JP5842254B2 - Egcgまたはメチル化egcgとpde阻害剤との組み合わせ - Google Patents
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Description
[1]エピガロカテキンガレートまたはメチル化エピガロカテキンガレート、またはその医薬的に許容される塩と、ホスホジエステラーゼ阻害剤と、を組み合わせたことを特徴とする薬剤;
[2]がん、アレルギー、肥満、動脈硬化、炎症または筋萎縮の治療で使用するための[1]に記載の薬剤;
[3]67LR陽性の疾患の治療で使用するための[1]または[2]に記載の薬剤;
[4]前記ホスホジエステラーゼ阻害剤がホスホジエステラーゼ3阻害剤またはホスホジエステラーゼ5阻害剤である[1]〜[3]のいずれか一つに記載の薬剤;
[5]前記ホスホジエステラーゼ阻害剤がバルデナフィルである、[1]〜[3]のいずれか一つに記載の薬剤;
[6]エピガロカテキンガレートまたはメチル化エピガロカテキンガレート、またはその医薬的に許容される塩と、とホスホジエステラーゼ阻害剤との組み合わせを患者に投与することを含む、がん、アレルギー、肥満、動脈硬化、炎症または筋萎縮の治療方法;
[7]a)エピガロカテキンガレートまたはメチル化エピガロカテキンガレート、またはその医薬的に許容される塩を含有する第一の単位剤形;
b)ホスホジエステラーゼ阻害剤を含有する第二の単位剤形;及び
c)前記第一の単位剤形及び第二の単位剤形を収容するための容器手段;
を含んでなる、がん、アレルギー、肥満、動脈硬化、炎症または筋萎縮の治療で使用するためのキット。
(1)EGCGとPDE5阻害剤の組み合わせによる細胞増殖抑制作用及び細胞致死作用の検討
ヒト多発性骨髄腫細胞株U266は10% ウシ胎児血清(FCS) (BIOLOGICAL INDUSTRIES)添加RPMI RPMI1640培地(NISSUI PHARMACEUTICAL Co. LTD.、東京)にて37℃、水蒸気飽和した5% CO2条件下で継代、維持した。細胞は対数増殖期で培養維持した。ヒト急性骨髄性白血病細胞株HL60は10% ウシ胎児血清(FCS)添加RPMI 1640培地にて37℃、水蒸気飽和した5% CO2 条件下で継代、維持した。細胞は対数増殖期で培養維持した。培養に使用したRPMI 1640培地は、超純水1LあたりRPMI 1640培地(コスモ・バイオ株式会社、東京)10.4g、HEPES(和光純薬工業株式会社、大阪)2.38g、注射用ペニシリンG カリウム 20万単位(明治製菓株式会社、東京) 0.5vial、硫酸ストレプトマイシン注射用 1g(明治製菓株式会社、東京) 0.1vial、NaHCO3(Nacalai tesque, Inc. Kyoto)2.0gを懸濁した後、フィルター滅菌した。その後、ウシ胎児血清(FCS)をRPMI 1640培地に添加し、細胞培養に使用した。
トリパンブルー法によるEGCGとバルデナフィルの組み合わせによる抗がん作用の検討において用いたトリパンブルーは1%の濃度となるようにPBSに懸濁したものをトリパンブルー染色液とした。用いるPBSは超純水1Lに対し、NaCl 8.0g、KCl 0.2g、Na2HPO4 1.15g、KH2PO40.2gを溶解し調製しオートクレーブ滅菌した。
Annexin V PI重染色法によるEGCGとバルデナフィルの組み合わせによる抗がん作用の検討において用いたヨウ化プロピジウム(PI)染色液はPI(Sigma)を50μg/mLの濃度となるようにPBSに懸濁したものをPI染色液とした。用いたPBSは超純水1Lに対し、NaCl 8.0g、KCl 0.2 g、Na2HPO4 1.15g、KH2PO4 0.2gを溶解し調製しオートクレーブ滅菌した。用いたAnnexin V Binding Bufferは10mM HEPES, 140mM NaCl; 2.5mM CaCl2(Wako); pH 7.4となるよう調整しフィルター滅菌に供した。
ヒト前立腺がん細胞株PC3は10%ウシ胎児血清(FCS)添加RPMI RPMI1640培地にて37℃、水蒸気飽和した5% CO2条件下で継代、維持した。細胞は対数増殖期で培養維持した。培養に使用したRPMI 1640培地は、超純水1LあたりRPMI 1640培地 10.4g、HEPES 2.38g、注射用ペニシリンG カリウム 20万単位 0.5 vial、硫酸ストレプトマイシン注射用 1g 0.1 vial、NaHCO32.0gを懸濁した後、フィルター滅菌した。その後、ウシ胎児血清(FCS)をRPMI 1640培地に添加し、細胞培養に使用した。
(1)多発性骨髄腫細胞に対するEGCGの細胞致死作用(A)及び細胞増殖抑制作用(B)におけるPDE5阻害剤の組み合わせ効果
EGCG抵抗性因子であると考えられるcGMP特異的分解酵素であるPDE5に対する選択的阻害剤(バルデナフィル)によるEGCGの多発性骨髄腫に対する作用の増強について検討を行った。
EGCG抵抗性因子であると考えられるcGMP特異的分解酵素であるPDE5に対する選択的阻害剤(バルデナフィル)によるEGCGの急性骨髄性白血病細胞に対する作用の増強について検討を行った。
EGCG抵抗性因子であると考えられるcGMP特異的分解酵素であるPDE5に対する選択的阻害剤(バルデナフィル)によるEGCGの多発性骨髄腫細胞に対する作用の増強について検討を行った。
EGCG抵抗性因子であると考えられるcGMP特異的分解酵素であるPDE5に対する選択的阻害剤(バルデナフィル)によるEGCGの急性骨髄性白血病細胞に対する作用の増強について検討を行った。
EGCG抵抗性因子であると考えられるcGMP特異的分解酵素であるPDE5に対する選択的阻害剤(バルデナフィル)によるEGCGの多発性骨髄腫細胞に対する作用の増強について検討を行った。
EGCG抵抗性因子であると考えられるcGMP特異的分解酵素であるPDE5に対する選択的阻害剤(バルデナフィル)によるEGCGの急性骨髄性白血病細胞に対する作用の増強について検討を行った。
EGCG抵抗性因子であると考えられるcGMP特異的分解酵素であるPDE5に対する選択的阻害剤(バルデナフィル)によるEGCGの前立腺がんに対する作用の増強について検討を行った。
バルデナフィルによるEGCGの多発性骨髄腫細胞に対する作用の増強について検討を行った。ヒト多発性骨髄腫細胞株RPMI8226を24 well plateに5x104cells/mLとなるように播種し、終濃度が5μMとなるようバルデナフィルを添加し、3時間経過後、EGCGを終濃度が5μMとなるよう添加した。96時間後、トリパンブルー染色法により細胞生存率(A)及び生細胞数(B)を測定した。EGCG、バルデナフィル未添加群をコントロールとし、100%とした。結果を図8に示す(n=3,Tukey’s test,*:P<0.05,***:P<0.001)。
バルデナフィルによるEGCGの患者由来多発性骨髄腫細胞に対する作用の増強について検討を行った。患者由来多発性骨髄腫細胞を24 well plateに5x104cells/mLとなるように播種し、終濃度が5μMとなるようバルデナフィルを添加し、3時間経過後、EGCGを終濃度が5μMとなるよう添加した。96時間後、トリパンブルー染色法により細胞生存率(A)及び生細胞数(B)を測定した。EGCG、バルデナフィル未添加群をコントロールとし、100%とした。結果を図9に示す(n=3,Tukey’s test,***:P<0.001)。
バルデナフィルによるEGCGの形質細胞腫に対する作用の増強について検討を行った。ヒト形質細胞腫ARH77を24 well plateに5x104cells/mLとなるように播種し、終濃度が5μMとなるようバルデナフィルを添加し、3時間経過後、EGCGを終濃度が5μMとなるよう添加した。96時間後、トリパンブルー染色法により細胞生存率(A)及び生細胞数(B)を測定した。EGCG、バルデナフィル未添加群をコントロールとし、100%とした。結果を図10に示す(n=3,Tukey’s test,**:P<0.01,***:P<0.001)。
バルデナフィルによるEGCGの慢性骨髄性白血病細胞に対する作用の増強について検討を行った。ヒト慢性骨髄性白血病細胞株K562を24 well plateに5x104cells/mLとなるように播種し、終濃度が5μMとなるようバルデナフィルを添加し、3時間経過後、EGCGを終濃度が5μMとなるよう添加した。96時間後、トリパンブルー染色法により細胞生存率(A)及び生細胞数(B)を測定した。EGCG、バルデナフィル未添加群をコントロールとし、100%とした。結果を図11に示す(n=3,Tukey’s test,**:P<0.01,***:P<0.001)。
バルデナフィルによるEGCGの乳がん細胞に対する作用の増強について検討を行った。ヒト乳がん細胞株MCF-7を24 well plateに1x104cells/mLとなるように播種し24時間前培養した。その後、終濃度が5μMとなるようバルデナフィルを添加し、3時間経過後、EGCGを終濃度が5μMとなるよう添加した。96時間後、トリパンブルー染色法により生細胞数を測定した。EGCG、バルデナフィル未添加群をコントロールとし、100%とした。結果を図12に示す(n=3,Tukey’s test,***:P<0.001)。
バルデナフィルによるEGCGの胃がん細胞に対する作用の増強について検討を行った。ヒト胃がん細胞株MKN45を24 well plateに1x104cells/mLとなるように播種し24時間前培養した。その後、終濃度が5μMとなるようバルデナフィルを添加し、3時間経過後、EGCGを終濃度が5μMとなるよう添加した。96時間後、トリパンブルー染色法により生細胞数を測定した。EGCG、バルデナフィル未添加群をコントロールとし、100%とした。結果を図13に示す(n=3,Tukey’s test,***:P<0.001)。
バルデナフィルによるEGCGの膵臓がん細胞に対する作用の増強について検討を行った。ヒト膵臓がん細胞株PANC-1を24 well plateに1x104cells/mLとなるように播種し24時間前培養した。その後、終濃度が5μMとなるようバルデナフィルを添加し、3時間経過後、EGCGを終濃度が5μMとなるよう添加した。96時間後、トリパンブルー染色法により細胞生存率(A)及び生細胞数(B)を測定した。EGCG、バルデナフィル未添加群をコントロールとし、100%とした。結果を図14に示す(n=3,Tukey’s test,**:P<0.01,***:P<0.001)。
バルデナフィルによるEGCGの臍帯静脈内皮細胞に対する作用の増強について検討を行った。ヒト臍帯静脈内皮細胞HUVECを24 well plateで5%FCS含有EGM-2培地に2x104cells /mLにて播種し、24時間前培養後した。その後各濃度(0〜5μM)のバルデナフィルを添加したSOD(5U/mL)、Catalase(200U/mL)含有1%FCS RPMI1640培地に置換し、3時間処理した。その後、EGCGを終濃度5μMとなるように添加した。96時間後、トリパンブルー染色法により細胞生存率(A)及び生細胞数(B)を測定した。EGCG、バルデナフィル未添加群をコントロールとし、100%とした。結果を図15に示す(n=3,Tukey’s test)。
バルデナフィルによるEGCGの健常者由来末梢血リンパ球に対する作用の増強について検討を行った。健常者由来末梢血リンパ球PBMCを24 well plateに5x104cells/mLとなるように播種し、終濃度が5μMとなるようバルデナフィルを添加し、3時間経過後、EGCGを終濃度が5μMとなるよう添加した。96時間後、トリパンブルー染色法により細胞生存率(A)及び生細胞数(B)を測定した。EGCG、バルデナフィル未添加群をコントロールとし、100%とした。結果を図16に示す(n=3,Tukey’s test)。
バルデナフィルによるEGCGの形質細胞腫に対する作用の増強について検討を行った。マウス形質細胞腫細胞株MPC11を24 well plateに5x 104cells/mLとなるように播種し、終濃度が5μMとなるようバルデナフィルを添加し、3時間経過後、EGCGを終濃度が5μMとなるよう添加した。96時間後、トリパンブルー染色法により生細胞数を測定した。EGCG、バルデナフィル未添加群をコントロールとし、100%とした。結果を図17(A)に示す(n=3,Tukey’s test,**:P<0.01)。
ヒト多発性骨髄腫細胞株U266を24 well plateに5x104 cells/mLとなるように播種し、終濃度が5μMとなるようバルデナフィルを添加し、3時間後、EGCG 3”メチルまたはEGCG 7メチルを終濃度が5μMとなるよう添加した。96時間後、トリパンブルー染色法により生細胞数を測定した。未添加群をコントロールとし、100%とした。EGCG 3”メチル、EGCG 7メチル、バルデナフィル未添加群をコントロールとし、100%とした。結果を図18に示す(n=3,Tukey’s test,***:P<0.001)。
ヒト前立腺がん細胞株PC3またはヒト膵臓がん細胞株PANC-1を24 well plateに1x104 cells/mLとなるように播種し、24時間前培養した。その後、終濃度が5μMとなるようバルデナフィルを添加し、3時間経過後、EGCG 7メチルを終濃度が5μMとなるよう添加した。96時間後、トリパンブルー染色法により生細胞数を測定した。未添加群をコントロールとし、100%とした。結果を図19に示す(n=3,Tukey’s test,**:P<0.01,***:P<0.001)。
Phosphodiesterase IIIに対する選択的阻害薬であるトレキシンによるEGCGの慢性骨髄性白血病細胞に対する作用の増強について検討を行った。ヒト慢性骨髄性白血病細胞株K562を24 well plateに5x104 cells/mLとなるように播種し、終濃度が5μMとなるようトレキシンを添加し、3時間経過後、EGCGを終濃度が5μMとなるよう添加した。96時間後、トリパンブルー染色法により生細胞数を測定した。EGCG、トレキシン未添加群をコントロールとし、100%とした。結果を図20に示す(n=3,Tukey’s test,***:P<0.001)。
マウスマクロファージ細胞株RAW 264.7を5 mL dishに1×105 cells/mLとなるように播種し、1% FCS-DMEMにて24時間前培養を行った。次にバルデナフィルを5μMとなるように添加し、さらにその3時間後、EGCGをそれぞれ0μM及び10μMとなるように添加した。24時間後に細胞を回収し、Toll-like receptor (TLR)2及びTLR 4発現をウエスタンブロット法を用いて測定した。結果を表1に示す。EGCGはバルデナフィルと併用することでTLR2及びTLR4の発現量を顕著に低下させた。
以上の結果から、PDE3阻害剤及びPDE5阻害剤がEGCGの抗がん作用の増強剤として有効で有ることが判明した。また、EGCGとPDE5阻害剤の併用が67LR陽性がんに対する分子標的薬として極めて有効であることが示された。また、EGCGとPDE5阻害剤の併用が正常細胞に対して毒性を示さないことが判明した。
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Claims (5)
- エピガロカテキンガレートまたはメチル化エピガロカテキンガレート、またはその医薬的に許容される塩と、ホスホジエステラーゼ阻害剤と、を組み合わせたことを特徴とする薬剤であって、
前記ホスホジエステラーゼ阻害剤がホスホジエステラーゼ3阻害剤またはホスホジエステラーゼ5阻害剤である前記薬剤。 - がん、アレルギー、肥満、動脈硬化、炎症または筋萎縮の治療で使用するための、請求項1に記載の薬剤。
- 67LR陽性の疾患の治療で使用するための、請求項1または請求項2に記載の薬剤。
- 前記ホスホジエステラーゼ阻害剤がバルデナフィル又はトレキシンである、請求項1〜請求項3のいずれか一項に記載の薬剤。
- a)エピガロカテキンガレートまたはメチル化エピガロカテキンガレート、またはその医薬的に許容される塩を含有する第一の単位剤形;
b)ホスホジエステラーゼ阻害剤を含有する第二の単位剤形;及び
c)前記第一の単位剤形及び第二の単位剤形を収容するための容器手段;
を含んでなる、がん、アレルギー、肥満、動脈硬化、炎症または筋萎縮の治療で使用するためのキット。
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