JP5856048B2 - Ｎ結合型糖鎖を利用した消化器癌の検査方法 - Google Patents

Ｎ結合型糖鎖を利用した消化器癌の検査方法 Download PDF

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Description

本発明は、Ｎ結合型糖鎖を消化器癌診断用マーカーとして利用した消化器癌の検査方法に関する。
消化器は、食物の摂取、運搬、消化および栄養素の吸収、排泄の働きを担う器官である。消化器のうち膵臓は、胃の背側にある長さが約１５ｃｍの臓器であり、主な疾患としては膵臓癌と膵炎があり、特に膵臓癌は、近年日本人の死亡率が上昇してきている癌の一つとして知られている。膵臓癌の原因は完全には解明されていないが、食生活の欧米化による動物性脂肪やタンパク質、アルコールなどの過剰摂取、或いは喫煙などがリスクファクターであると考えられている。さらに、慢性膵炎、膵石症、糖尿病、急性膵炎の既往のある人も膵臓癌の高危険群であると考えられている。膵臓癌は、外分泌の働きを持つ細胞、特に膵液が流れる膵管の細胞から発生する癌であり、膵臓癌の９０％以上がこのタイプである。膵臓癌は非常に悪性度が高く、早期の段階で他臓器への転移をきたすことから、早期発見が一つの課題である。しかし、膵臓は、胃や十二指腸、脾臓、小腸、大腸、肝臓、胆嚢など多くの臓器に囲まれ、後腹膜に存在するため、各種の画像診断を用いても初期段階の癌を発見することがきわめて困難であり、進行癌で発見される場合が多いのが現状である。
胃癌は、日本と東南アジアが高発生地域であり、癌死亡率では世界第２位を占めている。胃癌の予後は、診断技術や治療法の発達により改善しているが、進行胃癌の予後は未だ良好とはいえず、胃漿膜にまで浸潤した胃癌の予後の５年生存率は３５％と低い。進行癌の治癒的切除の後に起こる再発の主原因の一つは腹膜播種である。化学療法の進歩により腹膜播種再発に対する治療効果もみられてきているが、未だに５年生存率は低い。胃癌の腹膜播種の機序には、多くのステップと多くの遺伝子が関与していることが知られている。胃癌の腹膜播種には、接着分子関連遺伝子、アポトーシス関連遺伝子や他の遺伝子が深く関与しているという報告がある。胃癌の腹膜播種を始めとする胃癌の転移のメカニズム解明に関してもさらなる研究が必要である。
食道癌は、約半数が胸部中部食道に発生する。本邦の食道癌は９０％以上が扁平上皮癌である。罹患率、死亡率ともに男性のほうが高く、女性の５倍以上である。食道癌の発癌に関しては、飲酒や喫煙の関与は以前より報告されており、近年、ＡＬＤＨ２の関与が報告されている。食道癌の手術は高度侵襲を伴い、予後不良な疾患である。近年、早期癌の増加に伴い内視鏡的治療で根治できる症例も増加してきている。さらに化学放射線療法の効果もみられてきており、治療成績の向上がみられている。しかし、切除不能な進行癌の予後は依然不良である。今後も早期癌発見の新しいスクリーニング体系の確立と化学療法の進歩が望まれるところである。
これまでに開発された癌の検出・診断方法として、腫瘍マーカーの測定が挙げられる。膵臓癌診断のための血中腫瘍マーカーとしては、例えば、ＣＡ１９−９（非特許文献１）、Ｄｕｐａｎ−２（非特許文献２）、ＣＡ−５０（非特許文献３）、Ｓｐａｎ−１（非特許文献４）等が既に開発されている。また、腫瘍細胞に特異的に発現している遺伝子をマーカーとして用いることにより、膵臓癌の検出や診断を行う方法がいくつかの特許公報で開示されている。現在までに、ＰＡＮＣＩＡ及びＰＡＮＣＩＢ（特許文献１）や、ＫＣＣＲ１３Ｌ（特許文献２）が膵臓癌マーカー遺伝子として開示されている。また、膵臓癌の細胞の染色体の特異的な部位にＤＮＡの増幅や欠失があることから、該膵癌に特異的な染色体部位の増幅や欠失を検出することによって、膵癌を診断する方法も提案されている。
また、胃癌に関しては、既知のＩ型コラーゲンのＣ端非３重鎖テロペプチド（ＩＣＴＰ）の発現量の変動をマーカーにすることが特徴である。進行胃癌、特にスキルス胃癌の適切な診断マーカー（特許文献３参照）や、癌部または非癌部組織検体より得られたＤＮＡ繰り返し配列中に存在する脱メチル化ＤＮＡ数を測定し、その割合に基づいて胃癌をはじめ、種々の癌疾患の予後が良好か否かを判断する方法が提案されている（例えば、特許文献４参照。）。
さらに、転移性結腸直腸癌あるいは原発性あるいは転移性の胃癌または食道癌に関しては、ＳＩ、ＣＤＸ１、またはＣＤＸ２の発現を指標として、スクリーニングする方法が提案されている（特許文献５参照。）
しかしながら、腫瘍マーカーは、進行した悪性腫瘍の動態を把握するために使用されているのが現状であり、腫瘍マーカーを利用した癌の検出・診断方法として、早期診断に使用できるものは確立されていない。特に膵臓癌は、早期診断が困難であり、治療成績も不良なため、スクリーニングに応用できる方法の開発が急務である。
特表２０００−５０２９０２号公報 特願２００３−０４１８４３号公報 特開２００１−３３４６０号公報 特開２００２−１１２７９９号公報 特表２００３−５３２３８９号公報
Somatic Cell Genet., 5, 957-972, 1979 Cancer Res., 42, 601, 1982 Int. Arch. Allergy Appl. Immunol., 71, 178-181, 1983 日外誌, 87, 236, 1986
本発明は、このような状況に鑑みてなされたものであり、その目的は早期に、簡便に、消化器癌を検査しうる方法を提供することにある。
本発明者らは、上記課題を解決するために、消化器癌患者の血液サンプルに含まれる糖タンパク質の糖鎖に着目し、消化器癌の新たな検査方法の開発を試みた。具体的には、膵臓癌患者１７例、食道癌患者３４例、胃癌患者２２例より血液を採取し、血漿中のＮ結合型糖鎖に関して質量分析を行った。その結果、癌患者の血液サンプルにおいて、健常者と比較して、有意に存在量が変化している糖鎖を同定することに成功し、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は、被検者より採取された血液中の特定のＮ結合型糖鎖を検出することによる、消化器癌の検査方法に関し、より詳しくは、以下の発明を提供するものである。
[１] 消化器癌の検査方法であって、
（ａ）被検者より採取された血液中の糖タンパクから糖鎖を遊離させる工程、
（ｂ）遊離させた糖鎖を精製する工程、および
（ｃ）精製した糖鎖において、下記（ｉ）および（ｉｉ）の特性を示す糖鎖を検出する工程、を含む方法。
（ｉ） Ｎ結合型糖鎖である
（ｉｉ） ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機による質量分析を行った場合、ピークの質量電荷比（ｍ／ｚ）が、２５２１、２２１６、２０５４、２６８１、３１０８、および２６９５のいずれかを示す
［２］ 消化器癌の検査方法であって、
（ａ）被検者より採取された血液中の糖タンパクから糖鎖を遊離させる工程、
（ｂ）遊離させた糖鎖を精製する工程、および
（ｃ）精製した糖鎖において、下記の少なくともいずれか１つの糖鎖を検出する工程、を含む方法。
[３] 消化器癌が、膵臓癌、食道癌、または胃癌である、[１]または[２]に記載の方法。
本発明によれば、被検者より採取された血液において、特定のＮ結合型糖鎖を検出することにより、癌の早期の段階で簡便に消化器癌の検査を行うことが可能となる。
健常者と膵臓癌の２群間に対して行ったＴ−ｔｅｓｔにより、有意差があると判定された糖鎖について、各検体中での存在量を定量した結果を示すグラフである。糖鎖の存在量の総シグナル量を計算して、各検体における糖鎖の比率で補正をした。 健常者と食道癌の２群間に対して行ったＴ−ｔｅｓｔにより、有意差があると判定された糖鎖について、各検体中での存在量を定量した結果を示すグラフである。糖鎖の存在量の総シグナル量を計算して、各検体における糖鎖の比率で補正をした。 健常者と胃癌の群間に対して行ったＴ−ｔｅｓｔにより、有意差があると判定された糖鎖について、各検体中での存在量を定量した結果を示すグラフである。糖鎖の存在量の総シグナル量を計算して、各検体における糖鎖の比率で補正をした。 質量分析の結果得られた膵臓癌患者および健常者の各ピークについて、その面積を多変量解析し、２群（患者群、健常者群）に分離できるピーク組み合わせを同定した結果を示す図である。
本発明は、消化器癌の検査方法であって、被検者より採取された血液中の糖タンパクから糖鎖を遊離させる工程（工程（ａ））、遊離させた糖鎖を精製する工程（工程（ｂ））、および、精製した糖鎖において、下記（ｉ）および（ｉｉ）の特性を示す糖鎖を検出する工程（工程（ｃ））、を含む方法を提供する。
（ｉ） Ｎ結合型糖鎖である
（ｉｉ） ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機による質量分析を行った場合におけるピークの質量電荷比（ｍ／ｚ）が、２５２１、２２１６、２０５４、２６８１、３１０８、２６９５、１３２６、１８９２、２１７２、２２５７、２３３４、２３７５、２６３９、２７０３、２７２５、２８２７、および３０３０のいずれかを示す。
本発明の検査方法を適用する「消化器癌」としては、特に制限されるものではないが、本発明は、難治性の癌である膵臓癌や食道癌、および発生頻度の高い癌である胃癌において特に有用である。
本発明の消化器癌の検査方法のサンプルである「被検者より採取された血液」としては、血液成分を全て含む全血であっても、血液から分離された血清や血漿等であってもよいが、血清や血漿が良く、とくに血漿が特に好ましい。
本発明において、血液中の糖タンパクから糖鎖を遊離させる方法としては、特に制限されるものではないが、例えば、Ｎ−グリコシダーゼＦ（グリコペプチダーゼ、ＰＮ Ｇａｓｅ、グリカナーゼ、グリコアミダーゼなどとも称される）やグリコペプチダーゼＡ等を用いた酵素法や、ヒドラジン分解法を挙げることができる。なかでも、Ｎ−グリコシダーゼＦによる酵素法を好適に用いることができる。その際、トリプシン等のプロテアーゼを併用することもできる。
本発明において、遊離させた糖鎖を精製する方法としては、試料中の混合物から糖鎖を選択的に捕捉し精製する方法であれば特に制限されないが、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳや高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）での高感度測定用に最適化された糖鎖補足ビーズであるＢｌｏｔＧｌｙｃｏ（登録商標）（住友ベークライト株式会社製）を用いた方法が特に好適である。
本発明においては、精製した糖鎖において、Ｎ結合型糖鎖であって、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機による質量分析を行った場合におけるピークの質量電荷比（ｍ／ｚ）が、２５２１、２２１６、２０５４、２６８１、３１０８、２６９５、１３２６、１８９２、２１７２、２２５７、２３３４、２３７５、２６３９、２７０３、２７２５、２８２７、および３０３０のいずれかを示す糖鎖を検出する。本発明においては、ピークの質量電荷比（ｍ／ｚ）が、２５２１または２２１６を示す糖鎖を検出することが、特に好ましい。なお、質量電荷比（ｍ／ｚ）の上記値には、±１以内の測定誤差が生じうることを理解されたい。
ここで「Ｎ結合型糖鎖」とは、糖タンパク質の糖鎖のうち、タンパク質のアスパラギン残基が持つ側鎖のアミド基の窒素原子に結合している糖鎖であり、Ｎ型糖鎖やアスパラギン結合型糖鎖とも称される。また、「ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ」とは、ＭＡＬＤＩ法を利用して飛行時間を基に質量を測定する方法である。ＭＡＬＤＩ法は、試料をプレート上にスポットした後、マトリクス溶液（2,5-Dihydroxybenzoic acid）を添加、乾固し、結晶状態にし、パルスレーザー照射により大きなエネルギーをマトリクス上に与え、（Ｍ＋Ｈ）＋、（Ｍ＋Ｎａ）＋などの試料由来イオンとマトリクス由来イオンとを脱離させる方法である。イオンが一定の加速電圧Ｖで加速される場合、イオンの質量をｍ、イオンの速度をｖ、イオンの電荷数をｚ、電気素量をｅ、イオンの飛行時間をｔとしたとき、イオンの質量電荷比（ｍ／ｚ）は、『ｍ／ｚ＝２ｅＶｔ２／Ｌ２』で表すことができる。
本発明において、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機を用いた質量分析によるピークの質量電荷比（ｍ／ｚ）が２５２１である糖鎖とは、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機よる質量分析の結果、２５２１ｍ／ｚマススペクトルピークを呈する糖鎖であり、その構造式は、
と推定される。
また、 本発明において、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機を用いた質量分析によるピークの質量電荷比（ｍ／ｚ）が２２１６である糖鎖とは、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機よる質量分析の結果、２２１６ｍ／ｚマススペクトルピークを呈する糖鎖であり、その構造式は、
または
と推定される。
また、本発明において、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機を用いた質量分析によるピークの質量電荷比（ｍ／ｚ）が２０５４である糖鎖とは、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機よる質量分析の結果、２０５４ｍ／ｚマススペクトルピークを呈する糖鎖であり、その構造式は、
と推定される。
また、本発明において、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機を用いた質量分析によるピークの質量電荷比（ｍ／ｚ）が２６８１である糖鎖とは、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機よる質量分析の結果、２６８１ｍ／ｚマススペクトルピークを呈する糖鎖であり、その構造式は、
と推定される。
また、本発明において、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機を用いた質量分析によるピークの質量電荷比（ｍ／ｚ）が３１０８である糖鎖とは、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機よる質量分析の結果、３１０８ｍ／ｚマススペクトルピークを呈する糖鎖であり、その構造式は、
と推定される。
また、本発明において、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機を用いた質量分析によるピークの質量電荷比（ｍ／ｚ）が１３２６である糖鎖とは、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機よる質量分析の結果、１３２６ｍ／ｚマススペクトルピークを呈する糖鎖であり、その構造式は、(Hex)2(HexNAc)2(Deoxyhexose)1と推定される（表１）。
また、本発明において、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機を用いた質量分析によるピークの質量電荷比（ｍ／ｚ）が１８９２である糖鎖とは、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機よる質量分析の結果、１８９２ｍ／ｚマススペクトルピークを呈する糖鎖であり、その構造式は、(HexNAc)2(Deoxyhexose)1+(Man)3(GlcNAc)2と推定される（表１）。
また、本発明において、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機を用いた質量分析によるピークの質量電荷比（ｍ／ｚ）が２１７２である糖鎖とは、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機よる質量分析の結果、２１７２ｍ／ｚマススペクトルピークを呈する糖鎖であり、その構造式は、(Hex)2(HexNAc)1(NeuAc)1+(Man)3(GlcNAc)2と推定される（表１）。
また、本発明において、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機を用いた質量分析によるピークの質量電荷比（ｍ／ｚ）が２２５７である糖鎖とは、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機よる質量分析の結果、２２５７ｍ／ｚマススペクトルピークを呈する糖鎖であり、その構造式は、(Hex)1(HexNAc)3(Deoxyhexose)1+(Man)3(GlcNAc)2と推定される（表１）。
また、本発明において、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機を用いた質量分析によるピークの質量電荷比（ｍ／ｚ）が２３３４である糖鎖とは、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機よる質量分析の結果、２３３４ｍ／ｚマススペクトルピークを呈する糖鎖であり、その構造式は、(Hex)3(HexNAc)1(NeuAc)1+(Man)3(GlcNAc)2と推定される（表１）。
また、本発明において、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機を用いた質量分析によるピークの質量電荷比（ｍ／ｚ）が２３７５である糖鎖とは、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機よる質量分析の結果、２３７５ｍ／ｚマススペクトルピークを呈する糖鎖であり、その構造式は、(Hex)2(HexNAc)2(NeuAc)1+(Man)3(GlcNAc)2と推定される（表１）。
また、本発明において、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機を用いた質量分析によるピークの質量電荷比（ｍ／ｚ）が２６３９である糖鎖とは、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機よる質量分析の結果、２６３９ｍ／ｚマススペクトルピークを呈する糖鎖であり、その構造式は、(Hex)3(HexNAc)4+(Man)3(GlcNAc)2と推定される（表１）。
また、本発明において、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機を用いた質量分析によるピークの質量電荷比（ｍ／ｚ）が２７０３である糖鎖とは、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機よる質量分析の結果、２７０３ｍ／ｚマススペクトルピークを呈する糖鎖であり、その構造は、上記２６８１ｍ／ｚマススペクトルピークを呈する糖鎖のＮａ付加体と推定される（表１）。
また、本発明において、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機を用いた質量分析によるピークの質量電荷比（ｍ／ｚ）が２７２５である糖鎖とは、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機よる質量分析の結果、２７２５ｍ／ｚマススペクトルピークを呈する糖鎖であり、その構造式は、(Hex)2(HexNAc)3(Deoxyhexose)1(NeuAc)1+(Man)3(GlcNAc)2と推定される（表１）。
また、本発明において、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機を用いた質量分析によるピークの質量電荷比（ｍ／ｚ）が２８２７である糖鎖とは、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機よる質量分析の結果、２８２７ｍ／ｚマススペクトルピークを呈する糖鎖であり、その構造式は、(Hex)2(HexNAc)2(Deoxyhexose)1(NeuAc)2+(Man)3(GlcNAc)2と推定される（表１）。
また、本発明において、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機を用いた質量分析によるピークの質量電荷比（ｍ／ｚ）が３０３０である糖鎖とは、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機よる質量分析の結果、３０３０ｍ／ｚマススペクトルピークを呈する糖鎖であり、その構造式は、(Hex)2(HexNAc)3(Deoxyhexose)1(NeuAc)2+(Man)3(GlcNAc)2と推定される（表１）。
従って、本発明は、消化器癌の検査方法であって、被検者より採取された血液中の糖タンパクから糖鎖を遊離させる工程（工程（ａ））、遊離させた糖鎖を精製する工程（工程（ｂ））、および、精製した糖鎖において、上記構造式からなる少なくともいずれか１つの糖鎖を検出する工程（工程（ｃ））を含む方法をも提供するものである。
本発明においては、上記糖鎖を検出する限り、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機以外の分析機を使用することもできる。イオン源として、例えば、電子イオン化法、化学イオン化法、電界離脱法、高速原子衝突法、エレクトロスプレーイオン化法、大気圧化学イオン化法等を用いることができ、また、分析法としては、例えば、磁場偏向型、四重極型、イオントラップ型、フーリエ変換イオンサイクロトロン共鳴型などの方法を用いることができる。また、本発明においては、上記糖鎖を検出する限り、高速液体クロマトグラフィーを用いることもでき、上記質量分析と高速液体クロマトグラフィーとを組み合わせて用いることもできる。
工程（ｃ）における糖鎖の検出の結果は、必要に応じて、対照値（例えば、健常者における検出値、癌患者における検出値）と比較される。本実施例において、膵臓癌患者、食道癌患者、および胃癌患者において、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機による質量分析を行った場合におけるピークの質量電荷比（ｍ／ｚ）が、２５２１、２２１６、および２０５４のいずれかを示す糖鎖の検出値は、健常者の検出値よりも、有意に低いことが明らかとなった。従って、被検者において、これらの糖鎖の検出値が、健常者の検出値よりも有意に低い場合、あるいはこれら癌患者の検出値と近似している場合、被検者は、これら癌の疑いがあると判定される。一方、本実施例において、膵臓癌患者および食道癌患者において、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機による質量分析を行った場合におけるピークの質量電荷比（ｍ／ｚ）が、２６８１、３１０８、および２６９５のいずれかを示す糖鎖の検出値は、健常者の検出値よりも、有意に高いことが明らかとなった。従って、被検者において、これらの糖鎖の検出値が、健常者の検出値よりも有意に高い場合、あるいはこれら癌患者の検出値と近似している場合、被検者は、これら癌の疑いがあると判定される。本発明における癌の検査においては、上記糖鎖のうち、複数の糖鎖の検出結果を組み合わせて、癌の検査を行うことにより、その精度を高めることも可能である。さらに、本発明における癌の検査方法を、既に公知の他の癌の検査方法と組み合わせることにより、癌の検査の精度を高めることも可能である。
以下、実施例及び比較例に基づいて本発明をより具体的に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
[実施例１]
（１）血液の採取
インフォームド・コンセントの得られた、膵臓癌患者１７例、食道癌患者３４例、胃癌患者２２例の患者、および対照として健常者１１例より血液を採取し、血漿を遠心分離した。得られた検体（血漿）は連結可能匿名化を行った後、−８０℃で凍結保存した。
（２）血液サンプルの作製
タンパク質と修飾糖鎖を遊離させる目的で、血漿をＮ−グリコシダーゼＦ及びトリプシンにより処理した。具体的には、１００μＬの血漿に、純水（１６５μＬ）、１Ｍ重炭酸アンモニウム（２５μＬ）、及び１２０ｍＭ ジチオスレイトール（２５μＬ）を加え、６０℃で３０分間静置した後、１２３ｍＭ ヨードアセトアミド（５０μＬ）を加え、室温、遮光下で１時間静置した。続いて、トリプシン（２０００ｕｎｉｔ、２５μＬ）を加え、３７℃で１時間静置した後、８０℃で１５分間加熱することによりトリプシンを変性させた。室温まで冷却させた後に、Ｎ−グリコシダーゼＦ（１０ｕｎｉｔ、１０μＬ）を加え、３７℃でオーバーナイト静置した。８０℃で１５分間加熱することにより、酵素を変性させ、最終量４００μＬの酵素処理血漿サンプルを得た。また、内部標準グルコースオリゴマー（１−２０）（生化学工業 ＃８００１１１）を１０ｍｇ／ｍＬとなるように純水に溶解し、内部標準糖鎖溶液を作製した。上記酵素処理血漿サンプル９５μＬに対し、内部標準糖鎖溶液５μＬ（＝５０μｇ相当）を添加し、全量１００μＬの溶液を調製した。このうち、２０μＬを糖鎖補足ビーズ（BlotGlyco（登録商標）for MALDI（住友ベークライト株式会社製））により処理し、遊離した糖鎖の捕捉、及びラベル化を行った。
（３）糖鎖分析の結果解析
ビーズに捕捉された糖鎖を精製・分離し、マトリックス(2,5-dihydroxybenzoic acid)溶液と混合して、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ測定に供した。質量分析器としては、Autoflex III smartbeam TOF/TOF（Bruker Daltonics社製）を用いた。また、データの収集・解析には該機器附属のソフトウェア (例えば、flexControl, flexAnalysis)を用いた。また、レーザーイオン化は、通常ポジティブイオンモードで行い、リフレクターモードで検出した。
得られたマススペクトルから２０〜１００のピークを同定した。このうち、膵臓癌、胃癌、膵臓癌について、それぞれ、内部標準糖鎖などを除外した６種類の糖鎖を解析対象とし、内部標準と比較することにより各糖鎖の定量化を行った。糖鎖の存在量の総シグナル量を計算して、それぞれの糖鎖の比率で補正をした。
さらに、健常者と膵臓癌、健常者と食道癌、健常者と胃癌のぞれぞれ２群間に対してＴ−ｔｅｓｔを行い、有意差を示す糖鎖の特定を試みた。その結果、膵臓癌および食道癌については、質量電荷比（ｍ／ｚ）が、２５２１、２２１６、２０５４、２６８１、３１０８、および２６９５を示す糖鎖が、胃癌については、質量電荷比（ｍ／ｚ）が、２５２１、２２１６、および２０５４を示す糖鎖が特定された（図１〜３）。なお、ピーク面積／ピーク総面積（％）は、質量電荷比（ｍ／ｚ）が、２５２１、２２１６、または２０５４を示す糖鎖では、癌患者において有意に低く、２６８１、３１０８、または２６９５を示す糖鎖では、癌患者において有意に高かった。
また、２５２１ｍ／ｚ糖鎖、及び２２１６ｍ／ｚ糖鎖を用いた場合の正答率を、６つの分類器（Compound Covariate Predictor、Diagonal Linear Discriminant Analysis、1-Nearest Neighbor Predictor、3-Nearest Neighbor Predictor、Nearest Centroid Predictor、Support Vector Machine Predictor）により算出した。その結果、膵臓癌については、平均８８％程度の正答率が得られた。
また、質量分析の結果得られたシグナルから糖鎖の構造式を予測した。その結果、質量電荷比（ｍ／ｚ）が２５２１を示す糖鎖は、構造が、
と予想され、質量電荷比（ｍ／ｚ）が２２１６を示す糖鎖は、構造が、
または
と予想され、質量電荷比（ｍ／ｚ）が２０５４を示す糖鎖は、構造が、
と予想され、質量電荷比（ｍ／ｚ）が２６８０を示す糖鎖は、構造が、
と予想され、質量電荷比（ｍ／ｚ）が３１０８を示す糖鎖は、構造が、
と予想された。
[実施例２]
（１）血液の採取
インフォームド・コンセントの得られた、膵臓癌患者１７例、および対照として健常者１１例より血液を採取し、血漿を遠心分離した。得られた検体（血漿）は連結可能匿名化を行った後、−８０℃で凍結保存した。
（２）血液サンプルの作製
タンパク質と修飾糖鎖を遊離させる目的で、血漿をＮ−グリコシダーゼＦ及びトリプシンにより処理した。具体的には、１００μＬの血漿に、純水（１６５μＬ）、１Ｍ重炭酸アンモニウム（２５μＬ）、及び１２０ｍＭ ジチオスレイトール（２５μＬ）を加え、６０℃で３０分間静置した後、１２３ｍＭ ヨードアセトアミド（５０μＬ）を加え、室温、遮光下で１時間静置した。続いて、トリプシン（２０００ｕｎｉｔ、２５μＬ）を加え、３７℃で１時間静置した後、８０℃で１５分間加熱することによりトリプシンを変性させた。室温まで冷却させた後に、Ｎ−グリコシダーゼＦ（１０ｕｎｉｔ、１０μＬ）を加え、３７℃でオーバーナイト静置した。８０℃で１５分間加熱することにより、酵素を変性させ、最終量４００μＬの酵素処理血漿サンプルを得た。また、内部標準グルコースオリゴマー（１−２０）（生化学工業 ＃８００１１１）を１０ｍｇ／ｍＬとなるように純水に溶解し、内部標準糖鎖溶液を作製した。上記酵素処理血漿サンプル９５μＬに対し、内部標準糖鎖溶液５μＬ（＝５０μｇ相当）を添加し、全量１００μＬの溶液を調製した。このうち、２０μＬを糖鎖補足ビーズ（BlotGlyco（登録商標）for MALDI（住友ベークライト株式会社製））により処理し、遊離した糖鎖の捕捉、及びラベル化を行った。
（３）糖鎖分析の結果解析
ビーズに捕捉された糖鎖を精製・分離し、マトリックス(2,5-dihydroxybenzoic acid)溶液と混合して、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ測定に供した。質量分析器としては、Autoflex III smartbeam TOF/TOF（Bruker Daltonics社製）を用いた。また、データの収集・解析には該機器附属のソフトウェア (例えば、flexControl, flexAnalysis)を用いた。また、レーザーイオン化は、通常ポジティブイオンモードで行い、リフレクターモードで検出した。
得られたマススペクトルから２０〜１００のピークを同定した。膵臓癌患者に共通するピークを集め、膵臓癌患者および健常者の各ピークの面積を、多変量解析ソフトＳＩＭＣＡ−Ｐ／Ｐ＋（ＵＭＥＴＲＩＣＳ社製）を用いて解析し、２群（患者群、健常者群）に分離できるピーク組み合わせを求めた。
その結果、上記２群分離を与える糖鎖ピークとして、質量電荷比（ｍ／ｚ）が、１３２６、１８９２、２０５４、２１７２、２２１６、２２５７、２３３４、２３７５、２５２１、２６３９、２６８１、２７０３、２７２５、２８２７、３０３０および３１０８の糖鎖が検出された（図４、表１）。

なお、表１中の記号の意味は、下記の通りである。
δmass = [測定値 m/z]-[理論値 m/z]
＋：「＋」の右側に示された構造が基本構造であり、左側に示された構造が付加構造である。
Hex: hexose(mannose)
HexNAc: N-acetylhexosamine(N-acetylglucosamine)
Deoxyhexose: fucose
Man: mannose
GlcNAc: N-acetylglycosamine
NeuAc: N-acetylneuraminic acid
本発明によれば、被検者より採取された血液において、特定のＮ結合型糖鎖を検出することにより、癌の早期の段階で簡便に消化器癌の検査を行うことが可能となるため、本発明は、特に医療分野において有用である。

Claims (3)

  1. 消化器癌の検査方法であって、
    （ａ）被検者より採取された血液中の糖タンパクから糖鎖を遊離させる工程、
    （ｂ）遊離させた糖鎖を精製する工程、および
    （ｃ）精製した糖鎖において、下記（ｉ）および（ｉｉ）の特性を示す糖鎖を検出する工程、を含む方法。
    （ｉ） Ｎ結合型糖鎖である
    （ｉｉ） ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ型分析機による質量分析を行った場合、ピークの質量電荷比（ｍ／ｚ）が、２５２１、２２１６、２０５４、２６８１、３１０８、および２６９５のいずれかを示す
  2. 消化器癌の検査方法であって、
    （ａ）被検者より採取された血液中の糖タンパクから糖鎖を遊離させる工程、
    （ｂ）遊離させた糖鎖を精製する工程、および
    （ｃ）精製した糖鎖において、下記の少なくともいずれか１つの糖鎖を検出する工程、を含む方法。
  3. 消化器癌が、膵臓癌、食道癌、または胃癌である、請求項１または２に記載の方法。
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