JP5801854B2 - 抗菌ペプチド - Google Patents
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Description
固相ペプチド合成(SPPS)
フルオレニルメトキシカルボニル(Fmoc)保護したLアミノ酸および樹脂をAdvanced ChemTech(現在のadvanced automated peptide protein TECHNOLOGIES,aappTEC)(KY,U.S.A.)から購入し、以下の側鎖保護基と共に使用した:Arg(pbf)1またはArg(pmc)、Lys(Boc)、Tyr(But)、Trp(Boc)、Thr(But)、Ser(But)、Gln(Trt)、Glu(OBut)、Asn(Trt)、Cys(Acm)およびFmoc−Lys(Boc)−Wang樹脂(置換量0.72mmol/g)。hBD3の直鎖状アナログ6種の合成をFmoc化学によりApex396上で実施した。HBTU−HOBT(HBTUはN−[1H−ベンゾトリアゾール−1−イル)−(ジメチルアミノ)メチレン]−N−メチルメタンアミニウムヘキサフルオロフォスフェート−N−オキシドであり、HOBTはN−ヒドロキシベンゾトリアゾールである)を用い、DMF(N,N−ジメチルフォルムアミド)中で、0.04mmolの合成スケールで、アシル化(カップリング反応)を実施した。Fmoc脱保護は、DMF中で20%ピペリジンを用いて実施した。その結果得られたペプチジル樹脂を、新たに調製したトリフルオロ酢酸(TFA)/トリイソプロピルシラン(TIS)/フェノール/チオニゾール(Thionisole)/水(90/1/2.5/5/1.5、容量パーセントの比率)の混合物を用いて2〜3時間、室温で処理した。未精製のペプチドを氷冷ジエチルエーテル中に濾過することにより沈殿させ、遠心単離により単離し、氷冷エーテルで3回洗浄してから、未精製の固体産物中のエーテルおよび他の残存/残留溶媒を換気フード中で自動蒸発させることにより乾燥させるか、または室温で真空下乾燥させた。さらなる精製のために、未精製の産物をH2O中の5%CAN、0.1%TFAの混合溶媒中に溶解させてから、セミ分取カラムに注入した(Waters、Delta PAK C18、300mm×7.8mm、15μm、100Å、流速3ml/分、溶離液AはDI水中の0.01%TFA、溶離液BはCAN中の0.01%TFA、溶離液Bの濃度勾配は20分間で20%から35%、210nmでUV検出(自動試料採取装置および996フォトダイオードアレイ検出器(PDA)搭載のWaters 2695セパレーションモジュール))。分析用のHPLC−MS連動システム(Micromass Platform LCZ、Waters Associates、150mm×3.9mm、5μm、100ÅのDelta PAK C18使用、流速0.2ml/分、溶離液Bの濃度勾配は32分間で18%から38%)により、精製したペプチドの特性を示した。質量分析法の使用による直鎖状アナログ6種の分子量の特性解析を、図8〜13に示す。
ペプチドの分子疎水性は、HPLC−MSにより、例えば、同様のペプチド濃度(500または100μg/ml)、注入量(5μl)、および、32分間で18%から38%という溶離液Aの同様の濃度勾配において流速0.2ml/分であり、産物ピークの保持時間(Rt)について相対的に比較されるなどの、同様の実験条件において測定した。
水溶液(pH5.0〜5.5)中、ならびに、例えば、DI水中の10mM SDSおよび20mM SDS、20、50、70%(容量)TFEなどの他の異なる媒体中で、Jasco J−810分光偏光計により円二色性分光法を行った。6種のアナログの濃度は125μg/mlであり、野生型hBD3は100μg/mlであった。27℃、196〜260nmの範囲の波長でCD測定を実施した。各試料および溶媒を3回ずつ走査し、溶媒のCDを試料溶液のCDから差し引いた。この結果を図2、3および4に示す。
材料
アッセイを実施した細菌は、大腸菌ATCC25922、黄色ブドウ球菌ATCC25923、緑膿菌ATCC27853、セレウス菌NCTC2599を包含していた。アッセイには、96ウェル平底の滅菌済組織培養プレート(92096、TPP)を使用した。水滴の凝結を防ぐために、20%エタノール中の0.05%TritonX−100でマイクロプレートカバーの内側表面を処理した。Magellanバージョン5.03のソフトウェアおよび620nmフィルターを用いたTecan Genios Plusマイクロプレートリーダーで、96ウェルマイクロプレート中での生育速度を(濁度として)モニターした。600nm波長を用いたPharmacia Biotech Ultrospec2000 UV/可視分光光度計により、種培養物をモニターした。大腸菌、セレウス菌、黄色ブドウ球菌および緑膿菌に対する該アナログおよび野生型hBD3の抗菌活性を、段階的に希釈されたペプチドが存在する液体培養液中での細菌生育数を測定することにより確認した。LD50は、生細胞の50%が死に至るペプチド濃度である。この結果は図7(A、B、CおよびD)で報告する。
細菌は、Mueller−Hinton Broth(MHB)中での一晩の平板培養により対数期中期まで生育させた。細胞懸濁液は、10mMリン酸カリウム緩衝溶液/MHBの混合物(等量)(PMH)中でOD0.1に希釈した(600nm、Pharmacia Biotech Ultropec2000 UV/可視分光光度計)。この細胞懸濁液の濃度は107CFU/mlであった。確認のために、コロニー計数を行った。107から101CFU/mlの範囲で、この懸濁液の10倍希釈系列をPMH中で作製した(黄色ブドウ球菌ATCC25923およびセレウス菌NCTC2599については6部作製(sextuplicate)、大腸菌ATCC25922については4部作製(quadruplicate)、および緑膿菌ATCC27853については3部作製(triplicate))。ウェル当たりの最終容量は200μlであった。陰性対照ウェルについては、未植菌のPMH200μlを加えた。
CellTiterブルーを用いて細胞生存数を測定することにより、初代培養した正常なヒト結膜上皮細胞上でのこれらのアナログの細胞毒性を分析した。全ての分析において、対照として野生型hBD3を使用した。図5。
試験したペプチドの膜溶解活性の測定値として、新鮮なウサギ赤血球からのヘモグロビンの遊離率を使用した。図6。
結果
45残基を有するhBD3の直鎖状アナログ
hBD3アナログの合成。表1に詳細に記載したとおり(配列、総残基、疎水性、正味荷電、全体の疎水性)、Fmoc化学を用いて、45残基を有するhBD3の直鎖状アナログ6種の固相合成を実施した。未精製産物および精製産物の収量は、合成スケールに基づいて報告してあり、表1の補足情報を参照のこと。
天然のhBD3と比較すると、完全長かつ正味の正電荷11を有するこの系列のhBD3の直鎖状アナログは、hBD3中の架橋している6つのシステイン残基を、疎水性の異なる他の6つの残基、例えばA、S、C(Acm)、F、YおよびWで一律に置き換えることのみにより設計・合成されているため、構造的には同質である。これらの直鎖状アナログは、全体の疎水性、二次構造および直線性または3箇所のジスルフィド架橋により課せられた拘束が抗菌活性、細胞毒性活性および溶血活性に及ぼす効果を試験するための明確なモデルとなる。われわれは、500μg/mlおよび100μg/mlで、HPLC−MSにより相対的な分子疎水性を保持時間(tR)について測定してから(表2)、Wilmley and Whiteの疎水性尺度およびHopp−Woods尺度にそれぞれ基づいて、全体の疎水性を計算した。2つの異なる尺度に基づいて計算されている全体の疎水性の変化傾向は概ねよく一致しており、HPLCの結果はこの計算値に非常によく整合している。ペプチドの相対的な分子疎水性についての全体の序列は、W6>F6>Y6>天然のhBD3>A6>S6>C(Acm)6のとおりである。しかしながら、置き換えた残基の疎水性についての序列は、Phe>Tyr=Trp>Cys>Ala>Serのとおりであり(C(Acm)についてのデータは入手できず)[Black,S.D.and Mould,D.R.(1991)]、ペプチドが水溶液中で折りたたまれていることから、ペプチドの全体の疎水性傾向は、置き換えた残基のそれに常に整合するわけではない。以下の項では、ペプチドの全体の疎水性が生物活性に及ぼす効果について考察する。
X線およびNMRによるこれまでの研究[hBD2、Sawaiら、Biochemistry、2001、40、3810〜16;hBD3、Schibliら、JBC 2002、277(10)、8279〜89などいくつかの刊行物]により、ヒトβディフェンシン類(hBD1〜3)の三次構造は、3箇所のジスルフィド結合により強固に保持された3本鎖の逆平行βシートに先行する短いαヘリックス部分を有する点で類似していることが示されている。しかしながら、3箇所のジスルフィド結合により課せられた拘束がないと、hBD3の直鎖状アナログは水溶液中で柔軟かつ無秩序になり、環境に左右された立体配座をとる傾向がある。したがって、CD分光法によってこの直鎖状ペプチドの溶液立体配座を体系的に決定することは興味深かった。hBD3誘導体の構造的特徴の分析は、水溶液中で、また、有機モディファイヤーであるトリフルオロエタノール(TFE)、または膜を模したSDSミセルの存在下で、CD分光法により実施した。(図2〜4)。TFEは、水溶液中の構造化されていない/無秩序な別のペプチドから安定なタンパク質様立体配座の採択を誘導できるため、タンパク質構造研究において広く使用されている。水溶液中での直鎖状アナログ6種および野生型hBD3のCDスペクトルは非常に類似しており、天然のhBD3のCDスペクトルと非常によく一致する。水中では、全てのアナログおよび野生型hBD3は、主に不規則構造に従って196〜200nmでの強い極小値を有し、水溶液中で大部分がランダムコイル構造を示す。この結果は、3箇所のジスルフィド結合の存在またはその不在、およびアミノ酸残基を置き換える残基の種類は、hBD3誘導体の二次構造に顕著な影響を何ら及ぼさないことを示しており、したがって、この二次構造は、複数のジスルフィド架橋または6つのシステイン残基を置き換える残基の存在に、独立に左右されているように思われる。水中での異なる量、例えば20、50、70%の有機変性剤TFEの存在下では(本明細書では50%TFE中のCDスペクトルのみを報告した)、全てのアナログおよび天然のhBD3が著しい構造遷移を起こし、それらのCDスペクトルはレッドシフトし、波長205〜222nmに明確に観察できる2つの極小値を、また、190〜193nm前後に強い正のピークを示した。このようなスペクトルはαヘリックス構造に典型的であることから、TFEの存在がこれらのペプチド溶液中におけるヘリックス立体配座の比率を高めると結論づけることが可能である。6種のアナログおよび野生型hBD3のαヘリックス含有量は、特にW6、S6、F6、野生型hBD3およびY6についてTHFの存在下では大きく増加したが、THFは、この型の立体配座を安定化することで知られ、ペプチド間でのαヘリックス含有量の差は、W6、F6、Y6中の残基の芳香環側鎖に起こりうるスタッキング、またはA6中の残基の側鎖間に起こりうる水素結合、または野生型hBD3中の/野生型hBD3用のαヘリックスに明確な立体配座をとらせようとする3箇所のジスルフィド結合の安定化力から生じると考えられる。いくつかのケース(W6、S6、C(Acm)6)では、TFEの濃度が高いほど、αヘリックス含有量が高くなる。このCD遷移は、膜の異方性脂質環境にさらによく似た10mM SDSおよび20mM SDSのミセル中でも起こり、6種のアナログおよび野生型hBD3、特にW6、S6、野生型hBD3、F6およびY6についてのαヘリックス含有量も、TFEの存在下でそうであるように、構造決定因子の同様の効果によりある程度増加した。ほとんどの場合、特にW6およびY6については、αヘリックス含有量は20mM SDSよりむしろ10mM SDSで高い。さらに、分子が強固であれば、その分子は、任意の主要な溶媒に誘導される立体配座の変化に対し抵抗性を有することが期待されることになろう。しかしながら、TFEおよびSDSの存在下では、CDスペクトルは劇的に変化するようであり、このことは、ペプチドが溶媒との間で強く相互作用することを示唆している。
野生型hBD3およびその直鎖状アナログのLD50、LD90、LD99およびLD99.9を、2種のグラム陰性菌(大腸菌および緑膿菌)および2種のグラム陽性菌(セレウス菌、黄色ブドウ球菌)に対して確認した(表3)。図7(A、B、CおよびD)も参照のこと。
強力な抗菌性を有する直鎖状アナログおよび野生型hBD3を、ヒト細胞に対するその細胞毒性について試験した。CellTiterブルーを用いて細胞生存数を測定することにより、初代培養した正常なヒト結膜上皮細胞上でのこれらのアナログの細胞毒性を分析した。図5を参照のこと。全ての分析において、対照として野生型hBD3を使用した。陽イオン性ペプチドは、病原菌細胞と相互作用するのみならず、哺乳動物細胞および真核細胞に対しても毒性を呈する可能性があることは十分立証されている。微生物の細胞膜は、主要成分としての陰イオン性のフォスファチジルコリングリセロールから成るが、真核細胞膜は、疎水性相互作用を受けやすい双性イオン性のフォスファチジルコリンおよびフォスファチジルエタノールアミンを主に含有する[Yeaman and Yount、Biochemistry、2005]。したがって、陽イオン性抗菌ペプチドの溶血活性は、ペプチドの疎水性と直接つながりがあると提唱されてきた。[Hwang and Vogel、Biochemistry、2005]。直鎖状ペプチド6種それぞれの細胞毒性は、6〜100μg/mlの濃度においては、野生型hBD3の細胞毒性よりはるかに低かった。この結果により、hBD3の直鎖状アナログの疎水性が高いか低いかはあまり問題ではなく、これらのアナログは野生型hBD3と比較して細胞毒性が低減していることが明確に示されている。直鎖状アナログと野生型hBD3との間の主要な一次元構造的な違いは、ジスルフィド結合により形成された環状構造または6つのシステイン残基を他の残基により置き換えたことによるその直線性にあるため、したがってそれは、野生型hBD3における天然の3箇所のジスルフィド結合パターンがその高い細胞毒性にとっての主要な構造決定因子に違いないことを意味する。言い換えれば、直鎖状のポリペプチド骨格は、このアナログの細胞毒性低下に対する鍵となる構造因子である。直鎖状アナログの細胞毒性および溶血活性における違いは、異なる疎水性をもたらした配列によるものである。低い疎水性を有するA6、S6およびC(Acm)6は、25〜100μg/mlの高濃度での細胞毒性が最も低く、中間の疎水性を有するY6の細胞毒性は中程度であったが、これに対し、高い疎水性を有するF6およびW6の細胞毒性は相対的に最も高かった。純水中での二次構造の立体配座には明確な違いがないため、hBD3およびその誘導体の二次構造のパラメーターが細胞毒性および溶血活性に及ぼす効果は小さい。
hBD3のC末端断片アナログ(10残基)
天然のhBD3の10残基断片のC末端にあるシステイン残基2つを、疎水性の異なる残基、すなわちフェニルアラニン、トリプトファン、チロシン、ロイシン、イソロイシン、バリン、システインおよびヒスチジンで一律に置き換え、全体の疎水性が多様な、対応する短鎖ペプチド、すなわちhBD3アナログの第2系列[W2、F2、Y2、L2、I2、C2(またはC(Acm)2)として符号化した]を形成した。
hBD3のC末端アナログの全体的な分子疎水性を、RP−HPLC−MSにより1mg/mlでの保持時間について測定した(表4および図14)。RP−HPLCは、ペプチドまたは抗菌ペプチド中のアミノ酸側鎖のこのような比較のために一般的に採用される研究方法である。C18修飾シリカの固定相は疎水性であり、移動相(水−アセトニトリル)は親水性であるため、より長い保持時間はより高い疎水性と相関があるはずである。ペプチドの分子疎水性についての測定値の序列は、W2>F2>L2>I2>Y2>V2>C2>H2のとおりである。
天然のhBD3および8種の新規ペプチドのうち4種(W2、Y2、V2およびL2)について、ヒト結膜上皮細胞に対する細胞毒性を試験した。細胞毒性試験の一次結果(図15)は、4種のペプチドは、hBD3の直鎖状アナログの完全長の第1系列6種[F6、W6、Y6、A6、S6およびC(Acm)6]と同様、天然のhBD3と比較して6.25〜200μg/mlの範囲の濃度で細胞毒性の低減を呈していることを示している。
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野生型 hBD3: 配列番号1
GIINTLQKYYCRVRGGRCAVLSCLPKEEQIGKCSTRGRKCCRRKK
(Wuら、2003) C(Acm)1-5 配列番号26
GIINTLQKYYC(Acm)RVRGGRCAVLSCLPKEEQIGKCSTRGRKC(Acm)CRRKK
(Wuら、2003) C(Acm)1-6 配列番号27
GIINTLQKYYC(Acm)RVRGGRCAVLSCLPKEEQIGKCSTRGRKCC(Acm)RRKK
(Wuら、2003) [Abu]-BD3 配列番号28
GIINTLQKYYC[Abu]RVRGGRC[Abu]AVLSC[Abu]LPKEEQIGKC[Abu]STRGRK C[Abu]C[Abu]RRKK
(Hooverら、2003) hBD3δ8 配列番号29
KYYCRVRGGRCAVLSCLPKEEQIGKCSTRGRKCCRRKK
(Hooverら、2003) hBD3δl0 配列番号30
YCRVRGGRCAVLSCLPKEEQIGKCSTRGRKCCRRKK
(Hooverら、2003) 配列番号31
KEEQIGKSSTRGRKSSRRKK
(Hooverら、2003) 配列番号32
KSSTRGRKSSRRKK
(Hooverら、2003) 配列番号33
RGRKSSRRKK
(Hooverら、2003) 配列番号34
RGRKSSRRK
(Hooverら、2003) 配列番号35
KYYSRVRGGRSAVLSSLPK
(Hooverら、2003) 配列番号36
GIINTLQKYYSRVRGGR
本発明による配列
配列番号2:
GIINTLQKYYX1RVRGGRX2AVLSX3LPKEEQIGKX4STRGRKX5X6RRKK
X1、X2、X3、X4、X5およびX6のいずれか1つは、システイン以外の任意のアミノ酸であるか、C[Abu]以外の保護されたシステイン残基もしくはその誘導体であるか、またはそのアミノ酸は存在していない。Xnの意味は、同様に以下の配列にも適用される。
配列番号3
KYYX1RVRGGRX2AVLSX3LPKEEQIGKX4STRGRKX5X6RRKK
配列番号4
YX1RVRGGRX2AVLSX3LPKEEQIGKX4STRGRKX5X6RRKK
配列番号5
LQKYYX1RVRGGRX2AVLSX3LPKEEQIGKX4STRGRKX5X6RRKK
配列番号6
RX2AVLSX3LPKEEQIGKX4STRGRKX5X6RRKK
配列番号7
KEEQIGKX4STRGRKX5X6RRKK
配列番号8
KX4STRGRKX5X6RRKK
配列番号9
RGRKX5X6RRKK
配列番号10
RGRKX5X6RRK
配列番号11
KYYX1RVRGGRX2AVLSX3LPK
配列番号12
GIINTLQKYYX1RVRGGR
W6: 配列番号13
GIINTLQKYYWRVRGGRWAVLSWLPKEEQIGKWSTRGRKWWRRKK
F6: 配列番号14
GIINTLQKYYFRVRGGRFAVLSFLPKEEQIGKFSTRGRKFFRRKK
Y6: 配列番号15
GIINTLQKYYYRVRGGRYAVLSYLPKEEQIGKYSTRGRKYYRRKK
S6: 配列番号16
GIINTLQKYYSRVRGGRSAVLSSLPKEEQIGKSSTRGRKSSRRKK
A6: 配列番号17
GIINTLQKYYARVRGGRAAVLSALPKEEQIGKASTRGRKAARRKK
C(Acm)6: 配列番号18
GIINTLQKYY C(Acm)6RVRGGR C(Acm)6AVLS C(Acm)6LPKEEQIGK C(Acm)6STRGRK C(Acm)6C(Acm)6RRKK
C(But)6: 配列番号19
GIINTLQKYY C(But)6RVRGGR C(But)6AVLS C(But)6LPKEEQIGK C(But)6STRGRK C(But)6C(But)6RRKK
C(t-Buthio)6: 配列番号20
GIINTLQKYY C(t-Buthio)6RVRGGR C(t-Buthio)6AVLS C(t-Buthio)6LPKEEQIGK C(t-Buthio)6STRGRK C(t-Buthio)6C(t-Buthio)6RRKK
C(Bzl)6: 配列番号21
GIINTLQKYY C(Bzl)6RVRGGR C(Bzl)6AVLS C(Bzl)6LPKEEQIGK C(Bzl)6STRGRK C(Bzl)6C(Bzl)6RRKK
C(4-MeBzl)6: 配列番号22
GIINTLQKYY C(4-MeBzl)6RVRGGR C(4-MeBzl)6AVLS C(4-MeBzl)6LPKEEQIGK C(4-MeBzl)6STRGRK C(4-MeBzl)6C(4-MeBzl)6RRKK
C(4-MeO-Bzl)6: 配列番号23
GIINTLQKYY C(4-MeO-Bzl)6RVRGGR C(4-MeO-Bzl)6AVLS C(4-MeO-Bzl)6LPKEEQIGK C(4-MeO-Bzl)6STRGRK C(4-MeO-Bzl)6C(4-MeO-Bzl)6RRKK
C(Mmt)6: 配列番号24
GIINTLQKYY C(Mmt)6RVRGGR C(Mmt)6AVLS C(Mmt)6LPKEEQIGK C(Mmt)6STRGRK C(Mmt)6C(Mmt)6RRKK
C(Cam)6: 配列番号25
GIINTLQKYY C(Cam)6RVRGGR C(Cam)6AVLS C(Cam)6LPKEEQIGK C(Cam)6STRGRK C(Cam)6C(Cam)6RRKK
WT C-terminus: 配列番号37
RGRKCCRRKK
W2: 配列番号38
RGRKWWRRKK
F2: 配列番号39
RGRKFFRRKK
Y2: 配列番号40
RGRKYYRRKK
L2: 配列番号41
RGRKLLRRKK
I2: 配列番号42
RGRKIIRRKK
V2: 配列番号43
RGRKVVRRKK
H2: 配列番号44
RGRKHHRRKK
C2 or C(Acm)2: 配列番号45
RGRKC(Acm)C(Acm)RRKK
Claims (14)
- hBD3の断片である単離抗菌ペプチドであって、配列番号38−45のいずれか1つのアミノ酸配列からなる、単離抗菌ペプチド。
- 野生型hBD3と比較して、少なくとも1種の上皮細胞に対する細胞毒性が低下している、請求項1に記載の単離ペプチド。
- 請求項1または2に記載のペプチドをコードする単離ポリヌクレオチド。
- 請求項3に記載のポリヌクレオチド、または請求項3に記載のポリヌクレオチドを含むベクターを含む宿主細胞。
- 請求項1または2に記載の少なくとも1種の抗菌ペプチドを含む医薬組成物。
- 請求項1または2に記載の抗菌ペプチドおよび少なくとも1種の非ペプチド性抗菌剤を含む抗菌組成物。
- 点眼剤の組成物および/または溶液の形態である、請求項5に記載の医薬組成物または請求項6に記載の抗菌組成物。
- 請求項5に記載の少なくとも1種の医薬組成物、請求項6に記載の少なくとも1種の抗菌組成物、および/または、請求項1または2に記載の少なくとも1種の抗菌ペプチドを含む、コンタクトレンズ用溶液。
- 請求項5に記載の少なくとも1種の医薬組成物、請求項6に記載の少なくとも1種の抗菌組成物、または、請求項1または2に記載の少なくとも1種の抗菌ペプチドを含む、機器コーティング。
- 少なくとも1種の適当な容器に入れられた、請求項1または2に記載の少なくとも1種の抗菌ペプチド、請求項5に記載の少なくとも1種の医薬組成物、および/または、請求項6に記載の少なくとも1種の抗菌組成物を含む、キット。
- 請求項1または2に記載の抗菌ペプチド、請求項5に記載の医薬組成物、および/または、請求項6に記載の抗菌組成物を、単独で、または他の抗菌剤および/または抗生物質と組み合わせて、微生物に接触させることを含む、少なくとも1種の微生物の生育をin vitroで阻害および/または抑制する方法。
- ex vivoにおける抗菌剤として使用するための、または、微生物感染症の治療に使用するための、請求項1または2に記載の抗菌ペプチド。
- (i)局所投与用、ならびに/または、皮膚および/もしくは粘膜の治療用の医薬、(ii)点眼剤の組成物および/または溶液、(iii)コンタクトレンズ用溶液、(iv)機器コーティングおよび/または医療機器コーティングとして使用するための、および/または少なくとも1種の微生物の生育を阻害および/または抑制するための、および/または少なくとも1種の微生物感染症を治療するための、請求項1または2に記載のペプチドである、単離ペプチド。
- (i)局所投与用、ならびに/または、皮膚および/もしくは粘膜の治療用の医薬、(ii)点眼剤の組成物および/または溶液、(iii)コンタクトレンズ用溶液、(iv)機器コーティング、または(v)単独の、または別の抗菌剤および/または抗生物質と組み合わせた、少なくとも1種の微生物の生育を阻害および/または抑制するための組成物および/または少なくとも1種の微生物感染症を治療するための医薬の製造における、請求項1または2に記載の単離ペプチドの使用。
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