JP5379119B2 - アルツハイマー病に関連する遺伝子配列およびタンパク質、ならびにその使用 - Google Patents

アルツハイマー病に関連する遺伝子配列およびタンパク質、ならびにその使用 Download PDF

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Description

関連出願の相互参照
本出願は米国特許出願第08/509,359号（1995年７月31日出願）の一部継続出願である。また、米国特許出願第08/509,359号は米国特許出願第08/496,841号（1995年６月28日出願）の一部継続出願である。また、米国特許出願第08/496,841号は米国特許出願第08/431,048号（1995年４月28日出願）の一部継続出願である。これらすべての出願が、「アルツハイマー病に関連する遺伝子配列およびタンパク質、ならびにその使用」（発明者：PeterH. St. George-Hyslop、Johanna M. RommensおよびPaul E. Fraser）と表題され、そして
これらすべてが本明細書中で参考として援用される。
発明の分野
本発明は、一般的にアルツハイマー病に関連する神経学的および生理学的機能障害に関する。より詳細には、本発明はアルツハイマー病に関連する遺伝子の同定、単離、およびクローニング、ならびにそれらの転写物、遺伝子産物、関連する配列情報、および関連遺伝子に関する。本発明はまた、これらの遺伝子の正常および変異の対立遺伝子の保因者を検出および診断する方法、アルツハイマー病を検出および診断する方法、アルツハイマーの遺伝子およびタンパク質と関連または相互作用する遺伝子およびタンパク質を同定する方法、アルツハイマー病の潜在的治療法をスクリーニングする方法、アルツハイマー病の処置法、ならびにアルツハイマー病に潜在的に有用な治療法をスクリーニングおよび評価するために有用な細胞株および動物モデル、に関する。
発明の背景
種々の雑誌の論文の参照を容易にするために、本明細書の最後に論文のリストを提供する。
アルツハイマー病（AD）はヒトの中枢神経系の変性障害であり、中年から老年期における進行性の記憶障害ならびに認識力および知能の低下によって特徴付けられる（Katzman
、1986）。この病気は一群の神経病理学的な特徴を伴い、その中で主要なものは、細胞外アミロイドまたは老人斑の存在および神経細胞の神経原線維の変性である。この病気の病因は複雑であるが、特定の家族においては常染色体優性の形質として遺伝するようにみえるものもある。しかしながら、これらの遺伝型のADにおいても、少なくとも３種の異なる遺伝子（この病気に遺伝感受性を与える）が存在する（St.George-Hyslopら、1990）。アポリポタンパク質Ｅ（ApoE）遺伝子のε４(C112R）対立遺伝子多型は、一生のうち遅い時期に発症する症例のうちのかなりの割合の症例において、ADと関連した（Saundersら、1993;Strittmatterら、1993）。同様に、65歳前に発症する家族性の症例の非常にわずかな
割合が、β-アミロイド前駆体タンパク質（APP）遺伝子における変異に関連した（Chartier-Harlinら、1991;Goateら、1991; Murrellら、1991; Karlinskyら、1992; Mullanら、1992）。早期発症ADの症例のより多くの割合と関連する三番目の遺伝子座（AD3)が、最近
、染色体14q24.3にマッピングされた（Schellenbergら、1992;St. George-Hyslopら、1992; Van Broeckhovenら、1992）。
染色体14q領域は、AD3と関連する変異部位の候補遺伝子と考えられ得るいくつかの遺伝子（例えば、cFOS、α-1-抗キモトリプシン、およびカテプシンＧ）を有するが、これら
の候補遺伝子のほとんどが、AD3領域外のそれらの物理的位置および/またはそれらのそれぞれのオープンリーディングフレーム中に変異が存在しないことに基づいて除外された（
Schellenbergら、1992;Van Broeckhovenら、1992; Rogaevら、1993; Wongら、1993）。
アルツハイマー病の処置およびその診断に関して、いくつもの開発および商業化の傾向または計画があった。公開されたPCT出願WO 94 23049には、高分子量YAC DNAの、特定の
マウス細胞へのトランスフェクションが記載されている。この方法は、大きな遺伝子複合体を解析するために用いられ得る。例えば、トランスジェニックマウスは、増大したAPP
遺伝子量を有し得る。これは、ダウン症候群に蔓延するトリソミー状態を模擬し、そしてアルツハイマー病の個体に蔓延するβ-アミロイド症に似た、β-アミロイド症の動物モデルを産生する。公開された国際出願WO94 00569には、大きなトランスジーン（例えばヒトAPP遺伝子を含むトランスジーン）を有するトランスジェニック非ヒト動物が記載されて
いる。そのような動物モデルは、アルツハイマー病のようなヒトの遺伝病の、有用なモデルを提供し得る。
カナダ国特許出願第2096911号には、APP-切断プロテアーゼをコードする核酸（アルツ
ハイマー病およびダウン症候群に関連する）が記載されている。染色体19から単離された遺伝子情報は、アルツハイマー病を診断するために使用され得る。カナダ国特許出願第2071105号は、遺伝性または後天性のアルツハイマー病の、YACヌクレオチド配列を用いた検出および処置について記載している。YACは、番号23CB10、2BCA12、および26FF3で同定される。
特許文献１には、染色体21のトリソミーに関連するアルツハイマー病の検出が記載されている。処置は、染色体21トリソミーの増殖を減少させる方法を包含する。カナダ国特許出願第2054302号には、モノクローナル抗体が記載され、これは、染色体21にコードされ
るヒト脳細胞核タンパク質を認識し、そしてアルツハイマー病またはダウン症候群による発現の変化を検出するために用いられる。そのモノクローナル抗体は、ヒト染色体21にコードされるタンパク質に特異的であり、そしてヒト脳組織の大きな錐体細胞中に見出される。
米国特許第5,297,562号明細書
本発明は、例えば以下の項目を提供する。
（項目１） 単離された核酸であって、正常なプレセニリン-1タンパク質、変異プレセニリン-1タンパク質、正常なプレセニリン-2タンパク質、および変異プレセニリン-2タンパク質からなる群より選択されるタンパク質をコードするヌクレオチド配列を含む、核酸。

（項目２） 前記核酸が、正常なプレセニリンタンパク質をコードし、そして前記ヌクレオチド配列が、
(a) 配列番号２のヒトプレセニリン-1アミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列；(b) 配列番号４のヒトプレセニリン-1アミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列；(c) 配列番号17のマウスプレセニリン-1アミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列；
(d) 配列番号２のアミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列であって、ここで残基257がアラニンにより置換されており、そして残基258〜290が削除されている；
(e) 配列番号４のアミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列であって、ここで残基253がアラニンにより置換されており、そして残基254〜286が削除されている；
(f) 配列番号19のヒトプレセニリン-2アミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列；(g) 配列番号19のヒトプレセニリン-2アミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列であって、ここで残基263〜296が削除されている；および
(h) 正常なプレセニリンタンパク質をコードする配列であって、そしてストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で(a)〜(g)の任意の配列に相補的な配列にハイブリダイズし得る配列；
からなる群より選択される、項目１に記載の単離された核酸。
（項目３） 前記核酸が変異プレセニリンタンパク質をコードし、ここで前記ヌクレオチド配列が少なくとも１つの変異をコードし、該変異がA79?、V82L、V96F、Y115H、M139T、M139V、I143T、M146L、M146V、H163R、H163Y、L171P、G209V、I211T、A231T、A246E、A260V、C263R、P264L、P267S、E280A、E280G、A285V、L286V、Δ291-319、G384A、L392V、およびC410Yからなる群より選択される配列番号２の変異、またはM239V、N141I、およびI420Tからなる群より選択される配列番号19の変異に対応し；そして
ここで、該ヌクレオチド配列が他の点では、
(a) 配列番号２のヒトプレセニリン-1アミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列；(b) 配列番号４のヒトプレセニリン-1アミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列；(c) 配列番号17のマウスプレセニリン-1アミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列；
(d) 配列番号２のアミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列であって、ここで残基257がアラニンにより置換されており、そして残基258〜290が削除されている；
(e) 配列番号４のアミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列であって、ここで残基253がアラニンにより置換されており、そして残基254〜286が削除されている；
(f) 配列番号19のヒトプレセニリン-2アミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列；(g) 配列番号19のヒトプレセニリン-2アミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列であって、ここで残基263〜296が削除されている；および
(h) 正常なプレセニリンタンパク質をコードする配列であって、そしてストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で(a)〜(g)の任意の配列に相補的な配列にハイブリダイズし得る配列；
からなる群より選択されるヌクレオチド配列に対応する、項目１に記載の単離された核酸。
（項目４） 配列番号１、配列番号３、配列番号16、配列番号18、およびこれらの任意の配列に相補的な配列からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む、項目２に記載の単離された核酸。
（項目５） 前記ヌクレオチド配列が少なくとも１つの変異をコードし、該変異がA79?、V82L、V96F、Y115H、M139T、M139V、I143T、M146L、M146V、H163R、H163Y、L171P、G209V、I211T、A231T、A246E、A260V、C263R、P264L、P267S、E280A、E280G、A285V、L286V、
Δ291-319、G384A、L392V、およびC410Yからなる群より選択される配列番号２の変異、またはM239V、N141I、およびI420Tからなる群より選択される配列番号19の変異に対応し、
そして
ここで、該ヌクレオチド配列が他の点では、配列番号１、配列番号３、配列番号16、配列番号18、およびこれらの任意の配列に相補的な配列からなる群より選択されるヌクレオチド配列に対応する、項目３に記載の単離された核酸。
（項目６） 単離された核酸であって、
(a) 項目２、４、または６に記載の核酸の少なくとも10個の連続するヌクレオチド；
(b) 項目２、４、または６に記載の核酸の少なくとも15個の連続するヌクレオチド；および
(c) 項目２、４、または６に記載の核酸の少なくとも20個の連続するヌクレオチド；
からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む、核酸。
（項目７） 単離された核酸であって、配列番号５、配列番号６、配列番号７、配列番号８、配列番号９、配列番号10、配列番号11、配列番号12、配列番号13、配列番号14、および配列番号15からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む、核酸。
（項目８） 単離された核酸であって、ATCC受託番号97214、ATCC受託番号97508、ATCC受託番号97124、およびATCC受託番号97428からなる群より選択されるプラスミド内へのプレ
セニリン挿入によりコードされるポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む、核酸。
（項目９） 単離された核酸であって、ヒトプレセニリン遺伝子の対立遺伝子変異体または異種特異的ホモログを含む、核酸。
（項目１０） 前記核酸が、
(a) 配列番号21のDmPSアミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列；
(b) 配列番号20；および
(c) プレセニリンホモログタンパク質をコードする配列であって、そしてストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で(a)または(b)の配列に相補的な配列にハイブリダイズし得る配列；
からなる群より選択されるヌクレオチドを含む、項目９に記載の単離された核酸。
（項目１１） 項目１〜１０のいずれかに記載の単離された核酸を含む、組換えベクター。
（項目１２） 項目１１に記載のベクターを含む、宿主細胞。
（項目１３） 非ヒトトランスジェニック動物であって、該動物のまたはその祖先のゲノムが、
(a) 異種特異的正常プレセニリン遺伝子の少なくとも機能的ドメインをコードする少なくとも１つのヌクレオチド配列の挿入；
(b) 異種特異的変異プレセニリン遺伝子の少なくとも機能的ドメインをコードする少なくとも１つのヌクレオチド配列の挿入；
(c) 異種特異的変異プレセニリン遺伝子の同種ホモログの少なくとも機能的ドメインをコードする少なくとも１つのヌクレオチド配列の挿入；および
(d) 内因性プレセニリン遺伝子の不活化；
からなる群より選択される改変の導入により改変されている、非ヒトトランスジェニック動物。
（項目１４） 実質的に純粋なタンパク質であって、正常なプレセニリン-1タンパク質、変異プレセニリン-1タンパク質、正常なプレセニリン-2タンパク質、および変異プレセニリン-2タンパク質からなる群より選択される、タンパク質。
（項目１５） 前記タンパク質が、
(a) 配列番号２のアミノ酸配列を含むタンパク質；
(b) 配列番号４のアミノ酸配列を含むタンパク質；
(c) 配列番号17のアミノ酸配列を含むタンパク質；
(d) 配列番号２のアミノ酸配列を含むタンパク質であって、ここで残基257がアラニンに
より置換されており、そして残基258〜290が削除されている；
(e) 配列番号４のアミノ酸配列を含むタンパク質であって、ここで残基253がアラニンに
より置換されており、そして残基254〜286が削除されている；
(f) 配列番号19のアミノ酸配列を含むタンパク質；および
(g) 配列番号19のアミノ酸配列を含むタンパク質であって、ここで残基263〜296が削除されている；
からなる群より選択される正常なプレセニリンタンパク質を含む、項目１４に記載のタンパク質。
（項目１６） 前記タンパク質が少なくとも１つの変異を含む、変異プレセニリンタンパク質を含むタンパク質であって、該変異がA79?、V82L、V96F、Y115H、M139T、M139T、I143T、M146L、M146V、H163R、H163Y、L171P、G209V、I211T、A231T、A246E、A260V、C263R
、P264L、P267S、E280A、E280G、A286G、L286V、Δ291-319、G384A、L392V、およびC410Yからなる群より選択される配列番号２の変異、またはM239V、N141I、およびI420Tからな
る群より選択される配列番号19の変異に対応し；そして
ここで、該タンパク質が他の点では、
(a) 配列番号２のアミノ酸配列；
(b) 配列番号４のアミノ酸配列；
(c) 配列番号17のアミノ酸配列；
(d) 配列番号２のアミノ酸配列であって、ここで残基257がアラニンにより置換されてお
り、そして残基258〜290が削除されている；
(e) 配列番号４のアミノ酸配列であって、ここで残基253がアラニンにより置換されてお
り、そして残基254〜286が削除されている；
(f) 配列番号19のアミノ酸配列；および
(g) 配列番号19のアミノ酸配列であって、ここで残基263〜296が削除されている；
からなる群より選択されるアミノ酸配列に対応する、項目１４に記載のタンパク質。
（項目１７） 実質的に純粋なポリペプチドであって、
(a) 項目１５または１６に記載のタンパク質の少なくとも５個の連続するアミノ酸残基；(b) 項目１５または１６に記載のタンパク質の少なくとも10個の連続するアミノ酸残基；および
(c) 項目１５または１６に記載のタンパク質の少なくとも15個の連続するアミノ酸残基；からなる群より選択されるアミノ酸配列を含む、ポリペプチド。
（項目１８） 配列番号21のアミノ酸配列を含むタンパク質の実質的に純粋な調製物。
（項目１９） 正常なプレセニリン-1タンパク質、変異プレセニリン-1タンパク質、正常なプレセニリン-2タンパク質、および変異プレセニリン-2タンパク質からなる群より選択されるプレセニリンタンパク質の少なくとも１つの機能的ドメインを含むポリペプチドの実質的に純粋な調製物。
（項目２０） 実質的に純粋な抗体の調製物であって、該抗体が、正常なプレセニリン-1タンパク質、変異プレセニリン-1、正常なプレセニリン-2、および変異プレセニリン-2からなる群より選択されるプレセニリンタンパク質の抗原決定基に選択的に結合する、調製物。
（項目２１） 前記抗体が、変異プレセニリンタンパク質の抗原決定基には選択的に結合し、そして正常なプレセニリンタンパク質には結合しない、項目２０に記載の実質的に純粋な抗体の調製物。
（項目２２） プレセニリン遺伝子の発現を調節し得る化合物の同定方法であって、以下の工程：
細胞を候補化合物と接触させる工程、ここで、該細胞がコード領域に作動可能に連結されたプレセニリン遺伝子の調節領域を含む；および
該コード領域の発現の変化を検出する工程；
を包含する、方法。
（項目２３） プレセニリンタンパク質に選択的に結合し得る化合物の同定方法であって、以下の工程：
少なくとも１つのプレセニリン成分を含む調製物を提供する工程；
該調製物を、少なくとも１つの候補化合物を含有するサンプルと接触させる工程；および
該候補化合物への該プレセニリン成分の結合を検出する工程；
を包含する、方法。
（項目２４） プレセニリンの活性を調節し得る化合物の同定方法であって、以下の工程：
正常または変異プレセニリン遺伝子を発現する細胞を提供する工程；
該細胞を、少なくとも１つの候補化合物と接触させる工程；および
該活性のマーカーの変化を検出する工程；
を包含する、方法。
（項目２５） 被験体が変異プレセニリン遺伝子を有するかどうかを決定するための診断方法であって、以下の工程：
該被験体の生物学的サンプルを提供する工程；
該サンプル中に変異プレセニリン核酸、変異プレセニリンタンパク質、または変異プレセニリン活性を検出する工程；
を包含する、方法。
（項目２６） 薬学的組成物であって、
(a) 実質的に純粋なプレセニリンタンパク質；
(b) プレセニリンタンパク質をコードするヌクレオチド配列を含む単離された核酸；
(c) プレセニリンタンパク質を作動可能にコードする発現ベクターであって、ここで該発現ベクターが、ヒト被験体中で該プレセニリンタンパク質を発現し得る；
(d) プレセニリンアンチセンス配列を作動可能にコードする発現ベクターであって、ここで該発現ベクターが、ヒト被験体中で該プレセニリンアンチセンス配列を発現し得る；および
(e) 実質的に純粋な抗体であって、ここで該抗体が、変異プレセニリンタンパク質に選択的に結合する；
からなる群より選択される活性成分、および薬学的に受容可能なキャリアを含有する、薬学的組成物。
（項目２７） 哺乳動物プレセニリンタンパク質の生産方法であって、項目１２に記載の宿主細胞を、該プレセニリンタンパク質の発現に適切な条件下で培養する工程を包含する、方法。
（項目２８） 変異プレセニリン遺伝子を有する患者の処置方法であって、項目２６に記載の薬学的調製物の治療有効量を該患者に投与する工程を包含する、方法。
本発明は、以下の項目もまた提供する。
（項目１）正常プレセニリン−１タンパク質、変異プレセニリン−１タンパク質、正常プレセニリン−２タンパク質、および変異プレセニリン−２タンパク質からなる群より選択されるタンパク質をコードするヌクレオチド配列を含む、単離された核酸。
（項目２）上記核酸が正常プレセニリン−１タンパク質をコードし、ここで上記ヌクレオチド配列は、以下：
（１）配列番号２のヒトプレセニリン−１アミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列；
（２）配列番号４のヒトプレセニリン−１アミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列；
（３）配列番号１７のマウスプレセニリン−１タンパク質を含むタンパク質をコードする配列；
（４）配列番号２の配列のアミノ酸を含むタンパク質をコードする配列であって、残基２５７がアラニンで置換され、残基２５８〜２９０が欠失している、配列；
（５）配列番号４の配列のアミノ酸を含むタンパク質をコードする配列であって、残基２５３がアラニンで置換され、残基２５４〜２８６が欠失している、配列；および
（６）正常プレセニリン−１タンパク質をコードする配列であって、ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で（１）〜（５）のいずれかの配列に相補的な配列にハイブリダイズし得る、配列、
からなる群より選択される、項目１に記載の単離された核酸。
（項目３）上記核酸は変異プレセニリン−１タンパク質をコードし、上記ヌクレオチド配列は、Ａ７９？、Ｖ８２Ｌ，Ｖ９６Ｆ、Ｙ１１５Ｈ、Ｍ１３９Ｔ，Ｍ１３９Ｖ、Ｉ１４３Ｔ、Ｍ１４６Ｌ、Ｍ１４６Ｖ、Ｈ１６３Ｒ、Ｈ１６３Ｙ、Ｌ１７１Ｐ、Ｇ２０９Ｖ、Ｉ２１１Ｔ，Ａ２３１Ｔ、Ａ２４６Ｅ、Ａ２６０Ｖ、Ｃ２６３Ｒ、Ｐ２６４Ｌ、Ｐ２６７Ｓ、Ｅ２８０Ａ、Ｅ２８０Ｇ、Ａ２８５Ｖ，Ｌ２８６Ｖ、Δ２９１−３１９、Ｇ３８４Ａ、Ｌ３９２ＶおよびＣ４１０Ｙからなる群より選択される配列番号２の変異に対応する少なくとも１つの変異をコードし；そして
そのヌクレオチド配列は、そうでなければ
（１）配列番号２のヒトプレセニリン−１アミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列；
（２）配列番号４のヒトプレセニリン−１アミノ酸配列を含むタンパク質をコードする
配列；
（３）配列番号１７のマウスプレセニリン−１アミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列；
（４）配列番号２のアミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列であって、残基２５７がアラニンで置換され、残基２５８〜２９０が欠失している、配列；
（５）配列番号４の配列のアミノ酸を含むタンパク質をコードする配列であって、残基２５３がアラニンで置換され、残基２５４〜２８６が欠失している、配列；および
（６）正常プレセニリン−１タンパク質をコードする配列であって、ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で（１）〜（５）のいずれかの配列に相補的な配列にハイブリダイズし得る、配列、
からなる群より選択されるヌクレオチド配列に対応する、項目１に記載の単離された核酸。
（項目４）上記核酸が変異プレセニリン−１タンパク質をコードし、上記ヌクレオチド配列は、Ｍ２３９Ｖ、Ｎ１４１ＩおよびＩ４２０Ｔからなる群より選択される配列番号１９の変異に対応する少なくとも１つの変異をコードし；そして、
そのヌクレオチド配列は、そうでなければ、
（１）配列番号２のヒトプレセニリン−１アミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列；
（２）配列番号４のヒトプレセニリン−１アミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列；
（３）配列番号１７のマウスプレセニリン−１アミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列；
（４）配列番号２のアミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列であって、残基２５７がアラニンで置換され、残基２５８〜２９０が欠失している、配列；
（５）配列番号４の配列のアミノ酸を含むタンパク質をコードする配列であって、残基２５３がアラニンで置換され、残基２５４〜２８６が欠失している、配列；および
（６）正常プレセニリン−１タンパク質をコードする配列であって、ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で（１）〜（５）のいずれかの配列に相補的な配列にハイブリダイズし得る、配列、
からなる群より選択されるヌクレオチド配列に対応する、項目１に記載の単離された核酸。
（項目５）上記核酸は正常プレセニリン−２タンパク質をコードし、上記ヌクレオチド配列は
（１）配列番号１９のヒトプレセニリン−２アミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列；
（２）配列番号１９のヒトプレセニリン−２アミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列であって、残基２６３〜２９６が欠失している、配列；および
（３）正常プレセニリン−２タンパク質をコードする配列であって、ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で配列（１）〜（２）のいずれか１つの配列に相補的な配列にハイブリダイズし得る、配列、
からなる群より選択される、項目１に記載の単離された核酸。
（項目６）上記核酸が変異プレセニリン−２タンパク質をコードし、上記ヌクレオチド配列は、Ｍ２３９Ｖ、Ｎ１４１ＩおよびＩ４２０Ｔからなる群より選択される配列番号１９の変異に対応する少なくとも１つの変異をコードし；そして
そのヌクレオチド配列は、そうでなければ、以下：
（１）配列番号１９のヒトプレセニリン−２アミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列；
（２）配列番号１９の配列のヒトプレセニリン−２アミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列であって、残基２６３〜２９６が欠失している、配列；
（３）正常プレセニリン−２タンパク質をコードし、かつストリンジェントなハイブリ
ダイゼーション条件下で（１）〜（２）の配列のいずれかに相補的な配列にハイブリダイズし得る、配列、
からなる群より選択されるヌクレオチド配列に対応する、項目１に記載の単離された核酸。
（項目７）上記核酸は変異プレセニリン−２タンパク質をコードし、そのヌクレオチド配列は、Ａ７９？、Ｖ８２Ｌ，Ｖ９６Ｆ、Ｙ１１５Ｈ、Ｍ１３９Ｔ、Ｍ１３９Ｖ、Ｉ１４３Ｔ、Ｍ１４６Ｌ、Ｍ１４６Ｖ、Ｈ１６３Ｒ、Ｈ１６３Ｙ、Ｌ１７１Ｐ、Ｇ２０９Ｖ、Ｉ２１１Ｔ、Ａ２３１Ｔ、Ａ２４６Ｅ、Ａ２６０Ｖ、Ｃ２６３Ｒ、Ｐ２６４Ｌ、Ｐ２６７Ｓ、Ｅ２８０Ａ、Ｅ２８０Ｇ、Ａ２８５Ｖ、Ｌ２８６Ｖ、Δ２９１−３１９、Ｇ３８４Ａ、Ｌ３９２ＶおよびＣ４１０Ｙからなる群より選択される配列番号２の変異に対応する少なくとも１つの変異をコードし、そして
そのヌクレオチド配列は、そうでなければ、
（１）配列番号１９のヒトプレセニリン−２アミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列；
（２）配列番号１９の配列のヒトプレセニリン−２アミノ酸を含むタンパク質をコードする配列であって、残基２６３〜２９６が欠失している、配列；および
（３）正常プレセニリン−２タンパク質をコードし、ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で（１）〜（２）のいずれかに相補的な配列にハイブリダイズし得る、配列、
からなる群より選択されるヌクレオチド配列に対応する、項目１に記載の単離された核酸。
（項目８）配列番号１、配列番号３、配列番号１６、配列番号１８、配列番号５、配列番号６、配列番号７、配列番号８、配列番号９、配列番号１０、配列番号１１、配列番号１２、配列番号１３、配列番号１４、配列番号１５、およびこれらの配列のいずれかに相補的な配列からなる群より選択される少なくとも１０個の連続するヌクレオチドのヌクレオチド配列を含む、単離された核酸。
（項目９）配列番号１、配列番号３、配列番号１６、配列番号１８、配列番号５、配列番号６、配列番号７、配列番号８、配列番号９、配列番号１０、配列番号１１、配列番号１２、配列番号１３、配列番号１４、配列番号１５、およびこれらの配列のいずれかに相補的な配列からなる群より選択される少なくとも１５個の連続するヌクレオチドのヌクレオチド配列を含む、単離された核酸。
（項目１０）配列番号１、配列番号３、配列番号１６、配列番号１８、配列番号５、配列番号６、配列番号７、配列番号８、配列番号９、配列番号１０、配列番号１１、配列番号１２、配列番号１３、配列番号１４、配列番号１５、およびこれらの配列のいずれかに相補的な配列からなる群より選択される少なくとも２０個の連続するヌクレオチドのヌクレオチド配列を含む、単離された核酸。
（項目１１）ＡＴＣＣアクセッション番号９７２１４、ＡＴＣＣアクセッション番号９７５０８、ＡＴＣＣアクセッション番号９７２１４、およびＡＴＣＣアクセッション番号９７４２８から選択されるプラスミドにおけるプレセニリン挿入物由来の少なくとも１０個の連続するヌクレオチドを含むヌクレオチド配列を含む、単離された核酸。
（項目１２）正常プレセニリン−１タンパク質、変異プレセニリン−１タンパク質、正常プレセニリン−２タンパク質、および変異プレセニリン−２タンパク質からなる群より選択されるプレセニリンタンパク質の少なくとも１つの機能的ドメインをコードするヌクレオチド配列を含む、単離された核酸。
（項目１３）項目１２に記載の単離された核酸であって、上記機能的ドメインは、プレセニリン−１のＮ末端、ＴＭ１→２、ＴＭ２、ＴＭ２→３、ＴＭ３、ＴＭ３→４、ＴＭ４、ＴＭ４→５、ＴＭ５、ＴＭ５→６、ＴＭ６、ＴＭ６→７、およびＣ末端ドメインから選択されるドメインに対応するプレセニリン−１機能的ドメインである、単離された核酸。
（項目１４）項目１２に記載の単離された核酸であって、上記機能的ドメインは、プレセニリン−２のＮ末端、ＴＭ１→２、ＴＭ２、ＴＭ２→３、ＴＭ３、ＴＭ３→４、ＴＭ４、
ＴＭ４→５、ＴＭ５、ＴＭ５→６、ＴＭ６、ＴＭ６→７、およびＣ末端ドメインから選択されるドメインに対応するプレセニリン−２機能的ドメインである、単離された核酸。
（項目１５）正常プレセニリン−１タンパク質、変異プレセニリン−１タンパク質、正常プレセニリン−２タンパク質および変異プレセニリン−２タンパク質からなる群より選択されるプレセニリンタンパク質の抗原決定基をコードするヌクレオチド配列を含む、単離された核酸。
（項目１６）項目１５に記載の単離された核酸であって、上記配列は、配列番号２のアミノ酸残基２７−４４、２８−６１、４６−４８、５０−６０、６５−７１、６６−６７、１０７−１１１、１０９−１１２、１２０−１２１、１２０−１２２、１２５−１２６、１５５−１６０、１８５−１８９、２１４−２２３、２１８−２２１、２２０−２３０、２４０−２４５、２４１−２４３、２６７−２６９、２７３−２８２、３００−３７０、３０２−３１０、３１１−３２５、３３２−３４２、３４６−３５９、３７２−３８２、４００−４１０および４００−４２０からなる群より選択されるプレセニリン−１抗原決定基に対応するプレセニリン−１抗原決定基をコードする、単離された核酸。
（項目１７）項目１５に記載の単離された核酸であって、上記配列は、配列番号１９のアミノ酸残基２５−４５、５０−６３、７０−７５、１１４−１２０、１２７−１３２、１６２−１６７、２２１−２２６、２８２−２９０、３１０−３１４、３２１３３８、３４５−３５２、３８０−３９０および４３０−４３５からなる群より選択されるプレセニリン−２抗原決定基に対応するプレセニリン−２抗原決定基をコードする、単離された核酸。
（項目１８）ヒトプレセニリン遺伝子の対立遺伝子改変体または異種特異的ホモログを同定するための方法であって、その方法は、
ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下でヒトプレセニリン遺伝子配列にハイブリダイズし得る核酸プローブまたはプライマーを選択する工程；
その改変体またはホモログに対応する核酸を含み得る核酸のサンプルと、そのプローブまたはプライマーを混合する工程；
その改変体またはホモログに対応するその核酸へのそのプローブまたはプライマーのハイブリダイゼーションを検出する工程、
を包含する、方法。
（項目１９）項目１８に記載の方法であって、上記サンプルは、ヒトゲノムＤＮＡ、ヒトｍＲＮＡ、およびヒトｃＤＮＡからなる群より選択される核酸のサンプルを含む、方法。（項目２０）項目１８に記載の方法であって、上記サンプルは、哺乳動物ゲノムＤＮＡ、哺乳動物ｍＲＮＡ、および哺乳動物ｃＤＮＡからなる群より選択される核酸のサンプルを含む、方法。
（項目２１）項項目１８に記載の方法であって、上記サンプルは、無脊椎動物ゲノムＤＮＡ、無脊椎動物ｍＲＮＡ、および無脊椎動物ｃＤＮＡからなる群より選択される核酸のサンプルを含む、方法。
（項目２２）項目１８に記載の方法であって、上記改変体またはホモログに対応する核酸を単離する工程をさらに包含する、方法。
（項目２３）項目１８に記載の方法であって、上記核酸は、ハイブリダイゼーションによって同定される、方法。
（項目２４）項目１８に記載の方法であって、上記核酸は、ＰＣＲ増幅によって同定される、方法。
（項目２５）ヒトプレセニリン遺伝子の対立遺伝子改変体または異種特異的ホモログを同定するための方法であって、その方法は、
ヒトプレセニリンタンパク質に選択的に結合し得る抗体を選択する工程；
その抗体と、その改変体またはホモログに対応するタンパク質を含み得るタンパク質のサンプルとを混合する工程；
その抗体の、その改変体またはホモログに対応するタンパク質への結合を検出する工程、
を包含する、方法。
（項目２６）項目２５に記載の方法であって、上記サンプルは、ヒトタンパク質、ヒト融合タンパク質、およびそれらのタンパク質分解フラグメントからなる群より選択されるタンパク質のサンプルを含む、方法。
（項目２７）項目２５に記載の方法であって、上記サンプルは、哺乳動物タンパク質、哺乳動物融合タンパク質、およびそれらのタンパク質分解フラグメントからなる群より選択されるタンパク質のサンプルを含む、方法。
（項目２８）項目２５に記載の方法であって、上記サンプルは、無脊椎動物タンパク質、無脊椎動物融合タンパク質、およびそれらのタンパク質分解フラグメントからなる群より選択されるタンパク質のサンプルを含む、方法。
（項目２９）項目２５に記載の方法であって、改変体またはホモログに対応するタンパク質を実質的に精製する工程をさらに包含する、方法。
（項目３０）ヒトプレセニリン遺伝子の対立遺伝子改変体または異種特異的ホモログを含む、単離された核酸。
（項目３１）ヒトプレセニリンタンパク質の対立遺伝子改変体または異種特異的ホモログを含む、単離された核酸。
（項目３２）項目３１に記載の単離された核酸であって、その核酸は、ヒトプレセニリン遺伝子のＤｒｏｓｏｐｈｉｌａ ｍｅｌａｎｏａａｓｔｅｒホモログをコードする、単離された核酸。
（項目３３）項目３２に記載の単離された核酸であって、その核酸は、
（１）配列番号２１のＤｍＰＳアミノ酸配列を含むタンパク質をコードする配列；
（２）プレセニリンホモログタンパク質をコードし、ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で（１）の配列に相補的な配列にハイブリダイズし得る、配列、
からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む、単離された核酸。
（項目３４）配列番号２１および配列番号２１に相補的な配列からなる群より選択される少なくとも１０個の連続するヌクレオチドのヌクレオチド配列を含む、単離された核酸。（項目３５）配列番号１〜３４のいずれか１つのヌクレオチド配列を含む組換えベクターを含む、単離された核酸。
（項目３６）項目３５に記載の単離された核酸であって、上記ベクターは発現ベクターであり、上記プレセニリンヌクレオチド配列は、制御領域に作動可能に連結されている、単離された核酸。
（項目３７）項目３６に記載の単離された核酸であって、上記発現ベクターは、哺乳動物内で上記プレセニリン配列を発現し得る、単離された核酸。
（項目３８）項目３７に記載の単離された核酸であって、上記細胞は、線維芽細胞、肝細胞、腎細胞、脾臓細胞、骨髄細胞および神経細胞からなる群より選択される、単離された核酸。
（項目３９）項目３７に記載の単離された核酸であって、上記ベクターは、ワクシニアウイルス、アデノウイルス、レトロウイルス、向神経性ウイルス、および単純ヘルペスからなる群より選択される、単離された核酸。
（項目４０）項目３６に記載の単離された核酸であって、上記発現ベクターは、正常プレセニリン−１、変異プレセニリン−１、正常プレセニリン−２、および変異プレセニリン−２からなる群より選択されるプレセニリンタンパク質の少なくとも機能的ドメインをコードする、単離された核酸。
（項目４１）項目３６に記載の単離された核酸であって、上記ベクターは、上記プレセニリン配列に作動可能に連結された外因性タンパク質をコードする配列をさらに含み、それによってそのベクターはプレセニリン融合タンパク質をコードする、単離された核酸。
（項目４２）項目４１に記載の単離された核酸であって、上記外因性タンパク質は、ｌａｃＺ、ｔｒｐＥ、マルトース結合タンパク質、ポリ−Ｈｉｓタグまたはグルタチオン−Ｓトランスフェラーゼから選択される、単離された核酸。
（項目４３）プレセニリン遺伝子の内在性制御領域に対応するヌクレオチド配列を含む組
換え発現ベクターを含む、単離された核酸。
（項目４４）項目４３に記載の単離された核酸であって、上記内在性制御領域は、マーカー遺伝子に作動可能に連結されている、単離された核酸。
（項目４５）項目３６〜４４のいずれか１項に記載の発現ベクター、またはそれらの従属項に記載の発現ベクターで形質転換された、宿主細胞。
（項目４６）項目４５に記載の宿主細胞であって、その宿主細胞は、細菌細胞および酵母細胞からなる群より選択される、宿主細胞。
（項目４７）項目４５に記載の宿主細胞であって、その宿主細胞は、胎児細胞、胚性幹細胞、接合子、および生殖細胞系細胞からなる群より選択される、宿主細胞。
（項目４８）項目４５に記載の宿主細胞であって、その細胞は、線維芽細胞、肝細胞、腎細胞、脾臓細胞、骨髄細胞および神経細胞からなる群より選択される、宿主細胞。
（項目４９）上記細胞は無脊椎動物細胞である、請求項４５に記載の宿主細胞。
（項目５０）アルツハイマー病のための非ヒト動物モデルであって、その動物のゲノム、またはそれらの祖先は、少なくとも１つの組換え構築物によって改変されており、その組換え構築物は、
（１）異種特異的正常プレセニリン遺伝子の少なくとも機能的ドメインをコードするヌクレオチド配列の挿入、
（２）異種特異的変異プレセニリン遺伝子の少なくとも機能的ドメインをコードするヌクレオチド配列の挿入、
（３）異種特異的変異プレセニリン遺伝子の同種特異的ホモログの少なくとも機能的ドメインをコードするヌクレオチド配列の挿入、および
（４）内在性プレセニリン遺伝子の不活性化、
からなる群より選択される改変を導入している、動物。
（項目５１）項目５０に記載の動物であって、上記改変は、正常ヒトプレセニリン−１遺伝子の少なくとも機能的ドメインをコードするヌクレオチド配列の挿入である、動物。
（項目５２）項目５０に記載の動物であって、上記改変は、変異ヒトプレセニリン−１遺伝子の少なくとも機能的ドメインをコードするヌクレオチド配列の挿入である、動物。
（項目５３）項目５０に記載の動物であって、上記改変は、正常ヒトプレセニリン−２遺伝子の少なくとも機能的ドメインをコードするヌクレオチド配列の挿入である、動物。
（項目５４）項目５０に記載の動物であって、上記改変は、変異ヒトプレセニリン−２遺伝子の少なくとも機能的ドメインをコードするヌクレオチド配列の挿入である、動物。
（項目５５）項目５０に記載の動物であって、上記改変は、正常または変異ヒトプレセニリンタンパク質の少なくとも機能的ドメインをコードするヌクレオチド配列の挿入である、動物。
（項目５６）項目５０に記載の動物であって、その動物は、ラット、マウス、ハムスター、モルモット、ウサギ、イヌ、ネコ、ヤギ、ヒツジ、ブタおよび非ヒト霊長類からなる群より選択される、動物。
（項目５７）上記動物が無脊椎動物である、項目５０に記載の動物。
（項目５８）プレセニリンタンパク質の少なくとも機能的ドメインを産生するための方法であって、項目４５〜４９のいずれか１項に記載の宿主細胞を、上記核酸を発現することによってそのプレセニリンを産生するのに適した条件下で培養する工程を包含する、方法。
（項目５９）正常プレセニリン−１タンパク質、変異プレセニリン−１タンパク質、正常プレセニリン−２タンパク質、およびプレセニリン−２タンパク質からなる群より選択されるタンパク質の、実質的に純粋な調製物。
（項目６０）項目５９に記載の実質的に純粋な調製物であって、
（１）配列番号２のアミノ酸配列を含むタンパク質；
（２）配列番号４のアミノ酸配列を含むタンパク質；
（３）配列番号１７のアミノ酸配列を含むタンパク質；
（４）配列番号２の配列のアミノ酸を含むタンパク質であって、残基２５７がアラニン
によって置換され、残基２５８〜２９０が欠失している、タンパク質；および
（５）配列番号４の配列のアミノ酸を含むタンパク質であって、残基２５３がアラニンによって置換され、残基２５４〜２８６が欠失している、タンパク質、
からなる群より選択される、実質的に純粋な調製物。
（項目６１）項目５９に記載の実質的に純粋な調製物であって、上記タンパク質は、Ａ７９？、Ｖ８２Ｌ，Ｖ９６Ｆ、Ｙ１１５Ｈ、Ｍ１３９Ｔ、Ｍ１３９Ｖ、Ｉ１４３Ｔ、Ｍ１４６Ｌ、Ｍ１４６Ｖ、Ｈ１６３Ｒ、Ｈ１６３Ｙ、Ｌ１７１Ｐ、Ｇ２０９Ｖ、Ｉ２１１Ｔ、Ａ２３１Ｔ、Ａ２４６Ｅ、Ａ２６０Ｖ、Ｃ２６３Ｒ、Ｐ２６４Ｌ、Ｐ２６７Ｓ、Ｅ２８０Ａ、Ｅ２８０Ｇ、Ａ２８５Ｖ、Ｌ２８６Ｖ、Δ２９１−３１９、Ｇ３８４Ａ、Ｌ３９２ＶおよびＣ４１０Ｙからなる群より選択される配列番号２の変異に対応する少なくとも１つの変異を含む、変異プレセニリン−１タンパク質を含み；
そのタンパク質は、そうでなければ、
（１）配列番号２のアミノ酸配列；
（２）配列番号４のアミノ酸配列；
（３）配列番号１７のアミノ酸配列；
（４）配列番号２のアミノ酸配列であって、残基２５７がアラニンによって置換され、残基２５８〜２９０が欠失している、アミノ酸配列、
からなる群より選択されるアミノ酸配列に対応する、
実質的に純粋なタンパク質。
（項目６２）項目５９に記載の実質的に純粋な調製物であって、上記タンパク質は、
（１）配列番号１９のアミノ酸配列を含むタンパク質；および
（２）配列番号１９のアミノ酸配列を含むタンパク質であって、残基２６３〜２９６が欠失している、タンパク質；
からなる群より選択される正常プレセニリン−２タンパク質を含む、実質的に純粋な調製物。
（項目６３）項目５９に記載の実質的に純粋な調製物であって、上記タンパク質は、Ｍ２３９Ｖ、Ｎ１４１ＩおよびＩ４２０Ｔからなる群より選択される配列番号１０の変異に対応する少なくとも１つの変異を含む変異プレセニリン−２タンパク質を含み；そして
そのタンパク質は、そうでなければ、
（１）配列番号１９のアミノ酸配列；および
（２）配列番号１９のアミノ酸配列であって、残基２６３〜２９６が欠失している、アミノ酸配列、
からなる群より選択されるアミノ酸配列に対応する、実質的に純粋な調製物。
（項目６４）配列番号２、配列番号４、配列番号１７、配列番号１９および配列番号２１からなる群より選択されるアミノ酸配列の少なくとも５個の連続するアミノ酸残基を含むポリペプチドの、実質的に純粋な調製物。
（項目６５）配列番号２、配列番号４、配列番号１７、配列番号１９および配列番号２１からなる群より選択されるアミノ酸配列の少なくとも１０個の連続するアミノ酸残基を含むポリペプチドの、実質的に純粋な調製物。
（項目６６）配列番号２、配列番号４、配列番号１７、配列番号１９および配列番号２１からなる群より選択されるアミノ酸配列の少なくとも１５個の連続するアミノ酸残基を含むポリペプチドの、実質的に純粋な調製物。
（項目６７）正常プレセニリン−１タンパク質、変異プレセニリン−１タンパク質、正常プレセニリン−２タンパク質、および変異プレセニリン−２タンパク質からなる群より選択されるプレセニリンタンパク質の少なくとも１つの機能的ドメインを含むポリペプチドの、実質的に純粋な調製物。
（項目６８）項目６７に記載の実質的に純粋な調製物であって、上記機能的ドメインは、プレセニリン−１のＮ末端、ＴＭ１→２、ＴＭ２、ＴＭ２→３、ＴＭ３、ＴＭ３→４、ＴＭ４、ＴＭ４→５、ＴＭ５、ＴＭ５→６、ＴＭ６、ＴＭ６→７、およびＣ末端ドメインからなる群より選択されるドメインに対応するプレセニリン−１機能的ドメインである、実
質的に純粋な調製物。
（項目６９）項目６７に記載の実質的に純粋な調製物であって、上記機能的ドメインは、プレセニリン−２のＮ末端、ＴＭ１→２、ＴＭ２、ＴＭ２→３、ＴＭ３、ＴＭ３→４、ＴＭ４、ＴＭ４→５、ＴＭ５、ＴＭ５→６、ＴＭ６、ＴＭ６→７、およびＣ末端ドメインからなる群より選択されるドメインに対応するプレセニリン−２機能的ドメインである、実質的に純粋な調製物。
（項目７０）正常プレセニリン−１タンパク質、変異プレセニリン−１タンパク質、正常プレセニリン−２タンパク質、および変異プレセニリン−２タンパク質からなる群より選択されるプレセニリンタンパク質の抗原決定基を含む、実質的に純粋な調製物。
（項目７１）項目７０に記載の実質的に純粋な調製物であって、上記ポリペプチドは、配列番号２のアミノ酸残基２７−４４、２８−６１、４６−４８、５０−６０、６５−７１、６６−６７、１０７−１１１、１０９−１１２、１２０−１２１、１２０−１２２、１２５−１２６、１５５−１６０、１８５−１８９、２１４−２２３、２１８−２２１、２２０−２３０、２４０−２４５、２４１−２４３、２６７−２６９、２７３−２８２、３００−３７０、３０２−３１０、３１１−３２５、３３２−３４２、３４６−３５９、３７２−３８２、４００−４１０および４００−４２０からなるヌクレオチドの群から選択されるプレセニリン−１抗原決定基に対応する、プレセニリン−１抗原決定基を含む、実質的に純粋な調製物。
（項目７２）項目７０に記載の実質的に純粋な調製物であって、上記ポリペプチドは、配列番号１９のアミノ酸残基２５−４５、５０−６３、７０−７５、１１４−１２０、１２７−１３２、１６２−１６７、２２１−２２６、２８２−２９０、３１０−３１４、３２１−３３８、３４５−３５２、３８０−３９０および４３０−４３５からなるヌクレオチドの群から選択されるプレセニリン−１抗原決定基に対応するプレセニリン−１抗原決定基を含む、実質的に純粋な調製物。
（項目７３）プレセニリンに選択的に結合する抗体を産生する方法であって、
免疫学的に有効な量のプレセニリン免疫原を動物に投与する工程；
その動物に、その免疫原に対する抗体を産生させる工程；および
その動物から、またはその動物由来の細胞培養物から、その抗体を得る工程、
を包含する、方法。
（項目７４）正常プレセニリン−１、変異プレセニリン−１、正常プレセニリン−２、および変異プレセニリン−２からなる群より選択されるプレセニリンタンパク質の抗原決定基に選択的に結合する抗体の、実質的に純粋な調製物。
（項目７５）項目７４に記載の抗体の実質的に純粋な調製物であって、その抗体は、変異プレセニリン−１の抗原決定基に選択的に結合し、正常プレセニリン−１タンパク質には結合できない、実質的に純粋な調製物。
（項目７６）項目７４に記載の抗体の実質的に純粋な調製物であって、その抗体は、変異プレセニリン−２の抗原決定基に選択的に結合し、正常プレセニリン−２タンパク質には結合できない、実質的に純粋な調製物。
（項目７７）項目７４〜７６のいずれか１項に記載の抗体を産生する、細胞株。
（項目７８）プレセニリン遺伝子の発現を調節し得る化合物を同定するための方法であって、
細胞と試験候補とを接触させる工程であって、その細胞はコード領域に作動可能に連結されたプレセニリン遺伝子の調節領域を含む、工程；および
そのコード領域の発現における変化を検出する工程、
を包含する、方法。
（項目７９）項目７８に記載の方法であって、上記変化は、上記コード領域によってコードされるｍＲＮＡ転写物のレベルにおける変化を含む、方法。
（項目８０）項目７８に記載の方法であって、上記変化は、上記コード領域によってコードされるタンパク質のレベルにおける変化を含む、方法。
（項目８１）項目７８に記載の方法であって、上記変化は、上記コード領域によってコー
ドされるタンパク質の活性の結果である、方法。
（項目８２）項目７８に記載の方法であって、上記コード領域は、β−ガラクトシダーゼ、アルカリホスファターゼ、緑色蛍光タンパク質、およびルシフェラーゼからなる群より選択されるマーカータンパク質をコードする、方法。
（項目８３）プレセニリンタンパク質に選択的に結合し得る化合物を同定するための方法であって、
少なくとも１種のプレセニリン成分を含む調製物を提供する工程；
その調製物と、少なくとも１種の候補化合物を含むサンプルとを接触させる工程；および
そのプレセニリン成分のその候補化合物への結合を検出する工程、
を包含する、方法。
（項目８４）項目８３に記載の方法であって、上記プレセニリン成分への結合は、アフィニティークロマトグラフィー、免疫沈降、生物分子相互作用アッセイ、および酵母ツーハイブリッド系からなる群より選択されるアッセイによって検出される、方法。
（項目８５）プレセニリンの活性を調節し得る化合物を同定する方法であって、
正常または変異プレセニリン遺伝子を発現する細胞を提供する工程；
その細胞と、少なくとも１種の候補化合物とを接触させる工程；および
マーカーの活性における変化を検出する工程、
を包含する、方法。
（項目８６）項目８５に記載の方法であって、上記マーカーの測定が、発現した変異プレセニリン遺伝子を保持する細胞と、発現した変異プレセニリン遺伝子を有さない点以外は同一である細胞との間の差異を示す、方法。
（項目８７）項目８５に記載の方法であって、上記変化は、ｐＨ、細胞内カルシウム、サイクリックＡＭＰレベル、ＧＴＰ／ＧＤＰ比、ホスファチジルイノシトール活性、およびタンパク質リン酸化からなる群より選択される細胞生理学の非特異的マーカーにおける変化を含む、方法。
（項目８８）上記変化は、上記プレセニリンの発現における変化を含む、項目８５に記載の方法。
（項目８９）上記変化は、Ｃａ２＋、Ｎａ＋、およびＫ＋からなる群より選択されるイオンの細胞内濃度またはフラックスにおける変化を含む、項目８５に記載の方法。
（項目９０）上記変化は、アポトーシスまたは細胞死の発生または速度における変化を含む、項目８５に記載の方法。
（項目９１）上記変化は、Ａβペプチドの産生における変化を含む、項目８５に記載の方法。
（項目９２）上記変化は、少なくとも１種の微小管関連タンパク質のリン酸化における変化を含む、項目８５に記載の方法。
（項目９３）上記細胞は、インビトロで培養された細胞である、項目８５に記載の方法。（項目９４）上記細胞は、項目４５〜４９のいずれか１項に記載の形質転換された宿主細胞である、項目９３に記載の方法。
（項目９５）上記細胞は、少なくとも１つの変異プレセニリン遺伝子を保持する宿主から体外移植される、項目９３に記載の方法。
（項目９６）上記細胞は、項目５０〜５７のいずれか１項に記載のトランスジェニック動物から対外移植される、項目９３に記載の方法。
（項目９７）上記細胞は、生きている動物における細胞である、項目８５に記載の方法。（項目９８）上記細胞は、項目５０〜５７のいずれか１項に記載のトランスジェニック動物の細胞である、項目９７に記載の方法。
（項目９９）上記細胞は、治験におけるヒト被験体である、項目８５に記載の方法。
（項目１００）被験体が変異プレセニリン遺伝子を保持しているか否かを決定するための診断法であって、
その被験体の生物学的サンプルを提供する工程；
そのサンプルにおいて、変異プレセニリン核酸、変異プレセニリンタンパク質、または変異プレセニリン活性を検出する工程、
を包含する、方法。
（項目１０１）項目１００に記載の方法であって、変異プレセニリン核酸は、直接的核酸配列決定、プローブ特異的ハイブリダイゼーション、制限酵素消化およびマッピング、ＰＣＲマッピング、リガーゼ媒介ＰＣＲ検出、ＲＮａｓｅプロテクション、電気泳動移動度シフト検出、および化学的ミスマッチ切断からなる群より選択されるアッセイによって検出される、方法。
（項目１０２）変異プレセニリンタンパク質は、イムノアッセイ、プロテアーゼアッセイ、および電気泳動移動度アッセイからなる群より選択されるアッセイによって検出される、項目１００に記載の方法。
（項目１０３）実質的に純粋なプレセニリンタンパク質と、薬学的に受容可能なキャリアとを含む、薬学的調製物。
（項目１０４）プレセニリンタンパク質を作動可能にコードする発現ベクターと薬学的に受容可能なキャリアとを含む薬学的調製物であって、その発現ベクターは、ヒト被験体においてそのプレセニリンタンパク質を発現し得る、薬学的調製物。
（項目１０５）プレセニリンアンチセンス配列を作動可能にコードする発現ベクターと薬学的に受容可能なキャリアとを含む薬学的調製物であって、その発現ベクターは、ヒト被験体においてそのプレセニリンアンチセンス配列を発現し得る、薬学的調製物。
（項目１０６）実質的に純粋な抗体と薬学的に受容可能なキャリアとを含む薬学的調製物であって、その抗体は、変異プレセニリンタンパク質に選択的に結合する、薬学的調製物。
（項目１０７）上記調製物は、正常プレセニリンタンパク質に選択的に結合する抗体は本質的に含まない、項目１０６に記載の薬学的調製物。
（項目１０８）変異プレセニリンタンパク質の抗原決定基の実質的に純粋な調製物を含む、薬学的調製物。
（項目１０９）上記調製物は、正常プレセニリンタンパク質の抗原決定基を本質的に含まない、項目１０８に記載の薬学的調製物。
（項目１１０）変異プレセニリン遺伝子を保持する患者のための処置方法であって、その患者に、治療有効量の項目１０３〜１０９のいずれか１項に記載の薬学的調製物を投与する工程を包含する、方法。
（項目１１１）項目１１０に記載の方法であって、上記薬学的調製物は、心臓、脳、肺、肝臓、骨格筋、腎臓、膵臓および神経細胞からなる群より選択される細胞型に対して標的化される、項目１１０に記載の方法。
発明の要旨
本発明は、一部、２つの哺乳動物の遺伝子の、同定、単離、クローニングおよび配列決定に基づいている。これらの遺伝子は、プレセニリン（presenilin）-１（PS1）およびプレセニリン-２（PS2）と命名されている。これら２つの遺伝子、およびそれらの対応するタンパク質産物は、高度に保存された遺伝子（プレセニリン）のファミリーのメンバーであり、それらは他の哺乳動物種（例えば、マウス、ラット）にホモログまたはオーソログを、また無脊椎動物種（例えば、C.elegans、D. melanogaster）にオーソログを有する。これらの遺伝子の変異は、ヒトにおける家族性アルツハイマー病の形態の発生に関係し、そして同様の他の障害（例えば、他の認識的、知能的、神経学的、または心理学的障害（例えば、脳溢血、精神分裂症、鬱病、精神遅滞および癲癇など））の原因でもあり得る。本開示は、ヒトPS1(hPS1)およびヒトPS2(hPS2)遺伝子、マウスPS1ホモログ（mPS1）、な
らびにC.elegans（sel-12、SPE-4）およびD. melanogaster（DmPS）由来の関連する遺伝
子のゲノムおよびcDNAヌクレオチド配列を提供する。本開示はまた、これらの遺伝子にコードされるプレセニリンタンパク質の予想アミノ酸配列、およびプレセニリンの構造の特徴付け（推定の機能的ドメインおよび抗原決定基を含む）を提供する。ヒトのアルツハイ
マー病（AD）の原因であるプレセニリン中の変異の多くもまた開示され、そしてそのタンパク質の機能的ドメインに関連づけられている。
従って、一連の実施様態において、本発明は、プレセニリン遺伝子を含むかまたはそれ由来のヌクレオチド配列を含む単離された核酸、および/またはプレセニリンタンパク質
を含むかまたはそれ由来のポリペプチドをコードする単離された核酸を提供する。本発明のプレセニリン配列は、特定の開示された配列、これらの配列のスプライス変異体、これらの配列の対立遺伝子変異体、同義配列、およびこれらの配列の相同またはオーソロガス変異体を包含する。従って、例えば、本発明は、hPS1遺伝子、hPS2遺伝子、mPS1遺伝子およびDmPS遺伝子由来のゲノムおよびcDNA配列を提供する。本発明はまた、対立遺伝子変異体および相同またはオーソロガス配列を、このような変異体が通常得られ得る方法を提供することによって、提供する。本発明はまた、プレセニリンの変異または病気誘因変異体を、多くの特異的変異配列を開示することによって、そして、他のこのような変異体を通常得ることができる方法を提供することによって、特に提供する。本発明の核酸が、種々の診断、治療、および組み換えの適用に使用され得るので、プレセニリン配列の種々のサブセットおよびプレセニリン配列の異種配列との組合せもまた提供される。例えば、対立遺伝子特異的ハイブリダイゼーションスクリーニングまたはPCR増幅技術における使用の
ためには、センス配列およびアンチセンス配列、正常配列および変異配列、ならびにイントロン配列、エキソン配列および非翻訳配列を含む、プレセニリン配列のサブセットが提供される。このような配列は、本明細書中で開示されるか、さもなければ実施可能とされる配列由来の少数の連続するヌクレオチドを含み得るが、好ましくは、プレセニリン配列由来の少なくとも８〜10個の、より好ましくは９〜25個の連続するヌクレオチドを含む。他の好ましいプレセニリン配列のサブセットは、プレセニリンタンパク質の機能的ドメインまたは抗原決定基の１つ以上をコードする配列を含み、そして特に、正常（野生型）配列または変異配列のいずれかを含み得る。本発明はまた、完全またはサブセットのいずれかのプレセニリン配列が、外因性の配列と作動可能に連結され、クローニングベクター、発現ベクター、融合ベクター、およびトランスジェニック構築物などを形成する種々の核酸構築物を提供する。従って、本発明の別の局面によれば、哺乳動物または無脊椎動物組織細胞を形質転換して、正常または変異プレセニリン配列を細胞中で発現する組換えベクターが提供される。
別の一連の実施形態において、本発明は、本発明の核酸の１つでトランスフェクトされたか、または形質転換された宿主細胞を提供する。細胞は、単に本発明の核酸構築物を増殖する目的のために形質転換され得るか、またはプレセニリン配列を発現するために形質転換され得る。本発明の形質転換された細胞は、タンパク質および/または正常または変
異プレセニリン発現に影響を与える、正常または変異プレセニリンタンパク質と相互作用する、および/または正常または変異タンパク質の機能または効果を調節する他の化合物
を同定するアッセイにおいて使用され得る。あるいは、本発明の形質転換された細胞は、プレセニリンタンパク質、融合タンパク質、機能的ドメイン、抗原決定基、および/また
は抗体を産生するアッセイにおいて使用され得る。形質転換された細胞はまた、ヒトを含む宿主に、治療または他の理由で移植され得る。好ましい宿主細胞は、神経、線維芽細胞、骨髄、脾臓、器官型のまたは混成の細胞培養物由来の哺乳動物細胞、ならびに細菌、酵母、線虫、昆虫および他の無脊椎動物細胞を包含する。以下に記載される使用のために、好ましい細胞はまた、胚幹細胞、接合、配偶子および生殖系列細胞を包含する。
別の一連の実施様態において、本発明は、ADおよび、プレセニリン遺伝子の変異に関連する他の病気または障害についての、トランスジェニック動物モデルを提供する。動物は、本質的に、ラット、マウス、ハムスター、モルモット、ウサギ、イヌ、ネコ、ヤギ、ヒツジ、ブタ、およびヒトではない霊長類を含む任意の哺乳動物であり得る。さらに、線虫および昆虫を含む無脊椎動物モデルは、特定の適用に使用され得る。動物モデルは、マイ
クロインジェクション、トランスフェクション、または胚幹細胞、接合子、配偶子、および生殖系列細胞と、ゲノムもしくはcDNAフラグメントを含むベクター、ミニ遺伝子、相同組換えベクター、およびウイルス挿入ベクターなどとの他の様式の形質転換を含む標準的な遺伝子組換え法によって産生される。適切なベクターは、ワクシニアウイルス、アデノウイルス、アデノ関連ウイルス、レトロウイルス、リポソーム輸送体、神経親和性ウイルス、および単純ヘルペスウイルスを含む。動物モデルは、正常および変異の配列、イントロン、エキソン、および非翻訳の配列を含むプレセニリンを含むか、またはそれ由来の遺伝子組換え配列、および機能的ドメインのようなプレセニリンのサブセットをコードする配列を含み得る。提供される動物モデルの主要なタイプは、以下を包含する：（１）正常ヒトプレセニリン遺伝子が、動物のゲノムに、外因性または内因性プロモーターエレメントいずれかの調節下で、付加的な遺伝子として、およびミニ遺伝子または大きなゲノムフラグメントのいずれかとして、組換え的に導入された動物；正常ヒトプレセニリン遺伝子が、動物の相同プレセニリン遺伝子の１つまたは両方のコピーと、相同組換えまたは遺伝子標的化によって、組換え的に置換された動物；および/または動物の相同プレセニリン
遺伝子の１つの１つまたは両方のコピーが、相同組換えまたは遺伝子標的化によりヒトホモログをコードする配列を部分的に置換することによって、組換え的に「ヒト化」された動物。（２）変異ヒトプレセニリン遺伝子が、動物のゲノムに、外因性または内因性プロモーターエレメントのいずれかの調節下で、付加的な遺伝子として、およびミニ遺伝子または大きなゲノムフラグメントのいずれかとして、組換え的に導入された動物；変異ヒトプレセニリン遺伝子が、動物の相同プレセニリン遺伝子の１つまたは両方のコピーと、相同組換えまたは遺伝子標的化によって、組換え的に置換された動物；および/または動物
の相同プレセニリン遺伝子の１つの１つまたは両方のコピーが、相同組換えまたは遺伝子標的化により変異ヒトホモログをコードする配列を部分的に置換することによって、組換え的に「ヒト化」された動物。（３）その動物のプレセニリン遺伝子の１つの変異バージョンが、動物のゲノムに、外因性または内因性プロモーターエレメントのいずれかの調節下で、付加的な遺伝子として、およびミニ遺伝子または大きなゲノムフラグメントのいずれかとして、組換え的に導入された動物；および/または、その動物のプレセニリン遺伝
子の１つの変異バージョンが、動物の相同プレセニリン遺伝子の１つまたは両方のコピーと、相同組換えまたは遺伝子標的化によって、組換え的に置換された動物。（４）動物のプレセニリン遺伝子の１つの１つまたは両方のコピーが、相同組換えまたは遺伝子標的化によって部分的にまたは完全に欠失した、または外因性の配列の相同組換えまたは遺伝子標的化による挿入または置換によって不活化された「ノックアウト」動物。好ましい実施様態において、ADのためのトランスジェニックマウスモデルは、正常ヒトPS1またはPS2タンパク質、変異ヒトまたはマウスPS1またはPS2タンパク質、あるいはヒト化された正常または変異マウスPS1またはPS2タンパク質をコードするトランスジーンを有する。
別の一連の実施様態において、本発明は、実質的に純粋なタンパク質の調製物（プレセニリンタンパク質を含むか、またはそれ由来のポリペプチドを含む）を提供する。本発明のプレセニリンタンパク質配列は、特定の開示された配列、オルタナティブmRNAスプライシングから得られるこれらの配列の変異体、これらの配列の対立遺伝子変異体、およびこれらの配列の相同またはオーソロガス変異体を含む。従って、例えば、本発明は、hPS1タンパク質、hPS2タンパク質、mPS1タンパク質、およびDmPSタンパク質由来のアミノ酸配列を提供する。本発明はまた、対立遺伝子変異体および相同またはオーソロガスタンパク質を、このような変異体が通常得られ得る方法を提供することによって、提供する。本発明はまた、プレセニリンの変異または病気誘因変異体を、多くの特異的変異配列を開示することによって、そして他のこのような変異体を通常得ることができる方法を提供することによって、特に提供する。本発明のタンパク質は、種々の診断、治療および組換え適用に使用され得るので、プレセニリンタンパク質配列の種々のサブセットおよびプレセニリンタンパク質配列と異種配列との組合せもまた提供される。例えば、免疫原としての使用または結合アッセイにおいて、プレセニリンタンパク質配列のサブセットが、正常配列およ
び変異配列の両方を含めて、提供される。このようなタンパク質配列は、本明細書中で開示されるか、さもなければ実施可能とされる配列由来の少数の連続するアミノ酸残基を含み得るが、好ましくは、プレセニリン配列由来の少なくとも４〜８個、そして好ましくは少なくとも９〜15個の連続するアミノ酸残基を含む。他の好ましいプレセニリンタンパク質配列のサブセットは、プレセニリンタンパク質の機能的ドメインまたは抗原決定基の１つ以上に対応する配列を含み、そして特に、正常（野生型）配列または変異配列のいずれかを含み得る。本発明はまた、完全かまたはサブセットのいずれかのプレセニリン配列が、外因性配列と結合し、融合タンパク質などを形成する種々のタンパク質構築物を提供する。これらの実施様態に従って、本発明はまた、プレセニリンを含むかまたはそれ由来の上記すべてのタンパク質を産生する方法を提供する。
別の一連の実施様態において、本発明はポリクローナル抗体およびモノクローナル抗体の産生および使用を提供する。それらの抗体は、プレセニリンまたはプレセニリンの特定の抗原決定基に選択的に結合する、Fabフラグメント、F(ab')2、および単鎖抗体フラグメントを包含する抗体フラグメントを包含する。この抗体はマウス、ウサギ、ヤギ、または他の適切な動物中で惹起され得るか、またはハイブリドーマ細胞株のような培養細胞中で組換え的に産生され得る。好ましくは、抗体は、プレセニリン配列由来の少なくとも４〜８個、そして好ましくは少なくとも９〜15個の連続するアミノ酸残基を含むプレセニリン配列に対して惹起される。本発明の抗体は、本明細書中に記載の、種々の診断、治療、および技術適用に使用し得る。
別の一連の実施様態において、本発明は、プレセニリン遺伝子およびタンパク質（例えば、PS1またはPS2）の発現を誘発または阻害し得るタンパク質、低分子、または他の化合物をスクリーニングまたは同定する方法を提供する。アッセイは、インビトロで、非形質転換細胞株、不死化細胞株、もしくは組換え細胞株を用いて、またはインビボで、本明細書中の実施可能とされるトランスジェニック動物モデルを用いて行い得る。特に、アッセイはPS1、PS2、または他のプレセニリン関連遺伝子もしくはタンパク質の増加または減少した発現の存在を、増加または減少したmRNA発現、増加または減少したプレセニリン関連タンパク質産物レベル、または組換え構築物中のプレセニリン5'調節領域に作動可能に連結したマーカー遺伝子（例えば、β-ガラクトシダーゼ、緑色蛍光タンパク質、アルカリ
ホスファターゼまたはルシファラーゼ）の増加または減少した発現レベルを基準に検出し得る。特定のプレセニリンを発現することが知られた細胞、または特定のプレセニリンを発現するために形質転換された細胞は、インキュベートされ、そして１つ以上の試験化合物が培地に添加される。化合物がプレセニリンの発現を誘発または阻害するのに充分な時間（例えば、０〜72時間）の経過後、確立したベースラインからの発現レベルの任意の変化が、上述の任意の技術を用いて検出され得る。特に好ましい実施様態において、細胞は、ヒト神経芽細胞腫、神経膠芽細胞腫、またはハイブリドーマ細胞株のような不死化された細胞株由来であるか、または本発明の形質転換細胞である。
別の一連の実施様態において、本発明は、プレセニリンに結合するか、さもなくば直接相互作用するタンパク質および他の化合物を同定する方法を提供する。タンパク質および化合物は内因性の細胞成分を包含する。その細胞成分は、インビボでプレセニリンと相互作用し、従って、薬学的および治療的介入のための新しい標的、ならびに組換え化合物、合成化合物およびさもなくば外因性の化合物を提供する。それらの化合物は、プレセニリン結合能を有し得、従って、薬学的調製物の候補となり得る。従って、一連の実施様態において、細胞溶解物または組織ホモジネート（例えば、ヒト脳ホモジネート、リンパ球溶解物）は、正常または変異プレセニリンの一つに結合するタンパク質または他の化合物についてスクリーニングされ得る。あるいは、任意の種々の外因性の化合物は、天然に存在するおよび/または合成（例えば、小さな分子またはペプチドのライブラリー）の両方と
も、プレセニリン結合能についてスクリーニングされ得る。これら各々の実施様態におい
て、アッセイが、「プレセニリン成分」といくつかの他の部分との間の結合を検出するために行われる。これらのアッセイにおけるプレセニリン成分は、正常または変異プレセニリンタンパク質（プレセニリンのまたはプレセニリン融合タンパク質機能的ドメインまたは抗原決定基を含む）を含むかまたはそれ由来の任意のポリペプチドであり得る。結合は、非特異的測定（例えば、細胞内Ca2+、GTP/GDP比の変化）によって、または特異的測定
（例えば、Aβペプチド産生の変化、またはディファレンシャルディスプレイ、2Dゲル電
気泳動、ディファレンシャルハイブリダイゼーション、またはSAGE法によってモニターされ得る他の下流遺伝子の発現の変化）によって検出され得る。好ましい方法は、以下の技術の改変を含む：（１）アフィニティークロマトグラフィーによる直接的抽出；（２）免疫沈降によるプレセニリン成分および結合タンパク質または他の化合物の同時単離；（３）生物分子相互作用アッセイ（BiomolecularInteraction Assay)(BIAcore)；および（４
）酵母ツーハイブリッドシステム。
別の一連の実施様態において、本発明は、正常または変異プレセニリンの活性を調節し得るタンパク質、低分子および他の化合物を同定する方法を提供する。正常細胞または動物、本発明の形質転換細胞およびトランスジェニック動物モデル、または正常もしくは変異プレセニリン遺伝子を有する被験体から得られる細胞を使用して、本発明は、プレセニリンの発現、プレセニリンの細胞内局在性、細胞内Ca2+、Na+、K+または他のイオンレベ
ルまたは代謝、アポトーシスまたは細胞死の頻度または割合、Aβペプチド産生のレベル
またはパターン、微小管結合タンパク質のリン酸化の有無またはレベル、または正常および変異プレセニリン配列を有する細胞を区別する他の生化学的、組織学的、または生理学的マーカーに影響を与えるそれら化合物の能力に基づき、このような化合物を同定する方法を提供する。本発明のトランスジェニック動物を用いて、このような化合物を同定する方法がまた、プレセニリンの変異に関連する挙動的、生理学的、組織学的表現型に影響を与えるこれらの化合物の能力に基づいて提供される。
別の一連の実施様態において、本発明は、ADに関連するプレセニリン対立遺伝子の保因者をスクリーニングする方法、ADの羅患者を診断する方法、および関連する初老期および老年期の痴呆、精神分裂病および鬱病のような精神医学病、ならびに脳卒中および脳溢血のような神経性の病気（これらはPS1またはPS2遺伝子の変異に関連する）をスクリーニングおよび診断する方法を提供する。スクリーニングおよび/または診断は、本明細書中で
開示される、および実施可能な核酸（ゲノム配列およびmRNA/cDNA配列を含む）、タンパ
ク質、および/または抗体に基づく方法によって達成され得る。その方法は、正常プレセ
ニリン活性の減衰もしくは増大、および/または変異プレセニリンによって与えられる特
定の新しい活性の存在を検出するよう設計された機能的アッセイを含む。従って、プレセニリンタンパク質に基づくスクリーニングおよび診断が提供され、それらは変異プレセニリンと正常プレセニリンとの間の電気泳動移動度、タンパク質分解の切断パターン、種々のアミノ酸残基のモル比、特異的な抗体を結合する能力の差異を検出する。さらに、核酸（gDNA、cDNA、またはmRNA）に基づくスクリーニングおよび診断が提供され、それらは、直接的ヌクレオチド配列決定、対立遺伝子特異的オリゴヌクレオチドを使用するハイブリダイゼーション、制限酵素消化およびマッピング（例えば、RFLP、REF-SSCP）、電気泳動移動度（例えば、SSCP、DGGE）、PCRマッピング、RNaseプロテクション、化学的ミスマッチ切断（chemicalmismatch cleavage）、リガーゼ媒介検出（ligase-mediated detection）、ならびに種々の他の方法によってヌクレオチド配列の差異を検出する。PS1、PS2、APP、またはPS1、PS2、もしくはAPPと反応するタンパク質の異常なプロセシング（例えば、異常リン酸化、グリコシル化、グリケーション、アミド化、またはタンパク質分解切断）；プレセニリンの転写、翻訳、および翻訳後修飾における変化；プレセニリン遺伝子産物の細胞内および細胞外のトラフィッキングにおける変化；またはプレセニリンの異常な細胞内局在を検出する他の方法もまた提供される。これらの実施様態に従って、診断キットもまた提供され、それらは上記の診断スクリーニングに必要な試薬を含む。
別の一連の実施様態において、本発明は、ADのようなプレセニリンに関連する病気の処置における使用のための方法および薬学的調製物を提供する。これらの方法および薬剤は以下に基づく：（１）正常PS1またはPS2タンパク質の投与、（２）変異遺伝子を補償または置換するための正常PS1またはPS2遺伝子による遺伝子療法、（３）変異PS1またはPS2遺伝子に対するアンチセンス配列に基づくかまたは変異遺伝子を「ノックアウト」する遺伝子療法、（４）PS1またはPS2の変異体の有害な効果を、ブロックするかまたは矯正するタンパク質をコードする配列に基づく遺伝子療法、（５）正常および/または変異のPS1もしくはPS2タンパク質に対する抗体に基づく免疫療法、または（６）PS1もしくはPS2の発現
を変化させるか、PS1またはPS2の変異形態と他のタンパク質またはリガンドとの間の異常相互作用をブロックする低分子（薬物）、または、そうでなければ変異PS1もしくはPS2タンパク質の異常な機能を、変異タンパク質の構造を変化させるか、またはそれらの代謝クリアランス（clearance）を増強するか、もしくはそれらの機能を阻害することによって
ブロックする低分子（薬物）。
本発明の別の局面に従って、本発明のタンパク質は、リガンド、治療用薬物または他のタイプの小化学分子を提供する合理的なドラッグデザインのための出発点として使用され得る。あるいは、上記のスクリーニングアッセイによって同定される低分子または他の化合物は、合理的なドラッグデザインにおける「リード化合物（lead compounds)」として
働き得る。
本発明で特に開示されたヌクレオチドおよびアミノ酸の配列は、配列番号１〜25と番号付けされている。さらに、ブダペスト条約の約定に基づき、本明細書において開示された特定の核酸の生物的寄託が、ATCC（Rockville,MD）でなされた。これらの寄託物としては、受託番号97124（1995年４月28日寄託）、受託番号97508（1995年４月28日寄託）、受託番号97214（1995年６月28日寄託）、および受託番号97428（1996年１月26日寄託）が挙げられる。
図１：この図は、hPS1ゲノムDNAの構造の構成を表す。非コードエキソンを、網状（solidshaded）の長方形で示す。コードエキソンを、白抜きの（open）長方形で、またはオルタナティブスプライシングされた配列を斜線のついた（hatched）長方形で示す。制限部位は：Ｂ= BamHI; Ｅ = EcoRI; Ｈ = HindIII; Ｎ = NotI; Ｐ = PstI; Ｖ = PvuII; Ｘ = XbaIである。制限部位間の水平な線のとぎれは、未決定のゲノム配列を表す。各エキソンを含むクローン化されたゲノムフラグメントを、水平な両端矢印で示す。ゲノムのサブクローンの大きさおよび各ゲノム配列の受託番号を提供する。 図２：この図は、推定のPS1タンパク質のハイドロパシープロットを表す。このプロットは、KyteおよびDoolittle（1982）の方法に従って計算された。 図３：この図は、hPS1およびmPS1のタンパク質配列の配列アラインメントを表す。垂直な線は、同じアミノ酸を示す。 図４：この図は、hPS1およびhPS2のタンパク質配列の配列アラインメントを表す。垂直な線は、同じアミノ酸を示す。 図５：この図は、PS1タンパク質の推定構造の模式図である。ローマ数字は、膜貫通ドメインを表す。推定のグリコシル化部位は、アスタリスクで示され、そしてリン酸化部位のほとんどは、同じ膜表面上に２つの酸性親水性ループとして局在する。MAPキナーゼ部位は、残基115に存在し、PKC部位は、残基114に存在する。FAD変異部位を、水平な矢印で示す。 図６：この図は、PS2タンパク質の推定構造の模式図である。ローマ数字は、膜貫通ドメインを表す。推定のグリコシル化部位は、アスタリスクで示され、そしてリン酸化部位のほとんどは、同じ膜表面上に２つの酸性親水性ループとして局在する。FAD変異部位を、水平な矢印で示す。
発明の詳細な説明
Ｉ．定義
本発明の種々の実施様態の説明、ならびに本発明を実行および使用する際に用いられる種々の要素および成分の理解を容易にするために、本明細書の記載および添付の請求の範囲で用いられた特定の用語について以下に示す定義が提供される：
プレセニリン。 本明細書中でさらなる修飾がなされずに用いられる、用語「プレセニリン（単数）」または「プレセニリン（複数）」は、プレセニリン-１（PS1）および/ま
たはプレセニリン-２（PS2）の遺伝子/タンパク質を意味する。特に、修飾されない用語
「プレセニリン（単数）」または「プレセニリン（複数）」は、哺乳動物のPS1および/またはPS2の遺伝子/タンパク質、そして好ましくは、ヒトPS1および/またはPS2の遺伝子/タンパク質を意味する。
プレセニリン-１遺伝子。 本明細書中で用いられる、用語「プレセニリン-１遺伝子」または「PS1遺伝子」は、米国特許出願第08/431,048号（1995年４月28日出願）に最初に
開示および記載され、そして後にSherringtonら（1995）に記載された哺乳動物遺伝子（
任意の対立遺伝子変異体および異種特異的哺乳動物ホモログを含む）を意味する。一つのヒトプレセニリン-１（hPS1）cDNA配列が、本明細書中で、配列番号１として開示される
。hPS1mRNAの転写物のオルタナティブスプライシングから得られる別のヒトcDNA配列は、配列番号３として開示される。以下に記載されるように、33残基をコードする領域が、いくつかの転写産物においてスプライスアウト（spliced-out）され得るさらなるヒトスプ
ライス変異体もまた発見されている。マウスホモログ（mPS1）のcDNAは、配列番号16とし
て開示される。用語「プレセニリン-１遺伝子」または「PS1遺伝子」は、主としてコード配列に関するが、いくつかまたは全ての隣接調節領域および/またはイントロンもまた包
含し得る。用語PS1遺伝子は、特に、スプライス変異体に基づく組換え遺伝子を含むcDNA
またはゲノムDNAから作製された人工または組換え遺伝子を包含する。プレセニリン-１遺伝子はまた、S182遺伝子（例えば、Sherringtonら、1995）として、またはアルツハイマ
ー関連膜タンパク質（ARMP）遺伝子（例えば、米国特許出願第08/431,048号、1995年４月28日出願）として言及されている。
プレセニリン-１タンパク質。 本明細書中で用いられる、用語「プレセニリン-１タンパク質」または「PS1タンパク質」は、PS1遺伝子（対立遺伝子変異体および異種特異的哺乳動物ホモログを含む）によってコードされるタンパク質を意味する。１つのヒトプレセニリン-１（hPS1）タンパク質配列が、本明細書中で、配列番号２として開示される。hPS1mRNA転写物のオルタナティブスプライシングから得られる別のヒトPS1タンパク質配列は、配列番号４として開示される。以下に記載されるように、33残基を含む領域がいくつかの転写物においてスプライスアウトされ得る、さらなるヒトスプライス変異体もまた発見されている。これらの変異体はまた、本明細書中で用いられる、用語プレセニリン-１タ
ンパク質により包含される。マウスホモログ（mPS1）のタンパク質配列は、配列番号17として開示される。このタンパク質は、組換え細胞もしくは生物によって産生され得るか、天然の組織もしくは細胞株から実質的に単離され得るか、または化学的もしくは酵素的に合成され得る。従って、用語「プレセニリン-１タンパク質」または「PS1タンパク質」は、グリコシル化された、部分的にグリコシル化された、またはグリコシル化されていない形態、ならびにリン酸化された、部分的にリン酸化された、リン酸化されていない、硫酸化された、部分的に硫酸化された、または硫酸化されていない形態のタンパク質を包含することが意図される。この用語はまた、PS1アミノ酸配列の対立遺伝子変異体および他の
機能的等価物（生物学的に活性なタンパク質分解フラグメントまたは他のフラグメントを含む）を包含する。このタンパク質はまた、S182タンパク質（例えば、Sherringtonら、1995）またはアルツハイマー関連膜タンパク質（ARMP）（例えば、米国特許出願第08/431,048号、1995年４月28日出願）として言及されている。
hPS1の遺伝子および/またはタンパク質。 本明細書中で用いられる、略語「hPS1」は
、PS1の遺伝子および/またはタンパク質のヒトホモログおよびヒト対立遺伝子変異体をいう。ヒトPS1遺伝子の２つのcDNA配列が、本明細書中で、配列番号１および配列番号３と
して開示される。対応するhPS1タンパク質配列は、配列番号２および配列番号４として、本明細書中で開示される。有害な変異体を含む数多くの対立遺伝子変異体が、以下の記載を通して開示され、そして実施可能とされる。
mPS1の遺伝子および/またはタンパク質。 本明細書中で用いられる、略語「mPS1」は
、PS1の遺伝子および/またはタンパク質のマウスホモログおよびマウス対立遺伝子変異体をいう。１つのマウスPS1遺伝子のcDNA配列が、本明細書中で、配列番号16として開示さ
れる。対応するmPS1タンパク質配列が、本明細書中で、配列番号17として開示される。有害な変異体を含む対立遺伝子変異体が、以下の記載において実施可能とされる。
プレセニリン-２遺伝子。 本明細書中で用いられる、用語「プレセニリン-２遺伝子」または「PS2遺伝子」は、米国特許出願第08/496,841号（1995年６月28日出願）に最初に
開示および記載され、そして後に、Rogaevら（1995）およびLevy-Lahadら（1995）に記載された哺乳動物遺伝子（任意の対立遺伝子変異体および異種特異的哺乳動物ホモログを含む）を意味する。１つのヒトプレセニリン-２（hPS2）cDNA配列が、配列番号18として、
本明細書中で開示される。以下に記載されるように、１つのコドンまたは33残基をコードする領域がいくつかの転写物においてスプライスアウトされ得るさらなるヒトスプライス変異体もまた、発見されている。用語「プレセニリン-２遺伝子」または「PS2遺伝子」は
、主としてコード配列に関するが、いくつかまたは全ての隣接調節領域および/またはイ
ントロンもまた包含し得る。用語PS2遺伝子は、特に、スプライス変異体に基づく組換え
遺伝子を含む、cDNAまたはゲノムDNAから作製された人工または組換え遺伝子を包含する
。プレセニリン-２遺伝子はまた、E5-1遺伝子（例えば、Rogaevら、1995；米国特許出願
第08/496,841、1995年６月28日出願）として、またはSTM2遺伝子（例えば、Levy-Lahadら、1995）として、言及されている。
プレセニリン-２タンパク質。 本明細書中で用いられる、用語「プレセニリン-２タンパク質」または「PS2タンパク質」は、PS2遺伝子（対立遺伝子変異体および異種特異的哺乳動物ホモログを含む）によってコードされるタンパク質を意味する。１つのヒトプレセニリン-２（hPS2）タンパク質配列が、本明細書中で、配列番号19として開示される。以
下に示されるように、一つの残基または33残基を含む領域が特定の転写物においてスプライスアウトされ得るさらなるヒトスプライス変異体もまた、発見されている。これらの変異体はまた、本明細書中で用いられる、用語プレセニリン-２タンパク質により包含され
る。このタンパク質は、組換え細胞または生物によって産生され得るか、または天然の組織または細胞株から実質的に精製され得るか、または化学的にもしくは酵素的に合成され得る。従って、用語「プレセニリン-２タンパク質」または「PS2タンパク質」は、グリコシル化された、部分的にグリコシル化された、またはグリコシル化されていない形態、ならびにリン酸化された、部分的にリン酸化された、リン酸化されていない、硫酸化された、部分的に硫酸化された、または硫酸化されていない形態のタンパク質を包含することが意図される。この用語はまた、PS2アミノ酸配列の対立遺伝子変異体および他の機能的等
価物（生物学的に活性なタンパク質分解フラグメントまたは他のフラグメントを含む）をも包含する。このタンパク質はまた、E5-1タンパク質（例えば、Sherringtonら、1995；
米国特許出願第08/496,841、1995年６月28日出願）またはSTM2タンパク質（例えば、Levy-Lahadら、1995）として言及されている。
hPS2の遺伝子および/またはタンパク質。 本明細書中で用いられる、略語「hPS2」は
、PS2の遺伝子および/またはタンパク質のヒトホモログおよびヒト対立遺伝子変異体をいう。ヒトPS2遺伝子の一つのcDNA配列が、本明細書中で、配列番号18として開示される。
対応するhPS2タンパク質配列は、配列番号19として、本明細書中で開示される。有害な変異体を含む数多くの対立遺伝子変異体が、以下の記載を通して開示され、そして実施可能とされる。
DmPSの遺伝子および/またはタンパク質。 本明細書中で用いられる、略字「DmPS」は
、PS1およびPS2の遺伝子/タンパク質のDrosophilaホモログおよび対立遺伝子変異体をい
う。この定義は、核酸およびアミノ酸配列多型のうち、遺伝子またはタンパク質配列中の置換、挿入、または欠失が、遺伝子産物の本質的機能に影響を与えないものを包含すると理解される。DmPS遺伝子の１つのcDNAのヌクレオチド配列が、本明細書中で、配列番号20として開示され、そして対応するアミノ酸配列が、配列番号21として開示される。用語「DmPS遺伝子」は、主として、コード配列に関するが、いくつかまたは全ての隣接調節領域および/またはイントロンもまた包含し得る。
正常。 本明細書中で遺伝子に関して用いられる、用語「正常」は、正常タンパク質をコードする遺伝子をいう。本明細書中でタンパク質に関して用いられる、用語「正常」は、通常のまたは正常な生理学的役割を演じ、かつ病理的な状況または状態に関連しないかまたはその原因となることのないタンパク質を意味する。従って、本明細書中で用いられる、用語「正常」は、本質的に、用語「野生型」の通常の意味と同義である。任意の所与の遺伝子または対応するタンパク質について、多数の正常対立遺伝子変異体が存在し得るが、そのうちのどれも病理的な状況または状態の発展に関連しない。このような正常対立遺伝子変異体は、１つ以上のヌクレオチド置換が、コードされるアミノ酸配列の変化をも
たらさない変異体を包含するが、それらに限定されない。
変異。 本明細書中で遺伝子に関して用いられる、用語「変異」は、変異タンパク質をコードする遺伝子をいう。本明細書中でタンパク質に関して用いられる、用語「変異」は、通常のまたは正常な生理学的役割を演じず、かつ病理的な状況または状態に関連し、またはその原因となるタンパク質を意味する。従って、本明細書中で用いられる、用語「変異」は、用語「機能障害の」、「病理的な」、「病気誘因の」および「欠失の」と、本質的に同義である。本発明のプレセニリン遺伝子およびタンパク質に関して、用語「変異」は、１つ以上のヌクレオチド/アミノ酸置換、挿入および/または欠失を有するプレセニリン遺伝子/タンパク質をいい、それらは、ヒトにおいて発現されたとき、代表的には、ア
ルツハイマー病および/または他の関連する遺伝的表現型（例えば、脳溢血、精神遅滞、
精神分裂病、精神病、および鬱病）の症状の発症をもたらす。この定義は、生来存在する種々の変異を包含すると理解され、それらには本明細書中で開示された変異、およびヒトの介入により産生された合成または組換え変異が包含されるが、それらに限定されない。用語「変異」は、プレセニリン遺伝子に適用されるときには、遺伝子コードの縮重によって、本明細書中で開示されるかまたはさもなくば実施可能とされる正常配列と同一のタンパク質をコードする配列変異体を包含すると意図されない。また、異なるタンパク質をコードするが、正常プレセニリンタンパク質と機能的に等価であるタンパク質をコードする配列変異体を包含することも意図されない。
機能的等価。 遺伝子配列およびアミノ酸配列の記載において、本明細書中で用いられる、用語「機能的等価」は、列挙された配列が、特に開示される配列番号何番の配列と同一である必要はないが、開示される配列の等価物として、生物学的および/または化学的
に機能する配列を提供することだけが必要であることを意味する。
実質的に純粋。 タンパク質（抗体を含む）または他の調製物に関して本明細書中で用いられる、用語「実質的に純粋」は、少なくとも60重量％（乾燥重量）が目的の化合物である調製物を意味する。好ましくは、調製物は、少なくとも75重量％、より好ましくは少なくとも90重量％、そして最も好ましくは少なくとも99重量％が目的の化合物である。純度は、任意の適切な方法、例えば、カラムクロマトグラフィー、ゲル電気泳動、またはHPLC分析によって、測定され得る。
タンパク質（抗体を含む）に関して、調製物が２つ以上の異なる目的の化合物（例えば、本発明の２つ以上の異なる抗体、免疫原、機能的ドメイン、または他のポリペプチド）を含有する場合、「実質的に純粋」な調製物は、全ての目的の化合物の全重量（乾燥重量）が、全乾燥重量の少なくとも60％である調製物を意味する。同様に、２つ以上の目的の化合物を含有する調製物については、目的の化合物の全重量が、調製物の全乾燥質量の少なくとも75％、より好ましくは少なくとも90％、そして最も好ましくは少なくとも99％であることが好ましい。
単離された核酸。 本明細書中で用いられる、「単離された核酸」は、リボ核酸、デオキシリボ核酸、またはその生物由来の天然に存在するゲノム中、直接隣接（5'末端のものおよび3'末端のもの）する配列から単離または分離されたポリヌクレオチド配列を含む核酸アナログである。この用語は従って、例えば、ベクター、自律的に複製するプラスミドもしくはウイルス、または原核生物もしくは真核生物のゲノムDNAに組み込まれた；ある
いは、分離した分子（例えば、PCRまたは制限エンドヌクレアーゼ処理によって産生され
たcDNAまたはゲノムDNAフラグメント）として、他の配列とは独立して存在する組み換え
核酸を包含する。また、さらなるポリペプチド配列をコードする、および/または外因性
の調節エレメントを含むハイブリッド遺伝子の一部である組換えDNAも包含される。
実質的に同一の配列。 本明細書中で用いられる、「実質的に同一」なアミノ酸配列は、保存的アミノ酸置換、例えば、１つのアミノ酸の別の同じクラスのアミノ酸での置換（例えば、バリンの代わりにグリシン、アルギニンの代わりにリジンなど）のみが異なるか、または（アッセイされた、例えば、本明細書中で記載の）タンパク質の機能を破壊しないアミノ酸配列の位置に局在する、１つ以上の非保存的置換、欠失、挿入のみが異なるアミノ酸配列である。好ましくは、このような配列は、少なくとも85％、より好ましくは90％、最も好ましくは95％が、アミノ酸レベルで、比較されるタンパク質またはペプチドの配列と同一である。核酸については、比較配列の長さは、一般的に少なくとも50ヌクレオチド、好ましくは少なくとも60ヌクレオチド、より好ましくは少なくとも75ヌクレオチド、そして最も好ましくは110ヌクレオチドである。「実質的に同一」な核酸配列は、上記
のように定義される実質的に同一なアミノ酸配列をコードする。
形質転換細胞。 本明細書中で用いられる、「形質転換細胞」は、その中へ（または、その先代の中へ）組換えDNA技術を用いて、目的の核酸分子が導入された細胞である。目
的の核酸は、ペプチドまたはタンパク質を代表的にコードする。形質転換細胞は、目的の配列を発現し得るか、またはその配列を増殖するためだけに使用され得る。用語「形質転換された」は、本明細書中で、外因性の核酸を導入する任意の方法（形質転換、トランスフェクション、エレクトロポレーション、マイクロインジェクション、およびウイルス媒介トランスフェクションなどを包含するが、これらに限定されない）を包含して用いられ得る。
作動可能に連結された。 本明細書中で用いられるように、調節領域の影響または制御下で、コード配列の発現または転写が生じるように、コード配列および調節領域が共有結合的に結合される場合、それらは「作動可能に連結された」といわれる。コード配列が機能的タンパク質に翻訳されることが望ましい場合、２つのDNA配列は、以下を満たせば、
作動可能に結合されたといわれる：プロモーターの機能の誘発が、コード配列の転写をもたらす場合、および２つのDNA配列間の結合の性質が、（１）フレームシフト変異の誘導
をもたらさない、（２）コード配列の転写を指向する調節領域の能力を妨害しない、または（３）対応するRNA転写物の、タンパク質に翻訳される能力を妨害しない場合。従って
、調節領域は、調節領域がDNA配列の転写をなし得、得られた転写物が所望のタンパク質
またはポリペプチドに翻訳され得た場合、作動可能にコード配列に結合される。
ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件。 ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件は、当業者によって理解される当該分野の用語である。任意の所与の核酸配列について、ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件は、核酸配列のその相補的な配列への（実質的に異なる配列へではない）ハイブリダイゼーションを可能にする温度、カオトロピック（chaotrophic）酸、緩衝液、およびイオン強度を有する条件である
。「ストリンジェントな」条件を構成する正確な条件は、核酸配列の性質、配列の長さ、およびその配列のサブセットが他の非同一配列中に存在する頻度に依存する。ハイブリダイゼーション条件を、非特異的ハイブリダイゼーションが生じるストリンジェンシーのレベルから、特異的ハイブリダイゼーションのみ観察されるレベルへ変化させることによって、当業者は、過度の実験を伴わずに、所与の配列が相補的な配列とのみハイブリダイズし得る条件を決定し得る。このようなストリンジェンシー条件の適切な範囲は、KrauseおよびAaronson（1991）に記載されている。配列の長さおよび共通性に依存するハイブリダイゼーション条件は、20℃〜65℃の温度および５×〜0.1×SSCのイオン強度を包含し得る。高度にストリンジェントなハイブリダイゼーション条件は、40℃〜42℃の低い温度（ホルムアミドのような変性剤が含まれる場合）、または0.1×SSCの低いイオン強度においては60℃〜65℃までの温度を包含し得る。しかし、これらの範囲は、例示であるのみであって、標的配列の性質および可能な将来の技術的開発に依存して、必要であるよりもストリンジェントであり得る。ストリンジェント条件未満の条件が、任意の所与の配列と実質的
に類似する、対立遺伝子的または相同な核酸配列を単離するために用いられる。
選択的に結合する。 抗体に関して本明細書中で用いられるように、抗体が目的の標的を認識および結合するが、サンプル（例えば、目的の標的を含む生物学的サンプル）中の他の分子を、実質的に認識および結合しない場合、抗体は標的に「選択的に結合する」といわれる。
II．プレセニリン
本発明は、部分的に、変異した場合、アルツハイマー病の進展に関連する、哺乳動物遺伝子のファミリーの発見に基づいている。プレセニリン-１およびプレセニリン-２と命名されたこれらの遺伝子の発見、ならびにこれらの遺伝子、そのタンパク質産物、変異体、および可能な機能的役割の特徴付けを以下に記載する。プレセニリンの無脊椎動物のホモログをまた、そのプレセニリンの機能を明らかにし得るように、そして以下に記載の様々な実施態様において有用であり得る程度に記載する。
１．ヒトプレセニリン-１遺伝子の単離
Ａ．AD3領域の遺伝子マッピング
PS1遺伝子の最初の単離および特徴付け（次いでAD3遺伝子またはS182遺伝子といわれる）が、Sherringtonら(1995)中に記載された。アノニマスマイクロサテライトマーカーD14S43およびD14S53の近傍の、14q24.3へのAD3遺伝子座の最初の領域マッピング(Schellenbergら、1992；St.George-Hyslopら、1992；VanBroeckhovenら、1992)の後、21個の家系が
、ADを推定の常染色体の優性特性として分離するのに使用され(St.George-Hyslopら、1992)、そして高密度遺伝的連鎖地図に組み入れられた(Weissenbachら、1992；Gyapayら、1994)、14q24.3領域由来の18個のさらなる遺伝マーカーの分離を調べるために用いられた。この14q24.3領域は、高密度遺伝的連鎖地図に組み入れられている(Weissenbachら、1992
；Gyapayら、1994)。先に刊行されたペアワイズ最尤度分析(pairwisemaximum likelihood
analyses)は、家族性アルツハイマー病(FAD)と全てのこれらのマーカーとの間の連鎖に
対する実質的な累積的証拠を確認した。しかし、これらのマーカーへの連鎖を支持する多くの遺伝的データは、６つの大きな初期発症家系(FAD1(Neeら、1983)、FAD2(Frommeltら
、1991)、FAD3(Goudsmitら、1981；Pollen、1993)、FAD4(Foncinら、1985)、TOR1.1(Bergamini、1991)、および603(Pericak-Vanceら、1988))に由来し、これら各々は、14q24.3由来の少なくとも１つのアノニマス遺伝マーカーを提供する(St.George-Hyslopら、1992)。
14q24.3由来の遺伝マーカーの既知の位置に対するAD3遺伝子の位置をより正確に規定するために、組換えのランドマーク(recombinationallandmark)を、染色体14に明確な連鎖
を示す６つの家系の遺伝子型決定された冒されたメンバー由来の稀なハプロタイプの生のデータを、直接的な観察により探索した。この特定の例におけるこの選択的なストラテジーは、減少した冒されたメンバーの再構築された遺伝子型由来、ならびに古い無症候性の(elderlyasymptomatic)大きな家系のメンバー由来のデータをほぼ放棄し、および不確実
な連鎖状態のより小さい家系は考慮に入れない。しかし、このストラテジーは非常に確実である。それはまた、非父方から生じる減少した冒されたメンバーの再構築された遺伝子型中のエラーを通して、または連鎖していない家系の包含、サンプリングエラーのいずれかを介して、潜在的に獲得された読み違えの遺伝子型データの獲得を避けるので、このストラテジーは非常に確実な根拠がある。
冒された被験体に対するハプロタイプのデータの観察に基づいて、その遺伝子型が直接決定された６つの大きな家系のメンバーは、D14S48およびD14S53、ならびにD14S258およ
びD14S63において必須の組換え体であることが明らかとなった。D14S53における単一組換え体（FDA領域についてテロメリックな境界を描く）は、FAD1家系の同じADに冒された被
験体中で生じた。このFAD1家系は、D14S48を包む、D14S53にテロメリックに位置するいく
つかの他のマーカーにおいて組み換えられていることが既に見出されている(St.George-Hyslopら、1992)。逆に、D14S258における単一組換え体（FAD領域のセントロメリックな境界をマークする）はFAD3家系の冒されたメンバーにおいて生じる。このFAD3家系はまた、D14S63を含む、D14S258に対してセントロメリックないくつかの他のマーカーにおいて組
み換えられた。両方の組換え被験体は、そのファミリーの他の冒されたメンバー中の疾患についての標準的な臨床試験を通して確認されたアルツハイマー病の明白な証拠を有し、そして両方の組換え被験体の遺伝子型は、有益な情報を与え、そしてD14S53に対して中間でセントロメリックな、そしてD14S258に対してテロメリックなものの中の複数の遺伝子
座において共分離する。
ハプロタイプ分析を、６つの大きな家系の減少した冒されたメンバーの再構築された遺伝子型ならびに0.95未満の連鎖に対する見込みを有する残りの15の家系由来のデータを含むように拡大すると、いくつかのさらなる組換え体が、D14S53とD14S258との中間の１つ
またはそれ以上のマーカー遺伝子座で検出された。このように、１つのさらなる組換え体が、３つのより大きなFAD家系(FAD1、FAD2および他の関連ファミリー)のそれぞれの減少
した冒されたメンバーの再構築された遺伝子型中に検出され、そして８つのさらなる組換え体が、５つのより小さなFAD家系の冒されたメンバー中に検出された。しかし、これら
の組換え体のいくつかは、さらに規定された標的領域内にAD3遺伝子を正確に配置したが
、最初に議論した理由のためだけでなく、これらがD14S53-D14S258の間隔の間にAD3遺伝
子に対して相互に一致しない位置を提供するために、これらの潜在的に近似である「内部組換え体」を信頼できないとみなすことは必要であった。
Ｂ．AD3領域にわたる物理的コンティグの構築
AD3遺伝子のクローニングに対する最初の工程として、酵母人工染色体ベクター、ファ
ージ人工染色体ベクター、およびコスミドベクター中へクローン化された重複するゲノムDNAフラグメントのコンティグを構築した。YACクローン932c7および964f5由来のコスミドを用いるFISHマッピング研究は、AD3遺伝子を最も保有し得る間隔は、少なくとも５メガ
塩基のサイズであることを示唆した。この大きなサイズの最小共分離領域がポジショナルクローニングストラテジーを扱い難いものにしているために、D14S53およびD14S258によ
り隣接されるインターバル内の１つまたはそれ以上のサブ領域に対するAD3遺伝子につい
ての探索に焦点を合わせるさらなる遺伝的ポインターが求められている。D14S53とD14S258との間のマーカーでのハロタイプ分析は、この分析がFADの初期の発症形態を有する家系に制限されるか、または全ての家系を含むように一般化されるかどうかに無関係に、これらのマーカーのいずれかにおけるFAD形質と対立遺伝子との間の連鎖不均衡および／また
は対立遺伝子関連についての統計学的に有意な証拠を検出できない。この結果は、本発明者らの家系の多様な民族起源を考えれば意外ではなかった。しかし、同じ民族血統の家系を照合した場合、同じ民族起源の異なる家系において分離する疾患を有する染色体上で観察されたハプロタイプの直接観察は、マーカー遺伝子座の２つのクラスターを明らかにした。第１のこれらのクラスターはD14S77にセントロメリックに位置しており(D14S786、D14S277およびD14S268)、そしてYAC78842においては含まれる0.95 Mbの物理的インターバルにわたっている。第２のクラスターは、D14S77にテロメリックに位置しており(D14S43、D14S273、およびD14S76)、そしてオーバーラップするYACクローン964c2、74163、797d11および854f5の一部の中に含まれる約１Mbの物理的インターバルにわたっている。同一の対
立遺伝子が、同じ民族起源の少なくとも２つの家系中に観察された。ストラテジーの一部として、物理的にクラスター化したマーカー遺伝子座のこれらの１つの群において、共有する対立遺伝子の存在は、各種民族的集団において元々見出された染色体上のPS1遺伝子
を取り囲む小さな物理的領域の同時遺伝を反映し得るということが解った。重要なことに、各共有された範囲のハプロタイプは、正常な白色人種集団ではまれであり、そして共有する対立遺伝子は、染色体14q24.3上の他の同様の遺伝的間隔にわたるマーカーの他の群
においては観察されない。
Ｃ．転写マッピングおよび候補遺伝子の分析
両方の重大な中間内にコードされる発現された配列を単離するために、ヒト脳mRNA由来の一次相補DNAプールから転写された配列を回収するために、ハイブリダイゼーション標
的として、固定化され、クローン化されたヒトゲノムDNAを含む直接選択ストラテジーを
用いた(Rommensら、1993)。大きさが100〜600塩基対のおよそ900個の推定のcDNAフラグメントをこれらの領域より回収した。これらのフラグメントを、ヒトおよび他の哺乳動物由来のオーバーラップするYACクローンおよびゲノムDNAクローンのそれぞれ由来のゲノムDNAを含有するサザンブロットに対してハイブリダイズした。これにより進化的保存および
／またはそれらがスプライスされたmRNA由来であることを示唆する複合体構造の証拠を示す151個のクローンのサブセットを同定した。このサブセット内のクローンを物理的地図
位置、クロス−ハイブリダイゼーションおよびヌクレオチド配列に基づいて照合しそしてこれらを用いてより長いcDNAのために従来のヒト脳cDNAライブラリーをスクリーニングした。長さ１kbを超える少なくとも19個の独立したcDNAクローンを単離し、そして次にAD3
領域の部分的転写地図に並べる。これらの転写物の内３個のみが既知の特徴付けされた遺伝子に対応した(cFOS、ジヒドロリポアミドスクイニルトランスフェラーゼ、および潜在
的な形質転換増殖因子結合タンパク質２)。
Ｄ．候補遺伝子の回収
候補遺伝子の各オープンリーディングフレーム部分を、正常コントロール被験体の死後の脳組織から、および染色体14に明らかに連鎖する６つの家系の冒されたメンバーの死後の脳組織、または培養した線維芽細胞株由来の単離されたmRNAのいずれかからRT-PCRにより回収した。次いで、RT-PCR産物を、化学的切断および制限エンドヌクレアーゼフィンガープリンティング一本鎖配列コンホメーション的多型法(SaleebaおよびCotton、1993；LiuおよびSommer、1995)により、および直接的ヌクレオチド配列決定により、配列の相違についてスクリーニングした。１つの例外と共に、試験した全ての遺伝子(目的の物である
が)、冒された被験体に独特なまたは疾患と共分離する配列内には改変を含まなかった。
唯一の例外は、正常被験体中には観察されなかった一連のヌクレオチド変化を含むクローンS182により示される候補遺伝子であった。そしてこれは冒された被験体中のアミノ酸配列を改変することが予測された。このクローンに対応する遺伝子をプレセニリン-１(PS1)と称する。２つのPS1cDNA配列（以下に記載のオルタナティブスプライス変異体を示す）
は、配列番号１および配列番号３として本明細書中に開示される。対応する予想されるアミノ酸配列を、それぞれ配列番号２および配列番号４として開示する。これらのcDNAクローンを有するBluescriptプラスミドは、ATCC,Rockville,Mdにおいて、ATCC受託番号97124および97508として、1995年４月28日に寄託されている。配列番号１および配列番号２に
対応する配列はまた、GenBankデータベースに寄託されており、そして受託番号42110を通して検索され得る。
２．マウスプレセニリン-１遺伝子の単離
ヒトPS1遺伝子のマウスホモログ(mPS1)を、hPS1遺伝子由来の標識化したヒトDNAプローブでマウスcDNAライブラリーをスクリーニングすることにより回収した。この様式で、２kb部分転写物（遺伝子の3'末端を表す）および5'末端を表すいくつかのRT-PCR産物を回収した。マウスホモログのコンセンサスcDNA転写物の配列決定は、hPS1と実質的なアミノ酸同一性を明らかにした。重要なことに、以下に詳細に示すように、FAD家系中の変異した
全てのアミノ酸は、マウスホモログと正常ヒト変異体との間に保存されていた。PS1遺伝
子のこの保存は、マウス内に存在するオーソロガス(orthologous)な遺伝子の存在を示し(mPS1)、そしてヒトPS1プローブを用いるゲノムまたはcDNAライブラリーをスクリーニングすることにより他の哺乳動物のホモログまたはオートログをクローン化することを今や可能にする。従って、同様のアプローチは、他の種内でのPS1遺伝子を同定および特徴付け
することを可能にする。mPS1クローンの核酸配列を、配列番号16として本明細書中に開示
し、そして対応するアミノ酸配列を配列番号17として開示する。両配列をGenBankデータ
ベースに寄託し、そしてこれは受託番号42177を通して検索可能である。
３．ヒトプレセニリン-２遺伝子の単離
今日プレセニリン-２(PS2)と命名された、第２のヒト遺伝子を単離し、そしてPS1遺伝
子と実質的な核酸およびアミノ酸相同性を共有することを実証した。この遺伝子の最初の単離は、Rogaevら(1995)に詳細に記載されている。ほぼ同一の方法によるヒトPS2遺伝子(「STM2」と言われる)の単離がまた、Levy-Lahadら(1995)に報告されている。簡潔には、Altschulら(1990)のBLASTNパラダイムを用いる検索データベースに、PS1に対するcDNAのヌクレオチド配列を用いることにより、PS2遺伝子を同定した。受託番号T03796、R14600、
およびR05907により同定された、実質的な相同性(p<1.0e-100、少なくとも100の連続的な塩基対にわたる97％より大きい)のある、３つの発現された配列タグ化部位(EST)を、位置付けた。
オリゴヌクレオチドプライマーを、これらの配列から作製し、そして逆転写酵素PCR（RT-PCR）によりPCR産物を生成するために用いた。これらの短いRT-PCR産物を部分的に配列決定してデータベース内の配列とのそれらの同一性を確認し、そして次いでハイブリダイゼーションプローブとして用いて全長cDNAライブラリーをスクリーニングした。１kb〜2.3kbの大きさにわたるいくつかの異なるcDNAをガン細胞cDNAライブラリー(Caco2)およびヒト脳cDNAライブラリー(E5-1、G1-1、cc54、cc32)から回収した。これらのクローンのヌクレオチド配列は、すべてが同じ転写物の誘導体であることを確認した。
転写物をコードする遺伝子である、PS2遺伝子は、物理的コンティグマップ（1q41に対
するFISHによりマップされたYACクローン750g7、921d12；および1p36.1-p35に対してマップされたYACクローン787g12）上に配置されたCEPHMega YACクローンの２つのクラスター
に対するハイブリッドマッピングパネルを用いてヒト染色体１にマップされた。hPS2クローンの核酸配列を配列番号18として本明細書中に開示し、そして対応するアミノ酸配列を配列番号19として開示する。両配列をGenBankデータベース中に寄託し、そしてこれらは
受託番号L44577を通して検索し得る。hPS2クローンのDNA配列はまた、ベクター中に組み
込まれ、そしてATCC、Rockville、MD.,ATCC受託番号97214として1995年の６月28日に寄託されている。
４．C.elegansおよびD.melanogaster中のホモログの同定
Ａ．C.elegansのSPE-4
BLASTアライメントパラダイムを用いる利用可能なデータベースでのPS1の核酸配列および予想されるアミノ酸配列の比較は、C.elegans精子内在性膜タンパク質SPE-4と適度なアミノ酸類似性(p=1.5e-25、少なくとも50残基の３群にわたる24〜37％の同一性)、および
哺乳動物クロモグラニンＡおよび哺乳動物電圧依存性カルシウムチャンネルのαサブユニットを含むいくつかの他の膜貫通タンパク質の部分とのより弱い類似性を明らかにした(Altschulら、1990)。推定の膜貫通ドメインを横切るアミノ酸配列類似性は、限られた数の疎水性アミノ酸から簡易に生じるアライメントをときには生じ得るが、しかしいくつかの親水性ドメインにおいてPS1とSPE-4との間には伸長された配列アライメントが存在する。両方の推定PS1タンパク質およびSPE-4は、同等の大きさ(それぞれ、467残基および465残
基)であることが予想され、以下により十分に記載するように、最後の予測される膜貫通
ドメインに先行する大きな酸性ドメインを有する少なくとも７つの膜貫通ドメインを含むことが予測される。PS1タンパク質は、Ｎ末端により長い予測された親水性領域を有する
。
BLASTPアライメント分析はまたPS2とC.elegansSPE-4タンパク質との間の有意な相同性
（p=3.5e-26；同一性=少なくとも22残基における５つのドメインにわたって20-63％）、
および脳ナトリウムチャンネル（αIIIサブユニット）ならびに種々の種由来の電圧依存
性カルシウムチャンネルのαサブユニットに対する弱い相同性（p=0.02；少なくとも35残基の２以上のドメインにわたって20〜28％の同一性を）検出した(Altschul、1990)。これらのアライメントはPS1遺伝子についての上記のアライメントに類似している。
Ｂ．C.elegansのSel-12
C.elegans由来の461残基のSel-12タンパク質およびS182(配列番号２)が、460アミノ酸
にわたり48％の配列同一性を共有することが見出された(LevitanおよびGreenwald、1995)。Sel-12タンパク質はまた複数の膜貫通ドメインを有すると考えられている。sel-12遺伝子(受託番号U35660)がin-12gain-of-function変異の抑制についてのスクリーニングによ
り同定され、そして形質転換レスキューによりクローン化された(LevitanおよびGreenwald、1995)。
Ｃ．D.melanogasterのDmPS
プレセニリン／Sel 12タンパク質の高度に保存された領域をコードする縮重オリゴヌクレオチドを調製し、そして成体および幼虫のD.melanogasterから関連したmRNAを同定するために用いた。これらのmRNAは配列決定され、そしてヒトのプレセニリンのアミノ酸配列に高度に相同的な推定のアミノ酸配列を有するオープンリーディングフレームを含むことが示された。DmPScDNAを配列番号20として同定する。
この配列は、ヒトのプレセニリンに対して約52％の同一性を有する541アミノ酸(配列番号21)のポリペプチドをコードする。
D.melanogasterホモログの構造は、少なくとも７つの推定の膜貫通ドメインを有するヒトのプレセニリンの構造に類似する（15のウィンドウおよび1.5のカットオフを用いるKyte-Doolittle疎水性分析）。少なくとも１つのオルタナティブスプライス型の証拠が、541アミノ酸のORFを含むクローンpds13中に検出され(一方クローンpds7、pds14、およびpds1は、ヌクレオチド1300-1341を欠いている)。このオルタナティブスプライシングは、推定のTM6→7ループ内の残基384におけるGlyからAlaへの改変、およびより長いORFのコドン399におけるGlu残基に対するインフレーム融合の結果生じる。D.melanogasterとヒト遺伝子との間のアミノ酸配列の主要な相違は、Ｎ末端酸性親水性ドメイン内およびTM6→7ループの酸性親水性部分内に存在する。TM6→7ループを取り囲む残基は特に保存されており（残基220〜313および451〜524）、これらが機能的に重要なドメインであることを示唆している。20残基中16残基がヒトPS1およびPS2中で変異されており、そしてヒトFADはD.melanogasterホモログ中で保存されていることが同定されている。
DmPS遺伝子のDNA配列はクローンとしてBluescriptプラスミド中に組み込まれている。
安定なベクターはATCC受託番号97428の下に、1996年１月26日に、ATCC,Rockville,MD.,に寄託された。
５．ヒトプレセニリン遺伝子の特徴付け
Ａ．hPS1転写物および遺伝子構造
ノザンブロットへのPS1(S182)クローンのハイブリダイゼーションは、主要な約2.8kbの転写物およびマイナーな約7.5kbの転写物としての、脳および末梢組織の多くの領域にお
いて広く発現した転写物を同定した（例えば、Sherringtonらの図２、1995を参照のこと
）。PS1は脳のほとんどの領域において、および転写の低い肝臓を除くほとんどの末梢組
織でわずかに一様に発現する。約7.5kbの転写物の同一性は不明確であるにもかかわらず
、２つの観察は、約2.8kbの転写物がこの遺伝子の活性産物を示すことを示唆する。脳を
含む、種々のマウス組織由来のmRNAを含むノーザンブロットへのPS1クローンのハイブリ
ダイゼーションは、約2.8kbのヒト転写物に同一の大きさの単一の転写物のみを同定する
。今日までに発見された、全てのより長いcDNAクローン(2.6〜2.8kb)(5'および3'UTRの両方を含み、そしてノザンブロット上で約2.8kbのバンドを供給する)は、染色体14の同じ物理的領域に占有的にマップされている。
これらの実験から、約7.5kbの転写物は、稀な選択的にスプライシングされるかまたは
約2.8kb転写物のポリアデニル化されたイソ型のいずれかを表し得るか、またはPS1に対する相同性を有する別の遺伝子を表し得る。PS1およびPS2両方を高レベルで発現するCaco2
細胞株由来のcDNAライブラリーを、長い転写物についてスクリーニングした。２つの異なるクローン(GL40およびB53)を得た。配列決定により、両方のクローンが、類似の5'UTR、および脳内のより短い2.8kbの転写物のORFと同一のORF含むことが明らかとなった。
両方のクローンは異常に長い3'UTRを含んでいた。この長い3'UTRは、さらに下流約３kbの別のポリアデニル化部位の使用を表す。この長い3'UTRは、パリンドロームまたはステ
ムループ構造を生じる多くのヌクレオチド配列モチーフを含む。これらの構造は、mRNA安定性そしてまた翻訳効率に関係する。この観察の有用性は、上流のポリアデニル化部位が除去された組換え発現構築物および／またはトランスジーンを作製することを可能にし得、それにより下流のポリアデニル化部位およびより長い3'UTRの使用を強化することであ
る。ある例において、これは標的化された細胞株において、またはさらに脳内のインビボで(生殖系列治療により、または遺伝子療法の形態用に改変されたヘルペス単純ウイルス
ベクターのようなウイルスベクターの使用のいすれかにより)、変異体対野生型転写物の
バランスを変えることに利用され得る、優先的翻訳を用いて、選択されたmRNA種の安定性を促進し得る。
hPS1遺伝子は、Roswell Park PACライブラリー由来の200 kbPAC1クローンRPCI-1 54D12内の少なくとも60 kbのゲノム間、およびLos Alamos Chromosome 14コスミドライブラリ
ー由来の３つの重複するコスミドクローン57-H10、1-G9、および24-D5にわたる。PS1遺伝子の転写物は、PACおよびコスミドクローンのサブクローン化された制限フラグメントへ
の、オリゴヌクレオチドおよび部分cDNAプローブの反復ハイブリダイゼーションにより、およびこれらのサブクローンの直接のヌクレオチド配列決定により同定されたエクソン13由来のRNAを含む。5'UTRは、その転写物の交互の5'末端を示すエクソン１および２と共に、エキソン１〜４内に含まれる。そのORFは、エクソン４の一部またはエクソン９の全て
の欠失をもたらすオールタネーティブスプライシング事象を用いて、エクソン４〜13内に含まれる。
他に述べない限り、明瞭性および簡潔性のために、hPS1由来のヌクレオチド配列中のヌクレオチド位置に関する全ての参考は、配列番号１（L42110）(エクソン１で始まるhPS1cDNA配列)の塩基番号を用いる。このcDNAにおいて、エクソン１はエクソン３に直接スプライシングされ、これはエクソン４〜13にスプライシングされる。配列番号１において、エクソン１はヌクレオチド１〜113位にわたり、エクソン３は114〜195位にわたり、エクソ
ン４は196〜335位にわたり、エクソン５は336〜586位にわたり、エクソン６は587〜728位にわたり、エクソン７は729〜796位にわたり、エクソン８は797〜1017位にわたり、エク
ソン９は1018〜1116位にわたり、エクソン10は1117〜1203位にわたり、エクソン11は1204〜1377位にわたり、エクソン12は1378〜1496位にわたり、エクソン13は1497〜2765位にわたる。同様に、他に述べない限り、hSP1由来のタンパク質配列中のアミノ酸残基位に関する全ての参考は、配列番号１の翻訳産物である、配列番号２の残基数字を用いる。
隣接するゲノム配列をエクソン１〜12について得、そしてそれらを配列番号５〜14中に示す(受託番号L76518〜L76527)。エクソン13の５’のゲノム配列もまた決定し、そして配列番号15中に示す（受託番号L76528）。配列番号５〜14は完全なエクソン配列も含む。しかし、配列番号15は、エクソン13の３’末端を含まない。エクソン１および２に対応する
ゲノム配列は、2.6kbのBamHI-HindIIIフラグメント（配列番号５）上で約240 bp離れて位置する。エクソン３および４（ATG開始コドンを含む）は、別の３ kbのBamHIフラグメン
ト上に位置する。エクソン２の約850bp下流のBamHI部位と、エクソン３の約600 bp上流のBamHI部位との間のイントロン２の完全な配列はまだ同定されておらず、そして隣接するBamHI部位由来のプライマーを用いる拡張PCRにより即時に回収されておらず、このことは
、イントロン２が巨大であり得るという意味を含んでいる。
エクソン１および２（配列番号５）を取り囲むヌクレオチド配列の解析は、イントロン１中のNotI制限部位を含む多くのCpGジヌクレオチドを明らかにした。アクチベータータ
ンパク質-２(AP-2)の複数のクラスター、転写のシグナルトランスデューサーおよびアク
チベーター(STAT3)(SchindlerおよびDarnell、1995)、ガンマアクチベーター配列(GASま
たはSTAT1)、複数の開始部位エレメント下流(MED)(InceおよびScotto、1995)、およびGC
エレメントを含むいくつかの推定の転写調節タンパク質に対するコンセンサス配列は、イントロン１およびエクソン１の５’配列の両方の中に存在していた（配列番号５を参照のこと）。２つの推定のTATAボックスが、エクソン１の上流（配列番号５のbp925〜933 bp
および978〜987 bp）に存在し、そしてこの後に２つの推定の転写開始(CAPまたはChambon-Trifonov)コンセンサス配列（配列番号５の1002〜1007bpおよび1038〜1043 bp 488）が
続く。対照的に、エクソン２のすぐ上流の配列はTATAボックスもCAP部位を欠くが、CpG島のクラスターに富んでいる。
hPS1遺伝子の構造的な構成の概略地図を図１として示す。非コードエクソンを黒四角で示す。コードエクソンを白四角またはオルタナティブスプライシングされた配列に対しては斜線四角で表す。制限部位を：Ｂ＝BamHI；Ｅ＝EcoRI；Ｈ＝HindIII；Ｎ＝NotI；Ｐ＝PstI；Ｖ＝PvuII；Ｘ＝XbaIとして示す。制限部位の間の水平線中の不連続部分は未決定のゲノム配列を表す。各エクソンを含むクローニングされたゲノムフラグメントを、両端が矢印の水平線で示す。ゲノムサブクローンの大きさおよび各ゲノム配列に対する受託番号もまた提供する。
エクソン１の上流290 bp内かつイントロン１内のヌクレオチド配列に基づく約DNA２次
構造の予測は、16kcal/molより大きい安定性を有するいくつかのパリンドームを明らかにする。これらの２次構造分析はまた、ヌクレオソーム(約76 bp)を取り囲むのに十分なル
ープサイズを有する３つの安定なステムループモチーフ(bp1119〜1129/1214〜1224；bp 1387〜1394/1462〜1469；およびbp 1422〜1429/1508〜1515；全て配列番号５中)の存在を
予測する。このようなステムループ構造は、TATA含有遺伝子の共通の特徴である（KollmarおよびFarnham、1993）。
これらの５’領域中の特徴の要約を表１に提示する。塩基位に対するすべての参照は、配列番号５に関する。
配列番号１中の最も長い予測されたオープンリーディングフレームは、467アミノ酸の
タンパク質（配列番号２）をコードする。このオープンリーディングフレームに対する開始コドンは、TGA停止コドンの下流に位置する最初の相内のATGである。最初の相内の２つのATGコドンの周囲には古典的なKozakコンセンサス配列は存在しない(Sherringtonら、1995)。古典的な「強力な」開始コドンを欠く他の遺伝子のように、ヒト転写物の推定の５
’UTRはGCに富んでいる。
Ｂ．hSP1５’UTRのオルタナティブ転写およびスプライシング
最初の３つのエクソンおよび第４のエクソンの部分が非翻訳領域を含むが、ヒト海馬cDNAライブラリー(Stratagene,LaJolla CA)からおよび結腸腺癌細胞株(J.RommensからのCaco2)から単離された複数の全長cDNAクローンの分析が、多くのクローンにおいて開始配列
がエクソン１に由来し、そしてエクソン１が直接エクソン３にスプライシングされることを明らかにした(受託番号L42110、配列番号１)。より頻繁でなく（９クローン中１クローン）、最初の転写された配列はエクソン２由来であり、そしてエクソン３上にスプライシングされた（受託番号L76517、配列番号３）。エクソン１中のプライマーを用いて単離した少なくとも40個の独立したRT-PCR転写物の直接的ヌクレオチド配列決定は、エクソン１およびエクソン２の両方を含むいかなるクローンを同定することにも失敗した。最終的に、エクソン２の上流のゲノム配列の観察は、３’スプライス部位配列を明らかにはしなかった。これらの観察は、エクソン２が、エクソン１中で開始する転写物のオルタナティブスプライス型またはcDNAクローニングの人工産物というよりはむしろ真の開始エクソンであることを主張する。さらに、エクソン２を含むクローン(cc44)は、同じモノクローナルCaco2細胞株から得られたので、エクソン１含有転写物およびエクソン２含有転写物の両
方が同じ細胞に存在するようである。
エクソン１近接の５’上流領域のヌクレオチド配列に基づく転写開始部位についての予測を試験するために、本発明者らはエクソン１を含有する３つの独立した「全長」cDNAクローン(cc33、cc58およびcc48)。およびエクソン３中に位置するアンチセンスプライマーを用いてプライマー伸長することにより回収した３つの配列の５’末端配列を調べた。最も遠位の５’伸長がcDNAG40L中に見られ、これはエクソン１（配列番号５(L76518)）を含有するゲノム配列中の1214 bp位に最も近位の転写開始部位をマップし、従ってこれは配
列番号１の−10位に対応する。２つのさらなるクローン(cDNAcc48および５’RACE産物＃
５)は、ゲノム配列（配列番号５）中の1259 bp位の共通開始部位を共有し、これは配列番号１中の34位に対応する。２つの残りのcDNA、ならびに残りの５’RACEクローンは、エクソン１内のより遠位の位置で開始した。５’RACEクローン＃８は1224bpで開始し、これは配列番号１の１位に等しい。それゆえこれらのクローンは、いずれもエクソン１の上流の予想されたCAP部位まで伸長しなかった。エクソン２由来の開始配列を含有する転写物の
低普及率により、これらの開始部位の類似の研究は行われていない。
Ｃ．hPS1 ORFのオルタナティブスプライシング
異なる開始配列を有する転写物に加えて、種々のライブラリーから回収された複数のcDNAクローンの分析がまた、ORFに影響するPS1転写物中の２つの変異を明らかにした。
これらの第１は、エクソン４の３’末端由来の12ヌクレオチドの比存在である（配列番号１のヌクレオチド324〜335）。これはヌクレオチド335の後の代わりにヌクレオチド323の後での、エクソン４のスプライシングの結果生じる。エクソン４のこのオルタナティブスプライシングから生じる転写物は、配列番号２のアミノ酸残基Val26-Arg27-Ser28-Gln29をコードしない。エクソン４に対するこれらの２つのオルタナティブスプライシング事
象から生じる転写物は、調査された全ての組織においてほぼ等しい頻度で検出された。マウスPS1転写物は、Ile26-Arg27-Ser28-Gln29に対するcDNA配列のみを含有し、そしてVal-Arg-Ser-Glnモチーフに対する配列は、Arg48-Ser49-Gln50としてヒトPS2中に部分的に保
存されるのみであるということが現在までに調べられたクローンにおいて顕著である(Rogaevら、1995)。各々のこれらの観察は、これらの相違が適切なPS1機能には重要でないと
いうことを示唆する。
ORFに影響する第２のスプライシング変異は、エクソン９（配列番号１内のヌクレオチ
ド1018〜1116）の非存在を生じる。種々の組織のmRNA由来のRT-PCR産物の分析は、脳（ADにより代表的に影響される新皮質範囲を含む）およびいくつかの他の組織（筋肉、心臓、肺、結腸）がエクソン９を有する単一転写物を優先的に発現するということを示した。他方、白血球（リンパ芽球ではない）はまた、エクソン９を欠くより短い形態を発現した。エクソン９のオルタナティブスプライシングは、配列番号２中の257位のアスパラギン酸
残基をアラニンに変化させ、次の33残基を排除し、そしてその結果エクソン10中にコード
された291位のトレオニンで開始する残りのタンパク質に対してインフレーム融合を生じ
ることが予測される。
Ｄ．hPS2転写物
ヒトPS2遺伝子を含むゲノムDNAは、まだ完全には特徴付けされていない。それにもかかわらず、PS1遺伝子とPS2遺伝子との間の多くの類似性が明らかである。しかし、両方の遺伝子のイントロン／エクソン境界は、TM6→7ループの領域内を除いて非常に類似しているかまたは一致しているようである。
ノザンブロットに対するPS2 cDNAクローンのハイブリダイゼーションは、脳の領域を含む多くの組織において約2.3kbのmRNAのバンド、ならびに筋肉、心筋および膵臓における
約2.6 kbのmRNAのバンドを検出した。PS2は、脳梁を除くほとんどの脳の領域において低
レベルで発現し、脳梁では転写が高い。骨格筋、心筋および膵臓において、PS2遺伝子は
、脳中におけるレベルよりも比較的高レベルでそして約2.3kbおよび約2.6 kbの２つの異
なる転写物として発現している。両方の転写物の大きさは、2.7 kbのPS1転写物の大きさ
と明らかに区別されるサイズを有し、そして高ストリンジェントにおいて、PS1プローブ
とはクロスハイブリダイズしなかった。１つのhPS2対立遺伝子のcDNA配列は配列番号18(
受託番号L44577)として同定される。
このPS2 cDNAコンセンサスヌクレオチド配列内の最も長いORFは、最初の相内のATGコドンから数えて448アミノ酸（配列番号19）を含むポリペプチド（配列番号18において366〜368位）を予測し、これはKozakコンセンサス配列により取り囲まれた。停止コドンは、1710〜1712位である。
PS1についてと同様にいくつかの組織（脳および筋肉を含む）のRNA由来のPS2RT-PCR産
物の分析は、その中で比較的大きなセグメントがスプライスアウトされ得る２つのオルタナティブスプライス変異体を明らかにした。従って、比較的低い頻度で、PS2転写物のヌ
クレオチド1152〜1250（配列番号18）（配列番号19の残基263〜295をコードする）がオルタナティブでスプライスされる転写物が産生される。以下で議論するように、このスプライシング事象は、PS1のエクソン９のオルタナティブスプライシングに密接に対応する(Rogaevら、1995)。
配列番号18中のヌクレオチド1338〜1340位におけるGAAトリプレットを欠くPS2cDNA配列のさらなるスプライス変異体がまた、調べた全ての組織において見出された。このオルタナティブスプライシングは、アミノ酸325位におけるGlu残基の削除を生じる。
６．プレセニリンタンパク質の構造
Ａ．プレセニリンタンパク質ファミリー
プレセニリンは、多くの無脊椎動物および脊椎動物細胞に存在する推定の構造ドメインと関連する、共通の構造モチーフ、共通のオルタナティブスプライシングパターン、および共通の変異領域ホットスポットを有する高度に保存された膜内在性タンパク質の新規のファミリーとして開示される。HoppおよびWoodsアルゴリズムを用いるヒトプレセニリン
遺伝子の推定アミノ酸配列の分析は、このタンパク質が、多岐にわたる膜内在性タンパク質（例えば、レセプター、チャンネルタンパク質、または構造膜タンパク質）であることを示唆する。推定上のhPS1タンパク質のKyte-Doolittleヒドロパシープロットを図２に示す。ヒドロパシープロットおよび構造分析は、これらのタンパク質が、親水性の「ループ」により分離されるおよそ７つの疎水性膜貫通ドメイン(TM1〜TM7と称する)を有することを示唆する。他のモデルは、予測アルゴリズムにおいて用いられるパラメーターに依存して、５つ程度および10個程度の膜貫通ドメインを有すると予測され得る。しかし、７つの膜貫通ドメインの存在は、G-結合レセプタータンパク質のいくつかのクラスの特徴である
が、これはまた他のタンパク質（例えば、チャンネルタンパク質）で観察されている。認識可能なシグナルペプチドの非存在および少数のグリコシル化部位は注目すべきである。
hPS1およびmPS1タンパク質のアミノ酸配列を図３において比較し、そしてhPS1およびhPS2タンパク質の配列を図４で比較する。各図において、同一のアミノ酸残基を垂直線により示す。７つの推定上の膜貫通ドメインを配列の上または下の水平線により示す。
このファミリーのメンバー間の主要な差異は、Ｎ末端における親水性、酸性ループドメインおよびプレセニリンタンパク質の推定上のTM6およびTM7ドメインの間（TM6→7ループ）のアミノ酸配列内にある。hPS1エクソン９（これはいくつかの非神経組織においてオルタナティブスプライシングされる）によりコードされる残基のほとんどは、推定上のTM6
→7ループの一部を形成する。さらに、hPS2において同定された対応するオルタナティブ
スプライシング変異体はTM6→7ループの一部をコードするようである。この親水性ループの可変スプライシング、およびこのループのアミノ酸配列がこの遺伝子ファミリーのメンバー間で異なるという事実は、このループがタンパク質の重要な機能的ドメインであり、そして個々のプレセニリンタンパク質の生理学的および病理学的相互作用に対するいくつかの特異性を付与し得ることを示唆する。Ｎ末端の親水性ドメインが、TM6→7親水性酸ループと同じ酸性電荷を共有し、そして７つの膜貫通ドメインモデルにおいて膜に関して同じ方向を有するようであり、そしてプレセニリン間で変化し得るので、これらの２つのドメインは、調和しているかまたは独立した様式のいずれかで機能性（例えば、同一のまたは異なるリガンドあるいは機能的特性）を共有するようである。従って、Ｎ末端はまた、このタンパク質の重要な機能的ドメインであり、そして個々のプレセニリンタンパク質の生理学的および病理学的相互作用に対していくつかの特異性を付与し得るようである。
以下に詳述されるように、PS1およびPS2クラスターにおける病理学的変異は、TM1→2ループおよびTM6→7ループのまわりに存在し、これらのドメインがこれらのタンパク質の機能的ドメインであることをさらに示唆する。図５および図６は、図面上に示された既知の変異部位とともに、それぞれ、PS1およびPS2遺伝子の予測される構造の模式図を示す。図面に示されるように、TM1→2結合配列は、Ｎ末端およびTM6→7ループのそれに対して膜の反対側に存在することが推定され、そして膜貫通連絡において重要であり得る。このことは、早発性(30〜40歳)の家族性ADを有する家系において観察されたPS1Y115H変異により、そしてループを不安定化することが予測され得る、TM1/2らせんにおけるさらなる変異に
より支持される。TM1→2ループは比較的短く（PS1：残基101〜132；PS2：残基107〜134）、このことは、これらの配列に従来のペプチド合成をより受け入れ易くしている。７つのPS1変異領域は、コドン82とコドン146との間の領域に存在し、この領域はPS1における推
定上の第１の膜貫通ドメイン(TM1)、TM1→2ループ、およびTM2ドメインを含む。同様に、PS2のコドン141における変異もまたTM2ドメインに位置する。これらの変異は、おそらく
、TM1およびTM2におけるTM1→2ループドメインおよびのその固着ポイントを不安定化する。12個のPS1変異は、約コドン246とコドン410との間のアミノ酸の変化を生じ、これらの
変異はTM6、TM6→7ループ、およびTM7ドメインに含まれる。これらの変異は、TM6→7ループの構造または安定性を（直接的か、あるいはTM6またはTM7のコンフォメーションを改変することによるかのいずれかで）改変し得る。
TM6→7ループに存在する重要な機能的役割に関するさらなる証拠は、プレセニリンタンパク質ファミリーの異なるメンバー間のTM6→7ループの中央部分（おおよそアミノ酸300
〜371）における配列相違である。同様に、プレセニリンタンパク質ファミリーのメンバ
ーのＮ末端配列もまた互いに異なるので、わずかに異なる配列が各々の異なるプレセニリンタンパク質の機能に特異性を付与する役割を果たし、一方、保存された配列が共通の生物学的活性を付与するようである。これらの領域はリガンド結合部位を表し得る。そうである場合には、TM6→7領域中の変異は、リガンド結合活性を改変するようである。プレセ
ニリンタンパク質ファミリーの異なるメンバー間で保存されているTM1→2ループは、おそらく、反対の膜面上のエフェクタードメインを表す。エクソン10スプライシング変異を除いて、他の（ミスセンス）変異のほとんどは、推定上の膜貫通ヘリックスの同じ表面上に整列する。このことは、それらがリガンド結合またはチャンネル機能に影響し得ることを示唆する。従って、これらのドメイン（例えば、TM6→7ループおよびTM1→2ループ）は、変異の効果を阻害し、そして／またはアルツハイマー病を有する被験体においてプレセニリンタンパク質の正常機能を回復させる特異的結合因子を開発するための部位として用いられ得る。
C.elegansSPE-4遺伝子の推定上の産物とPS1遺伝子の推定上の産物との間の類似性は、
これらが類似した活性を有し得ることを暗示している。SPE-4タンパク質は、精子発生の
間の線維体-膜オルガネラ(FBMO)複合体の形成および安定化に関与するようである。FBMO
は特定化されたゴルジ由来オルガネラであり、平行したタンパク質線維の複合体に接着し、そしてこれを部分的に取り囲む膜結合小胞からなり、そして可溶性ポリペプチドおよび膜結合ポリペプチドの輸送および貯蔵に関与し得る。SPE-4における変異はFBMO複合体を
解離させ、そして精子発生を停止させる。従って、SPE-4の病理学的機能は、膜内在出芽
（budding）と融合事象との間の相互作用を安定化するか、または精子発生の間のFBMO複
合体の細胞内輸送の間に膜タンパク質と線維性タンパク質との間の相互作用を安定化するかのいずれかであり得る。匹敵する機能が、プレセニリンについて予想され得る。例えば、PS1は、βAPPのような他の膜結合タンパク質のドッキング、または（例えば、ゴルジ器官またはエンドソーム-リソソーム系における）タンパク質輸送の間の膜結合小胞の軸索
輸送および融合出芽のいずれかに関与し得る。これらの仮説が正しい場合、変異は、βAPPの異常な輸送およびプロセシングならびに／または微小管会合タンパク質Tauのような細胞骨格タンパク質との異常な相互作用を生じることが予測され得る。βAPPおよびTauの両方の細胞内および細胞外配置における異常性は、実際、アルツハイマー病の神経病理学的特徴の必要不可欠な部分である。推定上のタンパク質の保存されたドメイン内の高度に保存された残基におけるPS1およびPS2変異の位置は、これらが病原性であることを示唆しているが、これらの変異のうちの少なくとも３つはそれら自身保存的であり、このことは成体生物における疾患の発症に対応する。発現または機能の完全な欠損を生じることが期待される欠失またはナンセンス変異は今日まで観察されていないで、本発明者らは、これらの変異が優性な機能獲得効果（gain-of-functioneffect）を有し、従って、βAPPの異常
なプロセシングまたは正常なβAPPプロセシングの停止を生じる優性な機能喪失効果（loss-of-functioneffect）を促進するかどうかを予測し得ない。エクソン10スプライシング
変異は、エクソン９からエクソン10へのインフレーム融合を引き起こし、そして細胞内標的化またはリガンド結合を改変し得るPS1タンパク質における構造的効果を有し得るか、
そうでなければPS1機能に影響し得る。
別の可能性は、PS1遺伝子産物がレセプターまたはチャンネルタンパク質を表し得ると
いうことである。このようなタンパク質の変異は、脊椎動物（例えば、ヒトにおける悪性高熱、高カリウム血性周期性麻痺）および無脊椎動物細胞（C.elegansにおけるdeg-1(d)
変異）の両方におけるいくつかの他の神経学的疾患に原因として関連する。これらの他の優性疾患の病理はアルツハイマー病の病理とは類似していないが、アルツハイマー病おいてイオンチャンネルの機能性異常に関する証拠がある。例えば、テトラエチルアンモニウム感受性113pSカリウムチャンネルおよびカルシウムホメオスタシスにおける異常が報告
されている。PS1と電位依存性カルシウムチャンネルのα-IDサブユニットとの間の弱い相同性、および培養細胞における細胞内カルシウムの増大がアルツハイマー病の生化学的特徴のいくつか（例えば、Tau微小管結合タンパク質のリン酸化における改変およびAβペプチドの増加した産生）を複製し得るという観察から、膜貫通カルシウムフラックスにおける混乱が特に関連し得る。
Ｂ．hPS1構造
配列番号２に示すように、ヒトPS1タンパク質の最も大きい既知の形態は467アミノ酸を含有し、そして約51.37kDaの推定分子量を有する。上述のエクソン４のオルタナティブスプライシング（配列番号２の26〜29位に対応する残基が欠失される）を有する変異体は、アミノ酸が４個少なく、そして約50.93kDaの分子量を有する。同様に、上述のエクソン９のオルタナティブスプライシング（配列番号２の258〜290位に対応する残基が欠失される）を有する変異体は、アミノ酸が33個少なく、そして約47.74kDaの分子量を有する。推定上のドメインの位置を表２に示す。残基位置の番号付けは、配列番号２に関与し、そしておおよそ（すなわち、±２残基）であることにさらに留意されたい。
推定上のPS1構造の模式図を図５に示す。Ｎ末端はいくつかの潜在的なリン酸化ドメイ
ンを有する、高度に親水性の負に荷電したドメインであり、その後に順番に、約19残基の疎水性膜貫通ドメイン(TM1)、約32残基の荷電した親水性ループ（TM1→2）、短い（１〜15残基）親水性ドメイン（TM2→3からTM5→6）が点在する５つのさらなる疎水性膜貫通ド
メイン（TM2からTM6）、さらなるより大きな酸性親水性荷電ループ（TM6→7）、および少なくとも１つ（TM7）、おそらくは２つの他の疎水性の潜在的膜貫通ドメインが続き、Ｃ
末端の極性ドメインに達する。
このタンパク質はまた、多数の潜在的なリン酸化部位を含有する。そのうちの１つはMAPキナーゼコンセンサス部位であり、この部位はまた、神経原線維濃縮体への正常Tauの変換の間のTauのリン酸化過剰に関与する。このコンセンサス配列は、アルツハイマー病の
他の生化学的局面にこのタンパク質の活性と連結した推定上のエレメントを提供し得、そして有望な治療的標的を表す。タンパク質構造の検閲により、MAPキナーゼコンセンサス
配列である5/T-Pモチーフを表すYTPF（残基115〜118、配列番号２）およびSTPE（残基353〜356、配列番号２）の２つの配列が示される。いくつかの他のリン酸化部位は、プロテ
インキナーゼＣ(PKC)活性に対するコンセンサス配列とともに存在する。PKC活性がアルツハイマー病に関連するAPPの代謝における差異と関連するので、PS1タンパク質およびそのホモログ上のこれらの部位はまた、標的化療法のための部位である。予備的な証拠により、少なくともトランスフェクトされた細胞において、PS1タンパク質は微少な程度しかリ
ン酸化されず、一方、PS2タンパク質は有意にリン酸化されることが示されている。少な
くともPS2については、このリン酸化は、PKCに関与しない機構によりＮ末端ドメインのセリン残基上で起こるようである(Capellら、1996)。
エクソン４の末端におけるオルタナティブスプライシングは、親水性Ｎ末端ドメインから４個のアミノ酸を除去し、そしてリン酸化コンセンサス配列を除去することが予期されることに留意されたい。さらに、エクソン９のオルタナティブスプライシングは、短縮されたイソ型のPS1タンパク質を生じる。ここで、TM6のＣ末端の５つの疎水性残基、およびTM6に対して直ぐＣ末端の親水性の負に荷電したTM6→7ループの一部は欠けている。この
オルタナティブスプライシングされたイソ型は、Ｎ末端から配列番号２の256位における
チロシンまでそしてこのチロシンを含む配列の保存、257位のアスパラギン酸のアラニン
への変化、およびこのタンパク質のチロシン291から（そしてそれを含む）Ｃ末端への配
列のスプライシングによって特徴付けられる。このようなスプライシングの差異は、しばしばタンパク質の重要な機能的ドメインに関連する。このことは、この親水性ループ（従って、類似のアミノ酸電荷を有するＮ末端親水性ループ）がPS1産物の活性な機能的ドメ
インであり、従って治療的標的化のための部位であることを示している。
Ｃ．ヒトPS2構造
ヒトPS1とPS2タンパク質は全アミノ酸にわたって63％の同一性を示し、そしていくつかのドメインは事実上完全に同一であることを示している。従って、期待されるように、疎水性分析は、両方のタンパク質がまた同様の構造的機構を共有することを示唆する。従っ
て、両方のタンパク質は７つの疎水性の推定上の膜貫通ドメインを有することが予測され、そして両方のタンパク質はＮ末端およびTM6とTM7との間に大きな酸性の親水性ドメインを有する。さらなる類似性が、脳および筋肉RNA由来のRT-PCR産物の上記の分析から明ら
かであり、これはPS2転写物のヌクレオチド1153〜1250がオルタナティブスプライシング
されることを明らかにした。これらのヌクレオチドはアミノ酸263〜296をコードし、これらのアミノ酸は、推定上のPS2タンパク質のTM6→7ループドメイン内に位置し、そしてPs1中のオルタナティブスプライシングされたアミノ酸257〜290と94％の配列同一性を共有する。
hPS2タンパク質の推定上の機能的ドメインの位置を表３に記載する。残基位置は配列番号19の残基位置を参照し、そしてその位はおおよそである（すなわち、±２残基）であることに留意されたい。
推定上のPS2構造の模式図を図６に示す。hPS1とhPS2との間の類似性は、PS1タンパク質のTM1とTM6との間およびTM7からＣ末端までの間隔に対応するタンパク質のいくつかのド
メインにおいて最も大きい。PS1とPS2との主要な差異は、負に荷電した親水性TM6→7ループのサイズおよびアミノ酸配列、ならびにＮ末端の親水性ドメインの配列にある。
２つの予測されるアミノ酸配列間の最も顕著な差異は、TM6→7親水性ループ（hPS1の残基304〜374；hPS2の残基310〜355）の中心部分のアミノ酸配列内、そしてＮ末端の親水性ドメイン内に現れる。類推により、このドメインはまた、マウスPS1遺伝子とヒトPS1遺伝子との間で高度には保存されておらず（同一性＝47/60残基）、そしてSPE-4の相当する領域に対してなんら類似性を示さない。
７．プレセニリン変異体
Ａ．PS1変異体
PS1遺伝子内のいくつかの変異が同定されており、これらは重篤なタイプの家族性アル
ツハイマー病を引き起こす。これらの変異の１つまたは組み合わせは、この型のアルツハイマー病ならびにいくつかの他の神経学的疾患の原因であり得る。これらの変異は、予想されるアミノ酸配列中の変異を導くか、あるいは異常な転写物プロセシング、レベル、または安定性を導くヌクレオチド配列の置換、挿入、または欠損の任意の形態であり得る。ヌクレオチドの形態における変異および／またはアミノ酸欠損あるいは置換を引き起こす特異的な疾患が以下に記載されるが、さらなる変異が他のファミリーで見出されることが予測される。実際、８つの異なる家系間の５つの異なるミスセンス変異の最初の発見（Sherringtonら、1995）の後、他の遺伝病（例えば、Ca2+スーパーオキシドジスムターゼ遺
伝子中の変異と関連する筋萎縮性外側硬化症）での実験から、さらなる変異が同定されることが予測された。この予測は、プレセニリン中のさらなる変異の本発明者らの引き続く発見（Rogaevら、1995）により、そして他者による同様の観察（例えば、Crutsら、1995
；Campionら、1995）により実現されている。従って、PS1遺伝子およびタンパク質に関して本明細書中で用いられるように、用語「変異体」はこれらの特定の変異体に限定されるよりは、むしろ上記で規定されたように解釈されるべきである。
第14染色体に連鎖した６つの大きな家系の発症したメンバーから単離された2.8 kbのS182転写物にわたるオーバーラップRT-PCR産物の直接的な配列決定は、最初に、６つの家系の各々における５つのミスセンス変異の発見を導いた。これらの各変異は、それぞれの家系における疾患とともに同時分離され、そしてFAD家系と同じ民族起源から抜き出された142人以上の無関係な神経学的に正常な被験体（284個の無関係な染色体）には存在してい
なかった。AD3形質とともに分離する物理的間隔内のこの遺伝子の位置、第14染色体に最
終的に連鎖した６つの家系における疾患形質とともに同時分離する８つの異なるミスセンス変異の存在、および284人の個体の正常な染色体におけるこれらの変異の非存在は、PS1
遺伝子がAD3座位であるということを累積的に確認する。この仮説に対するさらなる生物
学的な支持は、FAD家系における変異した残基が進化において保存されている（例えば、hPS1v.mPS1）という事実、それらの変異がまた、他の脊椎動物および非脊椎動物ホモログ
において高度に保存されているタンパク質のドメインに位置するという事実、およびPS1
遺伝子産物が脳のほとんどの領域（ADが最も重篤に発症した領域を含む）において高レベルで発現しているという事実から生じる。
PS1遺伝子の最初の発見以来、ADの発生に関連した多くのさらなる変異がカタログに加
えられている。表４は多数のこれらを特徴付ける。各々の観察されたヌクレオチド欠損または置換は、PS1転写物の推定上のORF内に生じ、そして示された位置でコードされたアミノ酸を変化させることが予想された。それらの変異は、配列番号１中のそのヌクレオチド位置に関して、そして配列番号２中のそのアミノ酸位置に関して列挙される。「NA」の記入は、データが入手可能でなかったことを示す。
次の節で議論されるように、多くのPS2変異がまた見出されている。hPS1配列とhPS2配
列との比較は、図４に示され、そしてこれらの病理学的変異が、PS1タンパク質内に保存
されているPS2タンパク質の領域内にあることを示す。それ故、PS1タンパク質内の対応する変異はまた、病理学的であることが予測され得、そして本明細書中で提供され、そして可能にされたPS1変異体中に含まれる。さらに、プレセニリン遺伝子の任意の保存された
領域において同定される任意の病理学的変異は、その保存された領域を共有する他のプレセニリンの変異体を表すことが想像され得る。
興味深いことに、変異A260V、C263R、P264L、P267S、E280A、E280G、A285V、L286V、Δ291-319、G384A、L392V、およびC410Yはすべて、推定上の膜貫通ドメインであるTM6とTM7との間の酸性親水性ループ中またはその近傍に生じる。これらの変異のうち８つ（A260V
、C263R、P264L、P267S、E280A、E280G、A285V、L286V）はまた、オルタナティブスプラ
イシングドメイン（配列番号２の残基257〜290）中に位置する。
これらすべての変異は、成熟mRNA/cDNA配列またはゲノムDNAを提示するRT-PCR産物を用いて、種々のストラテジー（直接的ヌクレオチド配列決定、対立遺伝子特異的オリゴヌクレオチド、連結ポリメラーゼ連鎖反応、SSCP、RFLP、新規の「DNAクリップ」技術など）
によりアッセイされ得る。
最終的に、明らかに有害な効果を有さないいくつかの多型がまた発見されていることに注意すべきである。これらのうちの１つは、配列番号１のヌクレオチド863のT→G変化で
あり、これはTM4中のF205L多型を生じる。他のもの（1700 bpにおけるC→A；2603 bpにおけるG→A；2620bpの欠損）は3OUTR中に存在する。
Ｂ．PS2変異体
PS1遺伝子産物とPS2遺伝子産物との間の強い類似性は、PS2遺伝子が、第14染色体、第19染色体、および第21染色体を排除した遺伝的連鎖研究において、いくつかの週数の初期
発病型のAD家系中における、疾患を引き起こす変異の部位であり得る可能性を生じた。RT-PCRを用いて、βAPPおよびPS1遺伝子における変異が直接配列決定研究によりすでに排除されている、初期発病型FADを有する８つの家系の発症したメンバーの、リンパ芽球、線
維芽細胞、または死後の脳組織由来のPS2転写物に対応するcDNAが単離された。
これらのRT-PCR産物の調査により、初期発病型の、病理学的に確認されたFAD(50〜70歳で発病)を有するイタリア人起源(Flo10)の拡張した家系のすべての４つの発症したメンバー中のヌクレオチド1080におけるヘテロ接合のA→G置換が検出された。この変異はTM5中
のコドン239におけるMet→Valミスセンス変異を引き起こすことが予測される。
TM2中のコドン141におけるAsn→Ile置換を引き起こす第２の変異（ヌクレオチド787に
おけるA→T）が、VolgaGerman祖先(細胞株AG09369、AG09907、AG09952、およびAG09905、Coriell Institute、Camden NJで示される)の関連家系の群の発症したメンバー中に見出
された。意味ありげに、１つの被験体(AG09907)はこの変異に対してホモ接合であった。
観察はこれらの家系の近交系の性質と矛盾しない。意味ありげに、この被験体はN141I変
異体に対してヘテロ接合である被験体の臨床像と顕著に異なる臨床像を有さなかった。いずれのPS2遺伝子変異も284人の正常白色人種コントロールには見出されず、これらはADのAD3型を有する家系の発症したメンバー中にも存在しない。
これらのPS2変異の両方は、PS1/PS2遺伝子ファミリー内に高度に保存されている残基の置換を引き起こすことが予測される。
さらなるPS2変異は1624塩基対におけるT→C置換により引き起こされ、これはＣ末端の
コドン420におけるIleからThrへの置換を引き起こす。この変異は初期発病型(45歳)家族
性ADのさらなるケースにおいて見出された。
これらのhPS2変異を、配列番号18中のそれらのヌクレオチド位置に関して、そして配列番号19中のそれらのアミノ酸位置に関して、表５中に列挙する。表中の「NA」の記述は、そのデータが入手不可能であったことを示す。
前のセクションで議論したように、多くのPS1変異がまた見出されている。hPS1配列とhPS2配列との比較を図４に示し、そしてこれらの病理学的変異はPS1タンパク質のPS2タン
パク質中で大いに保存されている領域中に存在することを明らかにする。従って、PS2タ
ンパク質中の対応する変異もまた病理学的であることが予測され得、そして本明細書中に提供され、かつ実施可能であるPS2変異体中に含まれ得る。さらに、プレセニリン遺伝子
の任意の保存された領域において同定された任意の病理学的変異は、この保存された領域を共有する他のプレセニリンの変異体を表すことが予測され得る。
その産物が、PS1遺伝子産物と実質的なアミノ酸類似性および構造類似性を共有するこ
とが予測される遺伝子の発見は、これらのタンパク質が重複する機能について無関係なタンパク質として機能的に関与し得るが、多量体のポリペプチドの物理的に会合したサブユニットとして、または同じ経路において連続的な機能を行う無関係なタンパク質として、おそらくわずかに異なる特定の活性を有することを示唆する。
ADの家族型を有する被験体中のPS2タンパク質の保存されたドメインにおける３つの異
なるミスセンス変異の観察は、これらの変異が、PS1遺伝子中の変異と同様にADの原因と
なることを示す。この結論は重要である。なぜなら、PS1遺伝子中の変異に関連する疾患
表現型（30〜50歳で発病、持続期間10年）がPS2遺伝子中の変異に関連する疾患表現型（40〜70歳で発病、持続期間20年まで）と微妙に異なるので、一般的な類似性は、この遺伝
子ファミリーのメンバーにより包含される生化学的経路が少なくとも初期発病型ADの発生の中心であることを明確に主張する。疾患表現型における微妙な差異は、CNS中のPS2転写物の低レベルの発現を反映し得るか、またはPS2遺伝子産物に対する異なる役割を反映し
得る。
PS1変異の効果に対する類似により、変異した場合のPS2は、APP(アミロイド前駆体タンパク質)からAβペプチドへの異常なプロセシング、Tau微小管結合タンパク質の高リン酸
化、および細胞内カルシウムホメオスタシスの異常性を引き起こし得る。これらの異常な相互作用の妨害は、ADにおける治療的介入を提供する。
最終的に、少なくとも１つのヌクレオチド多型は、コードされたアミノ酸配列中にいかなる変異も伴わないで、そのPS2 cDNAが配列番号18の626 bpでT→C変化を有する、ある正常な個体において見出されている。
III. 好ましい実施態様
本明細書中に開示および記載される発見に部分的に基づいて、本発明の以下の好ましい実施態様を提供する。
１．単離された核酸
ある一連の実施態様において、本発明は、本明細書中に開示されるプレセニリンの核酸配列に対応または関連する、単離された核酸を提供する。以下でより十分に記載されるように、これらの配列としては、ヒトおよび他の哺乳動物種由来の正常PS1および正常PS2の配列、ヒトおよび他の哺乳動物種由来の変異PS1および変異PS2の配列、DrosophilaおよびC.elegansのような非哺乳動物種由来の相同配列、プローブおよびPCRプライマーとして有用なこれらの配列のサブセット、プレセニリンタンパク質のフラグメントをコードするかまたは特定の構造ドメインもしくは多型領域に対応するこれらの配列のサブセット、プレセニリン遺伝子のフラグメントに対応する相補配列またはアンチセンス配列、プレセニリンコード領域が外因性調節領域に作動可能に結合されている配列、および発現のマーカーとして、精製のための「タグ」として、またはプレセニリンと相互作用するタンパク質についてのスクリーニングおよびアッセイにおいて有用な、他のタンパク質に融合したプレセニリンタンパク質の一部の融合タンパク質をコードする配列が挙げられる。
従って、第１の一連の実施態様において、正常バージョンまたは変異バージョンのPS1
タンパク質およびPS2タンパク質をコードする、単離された核酸配列を提供する。このよ
うな核酸配列の例を、本明細書中に開示する。これらの核酸配列は、ゲノム配列(例えば
、配列番号５〜15)であり得るか、またはcDNA配列(例えば、配列番号１、３、16、および18)であり得る。さらに、核酸は、組換え遺伝子または「ミニ遺伝子」であり得、ここで
全てまたはいくつかのイントロンの、イントロンの種々の組合せ、ならびにエキソンおよび局所的なシス作用性調節エレメントは、増殖または発現の構築物またはベクターにおいて操作され得る。従って、例えば、本発明は、本明細書中に記載されるオルタナティブスプライス変異体がDNAレベルで取り込まれており、従って、これらの配列を含む細胞が、
各スプライシング部分で唯一のオルタナティブスプライス変異体を発現することを可能にする、核酸配列を提供する。一例として、PS1遺伝子のエキソン１の３’末端(配列番号５の1337bp)がエキソン３の５’末端(配列番号６の588bp)に直接連結され、その結果、優勢な転写物に対応する転写物のみが産生される、組換え遺伝子を産生し得る。明らかに、エキソン２およびエキソン３のオルタナティブスプライシングを「強制する」組換え遺伝子をまた作製し得る。同様に、PS1のエキソン４またはエキソン９のスプライス変異体(またはPS2の対応するTM6→7スプライス変異体)の１つがDNAに組み込まれた組換え遺伝子を作
製し得、その結果、この組換え遺伝子を含む細胞は、これらの変異体のうちの１つのみを発現し得る。組換えプレセニリン遺伝子のサイズを減少させるために、cDNA遺伝子を使用し得るか、またはイントロンおよび非翻訳エキソンの種々の組合せをDNA構築物から除去
し得る。最終的に、5'UTRが変化して、その結果、転写が２つの転写開始部位の一方また
は他方から必ず進行する、組換え遺伝子を作製し得る。このような構築物は、以下に記載するように、プレセニリンの発現を誘導または抑制し得る化合物の同定において特に有用であり得る。これらの実施態様の多くの改変はここで、本明細書中に提供されるプレセニリン遺伝子の詳細な説明によって可能になる。
開示されるプレセニリン配列に加えて、当業者は、現在、開示される配列の対立遺伝子であるプレセニリン遺伝子もしくはcDNA、または異種特異的ホモログであるプレセニリン遺伝子もしくはcDNAを表す核酸を同定しそして単離することが可能であする。従って、本
発明は、これらの対立遺伝子およびホモログ、ならびにこれらの配列由来の種々の上記の組換え構築物に対応する単離された核酸を、当該分野で周知の手段によって提供する。簡潔に記載すると、当業者は、現在、ゲノムまたはcDNAの調製物(個々の生物(例えば、ヒトのAD患者またはそれらの家族の一員)ならびに細菌、ウイルス、酵母、または他のゲノム
もしくはcDNAのライブラリーから調製したサンプルを含む)を、対立遺伝子配列または相
同配列を同定するためのプローブまたはPCRプライマーを使用してスクリーニングし得る
。ADまたは他の疾患の発達に寄与し得るさらなるプレセニリン遺伝子変異を同定することが望ましく、病原性でないさらなるプレセニリン多型を同定することが望ましく、そして、ADの研究および潜在的な治療のためスクリーニングに使用し得る種々の動物モデルの作製もまた望ましいので、さらなるプレセニリン配列が、ヒト核酸の他の調製物またはライブラリー、および動物(ラット、マウス、ハムスター、モルモット、ウサギ、イヌ、ネコ
、ヤギ、ヒツジ、ブタおよび非ヒト霊長類を含む)由来の調製物またはライブラリーから
単離されることが、特に意図される。さらに、酵母または無脊椎動物種(C.elegansおよび他の線虫、ならびにDrosophilaおよび他の昆虫を含む)由来のプレセニリンホモログは、
薬物のスクリーニングに特に有用性を有し得る。例えば、迅速に生じてそして容易に評点される表現型(例えば、数日後の異常な外陰または眼の発達)を生じる変異プレセニリンホモログ(または哺乳動物のプレセニリントランスジーン)を有する無脊椎動物を、変異遺伝子の効果をブロックする薬物のふるいとして使用し得る。このような無脊椎動物は、より大きな脊椎動物よりも大量のスクリーニングのためにはるかに迅速かつ有効であることを立証し得る。一旦、リード化合物が、このようなスクリーニングを通して見出されたら、これらは高等動物において試験され得る。
標準的なハイブリダイゼーションスクリーニングまたはPCR技術を、比較的短いプレセ
ニリン遺伝子配列を使用して(例えば、mPS1遺伝子の同定において使用されたように)、このような対立遺伝子配列および相同配列を同定および／または単離するために使用し得る。配列は、標的配列の性質、使用する方法、および必要とされる特異性に依存する、８個以下のヌクレオチドを含み得る。将来の技術発展により、より短い配列の有利な使用ですら可能になるかもしれない。現在の技術では、９〜50ヌクレオチド、および好ましくは約18〜24の配列が好ましい。これらの配列は、本明細書中で開示された配列から選択され得るか、または本明細書中で可能になった他の対立遺伝子ホモログまたは異種特異的ホモログ由来であり得る。mRNAをプローブするかまたはcDNAライブラリーをスクリーニングする場合、コード配列(イントロンよりはむしろ)由来のプローブおよびプライマーを好ましくは使用し、そしてオルタナティブスプライシング変異体において削除される配列は、代表的には、これらの変異体を同定することが特に所望されない限り、避ける。プレセニリン遺伝子の対立遺伝子変異体は、本明細書中で規定されるように、ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で、開示された配列とハイブリダイズすると予想され得るが、一方で、より低いストリンジェントを使用して異種特異的ホモログを同定し得る。
別の一連の実施態様において、本発明は、プレセニリン配列またはそれらの相補物のサブセットを含む単離された核酸を提供する。上記で注意したように、このような配列は、プレセニリン遺伝子の対立遺伝子変異体および相同変異体の同定および単離におけるプローブおよびPCRプライマーとしての有用性を有する。上記のように、プレセニリンの多型
領域に対応するサブ配列はまた、以下のように、診断目的のための個体のスクリーニングおよび／または遺伝子型決定における特別な有用性を有する。さらに、また以下に記載するように、このようなサブセットは、(１)融合タンパク質に含まれるプレセニリンタンパク質のフラグメント、(２)結合研究に使用するためのプレセニリンタンパク質の機能的ドメインを含むフラグメント、(３)プレセニリンタンパク質に対する抗体を生じるための免疫原として使用され得るプレセニリンタンパク質のフラグメント、および(４)競合的インヒビターとして、またはプレセニリン模倣物として作用して、プレセニリンの生理学的機能を阻害または模倣し得るプレセニリンのフラグメント、をコードするために有用性を有
する。最終的に、このようなサブセットは、プレセニリン遺伝子またはプレセニリンmRNA転写物に対して、これらの配列の転写または翻訳を阻害する生理学的条件下でハイブリダイズし得る相補的配列またはアンチセンス配列をコードまたは示し得る。それゆえ、意図される使用に依存して、本発明は、８〜10ヌクレオチド(例えば、PCRプライマーとしての使用のため)から、プレセニリンのゲノムDNAまたはcDNAのほぼ全長のサイズまで変化する長さを有し得るプレセニリン遺伝子の核酸配列を提供する。従って、本発明は、本明細書中で開示されたかさもなければ可能にしたように、プレセニリン遺伝子の少なくとも８〜10個、好ましくは15個、そしてより好ましくは少なくとも20個の連続するヌクレオチドまたはその相補物に対応する配列を含む、単離された核酸を提供する。しかし、上記で注意したように、異なる技術ではより短い配列が有用であり得る。
別の一連の実施態様において、本発明は、イントロンを有するかもしくは有さない、または上記のように組換えにより操作されたプレセニリンのコード配列が、内因性または外因性の５'および／または３'調節領域に作動可能に連結されている核酸を提供する。hPS1遺伝子の内因性調節領域は、本明細書中に詳細に記載および開示される。本明細書の開示および標準的な遺伝的技術(例えば、PCR伸長、標的遺伝子ウォーキング)を使用して、当
業者はまた、現在、対応するhPS2の5'および／または3'内因性調節領域をクローン化することを可能にする。同様に、hPS1およびhPS2の内因性調節領域の対立遺伝子変異体、ならびに他の哺乳動物のホモログ由来の外因性調節領域は、同様に過度の実験を行うことなく可能になる。あるいは、外因性調節領域(すなわち、異なる同種遺伝子または異種特異的
調節領域由来の調節領域)は、発現を駆動するためにプレセニリンのコード配列に作動可
能に連結され得る。適切な5'調節領域としてはプロモーターエレメントが挙げられ、そしてまたはオペレーター配列またはエンハンサー配列、リボソーム結合配列、RNAキャップ
形成配列などのようなさらなるエレメントも挙げ得る。調節領域は、原核生物細胞または真核生物細胞、それらのウイルス、およびそれらの組合せの遺伝子の発現を制御する配列から選択され得る。このような調節領域として、lac系、trp系、tac系、およびtrc系；λファージの主要なオペレーター領域およびプロモーター領域；fdコートタンパク質の制御領域；SV40の初期または後期プロモーター；ポリオーマ、アデノウイルス、レトロウイルス、バキュロウイルス、およびシミアンウイルス由来のプロモーター；3-ホスホグリセレートキナーゼプロモーター；酵母の酸性ホスファターゼプロモーター；酵母のα-交配因
子；ニューロンまたは他の細胞型において発現する他の真核生物遺伝子のプロモーターエレメント；およびそれらの組合せが挙げられるが、これらに限定されない。特に、これらの核酸で形質転換された細胞内でプレセニリン遺伝子の制御された、および／または操作可能な発現を可能にする誘導可能または抑制可能(例えば、β-ガラクトシダーゼプロモーター)である調節エレメントを選択し得る。あるいは、プレセニリンのコード領域を、多
細胞生物における組織特異的発現を提供する調節エレメントに作動可能に連結し得る。このような構築物は、適切な組織内でのみプレセニリン遺伝子の発現を生じるトランスジェニック生物の作製に特に有用である。適切な調節領域の選択は、当業者の能力および裁量の範囲内であり、そして多くのこのような調節領域の組換え体の使用は、現在当該分野で確立されている。
別の一連の実施態様において、本発明は、融合タンパク質の形態でプレセニリンタンパク質の全部または一部をコードする単離された核酸を提供する。これらの実施態様において、核酸調節領域(内因性または外因性)は、第２のコード領域にインフレームで共有結合的に連結されている第１のコード領域に作動可能に連結される。第２のコード領域は随意に、一つ以上のさらなるコード領域に共有結合的に連結され得、そして、最後のコード領域は、終止コドン、および随意に、適切な3'調節領域(例えば、ポリアデニル化シグナル)に連結される。
融合タンパク質のプレセニリン配列は、第１、第２、または任意のさらなるコード領域
を示し得る。プレセニリン配列は、保存的ドメインまたは非保存的ドメインであり得、そして融合物の任意のコード領域に配置され得る。融合物の非プレセニリン配列を、実施者の要求および裁量に従って選択し得るが、本発明によっては制限されない。しかし、有用な非プレセニリン配列としては、得られる融合タンパク質の同定または精製を補助するために使用し得る抗原決定基またはポリHisタグのような短い配列の「タグ」が挙げられる
。あるいは、非プレセニリンコード領域は、タンパク質の同定および精製を補助し得るか、または以下に記載のようなアッセイにおいて有用であり得る、酵素または結合タンパク質のような大きなタンパク質またはタンパク質フラグメントをコードし得る。特に意図されるプレセニリン融合タンパク質としては、プレセニリンの単離および精製に有用であるポリHisおよびGST(グルタチオンS-トランスフェラーゼ)の融合物、および以下に記載の、プレセニリンと結合または相互作用する他のタンパク質を同定するためのアッセイにおいて有用である酵母のツーハイブリッド融合物が挙げられる。
別の一連の実施態様において、本発明は、マーカー遺伝子またはレポーター遺伝子(例
えば、β-ガラクトシダーゼ、ルシフェラーゼ)が、プレセニリン遺伝子の５’調節領域に作動可能に連結され、その結果、マーカー遺伝子の発現が、プレセニリン調節配列の制御下にある、組換えDNA構築物の形態の単離された核酸を提供する。本明細書中で開示され
るかさもなければ可能にされるプレセニリン調節領域(ヒトおよび他の哺乳動物種から得
たPS1遺伝子およびPS2遺伝子由来の調節領域を含む)を使用して、当業者は、現在、この
ような構築物を作成することが可能である。以下でより十分に議論するように、このような単離された核酸は、直接的または間接的に、差別的にプレセニリン発現に影響を与え得る化合物の同定に有用である、細胞、細胞株、またはトランスジェニック動物の作製に使用され得る。
最終的に、本発明の単離された核酸は、ベクターに含まれる場合、上記の任意の配列を含む。適切なベクターとしては、プラスミド、ファージミド、コスミド、エピソームなどを含む全ての型のクローニングベクターおよび発現ベクターならびに組込みベクターが挙げられる。ベクターはまた、それらで首尾よく形質転換された細胞の同定に有用である、種々のマーカー遺伝子(例えば、抗生物質耐性遺伝子または感受性遺伝子)を含み得る。さらに、ベクターは、本発明の核酸が作動可能に連結されている調節配列を含み得、そして／またはベクター中で適切に連結される場合、本発明の核酸が融合タンパク質として発現されるようなコード領域もまた含み得る。このようなベクターはまた、酵母「ツーハイブリッド」、バキュロウイルス、およびファージディスプレー系における使用のためのベクターを含み得る。ベクターは、特定の用途のために必要とされるかまたは所望されるような、原核生物、真核生物、またはウイルスの発現のために有用であるように選択され得る。例えば、SV40プロモーターを有するワクシニアウイルスベクターもしくはシミアンウイルスベクター(例えば、pSV2)、または単純ヘルペスウイルスまたはアデノ関連ウイルスは、培養中またはインビボでのニューロンを含む哺乳動物細胞のトランスフェクションに有用であり得る。そして、バキュロウイルスベクターは、昆虫細胞(例えば、チョウの細胞)のトランスフェクションに使用され得る。非常に多様な異なるベクターは、現在市販されており、そうでなければ当該分野で公知であり、そして適切なベクターの選択は、当業者の能力および裁量の範囲内である。
２．実質的に純粋なタンパク質
本発明は、プレセニリンタンパク質、プレセニリンタンパク質のフラグメント、およびプレセニリンまたはそのフラグメントを含む融合タンパク質の実質的に純粋な調製物を提供する。タンパク質、フラグメント、および融合物は、本明細書中に記載されるように、正常プレセニリンおよび変異プレセニリンに対する抗体の生成、プレセニリン結合タンパク質の同定、ならびに診断方法および治療方法において有用性を有する。それゆえ、意図される用途に依存して、本発明は、完全なプレセニリンタンパク質のサブ配列であり、そ
して完全なプレセニリンタンパク質に対して、４〜10アミノ酸(例えば、免疫原としての
使用のため)または10〜100アミノ酸(例えば、結合アッセイにおける使用のため)で変化する長さを有し得るアミノ酸配列を含む、実質的に純粋なタンパク質またはペプチドを提供する。従って、本発明は、本明細書中に記載するかそうでなければ可能とされるように、プレセニリンタンパク質の少なくとも４〜５、好ましくは６〜10、そしてより好ましくは少なくとも50または100の連続するアミノ酸に対応する配列を含む、実質的に純粋なタン
パク質またはペプチドを提供する。
本発明のタンパク質またはペプチドは、そのタンパク質配列によって明らかにされる特性に基づいて選択される、任意の種々の方法によって単離および精製され得る。プレセニリンは、細胞膜内タンパク質または膜貫通タンパク質の特性を有するので、プレセニリンが通常高度に発現される細胞(例えば、ニューロン、オリゴデンドログリア、筋肉、膵臓)の膜画分が単離され得、そしてタンパク質が、例えば、界面活性剤可溶化によって抽出され得る。あるいは、プレセニリンタンパク質、融合タンパク質、またはそれらのフラグメントは、以下の発現ベクターを用いて形質転換またはトランスフェクトされた細胞から精製され得る：例えば、pPbacおよびpMbacベクター(Stratagene, La Jolla, CA)のようなバキュロウイルス系；pYESHIS Xpressベクター(Invitrogen,San Diego, CA)のような酵母発現系；一定の構成的発現を有するpcDNA3(Invitrogen, San Diego, CA)または誘導可能で
あるLacSwitch(Stratagene,La Jolla, CA)のような真核生物発現系；またはpKK233-3(Clontech, Palo Alto, CA)のような原核生物発現ベクター。タンパク質またはフラグメント
が、組換え細胞(例えば、不死化ヒト細胞株または他の真核生物細胞)の小胞体または原形質膜内に組み込まれる場合、タンパク質を膜画分から精製し得る。あるいは、タンパク質が組換え細胞(例えば、原核生物細胞)内の封入体において、適切に局在化しないか、または凝集する場合、タンパク質を、溶解細胞全体または可溶化された封入体から精製し得る。
精製を、標準的なタンパク質精製手順を使用して達成し得る。タンパク質精製手順としては、ゲル濾過クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー(RP-HPLC、イオン交換HPLC、サイズ排除HPLC)、高性能クロマトフォーカシン
グクロマトグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィー、免疫沈降、または免疫親和性精製が挙げられるが、これらに限定されない。ゲル電気泳動(例えば、PAGE、SDS-PAGE)を使用して、タンパク質またはペプチドの分子量、電荷特性、および疎水性に基づいてタンパク質またはペプチドをまた単離し得る。
プレセニリンタンパク質またはそのフラグメントはまた、例えば、抗原決定基またはポリHisタグ(例えば、QIAexpressベクター、QIAGENCorp., Chatsworth, CA)、またはより大きなタンパク質(例えば、pGEX-27ベクター(Amrad, USA)を使用するGST)またはGreenLanternベクター(GIBCO/BRL. Gaithersburg, MD)を使用する緑色蛍光タンパク質)の別のペプチドに融合した所望のプレセニリン配列を含む融合タンパク質を作製することによって、好都合に精製され得る。融合タンパク質は、原核生物細胞または真核生物細胞から発現および回収され得、そして融合ベクター配列に基づく任意の標準的な方法によって精製され得る。例えば、融合タンパク質を、融合物の非プレセニリン部分に対する抗体を用いて免疫親和性または免疫沈降によって、またはポリHisタグの場合は、ニッケルカラムに対する
親和性結合によって精製し得る。次いで、所望のプレセニリンタンパク質またはフラグメントを、融合タンパク質の酵素的切断によって融合タンパク質からさらに精製し得る。タンパク質の精製のためのこのような融合構築物の調製方法および使用方法は当該分野で周知であり、そしていくつかのキットが、現在、この目的のために市販されている。本発明の開示に照らせば、現在では、プレセニリンにこのような融合構築物を使用することが可能である。
３．プレセニリンに対する抗体
本発明はまた、プレセニリンタンパク質またはそのフラグメントに選択的に結合する抗体および抗体の作製方法を提供する。特に重要なことは、プレセニリンの機能的ドメインおよびADに関連する多型領域を同定することによって、本発明は、プレセニリンタンパク質の正常形態および変異(すなわち、病原性)形態に選択的に結合し、それゆえこれらを同定および／または識別する抗体およびそのような抗体の作製方法を提供する。本発明の抗体は、とりわけ、プレセニリンの免疫親和性精製、プレセニリンを発現する細胞または組織を同定するためのウェスタンブロッティング、およびこのタンパク質の細胞以下の位置(subcellerlocation)を確証するための免疫化学的技術または免疫蛍光技術のための研究
室用試薬としての有用性を有する。さらに、下記のように、本発明の抗体は、ADに関連するプレセニリン対立遺伝子の保有者を同定するための診断手段として、またはインビボでプレセニリンタンパク質の病原性形態に選択的に結合して、これを阻害するための治療手段として使用され得る。
本発明の抗体は、本発明のプレセニリンタンパク質の全体を使用して、またはこのタンパク質の特徴であり、そしてこのタンパク質と他の宿主タンパク質とを実質的に区別する任意のプレセニリンエピトープを使用して作製され得る。このようなエピトープは、例えば、プレセニリン配列由来の４〜10アミノ酸残基の配列と、関連する宿主由来のタンパク質配列のコンピューターデータベースとを比較することによって同定され得る。好ましくは、エピトープは、Ｎ末端もしくはＣ末端、またはこのタンパク質の膜貫通ドメインを連結するするループドメインから選択される。特に、多型Ｎ末端領域、TM1→2ループ、またはTM6→7ループに対する抗体は、診断的および治療的の両方に最大の有用性を有すると期待される。一方で、高度に保存されたドメインに対する抗体は、プレセニリンの精製または同定に最大の有用性を有すると期待される。
IBI Pustellプログラムを使用して、アミノ酸残基の位置を、hPS1タンパク質における
潜在的な抗原性部位として同定した。そして、これは、本発明の抗体の生成において有用であり得る。配列番号２における位置と対応するこれらの位置を表６に列記する。
抗原決定基を選択する他の方法はもちろん、当該分野で公知であり、そして使用される。さらに、これらのエピトープのいくつかを含む、より大きなフラグメント(例えば、８
〜20残基、または好ましくは９〜15残基)もまた使用し得る。例えば、109-112エピトープを含むフラグメントは、残基107-114、または105-116を含み得る。例えば機能的ドメイン全体または多数の機能的ドメイン(例えば、TM1、TM1→2、およびTM2またはTM6、TM6→7、ならびにTM7)を含むさらに大きなフラグメントでさえまた好ましいかもしれない。他のプレセニリンタンパク質(例えば、mPS1もしくは他の非ヒトホモログ、またはPS2)について
は、相同部位が選択され得る。
同じIBI Pustellプログラムを使用して、アミノ酸残基の位置を、hPS2タンパク質にお
ける潜在的な抗原性部位として同定した。そしてこれは、本発明の抗体の生成において有用であり得る。配列番号19における位置に対応するこれらの位置を表７に列記する。
PS1についてのように、抗原決定基を選択する方法はもちろん、当該分野で公知であり
、そして使用される。さらに、これらのエピトープのいくつかを含む、より大きなフラグメント(例えば、８〜20残基、または好ましくは９〜15残基)もまた使用され得る。例えば、310-314エピトープを含むフラグメントは、残基308-316または307-317を含み得る。例
えば機能的ドメイン全体または多数の機能的ドメイン(例えば、TM1、TM1→2、およびTM2
またはTM6、TM6→7、ならびにTM7)を含むさらに大きなフラグメントでさえまた好ましい
かもしれない。他のプレセニリンタンパク質(例えば、mPS2もしくは他の非ヒトホモログ
、またはPS1)については、相同部位が選択され得る。
プレセニリン免疫原調製物を、粗製抽出物(例えば、このタンパク質を高発現する細胞
の膜画分)から、天然もしくは組換え的にそれらを発現する細胞から実質的に精製された
タンパク質もしくはペプチドから、または短い免疫原については、化学的ペプチド合成によって生成し得る。プレセニリン免疫原はまた、非プレセニリン領域がそのアジュバント特性について選択される、融合タンパク質の形態であり得る。本明細書で使用される、プレセニリン免疫原は、本明細書中で開示されるかさもなければ可能にされるように、プレセニリンタンパク質の少なくとも４〜８個、そして好ましくは少なくとも９〜15個の連続するアミノ酸残基を含むペプチドを含有する調製物として定義されるべきである。もちろん、より少ない残基の配列もまた、意図される用途および将来の技術的発展に依存する有用性を有する。それゆえ、プレセニリンに対する抗体を生成するために使用されるプレセニリン由来の任意の配列は、プレセニリン免疫原と見なされるべきである。
本発明の抗体は、ポリクローナル抗体もしくはモノクローナル抗体であり得、またはFabフラグメント、F(ab')２、および単鎖抗体フラグメントを含む、抗体のフラグメントで
あり得る。さらに、本発明の方法によって有用な抗体を同定した後、上記で列記した任意の抗体フラグメント、ならびにプレセニリンタンパク質に対する非ヒト抗体に基づくヒト化抗体を含む、組換え抗体を生成し得る。プレセニリンタンパク質および本明細書中で可能になった他のプレセニリンの特徴付けの本開示に照らして、当業者は、当該分野で周知の任意の種々の標準的な手段によって上記の抗体を生成し得る。抗体技術の概観については、AntibodyEngineering: A Practical Guide, Borrebaek編、W. H. Freeman & Company, NY(1992), またはAntibody Engineering, 第２版、Borrebaek編、Oxford University Press,Oxford (1995)を参照のこと。
一般的な事として、適切なキャリア中のプレセニリン免疫原で、マウス、ウサギ、ヤギ、または他の適切な動物を最初に免疫することによって、ポリクローナル抗体を生成し得る。調製物の免疫原性を増加させるために、免疫原をキャリアタンパク質にカップリングさせ得るか、またはアジュバント(例えば、Freundアジュバント)と混合し得る。必要ではないが、ブースター注射が、推奨される。体液性応答を発達させるに適切な期間の後(好
ましくは数週間後)、動物から採血し、そして血清を精製してイムノグロブリン成分を単
離し得る。
同様に、一般的な事として、適切なキャリア中のプレセニリン免疫原で、マウス、ウサギ、ヤギ、または他の適切な動物を最初に注射することによってモノクローナル抗プレセニリン抗体を生成し得る。上記のように、キャリアタンパク質またはアジュバントを利用し得、そしてブースター注射(例えば、８〜10週間にわたって２または３週間おきに)が推奨される。体液性応答を発達させた後、動物を屠殺し、そして脾臓を取り出し、そして例えば、リン酸緩衝化生理食塩水(PBS)中に再懸濁する。脾細胞を、リンパ球の供給源とし
て供する。このリンパ球のいくつかは適切な特異性の抗体を産生する。次いでこれらの細胞を、不死化細胞株(例えば、ミエローマ)と融合し、そして融合産物を、HATのような選
択的薬剤の存在下で多数の組織培養ウェルに播種する。ウェルを連続的にスクリーニングし、そして有用な抗体を産生する細胞を選抜したそれぞれの時点で再播種する。代表的には、いくつかのスクリーニング手順および再播種手順を、90％を越えるウェルが、抗体産生について陽性である単一のクローンを含むまで実施する。このようなクローンによって産生されるモノクローナル抗体を、プロテインＡセファロースを使用するアフィニティークロマトグラフィーのような標準的な方法、イオン交換クロマトグラフィー、またはこれらの技術の改変または組合せによって精製し得る。
本発明の抗体を、診断的使用および／または治療的使用のために、他の化合物または材料で標識またはコンジュゲート化し得る。例えば、本発明の抗体を、画像化もしくは治療
のために放射性核種、蛍光化合物、もしくは酵素と、または特定の組織位置にリポソーム中に含まれる化合物を標的化するためのリポソームと、カップリングし得る。
４．形質転換細胞株
本発明はまた、原核生物および真核生物の両方の細胞または細胞株を提供する。これらの細胞は、本発明の核酸で形質転換またはトランスフェクトされており、その結果、これらの核酸のクローン増殖および／またはそれらにコードされるタンパク質またはペプチドの発現を引き起こす。このような細胞または細胞株は、本発明の核酸およびタンパク質の増殖および生成の両方において有用性を有するだけでなく、本明細書中でさらに記載されるように、診断アッセイおよび治療アッセイのためのモデル系としても有用性を有する。本明細書で使用される用語「形質転換細胞」は、形質転換、トランスフェクション、感染、または他の手段のいずれかによって、本発明の任意の核酸が導入された、任意の細胞または任意の細胞の子孫を含むこと意図する。適切なベクターを作製する方法、それらのベクターで細胞を形質転換する方法、および形質転換体を同定する方法は、当該分野で周知であり、そして本明細書で簡潔にのみ概説される(例えば、Sambrookら、(1989) Molecular Cloning: A Laboratory Manual,第２版、Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold
Spring Harbor, New Yorkを参照のこと)。
本発明の形質転換細胞の作製に有用な原核生物細胞としては、Escherichia（例えば、E. coli）、Pseudomonas（例えば、P. aeruginosa）、およびBacillus(例えば、B. subtillus、B. stearothermophilus）の細菌属の一員、ならびに当該分野で周知であり、そしてしばしば使用されている他の多くものが挙げられる。原核生物細胞は、本発明のタンパク質またはペプチド(例えば、正常プレセニリンまたは変異プレセニリン、プレセニリンの
フラグメント、プレセニリンの融合タンパク質)の大量生産に特に有用である。細菌細胞(例えば、E.coli)を、例えば、T7 RNAポリメラーゼ/プロモーター系、λバクテリオファージ調節配列、またはM13ファージmGPI-2を有するプラスミドを含む、種々の発現ベクター
系と共に使用し得る。細菌宿主はまた、例えば、lacZ、trpE、マルトース結合タンパク質、ポリHisタグ、またはグルタチオン-S-トランスフェラーゼ融合タンパク質を生じる融合タンパク質ベクターで形質転換され得る。これらの全て、および多くの他の原核生物発現系は、当該分野で周知であり、そして、広範に市販されている(例えば、GST融合物については、pGEX-27(Amrad,USA))。
本発明の形質転換細胞の作製に有用な真核生物の細胞および細胞株としては、哺乳動物の細胞および細胞株(例えば、PC12、COS、CHO、線維芽細胞、ミエローマ、神経芽細胞腫
、ハイブリドーマ、ヒト胚腎293、卵母細胞、胚幹細胞)、昆虫細胞株(例えば、pPbacまたはpMbac(Strategene,La Jolla, CA)のようなバキュロウイルスベクターを使用する)、酵
母(例えば、pYESHIS(Invitrogen, CA)のような酵母発現ベクターを使用する)、および真
菌が挙げられる。真核生物細胞は、プレセニリンタンパク質またはその機能的ドメインが機能を果たすこと、および／または正常タンパク質または変異タンパク質のいずれかに関連する細胞内相互作用を受けることが必要である実施態様に特に有用である。従って、例えば、形質転換真核生物細胞は、プレセニリンの機能または相互作用のモデルとしての使用のために好ましく、そして候補の治療剤のスクリーニングのためのアッセイは、好ましくは、形質転換真核生物細胞を使用する。
真核生物細胞内での発現を達成するために、人工的なプロモーターエレメントの調節下で、プレセニリンヌクレオチド配列の誘導可能な(例えば、LacSwitch発現ベクター、Stratagene, La Jolla, CA)、または同じ性質の(例えば、pcDNA3ベクター、Invitrogen,Chatsworth, CA)発現を可能にする、広範な種類のベクターが開発されており、そして市販されている。このようなプロモーターエレメントは、しばしばCMVまたはSV40ウイルス遺伝子
由来であるが、真核生物細胞内で活性な他の強いプロモーターエレメントもまた、プレセ
ニリンヌクレオチド配列の転写を誘導するために使用し得る。代表的には、これらのベクターはまた、また外因性ウイルス遺伝子配列由来であり得るかまたは他の真核生物遺伝子由来であり得る、人工的なポリアデニル化配列および3'UTRを含む。さらに、いくつかの
構築物において、人工的で、非コードの、スプライス可能なイントロンおよびエキソンがベクター中に含まれて、目的のヌクレオチド配列(この場合プレセニリン配列)の発現を増強する。これらの発現系は、通常、市販であり、そしてpcDNA3およびpZeoSV(Invitrogen,San Diego, CA)のようなベクターによって代表される。後者のベクターの両方を首尾よく使用して、トランスフェクトされたCOS、CHO、およびPC12細胞(Levesqueら、1996)内でプレセニリンタンパク質の発現を生じる。無数の市販の発現ベクターおよび注文設計された発現ベクターは、市販であり、構成的にまたは特定の外因性刺激(例えば、テトラサイク
リンの使用中止またはIPTGへの曝露)への曝露後のいずれかで、多かれ少なかれ任意の所
望の細胞型における任意の所望のプレセニリン転写物の発現を可能にする。
ベクターを、以下の当該分野で周知の種々の方法によって、レシピエントまたは「宿主」細胞に導入し得るが、これらに限定されない：リン酸カルシウムトランスフェクション、リン酸ストロンチウムトランスフェクション、DEAEデキストラントランスフェクション、エレクトロポレーション、リポフェクション(例えば、Dosperリポソームトランスフェ
クション試薬、BoehringerMannheim, Germany)、マイクロインジェクション、マイクロビーズでの弾道挿入(ballistic insertion)、プロトプラスト融合、またはウイルスベクタ
ーまたはファージベクターについては、組換えウイルスもしくはファージでの感染による。
５．トランスジェニック動物モデル
本発明はまた、アルツハイマー病の研究のため、候補の薬学的化合物のスクリーニングのため、変異型もしくは野生型のプレセニリン配列が発現されるか、またはプレセニリン遺伝子が不活化されている(例えば、「ノックアウト」欠失)、外植した哺乳動物CNS細胞
培養物(例えば、ニューロン、グリア、器官型、または混合した細胞の培養物)の作製のため、および潜在的な治療的介入の評価のための、トランスジェニック非ヒト動物モデルの作製を提供する。本発明より前に、アルツハイマー病についての部分的な動物モデルが、血小板由来増殖因子βレセプタープロモーターエレメントの調節下で、ミニ遺伝子としてヒトアミロイド前駆体タンパク質遺伝子の変異型を挿入し、そして過剰発現させることによって存在した(Gamesら、1995)。この変異体(βAPP717Val→Ile)は、高いコピー数でこ
のトランスジーンをを有するトランスジェニック動物の脳において、シナプス病理学およびアミロイドβペプチドの沈着の出現を引き起こす。トランスジェニック動物の脳におけるこれらの変化は、ヒトADに見られる変化と非常に類似している(Gamesら、1995)。しか
し、このような動物が痴呆になるかどうかはまだ明らかでないが、現在はマウスにおいてADの少なくともいくつかの局面を再現することは可能であるという一般的な総意が存在する。
本発明の動物モデルにおける使用に適切な動物種として、ラット、マウス、ハムスター、モルモット、ウサギ、イヌ、ネコ、ヤギ、ヒツジ、ブタ、および非ヒト霊長類(例えば
アカゲザル、チンパンジー)が挙げられるが、これらに限定されない。最初の研究のため
には、トランスジェニック齧歯類(例えばマウス)が、維持が比較的容易であるため、および短い寿命のために好ましい。実際、上記で留意したように、トランスジェニック酵母または無脊椎動物(例えば線虫、昆虫)は、これらがさらにより迅速かつ安価なスクリーニングを可能とするために、いくつかの研究のために好ましいかもしれない。しかし、トランスジェニック非ヒト霊長類は、それらのヒトに対するより顕著な類似性のため、およびそれらの高い認知能力のために、さらに長期間の研究に好ましいかもしれない。
本明細書中に開示されるかさもなければ可能とされる核酸を使用すれば、現在、アルツ
ハイマー病のためのトランスジェニック動物モデルの作製のためのいくつかの利用可能なアプローチが存在する。従って、可能になった動物モデルとしては、以下が挙げられる。(１)外因性もしくは内因性のプロモーターエレメントのいずれかの調節下でのさらなる遺伝子として、およびミニ遺伝子もしくは大きなゲノムフラグメントのいずれかとして、正常なヒトプレセニリン遺伝子が動物のゲノム中に組換えにより導入されている動物；相同組換えもしくは遺伝子標的化によって、正常ヒトプレセニリン遺伝子が動物の相同なプレセニリン遺伝子の１コピーもしくは両方のコピーと組換えにより置換されている動物；および／または動物の相同なプレセニリン遺伝子の１コピーもしくは両方のコピーが、相同組換えもしくは遺伝子標的化による、ヒトホモログをコードする配列の部分的置換によって、組換えにより「ヒト化」されている動物。これらの動物は、トランスジェニック手順の効果、およびヒトプレセニリン遺伝子またはヒト化プレセニリン遺伝子の導入または置換の結果を評価するために有用である。(２)外因性もしくは内因性プロモーターエレメントのいずれかの調節下でのさらなる遺伝子として、およびミニ遺伝子もしくは大きなゲノムフラグメントのいずれかとして、変異(すなわち病原性)ヒトプレセニリン遺伝子が動物のゲノム中に組換えにより導入されている動物；変異ヒトプレセニリン遺伝子が、相同組換えもしくは遺伝子標的化によって動物の相同なプレセニリン遺伝子の１コピーもしくは両方のコピーと組換えにより置換されている動物；および／または動物の相同なプレセニリン遺伝子の１コピーまたは両方のコピーが、相同組換えもしくは遺伝子標的化による変異ヒトホモログをコードする配列の部分的な置換によって、組換えにより「ヒト化」されている動物。これらの動物は、生化学的、生理学的、および／または挙動的レベルのいずれかで、アルツハイマー病またはプレセニリン遺伝子の変異に関連する他の疾患の病原である、１つ以上の対立遺伝子を有するいくつかまたは全てのヒトの特徴を示すモデルとして有用である。(３)外因性または内因性のプロモーターエレメントのいずれかの調節下でのさらなる遺伝子として、およびミニ遺伝子または大きなゲノムフラグメントのいずれかとして、その動物のプレセニリン遺伝子の１つの変異バージョン(例えば、ヒトプレセニ
リンの病原性変異の１つに対応するかもしくは類似する特異的変異を有する)が、動物の
ゲノム中に組換えにより導入されている動物；および／もしくは相同組換えもしくは遺伝子標的化によって、その動物のプレセニリン遺伝子の１つの変異バージョン(例えば、ヒ
トプレセニリンの病原性変異の１つに対応するかもしくは類似する特異的変異を有する)
が、動物の相同なプレセニリン遺伝子の１コピーもしくは両方のコピーと、組換えにより置換されている動物。これらの動物はまた、生化学的、生理学的、および／または挙動的レベルのいずれかで、アルツハイマー病の病原である１つ以上の対立遺伝子を有するいくつかまたは全てのヒトの特徴を示すモデルとして有用である。(４)この動物のプレセニリン遺伝子の１コピーもしくは両方のコピーが、相同組換えもしくは遺伝子標的化によって部分的または完全に欠失しているか、または外因性配列の(例えば、停止コドン、loxp部
位)相同組換えもしくは遺伝子標的化による挿入または置換によって不活化されている、
「ノックアウト」動物。このような動物は、プレセニリン遺伝子発現の損失が有し得る影響を研究するため、機能の損失が変異型の連続的な発現に好ましいかどうかを評価するため、およびADまたは他の疾患の処置として、変異プレセニリンを置換する(例えば、PS1をPS2で置換する)ため、またはADを引き起こす他の遺伝子(例えば、APPまたはApoE)の影響
に介入するため他の遺伝子が補充され得るかどうかを試験するためのモデルとして有用である。例えば、正常プレセニリン遺伝子は、実際にADとして発現されるために変異APP遺
伝子の作用に必要であり得、それゆえ、トランスジェニックプレセニリン動物モデルは、このような複遺伝子性相互作用の解明に有用であり得る。
動物モデル(例えば、トランスジェニックマウス)を作製するために、正常プレセニリン遺伝子もしくは変異プレセニリン遺伝子(例えば、正常または変異のhPS1、mPS1、hPS2、mPS2など)、またはプレセニリンの少なくとも１つの機能的ドメインをコードする正常バージョンまたは変異バージョン組換え核酸(例えば、ヒト変異配列に対応するヌクレオチド
配列が置換されているmPS1配列を含む組換え構築物)を、卵母細胞マイクロインジェクシ
ョンの標準的な技術、または胚幹細胞へのトランスフェクションもしくはマイクロインジェクションを使用して、生殖系列または幹細胞に挿入し得る。これらまたは同様の手順によって作製された動物を、トランスジェニックという。同様に、内因性プレセニリン遺伝子を不活化または置換することが所望される場合、胚幹細胞を使用する相同組換えが用いられ得る。これらまたは同様の手順によって作製された動物を、「ノックアウト」(不活
化)または「ノックイン」(置換)モデルという。
卵母細胞注入のために、本発明の組換えDNA構築物の１つ以上のコピーを、受精直後の
卵母細胞の前核に挿入し得る。次いで、この卵母細胞を、偽妊娠した養母に再移植する。この生産動物を、挿入された組換えトランスジーン配列の存在について、DNA(例えば、子孫マウスの尾静脈由来)分析を使用して成分をスクリーニングする。トランスジーンは、YAC、BAC、PAC、もしくは他の染色体DNAフラグメントとして注入された完全なゲノム配列
、天然プロモーターまたは異種プロモーターのいずれかを有するcDNA、または全コード領域および最適な発現に必要であることが見出されている他のエレメントを含むミニ遺伝子のいずれかであり得る。
初期胚のレトロウイルス感染もまた、本発明の組換えDNA構築物を挿入するために行わ
れ得る。この方法において、トランスジーン(例えば、正常または変異のhPS1またはPS2配列)を、キメラ(そのいくつかは、生殖系列への伝達を導く)を作製するために発達の初期
段階の間に、直接、胚(例えば、マウスまたは非ヒト霊長類の胚)を感染させるために使用されるレトロウイルスベクター中に挿入する。
幹細胞を使用する相同組換えは、希少な相同組換え事象を同定するための遺伝子移入細胞のスクリーニングを可能にする。一旦同定されると、胚盤胞の注入によってキメラを作製するためにこれらを使用し得、そして得られる動物の割合は、組換え系列からの生殖系列伝達を示す。この方法論は、プレセニリン遺伝子の不活化が所望される場合に特に有用である。例えば、マウスにおけるmPS1遺伝子の不活化は、選択的マーカーに隣接するmPS1エキソン由来の配列を含むDNAフラグメントを設計することによって達成され得る。相同
組換えは、エキソンの中央のマーカー配列の挿入を導き、mPS1遺伝子の不活化および／または内部配列の欠失を引き起こす。次いで、個々のクローンのDNA分析を使用して、相同
組換え事象を認識し得る。
トランスジェニックマウスの作製技術、および相同組換えまたは遺伝子標的化の技術は、現在、広範に受け入れられそして実施される。例えば、マウス胚の操作の実験マニュアルは、入手可能であり、トランスジェニックマウスの作製のための標準的な実験技術(Hoganら、1986)に詳細に記載されている。トランスジーンを作製するために、目的の標的配
列(例えば、変異型または野生型のプレセニリン配列)を、代表的には、プレセニリン配列からのRNAの発現を調節するいくつかのプロモーターエレメントの下流に位置するクロー
ン化部位に連結する。プレセニリン配列の下流には、代表的には人工的なポリアデニル化配列が存在する。遺伝性のヒト神経変性性疾患の局面を模倣する動物を首尾よく作製するために使用されてきたトランスジェニックモデルにおいて、最もうまくいったプロモーターエレメントは、血小板由来増殖因子β遺伝子サブユニットプロモーターおよびハムスタープリオンタンパク質遺伝子プロモーターであるが、中枢神経系細胞における発現を導く他のプロモーターエレメントもまた有用である。トランスジーンを作製するための別のアプローチは、プレセニリントランスジーンの発現を駆動するための内因性のプレセニリンプロモーターおよび調節配列の使用である。最終的に、プレセニリン遺伝子全体およびその適切な調節配列を含むYACのような大きなゲノムDNAフラグメントを使用して、トランスジーンを作製することが可能である。このような構築物は、トランスジェニックマウスにおけるヒトAPP発現を駆動するために首尾よく使用されてきた(Lambら、1993)。
動物モデルをまた、内因性プレセニリン配列を変化させるために、内因性プレセニリン遺伝子を相同組換えによって標的化することにより作製し得る。これらの標的化事象は、内因性配列を除去(ノックアウト)する効果、または内因性配列を変化させて、ヒトの疾患に関連するアミノ酸の変化または他の異常配列(例えば、元の動物の配列よりもヒトの配
列に似ている配列)を生じるという効果を有し得る(ノックイン動物モデル)。多数のベク
ターが、これを達成するために利用可能であり、そして標的化されるべきマウスおよび他の動物のゲノムについてのゲノムDNAの適切な供給源は、GenomeSystemsInc.(St. Louis, Missouri, USA)のような会社から市販されている。これらの標的化ベクター構築物の代表的な特徴は、２〜４kbのゲノムDNAが、選択マーカー(例えば、「ネオマイシンカセット」と呼ばれるネオマイシン耐性遺伝子自身のプロモーターエレメント下の細菌性ネオマイシン耐性遺伝子)の５’側に連結されていることである。次いで、目的の遺伝子由来の第２
のDNAフラグメントを、ネオマイシンカセットの下流だが第２の選択マーカー(例えば、チミジンキナーゼ)の上流に連結する。ベクターに含まれる配列のいずれか１つによる内因
性配列の相同置換によって、変異配列が標的化される動物の生殖系列に導入され得るように、このDNAフラグメントを選択する。あるいは、ネオマイシンカセットを取り囲むベク
ターの右のアームと左のアームの間に通常存在する配列の欠失を引き起こすために、配列を選択し得る。前者はノックインとして知られ、後者はノックアウトとして知られる。さらに、特に、神経変性性疾患に関連する遺伝子を含む遺伝子の標的化されたノックアウトのために、無数のモデル系が作製された(例えば、Zhengら、1995によるマウスAPP遺伝子
の標的化された欠失；Buelerら、1996による成人発症性ヒトCNS変性に関連するマウスプ
リオン遺伝子の標的化された欠失)。
最終的に、トランスジェニック動物(変異または不活化したプレセニリン遺伝子を有す
る動物を含む)の等価物を、接合子の化学的変異誘発またはｘ線変異誘発とその後の受精
を使用して作製し得る。本明細書中に開示されるかまたは可能とされる単離された核酸を使用して、当業者は、得られた子孫を、例えば、変異体を検出するための直接的配列決定RFLP、PCR、もしくはハイブリダイゼーション分析、または量により１つの対立遺伝子の
欠失を実証するためのサザンブロッティングによって、より迅速にスクリーニングし得る。
６．プレセニリン発現に影響を与える薬物についてのアッセイ
別の一連の実施態様において、本発明は、プレセニリン遺伝子およびタンパク質(例え
ば、PS1またはPS2)の発現を誘導または阻害し得る低分子または他の化合物を同定するた
めのアッセイを提供する。このアッセイを、非形質転換細胞、不死化細胞株、もしくは組換え細胞株を使用してインビトロで実施し得るか、または本明細書中で可能になったトランスジェニック動物モデルを使用してインビボで実施し得る。
特に、このアッセイは、mRNA発現の増大または減少に基づく、PS1、PS2、もしくは他のプレセニリン関連遺伝子またはタンパク質の発現の増大または減少(例えば、本明細書中
で開示されるかまたは可能になった核酸プローブを使用して)、PS1、PS2、もしくは他の
プレセニリン関連タンパク質産物のレベルの増大もしくは減少(例えば、本明細書中で開
示されるかまたは可能になった抗プレセニリン抗体を使用して)、または組換え構築物に
おいてプレセニリンの５’調節領域に作動可能に連結されたマーカー遺伝子(例えば、β-ガラクトシダーゼまたはルシフェラーゼ)の発現レベルの増大もしくは減少の存在を検出
し得る。
従って、例えば、特定のプレセニリンを発現することが知られる細胞を培養し得、そして１つ以上の試験化合物の培養培地に添加し得る。化合物がプレセニリン発現を誘導または阻害するに十分な時間(例えば、０〜72時間)を経た後、発現レベルにおける確立されたベースラインからのいかなる変化も、上記および当該分野で周知の任意の技術を使用して
検出し得る。特に好ましい実施態様において、細胞は、ヒト神経芽細胞腫、神経膠芽細胞腫、またはハイブリドーマ細胞株のような不死化細胞株由来である。本明細書中で開示されそして可能になった核酸プローブおよび／または抗体を使用して、プレセニリンの発現における変化の検出、従って、プレセニリン発現のインデューサーまたはリプレッサーとしての化合物の同定は、日常的な実験しか必要としない。
特に好ましい実施態様において、β-ガラクトシダーゼ、緑色蛍光タンパク質、アルカ
リホスファターゼ、またはルシフェラーゼのようなレポーター遺伝子がプレセニリン遺伝子の５’調節領域に作動可能に連結される、組換えアッセイを使用する。好ましいベクターとしては、GreenLantern 1ベクター(GIBCO/BRL, Gaithersburg, MD)、およびGreat EScAPe pSEAPベクター(Clontech,Palo Alto)が挙げられる。本明細書中で開示されるhPS1調
節領域または他のプレセニリン調節領域は、これらの遺伝子のコード領域についての本明細書の開示に照らして、当業者によって容易に単離およびクローン化され得る。レポーター遺伝子および調節領域は、レポーター遺伝子の転写および翻訳が、プレセニリン調節エレメントの制御下で進行し得るようにインフレームで(または３つの可能なリーディング
フレームの各々において)連結される。次いで、組換え構築物を任意の適切な細胞型(哺乳動物細胞が好ましく、そしてヒト細胞が最も好ましいが)中に導入し得る。形質転換細胞
を培養して増殖し得、そしてレポーター遺伝子の発現レベルのベースラインを確立した後に、試験化合物を培地に添加し得る。レポーター遺伝子の発現の検出が容易であるため、プレセニリン遺伝子のインデューサーおよびリプレッサーの同定のための迅速で高処理量のアッセイが提供される。
この方法により同定された化合物は、PS1、PS2、または他のプレセニリン関連遺伝子の発現をインビボで改変するのに潜在的な有用性を有する。これらの化合物を、本明細書中で開示されそして可能になった動物モデルにおいてさらに試験し、最も強力なインビボでの効果を有する化合物を同定し得る。さらに、プレセニリン結合活性を有する低分子に関して本明細書中で記載したように、これらの分子は、例えば、連続的改変、分子のモデル化、および合理的なドラッグデザインにおいて使用される他の日常的な手順にこの化合物を供することによって、医薬品のさらなる開発のための「リード化合物」として役立ち得る。
７．プレセニリン結合性能力を有する化合物の同定
本開示に照らして、当業者は、プレセニリンに結合する、そうでなければ直接的に相互反応するタンパク質または他の化合物の同定に有用である新たなスクリーニング方法を実施し得る。タンパク質および化合物は、インビボでプレセニリンと相互作用し、従って、薬学的および治療的介入、ならびにプレセニリン結合能力を有し得、従って、薬学的薬剤についての候補であり得る、組換え、合成、およびそうでなければ内因性の化合物についての新たな標的を提供する内因性細胞成分を含む。従って、一連の実施態様において、細胞溶解物または組織ホモジネート（例えば、ヒト脳ホモジネート、リンパ球溶解物）を、正常または変異プレセニリンの１つに結合するタンパク質または他の化合物についてスクリーニングし得る。あるいは、任意の種々の内因性化合物（天然に生じるおよび／または合成の両方（例えば、低分子またはペプチドのライブラリー））は、プレセニリン結合能力についてスクリーニングされ得る。低分子はこの意味で特に好ましい。なぜなら、それらは経口投与後により容易に吸収され、より少ない潜在的抗原決定基を有し、そして／あるいは核酸またはタンパク質のようなより大きい分子よりも、血液脳関門をより横断しそうであるからである。本発明の方法は、それらを用いて、（正常形態よりはむしろ）プレセニリンタンパク質の変異形態に選択的または優先的に結合する、従って、この優性常染色体疾患のヘテロ接合性の犠牲者の処置において特定の有用性を有し得る分子を同定し得る点で特に有用である。
PS1およびPS2の正常な生理学的役割はなお未知であるので、これらのプレセニリンの正常、変異または両方の形態に結合する化合物は、処置および診断に対して有用性を有し得る。正常プレセニリンにのみ結合する化合物は、例えば、その正常活性のエンハンサーとして作用し得、それにより、アルツハイマー病の犠牲者におけるプレセニリンの変異形態の失われたまたは異常な活性を少なくとも部分的に補い得る。プレセニリンの正常および変異の両方の形態に結合する化合物は、正常機能からの全体の逸脱を軽減するように、それらが２つの形態の活性にディファレンシャルに影響する場合、有用性を有し得る。あるいは、PS1またはPS2いずれかの正常および変異形態の両方の活性のブロックは、疾患の通常の進行よりも重篤でない生理学的および臨床的結果を有し得、従って、プレセニリンの正常および変異の両方の形態に結合し、そしてその活性を阻害する化合物は、治療的に有用であり得る。しかし、好ましくは、正常プレセニリンよりも変異プレセニリンに対して高い結合親和性を有し（例えば、少なくとも２〜10倍は高いKａ）、そして変異形態の活
性を選択的または優先的に阻害する化合物が同定される。このような化合物は、本明細書中に記載の任意の技術を用い、次いで、PS1またはPS2の正常および変異形態に対して候補化合物（単数または複数）の結合親和性を比較することによって、同定され得る。
プレセニリン（正常または変異形態）に結合する薬剤の効果は、装置（例えば、BIAcore,LKB Pharmacia，Sweden）を用いてこの結合を直接モニターして、この結合を、例えば
、可溶性相または基質−結合相のいずれかにおいて、結合薬剤またはプレセニリン成分のいずれかの蛍光、分子量、または濃度の変化によって検出することによって、モニターされ得る。
一旦上記の方法によって同定されると、次いで、候補化合物は薬学的投与または試験のために十分な量で（例えば、μgまたはmgまたはより大きい量）で生産され得、そして薬
学的に受容可能なキャリア（例えば、Remington'sPharmaceutical Sciences, Gennaro, A.編, Mack Pub., 1990を参照のこと)中に処方さ得る。次いで、これらの候補化合物は、
本発明の形質転換細胞、本発明のトランスジェニック動物モデル、動物モデルまたはヒト患者由来の細胞株、またはアルツハイマー患者に投与され得る。本明細書中に記載されそして実施可能にされた動物モデルは、それらの治療効力について正常または変異プレセニリンに結合する候補化合物をさらに試験するのに特に有用である。
さらに、一旦上記の方法によって同定されると、候補化合物は、新たな医薬の設計および開発において「リード化合物」としても作用し得る。例えば、当該分野で周知であるように、低分子の連続的な修飾（例えば、ペプチドについてのアミノ酸残基置換；ペプチドまたは非ペプチド化合物についての官能基置換）は、新たな医薬の開発のための、医薬産業における標準的なアプローチである。一般に、このような開発は、所望の医薬の活性（例えば、PS1結合またはブロック活性）のうちの少なくともいくつかを有することが示さ
れている「リード化合物」から進行する。特に、目的の少なくともいくつかの活性（例えば、プレセニリン活性の調節）を有する１以上の化合物が同定されると、分子の構造的比較は、保存されているはずであるリード化合物の部分、および新たな候補化合物の設計において変化され得る部分を示唆することによって、当業者に大いに情報を与え得る。従って、本発明は、順次に修飾され得、アルツハイマー病の処置における使用のための新たな候補化合物を生成するリード化合物を同定する手段も提供する。次いで、これらの新たな化合物は、プレセニリン−結合またはブロックについて（例えば、上記の結合アッセイにおいて）、および治療効力について（例えば、本明細書に記載の動物モデルにおいて）の両方で試験され得る。この手順は、所望の治療活性および／または効力を有する化合物が同定されるまで、反復され得る。
本発明の一連の各々の実施態様において、アッセイを行って、「プレセニリン成分」といくつかの他の部位との間の結合を検出する。特に有用なのは、連続的なアッセイであり
、ここで、化合物は、結合アッセイにおいて変異および正常プレセニリン成分を用いて、プレセニリンの機能的ドメインの正常形態のみまたは変異形態のみに結合する能力について試験される。このような化合物は、以下により詳細に記載するように、最大の治療的有用性を有すると予測される。これらのアッセイにおける「プレセニリン成分」は、プレセニリンタンパク質の完全に正常な形態または変異形態（例えば、hPS1またはhPS2変異体）であり得るが、そうである必要はない。むしろ、上記のように、プレセニリンの特定の機能的ドメインは、別々の分子としてまたは融合タンパク質の一部としてのいずれかで用いられ得る。例えば、これらの機能的ドメインと相互作用するタンパク質または化合物を単離するために、融合構築物および／またはこれらの領域に対応する合成ペプチドを用いてスクリーニングを行い得る。従って、PS2については、アミノ酸１〜87（Ｎ末端）、また
は269〜387（TM6→7ループ）に、あるいは目的の任意の他の保存ドメインにほぼ対応する配列を含めて、GST−融合ペプチドを作製し得る。より短い機能的ドメインについては、
例えば、アミノ酸107〜134（TM1→2ループ）にほぼ対応する合成ペプチドを生産し得る。同様に、PS1については、アミノ酸１〜81（Ｎ末端）または266〜410（TM6→7ループ）に
ほぼ対応する配列を含めて、GTS−または他の融合タンパク質を生産し得る。あるいは、
アミノ酸101〜131（TM1→2ループ）にほぼ対応する合成ペプチドが生産され得る。明らかに、融合タンパク質およびプレセニリン機能的ドメインの種々の組合せが可能であって、そしてこれらは例に過ぎない。さらに、機能的ドメインを変化させて、例えば、ドメインを基材上に固定化する（例えば、スルフヒドリル反応を用いて）ことを容易にする、反応性基またはアミノ酸残基（例えば、システイン）を、機能的ドメインに導入することによって、アッセイを補助し得る。従って、例えば、さらなるＣ末端システイン残基を含有する、PS1TM1→2ループフラグメント（31マー）が合成された。このペプチドは、アフィニ
ティークロマトグラフィー（Sulfo-link, Pierce)のためのアフィニティー基材を作製し
て、マイクロ配列決定のための結合タンパク質を単離するために使用される。同様に、修飾された残基を用いて、他の機能的ドメインまたは抗原性フラグメントを作製し得る（例えば、実施例10を参照のこと）。
これらの方法によって同定されるタンパク質または他の化合物は、当該分野で公知の任意の標準的方法によって、精製および特徴付けされ得る。タンパク質は、例えば、電気泳動（例えば、SDS-PAGE、2D PAGE）またはクロマトグラフィー（例えば、HPLC）技術を用
いて精製および分離され得、次いで、マイクロ配列決定され得る。ブロックされたＮ末端を有するタンパク質については、特定の結合タンパク質の切断（例えば、CNBrおよび／またはトリプシンによる）を用いて、ペプチドフラグメントを放出させ得る。HPLCによるさらなる精製および／または特徴付け、ならびに従来法によるミクロ配列決定および／または質量分析は、このようなブロックされたタンパク質の内部配列データを提供する。非タンパク質化合物については、標準的有機化学分析技術（例えば、IR、NMRおよび質量分析
；官能基分析；Ｘ線結晶解析）を用いて、それらの構造および正体（identity）を決定し得る。
細胞溶解物、組織ホモジネート、または低分子ライブラリーを、候補プレセニリン−結合分子についてスクリーニングする方法は、当該分野で周知であり、そして本開示に照らして、今や、それを用いて、正常または変異プレセニリン化合物に結合する、あるいは非特異的尺度（例えば、細胞内Ca2+、GTP／GDP比の変化）によって、または特異的尺度（例えば、Aβペプチド産生の変化またはディファレンシアルディスプレイ、2Dゲル電気泳動
、ディファレンシアルハイブリダイゼーション、またはSAGE方法によってモニターされ得る、他の下流遺伝子の発現の変化）によって定義される、プレセニリン活性を調節する化合物を同定し得る。好ましい方法は、以下の技術の変形を含む：（１）アフィニティークロマトグラフィーによる直接的抽出；（２）免疫沈降によるプレセニリン成分および結合タンパク質または他の化合物の同時単離；（３）BiomolecularInteraction Assay (BIAcore)；ならびに（４）酵母ツーハイブリッドシステム。これらおよび他のものを、以下に
別々に議論する。
Ａ．アフィニティークロマトグラフィー
本開示に照らして、当該分野で周知の種々のアフィニティー結合技術を用いて、本明細書において開示されたまたは実施可能にされたプレセニリンに結合するタンパク質または他の化合物を単離し得る。一般に、プレセニリン成分は、基材（例えば、カラムまたはフィルター）上に固定化され得、そして試験化合物（単数または複数）を含む溶液を、結合に許容性の条件下でプレセニリンタンパク質、融合体またはフラグメントと接触させる。次いで、基材を溶液で洗浄して、非結合のまたは弱く結合した分子を除去する。次いで、第２の洗浄により、固定化された正常または変異プレセニリン成分に強力に結合するこれらの化合物を溶出させ得る。あるいは、試験化合物を固定化し得、そして１つ以上のプレセニリン成分を含有する溶液を、カラム、フィルターまたは他の基材と接触させ得る。プレセニリン成分が試験化合物に結合する能力は、上記のように測定され得るか、またはプレセニリン成分の標識形態（例えば、放射性標識されたまたは化学ルミネセンス性の機能的ドメイン）を用いて、基材−固定化化合物への結合をより迅速に評価し得る。さらに、PS1およびPS2の両方は膜会合タンパク質であると考えられているので、プレセニリンタンパク質、融合体またはフラグメントを脂質二重層例えば、リポソーム）に組み込んで、これらの適切な折り畳みを促進することが好ましくあり得る。これは特に、少なくと別の膜貫通ドメインを含むプレセニリン成分を使用する場合に真である。このようなプレセニリン−リポソームは、基材に固定化され得（直接的またはリポソーム膜中の別のエレメントによる）、固定化された試験化合物で基材を通過されせ得るか、あるいは膜タンパク質のための任意の他の周知の種々の結合アッセイにおいて使用され得る。あるいは、プレセニリン成分は、成分を産生する細胞由来の膜画分中に単離され得、そしてこの膜画分は結合アッセイにおいて使用され得る。
Ｂ．免疫共沈
プレセニリン成分およびそれらの関連タンパク質または他の化合物の単離のための、別の十分に特徴付けられた技術は、抗体を用いる直接的免疫沈降である。この手順は、例えば、多くのシナプス小胞関連タンパク質を単離するために首尾よく用いられた（PhizickyおよびFields, 1994)。従って、正常または変異、遊離または膜結合のいずれかのプレセ
ニリン成分を、結合に許容性の条件下で候補化合物（単数または複数）と溶液中で混合し得、そしてプレセニリン成分を、免疫沈降させ得る。次いで、プレセニリン成分と免疫共沈するタンパク質または他の化合物を、上記の標準的な技術によって同定し得る。免疫沈降のための一般的技術は、例えば、HarlowおよびLane(1988), Antibodies: A Laboratory
Manual, Cold Spring Harbor Press, ColdSpring Harbor, NYに見出され得る。
このアッセイにおいて使用される抗体は、本明細書において記載されそして実施可能にされたように、ポリクーナルまたはモノクローナルであり得、そして種々の抗体フラグメント（例えば、Fab、F(ab')2）および単鎖抗体などを含む。
Ｃ．Biomolecular Interaction Assay
結合タンパク質の検出および単離のための別の有用な方法は、PharmaciaBiosensorによって開発され、そして製造者のプロトコルに記載されている（LKB Pharmacia,スウェー
デン）BiomolecularInteraction Assayまたは「BIAcore」システムである。本開示に照らして、当業者は、今や、このシステム、または実質的な等価物を使用して、プレセニリン結合能力を有するタンパク質または他の化合物を同定し得る。BIAcoreシステムは、アフ
ィニティー精製抗GST抗体を用いて、GST融合タンパク質をセンサーチップ上に固定化させる。明らかに、他の融合タンパク質および対応する抗体は、置換され得る。センサーは、屈折率の変化を検出する光学的現象である表面プラズモン共鳴を利用する。目的の組織のホモジネートを固定化融合タンパク質に通し、そしてタンパク質−タンパク質相互作用を
屈折率の変化として記録する。このシステムを用いて、結合の反応速度を測定し得、そして全ての観察された結合が生理学的関連であるか否かを評価し得る。
Ｄ．酵母ツーハイブリッドシステム
酵母「ツーハイブリッド」システムは、２つの物理的に分離可能な、機能的ドメインからなる転写因子を利用する（PhizickyおよびField, 1994)。最も一般に使用されるのは、DNA結合ドメインおよび転写活性化ドメインよりなる酵母GAL4転写アクチベーターである
。２つの異なるクローニングベクターを用いて、潜在的な結合タンパク質をコードする遺伝子に対するGAL4ドメインの別々の融合体を生じさせる。融合タンパク質を同時発現させ、核に標的化し、そしてもし相互作用が起これば、レポーター遺伝子（例えば、lacZ）の活性化により検出可能な表現型を生じる。例えば、ClontechMatchmaker System-2を、プ
レセニリン−GAL4結合性ドメイン融合クローンを用いて、Clontech 脳cDNA GAL4活性化ドメイン融合ライブセリーとともに用い得る（Clontech,Palo Alto, CA)。本明細書におけ
る開示に照らして、当業者は、今や、プレセニリンタンパク質の正常または変異機能的ドメインのいずれかを含む融合を含む、種々のプレセニリン融合体を生産し、そしてプレセニリン結合タンパク質を同定するためにこのような融合ライブセリーをスクリーニングすることが実施可能である。
Ｅ．他の方法
これらの核酸の変異形態および正常形態の両方、ならびにそれらの対応するタンパク質を含むヌクレオチド配列およびタンパク質産物を、前記技術とともに用いて、他の相互作用性タンパク質を単離し、そしてその発現が正常プレセニリン配列の過剰発現によつて、正常プレセニリン配列の過小発現によって、または変異プレセニリン配列の発現によって変化される他の遺伝子を同定し得る。これらの相互作用性タンパク質の同定、および（例えば）その発現レベルが変異プレセニリン配列に直面して変化される他の遺伝子の同定により、その臨床的または病理学的形態においてこの疾患の病状に対して直接的関連を有する他の遺伝子標的が同定される。詳細には、それ自体がアルツハイマー病を引き起こす他の変異の部位であり得る、あるいはこの疾患のための潜在的処置としてそれ自体が治療的に標的化され得る（例えば、それらの発現レベルを正常まで低下させるため、またはそれらの過剰発現の影響を薬理学的にブロックするために）、他の遺伝子が同定される。詳細には、これらの技術は、PCRに基づくおよび／またはハイブリダイゼーションに基づく方
法に依存して、２つの条件（変異プレセニリン配列を発現する同一細胞型と比較しての、正常プレセニリンを発現する細胞株）の間でディファレンシャルに発現される遺伝子を同定する。これらの技術は、ディファレンシャルディスプレイ、遺伝子発現の連続的分析（SAGE）、およびタンパク質2D−ゲルの質量分析、およびサブトラクティブハイブリダイゼーションを含む（Nowak,1995およびKahn, 1995に概説される)。
当業者に明白なように、正常または変異プレセニリン成分に結合する分子を同定するための、個々のタンパク質または他の化合物、あるいはタンパク質または他の化合物の大きなライブラリー（例えば、Stratagene, La Jolla,カリフォルニアからのファージディス
プレイライブラリーおよびクローニングシステム）をスクリーニングする多数の他の方法が存在する。これらの方法の全ては、正常または変異のプレセニリンタンパク質、融合体、またはフラグメントを試験化合物と混合し、結合させ（もしあれば）、そして結合複合体についてアッセイする工程を包含する。全てのこのような方法が、今や、実質的に純粋なプレセニリン、実質的に純粋なプレセニリン機能的ドメインフラグメント、プレセニリン融合タンパク質、プレセニリン抗体、およびそれらを作製しそして使用する方法の本開示によって、実施可能にされる。
８．プレセニリン活性を調節する化合物を同定する方法
別の一連の実施態様において、本発明は、正常および変異のプレセニリンの活性を調節
する能力を有する化合物を同定する方法を提供する。この一連の実施態様に関して用いられる、用語「活性」は、遺伝子およびタンパク質発現、プレセニリンタンパク質翻訳後プロセシング、トラフィッキングおよび局在化、ならびに任意の機能的活性（例えば、酵素、レセプター−エフェクター、結合、チャンネルの）、ならびに任意のこれらの下流影響を広く含む。プレセニリンは、通常は小胞体および／またはゴルジ装置と会合した内在性膜タンパク質であるようであり、そしてAPPの輸送またはトラフィッキングおよび／また
は細胞内カルシウムレベルの調節に関与する機能を有し得る。さらに、プレセニリン変異は、Aβペプチドの生産の増大、アミロイド斑および神経細線維もつれの出現、認識機能
の低下、およびアポトーシス細胞死に関連することが知られている。従って、本発明の形質転換細胞およびトランスジェニック動物モデル、変異プレセニリン遺伝子を有する被験体または天然に生じるプレセニリン変異を有する動物もしくはヒトの被験体から得られた細胞を用いて、今や、正常または変異のプレセニリン発現の１つ以上のこれらの機能的特徴または表現型発現の変化を検出することによって、候補医薬および処置を、それらの治療的効果についてスクリーニングし得る。
従って、本発明は、細胞をインビボまたはインビトロで候補化合物と接触させ、そして正常または変異のプレセニリン活性に関連したマーカーの変化についてアッセイすることによって、プレセニリン活性を調節するタンパク質、低分子、または他の化合物をスクリーニングまたはアッセイする方法を提供する。プレセニリン活性に関連したマーカーは、プレセニリン発現に関連する、任意の測定可能な生物学的、生理学的、組織学的、および／または挙動的特徴であり得る。特に、有用なマーカーは、それらの正常なカウンターパートから、少なくとも１つの変異プレセニリン遺伝子を有する細胞、組織、動物、または個体を区別する、任意の測定可能な生物学的、生理学的、組織学的、および／または挙動的特徴を含む。さらに、マーカーは、任意のプレセニリン活性の特異的または非特異的尺度であり得る。プレセニリン特異的尺度は、本発明の核酸プローブまたは抗体を使用し得る、プレセニリン発現の尺度（例えば、プレセニリンmRNAまたはタンパク質レベル）を含む。非特異的尺度は、cytosensor microphysiometer（MolecularDevices Inc.,United States)のようなデバイスでモニターされ得る、pH、細胞内カルシウム、サイクリックAMPレベル、GTP/GDP比、ホスファチジルイノシトール活性、タンパク質リン酸化などのような
細胞生理学の変化を含む。その変異形態または正常形態におけるプレセニリン活性の活性化または阻害はまた、アルツハイマー病に至るプレセニリン経路に特異的な他の遺伝子の発現の変化を検討することによってモニターされ得る。これらは、ディファレンシャルディスプレイ、ディファレンシャルハイブリダイゼーション、およびSAGE（遺伝子発現の連続的分析）のような技術によって、ならびに細胞溶解物の二次元ゲル電気泳動によって、アッセイされ得る。各場合において、ディファレンシャルに発現される遺伝子は、候補化合物の適用の前後の同一の研究の点検によって確認され得る。さらに、他所で記載するように、その発現が候補化合物の投与によって調節される特定の遺伝子は、クローニング、ヌクレオチド配列決定、アミノ酸配列決定、または質量分析によって確認され得る（Nowak,1995に概説される)。
一般に、細胞を候補化合物と接触させ、そして適切な期間の後（例えば、培養細胞のほとんどの生化学的尺度については０〜72時間）、プレセニリン活性のマーカーをアッセイし、そしてベースライン測定値と比較し得る。ベースライン測定値は、細胞と候補化合物との接触の前になされ得、または他の実験によって確立されたもしくは当該分野で公知の外部ベースラインであり得る。細胞は、本発明の形質転換細胞であり得、または動物もしくは個体由来の外植片であり得る。特に、細胞は、プレセニリン変異の保因者（例えば、アルツハイマー病を有するヒト被験体）または本発明の動物モデル（例えば、変異プレセニリン遺伝子を有するトランスジェニック線虫またはマウス）由来の外植片であり得る。Aβ経路に対するプレセニリン変異の効果を増大させるためには、増加したAβ産生を有するトランスジェニック細胞または動物が使用され得る。好ましい細胞は、ニューロン細胞
、神経膠細胞または混合細胞の培養物のような神経組織；および培養線維芽細胞、肝臓、腎臓、脾臓、または骨髄由来の細胞を含む。細胞は、インビトロにおいて培養物中の候補化合物と接触され得るか、またはインビボにおいて生存動物もしくはヒト被験体に投与され得る。生存動物またはヒト被験体については、試験化合物を経口または化合物に適切な任意の非経口経路によって投与し得る。ヒト被験体の臨床試験については、測定は数ヶ月または数年の間定期的に（例えば、毎日、毎週、または毎月）行い得る。
プレセニリン変異の保因者のほとんどはヘテロ接合型であるので（すなわち、１つの正常および１つの変異プレセニリン対立遺伝子を有する）、化合物を正常およびプレセニリン活性を調節するそれらの能力について試験し得る。従って、例えば、正常プレセニリンの機能を増強する化合物は、アルツハイマー病のようなプレセニリン関連障害の処置において有用性を有し得る。あるいは、ヘテロ接合型個体における正常および変異プレセニリンの両方の活性の抑制は、関連疾患の進行よりも低い重篤度の臨床的結果を有し得るので、全ての形態のプレセニリンを不活化または抑制する化合物を同定することが所望され得る。しかし、好ましくは、正常プレセニリンの遺伝子またはタンパク質の機能を破壊することなく、変異プレセニリンの活性を選択的または特異的に不活化または抑制する化合物が同定される。
本発明のプレセニリンの遺伝子およびタンパク質の本明細書中における同定、特徴付け、および開示、プレセニリンの核酸プローブおよび抗体、ならびにプレセニリン形質転換細胞およびトランスジェニック動物に照らして、当業者は、今や、候補化合物によるプレセニリン活性の調節を検出する非常に多様なアッセイを行うことが実施可能にされる。特に好ましいそして意図される実施態様は、以下にいくぶん詳しく議論される。
Ａ．プレセニリン発現
一連の実施態様において、プレセニリン発現の特異的尺度が、プレセニリン活性に影響するそれらの能力について候補化合物をスクリーニングするために使用される。従って、本明細書において開示された、そして実施可能にされたプレセニリンの核酸および抗体を用いて、mRNAレベルまたはタンパク質レベルを、プレセニリン活性を調節する候補化合物の能力のためのマーカーとして使用し得る。このようなプローブおよび抗体の、遺伝子およびタンパク質発現を測定するための使用は当該分野で周知であり、そして本明細書中の他所で議論される。特に目的とするのは、プレセニリンの異なるスプライス変異体の相対的レベルを変化させ得る化合物の同定であり得る。例えば、アルツハイマー病に関連したプレセニリン変異の多くは、いくつかの末梢組織（例えば、白血球）におけるオルタナティブスプライシングに供される推定TM6→7ループの領域に位置する。従って、このスプライシング事象の相対的頻度を増加させ得る化合物は、この領域における変異の発現を妨げるのに有効であり得る。
Ｂ．細胞内局在化
別の一連の実施態様において、プレセニリンのトラフィッキングおよび細胞内局在化に対するこれらの効果に基づいて、プレセニリンの活性を調節するそれらの能力について、化合物をスクリーニングし得る。プレセニリンは免疫細胞化学的に、小胞体およびゴルジ装置と会合する膜構造に局在化されると見られ、そして１つのプレセニリン変異体（H163R）（他は違う）は未知の機能の小さい細胞質小胞中で可視化された。従って、変異およ
び正常プレセニリンの局在化の差異は、プレセニリン関連疾患の病因に寄与し得る。従って、プレセニリンの局在化に影響し得る化合物は、潜在的治療剤として同定され得る。当該分野で公知の標準的技術を用いて、プレセニリンの局在化を検出し得る。一般に、これらの技術は、本発明の抗体、特に１つ以上の変異プレセニリンに選択的に結合するが、正常プレセニリンには選択的に結合しない抗体を使用する。当該分野で周知のように、このような抗体は、プレセニリンの細胞内位置を可視化することを補助するために、任意の種
々の技術（例えば、蛍光または放射性タグ、標識二次抗体、アビジン−ビオチンなど）によって標識され得る。当該分野で公知のように、プレセニリンは、これらの構造のマーカーに対する抗体（例えば、ゴルジに対するTGN38、ゴルジ後輸送小胞に対するトランスフ
ェリンレセプター、リソソームに対するLAMP2）を用いて、特定の構造に共局在化（co-localize）され得る。異なる細胞内膜結合オルガネラ（例えば、リソソーム、シナプトソーム、ゴルジ）についての富化された細胞溶解物由来の精製画分のウェスタンブロットもまた使用され得る。さらに、細胞ドメインを横切るプレセニリンの異なるドメインの相対的方向は、例えば、電子顕微鏡およびそれらのドメインに対して惹起された抗体を用いてアッセイされ得る。
Ｂ．イオン調節／代謝
別の一連の実施態様において、化合物を、細胞内Ca2+、Na+またはK+レベル、あるいは
代謝における尺度に基づいて、プレセニリンの活性を調節するそれらの能力についてスクリーニングし得る。上記のように、プレセニリンはイオンレセプターまたはイオンチャンネルとして作用し得る、あるいはそれと相互作用し得る膜会合タンパク質である。従って、化合物を、インビボまたはインビトロのいずれかでプレセニリン関連のカルシウムまたは他のイオン代謝を調節するそれらの能力について、パッチクランプ、電圧クランプおよび細胞内カルシウムまたは膜貫通電圧に感受性の蛍光色素を用いて、イオンチャンネルフラックスおよび／または膜貫通電圧または電流フラックスの測定によって、スクリーニングし得る。イオンチャンネルまたはレセプター機能はまた、サイクリックAMP、cGMPチロ
シンキナーゼ、リン酸、細胞内Ca2+レベルの増加などのようなセカンドメッセンジャーの活性化の測定によってアッセイされ得る。また、組換えにより作製されたタンパク質を人工膜系中に再構築して、イオンチャンネルコンダクタンスを研究し得、そして従って、このようなアッセイで使用される「細胞」は人工膜または細胞を含み得る。イオン調節または代謝の変化についてのアッセイは、内因性正常または変異プレセニリンを発現する培養細胞に対して行われ得る。このような研究は、正常形態または変異形態の、プレセニリンの１つを、またはプレセニリンの１つの機能的ドメインを発現し得るベクターでトランスフェクトされた細胞に対して行い得る。さらに、このようなアッセイにおいて測定されたシグナルを増強させるために、細胞をイオンチャンネルタンパク質をコードする遺伝子で同時トランスフェクトし得る。例えば、Xenopus卵母細胞またはラット腎臓（HEK293）細
胞を、正常または変異プレセニリン配列およびラット脳Na+β1サブユニット、ウサギ骨格筋Ca2+β1サブユニット、またはラット心臓K+β1サブユニットをコードする配列で同時トランスフェクトし得る。プレセニリン関連またはプレセニリン媒介性イオンチャンネル活性の変化は、卵母細胞における２-ミクロ電極電圧クランプ記録によって、またはHEK293
細胞における全細胞パッチクランプ記録によって測定され得る。
Ｃ．アポトーシスまたは細胞死
別の一連の実施態様において、化合物を、プレセニリン関連またはプレセニリン媒介性アポトーシスまたは細胞死に対するそれらの効果に基づき、プレセニリンの活性を調節するそれらの能力についてスクリーニングし得る。従って、例えば、アポトーシスまたは細胞死のベースライン率を、培養物中の細胞について確立し得るか、または特定の年齢におけるニューロン損失のベースライン度を、動物モデルまたはヒト被験体について、死後に確立し得、そしてアポトーシスまたは細胞死を抑制するまたは阻害する候補化合物の能力を測定し得る。細胞死は標準的な顕微鏡技術（例えば、光学顕微鏡）によって測定され得、あるいはアポトーシスは、ヌクレオソームラダーを生じる特徴的な核形態またはDNAフ
ラグメント化パターンによって、より特異的に測定され得る（例えば、Gavieliら, 1992;
Jacobsonら, 1993;Vitoら, 1996を参照のこと)。TUNELも、脳における細胞死を評価するために用いられ得る（例えば、Lassmannら, 1995を参照のこと)。好ましい実施態様にお
いて、化合物を、本発明のトランスジェニック動物モデルにおけるニューロン損失を抑制または阻害するそれらの能力について、スクリーニングし得る。例えば、変異ヒト、変異
マウス、またはヒト化変異プレセニリン遺伝子を有するトランスジェニックマウスを使用して、アルツハイマー病に関連する神経変性を遅延または停止し得る化合物を同定または評価し得る。変異APP遺伝子を有する同様のトランスジェニックマウスモデルが、Gamesら(1995)によって最近報告されている。
Ｄ．Aβペプチド産生
別の一連の実施態様において、化合物を、APPプロセシングのプレセニリン関連または
プレセニリン媒介性変化を調節するそれらの能力について、スクリーニングし得る。APP
プロセシングにおける差違から生じたいくつかのイソ型で、Aβペプチドを産生する。Aβペプチドは、散在性および老人性斑において、およびADを有する被験体の血管において、進行性に沈積するβAPPの39〜43アミノ酸の誘導体である。ヒト脳において、AβペプチドはＮおよびＣ末端の両方において不均質である。しかし、いくつかの観察は、全長形態および、残基42または43で終結する長テールAβペプチドのＮ末端短縮型(すなわち、Aβ1-42/43およびAβx-42/43）の両方が、残基40で終結するペプチドよりも、ADにおいてより重要な役割を有することを示唆する。従って、Aβ-42/43およびAβx-42/43は、老人性斑お
よび散在性斑の両方の初期かつ突出した特徴であるが、残基40で終結するペプチド（すなわち、Aβ1-40およびAβx-40）は、成熟斑のサブセットおよびアミロイド性血管に優勢に関連する（例えば、Iwatsuboら,1995; Gravinaら, 1995; Tamokaら, 1995; Podlisnyら, 1995を参照のこと)。さらに、長テールイソ型は、原線維形成に対してより大きい傾向を
有し、そしてAβ1-40ペプチドよりも神経毒性であると考えられる（Pikeら,1993; Hilbichら, 1991)。最後に、初期発症FADに関連するβAPP遺伝子のコドン717におけるミスセン
ス変異は、冒された変異体保因者の脳において、冒されそして前症候性の両方の保因者の末梢細胞および血漿において、ならびにβAPP717変異cDNAでトランスフェクトされた細胞株において、長テールAβの過剰産生を生じる（Tamaokaら,1994;Suzukiら, 1994)。下記
の実施例18に記載のように、本発明者らは、今や、Aβペプチドの長形態の産生の増大も
また、プレセニリン遺伝子における変異に関連することを開示する。
従って、一連の実施態様において、本発明は、候補化合物を、変異プレセニリン遺伝子を発現する細胞またはトランスジェニック動物における、Aβペプチドの長イソ型の産生
の増大をブロックまたは阻害するそれらの能力について、スクリーニングする方法を提供する。特に、本発明は、脳細胞または線維芽細胞のような培養哺乳動物細胞が、本明細書に開示された方法に従って形質転換された、あるいは齧歯類または非ヒト霊長類のようなトランスジェニック動物が、本明細書に開示される方法によって生産されて、比較的高レベルの変異プレセニリンを発現する、このような方法を提供する。任意に、このような細胞またはトランスジェニック動物はまた、βAPPタンパク質の正常形態を比較的高レベル
で発現させるように形質転換され得る。
この一連の実施態様において、候補化合物を細胞株またはトランスジェニック動物に投与し得（例えば、培養物中の細胞の培地に添加することによって；あるいは動物に経口または非経口投与することによって）、そして適切な期間の後（例えば、培養物中の細胞については０〜72時間、動物モデルについては数日または数カ月）、生物学的サンプルを収集し（例えば、培養物中の細胞由来の細胞培養上清または細胞溶解物；動物由来の組織ホモジネートまたは血漿）、そしてAβペプチドの長イソ型のレベルについて試験する。絶
対的な意味において（例えば、nMol/ml）または相対的意味において（例えば、短Aβイソ型に対する長イソ型の比）、ペプチドのレベルを決定し得る。Aβイソ型は、当該分野で
公知の任意の手段によって（例えば、電気泳動分離および配列決定）検出され得るが、好ましくは、長イソ型に対して特異的な抗体を使用して、Aβ1-42/43またはAβx-42/43ペプチドの絶対的または相対的レベルを測定する。これらの長Aβイソ型の絶対的または相対
的レベルを低下させる（特に、本発明のトランスジェニック動物モデルにおいて）候補医薬または治療は、アルツハイマー病、あるいはプレセニリン変異またはAPP代謝における
異常によって引き起こされる他の障害の処置において治療的有用性を有するようである。
Ｅ．微小管関連タンパク質のリン酸化
別の一連の実施態様において、候補化合物を、Tauのような微小管関連タンパク質（MAP）のリン酸化レベルに対する化合物の効果を評価することによって、プレセニリン活性を調節するそれらの能力についてスクリーニングし得る。アルツハイマー病の犠牲者の脳におけるTauおよび他のMAPの異常リン酸化は、当該分野において周知である。従って、ＭＡＰの異常リン酸化を防止するまたは阻害する化合物は、ADのようなプレセニリン関連疾患を治療することにおいて有用性を有し得る。上記のように、正常または変異動物または被験体、あるいは本発明の形質転換細胞株および動物モデルを使用し得る。好ましいアッセイは、変異ヒトまたはヒト化変異プレセニリン遺伝子で形質転換された細胞株または動物モデルを使用する。これらの細胞におけるMAPのベースラインリン酸化状態を確立し得、
次いで、候補化合物を変異体に関連する過剰リン酸化を防止、阻害または中和するそれらの能力について試験し得る。MAPのリン酸化状態は、当該分野で公知の任意の標準的方法
によって測定され得るが、好ましくは、リン酸化されたまたはリン酸化されていないエピトープに選択的に結合する抗体が使用される。Tauタンパク質のリン酸化エピトープに対
するこのような抗体は、当該分野において公知である（例えば、ALZ50）。
９．アルツハイマー病についてのスクリーニングおよび診断
Ａ．一般的診断方法
本明細書中で開示されまたは実施可能なプレセニリン遺伝子および遺伝子産物、ならびにプレセニリン由来のプローブ、プライマーおよび抗体は、アルツハイマー病に関連する対立遺伝子の保因者のスクリーニング、アルツハイマー病の罹患者の診断、ならびに関連する早老性および老人性の痴呆症、精神分裂病および鬱病のような精神医学的疾患、ならびに脳卒中および脳溢血のような神経学的疾患（これらの全ては、PS1またはPS2の遺伝子またはAPP遺伝子における変異を有する症候的ヒト被験体において多かれ少なかれ見られ
る）のスクリーニングおよび診断において有用である。アルツハイマー病の危険がある個体（例えば、家系に存在するADを有する個体）、あるいは危険があることが従前には知られていない個体を、種々の技術によって変異プレセニリン遺伝子またはタンパク質の存在を検出するためのプローブを用いて日常的にスクリーニングすることができる。これらの病気の遺伝の症例の診断は、正常なプレセニリン活性の欠損または増加、および／または変異プレセニリンによって付与された新しい特定の活性の存在を検出するように設計された機能的アッセイを含む、本明細書中で開示されまたは実施可能な（ゲノム配列およびmRNA／cDNA配列を含む）核酸、タンパク質、および／または抗体に基づく方法によって達成することができる。好ましくは、本明細書中で開示されまたは実施可能であるように、本方法および産物は、ヒトのPS1またはPS2の核酸、タンパク質、または抗体に基づく。しかしながら、当業者に明らかなように、ヒト、マウス、C.elegans、およびDrosophilaのよ
うな広い種においてさえ、PS1およびPS2のヌクレオチド配列およびアミノ酸配列の大きな割合の有意の進化的保存は、当業者に、ヒトまたは他の動物被験体に向けられた適用についてさえ、このような非ヒトプレセニリンホモログの核酸、タンパク質、および抗体を利用することを可能とする。従って、本発明の範囲を限定することなく説明を簡単にするために、以下の記載は、PS1およびPS2のヒトホモログの使用に焦点を当てる。しかしながら、本明細書に開示するものを含む他の種からの相同配列は、多くの目的のためには同等であることが理解される。
当業者によって認識されるように、本発明の診断方法の選択は、テストすべき利用可能な生物学的サンプルの性質および必要とされる情報の性質によって影響される。例えば、PS1は、脳組織で高度に発現される。しかし、脳バイオプシーは、特に日常的なスクリー
ニングでは、侵襲的であって費用のかかる手順である。しかしながら、有意なレベルでPS1を発現する他の組織（例えば、リンパ球）は、オルタナティブスプライシングを示し得
る。従って、このような細胞からのPS1のmRNAまたはタンパク質は、あまり有益ではあり
得ない。従って、被験体のゲノムPS1DNAに基づくアッセイが好ましいかもしれない。なぜなら、どの情報も、オルタナティブスプライシングに依存せず、そして本質的に、任意の有核細胞は使用可能なサンプルを供し得るからである。他のプレセニリン（例えば、hPS2、mPS1）に基づく診断は、同様の考慮：組織の利用性、種々の組織における発現のレベル、およびオルタナティブスプライシングにより得られる別のmRNAおよびタンパク質産物を対象とする。
Ｂ．タンパク質に基づくスクリーニングおよび診断
診断アッセイがプレセニリンタンパク質に基づくべき場合、種々のアプローチが可能である。例えば、診断は、正常タンパク質と変異タンパク質との電気泳動移動度における差異をモニターすることによって達成できる。このようなアプローチは、荷電置換が存在する変異体、あるいは挿入、欠失、または置換の結果得られたタンパク質の電気泳動移動が有意に変化した変異体を同定するにおいて特に有用である。あるいは、診断は、正常タンパク質と変異タンパク質とのタンパク質分解切断パターンの差異、種々のアミノ酸残基のモル比の差異に基づくものであり得、あるいは遺伝子産物の変化した機能を示す機能的アッセイによるものであり得る。
好ましい実施態様において、タンパク質に基づく診断は、正常および変異プレセニリンタンパク質（特に、hPS1またはhPS2）に結合する抗体の能力の差異を使用する。このような診断テストは、正常タンパク質に結合するが変異タンパク質には結合しない、あるいはその逆である抗体を使用できる。特に、複数のモノクローナル抗体（各々が、変異エピトープに結合できる）を使用できるアッセイ。テスト被験体から得られるサンプルにおける抗変異体抗体の結合のレベル（例えば、放射性標識、ELISA、または化学ルミネセンスに
より可視化される）が、コントロールサンプルへの結合のレベルと比較され得る。あるいは、正常プレセニリンには結合するが変異プレセニリンには結合しない抗体を使用することができ、そして抗体結合のレベルの減少を用いて、ホモ接合の正常個体を、変異したヘテロ接合体またはホモ接合体から区別することができる。このような抗体診断は、神経線維の絡みおよびアミロイド斑などのこれらの病気に関連する神経病理学的構造体を含む、生前または死後に得られるCNS組織のバイオプシーサンプルを用いるインサイチュ免疫組
織化学のために使用し得るか、あるいは脳脊髄液のような液体サンプル、あるいは白血球のような末梢組織を用いて使用し得る。
Ｃ．核酸に基づくスクリーニングおよび診断
診断アッセイがサンプルからの核酸に基づく場合、アッセイは、mRNA、cDNA、またはゲノムDNAに基づくことができる。サンプルからのmRNAを使用する場合、多くの同じ考慮が
、供給源組織およびオルタナティブスプライシングの可能性に関してなされる。すなわち、適切な組織供給源が選択されず、またはそれが入手可能でなければ、転写物の発現はほとんどまたは全くなく、そしてオルタナティブスプライシングの結果、いくつかの情報が失われるか、あるいは解釈が困難となる。しかしながら、本発明者らは、5'UTR、3' UTR
、オープンリーディングフレーム、ならびにPS1およびPS2の双方のスプライス部位における変異は、白血球および／または皮膚線維芽細胞から単離されたmRNA／cDNAで信頼性よく同定できることを既に示した（Sherringtonら,1995；Rogaev, 1995)。mRNA、cDNA、また
はゲノムDNAをアッセイするか否かにかかわらず、当該分野で周知の標準的な方法を用い
て、インサイチュまたはインビトロのいずれかで特定の配列の存在を検出することができる（例えば、Sambrookら,(1989) Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 第２版, Cold Spring HarborPress, Cold Spring Harbor, NYを参照のこと)。しかしながら、一般的には、有核細胞を持つ任意の組織を調べることができる。
診断のために用いられるゲノムDNAは、血液、組織バイオプシー、手術検体、またはオ
ートプシー材料に存在するもののような身体細胞から得ることができる。DNAを単離し、
そして特異的配列の検出に直接使用するか、あるいは分析に先立って、ポリメラーゼ連鎖反応（PCR）によって増幅することができる。同様に、RNAまたはcDNAはまた、PCR増幅と
共にまたはそれなしで用いることができる。特異的な核酸配列を検出するに、直接的ヌクレオチド配列決定、特異的オリゴヌクレオチドを用いるハイブリダイゼーション、制限酵素消化およびマッピング、PCRマッピング、RNaseプロテクション、化学的ミスマッチ切断、リガーゼ媒介検出、および種々の他の方法が使用できる。特定の配列に対して特異的なオリゴヌクレオチドを化学的に合成し、放射性または非放射性標識（例えば、ビオチンタグ、エチジウムブロミド）し、そして（例えば、ドットブロットまたは電気泳動後にゲルからの転写により）膜または他の固体支持体に固定化された、あるいは溶液中の個々のサンプルにハイブリダイズさせることができる。次いで、標的配列の存在または不存在を、オートラジオグラフィー、フルオロメトリー、または比色法のような方法を用いて可視化することができる。これらの手順は、高密度でシリコンチップに固定化された既知配列の縮重した短いオリゴヌクレオチドを用いて自動化できる。
（１）適切なプローブおよびプライマー
ハイブリダイゼーション、RNaseプロテクション、リガーゼ媒介検出、PCR増幅、または本明細書中に記載されそして当該分野で周知の任意の他の標準的な方法のいずれにせよ、本明細書中で開示されまたは実施可能なプレセニリン配列の種々のサブ配列は、プローブおよび／またはプライマーとして有用である。これらの配列またはサブ配列は、正常なプレセニリン配列および有害な変異配列の両方を含む。一般に、有用な配列は、プレセニリンのイントロン、エキソン、またはイントロン／エキソン境界からの、少なくとも８〜９、より好ましくは１０〜５０、そして最も好ましくは１８〜２４の連続するヌクレオチドを含む。標的配列、必要な特異性、および将来の技術開発に応じて、より短い配列もまた有用性を有し得る。従って、プレセニリン配列を単離し、クローン化し、増幅し、同定し、または操作するのに使用される任意のプレセニリン由来の配列は、適切なプローブまたはプライマーとみなすことができる。有用と特に考えられるのは、疾患原因の変異が存在することが知られているプレセニリン遺伝子のヌクレオチド位置を含む配列、あるいはこれらの位置に隣接する配列である。
（ａ）PS1のプローブおよびプライマー
前記で考察したように、今や、種々の疾患原因の変異が、ヒトPS1遺伝子で同定された
。これらおよび他のPS1変異の検出は、今や、正常または変異のPS1遺伝子に由来する単離された核酸プローブまたはプライマーを用いて可能である。有用と特に考えられるのは、Ｎ末端、TM1−TM2領域、およびTM6−TM7領域をコードする配列に由来するプローブまたはプライマーである。しかしながら、前記に開示するように、PS1タンパク質の他の領域に
影響する変異は既に検出されており、本明細書中で開示する方法を用いて、さらに疑いもなく検出される。従って、本発明は、アルツハイマー病の発症に関連することを示し得る、イントロンならびに5'および3'UTRを含むPS1遺伝子のいずれかの部分からの正常配列および変異配列に対応する単離された核酸プローブおよびプライマーを提供する。
単に例として、かつ本発明を限定することなく、丁度C410Yの変異付近のhPS1DNAセグメントに由来するプローブおよびプライマーを、スクリーニングおよび診断方法で使用することができる。この変異は、少なくとも特定の個体において、配列番号１の1477位におけるＧからＡへの置換から生じる。従って、この潜在的な変異部位を含むオリゴヌクレオチドプローブまたはプライマーを用いて、個体の末梢血液サンプルから獲得されたゲノムDNA、mRNA、またはcDNAをスクリーニングできる。この変異用のハイブリダイゼーションプ
ローブには、変異部位をまたぐ、８〜５０、より好ましくは１８〜２４塩基のプローブ（例えば、配列番号１のbp1467〜1487）が使用できる。もしプローブがmRNAとともに使用されるならば、それは、勿論、mRNAに相補的であるべきである（従って、PS1遺伝子の非コ
ード鎖に対応する）。ゲノムDNAまたはcDNAとともに使用すべきプローブは、プローブは
、いずれかの鎖に相補的であり得る。PCR方法によるこの変異を含む配列を検出するため
に適切なプライマーは、いずれかの側の変異に隣接する領域に由来する、８〜50、好ましくは18〜24の長さのヌクレオチドの配列を含む。それは、変異部位から除去された、１〜1000bp、好ましくは１〜200bpの任意の位置に対応する。（コード鎖上の）変異の5'側に
あるPCRプライマーは、配列において、PS1遺伝子のコード鎖に対応すべきであり、他方、（コード鎖上の）変異部位の3'側にあるPCRプライマーは、非コード鎖もしくはアンセン
ス鎖に対応すべきである（例えば、配列番号１のbp1451〜1468に対応する5'プライマー、および配列番号１４の719〜699の相補物に対応する3'プライマー）。
同様のプライマーを、他のPS1変異、または一般に変異の「ホットスポット」について
選択することができる。例えば、M146L変異（bp684におけるＡ→Ｃ）についての5' PCRプライマーは、配列番号１のほぼbp 601〜620に対応する配列を含むことができ、そして3'
プライマーは、配列番号８のほぼbp1328〜1309の相補物に対応し得る。この例は、イントロン配列およびエキソン配列の双方からのプライマーを使用することに注意されたい。別の例として、A246E変異（bp985におけるＣ→Ａ）についての適切な5'プライマーは、配列番号１のほぼbp 907〜925に対応する配列、または配列番号１のほぼbp 1010〜990の相補
物に対応する3'プライマーを含み得る。別の例として、配列番号９のほぼbp581〜559の相補物に対応する3'プライマーと共に、配列番号９のほぼbp 354〜375に対応する配列を含
むH163R変異（配列番号１のbp 736または配列番号９のbp419におけるＡ→Ｇ）についての5'プライマー。同様に、イントロン配列またはエキソン配列を使用して、例えば、配列番号１１のほぼbp 249〜268または配列番号１のbp1020〜1039に対応する配列を含むL286V変異（配列番号１のbp 1104または配列番号１１のbp 398におけるＣ→Ｇ）についての5'プ
ライマーおよび配列番号１１のほぼbp510〜491の相補物に対応する3'プライマーを生成させることができる。
プローブおよびプライマーが特異的変異ヌクレオチドを含み得ることに注意すべきである。従って、例えば、ハイブリダイゼーションプローブまたは5'プライマーは、正常な対立遺伝子をスクリーニングもしくはそれを増幅するために、配列番号１のほぼbp 1468〜1486に対応する配列、あるいは変異した対立遺伝子をスクリーニングするかもしくはそれ
を増幅するために、同一であるが変異したbp1477（Ｇ→Ｔ）に対応するbpを有する配列に対応する配列を含むC410Y変異のために作製することができる。
（ｂ）PS2のプローブおよびプライマー
PS1についてのプローブおよびプライマーに関する前記の同じ一般的考慮は、PS2についてのプローブおよびプライマーに同等に適用される。特に、プローブまたはプライマーは、イントロン、エキソン、またはイントロン／エキソン境界配列に対応してもよく、コード鎖または非コード（アンチセンス）鎖からの配列に対応してもよく、そして正常または変異配列に対応してもよい。
単に例として、PS1 N141I変異（bp 787におけるＡ→Ｔ）を、配列番号１８のほぼbp733〜751に対応する5'プライマーおよび配列番号１８のほぼbp 846〜829の相補物に対応する3'プライマーを用い、周囲のDNA断片のPCR増幅によってスクリーニングすることができる。同様に、M239V変異（bp1080におけるＡ→Ｇ）についての5'プライマーは、ほぼbp 1009〜1026に対応する配列を含むことができ、そして3'プライマーは配列番号１８のほぼbp1118〜1101の相補物に対応し得る。別の例として、I420T変異（bp 1624におけるＴ→Ｃ）の周囲の領域をコードする配列を、配列番号１８のほぼbp1576〜1593に対応する5'プライマーおよび配列番号１８のほぼbp 1721〜1701の相補物に対応する3'プライマーを用いて、
ゲノムDNAのPCR増幅によってスクリーニングして、146塩基対の産物を生成させることが
できる。次いで、この産物を、例えば、野生型（例えば、配列番号１８のbp1616〜1632）
および／または変異体（例えば、bp 1624におけるＴ→Ｃを有する配列番号１８のbp 1616〜1632）の配列について対立遺伝子特異的オリゴヌクレオチドでプローブすることができる。
（２）ハイブリダイゼーションスクリーニング
正常または変異のPS1、PS2、または他のプレセニリン関連核酸配列のインサイチュ検出には、標準的な技術によって組織のサンプルを調製することができ、次いで、１つ以上の前記のプローブ、好ましくは検出を容易とするために標識されたプローブと接触させ、そして核酸ハイブリダイゼーションのためのアッセイを、プローブと高度にまたは完全に相補的な配列との間でのみハイブリダイゼーションを可能とするストリンジェントな条件下で行う。現在までに検出されたPS1およびPS2の変異のほとんどは、１つのヌクレオチド置換よりなるので、高いストリンジェンシィーのハイブリダイゼーション条件が、多くの変異配列から正常配列を区別するのに必要である。被験体の親のプレセニリン遺伝子型が知られている場合、それに従ってプローブを選択することができる。あるいは、種々の変異体に対するプローブを、連続的または組み合わせて使用することができる。プレセニリン変異体を有する個体の多くははヘテロ接合性であるので、正常配列に対するプローブも使用することができ、そしてホモ接合の正常個体を、（例えば、放射能シグナルの強度により）結合の量によって変異したヘテロ接合体から区別することができる。別の変形において、競合結合アッセイを使用することができる。この場合、正常および変異の両方のプローブを使用するが、１つのみを標識する。
（３）制限マッピング
配列の変化をまた用いて、適切な酵素消化、続いてのゲル−ブロットハイブリダイゼーションの使用によって明らかにされる偶発的な制限酵素認識部位が生成または破壊され得る。部位（正常または変異）を有するDNA断片は、サイズおけるその増加または減少によ
って、あるいは対応する制限断片数の増加または減少によって検出される。このような制限断片長多型分析（RELP）、または制限マッピングは、ゲノムDNA、mRNAまたはcDNAを用
いて使用することができる。プレセニリン配列は、制限に先立って前記のプライマーを用いるPCRによって増幅することができ、この場合、PCR産物の長さは、特定の制限部位の存在または非存在を示すことができ、および／または増幅後に制限に供し得る。プレセニリン断片は、任意の便宜な手段によって可視化することができる（例えば、エチジウムブロミドの存在下におけるUV光下）。
単に例として、PS1のM146L変異（配列番号１のbp 684におけるＡ→Ｃ）はPsphI部位を
破壊し；H163R変異（bp736におけるＡ→Ｇ）はNlaIII部位を破壊し；A246E変異（bp 985
におけるＣ→Ａ）はDdeI部位を生じ；およびL286V変異（bp 1104におけるＣ→Ｇ）はPvuIII部位を生じることに注意される。当業者は、多くの市販の制限酵素から容易に選択し、本明細書中で開示されそしてそうでなければ実施可能となる正常および変異配列に基づいて、いずれかのプレセニリン変異を実際に検出する制限マッピング分析を行うことができる。
（４）PCRマッピング
別の一連の実施態様において、一塩基置換変異を、異なるPCR産物の長さまたはPCRにおける産生に基づいて検出することができる。従って、変異部位にまたがる、あるいは好ましくは変異部位に3'末端を有するプライマーを使用して、被験体からのゲノムDNA、mRNA
、またはcDNAのサンプルを増幅することができる。変異部位におけるミスマッチは、ポリメラーゼ反応を促進し、それにより、正常な被験体と、ヘテロ接合および／またはホモ接合のプレセニリン変異体との間で異なる産物プロフィールが得られる、正常プライマーまたは変異プライマーの能力を変更することが予測できる。正常遺伝子および変異遺伝子のPCR産物は、異なって分離され、ポリアクリルアミドまたはアガロースゲル電気泳動、お
よび標識プローブ、エチジウムブロミド等を用いた可視化のような標準的な技術によって検出できる。変異部位の可能な非特異的プライミングまたは読み通しのため、ならびに変異対立遺伝子の保因者のほとんどがヘテロ接合であるとの事実のため、この技術の効果は低いかもしれない。
（５）電気泳動移動度
DNA配列差異に基づく遺伝子テストはまた、ゲルにおけるDNA、mRNA、またはcDNAの断片の電気泳動移動度の変化の検出によって達成することができる。例えば、小さな配列の欠失および挿入は、一本鎖または二本鎖のDNAの高分解能ゲル電気泳動によって、あるいは
非変性ゲル電気泳動におけるDNAヘテロ二重鎖の移動パターンの変化として可視化するこ
とができる。プレセニリン変異体または多型はまた、mRNAまたは一本鎖DNAの二次構造に
関連した一本鎖コンフォメーション多型（SSCP）による移動度シフトを利用する方法によって検出することができる。
（６）ミスマッチの化学的切断
プレセニリンの変異はまた、ミスマッチの化学的切断（CCM）方法を使用することによ
って検出できる（例えば、SaleebaおよびCotton,1993,およびその中での引用文献を参照
のこと)。この技術では、プローブ（約１kbまで）は、被験体から得たゲノムDNA、cDNA、またはmRNAのサンプルと混合され得る。サンプルおよびプローブを混合し、そして（もしあれば）ヘテロ二重鎖の形成を可能とする条件に付す。好ましくは、プローブおよびサンプル核酸は共に二本鎖であるか、あるいはプローブおよびサンプルを一緒にPCR増幅して
、全ての可能なミスマッチヘテロ二重鎖の生成を確実にし得る。ミスマッチＴ残基は四酸化オスミウムに対して反応性であり、ミスマッチＣ残基はヒドロキシルアミンに対して反応性である。各ミスマッチＡにはミスマッチＴが伴い、そして各ミスマッチＧにはミスマッチＣが伴うので、プローブとサンプルとの間の任意のヌクレオチド差異（小さい挿入または欠失を含む）は、少なくとも１つの反応性ヘテロ二重鎖の形成に至る。いずれかのミスマッチ部位を修飾するための四酸化オスミウムおよび／またはヒドロキシルアミンでの処理の後、混合物を、例えば、ピペリジンとの反応によっていずれかの修飾されたミスマッチ部位での化学的切断に付す。次いで、混合物をゲル電気泳動のような標準的な技術によって分析して、プローブとサンプルとの間のミスマッチを示す切断産物を検出し得る。
（７）他の方法
本明細書中で開示され、そしてそうでなければ実施可能なプレセニリン配列に基づいて、プレセニリン変異を検出する種々の他の方法は、当業者に明らかである。これらのいずれも本発明に従って使用され得る。これらは、限定されるものではないが、ヌクレアーゼプロテクションアッセイ（S1またはリガーゼ媒介）、連結PCR、変性グラジエントゲル電
気泳動（DGGE；例えば、FischerおよびLerman, 1983を参照のこと)、SSCPと組み合わせた制限エンドヌクレアーゼフィンガープリンティング（REF-SSCP；例えば、LiuおよびSommer,1995を参照のこと)等を含む。
Ｄ．他のスクリーニングおよび診断剤
遺伝の場合には、一次事象として、および非遺伝の場合には病気状態による二次事象として、PS1、PS2、APP、またはPS1、PS2、もしくはAPPと反応するタンパク質の異常プロセシングが起こる。これは、身体組織または体液（例えば、CSFまたは血液）における異常
なリン酸化、グリコシル化、グリケーション、アミド化またはタンパク質分解の切断産物として検出され得る。
診断はまた、プレセニリン転写、翻訳、および翻訳後修飾およびプロセシングの変化、ならびに脳および末梢細胞におけるプレセニリン遺伝子産物の細胞内および細胞外のトラフィッキングにおける変化の観察によって行うことができる。このような変化は、プレセ
ニリンのメッセンジャーRNAおよび／またはタンパク質の量の変化、リン酸化状態の変化
、異常な細胞内位置／分布、異常な細胞外分布等を含む。このようなアッセイは、（プレセニリン特異的および非特異的ヌクレオチドプローブを用いる）ノーザンブロット、（グリコシル化およびリン酸化のイソ形態を含む種々の翻訳後修飾状態を含む、プレセニリンまたはプレセニリンの機能的ドメインに対して特異的に惹起した抗体を用いる）ウェスタンブロットおよび酵素結合イムノソルベントアッセイ（ELISA）を含む。これらのアッセ
イは、末梢組織（例えば、血液細胞、血漿、培養または他の線維芽細胞組織等）、ならびに生前または死後に得られたCNS組織のバイオプシー、および脳脊髄液で行うことができ
る。このようなアッセイはまた、（メッセンジャーRNAおよびタンパク質を、特定の細胞
より小さい（subcellular）区画および／または神経線維の絡みおよびアミロイド斑など
のこれらの疾患に関連した神経病理学構造体内で局在化するための）インサイチュハイブリダイゼーションおよび免疫組織化学を含む。
Ｅ．スクリーニングおよび診断キット
本発明によれば、前記の診断スクリーニングに必要な試薬を含む診断キットもまた提供される。例えば、１つ以上の変異エピトープに対して特異的な抗体または抗体の組を含むキットが提供され得る。これらの抗体は、特に、結合の可視化を容易にするいずれかの標準的な手段によって標識できる。あるいは、前記のように、オリゴヌクレオチドプローブまたはPCRプライマーが、変異のPS1、PS2または他のプレセニリン関連ヌクレオチド配列
の検出および／または増幅のために存在するキットが提供され得る。さらに、このようなプローブは、特異的なハイブリダイゼーションの、より容易な検出のために標識することができる。前記の種々の診断の実施態様に最適なものとして、このようなキットにおけるオリゴヌクレオチドプローブまたは抗体は基材に固定化され、そして適切なコントロールを提供し得る。
１０．治療の方法
本発明は、今や、プレセニリンの変異によって引き起こされるか、あるいは引き起こされ得る疾患における治療的介入のための基礎を提供する。前記にて詳細に記載したように、hPS1およびhPS2遺伝子における変異は、初期発症型のアルツハイマー病の発症と関連付けられてきた。従って、本発明は、特に、アルツハイマー病と診断されたか、あるいはその発症の危険がある被験体の処置に指向する。しかしながら、種々の組織におけるPS1お
よびPS2遺伝子の発現を考慮すると、これらの遺伝子座における変異の効果は、脳には限
定されず、従って、アルツハイマー病に加えて、障害の原因となり得るようである。従って、本発明はまた、プレセニリン遺伝子および遺伝子産物における変異、誤った発現、誤った代謝あるいは他の遺伝的または後天的な変化から生じ得る、他の組織における疾患発現に指向する。加えて、アルツハイマー病は神経学的障害として発現するが、この発現はプレセニリンにおける変異によって引き起こされ得るのであり、これはまず他の器官組織（例えば、肝臓）に影響し、次いで、脳の活性に影響する因子を放出し、最後にはアルツハイマー病を引き起こす。よって、後記の種々の治療を考慮して、このような治療は、PS1および／またはPS2はまた、発現される、心臓、胎盤、肺、肝臓、骨格筋、腎臓および膵臓などの脳以外の組織で標的化され得ることが理解される。
本発明のいずれかの特定の理論に拘束されることなく、プレセニリンにおけるアルツハイマー病関連の変異の影響は、新規機能の獲得、または正常機能の加速であるようであり、これは、脳におけるアミロイド前駆体タンパク質（APP）のＡβペプチドへの異常なプ
ロセシング、異常なリン酸化ホメオスタシス、および／または異常なアポトーシスを直接的または間接的に引き起こす。このような機能の獲得または機能的モデルの加速は、徴候の成人発症およびアルツハイマー病の優性遺伝と一致する。それにもかかわらず、プレセニリンにおける変異が、これらの結果を引き起こし得るメカニズムは依然不明である。
APPは、２つの経路のいずれかを介して代謝され得ることが知られている。第１に、APPは、ゴルジネットワークの通過により、次いで、クラスリン被覆小胞を介する分泌経路に代謝される。次いで、成熟APPは原形質膜まで通過し、そこで、α−セクレターゼによっ
て切断されて、可溶性画分（プロテアーゼNexinII)＋非アミロイド原性Ｃ末端ペプチドを生じる（Selkoeら, 1995; Gandyら, 1993)。あるいは、成熟APPをエンドソーム−リソソ
ーム経路に向けることができ、そこでは、β−およびγ−セクレターゼの切断を受けて、Ａβペプチドを生成する。APPのＡβペプチド誘導体は神経毒性である（Selkoeら,1994)
。細胞のリン酸化状態は、α−セクレターゼ（非アミロイド原性）またはＡβ経路（アミロイド原性経路）の間の相対的バランスを決定し（Gandyら,1993)、ホルボールエステル
、ムスカリン様アゴニストおよび他の薬剤によって薬理学的に改変され得る。細胞のリン酸化状態は、ゴルジネットワークにおける１つ以上の細胞膜内膜タンパク質に作用するサイトゾル因子（特に、プロテインキナーゼＣ）によって媒介されるようである。
本発明のいずれかの特定の理論に拘束されることなく、プレセニリン、特に（プロテインキナーゼＣのいくつかのリン酸化コンセンサス配列を有する）hPS1またはhPS2は、そのリン酸化状態がα−セクレターゼとＡβ経路との間の相対的なバランスを決定する細胞膜内膜タンパク質で有り得る。従って、PS1またはPS2遺伝子における変異は、それらの産物の構造および機能の改変を引き起こし、これは調節エレメント（例えば、プロテインキナーゼＣ）またはAPPとの欠陥相互作用に至り、これにより、APPがアミロイド原性のエンドソーム−リソソーム経路に向けられるのを促進し得る。環境因子（例えば、ウイルス、トキシン、または老化）もまた、PS1またはPS2に対して同様の効果を有し得る。
さらに、本発明のいずれかの特定の理論に拘束されることなく、PS1およびPS2タンパク質は共に、ヒトイオンチャンネルタンパク質および受容体に対して実質的なアミノ酸配列相同性を有することにも注意されたい。例えば、Altschulら(1990)のBLASTP例を用いて、PS2タンパク質はヒトナトリウムチャンネルα−サブユニットに対する実質的な相同性（
Ｅ＝0.18、Ｐ＝0.16、同一性＝２２−２７％（少なくとも３５アミノ酸残基の２つの領域にわたる））を示す。他の疾患（例えば、ヒトにおける悪性高体温および高カリウム血性周期性麻痺、ならびにC.elegansにおける機械的感知ニューロンの変性）は、イオンチャ
ンネルまたは受容体タンパク質における変異を通じて生じる。従って、PS1またはPS2遺伝子の変異は、同様な機能に影響し得、そしてアルツハイマー病および／または他の精神医学的および神経学的疾患に至る。
ADなどのプレセニリン関連疾患を処置するための治療は、以下に基づくことができる：（１）正常なPS1またはPS2のタンパク質の投与、（２）変異遺伝子を補うかまたはそれを置換するための正常なPS1またはPS2の遺伝子での遺伝子療法、（３）変異遺伝子を「ノックアウトする」、変異したPS1またはPS2の遺伝子に対するアンチセンス配列に基づく遺伝子療法、（４）PS1またはPS2の変異の有害効果をブロックまたは矯正するタンパク質をコードする配列に基づく遺伝子療法、（５）正常および／または変異なPS1またはPS2のタンパク質に対する抗体に基づく免疫療法、あるいは（６）PS1またはPS2の発現を変更させ、変形形態のPS1またはPS2と他のタンパク質またはリガンドとの間の異常な相互作用をブロックするか、あるいはそうでなければ変異タンパク質の構造を変化させること、それらの代謝クリアランスを増強すること、あるいはそれらの機能を阻害することによって変異PS1またはPS2タンパク質の異常な機能をブロックする低分子（薬物）。

Ａ．タンパク質療法
プレセニリン関連のアルツハイマー病、またはプレセニリン変異に起因する他の障害の処置は、変異タンパク質を正常なタンパク質で置き換えること、変異タンパク質の機能を調節すること、あるいは過剰の正常タンパク質を提供して変異タンパク質のいずれかの異
常な機能の効果を低下させることによって行うことができる。
これを達成するために、本明細書に記載されそして実施可能なように、このタンパク質を発現し得る培養細胞系からの大量の実質的に純粋なPS1タンパク質またはPS2タンパク質を得ることが必要である。次いで、タンパク質の患部脳領域または他の組織への送達は、例えば、標的細胞へのリポソーム媒介タンパク質送達を含む適切なパッケージングまたは投与系を用いて達成することができる。
Ｂ．遺伝子療法
１連の実施態様において、PS1遺伝子またはPS2遺伝子の正常コピーを患者に導入して、１つ以上の異なる患部細胞型において正常なタンパク質を首尾よくコードする遺伝子療法が使用できる。遺伝子は、それが取り込まれ、効果的な機能を提供するのに、十分なタンパク質をコードし得る形態でそのような細胞に送達されなければならない。従って、組換え遺伝子は、強力なプロモーターに作動可能に連結され、その結果、変異タンパク質を補うかまたはそれ以上に競合する高レベル発現を提供するのが好ましい。前記のように、組換え構築物は、内因性または外因性の調節エレメント、誘導性または抑制性の調節エレメント、あるいは組織特異的な調節エレメントを含有し得る。
別の１連の実施態様において、遺伝子療法を用いて、組換え構築物による相同組換えにより変異遺伝子を置換することができる。組換え構築物は、標的化プレセニリン遺伝子の正常コピーを含有することができ、この場合、欠陥はインサイチュで矯正されるか、あるいは変異遺伝子の機能をなくす停止コドン、ミスセンス変異、または欠失を導入する「ノックアウト」構築物を含有することができる。この点に関して、このような構築物は、ヘテロ接合個体における標的化プレセニリンの正常および変異コピーの両方をノックアウトすることができるが、プレセニリン遺伝子機能の全喪失は、疾患状態の継続した進行よりも個体に対して有害性が低いであろうことに注意すべきである。
別の１連の実施態様において、アンチセンス遺伝子療法を使用することができる。アンチセンス療法は、遺伝子発現の配列特異的抑制がmRNAまたはDNAと相補的アンチセンス種
との間の細胞内ハイブリダイゼーションによって達成できるという事実に基づく。次いで、ハイブリッド二重鎖の形成は、遺伝子の転写および／または標的プレセニリンmRNAのプロセシング、輸送、翻訳および／または安定性を妨害し得る。アンチセンスストラテジーは、アンチセンスオリゴヌクレオチドまたはアンチセンスオリゴヌクレオチドアナログ（例えば、ホスホロチオエート骨格を持つアナログ）の投与、およびアンチセンスRNA発現
ベクターでのトランスフェクションを含む種々のアプローチが使用できる。さらに、このようなベクターは、外因性または内因性の調節エレメント、誘導性または抑制性の調節エレメント、あるいは組織特異的調節エレメントを含むことができる。
別の１連の実施態様において、遺伝子療法を用いて、変異プレセニリン遺伝子によって引き起こされる異常な機能を阻止するか、またはそうでなければ矯正するタンパク質またはペプチドをコードする組換え構築物を導入することができる。１つの実施態様において、組換え遺伝子は、別の細胞タンパク質または他の細胞リガンドと異常に相互作用することが判明しているプレセニリンの変異ドメインに対応するペプチドをコードし得る。従って、例えば、もし変異TM6→7ドメインが特定の細胞タンパク質と相互作用するが、対応する正常TM6→7ドメインがこの相互作用を受けないことが見出されているならば、遺伝子療法を用いて、変異タンパク質と競合でき、そして異常な相互作用を阻害または阻止できる過剰の変異TM6→7ドメインを提供することができる。あるいは、変異プレセニリンと相互作用するが、正常プレセニリンとは相互作用しないタンパク質の部分をコードし、組換え構築物により発現させて、異常な相互作用と競合させ、それにより、それを阻害または阻止することができる。最後に、別の実施態様において、同一の効果が、変異トランスジー
ンの挿入によってC.elegansにおける「Deg 1(d)」および「Mec 4(d)」の変異の修正と同
様のアプローチにおける遺伝子療法によって第２の変異タンパク質を挿入することにより獲得され得る。
特に感染ならびに安定な組込みおよび発現の高効率のために、レトロウイルスベクターが、体細胞の遺伝子療法で使用することができる。しかしながら、標的化細胞を分け得なければならず、そしてこの疾患は優性のものであるので、正常タンパク質の発現レベルを高くすべきである。全長のPS1またはPS2遺伝子、プレセニリンの機能的ドメインをコードするサブ配列、または前記の他の治療ペプチドのいずれかをレトロウイルスベクターにクローン化し、そして内因性プロモーター、レトロウイルスの長末端反復、または目的の標的細胞型（例えば、ニューロン）に特異的なプロモーターから駆動することができる。使用することができる他のウイルスベクターは、アデノ関連ウイルス、ワクシニアウイルス、ウシ乳頭腫ウイルス、またはエプスタインバールウイルスなどのヘルペスウイルスを含む。
Ｃ．免疫療法
免疫療法はまた、アルツハイマー病に可能である。抗体を変異PS1またはPS2タンパク質（またはその部分）に対して惹起させ、そして患者に投与して、変異タンパク質に結合するか、またはそれを阻止して、その有害効果を妨げる。同時に、正常なタンパク質産物の発現を刺激することができる。あるいは、変異または野生型のPS1またはPS2とそれらの相互作用パートナーとの間の特異的複合体に対して抗体を惹起させる。
さらなるアプローチは、所望の抗原に対する内因性の抗体産生を刺激することである。投与は、１回の免疫原性調製物またはワクチン免疫化の形態であり得る。免疫原性組成物は、注射剤、液状溶液またはエマルジョンとして調製され得る。PS1またはPS2タンパク質あるいは他の抗原を、タンパク質に適合する薬学的に受容可能な賦形剤と混合することができる。このような賦形剤は、水、生理食塩水、デキストロース、グリセロール、エタノールおよびそれらの組合せを含み得る。免疫原性組成物およびワクチンは、さらに、乳化剤またはアジュバントなどの補助物質を含有し、有効性を増強させることができる。免疫原性組成物およびワクチンは、皮下注射または筋肉内注射によって、非経口的に投与することができる。
免疫原性調製物およびワクチンは、治療的に有効で、保護的でかつ免疫原性となるような量で投与される。用量は、投与経路に依存し、そして宿主のサイズに応じて変化する。
Ｄ．低分子療法
本明細書中で記載されそして実施可能となるように、本発明は、アルツハイマー病、またはプレセニリンにおける変異によって引き起こされた他の障害の処置で有用であり得る低分子または他の化合物を同定する多数の方法を提供する。従って、例えば、本発明は、プレセニリン結合性タンパク質を同定する方法、特に、変異プレセニリンに結合するか、またはそうでなければそれと相互作用するが、正常なプレセニリンとはそうはならないタンパク質または他の細胞成分を同定する方法を提供する。本発明はまた、変異プレセニリンとこのようなタンパク質または他の細胞成分との間の異常な相互作用を破壊するのに使用できる低分子を同定する方法を提供する。
正常なプレセニリンではなく変異プレセニリンを関するこのような相互作用は、プレセニリンの変異によって乱され、そしてアルツハイマー病の原因となる生化学経路を理解するのに有用な情報を提供するのみならず、疾患の病因学における介入のための中間的な治療標的を提供する。これらのタンパク質を同定し、そしてこれらの相互作用を分析することによって、相互作用に逆作用するか、またはそれを妨げる化合物についてスクリーニン
グして、それを設計することが可能であり、従って、異常な相互作用のための可能な処置を提供する。これらの処置は、これらのパートナーによるプレセニリンの相互作用を変化させるか、相互作用するタンパク質の機能を変化させるか、相互作用パートナーの量または組織分布あるいは発現を変化させるか、またはプレセニリン自体の同様の特性を変化させる。
療法は、これらの相互作用を調節し、従って、アルツハイマー病ならびにPS1遺伝子ま
たはPS2遺伝子あるいはそれらの遺伝子産物の後天的または遺伝的な異常性に関連する他
の状態を調節するように設計することができる。これらの療法の潜在的な効率は、PS1遺
伝子、PS2遺伝子または他のプレセニリンホモログの機能的ドメインに対応する合成ペプ
チドまたは組換えタンパク質を用い、親和性（ＫdおよびＶmax等）の標準的な薬物動態学測定によって、治療剤への暴露後のこれらの相互作用の親和性および機能を分析することによってテストできる。親水性ループなどの機能的ドメインを含む任意の相互作用の効果をアッセイする別の方法は、治療剤の存在下および非存在下におけるインサイチュハイブリダイゼーション、免疫組織化学、ウェスタンブロッティングおよび代謝パルス−チェイス標識実験によって、関連遺伝子の細胞内移動および翻訳後修飾の変化をモニターすることである。さらなる方法は、（i）APPおよびその産物の細胞内代謝、移動および標的化の変化；（ii）セカンドメッセンジャー事象、例えば、cAMP細胞内Ca2+、プロテインキナーゼ活性等の変化を含む「下流」事象の効果をモニターすることである。
前記のように、プレセニリンは、APP代謝に関与し得、そしてプレセニリンのリン酸化
状態は、α−セクレターゼとAPPプロセシングのＡβ経路との間のバランスに対して重要
であり得る。本発明の形質転換細胞および動物モデルを用いると、これらの経路およびプレセニリン変異で起こる異常事象をよく理解できる。この知識を用いて、次いで、プレセニリン変異の有害効果に逆作用する治療ストラテジーを設計することができる。
アルツハイマー病を処置するためには、例えば、PS1および／またはPS2のリン酸化状態を、プロテインキナーゼＣおよび他のプロテインキナーゼの活性を変化させるか、またはプロテインホスファターゼの活性を変化させるか、あるいは翻訳後に修飾されるPS1の利
用性を改変する化学剤および生化学剤（例えば、薬物、ペプチドおよび他の化合物）によって変化させることができる。キナーゼおよびホスファターゼとプレセニリンタンパク質との相互作用、およびプレセニリンタンパク質とゴルジネットワーク内のAPPのトラフィ
ッキングに関与する他のタンパク質との相互作用を調節して、ゴルジ小胞のエンドソーム−リソソーム経路へのトラフィッキングを低下させ、それにより、Ａβペプチド産生を阻害することができる。このような化合物は、APP、PS1、PS2のペプチドアナログおよび他
のプレセニリンホモログ、ならびに他の相互作用するタンパク質、脂質、糖、およびPS1
、PS2および／またはそれらのホモログの異なるグリコシル化を促進する薬剤；プレセニ
リンmRNAまたはタンパク質の生物学的半減期を変化させる薬剤（抗体およびアントセンスオリゴヌクレオチドを含む）；ならびにPS1および／またはPS2の転写に作用する薬剤を含む。
これらの薬剤の細胞株および動物全体における効果は、PS1および／またはPS2の転写、翻訳および翻訳後修飾（例えば、リン酸化またはグリコシル化）、ならびに種々の細胞内および細胞より小さい区画を介するPS1および／またはPS2の細胞内移動をモニターすることによってモニターできる。これらの実験のための方法は、ウェスタンおよびノーザンブロット、放射性メチオニンおよびATPでの代謝標識（パルス−チェイス）後の免疫沈降、
および免疫組織化学を含む。これらの薬剤の効果はまた、プロテインキナーゼＣ、APP、PS1、PS2、または他のプレセニリンホモログに対する抗体を用いる標準的な結合親和性ア
ッセイまたは共沈殿およびウェスタンブロットのいずれかを用いて、プロテインキナーゼＣおよび／またはAPPとの相互作用に関与するPS1および／またはPS2タンパク質の相対的
結合親和性および相対量を調べる実験を用いてモニターすることができる。これらの薬剤の効果はまた、予想される治療剤への暴露の前後に、ELISAによってＡβペプチドの生産
を評価することによってモニターすることができる（例えば、Huangら,1993を参照のこと)。この効果はまた、アルツハイマー病において神経毒性であると考えられているアルミ
ニウム塩および／またはＡβペプチドへの暴露の後に細胞株の生存率を評価することによってモニターすることができる。最後に、これらの薬剤の効果は、APPおよび／またはそ
れらのプレセニリンホモログにおいて正常な遺伝子型を有するか、（変異を含むまたは含まない）ヒトAPPトランスジーンを有するか、（変異を含むまたは含まない）ヒトプレセ
ニリントランスジーンを有するか、またはこれらのいずれかの組合せを有する動物の認識機能を評価することによってモニターすることができる。
同様に、前記のように、プレセニリンは、受容体またはイオンチャンネルとしてCa2+の調節に関与し得る。プレセニリンのこの役割はまた、本発明の形質転換細胞株および動物モデルを用いて調べることができる。これらの結果に基づいて、アルツハイマー病についてテストを行い、プレセニリン遺伝子およびそれらの産物、または相同遺伝子およびそれらの産物において後天的または遺伝的な異常性に関連する異常な受容体または異常なイオンチャンネル機能を検出することができる。このテストは、細胞内カルシウムまたは膜貫通電位に感受性のパッチクランプ、電位クランプおよび蛍光色素を用いて、イオンチャンネルフラックスおよび／または膜貫通電位または電流フラックスを測定することによって、インビボまたはインビトロのいずれかで達成することができる。欠陥イオンチャンネルまたは受容体機能はまた、環状AMP、cGMPチロシンキナーゼ、ホスファターゼなどのセカ
ンドメッセンジャーの活性化、細胞内Ca2+レベルの増加等の測定によって評価することができる。また、組換えにより作成されたタンパク質はまた、人工膜系において再構成され、イオンチャンネルコンダクタンスを調べることができる。（PS1遺伝子またはPS2遺伝子における後天的／遺伝的欠陥のため；APPにおける変異などのこの疾患に至る他の経路に
おける欠陥のため；および環境薬剤のために）アルツハイマー病に影響する療法を、プレセニリン遺伝子における変異によって誘導された異常なイオンチャンネルまたは受容体機能を修飾するそれらの能力の分析によってテストすることができる。療法はまた、プレセニリンタンパク質のイオンチャンネルまたは受容体の能力の正常な機能を改変するそれらの能力によってテストすることができる。このようなアッセイは、内因性の正常または変異PS1遺伝子／遺伝子産物あるいはPS2遺伝子／遺伝子産物を発現する培養細胞で行うことができる。このような研究はまた、正常または変異形態の、プレセニリンの１つ、またはプレセニリンの１つの機能的なドメインを発現し得るベクターでトランスフェクトした細胞で行うことができる。アルツハイマー病に対する療法は、PS1遺伝子またはPS2遺伝子の異常なイオンチャンネルまたは受容体機能を改変するように工夫し得る。このような療法は、通常の薬物、ペプチド、糖、または脂質、ならびに抗体、あるいはPS1またはPS2の遺伝子産物の特性に影響する他のリガンドであり得る。このような療法はまた、遺伝子療法によって、PS1遺伝子および／またはPS2遺伝子の直接的な置換によって実施され得る。イオンチャンネルの場合、遺伝子療法は、プレセニリン遺伝子の一部またはすべてのゲノムDNA配列を有する、ミニ遺伝子（cDNA＋プロモーター）またはゲノム構造物のいずれかを
用いて行うことができる。また、C.elegansにおいてMec4およびDeg1の置換について最近
行われたように（HuangおよびChalfie、1994）、変異プレセニリンまたはホモログの遺伝子配列はまた、プレセニリン遺伝子の遺伝的または後天的な異常性の結果に対抗するために用いることができる。この療法はまた、PS2遺伝子などの１つのホモログの受容体また
はイオンチャンネルの機能を増大させるのに指向し、その結果、別のホモログの変異形態（例えば、後天的または遺伝的な欠陥により欠陥とされたPS1遺伝子）の機能を潜在的に
受け継ぐようにできる。正常なPS1またはPS2遺伝子を用いる遺伝子置換を施した、変異PS1遺伝子または変異PS2遺伝子の発現を阻止するためのアンチセンスオリゴヌクレオチドを用いる療法はまた、遺伝子療法またはタンパク質置換療法のいずれかの標準的な技術を用いて適用することができる。
実施例１ 最小共分離領域の遺伝的、物理的「コンティグ（contig）」および転写マップの開発
遺伝連鎖研究ならびに付加的マーカーで使用される12 SSRマーカー遺伝子座の各々についてのオリゴヌクレオチドプローブを用いて、CEPHMegaYACおよびRPCI PACヒト全ゲノムDNAライブラリーを、染色体14q24.3のAD3領域からのゲノムDNAフラグメントを含有するク
ローンについてサーチした（Albertsenら,1990; Chumakovら, 1992; Ioannuら, 1994)。
各マーカー間の遺伝子マップ距離をコンティグ上方に描き、そしてそれは公表されたデータ（NIH/CEPHCollaborative Mapping Group, 1992; Wang, 1992; Weissenbachら, 1992; Gyapayら,1994)から得られる。４つの独立した方法を用い、最初のマーカー遺伝子座の各々について回収されたクローンを、部分的にオーバーラップするクローン（「コンティグ」）の順序立てたシリーズに並べた。最初に、逆PCR（Rileyら,1990)によってYACインサ
ートの末端を表す配列を単離し、そしてオーバーラップする配列を有する他のYACクロー
ンを同定するために、最初の遺伝子座の全てについて回収されたYACクローンの全て由来
のDNAの制限消化物を含有するサザンブロットパネルにハイブリダイズした。２番目に、Alu間PCRを各YACにおいて行い、そしてオーバーラップする配列を有する他のクローンを同定するために、得られたバンドパターンを、回収されたYACクローンのプールを交差して
比較した（Bellamne-Chartelotら,1992; Chumakovら, 1992)。３番目に、Alu-PCRフィン
ガープリンティングの特異性を改善するために、YAC DNAをHaeIIIまたはRsaIで制限酵素
処理し、制限産物をAluおよびL1Hの両コンセンサスプライマーで増幅し、そしてこの産物をポリアクリルアミドゲル電気泳動によって回収した。最後に、さらなるSTSが、転写さ
れた配列についてのサーチの間に生じたので、これらのSTSをまた用いてオーバーラップ
を同定した。得られたコンティグは、D14S53を有するYAC932C7と、D14S61を有するYAC746B4との間の単一の不連続性を除いて完全であった。コンティグ内のSTSの物理的マップ順
序は、この領域についての遺伝連鎖マップと大いに一致していた（NIH/CEPHCollaborative Mapping Group, 1992; WangおよびWeber, 1992; Weissenbachら, 1992;Gyapayら, 1994)。しかし、遺伝子マップに関してのように、D14S43/D14S71クラスターおよびD14S76/D14S273クラスター内の遺伝子座の相対的順序を明確に決定するのは不可能であった。PAC1クローンは、D14S277がD14S268に対してテロメリック（telomeric）であることを示唆し、
他方、遺伝子マップは逆の順序を示唆した。さらに、最も貧弱なコンセンサス物理的マップに基づき、かつ遺伝子マップから、STSを含有することが予測される少なくとも１つのYACクローンにおいて、数個のSTSプローブは、ハイブリダイゼーションパターンを検出す
ることができなかった。例えば、D14S268(AFM265)およびRSCAT7STSはYAC788H12には存在
しなかった。これらの結果は再現性があり、かついくつかの異なるSTSマーカーで起こっ
たので、これらの結果は、おそらく、YACクローンの１つの内の小さな隙間の欠失の存在
を反映する。
実施例２ 染色体14q24.3マーカーについての累積的２−点ロッド（lod）スコア
各マイクロサテライト遺伝子座（Weissenbachら, 1992; Gyapayら,1994)について特異
的なプライマー配列を用い、以前に記載されたように（St. George-Hyslopら, 1992)、全ての利用可能な罹患したまたは罹患していない家系メンバーの100ngのゲノムDNAから、PCRによって、各多型マイクロサテライトマーカー遺伝子座での遺伝子型を決定した。同一
人種集団からの配偶者および他の神経学的に正常な被験体を用い、各対立遺伝子の正常集団頻度を決定したが、混成の白色人種集団について確立されたものと有意に異ならなかった（Weissenbachら,1992;Gyapayら, 1994)。最大尤度計算により、発症年齢の修正（an age of onset correction）、混成の白色人種被験体の公表されたシリーズから得られたマーカー対立遺伝子頻度、および以前に記載されたような（St.George-Hyslopら,1992)、1:1000のAD3変異についての見積もられた対立遺伝子頻度が推定された。同等なマーカー対
立遺伝子頻度、および以前に記載された罹患した家系メンバーのみからの表現型情報を用
い、分析を反復して、最大尤度計算で使用した見積もられたパメーターにおける不正確さが、分析を誤まらせないことを確実とした（St.George-Hyslopら,1992)。これらの補足的分析は、連鎖を支持する証拠または組換え事象の発見のいずれかを有意に変更しなかった。
実施例３ FADにおいてAD3を有する隣接マーカー分離体間のハプロタイプ
１４の早期発症FAD家系(家系NIH2、MGH1、Tor1.1、FAD4、FAD1、MEX1、およびFAD2）において、AD3とともに分離する染色体14の親のコピー上のセントロメリック（centromeric）およびテロメリック隣接マーカー間の拡張されたハプロタイプは、家系特異的ロッドスコア＞+3.00を示し、D14S258およびD14S53の間に少なくとも１つのマーカーを有する。同様の人種集団起源のいくつかの家系において分離する染色体を有する疾患の２つの領域で、同一の部分的ハプロタイプが観察された。領域Ａにおいて、共有される対立遺伝子が、D14S268（「Ｂ」；対立遺伝子サイズ＝126bp、正常白色人種における対立遺伝子頻度＝0.04；「Ｃ」；サイズ＝124bp、頻度＝0.38）；D14S277（「Ｂ」：サイズ＝156bp、頻度＝0.19、「Ｃ」：サイズ＝154bp、頻度＝0.33）；およびRSCAT6（「Ｄ」；サイズ＝111bp、
頻度0.25；「Ｅ」：サイズ＝109bp、頻度＝0.20；「Ｆ」：サイズ＝107bp、頻度＝0.47）で観察される。領域Ｂにおいては、同一サイズの対立遺伝子が、D14S43（「Ａ」：サイズ＝193bp、頻度＝0.01；「Ｄ」：サイズ＝187bp、頻度＝0.12；「Ｅ」：サイズ＝185bp、
頻度＝0.26；「Ｉ」：サイズ＝160bp、頻度＝0.38）；D14S273（「３」：サイズ＝193bp
、頻度＝0.38；「４」サイズ＝191bp、頻度＝0.16；「５」：サイズ＝189bp、頻度＝0.34；「６」：サイズ＝187bp、頻度＝0.02）およびD14S76（「１」：サイズ＝bp、頻度＝0.01；「５」：サイズ＝bp、頻度＝0.38；「６」：サイズ＝bp、頻度＝0.07；「９」：サイ
ズ＝bp、頻度＝0.38）で観察される。詳細については、Sherringtonら,(1995)を参照のこと。
実施例４ AD3インターバルからの転写配列の回収
直接的ハイブリダイゼーション方法を用い、AD3インターバルにコードされた推定転写
配列を回収した。ここでは、ヒト脳mRNAから生じた短いcDNAフラグメントを、固定化したクローン化ゲノムDNAフラグメントにハイブリダイズさせた（Rommensら,1993)。得られた短い推定転写配列をプローブとして用いて、ヒト脳cDNAライブラリーから、より長い転写物を回収した（Stratagene, LaJolla)。元の短いクローンの物理的位置、および引き続いて獲得されたより長いcDNAクローンの物理的位置を、コンティグ内の個々のYACクローン
から単離したEcoRI消化した全DNAサンプルのパネルを含有するサザンブロットにプローブをハイブリダイズさせることによって生じたハイブリダイゼーションパターンの分析によって確立した。自動サイクル配列決定（AppliedBiosystems Inc., CA)によって、より長
いcDNAクローンの各々のヌクレオチド配列を決定し、そしてブラスト（blast）アルゴリ
ズム(Altschulら,1990)を用いて、ヌクレオチドおよびタンパク質データベースにおける
他の配列と比較した。転写された配列についての受託番号は：L40391、L40392、L40393、L40394、L40395、L40396、L40397、L40398、L40399、L40400、L40401、L40402、およびL40403である。
実施例５ 制限酵素を用いるPS1遺伝子における変異の位置決定
95℃×20秒、60℃×20秒、72℃×5秒の30サイクルにて、100ngのゲノムDNA鋳型、2mMMgCl2、10ピコモルの各プライマー、0.5UのTaqポリメラーゼ、250μM dNTPを用いて、84bp
のゲノムエクソンフラグメントを増幅するために、配列番号１のbp907〜925に本質的に対応する末端標識プライマー、および配列番号１のbp1010〜990の相補物に対応する非標識
プライマーを用いるPCRによって、DdeI制限部位を生じるA246E変異の存在を、ゲノムDNA
においてアッセイした。製造業者のプロトコルに従って、産物を過剰のDdeIと共に２時間インキュベートし、そして得られた制限フラグメントを６％非変性ポリアクリルアミドゲルで分離し、そしてオートラジオグラフィーで可視化した。DdeI制限部位の存在による84
bpフラグメントの切断から、変異の存在が推定された。FAD1家系の全ての罹患したメンバー、および数人の危険な状態のメンバーは、DdeI部位を保有していた。真性逸脱者（疾患にかかっていない個体、年齢＞70歳）のいずれも、そして正常コントロールのいずれも、DdeI変異を保有していなかった。
実施例６ 対立遺伝子特異的オリゴヌクレオチドを用いるPS1遺伝子における変異の位
置決定
対立遺伝子特異的オリゴヌクレオチドを用い、C410Y変異の存在をアッセイした。2.5mMMgCl2を除く上記反応条件、および94℃×20秒、58℃×20秒、および72℃10秒のサイクル
条件を用い、配列番号１のbp1451〜1468に対応するエクソン配列プライマー、および配列番号14のbp719〜699と相補的な反対のイントロン配列プライマーを用いて、100ngのゲノ
ムDNAを増幅した。得られた216bpゲノムフラグメントを、0.4MNaOH、25mM EDTA中の10倍
希釈によって変性し、そして二連のナイロン膜に真空スロット−ブロットした。（配列番号１のbp1468〜1486に対応する）末端標識「野生型」プライマー、および（1477位におけるＧ→Ａ置換を有する以外は同一配列に対応する）末端標識「変異」プライマーを、48℃にて、５×SSC、５×デンハルト、0.5％SDS中にて、スロット−ブロットフィルターの別
々のコピーに１時間ハイブリダイズさせ、次いで、23℃にて２×SSC中で、そして50℃に
て２×SSC、0.1％SDS中で連続的に洗浄し、次いで、Ｘ−線フィルムに感光させた。AD3およびNIH2家系の全てのテスト可能な罹患したメンバーならびに数人の危険な状態のメンバーは、C410Y変異を保有していた。SSCPによりC410Y変異を検出しようとする試みにより、共通のイントロン配列多型が同一SSCPパターンで移動することが明らかにされた。
実施例７ 種々の組織におけるPS1タンパク質mRNAの発現を示すノーザンハイブリダイ
ゼーション
CsCl精製のような標準的な手法を用い、外科的病理学から得られた種々の組織サンプル（心臓、脳、および胎盤、肺、肝臓、骨格筋、腎臓、および脾臓の異なる領域を含む）から、全細胞質RNAを単離した。次いで、RNAをホルムアルデヒドゲルにおいて電気泳動して、サイズ分画を行った。ニトロセルロース膜を調製し、次いで、RNAを膜に移した。32P-
標識cDNAプローブを調製し、そしてプローブとRNAとの間のハイブリダイゼーションが起
こるように膜に添加した。洗浄した後、膜をプラスチックフィルム中に包み、そしてＸ−線フィルムを含有するイメージングカセットに入れた。次いで、オートラジオグラフィーを行って、１〜数日間現像した。標準的なRNAマーカーとの比較によって、サイズ分類を
確立した。オートラジオグラフィーの解析により、3.0kbのサイズにおいて顕著なバンド
が明らかになった（Sherringtonら,1995の図２を参照のこと）。これらのノーザンブロットは、PS1遺伝子が調べた組織の全てで発現されることを示した。
実施例８ 真核生物および原核生物発現ベクター系
真核生物および原核生物発現系で使用するのに適した構築物を、PS1ヌクレオチドcDNA
配列インサートの３つの異なるクラスを用いて作製した。第１のクラス（全長構築物という）においては、全PS1cDNA配列を、正しい方向で発現プラスミドに挿入し、これは、天
然の5'UTRおよび3'UTRの両配列ならびに全オープンリーディングフレームを含んだ。このオープンリーディングフレームはヌクレオチド配列カセットを有し、このヌクレオチド配列カセットは、野生型オープンリーディングフレームが発現系に含まれることを可能とするか、あるいは、単一または二重変異の組合せをオープンリーディングフレームに挿入することができる。これは、酵素NarIおよびPflmIを用いて野生型オープンリーディングフ
レームから制限フラグメントを除去し、そして逆転写酵素PCRによって生じた類似のフラ
グメントでそれを置き換え、そしてM146L変異またはH163R変異のいずれかをコードするヌクレオチド配列を保有させることによって達成された。酵素PflmIおよびNcoIでの切断に
よって、オープンリーディングフレームについての野生型正常ヌクレオチド配列から第２の制限フラグメントを除去し、そしてA246E変異、A260V変異、A285V変異、L286V変異、L3
92V変異、またはC410Y変異をコードするヌクレオチド配列を有する制限フラグメントで置き換えた。タンデムに、M146LまたはH163R変異のいずれかと、残りの変異のうちの１つとの組合せを有する第３の変異体を、前者の変異の１つを有するNarI-PflmIフラグメント、および後者の変異の１つを有するPflmI-NcoIフラグメントを連結することによって作製した。
全長野生型または変異cDNA配列から5'UTR、および3'UTR配列の一部を除去することによって、第２のクラス（短縮型構築物という）のcDNAインサートを構築した。5'UTR配列を
、KpnI制限部位（GGTAC/C）および小配列（GCCACC）を含有する合成オリゴヌクレオチド
で置き換えて、PS1ORFの始まり（配列番号１のbp249〜267）のATG付近にKozak開始部位を作製した。3'UTRを、5'末端に人工EcoRI部位を有する配列番号１のbp2568〜2586の相補物に対応するオリゴヌクレオチドで置き換えた。次いで、上記の変異配列を、上記のNarI-PflmIおよびPsImI-NcoI部位に挿入することによって、この構築物の変異体を作製した。
第３のクラスの構築物は、クローンcc44由来の配列を含み、これは、エクソン４のオルタナティブスプライスの結果、Ｎ末端の４残基の削除が起こったものであった（配列番号３）。
真核生物発現については、制限消化によってSV60プロモーターカセットを除去し、そしてpcDNA3のCMVプロモーターエレメント（Invitrogen)で置き換えた発現ベクターpZeoSV中に、上記の野生型および変異配列を有するこれらの種々のcDNA構築物をクローン化した。原核生物発現については、グルタチオンＳ−トランスフェラーゼ（GST）融合ベクターpGEX-kgを用いて、構築物が作製されている。GST融合ヌクレオチド配列に付着させたインサ
ートは、正常のオープンリーディングフレームヌクレオチド配列を有するか、または上記の単一および二重変異の組合せを有する上記の同一ヌクレオチド配列である。これらのGST融合構築物は、変異または野生型GST融合タンパク質として原核細胞系における部分的または全長のタンパク質の発現を可能とし、従って、全長タンパク質の精製、続くトロンビン消化によるGST融合産物の除去を可能とする。GST融合ベクターを用いて、さらなるcDNA構築物を作製して、野生型ヌクレオチド配列として、またはA285V変異、L286V変異、もしくはL392V変異のいずれかを有する変異配列として、全長タンパク質のTM6とTM7との間の
親水性酸性ループドメインに対応するアミノ酸配列の産生を可能とする。これは、5'BamHI制限部位（G/GATCC）を有する配列番号１のbp1044〜1061に対応する5'オリゴヌクレオチドプライマー、および5'EcoRI制限部位（G/AATTC）を有する配列番号１のbp1476〜1458の相補物に対応する3'プライマーを用い、適切なRNAの供給源から野生型または変異配列を
回復させることによって達成された。これは、pGEX-KGベクター内のBamHIおよびEcoRI部
位における親水性酸性ループドメインに対応する適切な変異または野生型ヌクレオチド配列のクローニングを可能とした。
実施例９ PS1遺伝子におけるさらなる変異の位置決定
PS1遺伝子における変異は、成熟mRNA／cDNA配列またはゲノムDNAを表すRT-PCR産物を用い、種々のストラテジー（直接的ヌクレオチド配列決定、対立遺伝子特異的オリゴ、連結ポリメラーゼ連鎖反応、SSCP、RFLP）によってアッセイされ得る。A260VおよびA285V変異については、このエクソンを有するゲノムDNAを、L286V変異と同一のPCRプライマーおよ
び方法を用いて増幅し得る。
次いで、PCR産物を変性し、そしてC410Y変異について記載したスロットブロットプロトコルを用い、二連のナイロン膜にスロットブロットした。
48℃におけるハイブリダイゼーション、続く0.1％SDSを含有する３×SSC緩衝液中での52℃における洗浄によって、野生型配列（配列番号１のbp1017〜1036）または変異配列（b
p1027にＣ→Ｔを有するbp1017〜1036）に対応する末端標識対立遺伝子特異的オリゴヌク
レオチドとのハイブリダイゼーションを用いて、A260V変異をこれらのブロットにおいて
得点付けた。代わりに、48℃において野生型配列（配列番号１のbp1093〜1111）または変異プライマー（bp1102にＣ→Ｔを有する配列番号１のbp1093〜1111）に対する対立遺伝子特異的オリゴヌクレオチドを用いる以外は上記のように、続いて、洗浄溶液が２×SSCで
ある以外は上記のように52℃で洗浄することにより、A285V変異を、これらのスロットブ
ロットにおいて得点付けた。
マグネシウム濃度が2mMであり、かつサイクル条件が94℃×10秒、56℃×20秒、および72℃×10秒である以外は標準的なPCR緩衝液条件を用い、プライマー（配列番号14のbp439
〜456に対応する5'、および配列番号14の719〜699に相補的な3'）を用い、ゲノムDNAからのエクソンの増幅によって、L392V変異を得点付けた。C410Y変異について記載したように、得られた200塩基対ゲノムフラグメントを変性し、そして二連でナイロン膜にスロット
−ブロットした。次いで、変異の存在または非存在を、45℃におけるハイブリダイゼーション、次いで23℃における２×SSCおよび次いでの68℃における２×SSC中での連続的な洗浄によって、野生型末端標識オリゴヌクレオチド（配列番号１のbp1413〜1431）または末端標識変異プライマー（bp1422にＣ→Ｇを有する配列番号１のbp1413〜1431）のいずれかへの差別的なハイブリダイゼーションによって得点付けた。
実施例10 抗体産生
PS1タンパク質の一部に対応するペプチド抗原を固相技術によって合成し、そして逆相
高圧液体クロマトグラフィーによって精製した。プレセニリンフラグメントのペプチドＣ末端におけるシステイン残基の添加によって可能になったジスルフィド結合を介して、ペプチドをキーホールリンペットヘモシアニン（KLH）に共有結合させた。このさらなる残
基は、タンパク質配列が正常ではないと思われ、そしてKLH分子への結合を容易にするた
めに含まれたにすぎない。抗体が惹起された特異的プレセニリン配列は以下の通りである：
ポリクローナル抗体＃ hPS1抗原（配列番号：２）
1142 30〜44
519 109〜123
520 304〜318
1143 346〜360
これらの配列は、PS1タンパク質の特異的ドメイン内に含まれる。例えば、残基30〜44
はＮ末端内にあり、残基109〜123はTM1→２ループ内にあり、そして残基304〜318および346〜360は大きなTM6→７ループ内にある。これらのドメインの各々は、水性媒体に暴露され、そして疾患表現型の発生に重要な他のタンパク質への結合に関与し得る。ペプチドの選択は、IBIPustell抗原性予測アルゴリズムを用いるタンパク質配列の分析に基づくものであった。
合計３匹のニュージランド白ウサギを、フロイントのアジュバントと組み合わせて各ペプチド抗原についてのペプチド-KLH複合体で免疫化し、続いて、７日間隔でブースター注射した。抗血清を各ペプチドについて収集し、そしてプールし、そして硫酸アンモニウムを用いてIgGを沈殿させた。次いで、抗体を、適切なペプチドにカップリングさせたスル
ホ−連結アガロース（Pierce)でアフィニティー精製した。この最終精製は、免疫前また
は免疫後のいずれかの血清中に存在する他の抗体の非特異的相互作用を除去するのに必要である。
各抗体の特異性を、３つのテストで確認した。第１に、各々は、脳ホモゲネートのウェスタンブロットにおいてプレセニリン−１について予測されたおよそのサイズの単一の支配的バンドを検出した。第２に、各々は、適切な配列を有する組換え融合タンパク質と交
差反応した。第３に、各々は、組換えPS1または免疫化ペプチドでの予備吸着によって特
異的にブロックされ得た。
さらに、２つの異なるPS1ペプチドグルタチオンＳ−トランスフェラーゼ（GST）融合タンパク質を用いて、PS1抗体を作製した。最初の融合タンパク質は、GSTに融合したPS1の
アミノ酸1〜81（Ｎ末端）を含んでいた。第２の融合タンパク質は、GSTに融合したPS1の
アミノ酸266〜410（TM6→７ループドメイン）を含んでいた。これらの融合タンパク質を
コードする構築物を、pGEX-2T発現プラスミド（Amrad)中に適切なヌクレオチド配列を挿
入することによって作製した。得られた構築物は、GSTをコードする配列、ならびにGSTとPS1ペプチドとの間のトロンビン感受性切断のための部位を含んでいた。発現構築物を、DH5aE. coliにトランスフェクトし、そして融合タンパク質の発現を、IPTGを用いて誘導した。細菌ペレットを溶解させ、そしてグルタチオンセファロースビーズ（Boehringer-Mannheim,Montreal)における単一工程アフィニティークロマトグラフィーによって、可溶性GST−融合タンパク質を精製した。標準的な手順を用い、このGST−融合タンパク質を用い
て、マウスを免疫化して、モノクローナル抗体を作製した。これらのマウスから得られたクローンを、精製されたプレセニリンフラグメントを用いてスクリーニングした。
さらに、GST−融合タンパク質をトロンビンで切断して、PS1ペプチドを遊離させた。遊離されたペプチドをサイズ排除ＨＰＬＣによって精製し、そしてこれを用いて、ポリクローナル抗血清の作製のためにウサギを免疫化した。
同様の方法によって、プレセニリン−２のアミノ酸1〜87（Ｎ末端）、または272〜390
（TM6→TM7ループ）のためのヌクレオチド配列を含む構築物を用い、GST融合タンパク質
を作製し、そしてこれを使用してこのタンパク質に対するモノクローナル抗体を作製した。PS2−GST融合タンパク質もまたトロンビンで切断し、そしてこの遊離され、精製されたペプチドを用いて、ウサギを免疫化して、ポリクローナル抗血清を調製した。
実施例11 PS2遺伝子における変異の同定
888bp産物については、配列番号18のbp478〜496に対応する5'プライマー、および配列
番号18のbp1366〜1348と相補的な3'プライマーを有する第１のオリゴヌクレオチドプライマー対、そして826bp産物については、配列番号18のbp1083〜1102に対応する5'プライマ
ーおよび配列番号18のbp1909〜1892と相補的な3'プライマーを有する第２のプライマー対を用い、PS2ORFに対応するRT-PCR産物を、リンパ芽球または凍結した死後脳組織のRNAか
ら生成した。250mMolのdNTP、2.5mM MgCl2、10pMolのオリゴヌクレオチドを用いて、10ml中で、94℃×20秒、58℃×20秒、72℃×45秒の40サイクルでサイクルさせるPCRを行った
。自動サイクル配列決定（ABI,Foster City, CA)によってPCR産物を配列決定し、蛍光ク
ロマトグラムを、直接的観察によって、およびFactura (バージョン1.2.0)およびSequenceNavigator (バージョン1.0.1bl5)ソフトウェアパッケージによって、ヘテロ接合ヌクレ
オチド置換についてスキャンした（データは示さず）。
N141I変異の検出：ヌクレオチド787におけるＡ→Ｔ置換は、BclI制限部位を生じさせる。この変異を有するエクソンを、配列番号18のbp733〜751（末端標識）に対応するオリゴヌクレオチド、および配列番号18のbp846〜829の相補物の各10pMol、ならびにM239V変異
について下記するものと同様のPCR反応条件を用い、100ngのゲノムDNAから増幅した。製
造業者のプロトコルに従い、BclI（NEBL,Beverly, MA)を用いて2mlのPCR産物を10mlの反
応容量中で制限酵素処理し、そしてこの産物を非変性ポリアクリルアミドゲル電気泳動によって分離した。野生型配列を有する被験体においては、114bpのPCR産物を、68bpおよび46bpのフラグメントに切断する。変異配列は、産物を、53bp、46bp、および15bpに切断させる。
M239V変異の検出：ヌクレオチド1080におけるＡ→Ｇ置換は、NlaIII制限部位を欠失さ
せ、配列番号18のbp1009〜1026に対応するオリゴヌクレオチド、および配列番号18のbp1118〜1101の相補物の各10pMolを用いる100ngのゲノムDNAからの増幅によって、M239V変異
の存在の検出を可能にする。PCR条件は：0.5UTaqポリメラーセ゛、250mM dNTP、1mCi α32P-dCTP、1.5mM MgCl2、10ml容量；94℃×30秒、58℃×20秒、72℃×20秒の30サイクルであり、110bp産物を生成した。2mlのPCR反応物を10mlに希釈し、そして3UのNlaIII（NEBL,Beverly, MA)で３時間制限酵素処理した。非変性ポリアクリルアミドゲル電気泳動によって制限産物を分離し、そしてオートラジオグラフィーにより可視化させた。正常被験体は、55、35、15、および6bpの切断産物を示し、他方、変異配列は、55、50、および6bpのフラグメントを与える。
I420T変異の検出：上記の手順と同様に、配列番号18のbp1576〜1593に対応するプライ
マー、および配列番号18のbp1721〜1701の相補物を用いるゲノムDNAのPCR増幅によって、I420T変異をスクリーニングして、146塩基対産物を生成し得る。次いで、この産物を、野生型配列（例えば、配列番号18のbp1616〜1632）、および変異配列（例えば、bp1624においてＴ→Ｃ置換を有する配列番号18のbp1616〜1632）について、対立遺伝子特異的オリゴヌクレオチドでプローブし得る。
実施例12 トランスジェニックマウス
トランスジェニックマウスの調製において用いるために、一連の野生型および変異PS1
およびPS2遺伝子を構築した。PS1およびPS2の変異バージョンを、標準的な技術を用いて
、クローン化cDNAcc33（PS1）およびcc32（PS2）の部位特異的変異誘発によって作製した。
cDNA cc33およびcc32、ならびにそれらの変異バージョンを用いて、実施例８に記載の
ように、変異および野生型PS1およびPS2cDNAの２つのクラスを調製した。第１のクラス（「全長」cDNAという）を、EcoRI（PS1）またはPvuII（PS2）での消化によって、ポリＡ部位の直前の３’非翻訳領域のほぼ200bpを除去することによって調製した。第２のクラス
（「短縮型」cDNAという）を、ATG開始コドンの5'側に隣接して配置したリボソーム結合
部位（Kozakコンセンサス配列）で5'非翻訳領域を置き換えることによって調製した。
上記のように調製した種々の全長および短縮型の野生型および変異PS1およびPS2cDNAを、以下の１つ以上のベクターに導入し、そして得られた構築物を、トランスジェニックマウスの作製のための遺伝子の供給源として使用した。
cos.TET発現ベクター：このベクターは、SyrianハムスターPrP遺伝子を含有するコスミドクローンに由来した。これは、Scottら(1992)およびHsiaoら(1995)によって詳細に記載されている。PS1およびPS2cDNA（全長または短縮型）を、このベクターにSalI部位で挿入した。最終構築物は、挿入されたcDNAに隣接する20kbの5'配列を含む。この5'隣接配列は、PrP遺伝子プロモーター、50bpのPrP遺伝子5'非翻訳領域エクソン、スプライスドナー部位、１kbイントロン、およびSalI部位（この中にPS1またはPS2cDNAが挿入された）に丁度隣接して位置するスプライスアクセプター部位を含む。挿入されたcDNAに隣接する3'配列は、ポリアデニル化シグナルを含むPrP3'非翻訳領域のほぼ８kbセグメントを含む。NotI
（PS1）またはFseI（PS2）でのこの構築物の消化は、PrPプロモーターの制御下にある変
異または野生型PS遺伝子を含有するフラグメントを遊離した。遊離されたフラグメントをゲル精製し、そしてHsiaoら(1995)の方法を用い、受精したマウス卵の生殖核に注入した
。
血小板由来成長因子レセプターβ−サブユニット構築物：ヒト血小板由来成長因子レセプターβ−サブユニットプロモーターの3'末端において、SalI（全長PS1 cDNA）またはHi
ndIII（短縮型PS1 cDNA、全長PS2 cDNA、および短縮型PS2cDNA）の間にPS cDNAをまた挿
入し、そしてSV40ポリＡ配列の5'末端におけるEcoRI部位および全カセットを、pZeoSVベ
クター（Invitrogen,San Diego, CA)にクローン化した。ScaI/BamHI消化によって遊離さ
れたフラグメントをゲル精製し、そしてHsiaoら（1995）の方法を用い、受精したマウス
卵の生殖核に注入した。
ヒトβ−アクチン構築物：PS1およびPS2 cDNAを、pBAcGHのSalI部位に挿入した。この
挿入によって生じた構築物は、3.4kbのヒトβアクチン5'隣接配列（ヒトβアクチンプロ
モーター、スプライシングされた78bpのヒトβアクチン5'非翻訳エクソンおよびイントロン）、およびPS1またはPS2インサート、続いて、いくつかのイントロンおよびエクソンを含有する2.2kbのヒト成長ホルモンゲノム配列、ならびにポリアデニル化シグナルを含む
。SfiIを用いて、PS-含有フラグメントを遊離させ、これをゲル精製し、そしてHsiaoら（1995)の方法を用い、受精したマウス卵の生殖核に注入した。
ホスホグリセレートキナーゼ構築物：PS1およびPS2 cDNAをpkJ90ベクターに導入した。このcDNAを、ヒトホスホグリセレートキナーゼプロモーターの下流のKpnI部位と、ヒトホスホグリセレートキナーゼ遺伝子の3'非翻訳領域の上流のXbaI部位との間に挿入した。PvuII/HindIII（PS1cDNA）またはPvuII（PS2 cDNA）消化を用いて、PS−含有フラグメント
を遊離させ、次いでこれをゲル精製し、そして上記のように受精したマウス卵の生殖核に注入した。
実施例１３ 真核生物細胞における組換えPS1およびPS2の発現
pcDNA3ベクター（Invitrogen, San Diego, CA)を用い、組換えPS1およびPS2を、種々の細胞型（例えば、PC12、神経芽細胞、チャイニーズハムスター卵巣、およびヒト胚性腎臓293細胞）で発現させた。このベクターに挿入されたPS1およびPS2cDNAは、実施例８で記
載されたものと同一の全長および短縮型cDNAであった。
これらのcDNAを、CMVプロモーターと、pcDNA3のウシ成長ホルモンポリアデニル化部位
との間に挿入した。トランスジーンは高レベルで発現された。
さらに、PS1およびPS2を、pCMXベクターを用いてCOS細胞で発現した。プレセニリンタ
ンパク質の細胞内位置決定のタギングおよび追跡を容易にするために、ヒトc-myc抗原（
例えば、Evanら,1985を参照のこと)に由来する11アミノ酸の配列をコードし、かつモノクロメーナル抗-myc抗体MYC 1-9E10.2（Product CRL 1729,ATCC, Rockville, Md.)によって認識されるオリゴヌクレオチドを、PS1およびPS2 cDNAのオープンリーディングフレーム
の直前または直後のいずれかにインフレームで連結した。タグ化していないｐCMX構築物
もまた調製した。また、c-myc-タグ化構築物もまた、CHO細胞へのトランスフェクション
のためにpcDNA3に導入した。
製造業者のプロトコルに従ってLipofectamine (Gibco/BRL)を用い、これらの構築物の
一過性でかつ安定なトランスフェクションを達成している。48時間後、一過性発現について培養物をアッセイした。安定にトランスフェクトされた株を、0.5mg/mlゲネチシン（Geneticin)（Gibco/BRL)を用いて選択した。
上記の抗プレセニリン抗体1142、519、および520を用いるウェスタンブロットによって、トランスフェクトしたPSタンパク質の発現をアッセイした。略言すれば、培養したトランスフェクト細胞を可溶化し（2％SDS、5mMEDTA、1mg/mlロイペプチンおよびアプロチニ
ン）、そしてタンパク質濃度をLowryによって測定した。タンパク質をSDS-PAGEグラジエ
ントゲル（４〜20％Novex)で分離し、そして一定のボルト数（50V）にて２時間で、PVDF(10mMCAPS)に移した。非特異的結合をスキムミルク（５％）を用いて、１時間でブロッキ
ングした。次いで、タンパク質を、２つのウサギポリクローナル抗体（TBS、pH7.4中で約1mg/ml）を用いて12時間プローブした。西洋ワサビペルオキシダーゼ結合ストレプトアビジン（strepavadin）、第三級４−クロロ−ナフトール（napthol）、および過酸化水素を用いて可視化したビオチン化ヤギ−抗ウサギ二次抗体を用い、プレセニリン交差反応種を同定した。上記の両方の抗プレセニリン抗体を用い、c-myc-タグ化プレセニリンペプチドをウェスタンブロットによってアッセイし（プレセニリンペプチド抗原を検出するため）、そしてハイブリドーマMYC1-9E10.2からの培養上清を、ウェスタンブロットに関して1:10、および免疫細胞化学に関して1:3に希釈した（myc−エピトープを検出するため）。50
〜60kDaの免疫反応性の主要バンドを、種々のプレセニリン抗体の各々によって、およびmyc-エピトープ抗体によって（myc-含有プラスミドでトランスフェクトした細胞株につい
て）同定した。約10〜19kDaおよび約70kDaにおけるマイナーなバンドを、いくつかのプレセニリン抗体によって検出した。
免疫細胞化学では、トランスフェクトした細胞を、Tris緩衝化生理食塩水（TBS）中の
４％ホルムアルデヒドで固定し、TBS+0.1％Tritonで十分に洗浄し、そして非特異的結合
を3％BSAでブロッキングした。固定した細胞を、プレセニリン抗体（例えば、上記の抗体520および1142；代表的には５〜10mg/ml）でプローブし、洗浄し、そしてFITC-またはロ
ーダミン−結合ヤギ−抗ウサギ二次抗体で可視化した。c-myc-タグ化プレセニリン構築物について、１：３に希釈したハイブリドーマMYC1-9E10.2上清を抗マウス２次抗体ととも
に用いた。スライドを、0.1％フェニレンジアミン（ICN）を含む90％グリセロール中に封入し、蛍光を維持した。抗BIP（または、抗カルネキシン（calnexin））（StressGen,Victoria, B．C．)および小麦胚芽凝集素(EY Labs,San Mateo, CA)を、それぞれ、小胞体お
よびゴルジのマーカーとして使用した。二重−免疫標識をまた、ニューロン株NSC34にお
いて抗アクチン（Sigma,St. Louis, Mo.)、抗アミロイド前駆体タンパク質（22C11, Boehringer Mannheim)、および抗ニューロフィラメント（NF-M特異的、Sigma)を用いて行った。これらの免疫蛍光研究は、トランスフェクション産物が、小胞体およびゴルジ装置を示唆する特に強い核周辺局在化（これは、トランスフェクトしていない細胞で観察されるものと同様であるが、より強く、時々核膜に溢れ出る）とともに、細胞内に広く分布することを証明する。myc-タグ化プレセニリン構築物で一過的にトランスフェクトしたCHOおよ
びCOS細胞で、c-mycおよびPSエピトープの同時免疫局所化が観察された。
従って、トランスフェクトした細胞におけるトランスフェクトしたプレセニリン遺伝子の強力な発現が、免疫細胞化学、ノーザンブロット、ウェスタンブロット（上記のプレセニリンに対する抗体を用い、そして3'または5'c-mycタグを含有する構築物におけるmycタグに対するモノクローナル抗体MYC 1-9E10.2を用いる）によって判明した。
実施例14 アフィニティークロマトグラフィーによるプレセニリン結合タンパク質の単離
プレセニリンの生化学的機能に関与し得るタンパク質を同定するために、PS1−結合タ
ンパク質を、アフィニティークロマトグラフィーを用いて単離した。実施例８に記載したように調製したPS1TM6→７ループを含有するGST−融合タンパク質を用いて、生理食塩水
中で、ポリトロンにより脳組織をホモゲナイズすることによって調製したヒト脳抽出物をプローブした。グルタチオン−セファロースビーズとのインキュベーションにより内因性GST−結合成分の脳ホモゲネートを予め清澄化することによって、非特異的結合を排除し
た。次いで、これらのGSTを含まないホモゲネートを、GST-PS融合タンパク質と共にイン
キュベートして、機能的結合タンパク質との所望の複合体を作製した。次いで、これらの複合体を、アフィニティーグルタチオン−セファロースビーズを用いて回収した。リン酸緩衝化生理食塩水で十分に洗浄した後に、SDS-ポリアクリルアミドゲル電気泳動（SDS-PAGE；Tris-tricinグラジエントゲル４〜20％）によって、単離したタンパク質の収集物を
分離した。50〜60kDの範囲のいくつかの弱いバンドに加えて、２つの主要なバンドが、約
14kDおよび20kDで観察された。
これらのタンパク質とTM６→７ループとの間の相互作用の薬理学的改変は、アルツハイマー病の処置において使用され得る。さらに、おそらくプレセニリン生化学経路内で作用するこれらのタンパク質は、アルツハイマー病を引き起こす新規の変異部位であり得る。
実施例15 ２−ハイブリッド酵母系によるプレセニリン結合タンパク質の単離
プレセニリンタンパク質と相互作用するタンパク質を同定するために、PS1タンパク質
の残基266〜409、またはPS2タンパク質の残基272〜390のいずれかをコードするインフレ
ームの部分的cDNA配列を、ベクターのEcoRIおよびBamHI部位に連結することによって、酵母発現プラスミドベクター（pAS2-1、Clontech)を作製した。得られた融合タンパク質は
、PS1タンパク質のTM6→７ループ、またはPS2タンパク質のTM6→７ループのいずれかにインフレームで結合したGAL4DNA結合ドメインを含有する。Clontech Matchmaker酵母２−ハイブリッドキット（Clontech)のプロトコルを用い、これらの発現プラスミドを、ヒト脳cDNA：pACTライブラリー由来の精製したプラスミドDNAと共に、酵母に同時形質転換した。TM6→７ループドメインと相互作用するヒト脳cDNAを有する酵母クローンを、HIS抵抗性およびβgal+活性化によって選択した。このクローンを、シクロヘキサミド感受性によってさらに選択し、そしてヒト脳cDNAのインサートをPCRによって単離し、そして配列決定し
た。600万の最初の形質転換体のうち、200のポジティブクローンが、HIS選択の後に得ら
れ、そしてポジティブコロニーの選択についての製造業者のプロトコルに従って行ったβgal+色選択の後には42のポジティブクローンが得られた。これらの42のクローンのうち、同一遺伝子を表すいくつか（５〜８）の独立したクローンが存在した。このことは、これらの相互作用が生物学的に実在し、かつ再現性があることを示す。
実施例16 トランスジェニックC. elegans
トランスジェニックC. elegansを、卵母細胞のマイクロインジェクションによって得た。ベクターpPD49.3 hsp16-41およびpPD49.78 hsp16-2をこの目的のために選択した。これらのベクターのうち最初のものを用い、正常hPS1遺伝子または変異体（L392V）を導入し
たトランスジェニックC.elegansを作製した。上記のヒトcDNAプローブcc32および抗体519、520、および1142を用い、ノーザンブロットまたはウェスタンブロットにおいてヒトcDNAの発現をアッセイすることによって、形質転換動物を検出した。シス二重変異hPS1遺伝
子（M146LおよびL392V）、正常hPS2遺伝子、および変異（N141I）hPS2遺伝子を有するベ
クターをまた調製し、そして／または注入した。
実施例17 DrosophilaプレセニリンホモログであるDmPSのクローニング
Trpで終わり／始まる（例えば、PS1における残基Trp247およびTrp404にて；PS2におけ
るTrp253およびTrp385にて）プレセニリン／sel-12タンパク質の高度に保存された領域の公表されたヌクレオチド配列データから、重複するオリゴヌクレオチド5'ctnccn gar tgg
acn gyc tgg（配列番号22）、および5'rca ngc (agt)at ngt ngt rtt cca（配列番号23
）を設計した。これらのプライマーを、成体および胚のD.melanogaster由来のmRNAから、RT-PCR（50ml容量、2mM MgCl2、94℃×30秒、57℃×20秒、72℃×20秒の30サイクル）の
ために用いた。次いで、94℃×1分、59℃×0.5分、および72℃×1分のサイクル条件およ
び内部の保存された重複プライマー5'tttttt ctc gag acn gcn car gar aga aay ga（配
列番号24）、および5'ttt ttt gga tcc tar aa(agt)atr aar tcn cc（配列番号25）を用
いて、生成物を再増幅した。約600bpの生成物を、pBSのBamHIおよびXhoI部位にクローン
化した。これらの生成物を配列決定し、そしてこれは、ヒトプレセニリンのアミノ酸配列に高度に相同な推定アミノ酸配列を有するオープンリーディングフレームを含有することが示された。次いで、このフラグメントを用いて、従来のD.melanogaster cDNA/Zapライ
ブラリー（Stratagene, CA)をスクリーニングして、サイズ約２〜2.5kbの６つの独立したcDNAクローン（クローンpds8、pds13、pds1、pds3、pds7、およびpds14）を回収し、これ
を配列決定した。最長のORFは、ヒトプレセニリンと52％の同一性を有する541アミノ酸のポリペプチドをコードする。
実施例18 Ａβペプチドの長いイソ型についてのアッセイ
PS1またはβAPP717変異を有するFAD；この病気の家族歴が知られていない散発性AD；他の成人発症神経変性性障害（HD＝ハンチントン病；ALS＝筋萎縮性側索硬化症）；ダウン
症候群（DS）；および神経学的徴候のないコントロール被験体の組織病理学的に確認された症例の凍結した大脳皮質から、Ａβペプチドを９９％ギ酸で60分間（20℃）抽出した。200,000×gで20分間遠心分離した後、上清をペレットから分離し、希釈し、中和し、そしてELISAによって調べた。Ａβの異なる種を定量するために、４つのモノクローナル抗体
を使用した。抗体BNT-77（これは、Ａβの中央由来のエピトープを検出する）、および抗体BAN-50（これは、Ｎ末端残基を検出する）を最初に用いて、Ｎ末端短縮型を有するかまたは有さない（BNT-77）、あるいはＮ末端短縮型のみを有さない（BAN-50）、異種形態を含むＡβの全てのタイプに結合させた。次いで、残基40で終わる短いテールのＡβ（抗体BA-27）または残基42/43で終わる長いテールのＡβ（抗体BC-05）のいずれかを特異的に
検出する２つのさらなるモノクローナル抗体を用いて、Ａβの異なるＣ末端形態を区別した。以前に記載されているように（Tamaokaら,1994; Suzukiら, 1994)、２部位ELISAを行った。略言すると、脳組織由来の100μgの標準ペプチドまたは上清を、BNT-77抗体でコーティングしたマイクロプレートに適用し、４℃で24時間インキュベートし、リン酸緩衝化生理食塩水で洗浄し、次いで、HRP-標識BA-27およびBC-05抗体と共に４℃で24時間インキュベートした。以前に記載されたように、TNBマイクロウェルペルオキシダーゼ系を用い
、発色によってHRP活性をアッセイした。皮質Ａβレベルを、対（paired）Studentt-検定を用いて診断群間を比較した。平均検定のStudent-Newman-Keuls多重比較を用いる、全てのＡβイソ型データの連合評価により、βAPP717および散発性AD被験体からのＡβ1-42レベルがPS1変異症例についてのものとは区別されるが、コントロールとは類似することが
明らになった。対照的に、Ａβx-42レベルを考慮した場合、３つの群が区別可能であった：高（PS1およびβAPP717AD）、中（散発性AD）および低（コントロール）。
詳細には、人生の40代および50代で発症する他の神経変性性疾患を有する５人の被験体を含む、14のコントロール被験体の大脳皮質における種々のＡβイソ型の濃度の測定は、短いテールのＡβ（Ａβ1-40;0.06±0.02nMol/グラム湿潤組織±SEM;Aβx-40:0.17±0.40）、および長いテールのＡβ（Ａβ1-42/43:0.35±0.17;Aβx-42/43:1.17±0.80）の両方の低濃度のみを明らかにした。対照的に、長いテールのＡβペプチドは、PS1変異を有す
る全ての４人の被験体の大脳皮質で有意に上昇していた（Ａβ1-42/43:6.54±2.0、p=0.05;Aβx-42/43:23.91±4.00、p<0.01）。長いテールのＡβペプチドの濃度における同様の増加が、βAPP717変異を有する被験体（Aβ1-42/43:2.03±1.04;Aβx-42/43;25.15±5.74）、および散発性ADを有する被験体（Aβ1-42/43:1.21±0.40、P=0.008;Aβx-42/43:14.45±2.81、P=0.001）の両方の皮質で検出された。PS1またはβAPP717変異を有する被験体
においては、Ａβの長いテールのイソ型におけるこの増加は、短いテールのＡβイソ型における小さいが有意でない増加を伴った（例えば、PS1変異体におけるＡβx-40:3.08±1.31;βAPP717変異体における1.56±0.07）。従って、短いイソ型に対する長いイソ型の比
率も有意に増加した。しかし、散発性AD症例において、代表的には、長いテールのＡβにおいて観察された増加は短いテールのＡβイソ型におけるかなり大きな増加を伴った（Ａβ1-40:3.92±1.42;Aβx-40:16.60±5.88）。短いテールのＡβにおけるこの増加は、コ
ントロールと比較した場合に統計的に有意であった（Ａβ1-40およびＡβx-40の両方についてp<0.03）が、PS1およびβAPP717症例と比較した場合は、ボーダーラインで統計的に
有意であった（p0.05）。ダウン症候群を有する成人被験体由来の皮質サンプルの分析は
、散発性ADにおいて観察されたものと同様のパターンを示した。
本発明の好ましい実施態様を本明細書中に詳細に記載してきたが、本発明の精神または
添付の請求の範囲の範囲を逸脱することなく、本発明に変形をもたらし得ることは、当業者に理解される。
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Claims (47)

  1. 配列番号１、または配列番号３からなる群より選択される核酸配列によって規定されるヒトプレセニリン−１遺伝子の対立遺伝子改変体を同定する方法であって、該方法は、
    ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で該ヒトプレセニリン−１遺伝子配列にハイブリダイズし得る核酸プローブまたはプライマーを選択する工程；
    該改変体に対応する核酸を含み得る核酸のサンプルと、該プローブまたはプライマーを混合する工程；
    該改変体に対応する該核酸への該プローブまたはプライマーのハイブリダイゼーションを検出する工程、
    を包含する、方法。
  2. 配列番号１８によって規定されるヒトプレセニリン−２遺伝子の対立遺伝子改変体を同定する方法であって、該方法は、
    ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で該ヒトプレセニリン−２遺伝子配列にハイブリダイズし得る核酸プローブまたはプライマーを選択する工程；
    該改変体に対応する核酸を含み得る核酸のサンプルと、該プローブまたはプライマーを混合する工程；
    該改変体に対応する該核酸への該プローブまたはプライマーのハイブリダイゼーションを検出する工程、
    を包含し、該改変体が、配列番号１８に対する番号でＡ７８７ＴおよびＡ１０８０Ｇからなる群より選択される少なくとも１つの変異を有する、方法。
  3. 請求項１または２に記載の方法であって、前記サンプルは、ヒトゲノムＤＮＡ、ヒトｍＲＮＡ、およびヒトｃＤＮＡからなる群より選択される核酸のサンプルを含む、方法。
  4. 請求項１または２に記載の方法であって、前記サンプルは、哺乳動物ゲノムＤＮＡ、哺乳動物ｍＲＮＡ、および哺乳動物ｃＤＮＡからなる群より選択される核酸のサンプルを含む、方法。
  5. 請求項１または２に記載の方法であって、前記サンプルは、無脊椎動物ゲノムＤＮＡ、無脊椎動物ｍＲＮＡ、および無脊椎動物ｃＤＮＡからなる群より選択される核酸のサンプルを含む、方法。
  6. 請求項１〜５のいずれか１項に記載の方法であって、前記改変体に対応する核酸を単離する工程をさらに包含する、方法。
  7. 請求項１〜６のいずれか１項に記載の方法であって、前記核酸は、ハイブリダイゼーションによって同定される、方法。
  8. 請求項１〜６のいずれか１項に記載の方法であって、前記核酸は、ＰＣＲ増幅によって同定される、方法。
  9. 配列番号１および３からなる群より選択される核酸によって規定されるヒトプレセニリン−１遺伝子の対立遺伝子改変体を同定する方法であって、該方法は、
    配列番号２または４によって規定されるヒトプレセニリン−１タンパク質に選択的に結合し得る抗体を選択する工程；
    該抗体と、該改変体に対応するタンパク質を含み得るタンパク質のサンプルとを混合する工程；
    該抗体の、該改変体に対応するタンパク質への結合を検出する工程、
    を包含する、方法。
  10. 配列番号１８によって規定されるヒトプレセニリン−２遺伝子の対立遺伝子改変体であって、該改変体が、配列番号１８に対する番号でＡ７８７ＴおよびＡ１０８０Ｇからなる群より選択される、ヒトプレセニリン−２遺伝子の対立遺伝子改変体を同定する方法であって、該方法は、
    配列番号１９によって規定される改変ヒトプレセニリン−２タンパク質に選択的に結合し得る抗体を選択する工程；
    該抗体と、該改変体に対応するタンパク質を含み得るタンパク質のサンプルとを混合する工程；
    該抗体の、該改変体に対応するタンパク質への結合を検出する工程、
    を包含し、該改変体が、配列番号１９に対する番号でＮ１４１ＩおよびＭ２３９Ｖからなる群より選択される少なくとも１つの変異を有する、方法。
  11. 請求項９または１０に記載の方法であって、前記サンプルは、ヒトタンパク質、ヒト融合タンパク質、およびそれらのタンパク質分解フラグメントからなる群より選択されるタンパク質のサンプルを含む、方法。
  12. 請求項９または１０に記載の方法であって、前記サンプルは、哺乳動物タンパク質、哺乳動物融合タンパク質、およびそれらのタンパク質分解フラグメントからなる群より選択されるタンパク質のサンプルを含む、方法。
  13. 請求項９または１０に記載の方法であって、前記サンプルは、無脊椎動物タンパク質、無脊椎動物融合タンパク質、およびそれらのタンパク質分解フラグメントからなる群より選択されるタンパク質のサンプルを含む、方法。
  14. 請求項８〜１３のいずれか１項に記載の方法であって、前記改変体に対応するタンパク質
    を実質的に精製する工程をさらに包含する、方法。
  15. ａ）配列番号２のヒトプレセニリン−１アミノ酸配列を含むタンパク質、
    ｂ）配列番号４のヒトプレセニリン−１アミノ酸配列を含むタンパク質、
    ｃ）配列番号１７のマウスプレセニリン−１アミノ酸配列を含むタンパク質、および
    ｄ）ａ）、ｂ）またはｃ）のタンパク質のアミノ酸配列に少なくとも９０％同一なアミノ酸配列からなるタンパク質
    から選択される、プレセニリン−１タンパク質の抗原決定基に選択的に結合する単離された抗体。
  16. 前記タンパク質は、ａ）、ｂ）またはｃ）のタンパク質のアミノ酸配列に少なくとも９５％同一なアミノ酸配列からなる、請求項１５に記載の単離された抗体。
  17. 前記タンパク質は、
    ａ）配列番号２において、残基２５７がアラニンに置換され、残基２５８〜２９０が削除されているアミノ酸配列を含む、プレセニリン−１タンパク質、および
    ｂ）配列番号４において、残基２５３がアラニンに置換され、残基２５４〜２８６が削除されているアミノ酸配列を含む、プレセニリン−１タンパク質
    からなる群より選択されるプレセニリンタンパク質を含む、請求項１５に記載の単離された抗体。
  18. 前記タンパク質は、
    ａ）配列番号２のアミノ酸配列、
    ｂ）配列番号４のアミノ酸配列、
    ｃ）配列番号１７のアミノ酸配列、
    ｄ）配列番号２において、残基２５７がアラニンに置換され、残基２５８〜２９０が削除されている、アミノ酸配列、および
    ｅ）配列番号４において、残基２５３がアラニンに置換され、残基２５４〜２８６が削除されている、アミノ酸配列
    からなる群より選択されるアミノ酸配列を含み、
    該アミノ酸配列は、Ａｌａ７９から別のアミノ酸への変異、Ｖ８２Ｌ、Ｖ９６Ｆ、Ｙ１１５Ｈ、Ｍ１３９Ｔ、Ｍ１３９Ｖ、Ｉ１４３Ｔ、Ｍ１４６Ｌ、Ｍ１４６Ｖ、Ｈ１６３Ｒ、Ｈ１６３Ｙ、Ｌ１７１Ｐ、Ｇ２０９Ｖ、Ｉ２１１Ｔ、Ａ２３１Ｔ、Ａ２４６Ｅ、Ａ２６０Ｖ、Ｃ２６３Ｒ、Ｐ２６４Ｌ、Ｐ２６７Ｓ、Ｅ２８０Ａ、Ｅ２８０Ｇ、Ａ２８５Ｖ、Ｌ２８６Ｖ、Δ２９１−３１９、Ｇ３８４Ａ、Ｌ３９２ＶおよびＣ４１０Ｙからなる群より選択される配列番号２の変異に対応する変異からなる群より選択される少なくとも１つの変異を有する、請求項１５に記載の単離された抗体。
  19. 哺乳動物プレセニリンタンパク質に結合する単離された抗体であって、該哺乳動物プレセニリンタンパク質は、配列番号２または４に記載のアミノ酸配列を含む、単離された抗体。
  20. 配列番号２または４の少なくとも６個の連続するアミノ酸残基に結合する、請求項１９に記載の抗体。
  21. 配列番号２のアミノ酸残基３０−４４、１０９−１２３、３０４−３１８、および３４６−３６０からなる群より選択されるアミノ酸配列に結合する、請求項２０に記載の抗体。
  22. モノクローナル抗体である、請求項１９に記載の抗体。
  23. ヒト化抗体である、請求項１９に記載の抗体。
  24. 請求項２２に記載の抗体を産生する、ハイブリドーマ。
  25. 生物学的サンプルにおける哺乳動物プレセニリンタンパク質の存在を検出する方法であって、該方法は、
    （ｉ）該生物学的サンプルと、請求項１９に記載の抗体とを接触させる工程、
    （ｉｉ）該サンプルと該抗体とを、該抗体が該サンプルへ結合して複合体を形成するのを誘導する条件下でインキュベートする工程、
    （ｉｉｉ）該複合体を該サンプルから分離する工程、および
    （ｉｖ）該複合体を検出する工程
    を包含する、方法。
  26. 前記抗体は、配列番号２のアミノ酸残基３０−４４、１０９−１２３、３０４−３１８、および３４６−３６０からなる群より選択されるアミノ酸配列に結合する、請求項２５に記載の方法。
  27. 前記抗体は、配列番号２および配列番号４のいずれか一方の抗原性ペプチドに対して惹起される、請求項１９に記載の抗体。
  28. 前記ペプチドが、配列番号２のアミノ酸残基３０−４４、１０９−１２３、３０４−３１８、および３４６−３６０からなる群より選択されるアミノ酸配列に結合する、請求項２７に記載の抗体。
  29. 哺乳動物プレセニリンタンパク質、または配列番号２のアミノ酸残基３０−４４、１０９−１２３、３０４−３１８および３４６−３６０からなる群より選択されるその抗原性フラグメントに対して惹起された、単離された抗体であって、該哺乳動物プレセニリンタンパク質が、配列番号２または４に記載のアミノ酸配列を含む、単離された抗体。
  30. モノクローナル抗体である、請求項２９に記載の抗体。
  31. ポリクローナル抗体である、請求項２９に記載の抗体。
  32. ヒト化抗体である、請求項２９に記載の抗体。
  33. 請求項３０に記載の抗体を産生する、ハイブリドーマ。
  34. 変異哺乳動物プレセニリンタンパク質に結合する単離された抗体であって、該哺乳動物プレセニリンタンパク質が、野生型哺乳動物プレセニリンに対して少なくとも１個の変異を含み、該変異は、Ｍ１４６Ｌ；Ｈ１６３Ｒ；Ａ２４６Ｅ；Ｌ２８６Ｖ；およびＣ４１０Ｙからなる群より選択され、該野生型哺乳動物プレセニリンは、配列番号２または４に記載のアミノ酸配列を有する、単離された抗体。
  35. モノクローナル抗体である、請求項３４に記載の抗体。
  36. 請求項３５に記載の抗体を産生する、ハイブリドーマ。
  37. 変異哺乳動物プレセニリンタンパク質に対して惹起された単離された抗体であって、該変異哺乳動物プレセニリンタンパク質は、野生型哺乳動物プレセニリンに対して少なくとも１個の変異を含み、該変異は、Ｍ１４６Ｌ；Ｈ１６３Ｒ；Ａ２４６Ｅ；Ｌ２８６Ｖ；およびＣ４１０Ｙからなる群より選択され、該野生型哺乳動物プレセニリンは、配列番号２または４に記載のアミノ酸配列を有する、単離された抗体。
  38. モノクローナル抗体である、請求項３７に記載の抗体。
  39. ポリクローナル抗体である、請求項３７に記載の抗体。
  40. 請求項３８に記載の抗体を産生する、ハイブリドーマ。
  41. 変異哺乳動物プレセニリンタンパク質に結合する単離された抗体であって、該変異哺乳動物プレセニリンタンパク質は、野生型哺乳動物プレセニリンに対して少なくとも１個の変異を含み、該変異は、Ａ２６０Ｖ；Ａ２８５Ｖ；およびＬ３９２Ｖからなる群より選択され、該野生型哺乳動物プレセニリンは、配列番号２または４に記載のアミノ酸配列を有する、単離された抗体。
  42. モノクローナル抗体である、請求項４１に記載の抗体。
  43. 請求項４２に記載の抗体を産生する、ハイブリドーマ。
  44. 変異哺乳動物プレセニリンタンパク質に対して惹起された単離された抗体であって、該変異哺乳動物プレセニリンタンパク質は、野生型哺乳動物プレセニリンに対して少なくとも１個の変異を含み、該変異は、Ａ２６０Ｖ；Ａ２８５Ｖ；およびＬ３９２Ｖからなる群より選択され、該野生型哺乳動物プレセニリンが、配列番号２または４に記載のアミノ酸配列を有する、単離された抗体。
  45. モノクローナル抗体である、請求項４４に記載の抗体。
  46. ポリクローナル抗体である、請求項４４に記載の抗体。
  47. 請求項４５に記載の抗体を産生する、ハイブリドーマ。
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