JP5526324B2

JP5526324B2 - 薬物が結合可能な光応答性薬物輸送体

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Publication number: JP5526324B2
Application number: JP2008184326A
Authority: JP
Inventors: 淳中西; 和夫山口
Original assignee: Kanagawa University; National Institute for Materials Science
Current assignee: Kanagawa University; National Institute for Materials Science
Priority date: 2008-07-15
Filing date: 2008-07-15
Publication date: 2014-06-18
Anticipated expiration: 2028-07-15
Also published as: JP2010024147A

Description

本発明は、薬物（ドラッグ）を、生体組織又は細胞内の必要な部位に必要な量だけ投与する薬物輸送システム（ドラッグデリバリーシステム；ＤＤＳ）に好適に用いうる薬物が結合可能な光応答性薬物輸送体に関するものである。

生体組織や細胞内に、時空間を制限して、低分子化合物、ペプチド、核酸、タンパク質等の薬物を輸送するＤＤＳは、薬物を生体組織又は細胞内の必要な部位に必要な量だけ投与することで生命活動の調節を行なうので、臨床医学及び基礎生物学の分野において重要である。特に、光応答的に薬物が放出されるシステムや、不活化されていた薬物が光照射により活性を取り戻すシステムは、薬物の時空間動態の精密な制御を可能にするため、近年注目を集めている。このようなＤＤＳに用いることができる光応答的薬物輸送体としては、次のようなものが知られている。

（１）ケージド低分子化合物、ケージドペプチド、ケージド核酸又はケージドタンパク質（Kaplan, J. H. et al., 1978; Furuta, T. et al., 1999; Momotake, A. et al., 2006; Ando, H. et al., 2001; Arabaci, G. et al., 1999; Ghosh, M. et al., 2002; Muranaka, N. et al., 2002等多数）：
低分子化合物、ペプチド、核酸又はタンパク質に直接光分解性保護基を結合させることによって一時的にその活性を抑え、光照射により保護基を除去することによって、活性を回復させることが可能な分子（広義な意味でのケージド化合物）である。また、最近では、光応答性官能基を有する非天然アミノ酸を含むタンパク質を人工的に合成し、その活性を光制御する方法も開発されている。

（２）光応答的に膨潤・収縮する高分子を結合させた光応答性タンパク質（Shimboji, T. et al., 2002）：
紫外光・可視光照射によってシス・トランス異性化するアゾベンゼンをグラフトしたアクリル酸とジメチルアクリルアミドとを共重合させて得た高分子を、タンパク質に結合させ、紫外・可視光照射に応じてエンドヌクレアーゼ１２Ａの活性をＯＦＦ／ＯＮする方法である。

（３）光分解性高分子ミセル、光分解性リポソーム（Jiang, J. et al., 2005; Yamaguchi, K. et al., 1998）：
Jiangらは、ピレンメタノールをグラフトしたアクリル酸とポリエチレングリコールのブロック共重合体から形成した高分子ミセルにおいて、UV光照射によりピレンメタノールエステルが加水分解を受けてミセルが崩壊することに基づき、蛍光色素Nile Redを例に疎水性物質の光放出を実現している。また、山口らは、アルキル鎖の末端に光分解性の２−ニトロベンジル基を有するリン脂質を合成し、同分子が形成するリポソームがUV光照射により崩壊することを利用して、内水相に封入した水溶性物質（例として蛍光色素カルセイン）の光放出を実現している。

（４）光応答的に表面電荷が逆転する金ナノ粒子：
Rotelloらは、表面に、光分解性フェナシル基を介してアミンを有する化合物を結合させた金ナノ粒子、あるいは光分解性２−ニトロベンジル基を介してアミンを結合させた金ナノ粒子を開発し、その表面電荷が光応答的に正電荷から負電荷になることを利用して、キモトリプシンやDNAとの相互作用を光制御する方法を開発した（非特許文献１）。また、プラスミドDNAへ適用することで、細胞へのトランスフェクションの光制御も実現されている。

（５）光応答性のカチオンデンドリマー（Nagasaki, T. et al., 2000）
Nagasakiらは、末端にリジン残基を導入したポリアゾベンゼンデンドリマーを開発し、同分子がUV光及び可視光照射に応じてプラスミドDNAとの相互作用が変化することを利用して、細胞へのプラスミドDNAのトランスフェクションを光制御する。

そのほか、特開２００７−２９１００５（特許文献１）には、同一分子内に異なる反応性基を備えるカップリング剤であって、両末端にアミン反応性基、及びそのアミン反応性基間にジスルフィド基を有し、これらアミン反応性基とジスルフィド基との間に光分解性基が含を含む新規な光分解性カップリング剤が提案されている。

Rotello V.M. et al.：ＡｎｇｅｗｅｎｄｔｅＣｈｅｍｉｅＩｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌＥｄｉｔｉｏｎ，２００６年，４５巻，３１６５−３１６９頁特開２００７−２９１００５号公報

しかし、上記（１）や（２）の薬物輸送体においては、薬物付き薬物輸送体の合成及び精製が煩雑であり、更には、光照射前の薬物の活性を完全に抑えるには、担体への薬物の固定化方法を精密に設計する必要がある。上記（３）の薬物輸送体においては、一般化の点で原理的に適しているが、リポソームやミセルの崩壊が律速段階となるために、薬物の放出が徐放的になり、薬物の即応的な放出が難しい。また、上記（４）や（５）の薬物輸送体においては、表面電荷の差異を利用するため、核酸のような電荷数の高い物質や、一部のタンパク質等に限られ、適用できる薬物が限定的である。
本発明では、薬物の固定化が簡便であり、担体への薬物の精密な固定化方法を必要とせず、光照射に対して即応的な薬物放出及び活性化を実現でき、また、広範な薬物に適用可能な、新規な光応答性薬物輸送体を開発することを目的とする。

〔発明の概要〕
上記目的を達成するために、本発明者らは、微粒子（担体）の表面に担体結合基を介して、光分解性基及び薬物結合基を共有結合で結合することに着目し、種々検討して、本発明を完成することができた。
すなわち、本発明は、次の一般式
〔但し、式中のＡは微粒子、Ｘは担体結合基、Ｙは光分解性基、Ｌは薬物結合性官能基を意味する〕で表される薬物が結合可能な光応答性薬物輸送体である。

本発明の薬物が結合可能な光応答性薬物輸送体（以下、単に、光応答性薬物輸送体という。）への薬物の固定化は、一段階的で容易であり、精製も遠心分離による微粒子の沈降を利用するため、非常に簡便である。本発明の光応答性薬物輸送体と薬物（ドラッグ）とを組み合わせて、医療分野における薬物輸送システム（ＤＤＳ）に好適に用いうる。
本発明の薬物付き光応答性薬物輸送体は、嵩高い微粒子の立体障害によって薬物活性を一時的に抑制し、光照射によって薬物を微粒子から切り離して、その活性を発揮させるのを原理とするため、微粒子に固定する薬剤の配向は大まかに設計するだけでよく、分子設計が容易である。また、薬物の活性発揮は光照射による微粒子からの薬物の切離しに基づくので、即応的な薬物放出及び活性発揮を実現できる。また、薬物としては広範なものを使用でき、医療分野における薬物輸送システム（ＤＤＳ）、例えば、腫瘍部位のみへの至適量の薬剤投与も可能となり、薬剤の副作用軽減にも寄与できる。

〔発明の更に詳しい説明〕
はじめに、本発明の光応答性薬物輸送体又は薬物付き光応答性薬物輸送体における、光照射依存的な薬物放出と活性制御とを、図１の概念図を用いて説明する。
嵩高い微粒子担体（Ａ）の表面に固定化された薬物（Ｄ）は、微粒子担体の立体障害効果によって薬物とその標的物質（Ｂ）との相互作用が妨げられ、結果的にその薬物の活性が抑制（阻害）されている。これに光照射すると、光分解性基（Ｘ）が分解し、薬物が微粒子担体表面から解離して、薬物と標的物質との相互作用が可能となり、薬物の活性が発揮される。

先に述べたとおり、本発明の光応答性薬物輸送体は、次の式（１）

〔但し、式中のＡは微粒子（担体）、
Ｘは担体結合基、
Ｙは光分解性基、
Ｌは薬物結合性官能基を意味する〕で表されるところの、
微粒子表面に、担体結合基、光分解性基及び薬物結合性官能基がこの順に共有結合で結合されている光応答性薬物輸送体、である。

ここで、「微粒子」（式中のＡ）とは、薬物の固定化の担体もしくは足掛り（anchor）となる微小な粒子性材料の意味であり、その形状としては、球状のもの（球状微粒子）、凹状又は凸状にＲを有する微粒子、多孔性微粒子等がありうるが、好ましくは、球状微粒子である。大きさは、球状のもので、好ましくは径０．００１〜１０μｍ程度、更に好ましくは径１〜３００ｎｍ程度、もっと好ましくは径１０〜５０ｎｍ程度、非球状のものにおいては、長径が好ましくは０．００１〜１０μｍ程度、更に好ましくは径１〜３００ｎｍ程度、もっと好ましくは径１０〜５０ｎｍ程度、短径が好ましくは０．００１〜１０μｍ程度、更に好ましくは径１〜３００ｎｍ程度、もっと好ましくは径１０〜５０ｎｍ程度である。
微粒子の素材は、薬物の固定化に適するものであれば特に限定しない。金（Ａｕ）、ガラス、シリコン、炭素（Ｃ_６０、ダイアモンド）、金属酸化物、半導体、プラスチック（スチレン、ポリエチレン、ポリプロピレン、ＰＥＴ等）等がある。

また、「担体結合基」（式中のＸ）とは、共有結合で担体表面に結合可能な化学基を意味する。用いる微粒子素材に応じてその化学基は変わるが、微粒子素材が金の場合には、次の構造式で示される化学基が好ましく用いられる。

なお、上記構造式における担体−担体結合基間の結合は、本願明細書では「共有結合」とみなしている。

また、微粒子素材がガラスの場合には、次の構造式で示される化学基が好ましく用いられる。

また、「光分解性基」（式中のＹ）とは、紫外線等の高エネルギー光を照射すれば、容易に分解する二価の化学基を意味する。好ましく用いられる光分解性基として、例えば、次の２価の有機基がある。

また、以下のような２価の有機基も用いることができる。

「薬物結合性官能基」（式中のＬ）とは、薬物に結合性を有する化学基を意味し、種々のものがある。例えば、活性エステル基であり、その活性エステル基として代表的なものは、スクシンイミジルエステル基である。

また、以下のような活性エステル基も用いることができる。

次の構造式で示されカルボニルイミダゾール基を用いることもできる。

あるいは、ビオチン基、アビジン、レクチン、抗体、アプタマー、ペプチド、糖、グルタチオンに代表される、特定のタンパク質や生理活性物質と結合性を示す生体分子を用いることもできる。

あるいは、ニトリロ三酢酸基やＦｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎＢｉａｒｅｓｅｎｉｃａｌＨｅｌｘＢｉｎｄｅｒのように特定のアミノ酸配列に結合性を示すアフィニティーリガンドを用いることもできる。そのほか、アジド基、アルキン基等を用いることもできる。

また、本発明は、先に述べたとおり、次の式（３）

〔但し、式中Ａは微粒子（担体）、
Ｘは担体結合基、
Ｙは光分解性基、
Ｌは薬物結合性官能基、
Ｄ：薬物で、Ｒは前記薬物結合性官能基との反応に与る薬物中の官能基、
点線（…で表わす）は水素結合、配位結合、ファンデルワールス結合、静電的相互作用等の結合様式を意味し、薬物結合性官能基（Ｌ）が活性エステル基である場合には、薬物中の官能基（Ｄ）とカップリング反応した後は共有結合を示す。〕で表されるところの、
微粒子表面に、担体結合基、光分解性基及び薬物結合性官能基がこの順に共有結合で結合され、更にこれに薬物（ドラッグ）が結合されている薬物付き薬物輸送体である。

ここで、微粒子（Ａ）、担体結合基（Ｘ）、光分解性基（Ｙ）及び薬物結合性官能基（Ｌ）は、上で説明したものと同じであるので、説明を省略する。
「薬物」（Ｒ−Ｄ）としては、生体に種々の生理活性を示す生理活性物質があり、更に具体的には、生理活性を示す種々の低分子化合物や、ＤＮＡ・ＲＮＡ等の核酸、あるいは糖、脂質、ペプチド、タンパク質等である。

以下、実施例により、本発明を更に具体的に述べる。
なお、本発明で用いた下記構造式（Ｉ）のＢｉｓ（１２−（４−ｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｙｌｏｘｙｃａｒｂｏｎｙｌｏｘｙｅｔｈｙｌ−２−ｍｅｔｈｏｘｙ−５−ｎｉｔｒｏｐｈｅｎｙｌ）ｏｘｙｄｏｄｅｃｙｌ）ｄｉｓｕｌｆｉｄｅは、特開２００７−２９１００５に記載の方法によって合成した。

また、上記式（Ｉ）の構造式に示される化合物もしくはその誘導体又は下記（ａ）の式（ＩＩ）の構造で示されるＤｉｔｈｉｏｂｉｓ（ｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｙｌｕｎｄｅｃａｎｏａｔｅ）と、種々のポリエチレングリコール（ＰＥＧ）との反応物により、微粒子（本実施例では、金ナノ粒子）表面を修飾する場合、これらの反応はほぼ当量的に進むことを高速液体クロマトグラフィーで確認していたため、前記反応物からは余剰成分を除去することなく、そのまま微粒子表面の修飾に用いた。なお、種々のポリエチレングリコールは、微粒子表面への薬物の非特異吸着及び微粒子どうしの自発的凝集を防ぐ目的で導入した。

光分解性基を介してスクシンイミジルエステルを提示する金ナノ粒子の調製
下記（ａ）の式（ＩＩ）の構造で示されるＤｉｔｈｉｏｂｉｓ（ｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｙｌｕｎｄｅｃａｎｏａｔｅ）（同仁化学社製）、トリエチルアミン（和光社製）及びメトキシ化ポリエチレングリコールモノアミン（分子量５，０００、日油社製）を、それぞれの最終濃度が１．４ｍＭ、２．４ｍＭ及び２．４ｍＭとなるようにＤＭＳＯ中で混合し、室温で１時間振とうして、式（ＩＩＩ）のジスルフィド化合物を得た。
反応式は以下の（ａ）に示す。

次に、アミコン３０，０００（ミリポア社製）を用いて、金ナノ粒子（５ｎｍ、ＢＣＣ社製）５ｍｌを遠心分離（７，０００ｒｐｍ×３０分）で限外ろ過濃縮し、その濃縮液に、５ｍＭの式（Ｉ）のＤＭＳＯ溶液１２２μｌ及び上で調製した式（ＩＩＩ）の溶液４３３μｌを加え、終夜混合することで、金ナノ粒子の表面修飾を行った。その後、アミコン３０，０００を用いた限外ろ過膜による脱塩処理（７０００ｒｐｍ×３０分）を４回繰り返すことにより、未反応のジスルフィドを除去し、光分解性基を介してスクシンイミジルエステルを提示する金ナノ粒子式（１９）で示すを得た。この状態で冷蔵保存し、使用直前に水で３ｍｌにメスアップした。

光分解性基を介してビオチンを提示する金ナノ粒子の調製
式（Ｉ）のジスルフィド化合物、トリエチルアミン、およびＢｉｏｔｉｎＰＥＯ_３−ＬＣ−ａｍｉｎｅ（Ｐｉｅｒｃｅ社製）を、それぞれの最終濃度が１．９ｍＭ、４．１ｍＭ、４．１ｍＭになるようＤＭＳＯ中で混合し、終夜振とうすることで、以下の反応式に示す式（ＩＶ）の化合物を得た。反応式を式（ｂ）に示す。

なお、式（ＩＶ）中のＲ_１は、式（２０）で示す官能基（ビオチン含有基）である。

また、図中の点線で囲んだ部分がビオチン基である。

次に、金ナノ粒子（１５ｎｍ、ＢＣＣ社製）３ｍｌに対し、得られた式（ＩＶ）のＤＭＳＯ溶液０．８１μｌ及びメトキシＰＥＧジスルフィド（Ｐｏｌｙｐｕｒｅ、分子量７１０）のＤＭＳＯ溶液２．７μｌを加え（最終濃度は、各々０．５１μＭ及び４．４μＭ）、終夜混合することで、金ナノ粒子の表面修飾を行った。その後、その金ナノ粒子の遠心・沈殿（１５０００ｒｐｍ×３０分）及び超純水を用いた再懸濁の繰返し（４回）によって、未反応のジスルフィドを除去し、最後に３ｍｌの水で懸濁し、光分解性基を介してビオチンを提示する金ナノ粒子を得た。

光分解性基を介してニトリロ三酢酸（ＮＴＡ）を提示する金ナノ粒子の調製
式（ＩＩ）の構造式で示されるＤｉｔｈｉｏｂｉｓ（ｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｙｌｕｎｄｅｃａｎｏａｔｅ）（同仁化学社製）、トリエチルアミン及びトリエチレングリコールモノアミンを、それぞれの最終濃度が１．２ｍＭ、２．６ｍＭ及び２．６ｍＭとなるようにＤＭＳＯ中で混合し、室温で１時間振とうし、以下の反応式（Ｃ）に示す（Ｖ）のジスルフィドを得た。なお、トリエチレングリコールモノアミンは、文献（ＢｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅＣｈｅｍｉｓｔｒｙ，１２：７０１−７１０，（２００１））にしたがって合成した。
反応式は以下の（ｃ）に示す。

別途、前記反応式（ａ）に示すように、Ｄｉｔｈｉｏｂｉｓ（ｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｙｌｕｎｄｅｃａｎｏａｔｅ）、トリエチルアミン及びメトキシ化ポリエチレングリコールモノアミン（分子量５，０００）を、それぞれの最終濃度が１．２ｍＭ、２．６ｍＭ及び２．６ｍＭとなるようＤＭＳＯ中で混合し、室温で１時間振とうすることで、式（ＩＩＩ）を得た。

また、以下の反応式（ｄ）に示すように、式（Ｉ）のジスルフィド化合物、トリエチルアミン及びＡＢ−ＮＴＡ（同仁化学社製）を、それぞれ最終濃度が１．２ｍＭ、２．６ｍＭ、及び２．６ｍＭとなるようＤＭＳＯ中で混合し、室温で１時間振とうすることで、反応式（ｄ）に示す式（ＶＩ）のジスルフィド化合物を得た。

なお、反応式（ｄ）中、式（ＶＩ）のＲ_２は、式（２１）で示す官能基（ニトリロ三酢酸含有基）である。また、点線内がニトリロ三酢酸基である。

次に、金ナノ粒子（１５ｎｍ、ＢＣＣ社製）１ｍｌに対し、上で得た式（ＶＩ）のジスルフィド化合物のＤＭＳＯ溶液８．７μｌ、式（ＩＩＩ）のジスルフィド化合物のＤＭＳＯ溶液３３μｌ及び式（Ｖ）のジスルフィド化合物のＤＭＳＯ溶液２．２μｌを加え（各最終濃度は各々１０μＭ、３８μＭ及び２．６μＭ）、終夜混合することで、金ナノ粒子の表面修飾を行った。その後、その金ナノ粒子の遠心・沈殿（１８，１００ｒｐｍ×３０分）及び超純水を用いた再懸濁の繰返し（４回）によって、未反応のジスルフィドを除去し、最後にＴｗｅｅｎ２０（和光社製）の水溶液（０．０２％）の２５０μｌで懸濁し、光分解性基を介してニトリロ三酢酸（ＮＴＡ）を提示する金ナノ粒子（目的物）を得た。

光分解性基を介してスクシンイミジルエステルを提示する金ナノ粒子への薬剤の固定化
スクシンイミジルエステルを提示する金ナノ粒子と、分子内に１級アミンを有する薬剤とは、両者を混合するだけで、その薬剤を固定化した金ナノ粒子を容易に得ることができる。ここでは、固定する薬剤の例として、以下の式（ＶＩＩ）の１１−アジド−３，６，９−トリオキサウンデカン−１−アミン（Ｆｌｕｋａ社製）を用いた。

実施例１で得られたスクシンイミジルエステルを提示する金ナノ粒子溶液２ｍｌに、式（ＶＩＩ）の化合物をその最終濃度が１０ｍＭとなるように添加し、終夜振とうした。その後、アミコン３０，０００を用い、遠心分離（７，０００ｒｐｍ×３０分、４回）で脱塩し、未反応の式（ＶＩＩ）の化合物を除去して、式（ＶＩＩ）の薬剤を固定した金ナノ粒子（目的物）を得た。

光分解性基を介してニトリロ三酢酸（ＮＴＡ）を提示する金ナノ粒子への薬剤の固定化
光分解性基を介してニトリロ三酢酸（ＮＴＡ）を提示する金ナノ粒子と、分子内にヒスチジンタグを有するタンパク質・ペプチド系薬剤とは、混合するだけで、その薬剤を固定した金ナノ粒子を容易に得ることができる。ここでは、固定する薬剤の例としてヒスチジンタグを有するグルタチオンＳトランスフェラーゼ（Ｈｉｓ−ＧＳＴ）を用いた。

（ａ）Ｈｉｓ―ＧＳＴの合成
プラスミドＤＮＡｐＥＴ４１ａ（Ｎｏｖａｇｅｎ）で形質転換した大腸菌ＢＬ２１を、３７℃で終夜増殖後、対数増殖期に１ｍＭのＩＰＴＧによってタンパク質発現を誘導し、その５時間後に集菌し、ＢｕｇＢｕｓｔｅｒ（Ｎｏｖａｇｅｎ）で大腸菌を破砕し、遠心分離（１２，０００×１５分）により細胞残屑を除去した。得られた可溶性画分をグルタチオンセファロースカラム（ＧＥヘルスケア）に負荷し、グルタチオンによる溶出、限外濾過濃縮を経て、Ｈｉｓ−ＧＳＴを得た。

（ｂ）光分解性基を介してＮＴＡを担持する金ナノ粒子へのＨｉｓ−ＧＳＴの固定化
実施例３で得られた金ナノ粒子に対して、最終濃度７．５ｍＭとなるようにＮｉＣｌ_２を加え、６時間〜終夜撹拌することによって、ＮＴＡをＮｉ^２＋錯体に置き換えた。この金ナノ粒子を遠心洗浄（１８，１００ｒｐｍ×３０分、４回）した後、０．０２％Ｔｗｅｅｎ２０を含むリン酸バッファー（ＰＢＳ）中で、Ｈｉｓ−ＧＳＴ２５μｇを添加し、室温で２時間反応させた。遠心分離（１８，１００ｒｐｍ×３０分、４回）により、未反応のＨｉｓ−ＧＳＴを除去し、Ｈｉｓ−ＧＳＴを固定した金ナノ粒子（目的物）を得た。

光照射による、薬物付き薬物輸送体からの薬物の放出（赤外線吸収スペクトルによる分析）
薬物付き薬物輸送体として、実施例４で得られたもの（すなわち、光分解性基を介してスクシンイミジルエステルを提示する金ナノ粒子に式（ＶＩＩ）の化合物を固定したもの）を用いた。この薬物付き薬物輸送体を、石英セル中で、紫外透過・可視吸収フィルターＵ３６０（ＨＯＹＡ社製）を装着した２５０Ｗ超高圧水銀光源（ＳＸ−ＵＩ２５１ＨＱ、ウシオ社製）により、９．１ｍＷ／ｃｍ^２の光量で３０分光照射し、アミコン３０，０００を用いた遠心分離（７，０００ｒｐｍ×３０分、４回）により脱塩した。脱塩後の濃縮物を凍結乾燥し、その粉末を用いてＫＢｒによるタブレットを作製し、赤外線吸収スペクトルを測定した（図２の（３））。
同様にして、実施例１で得られた「光分解性基を介してスクシンイミジルエステルを提示する金ナノ粒子」、及び実施例４で得られた「１１−アジド−３，６，９−トリオキサウンデカン−１−アミン（式（ＶＩＩ））を固定化した金ナノ粒子」を各々凍結乾燥し、その粉末を用いてＫＢｒによるタブレットを作製し、赤外線吸収スペクトルを測定した（図２の（１）、（２））。

式（ＶＩＩ）のアジド化合物が固定化された金ナノ粒子（図２の（２））では、スクシンイミジルエステル特有の、１８１１ｃｍ^−１と１７８２ｃｍ^−１と１７４２ｃｍ^−１の吸収が消失し、代わりにアジド特有の２１０８ｃｍ^−１の振動吸収とカルバメート由来の１７２２ｃｍ^−１の吸収の増大が観察された。一方、光照射物（図２の（３））においては、このアジドおよびカルバメートの吸収が消失していた。また、ニトロ由来の１７２０ｃｍ^−１の吸収が、１７１２ｃｍ^−１にニトロソ由来のピークに置き換わっていた。以上の結果は、実施例１で得られた「光分解性基を介してスクシンイミジルエステルを提示する金ナノ粒子」が薬剤である式（ＶＩＩ）のアジド化合物を固定化すると共に、これが光照射されると薬剤である式（ＶＩＩ）のアジド化合物が放出されたことを示している。また、この反応は２−ニトロベンジル基の光化学反応によるものであることも分かった。

光照射による、薬物付き薬物輸送体からの薬物放出のタイムコース
薬物付き薬物輸送体として、実施例５で得られたもの（光分解性基を介してＮＴＡを担持する金ナノ粒子へＨｉｓ−ＧＳＴが固定されたもの）を用いた。石英セル中で、ウシオの２５０Ｗ超高圧水銀光源により、６．３ｍＷ／ｃｍ^２の光量（波長３６５ｎｍ）で適当時間光照射を行い、同溶液の遠心上清中（１８，１００ｒｐｍ×３０分）のタンパク定量を行うことで、溶液中に放出されたタンパク質を経時的に定量したところ、光照射時間に依存するタンパク質の放出が観察された（図３）。なお、横軸は光照射時間、縦軸は溶液中に放出されたＨｉｓ−ＧＳＴ濃度（Ｂｒａｄｆｏｒｄ法で求めたもの）を意味する。また、このタンパク質の分子量をＳＤＳポリアクリルアミド電気泳動により解析したところ、光照射時のみ溶液中に使用したＨｉｓ−ＧＳＴと同じ分子量のタンパク質が放出されていることを確認できた（図４）。なお、図中の（ｉ）はマーカー、（ｉｉは）使用したＨｉｓ−ＧＳＴ、（ｉｉｉ）は光照射粒子の遠心上清、（ｉｖ）は光非照射粒子の遠心上清である。

本発明の光応答性薬物輸送体における、光照射依存的な薬物放出と活性制御を説明する概念図である。（１）実施例１で得られた、光分解性基を介してスクシンイミジルエステルを提示する金ナノ粒子、（２）実施例４で得られた、１１−アジド−３，６，９−トリオキサウンデカン−１−アミン（式（ＶＩＩ））を固定化した金ナノ粒子、（３）光放出により前記薬剤を放出させた際の赤外吸収スペクトルを示す図である。光分解性基を介してニトリロ三酢酸を提示する金ナノ粒子表面に固定されたＨｉｓタグタンパク質の光照射時間依存的な放出状態を示すグラフである。光分解性基を介してニトリロ三酢酸を提示する金ナノ粒子表面に固定されたＨｉｓタグタンパク質の、ＳＤＳ−ＰＡＧＥによる放出タンパク質の評価を示す図である。

Claims

下記式（１９）、（２１）又は（２３）で表わされる、薬物が結合可能な光応答性薬物輸送体。
〔但し、式中のＡは金ナノ粒子である〕