JP5858984B2 - ErbB/ErbBリガンドに関連する疾患を治療するための分子及びその分子を使用する方法 - Google Patents
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Description
オリゴ 3’−A G G T
二重鎖 5’−A G C T
二重鎖 3’−T C G A
腫瘍細胞系からのEGF様リガンドの分泌
材料及び実験手順
材料
増殖因子は、PeproTech Asia(Peprotech,Rocky Hill,NJ)から購入された。NiNTAビーズは、Novagen(Madison, WI)から購入された。抗マウスFc抗体にコンジュゲート化されたビーズ、ATBS(2,2′−アジノ−ビス(3−エチルベンズチオゾリン−6−スルホン酸)及びMTT(3−(4,5−ジメチルチアゾール−2−イル)−2,5−ジフェニルテトラゾリウムブロマイド)は、Sigma(Sigma,St.Louis,MO)から購入された。増殖因子アッセイのためのDuo−setキットは、R&D Systems(R&D Systems,Minneapolis,MN)から購入された。ハイグロマイシンは、Invitrogen(Carlsbad,CA)から購入された。ゲンシタビンは、Eli Lilly LTD.(Eli Lilly LTD.,Hampshire,England)から購入された。
HeLa,T47D,NSO及びMiaPaCaは、DMEM培地中で培養された。BxPC3細胞はRPMI培地中で培養された。チャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞は、ダルベッコの改変イーグル培地(DMEM)とF12の混合物(1:1)中で維持された。全ての培地は、10%の加熱により不活性化されたウシ胎児血清を添加された。
ヒトの癌細胞系(1×106個)は、10cmプレートに播種され、8mlの培地で被覆され、4日間インキュベートされた。次に、培地が採取され、リガンドは、DuoSet ELISAキットを製造者(R&D Systems,Minneapolis,MN)の指示に従って使用して定量された。
本発明者は、腫瘍細胞系からの様々なEGF様リガンドの分泌を試験した。この目的のため、本発明者は、EGFRの四つの異なるリガンド(即ちEGF,TGFα,HB−EGF及びAR)の低濃度を検出することができる免疫学的キットを使用した。アッセイは、卵巣、胸、肺、及び膵臓などの幅広い範囲のヒト腫瘍に由来する13の癌細胞系によってならし培地で行われた(表1参照)。表1に詳述されるように、アッセイは、増殖因子の明確な組み合わせを検出し、そのうち、HB−EGF及びARは、試験された腫瘍細胞系によって分泌される最も豊富なリガンドであった。
EGF様リガンドのクローニング、発現、及び生物学的活性
材料及び実験手順
材料
上述の実施例1で詳述した通りである。
TGFαのEGF様ドメイン(配列番号1)又はHB−EGFのEGF様ドメイン(配列番号3)は、pET32bベクター中にクローニングされ、EGF様ドメインのN末端残基に隣接する因子Xa開裂部位を有するC末端チオレドキシン(TRX)融合タンパク質として発現された。融合タンパク質は、標準的な手順を使用して大腸菌(BL21)中で発現された。一つのコロニーは一晩増殖され、200mlの2YT中に希釈された。OD(600nm)は、0.5〜0.6に到達するまで連続的に監視され、次に、1mMのIPTGが添加され、培養物は30℃に移された。5時間のインキュベーション後、細菌細胞は、氷上で冷却され、遠心分離され、20mMのTris pH7.5、150mMのNaCl、5mMのイミダゾール、及び1%のtriton X−100を含む混合物20ml中で再懸濁された。次に、細胞は、超音波照射により破壊され、明澄な抽出物は、予め平衡化されたNiNTAビーズに移された。ビーズは、同じ緩衝液を使用して洗浄され、300mMのイミダゾールで溶出された。
細胞は、24ウェルプレートに播種された。24時間後、細胞は、洗浄され、様々な薬剤でインキュベートされた。10分間のインキュベートの後、細胞は、溶解され、明澄な抽出物は電気泳動され、次に、抗ホスホチロシンmAb、抗EGFR mAb(HeLa)、又は抗ErbB−3 mAb(T47D)で免疫ブロットされた。
標的の天然の配座の特異的な認識及びそれへの特異的な結合は、モノクローナル抗体(mAb)に基づく療法の顕著な特徴である。ErbBリガンドのEGF様ドメインの正確な折り畳み及び活性のためには、高度に保存された三つのジスルフィド結合が必要であることが知られている[Van Zoelen,E.J.,ら.(2000)Vitam Horm 59,99−131]。従って、本発明者は、EGFR特異的リガンドのEGF様ドメインを、チオレドキシンタンパク質(TRX、図1A)に結合された融合タンパク質として発現させることを選択した。融合タンパク質は、ニッケルカラム(例えば、NiNTAカラム)の使用による続く精製を可能にするヒスチジンリピートも含んでいた。加えて、因子Xa開裂部位が導入され、組み換えタンパク質の残りからのEGF様ドメインの放出を可能にした。(上述の材料及び方法の欄で詳述したような)細菌系中での発現後、二つのリガンド(TGFα及びHB−EGF)は、NiNTAカラムを使用して精製され(図1B)、それらの生物学的活性は、チロシン残基上でのEGFRリン酸化を誘導するそれらの能力を試験することによって検証された(図1C)。図1Cに示されるように、組み換えリガンドは、それぞれの機能的に活性な配座を示した。従って、マウスは、以下に詳述されるように活性TRX融合タンパク質で続いて免疫化された。
TGFαのEGF様ドメインに対して指向された拮抗抗体の作成
材料及び実験手順
材料
上述の実施例1で詳述した通りである。
上述の実施例2で詳述した通りである。
EGF様ドメインを安定して発現するチャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞のクローンを確立するため、本発明者は、リポフェクタミン(Invitrogen,Carlsbad,CA)を使用して対応するpIERS−Hygをトランスフェクトし、ハイグロマイシン(2μm/ml)を使用してクローンを選択した。選択の2週間後、安定にトランスフェクトされた細胞は、小さなコロニーとして出現し、これらのコロニーがスクリーニングされ、高発現を示すコロニーが増殖された。
5匹のメスのbalb/cマウス(3ヶ月齢;Harlen,Israel)は、完全フロインドアジュバント中の30μmのタンパク質を皮下的にかつ一つの脚の内部フットパッド(intra foot pad)中に注入された。3週間後、第二回の注入が不完全フロインドアジュバントで行われた。この注入の後、3週間の間隔で、PBS中の30μgのタンパク質の3〜5回の注入が行われた。最後の注入の10日後、マウスは、放血され、血清は、抗体力価について試験された。最後の追加抗原投与の1ヶ月後、最高の力価を有する2匹のマウスは、もう2回の注入を二日間にわたって連続して受けた。最後の追加抗原投与の4日後、脾臓は、除去され、各個体の脾臓からの細胞は、20×106個のNS0/1骨髄腫系と融合された。融合は、以前に記述されたように[Eshhar,Z.,ら.(1980).J Immunol 124,775−780]、41%のポリエチレングリコール1500(Serva,Heidelberg,GMBH)を使用して行われた。融合後、細胞は、96ウェルプレートに1ウェル当たり2×104個の生存している骨髄腫細胞の濃度で分散された。ハイブリッド細胞は、HATの存在下で増殖について選択された。陽性のハイブリッド培養物は、HATから引き離され、クローニングされて限界希釈で再クローニングされた。
96ウェルプレートは、示されたリガンド(0.1ng/ml)で被覆され、37℃で3時間インキュベートされた。プレートは、2回洗浄され、PBST中の1%BSAで37℃で1時間ブロックされ、抗体(1μg/ml)又は生理的食塩水で室温で3時間インキュベートされた。次に、ウェルは、抗マウスHRP抗体で20分間インキュベートされ、その後、ATBS(Sigma,St.Louis,MO)試薬でインキュベートされた。シグナルは、ELISA読み取り器(420nm)を使用して決定された。
mAbは、抗マウスFc抗体にコンジュゲート化されたアガロースビーズで45分間インキュベートされた。その後、ビーズは、PBS中で2回洗浄され、HB−EGF又はTGFα(Sigma,St.Louis,MO)で1時間インキュベートされた。免疫複合体は、HB−EGFに対するmAb327で免疫ブロットされた。
TRX含有融合タンパク質は、完全フロインドアジュバント(Tifco,Detroit,Michigan)を使用して、Balb/cマウスを免疫化するために使用された(50μg/動物)。4回の腹腔内注入の後、血清は、採取され、抗リガンド応答について試験された。抗血清及びハイブリドーマスクリーニングを容易にするために、本発明者は、原形質膜上にTGFαのEGF様ドメインを発現する安定なチャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞系を確立した。EGF様ドメインは、HER2シグナルペプチド、HA−ペプチドタグ、及びGPIアンカー(グリコシルホスファチジルイノシトール)モチーフに融合された。このモチーフは、原形質膜への融合タンパク質の脂質ベースの固定に関与する(図1D)。免疫化されたマウスからの抗血清は、GPI固定されたリガンドを発現するCHO細胞に特異的に結合するその能力について試験された。加えて、本発明者は、リガンド誘導EGFRリン酸化を阻害する抗血清の能力を試験した。図1E(例示的アッセイ)に示されるように、EGFRのTGFαによって誘導されるリン酸化は、免疫化されたマウスからの抗血清の増大した量の存在において試験された。続いて、2匹の陽性マウスの脾臓を使用してハイブリドーマが確立され、これらのハイブリドーマは、次に表面に露出されたGPI−TGFα融合タンパク質を認識するそれらの能力、及び哺乳類の組み換えリガンドを弱化させるそれらの能力についてスクリーニングされた(データは示さず)。
HB−EGFのEGF様ドメインに対して指向された拮抗抗体の作成
材料及び実験手順
材料
上述の実施例1で詳述した通りである。
上述の実施例2で詳述した通りである。
上述の実施例3で詳述した通りである。
上述の実施例3で詳述した通りである。
上述の実施例3で詳述した通りである。
上述の実施例3で詳述した通りである。
本発明者は、別の主要な増殖刺激EGF様リガンドであるHB−EGFに対するmAbを作成した。本発明者は、HB−EGFに対する三つのmAb及び固定されたHB−EGFを使用して、特異性、及びErbBファミリーの他の増殖因子に対する交差反応性の非存在を確認した(図3A)。次に、本発明者は、HB−EGFの市販の調製物を免疫沈降させることに対するハイブリドーマの三つの陽性クローンの能力を確認した(図3B)。加えて、本発明者は、HeLa及びT47D哺乳類癌細胞におけるHB−EGFによって誘導されるチロシンのリン酸化を試験することによって、HB−EGFに対する三つのmAb(mAb−898,mAb−878及びmAb−384)は、リガンドによって誘導される受容体の活性化を不定に阻害すると結論付けた(図3C)。
個別の抗体及びそれらの組み合わせの増殖阻害活性
材料及び実験手順
材料
上述の実施例1で詳述した通りである。
上述の実施例2で詳述した通りである。
上述の実施例3で詳述した通りである。
BxPC3膵臓腫瘍細胞は、96ウェルプレート(2000個の細胞/ウェル)に6連で播種された。細胞は、様々なmAbの添加の前に一晩接着させられた。増殖は、24,48及び72時間後に、MTT法を以前に記述されたように[Mossmann T.J.,Immunol Methods.(1983)16;65(1−2):55−63]使用して測定された。MTT(3−(4,5−ジメチルチアゾール−2−イル)−2,5−ジフェニルテトラゾリウムブロマイド)は、ウェルに添加され、2時間後、細胞は(イソプロパノール中の)4mMのHClに溶解された。吸光度は570nmで決定された。
メスの異型NCrヌードマウス(6週齢;Harlen,Israe)は、2×106個のヒト癌細胞を皮下接種された。いったん腫瘍が触診可能になると(5〜7日後)、マウスは、無作為に群に分けられ、示された時点にmAb、化学療法、又は様々な組み合わせを腹腔内注入された。腫瘍体積は、1週間に2回監視され、体重は、1週間に1回測定された。
組み合わせ療法は、単一療法より効率的であることがしばしば証明されている。TGFαに対する拮抗抗体及びHB−EGFに対する拮抗抗体の利用可能性は、BxPC3膵臓腫瘍細胞が両方のリガンドを分泌した(上述の表1参照)という発見と共に、BxPC3細胞の腫瘍原性増殖に対する二つのオートクリン増殖因子を標的にする組み合わせ療法を試験するように本発明者を刺激した。この目的のため、本発明者は、作成された各mAbの存在下で、又は二つの抗体の組み合わせ下でBxPC3細胞の増殖を定量した。結果(図4Aに示される)は、細胞増殖に対するmAb−551(TGFαに対するもの)及びmAb−898(HB−EGFに対するもの)の両方の阻害効果を証明した。重要なことに、両方のmAbでの組み合わせ治療は、同時オートクリンループと一貫してBxPC3細胞の増殖に対する阻害効果を増大させた。
抗増殖因子抗体の組み合わせは、腫瘍を化学療法に対して感作する
材料及び実験手順
材料
上述の実施例1で詳述した通りである。
上述の実施例2で詳述した通りである。
上述の実施例3で詳述した通りである。
BxPC3膵臓腫瘍細胞は、96ウェルプレート(2000個の細胞/ウェル)に6連で播種された。細胞は、二つのmAb(mAb−551又はmAb−898)又はゲンシタビンの添加の前に一晩接着させられた。増殖は、24,48及び72時間後に、MTT法を使用して測定された。MTT(3−(4,5−ジメチルチアゾール−2−イル)−2,5−ジフェニルテトラゾリウムブロマイド)は、ウェルに添加され、2時間後、細胞は(イソプロパノール中の)4mMのHClに溶解された。吸光度は570nmで決定された。
メスの異型NCrヌードマウス(6週齢;Harlen,Israe)は、2×106個のヒト癌細胞を皮下接種された。いったん腫瘍が触診可能になると(5〜7日後)、マウスは、無作為に群に分けられ、ゲンシタビン(150mg/kg体重)で2回(16日目及び21日目)(腹腔内注入によって)処置され、二つのmAbあり又はなしで1週間に2回処置された。腫瘍体積は、1週間に2回監視され、体重は、1週間に1回測定された。
本発明者は、EGFRを刺激する自己生産増殖因子(ErbB−1)及びHER2を刺激する自己生産増殖因子(ErbB−2)は、ErbB−3/4と共に、化学療法及び放射線療法に対する膵臓腫瘍及び他の腫瘍の抵抗性において本質的な役割を果たすと仮定する。従って、本発明者は、かかるオートクリンループの阻害は、逃避機構を遮断して、従来の療法の毒性効果に対して腫瘍を再感作するかどうかを試験することを望んだ。このシナリオの初期の試験として、本発明者は、二つのmAbとゲンシタビン(進行した膵臓腫瘍の主要な化学療法剤)との組み合わせ効果を生体外で試験した。図5Aに示されるように、TGFαに対する抗体及びHB−EGFに対する抗体(それぞれmAb−551及びmAb−898)の混合物を使用して、ゲンシタビンの増殖阻害効果が(培養されたBxPC3細胞に見られるように)増強された。
抗増殖因子抗体の組み合わせは、膵臓腫瘍及び肺腫瘍を生体内で有意に減少させる
材料及び実験手順
材料
上述の実施例1で詳述した通りである。
上述の実施例2で詳述した通りである。
上述の実施例3で詳述した通りである。
メスの異型NCrヌードマウス(6週齢;Harlen,Israe)は、2×106個のMiaPaCaヒト膵臓癌細胞又はヒト肺腫瘍細胞系H1437を皮下接種された。いったん腫瘍が触診可能になると(5〜7日後)、MiaPaCa異種移植片を担持するマウスは、14,18,21,24,27,30,34及び37日目にmAb(それぞれ一回の注入当たり125μg)で処置された。対照群は、8匹のマウスを含んでおり、処置群は、5匹のマウスを含んでいた。H1437腫瘍異種移植片を担持するマウスは、6,10,14,17及び21日目にmAb(それぞれ一回の注入当たり125μg)で処置された。対照群は、15匹のマウスを含んでおり、処置群は、11匹のマウスを含んでいた。腫瘍体積及びマウス体重は、監視された。
図6A〜Dに示されるように、抗TGFα mAb及び抗HB−EGF mAbでのマウスの処置は、膵臓腫瘍及び肺腫瘍を有意に減少させた。
以下のものは、本明細書に同封され、本願と共に提出されたテキストファイルの内容を記載する。ファイル情報は、ファイル名/バイトサイズ/作成日/オペレーティングシステム/機械フォーマットとして与えられている。
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- 必要性のある対象における膵臓癌又は肺癌のための治療を選択する方法であって、前記方法は、対象からの生物学的サンプル中の少なくとも二つの同一でないErbBリガンドの量及び/又は活性を分析することを含み、前記少なくとも二つの同一でないErbBリガンドが、α型トランスフォーミング増殖因子(TGFα)、ヘパリン結合EGF様増殖因子(HB−EGF)、及びアンフィレギュリン(AR)からなる群から選択され、前記少なくとも二つの同一でないErbBリガンドが、癌でない細胞又は組織と比較して予め決定されたレベルより上の上方制御された量及び/又は活性を示すとき、前記少なくとも二つの同一でないErbBリガンドが、対象における膵臓癌又は肺癌の治療のための標的として選択され、前記治療は、前記少なくとも二つの同一でないErbBリガンドに特異的に結合する少なくとも一種の抗体又はそのフラグメントであって、前記少なくとも二つの同一でないErbBリガンドの量及び/又は活性を下方制御する少なくとも一種の抗体又はそのフラグメントを含むことを特徴とする方法。
- 前記生物学的サンプルが、癌細胞を含むことを特徴とする請求項1に記載の方法。
- 前記生物学的サンプルが、血液、血漿、唾液、生検、頬の内側をこすることで得られた試料、及び洗浄からなる群から選択されることを特徴とする請求項1に記載の方法。
- 前記少なくとも二つの同一でないErbBリガンドが、α型トランスフォーミング増殖因子(TGFα)及びヘパリン結合EGF様増殖因子(HB−EGF)であることを特徴とする請求項1に記載の使用。
- 必要性のある対象における膵臓癌又は肺癌の治療のために特定された医薬を製造するための、少なくとも二つの同一でないErbBリガンドに特異的に結合する少なくとも一種の抗体又はそのフラグメントであって、前記少なくとも二つの同一でないErbBリガンドの量及び/又は活性を下方制御する少なくとも一種の抗体又はそのフラグメントの治療有効量の使用であって、前記対象が、請求項1〜4のいずれかに記載の方法に従った治療のために選択されていることを特徴とする使用。
- 前記少なくとも一種の抗体が、少なくとも二種の抗体を含み、前記少なくとも二種の抗体が、前記少なくとも二つの同一でないErbBリガンドに結合することを特徴とする請求項5に記載の使用。
- 前記抗体が、EGF様ドメインのエピトープに結合することを特徴とする請求項5に記載の使用。
- ゲンシタビンをさらに含むことを特徴とする請求項5に記載の使用。
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