数の培養液を連続して削減するように設計された多重スクリーニングを実施して、本発明のわずかな割合のｍＡｂを単離しなければならない。ＡＡＤ−１に反応性のｍＡｂを分泌する培養液は、市販のキットを使用してアイソタイプ化（ｉｓｏｔｙｐｅｄ）される。

求められる抗ＡＡＤ−１ｍＡｂを分泌するハイブリドーマ培養液は、数回サブクローン化し、単一クローン性および安定性を確立すべきである。真核性の、非接着性細胞培養液をサブクローニングする周知の方法としては、限界希釈法、軟寒天および蛍光標示式細胞分取技術が挙げられる。個々のサブクローニング後、得られた培養液は抗体分泌に関して再アッセイされなければならず、安定した抗体分泌培養液を確保するための再度のアイソタイプ化が確立されている。

特許請求される抗ＡＡＤ−１抗体は、抗体結合部位のいくつかが露出されたままで、ＡＡＤ−１と結合できるように、表面に固定化できる。抗体を固定化するスキームの分類が、過去数十年にわたって開発されてきた。固定化は、抗体を所望の表面へ直接共有結合により、または抗体の表面への架橋により達成できる。

Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ（登録商標）（GE Healthcare Bio-Sciences Corp.; Pistcataway, NJ）などの多糖類ベースのビーズへの抗体のＣＮＢｒおよびカルボジイミドカップリングは、本発明に一致する直接カップリングスキームの例示である。直接カップリングは、任意の特定の様式において一般に抗体に配向していないが、直接カップリングのいくつかの型は、固定化物質上の抗体に再現可能に配向させることができる。

好ましいカップリングスキームは、抗体を、その抗原結合領域が露出されたままであるように配向させる。このようなスキームの１つは、抗体の重鎖上に見出される天然の炭化水素を利用する。まず炭化水素部分を対応するアルデヒドに酸化し、反応アルデヒドをさらにマトリックス表面の第１級アミノ基とさらに相互作用させることによって、抗体を有利な配向で連結できる。

多くの架橋の型が可能であり、抗体を固定化物質に共有結合させる低分子有機リンカーを含む。このようなスペーサーアームは許容可能であり、ひとたび架橋が形成されたらタンパク質と相互作用しないことが好ましい。

上記の考察は本発明の範囲の限定を意味するものでは決してない。抗体を固定化物質に連結する多数の周知のスキームは本発明に一致する。

リポーティング基で標識された抗体が、さまざまな環境中の抗原の存在を同定するために使用できることは周知である。放射性同位元素で標識された抗体は数十年の間、さまざまな生体液中の抗原の存在を、非常に正確かつ高い感度で同定するための放射免疫アッセイに使用されている。より近年、酵素で標識された抗体が、一般のＥＬＩＳＡにおいて放射標識された抗体に対する代替品として使用されている。

本発明の抗体は、固定化物質、例えばポリスチレンのウェルまたは粒子に結合することができ、免疫アッセイに使用し、試験試料中にＡＡＤ−１が存在するかどうかを決定することができる。本発明のこの実施形態において、試料は、免疫親和性表面と接触され、インキュベートされる。洗浄ステップ後、免疫親和性表面に結合した任意のＡＡＤ−１が、表面と、リポーティング基で標識された本発明の別の抗体とを接触させることによって検出される。

側方流動ストリップまたは免疫クロマトグラフィーストリップならびに特許請求される抗体およびアッセイ方法の使用は、本発明に一致する。側方流動アッセイは当分野において周知である。例えば米国特許第６，４８５，９８２号を参照されたい。この様式において、側方流動試験は、ＡＡＤ−１単独または他の被験物質と同時に、定性的または半定量的な検出に使用できる。側方流動試験は、本明細書に記載のすべての試験フォーマットの使用にもっとも単純であり、植物材料が迅速に溶液に抽出され、側方流動ストリップにおいて試験される現場環境において特に有用である。この様式において、側方流動ストリップを液体試料内に配置する、または液体試料を側方流動ストリップに塗布し、所定の時間後に結果を読むことだけが必要とされる。すべての側方流動試験は、試験結果を検証するために使用される、手順制御ラインまたは試料制御ラインのいずれかを組み込まなければならない。２種のラインの出現は、したがって、陽性結果を示し、一方有効な陰性試験は制御ラインのみを生み出す。試験ラインのみが出現した場合、またはラインが出現しない場合、それは無効である。

通常の側方流動試験ストリップは、４つの主要な要素からなる：試験試料を塗布する試料パッド；有色粒子にコンジュゲートされた本発明の抗体を含有するコンジュゲートパッド（通常、コロイド状金粒子またはラテックス微小球）；本発明のさまざまな抗体が捕捉ゾーンまたは試験ラインとして膜を超えるラインに固定化される反応膜、例えば疎水性ニトロセルロースまたはセルロースアセテート膜；および最後に毛管現象により反応膜を超える試料をくみ上げるために設計される廃液貯蔵器。

側方流動ステリップの要素は、不活性な基材に正常に固定され、単純なディップスティックフォーマットに存在でき、または捕捉ゾーンおよび制御ゾーンを示す試料ポートおよび反応ウインドウを有するプラスチックケーシング内に存在することができる。アッセイ実施形態の別の様式において、ＡＡＤ−１を含有することが疑われる試験試料を表面上で乾燥させ、固定化された試験試料を形成する。本発明の標識抗体は、その後固定化された試験試料に接触され、インキュベートされる。試料がＡＡＤ−１を含有する場合、標識抗体は固定化されたＡＡＤ−１と結合するものである。この方法は、本発明の非標識抗体を使用し、その後、すでにＡＡＤ−１に結合している本発明の抗体と結合する、標識された二次抗体を使用して実施することもできる。洗浄後、固定化された試験試料を測定し、任意のリポーティング基を検出することができる。

リポーティング基は通常、酵素、例えば、アルカリホスファターゼ、ホースラディッシュペルオキシダーゼまたはベータ−Ｄ−ガラクトシダーゼである。適切な基質は、酵素と反応した場合色彩変化を生じる。その際、色彩強度の測定を、分光光度計を使用して定量することができる。リポーティング基が放射性同位元素である場合、適切なガンマ線またはベータ線検出器を使用してリポーティング基を定量化することができる。リポーティング基の強度は、試験試料中のＡＡＤ−１の量に直接相関する。

下記の実施例は、本発明の実施方法を記載する手助けになると思われ、特許請求される抗ＡＡＤ−１抗体の特徴付けおよびアッセイを例示するものである。

免疫原の調製
ＡＡＤ−１タンパク質を、安定剤を加えたＰＢＳＴ（０．０５％Ｔｗｅｅｎ（登録商標）２０、ｐＨ７．４を含むリン酸緩衝生理食塩水）ベースの緩衝液中のトランスジェニックトウモロコシから回収された、凍結乾燥された葉組織から抽出し、可溶性タンパク質を、遠心分離後の上清中に回収した。上清をろ過し、１ＭＡｍＳＯ_４に調整し、可溶性タンパク質をＰｈｅｎｙｌＳｅｐｈａｒｏｓｅ（商標）ＨＩＣ（疎水性相互作用ビーズ）（ＧＥＨｅａｌｔｈｃａｒｅ）に結合させる。１時間のインキュベーション後、ＨＩＣビーズをＰＢＳＴで洗浄し、結合タンパク質をＭｉｌｌｉ−Ｑ（商標）水で溶出した。塩化ナトリウムを加えて電導度を上げ、ＨＩＣにより精製されたタンパク質を、ＡＡＤ−１特異的ポリクローナル抗体とコンジュゲートされている抗ＡＡＤ−１免疫親和性カラムに添加した。ポリクローナル抗体は、国際公開第２００５／１０７４３７号に記載の蛍光菌（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｓ）において産生される組み換えＡＡＤ−１に対して産生された。未結合タンパク質をカラムから回収し、カラムを、あらかじめ冷却したＰＢＳ（リン酸緩衝生理食塩水、ｐＨ７．４）で広範囲にわたって洗浄した。結合タンパク質を、３．５ＭＮａＳＣＮ、５０ｍＭＴｒｉｓ（商標）、ｐＨ８．０緩衝液で溶出した。微生物由来ＡＡＤ−１およびトウモロコシ由来ＡＡＤ−１を、ＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびウエスタンブロッティングにより試験した。

微生物由来ＡＡＤ−１において、クマシー染色されたＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルで可視化された主要なタンパク質バンドは、およそ３２ｋＤａであった。対応する植物由来ＡＡＤ−１タンパク質は、微生物由来タンパク質とサイズが同一であった。さらに、植物由来ＡＡＤ−１試料は少量の不純物を含有し、これはＡＡＤ−１抗血清に対して非免疫反応性であった。同時精製されたタンパク質は、カラムマトリックスとの弱い相互作用によりカラムに保有されたと思われる。

微生物由来ＡＡＤ−１および植物由来試料は、抗ＡＡＤ−１抗血清を使用するウエスタンブロッティングにおいて期待されるサイズの陽性シグナルを示した。ＡＡＤ−１のウエスタンブロット分析において、免疫反応性タンパク質は、陰性コントロール（天然トウモロコシ）抽出液中には観察されず、代替サイズのタンパク質（凝集生成物または分解生成物）は、トランスジェニック植物由来の試料中にも見られなかった。

ハイブリドーマの調製
マウスを精製されたＡＡＤ−１により免疫化し、標準的融合技術を使用し、抗ＡＡＤ−１モノクローナル抗体を発現するハイブリドーマのパネルを調製した。使用済みの組織培養培地の試料を、ハイブリドーマ培養液を含有する個々のウェルから無菌で取り出し、ＡＡＤ−１の反応性を、下記の抗体捕捉ＥＬＩＳＡ法を使用してアッセイした。マイクロタイタ―ウェルを、１〜１０μｇ／ｍＬの精製ＡＡＤ−１の溶液でコーティングした。ウェルを洗浄し、使用済みの組織培地の試料をウェルに配置し、インキュベートした。ウェルを洗浄し、ホースラッディシュペルオキシダーゼ標識ヤギ抗マウス抗血清を加え、インキュベートさせた。プレートを洗浄し、基質を加え、呈色反応を生じさせ、プレートをＯＤ（光学密度）に関して読み取った。ＯＤ測定値が高いウェルを、元のハイブリドーマを含有する培養液のウェルにマッピングした。ＡＡＤ−１抗体陽性培養液を抗体産生に関して連続的にスクリーニングし、培養液が拡大した場合の成長安定性および抗体産生を確実にした。数ラウンドの限界希釈クローニングを実施し、各培養液の真の単一クローン性を確立した。抗体陽性クローンについてのさらなるアッセイを実施し、植物材料の現場使用のための、現在特許請求される定量的検出方法に使用する個々の抗体の適切性を決定した。

アッセイの開発
アッセイ条件を、最適コーティング濃度、コーティング緩衝液の構成要素、コーティングフォーマットおよびｐＨならびに抗体−ビオチン比および濃度に関して評価した。最終アッセイフォーマットは、連続または同時サンドイッチフォーマットを使用した。ＨＲＰ（ホースラッディシュペルオキシダーゼ）およびＡＰ（アルカリホスファターゼ）両方の標識系を開発した。ｍＡｂ４７３Ｈ２７４．２＃３６を、両方の系に関して反応ウェル表面にコーティングし、乾燥させた。

ＨＲＰ系において、ｍＡｂ４７３Ｆ１８５．２＃１８をＨＲＰにコンジュゲートさせた。ＡＡＤ−１試料を反応ウェルに加え、室温において１時間インキュベートした。洗浄ステップ後、４７３Ｆ１８５．２＃１８−ＨＲＰコンジュゲートを反応ウェルに加え、３０分間室温においてインキュベートした。反応ウェルをその後洗浄し、基質を加え、ＨＲＰと反応させた。ＡＡＤ−１タンパク質の存在下で、ＨＲＰコンジュゲートは反応ウェルに結合し、次いでウェル中の基質と色彩変化を生じた。３０分の基質インキュベーション期間の後、停止溶液を加え、反応ウェルを、９６ウェルプレートリーダーにおいて、波長４５０ｎｍ〜６５０ｎｍで読み取った。

ＡＰ系において、４７３Ｆ１８５．２＃１８ｍＡｂをビオチンにコンジュゲートした。試料およびビオチン化ｍＡｂを反応ウェルに加え、室温において１時間インキュベートした。洗浄ステップ後、ストレプトアビジン−ＡＰコンジュゲートを反応ウェルに加え、室温において３０分間インキュベートした。反応ウェルをその後洗浄し、基質を加え、ＡＰと反応させた。ＡＡＤ−１タンパク質の存在下で、ＡＰコンジュゲートは反応ウェルに結合し、次いでウェル中の基質と色彩変化を生じた。３０分の基質インキュベーション期間の後で、反応を９６ウェルプレートリーダーにおいて波長４０５ｎｍで読み取り、その結果をプロットし、標準曲線を図１に示すように計算した。

ＨＲＰベースのアッセイの試験の間、非特異的シグナルが、トウモロコシ組織試料に観察された。対照的に、ＡＰ系は、トウモロコシ組織を使用した場合、任意の有意な非特異的シグナルを明示しなかった。したがって、ＡＰベースのアッセイは、より好ましいフォーマットであるが、ＨＰＲベースのアッセイはそれでもなお、実行可能な系である。

アッセイの特徴
得られたＡＰフォーマットを、異なるロットの試薬で評価し、アッセイの感度および範囲を決定し、吸光度の変動性およびアッセイの正確性を確立した。これらの研究において、３人のオペレーターが、２つの標準曲線および単一ポイントの分析を行うことによって、２つのプレート／試薬のロットを試験した。アッセイの標準曲線の全体の吸光度は、０．１ａｂｓ_４０５から１．５ａｂｓ_４０５に及んだ。結果を、下記の表１に示す。

アッセイの有効な定量範囲は、１ｎｇ／ｍＬから３２ｎｇ／ｍＬにおよび、平均のプレート間および分析者間％誤差およびパーセント変動係数（％ＣＶ）はそれぞれ３．４０％および２．６２％である（表２）。オペレーター、プレートのロット、コンジュゲートのロットまたは％ＣＶ決定の日付の重要な影響はなかった。プレートロット間の％誤差および正確性は、プレートロット内の結果と非常に類似していた（表３および４）。

アッセイ特異性
実施例３の免疫アッセイを、無秩序な市販の形質のタンパク質に対して実施し、任意の許容できない交差反応性が存在するかどうかを決定した。タンパク質Ｃｒｙ１Ａｂ、Ｃｒｙ１Ａｃ、Ｃｒｙ１Ｆ、Ｃｒｙ３４Ａｂ１、Ｃｒｙ３５Ａｂ１およびＰＡＴ（ホスフィノトリシン・アセチルトランスフェラーゼ）を含有する試験試料を、反応ウェルにおいてインキュベートし、免疫アッセイを実施例３に従って実施した。同様に、Ｃｒｙ１Ｆ（ＤＡＳＴＣ１５０７）、Ｃｒｙ３４Ａｂ１／３５Ａｂ１（ＤＡＳ−５９１２２−７）、Ｃｒｙ３Ｂｂ（ＭＯＮ８６３）、Ｃｒｙ２Ａｂ／Ｃｒｙ１Ａ（ＭＯＮ８９０３４）、Ｃｒｙ３Ｂｂ／ＣＰ４（ＭＯＮ８８０１７）、ＧＡ２１（ＧＡ２１）、Ｃｒｙ１Ａｂ（ＭＯＮ８１０およびＢｔ１１）、Ｃｒｙ３Ａ（ＭＩＲ６０４）およびＣＰ４（ＮＫ６０３）を発現する、トランスジェニックコーン種子に免疫アッセイを実施し、陽性シグナルは発生しなかった。このアッセイは、ＡＡＤ−１タンパク質に対して高度に選択性であることが見出された。試験において非標的タンパク質に対して、交差反応性または干渉効果は測定されなかった。したがって、特許請求されるアッセイＡＡＤ−１マイクロタイタープレートＥＬＩＳＡは、コーンの市販のトランスジェニック品種中に見出される、他の組み換えタンパク質に対して交差反応性を有さないと結論付けた。

ＡＡＤ−１定量的ＥＬＩＳＡプロトコル
１．一般要求事項
Ａ．材料
ビーズ、１／８インチクロム鋼、カタログ番号ＢＳ−０１２５−Ｃ、ＳｍａｌｌＰａｒｔｓＩｎｃ．，ＭｉａｍｉＬａｋｅｓ、ＦＬまたは同等物。
キャップ、２．０ｍＬの円錐管用、カタログ番号０２−６８１−３６１、ＦｉｓｈｅｒＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃまたは同等物。
マルチチャネルピペッター、１２チャネル、１０〜３００μＬ
ピペットチップ、さまざまなサイズ
プレートカバーまたは同等物
試薬貯蔵容器、非滅菌
さまざまなサイズの単一チャネルピペッター、１０μＬ〜１．０ｍＬ
管、ポリプロピレン、５ｍＬ、カタログ番号１４−９５６−１Ｄ、ＦｉｓｈｅｒＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃ
管、キャップ付き１５ｍＬのポリプロピレン遠心管、カタログ番号０５−５３９−１２、ＦｉｓｈｅｒＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃ
管、２．０ｍＬの円錐の微小遠心用、カタログ番号０２−６８１−３４４、ＦｉｓｈｅｒＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃまたは同等物。
Ｕ底プレート、非結合９６ウェル、ＢＤＦａｌｃｏｎカタログ番号３５−３９１８または同等物
Ｂ．機器
はかり、分析的、ＭｏｄｅｌＡＢ５４−Ｓ、ＭｅｔｔｌｅｒＩｎｓｔｒｕｍｅｎｔＣｏｒｐｏｒａｔｉｏｎまたは同等物
遠心分離機、２ｍＬエッペンドルフ管が保持可能なもの、エッペンドルフ−５４１７Ｃまたは同等物
フリーザー、−２０℃を維持可能なもの、Ｍｏｄｅｌ７５Ｆ、Ｕ−ＬｉｎｅＣｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ、Ｍｉｌｗａｕｋｅｅ、ＷＩまたは同等物
プレートリーダー、４０５〜６５０ｎｍで読み取り可能なもの、ＭｏｌｅｃｕｌａｒＤｅｖｉｃｅｓカタログ番号０２００−２０１８または同等物
冷蔵庫、２〜８℃を維持可能なもの。
ボルテックス、Ｇｅｎｉｅ−２Ｍｏｄｅｌ、カタログ番号１２−８１２、ＦｉｓｈｅｒＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃまたは同等物
シェーカー／グラインダー、ＭｏｄｅｌＧｅｎｏ／Ｇｒｉｎｄｅｒ、カタログ番号２０００−１１５、Ｃｅｒｔｉｐｒｅｐ、Ｍｅｔｕｃｈｅｎ、ＮｅｗＪｅｒｓｅｙまたは同等物
洗浄機、９６ウェルマイクロプレート、ＭｏｄｅｌＥｌｘ４０５、Ｂｉｏ−ＴｅｋＩｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ，Ｉｎｃ．または同等物
２．試薬および試薬の調製
Ａ．抗体によりコーティングされた９６ウェルマイクロタイタ―プレート；ＡＡＤ−１抗体コンジュゲート（１２０ｍＬ）；呈色試薬（１２０ｍＬ）；停止溶液（１２０ｍＬ）。
Ｂ．ＰＢＳＴ、ｐＨ７．４、カタログ番号Ｐ−３５６３、Ｓｉｇｍａ。２〜８℃において保存。
Ｃ．リン酸緩衝生理食塩水＋０．０５％Ｔｗｅｅｎ−２０（ＰＢＳＴ）、ｐＨ７．４。６ヶ月まで２〜８℃において保存。ＰＢＳＴ粉末を使用して緩衝液を調製できる、カタログ番号Ｐ−３５６３、Ｓｉｇｍａ。
Ｄ．３０％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）溶液、免疫血液学グレード（ＳｅｒｏｌｏｇｉｃａｌｓＣｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ，Ｉｎｃ．１−８００−４３１−４５０５カタログ番号８１−０７０または同等物。２〜８℃において保存。
Ｅ．ＡＡＤ−１標準タンパク質。
Ｆ．アッセイ衝液：ＰＢＳＴ＋０．５％ＢＳＡ（ｗ／ｖ）（ＰＢＳＴ／ＢＳＡ）。ＰＢＳＴ粉末を使用して緩衝液を調製できる、カタログ番号Ｐ−３５６３、Ｓｉｇｍａ。
１ｍＬの３０％ＢＳＡを、容器中の３０ｍＬのＰＢＳＴに加えた。
ウェルを混合し、これを１日使用できる。実験後、残りを廃棄する。
Ｇ．洗浄緩衝液：ＰＢＳＴ＋０．０５％Ｔｗｅｅｎ−２０（ｗ／ｖ）。ＰＢＳＴ粉末を使用して緩衝液を調製できる、カタログ番号Ｐ−３５６３、Ｓｉｇｍａ。
０．５ｍＬのＴｗｅｅｎ−２０を、容器中の１ＬのＰＢＳＴに加える。
ウェルを混合し、室温において保存する。任意の目に見える混入が観察された場合、溶液を廃棄する。
Ｈ．ＡＡＤ−１ストック溶液、１０００ｎｇ／ｍＬ。
ＰＢＳＴ／ＢＳＡ中液体標準濃度に基づく１０００ｎｇ／ｍＬストック溶液を調製する。氷中に保ち、２時間以内に使用する。任意の目に見える混入が観察された場合、廃棄する。ＡＡＤ−１ストックの残りを廃棄し、再使用のための再凍結はしない。
３．手順
Ａ．アッセイの実施３０分前に冷蔵庫から取り出すことによって、ＥＬＩＳＡ試薬を２０〜２５℃にする。
Ｂ．下記のように、５ｍＬのポリスチレン管中にアッセイ緩衝液中ＡＡＤ−１標準を調製する。次の希釈に移る前に数秒ボルテックスにかける。管を氷上に保存し、試料をプレートに加える直前に個々のアッセイ用の新しい標準を調製する。（注：ストック参照抗原を移す場合、分注後、ピペットチップを目的溶液中で一度すすがれたい）。

Ｃ．試験試料の調製：
葉の試料に関して、４つの葉のパンチを作り、２ｍＬのポリプロピレン管に配置する。２または３つの金属ビーズを各管に加える。その後０．８０ｍＬのアッセイ緩衝液を加える。すべての管にキャップをする。
試料を、Ｇｅｎｏ／Ｇｒｉｎｄｅｒ自動シェーカー／グラインダーを使用して、ダイアルを３５０、トグルスイッチを１×設定値（およそ１５００ストローク／分）、１サイクル５分にセットし、抽出する。代替の同等の粉砕または抽出方法も使用できる。
試料を、１４，０００（またはそれより早く）ｒｐｍにおいて５分間または分離される（上清に目に見える粒子がなくなる）まで遠心分離機にかける。上清を、別個の管に移すか、または分析用アリコートをとる。溶液を氷上に保ち、２時間以内にアッセイする。
Ｄ．ＡＡＤ−１試料を、下記のようにＥＬＩＳＡプレート（複数可）に加える。
ＥＬＩＳＡ標準希釈液を、非結合９６ウェルＵ底マイクロタイタ―プレート（およそ１３０μｌ／ウェル）のカラム１〜３に移す。個々の被験プレートに関して、標準溶液を３連に流す。
必要に応じ試料の希釈液を調製し、希釈された試料を、標準較正溶液を含有する非結合９６ウェルマイクロタイタ―プレート（１３０μＬ／ウェル）に移し、９６ウェルアッセイテンプレートシートの位置を記録する。
Ｅ．あらかじめコーティングされたプレートに蓋をし、混合のためにおよそ５秒、ベンチトップまたはプレートシェーカーにおいて穏やかに回転させる。周囲温度において１時間（±５））インキュベートさせる。
Ｆ．あらかじめコーティングされたプレートを、個々のウェルをＰＢＳＴで満たすことによって３〜５回洗浄する。ペーパータオルの上で過剰の液体をたたいて落とす。プレートウォッシャーにより洗浄してもよい。
Ｇ．１００μＬのＡＡＤ−１抗体コンジュゲートを、抗体によりコーティングされた９６ウェルマイクロタイタ―プレートの個々のウェルにピペットで加える。その後、１００μＬのＥＬＩＳＡ標準溶液およびＵ底マイクロタイタープレートからの試料を、あらかじめコーティングされたプレートに移し、あらかじめコーティングされたプレートに移された試料と同じ配向を保つ。列ごとにピペットチップを変える。
Ｈ．プレートに蓋をし、それをシェーカーに配置し、周囲温度で３０分間（±５分）インキュベートする。
Ｉ．プレートを、個々のウェルを洗浄緩衝液で満たすことによって３〜５回洗浄する。ペーパータオルの上で過剰の液体をたたいて落とす。プレートウォッシャーにより洗浄してもよい。
Ｊ．１００μＬのＴＭＢ基質を、反応プレートの個々のウェルに加える。蓋をし、穏やかに混合する。周囲温度において、暗所で２０±２分間インキュベートさせる。
Ｋ．１００μＬの停止溶液を個々のウェルに加え、反応を停止させる。プレートを穏やかに混合し、デュアル波長モジュール４５０ｎｍ〜６５０ｎｍでＭＡＸｌｉｎｅＶｍａｘプレートリーダーを使用して吸光度を読み取る。
Ｌ．未加工のデータファイルをセーブし、４項に記載のようにデータ分析を実施する。
４．データ分析および計算
Ａ．較正曲線：
参照標準由来の吸光度値を使用し、較正曲線を作製しなければならない。ＳＯＦＴｍａｘＰＲＯ（商標）ソフトウェアまたはＭｉｃｒｏｓｏｆｔＥｘｃｅｌを使用して、必要な分析および計算を提供する。ＡＡＤ−１ＥＬＩＳＡのための較正曲線を、標準およびそれらの続く吸光度（光学密度）の期待される濃度の二次回帰を使用して構築する。
Ｂ．この方程式を、下記の方程式に基づく標準曲線にもっともよい放物線に適合させる：
ｙ＝Ａ＋Ｂｘ＋Ｃｘ^２
式中：
ｙ＝平均吸光度値（ＯＤ）
ｘ＝参照標準濃度
Ｃ．試験試料中のＡＡＤ−１の計算：
ＳＯＦＴｍａｘＰＲＯ（商標）またはＭｉｃｒｏｓｏｆｔＥｘｃｅｌを使用して、個々の試験試料のＡＡＤ−１濃度を計算できる。予測濃度を、二次方程式における曲線の係数および光学密度（ＯＤ）測定値を使用して決定できる。回帰方程式は下記のように適合される：

試験試料の決定されたＡＡＤ−１濃度（すなわち、単一希釈液の個別の再現）を、予測濃度×使用する希釈係数により得る。
５．分析バッチの受容基準
個々の分析バッチは、下記の有効な手順において受容基準を満たさなければならない。データがこれらの実施基準を満たせなかった場合、分析者は、結果を評価し、変動の潜在源を決定し、必要であれば分析を繰り返さなければならない。

[１］
ＰＴＡ−１１２５１（４７３Ｆ１８５．２＃１８）、ＰＴＡ−１１２５２（４７３Ｆ２２５．２＃７）、ＰＴＡ−１１２５３（４７３Ｆ２７４．２＃３６）、ＰＴＡ−１１２５４（４７３Ｈ４６．２）およびＰＴＡ−１１２５５（４７３Ｈ１７２．３）からなる群から選択される受託番号のもと、アメリカ合衆国培養細胞系統保存機関（ＡｍｅｒｉｃａｎＴｙｐｅＣｕｌｔｕｒｅＣｏｌｌｅｃｔｉｏｎ）（ＡＴＣＣ）に寄託されたハイブリドーマにより産生され、アリールオキシアルカノエート・ジオキシゲナーゼ酵素（ＡＡＤ−１）と特異的に結合するモノクローナル抗体。
[２］
受託番号ＰＴＡ−１１２５１（４７３Ｆ１８５．２＃１８）を有する前記ハイブリドーマにより産生される、前記［１］に記載のモノクローナル抗体。
[３］
受託番号ＰＴＡ−１１２５２（４７３Ｆ２２５．２＃７）を有する前記ハイブリドーマにより産生される、前記［１］に記載のモノクローナル抗体。
[４］
受託番号ＰＴＡ−１１２５３（４７３Ｆ２７４．２＃３６）を有する前記ハイブリドーマにより産生される、前記［１］に記載のモノクローナル抗体。
[５］
受託番号ＰＴＡ−１１２５４（４７３Ｈ４６．２）を有する前記ハイブリドーマにより産生される、前記［１］に記載のモノクローナル抗体。
[６］
受託番号ＰＴＡ−１１２５５（４７３Ｈ１７２．３）を有する前記ハイブリドーマにより産生される、前記［１］に記載のモノクローナル抗体。
[７］
前記［１］に記載のモノクローナル抗体を産生し、ＰＴＡ−１１２５１（４７３Ｆ１８５．２＃１８）、ＰＴＡ−１１２５２（４７３Ｆ２２５．２＃７）、ＰＴＡ−１１２５３（４７３Ｆ２７４．２＃３６）、ＰＴＡ−１１２５４（４７３Ｈ４６．２）およびＰＴＡ−１１２５５（４７３Ｈ１７２．３）からなる群から選択される受託番号のもと、アメリカ合衆国培養細胞系統保存機関（ＡｍｅｒｉｃａｎＴｙｐｅＣｕｌｔｕｒｅＣｏｌｌｅｃｔｉｏｎ）（ＡＴＣＣ）に寄託されたハイブリドーマ細胞系。
[８］
ＡＴＣＣ受託番号ＰＴＡ−１１２５１（４７３Ｆ１８５．２＃１８）のもと寄託された、前記［７］に記載のハイブリドーマ。
[９］
ＡＴＣＣ受託番号ＰＴＡ−１１２５２（４７３Ｆ２２５．２＃７）のもと寄託された、前記［７］に記載のハイブリドーマ。
[１０］
ＡＴＣＣ受託番号ＰＴＡ−１１２５３（４７３Ｆ２７４．２＃３６）のもと寄託された、前記［７］に記載のハイブリドーマ。
[１１］
ＡＴＣＣ受託番号ＰＴＡ−１１２５４（４７３Ｈ４６．２）のもと寄託された、前記［７］に記載のハイブリドーマ。
[１２］
ＡＴＣＣ受託番号ＰＴＡ−１１２５５（４７３Ｈ１７２．３）のもと寄託された、前記［７］に記載のハイブリドーマ。
[１３］
ＡＡＤ−１酵素の存在を同定する方法であって、
ａ）前記［１］に記載の一次モノクローナル抗体をアッセイ表面に固定化し、その後前記アッセイ表面を洗浄するステップ、
ｂ）前記アッセイ表面と、ＡＡＤ−１を含有することが疑われる液体とを、結合に十分な期間接触させ、その後前記アッセイ表面を洗浄するステップ、
ｃ）前記アッセイ表面と、リポーティング基にコンジュゲートされた前記［１］に記載の異なる二次抗体とを、前記コンジュゲートされた二次モノクローナル抗体との結合に十分な期間接触させ、その後前記アッセイ表面を洗浄するステップ、および
ｄ）前記リポーティング基の存在または不在を検出するステップを含む方法。
[１４］
ＡＡＤ−１酵素の定量的決定のための方法であって、
ａ）ＡＡＤ−１抗血清をアッセイ表面に固定化するステップ、
ｂ）前記アッセイ表面と、ＡＡＤ−１を含有することが疑われる液体とを、結合に十分な期間接触させ、その後前記アッセイ表面を洗浄するステップ、
ｃ）前記アッセイ表面と、リポーティング基にコンジュゲートされた前記［１］に記載の異なる二次抗体とを、前記コンジュゲートされた二次モノクローナル抗体との結合に十分な期間接触させ、その後前記アッセイ表面を洗浄するステップ、および
ｄ）前記リポーティング基の存在を、較正曲線との比較によって定量化するステップを含む方法。
[１５］
前記コンジュゲートされたモノクローナル抗体が４７３Ｆ１８５．２＃１８（ＰＴＡ−１１２５１）である、前記［１４］に記載の方法。

Claims

ＰＴＡ−１１２５１（４７３Ｆ１８５．２＃１８）、ＰＴＡ−１１２５２（４７３Ｆ２２５．２＃７）、ＰＴＡ−１１２５３（４７３Ｆ２７４．２＃３６）、ＰＴＡ−１１２５４（４７３Ｈ４６．２）およびＰＴＡ−１１２５５（４７３Ｈ１７２．３）からなる群から選択される受託番号のもと、アメリカ合衆国培養細胞系統保存機関（ＡｍｅｒｉｃａｎＴｙｐｅＣｕｌｔｕｒｅＣｏｌｌｅｃｔｉｏｎ）（ＡＴＣＣ）に寄託されたハイブリドーマにより産生され、アリールオキシアルカノエート・ジオキシゲナーゼ酵素（ＡＡＤ−１）と特異的に結合するモノクローナル抗体。
受託番号ＰＴＡ−１１２５１（４７３Ｆ１８５．２＃１８）を有する前記ハイブリドーマにより産生される、請求項１に記載のモノクローナル抗体。
受託番号ＰＴＡ−１１２５２（４７３Ｆ２２５．２＃７）を有する前記ハイブリドーマにより産生される、請求項１に記載のモノクローナル抗体。
受託番号ＰＴＡ−１１２５３（４７３Ｆ２７４．２＃３６）を有する前記ハイブリドーマにより産生される、請求項１に記載のモノクローナル抗体。
受託番号ＰＴＡ−１１２５４（４７３Ｈ４６．２）を有する前記ハイブリドーマにより産生される、請求項１に記載のモノクローナル抗体。
受託番号ＰＴＡ−１１２５５（４７３Ｈ１７２．３）を有する前記ハイブリドーマにより産生される、請求項１に記載のモノクローナル抗体。
請求項１に記載のモノクローナル抗体を産生し、ＰＴＡ−１１２５１（４７３Ｆ１８５．２＃１８）、ＰＴＡ−１１２５２（４７３Ｆ２２５．２＃７）、ＰＴＡ−１１２５３（４７３Ｆ２７４．２＃３６）、ＰＴＡ−１１２５４（４７３Ｈ４６．２）およびＰＴＡ−１１２５５（４７３Ｈ１７２．３）からなる群から選択される受託番号のもと、アメリカ合衆国培養細胞系統保存機関（ＡｍｅｒｉｃａｎＴｙｐｅＣｕｌｔｕｒｅＣｏｌｌｅｃｔｉｏｎ）（ＡＴＣＣ）に寄託されたハイブリドーマ細胞系。
ＡＴＣＣ受託番号ＰＴＡ−１１２５１（４７３Ｆ１８５．２＃１８）のもと寄託された、請求項７に記載のハイブリドーマ。
ＡＴＣＣ受託番号ＰＴＡ−１１２５２（４７３Ｆ２２５．２＃７）のもと寄託された、請求項７に記載のハイブリドーマ。
ＡＴＣＣ受託番号ＰＴＡ−１１２５３（４７３Ｆ２７４．２＃３６）のもと寄託された、請求項７に記載のハイブリドーマ。
ＡＴＣＣ受託番号ＰＴＡ−１１２５４（４７３Ｈ４６．２）のもと寄託された、請求項７に記載のハイブリドーマ。
ＡＴＣＣ受託番号ＰＴＡ−１１２５５（４７３Ｈ１７２．３）のもと寄託された、請求項７に記載のハイブリドーマ。