JP5344516B2

JP5344516B2 - 形質転換酵母を用いたヒト型セラミドの製造方法

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Publication number: JP5344516B2
Application number: JP2007149657A
Authority: JP
Inventors: 由紀子児玉; 宏明奥原; 耕一船戸
Original assignee: Hiroshima University NUC; Suntory Holdings Ltd
Current assignee: Hiroshima University NUC; Suntory Holdings Ltd
Priority date: 2007-06-05
Filing date: 2007-06-05
Publication date: 2013-11-20
Anticipated expiration: 2027-06-05
Also published as: JP2008301721A; US8367375B2; KR20100043172A; CA2689988A1; EP2157186A4; US20100304467A1; WO2008149665A1; AU2008259104A1; EP2157186B1; CN102317466A; EP2157186A1

Description

本発明は、ヒト型セラミドを酵母細胞内などの細胞内で製造する方法に関する。

皮膚の最外層には、水分を保持する保湿機能と外部刺激から肌を保護するバリア機能を司る角質層という組織が存在する。角質層は角質細胞と天然保湿因子、そして細胞間脂質から構成されているが、その中でも特に細胞間脂質の約半分を占めるセラミドが、それらの機能に極めて重要な役割を担っている。例えば、アトピー性皮膚炎や老人性乾皮症に共通する特徴は保湿能の著しい低下であるが、その主因は脂質代謝酵素異常によるセラミド量の減少であることが知られている。またセラミドはバリア機能の増強・美白作用やメラニンの生成を抑制する作用があることも確認されている。セラミドは外部から補給することが可能な物質である。

J Invest Dermatol. 96:523-526, 1991（非特許文献１）、Arch Dermatol Res. 283:219-223,1991（非特許文献２）は、「アトピー性皮膚炎や老人性乾皮症におけるセラミド量の減少」について、J Dermatol Sci. 1:79-83, 1990（非特許文献３）、Acta Derm Venereol. 74:337-340, 1994（非特許文献４）は、「セラミド量の減少と脂質代謝酵素異常」について、Contact Dermatitis. 45:280-285, 2001（非特許文献５）、J Eur Acad Dermatol Venereol. 16:587-594, 2002（非特許文献６）は、「セラミドによるバリア機能の回復」について、そして、Cell Signal 14:779-785, 2002（非特許文献７）は、「セラミドによるメラニン生成の抑制」について開示している。

近年では、乾燥敏感肌を伴う皮膚疾患に対する治療薬あるいは化粧品・美容健康食品の素材として大変注目されている。実際、化粧品、食品・サプリメント等として、セラミドを配合した多くの製品がすでに市販されており、さらに、セラミド原料市場規模は拡大傾向が続いている。

セラミドの原料としては、これまで牛などの動物由来のものが使われていたが、感染症の問題が指摘され、現在では米、小麦、大豆や芋などの植物性セラミドが主流である。最近の基礎的研究（J. Clin. Invest. 112:1372-1382, 2003（非特許文献８））により、セラミドの構造が皮膚の保湿・バリア能に極めて重要であることが明らかとなり、ヒトのセラミドと構造が異なる植物性セラミドが機能性の高い脂質であるかどうか疑問が残る。しかも動植物に存在するセラミドは微量で抽出・精製が困難であり、生産性が悪い上コストが高いことから、それらを克服することが可能な新しい生産技術の開発が強く望まれている。

図１に示したように、スフィンゴ脂質合成・代謝経路においてジヒドロスフィンゴシン（ＤＨＳ）生合成以降の反応は、ヒトを含む高等動物細胞と酵母の間で大きく異なることが知られている。また、スフィンゴ脂質合成・代謝経路において、各工程において機能する各酵素タンパク質及び当該タンパク質をコードする遺伝子についても、ある程度知見が得られている（Biochemistry. 41:15105-15114. 2002（非特許文献９）；J Biol Chem. 277:25512-25518,2002（非特許文献１０）；Yeast 9: 267-277,1993（非特許文献１１）；J Biol Chem 272:29704-29710,1997（非特許文献１２）；J Biol Chem 275:31369-31378, 2000（非特許文献１３）；J Biol Chem 275:39793-39798, 2000（非特許文献１４））。
J Invest Dermatol. 96:523-526, 1991 Arch Dermatol Res. 283:219-223,1991 J Dermatol Sci. 1:79-83, 1990、 Acta Derm Venereol. 74:337-340, 1994 Contact Dermatitis. 45:280-285, 2001、 J Eur Acad Dermatol Venereol. 16:587-594, 2002 Cell Signal 14:779-785, 2002 J. Clin. Invest. 112:1372-1382, 2003 Biochemistry. 41:15105-15114. 2002 J Biol Chem. 277:25512-25518,2002 Yeast 9: 267-277,1993 J Biol Chem 272:29704-29710,1997 J Biol Chem 275:31369-31378, 2000 J Biol Chem 275:39793-39798, 2000

植物性セラミドはヒトのセラミドと構造が異なる上に生産性が低い。それらを克服するために、ヒト型セラミドを酵母細胞などの細胞を用いて製造することが可能な、新しい生産技術の開発が強く望まれている。

本発明者らは、上記問題解決のために鋭意研究に努めた結果、本発明を想到した。
本発明は、遺伝子組み換え技術と真核生物のセラミド合成・代謝および輸送システムを巧く制御することにより、機能性の高いヒト型セラミドを効率的に生産する系を開発する。そのため遺伝子操作が比較的容易であり、しかも伝統的に食品製造に利用されている出芽酵母を宿主として用いる。

具体的には、ヒトの角質層に存在し、そのなかでも分布量が最も多く皮膚の保湿・バリア機能に極めて重要であると言われているセラミドＮＳをターゲットにする。セラミドの構造は細胞が持っている酵素の種類によって決定されており生物種で異なる。宿主として用いる出芽酵母は、高等動物の主なセラミドであるセラミドＮＳを合成する酵素を持っていない。その代わり宿主には宿主特有のセラミドを合成する酵素を有している。そのため酵母でセラミドＮＳを合成させるためには、宿主由来のセラミド合成経路を抑制し、且つ必要な酵素を酵母に導入する必要がある。

具体的には、図１に示したように、スフィンゴ脂質合成・代謝経路においてジヒドロスフィンゴシン（ＤＨＳ）生合成以降の反応は、ヒトを含む高等動物細胞と酵母の間で大きく異なる。即ち、出芽酵母（サッカロミセス属）では、スフィンゴリピッド Δ４−デサチュラーゼ遺伝子（ＤＥＳ１）が存在しないことから、ＤＨＳのＣ−４位に二重結合を有するヒト型スフィンゴイド塩基（スフィンゴシン）は合成されない（図２）。その代わりスフィンガニンＣ４−ヒドロキシラーゼ遺伝子（ＳＵＲ２）がコードする酵素によってＤＨＳのＣ−４位が水酸化されフィトスフィンゴシン（ＰＨＳ）が合成される。あるいは、スフィンゴイド塩基リン酸化酵素遺伝子（ＬＣＢ４)がコードする酵素によって、ＤＨＳをリン酸化してジヒドロスフィンゴシン１リン酸を合成する。

スフィンゴイド塩基が効率よく合成されれば、セラミドへと変換されることが期待される。
本発明者らは、まずヒト型セラミドを酵母細胞内で製造させるために、１）酵母細胞内には存在しないスフィンゴリピッド Δ４−デサチュラーゼ酵素を酵母細胞内で発現させること、２）スフィンガニンＣ４−ヒドロキシラーゼ酵素活性を完全に又は部分的にでも破壊すること、そして、３）スフィンゴイド塩基リン酸化酵素活性を完全に又は部分的にでも破壊することが重要であること考えた。そこで先ず、酵母の形質転換により、上述したＳＵＲ２遺伝子、ＬＣＢ４遺伝子破壊株を作成し、その変異株にヒトＤＥＳ１遺伝子を導入する、ということを想到した。これにより、従来不可能であったヒト型セラミドの酵母細胞内での製造が初めて可能になった。

本発明において、ヒト型セラミドは、例えば図２の「目的生産物」に示された構造式を有する、セラミドＮＳを意味する。これに対して酵母型セラミドであるフィトセラミドは、ヒト型セラミドの４位の二重結合部分が水酸基で置換されている点で相違する（図３）。

さらにまた、ヒト型セラミドＮＳを効率的に生産させるシステムを構築するために、本発明の製造方法の最適化を行った。具体的な方法としては、酵母の形質転換によって、以下の４）の工程を行い、ヒト型セラミドをより効率よく製造することに成功した：
４）セラミドＮＳが水酸化されないように酵母スフィンゴ脂質 α−ヒドロキシラーゼ遺伝子（ＳＣＳ７）の発現を欠失させること。

よって、本発明は、上記１）−３）を必須要件とし、４）を好ましい態様の追加要件として行うことにより、ヒト型セラミドを酵母細胞内で簡便かつ効率よく製造する方法を提供するものである。本発明は、好ましくは以下の態様を含む。
（態様１）
ヒト型セラミドを酵母細胞内で製造する方法であって、
１）酵母細胞の形質転換によって、スフィンゴイド Δ４−デサチュラーゼ遺伝子（ＤＥＳ１）を導入すること；
２）酵母細胞の形質転換によって、酵母スフィンガニンＣ４−ヒドロキシラーゼ遺伝子（ＳＵＲ２）の発現を欠失させること；及び
３）酵母細胞の形質転換によって、酵母スフィンゴイド塩基リン酸化酵素遺伝子（ＬＣＢ４)の発現を欠失させること
を含む、前記製造方法。
（態様２）
酵母スフィンゴイド塩基リン酸化酵素遺伝子（ＬＣＢ４)が、配列番号１０のアミノ酸配列又は配列番号１０において１またはそれ以上のアミノ酸残基が欠失、付加または置換しているアミノ酸配列を有しており、かつ、スフィンゴイド塩基リン酸化活性を有するタンパク質をコードする、態様１に記載の方法。
（態様３）
スフィンゴイド Δ４−デサチュラーゼ遺伝子（ＤＥＳ１）が、配列番号２のアミノ酸配列又は配列番号２において１またはそれ以上のアミノ酸残基が欠失、付加または置換しているアミノ酸配列を有しており、かつ、スフィンゴイド Δ４−デサチュラーゼ活性を有するタンパク質をコードする、態様１又は２に記載の方法。
（態様４）
酵母スフィンガニンＣ４−ヒドロキシラーゼ遺伝子（ＳＵＲ２）が、配列番号６のアミノ酸配列又は配列番号６において１またはそれ以上のアミノ酸残基が欠失、付加または置換しているアミノ酸配列を有しており、かつ、スフィンガニンＣ４−ヒドロキシラーゼ活性を有するタンパク質をコードする、態様１ないし３のいずれか１項に記載の方法。
（態様５）
さらに、４）酵母細胞の形質転換によって、酵母スフィンゴ脂質 α−ヒドロキシラーゼ遺伝子（ＳＣＳ７）の発現を欠失させることを含む、態様１ないし４のいずれか１項に記載の方法。
（態様６）
酵母スフィンゴ脂質 α−ヒドロキシラーゼ遺伝子（ＳＣＳ７）が、配列番号８のアミノ酸配列又は配列番号８において１またはそれ以上のアミノ酸残基が欠失、付加または置換しているアミノ酸配列を有しており、かつ、スフィンゴ脂質 α−ヒドロキシラーゼ活性を有するタンパク質をコードする、態様１ないし５のいずれか１項に記載の方法。
（態様７）
酵母が、サッカロミセス属の酵母から選択される、態様１ないし６のいずれか１項に記載の方法。
（態様８）
１）スフィンゴイド Δ４−デサチュラーゼ遺伝子（ＤＥＳ１）の導入に際し、各々異なる選択マーカーを含む２種以上のＤＥＳ１発現ベクターを用いる、態様１ないし７のいずれか１項に記載の方法。

スフィンゴリピッド Δ４−デサチュラーゼ遺伝子（ＤＥＳ１）
本発明の方法は構成要件１）として、酵母細胞の形質転換によって、スフィンゴリピッド Δ４−デサチュラーゼ遺伝子（ＤＥＳ１）を導入することを含む。

限定されるわけではないが、ＤＥＳ１は、好ましくは、配列番号２のアミノ酸配列又は配列番号２において１またはそれ以上のアミノ酸残基が欠失、付加または置換しているアミノ酸配列を有しており、かつ、スフィンゴリピッド Δ４−デサチュラーゼ活性を有するタンパク質をコードする。

本発明に利用可能な遺伝子（核酸）は、ゲノムＤＮＡ（その対応するｃＤＮＡも含む）、化学的に合成されたＤＮＡ、ＰＣＲにより増幅されたＤＮＡ、およびそれらの組み合わせが含まれる。

ＤＥＳ１は、好ましくは配列番号１の塩基配列を有する。これは配列番号２のアミノ酸配列を有するヒトスフィンゴリピッド Δ４−デサチュラーゼタンパク質をコードする塩基配列であり、例えば、ＧｅｎＢａｎＫ^TM：ａｃｃｅｓｓｉｏｎｎｕｍｂｅｒＡＦ４６６３７５に開示されている
１つ以上のコドンが同一のアミノ酸をコードする場合があり、遺伝暗号の縮重と呼ばれている。このため、配列番号１とは完全には一致していないＤＮＡ配列が、配列番号２と全く同一のアミノ酸配列を有するタンパク質をコードすることがあり得る。こうした変異体ＤＮＡ配列は、サイレント（ｓｉｌｅｎｔ）突然変異（例えば、ＰＣＲ増幅中に発生する）から生じてもよいし、または天然配列の意図的な突然変異誘発の産物であってもよい。

ＤＥＳ１は、好ましくは配列番号２に記載のアミノ酸配列をコードする。しかしながら、これに限定されることなく、１またはそれ以上のアミノ酸配列が欠失、付加または置換しているアミノ酸配列を有していてもよい。スフィンゴリピッド Δ４−デサチュラーゼ活性を有する限り、全ての相同タンパク質を含むことが意図される。配列番号２と同等の機能を有するアミノ酸配列をコードする限り、配列番号２に限定されるものではない。「アミノ酸変異」は１から複数個、好ましくは、１ないし２０個、より好ましくは１ないし１０個、最も好ましくは１ないし５個である。

ＤＥＳ１にコードされるアミノ酸配列は、配列番号２に記載のアミノ酸配列と、少なくとも約７０％、好ましくは約８０％以上、より好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上、最も好ましくは９８％以上の同一性を有する。

アミノ酸の同一性パーセントは、視覚的検査及び数学的計算により決定してもよい。あるいは、２つのタンパク質配列の同一性パーセントは、Ｎｅｅｄｌｅｍａｎ，Ｓ．Ｂ．及びＷｕｎｓｃｈ，Ｃ．Ｄ．（Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，４８：４４３−４５３，１９７０）のアルゴリズムに基づき、そしてウィスコンシン大学遺伝学コンピューターグループ（ＵＷＧＣＧ）より入手可能なＧＡＰコンピュータープログラムを用い配列情報を比較することにより、決定してもよい。ＧＡＰプログラムの好ましいデフォルトパラメーターには：（１）Ｈｅｎｉｋｏｆｆ，Ｓ及びＨｅｎｉｋｏｆｆ，Ｊ．Ｇ．（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８９：１０９１５−１０９１９，１９９２）に記載されるような、スコアリング・マトリックス、ｂｌｏｓｕｍ６２；（２）１２のギャップ加重；（３）４のギャップ長加重；及び（４）末端ギャップに対するペナルティなし、が含まれる。

当業者に用いられる、配列比較の他のプログラムもまた、用いてもよい。同一性のパーセントは、例えばＡｌｔｓｃｈｕｌら（Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ．Ｒｅｓ．２５．，ｐ．３３８９−３４０２，１９９７）に記載されているＢＬＡＳＴプログラムを用いて配列情報と比較し決定することが可能である。当該プログラムは、インターネット上でＮａｔｉｏｎａｌＣｅｎｔｅｒｆｏｒＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙＩｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ（ＮＣＢＩ）、あるいはＤＮＡＤａｔａＢａｎｋｏｆＪａｐａｎ（ＤＤＢＪ）のウェブサイトから利用することが可能である。ＢＬＡＳＴプログラムによる相同性検索の各種条件（パラメーター）は同サイトに詳しく記載されており、一部の設定を適宜変更することが可能であるが、検索は通常デフォルト値を用いて行う。

本発明の方法において、好ましくは、スフィンゴリピッド Δ４−デサチュラーゼが、配列番号２又は配列番号２と少なくとも７０％の同一のアミノ酸配列を有しており、かつ、スフィンゴリピッド Δ４−デサチュラーゼ活性を有する。

同一の機能を有するタンパク質であっても、由来する品種の相違によって、そのアミノ酸配列に相違が存在しうることは当業者にとって周知の事実である。スフィンゴリピッド Δ４−デサチュラーゼ活性を有する限り、ＤＥＳ１は、配列番号１の塩基配列のこのような相同体、変異体も含みうる。配列番号２のヒトスフィンゴリピッド Δ４−デサチュラーゼタンパク質以外にも、例えばマウス（Ｍ．ｍｕｓｃｕｌｕｓ）やショウジョウバエ（Ｄ．ｍｅｌａｎｏｇａｓｔｅｒ）、線虫（Ｃ．ｅｌｅｇａｎｓ）、分裂酵母（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓｐｏｍｂｅ）等で同様の活性を示すタンパク質をコードする遺伝子の存在が知られている（非特許文献１０）。

「スフィンゴリピッド Δ４−デサチュラーゼ活性を有する」とは、例えば図２又は図３に示されているように、ジヒドロスフィンゴシンのＣ−４にニ重結合を導入し、スフィンゴシンを合成する活性を意味する。あるいは、ジヒドロセラミドのＣ−４にニ重結合を導入し、セラミドＮＳを合成する活性を意味する。ＤＥＳ１の導入により、形質転換酵母細胞内では、酵母の天然の代謝経路では合成されない、スフィンゴシン及び／又はセラミドＮＳの合成が行われる。

本発明の好ましいスフィンゴリピッド Δ４−デサチュラーゼ遺伝子はまた、配列番号１の塩基配列にストリンジェントな条件下、例えば、中程度又は高程度にストリンジェントな条件下でハイブリダイズすることが可能であり、かつ、フィンゴイド Δ４−デサチュラーゼ活性を有する核酸を含む。

「ストリンジェントな条件下」とは、中程度または高程度にストリンジェントな条件においてハイブリダイズすることを意味する。具体的には、中程度にストリンジェントな条件は、例えば、ＤＮＡの長さに基づき、一般の技術を有する当業者によって、容易に決定することが可能である。基本的な条件は、Ｓａｍｂｒｏｏｋら，ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ，第３版，第６−７章，ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ，２００１に示され、そしてニトロセルロースフィルターに関し、５×ＳＳＣ、０．５％ＳＤＳ、１．０ｍＭＥＤＴＡ（ｐＨ８．０）の前洗浄溶液、約４０−５０℃での、約５０％ホルムアミド、２×ＳＳＣ−６×ＳＳＣ（または約４２℃での約５０％ホルムアミド中の、スターク溶液（Ｓｔａｒｋ’ｓｓｏｌｕｔｉｏｎ）などの他の同様のハイブリダイゼーション溶液）のハイブリダイゼーション条件、および例えば、約４０℃−６０℃、０．５−６×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳの洗浄条件の使用が含まれる。好ましくは中程度にストリンジェントな条件は、約５０℃、６×ＳＳＣのハイブリダイゼーション条件（及び洗浄条件）を含む。高ストリンジェントな条件もまた、例えばＤＮＡの長さに基づき、当業者によって、容易に決定することが可能である。

一般に、こうした条件は、中程度にストリンジェントな条件よりも高い温度および／または低い塩濃度でのハイブリダイゼーション（例えば、約６５℃、６×ＳＳＣないし０．２×ＳＳＣ、好ましくは６×ＳＳＣ、より好ましくは２×ＳＳＣ、最も好ましくは０．２×ＳＳＣのハイブリダイゼーション）および／または洗浄を含み、例えば上記のようなハイブリダイゼーション条件、およびおよそ６５℃−６８℃、０．２×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳの洗浄を伴うと定義される。ハイブリダイゼーションおよび洗浄の緩衝液では、ＳＳＣ（１×ＳＳＣは、０．１５ＭＮａＣｌおよび１５ｍＭクエン酸ナトリウムである）にＳＳＰＥ（１×ＳＳＰＥは、０．１５ＭＮａＣｌ、１０ｍＭＮａＨ₂ＰＯ₄、および１．２５ｍＭＥＤＴＡ、ｐＨ７．４である）を代用することが可能であり、洗浄はハイブリダイゼーションが完了した後で１５分間行う。

当業者に知られていて、以下にさらに記載したように、ハイブリダイゼーション反応と二本鎖の安定性を支配する基本原理を適用することによって望ましい度合いのストリンジェンシーを達成するためには、洗浄温度と洗浄塩濃度を必要に応じて調整することが可能であると理解すべきである（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、２００１を参照されたい）。核酸を未知配列の標的核酸へハイブリダイズさせる場合、ハイブリッドの長さはハイブリダイズする核酸のそれであると仮定される。既知配列の核酸をハイブリダイズさせる場合、ハイブリッドの長さは核酸の配列を並列し、最適な配列相補性をもつ単数または複数の領域を同定することによって決定可能である。５０塩基対未満の長さであることが予測されるハイブリッドのハイブリダイゼーション温度は、ハイブリッドの融解温度（Ｔ_m）より５−２５℃低くなければならず、Ｔ_mは、以下の等式により決定される。長さ１８塩基対未満のハイブリッドに関して、Ｔ_m（℃）＝２（Ａ＋Ｔ塩基数）＋４（Ｇ＋Ｃ塩基数）。１８塩基対を超える長さのハイブリッドに関しては、Ｔ_m＝８１．５℃＋１６．６（ｌｏｇ₁₀［Ｎａ⁺］）＋４１（モル分率［Ｇ＋Ｃ］）−０．６３（％ホルムアミド）−５００／ｎであり、ここで、Ｎはハイブリッド中の塩基数であり、そして［Ｎａ⁺］は、ハイブリダイゼーション緩衝液中のナトリウムイオン濃度である（１×ＳＳＣの［Ｎａ⁺］＝０．１６５Ｍ）。好ましくは、こうしたハイブリダイズする核酸は各々、少なくとも８ヌクレオチド（または、より好ましくは、少なくとも１５ヌクレオチド、または少なくとも２０ヌクレオチド、または少なくとも２５ヌクレオチド、または少なくとも３０ヌクレオチド、または少なくとも４０ヌクレオチド、または最も好ましくは少なくとも５０ヌクレオチド）、またはそれがハイブリダイズする核酸の長さの少なくとも１％（より好ましくは少なくとも２５％、または少なくとも５０％、または少なくとも７０％、そして最も好ましくは少なくとも８０）である長さを有し、それがハイブリダイズする核酸と少なくとも５０％（より好ましくは少なくとも７０％、少なくとも７５％、少なくとも８０％、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、少なくとも９７．５％、または少なくとも９９％、そして最も好ましくは少なくとも９９．５％）の配列同一性を有する。ここで配列同一性は、上記により詳しく記載されるように、重複部分と同一性を最大化する一方、配列ギャップを最小化するように並列された、ハイブリダイズする核酸の配列を比較することによって決定される。

核酸の同一性パーセントは、視覚的検査および数学的計算によって決定することが可能である。あるいは、２つの核酸配列のパーセント同一性は、目視検査と数学的計算により決定可能であるか、またはより好ましくは、この比較はコンピュータ・プログラムを使用して配列情報を比較することによってなされる。代表的な、好ましいコンピュータ・プログラムは、遺伝学コンピュータ・グループ（ＧＣＧ；ウィスコンシン州マジソン）のウィスコンシン・パッケージ、バージョン１０．０プログラム「ＧＡＰ」である（Ｄｅｖｅｒｅｕｘら、１９８４、Ｎｕｃｌ．ＡｃｉｄｓＲｅｓ．１２：３８７）。この「ＧＡＰ」プログラムの使用により、２つの核酸配列の比較の他に、２つのアミノ酸配列の比較、核酸配列とアミノ酸配列との比較を行うことができる。ここで、「ＧＡＰ」プログラムの好ましいデフォルトパラメーターには：（１）ヌクレオチドについての（同一物について１、および非同一物について０の値を含む）一元（ｕｎａｒｙ）比較マトリックスのＧＣＧ実行と、ＳｃｈｗａｒｔｚおよびＤａｙｈｏｆｆ監修「ポリペプチドの配列および構造のアトラス（ＡｔｌａｓｏｆＰｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅＳｅｑｕｅｎｃｅおよびＳｔｒｕｃｔｕｒｅ）」国立バイオ医学研究財団、３５３−３５８頁、１９７９により記載されるような、ＧｒｉｂｓｋｏｖおよびＢｕｒｇｅｓｓ，Ｎｕｃｌ．ＡｃｉｄｓＲｅｓ．１４：６７４５，１９８６の加重アミノ酸比較マトリックス；または他の比較可能な比較マトリックス；（２）アミノ酸の各ギャップについて３０のペナルティと各ギャップ中の各記号について追加の１のペナルティ；またはヌクレオチド配列の各ギャップについて５０のペナルティと各ギャップ中の各記号について追加の３のペナルティ；（３）エンドギャップへのノーペナルティ：および（４）長いギャップへは最大ペナルティなし、が含まれる。当業者により使用される他の配列比較プログラムでは、例えば、国立医学ライブラリーのウェブサイト：ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｂｌａｓｔ／ｂｌ２ｓｅｑ／ｂｌｓ．ｈｔｍｌにより使用が利用可能なＢＬＡＳＴＮプログラム、バージョン２．２．７、またはＷＵ−ＢＬＡＳＴ２．０アルゴリズムが使用可能である。ＷＵ−ＢＬＡＳＴ２．０についての標準的なデフォルトパラメーターの設定は、以下のインターネットサイト：ｈｔｔｐ：／／ｂｌａｓｔ．ｗｕｓｔｌ．ｅｄｕに記載されている。さらに、ＢＬＡＳＴアルゴリズムは、ＢＬＯＳＵＭ６２アミノ酸スコア付けマトリックスを使用し、使用可能である選択パラメーターは以下の通りである：（Ａ）低い組成複雑性を有するクエリー配列のセグメント（ＷｏｏｔｔｏｎおよびＦｅｄｅｒｈｅｎのＳＥＧプログラム（ＣｏｍｐｕｔｅｒｓａｎｄＣｈｅｍｉｓｔｒｙ，１９９３）により決定され；ＷｏｏｔｔｏｎおよびＦｅｄｅｒｈｅｎ，１９９６「配列データベースにおける組成編重領域の解析（Ａｎａｌｙｓｉｓｏｆｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎａｌｌｙｂｉａｓｅｄｒｅｇｉｏｎｓｉｎｓｅｑｕｅｎｃｅｄａｔａｂａｓｅｓ）」ＭｅｔｈｏｄｓＥｎｚｙｍｏｌ．２６６：５４４−７１も参照されたい）、または、短周期性の内部リピートからなるセグメント（ＣｌａｖｅｒｉｅおよびＳｔａｔｅｓ（ＣｏｍｐｕｔｅｒｓａｎｄＣｈｅｍｉｓｔｒｙ，１９９３）のＸＮＵプログラムにより決定される）をマスクするためのフィルターを含むこと、および（Ｂ）データベース配列に対する適合を報告するための統計学的有意性の閾値、またはＥ−スコア（ＫａｒｌｉｎおよびＡｌｔｓｃｈｕｌ，１９９０）の統計学的モデルにしたがって、単に偶然により見出される適合の期待確率；ある適合に起因する統計学的有意差がＥ−スコア閾値より大きい場合、この適合は報告されない）；好ましいＥ−スコア閾値の数値は０．５であるか、または好ましさが増える順に、０．２５、０．１、０．０５、０．０１、０．００１、０．０００１、１ｅ−５、１ｅ−１０、１ｅ−１５、１ｅ−２０、１ｅ−２５、１ｅ−３０、１ｅ−４０、１ｅ−５０、１ｅ−７５、または１ｅ−１００である。

同様に、本発明のスフィンゴリピッド Δ４−デサチュラーゼ遺伝子（ＤＥＳ１）には、１つまたは複数の塩基の欠失、挿入または置換のため、配列番号１の塩基配列とは異なるが、スフィンゴリピッド Δ４−デサチュラーゼ活性を有するタンパク質をコードする核酸を含む。スフィンゴリピッド Δ４−デサチュラーゼ活性を有するタンパク質をコードする限り、欠失、挿入または置換される塩基の数は特に制限されないが、好ましくは１個ないし数千個、より好ましくは１個ないし千個、さらにこのましくは１個ないし５００個、さらにより好ましくは１個ないし２００個、最も好ましくは１個ないし１００個である。

既定のアミノ酸を、例えば同様の物理化学的特性を有する残基により置換してもよい。こうした保存的置換の例には、１つの脂肪族残基を互いに、例えばＩｌｅ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、またはＡｌａを互いに置換するもの；ＬｙｓおよびＡｒｇ、ＧｌｕおよびＡｓｐ、またはＧｌｎおよびＡｓｎ間といった、１つの極性残基から別のものへの置換；あるいは芳香族残基の別のものでの置換、例えばＰｈｅ、Ｔｒｐ、またはＴｙｒを互いに置換するものが含まれる。他の保存的置換、例えば、同様の疎水性特性を有する領域全体の置換が、周知である。当業者は、周知の遺伝子工学的手法により、Ｓａｍｂｒｏｏｋら（２００１）（上述）等に記載の、例えば部位特異的突然変異誘発法を使用して、所望の欠失、挿入または置換を施すことが可能である。

酵母スフィンガニンＣ４−ヒドロキシラーゼ遺伝子（ＳＵＲ２）
本発明の方法は構成要件２）として、酵母細胞の形質転換によって、酵母スフィンガニンＣ４−ヒドロキシラーゼ遺伝子（ＳＵＲ２）の発現を欠失させることを含む。

限定されるわけではないが、ＳＵＲ２は、好ましくは、配列番号６のアミノ酸配列又は配列番号６において１またはそれ以上のアミノ酸残基が欠失、付加または置換しているアミノ酸配列を有しており、かつ、スフィンガニンＣ４−ヒドロキシラーゼ活性を有するタンパク質をコードする。

ＳＵＲ２は、好ましくは配列番号５の塩基配列を有する。これは配列番号６のアミノ酸配列を有する酵母スフィンガニンＣ４−ヒドロキシラーゼタンパク質をコードする塩基配列であり、例えば、SGD(Saccharomyces Genome Database, http://www.yeastgenome.org/)に開示されている。

ＳＵＲ２は、好ましくは配列番号６に記載のアミノ酸配列をコードする。しかしながら、これに限定されることなく、１またはそれ以上のアミノ酸配列が欠失、付加または置換しているアミノ酸配列を有していてもよい。スフィンガニンＣ４−ヒドロキシラーゼ活性を有する限り、全ての相同タンパク質を含むことが意図される。配列番号６と同等の機能を有するアミノ酸配列をコードする限り、配列番号６に限定されるものではない。「アミノ酸変異」は１から複数個、好ましくは、１ないし２０個、より好ましくは１ないし１０個、最も好ましくは１ないし５個である。

「スフィンガニンＣ４−ヒドロキシラーゼ活性を有する」とは、例えば図２又は図３に示されているように、ジヒドロスフィンゴシンのＣ−４に水酸基を導入し、フィトスフィンゴシンを合成する活性を意味する。あるいは、ジヒドロセラミドのＣ−４に水酸基を導入し、フィトセラミドを合成する活性を意味する。本発明では、酵母細胞の形質転換によって、ＳＵＲ２の発現を部分的又は完全に欠失させることによって、酵母の天然の代謝経路では合成される、フィトスフィンゴシン及び／又はフィトセラミドの合成を部分的又は完全に抑制させる。ＳＵＲ２遺伝子発現の抑制と、ＤＥＳ１遺伝子発現により、スフィンゴシン及び／又はセラミドＮＳの効率的な合成が可能になる。

ＳＵＲ２にコードされるアミノ酸配列は、配列番号６に記載のアミノ酸配列と、少なくとも約７０％、好ましくは約８０％以上、より好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上、最も好ましくは９８％以上の同一性を有する。

本発明の好ましい酵母スフィンガニンＣ４−ヒドロキシラーゼ遺伝子（ＳＵＲ２）はまた、配列番号５の塩基配列にストリンジェントな条件下、例えば、中程度又は高程度にストリンジェントな条件下でハイブリダイズすることが可能であり、かつ、酵母スフィンガニンＣ４−ヒドロキシラーゼ活性を有する核酸を含む。

同様に、本発明の酵母スフィンガニンＣ４−ヒドロキシラーゼ遺伝子（ＳＵＲ２）には、１つまたは複数の塩基の欠失、挿入または置換のため、配列番号５の塩基配列とは異なるが、スフィンガニンＣ４−ヒドロキシラーゼ活性を有するタンパク質をコードする核酸を含む。

「アミノ酸及び／又は塩基の欠失、付加、置換」、「アミノ酸及び／又は塩基の同一性パーセント」、ハイブリダイゼーションの「ストリンジェントな条件下」など、共通する事項については、ＤＥＳ１について上述した通りである。

スフィンゴイド塩基リン酸化酵素遺伝子（ＬＣＢ４）
本発明の方法は構成要件３）として、酵母細胞の形質転換によって、スフィンゴイド塩基リン酸化酵素遺伝子（ＬＣＢ４）の発現を欠失させることを含む。

ＬＣＢ４は、例えば図１−図２に示されているようにスフィンゴイド塩基のリン酸化活性を有するタンパク質をコードする。ＬＣＢ４活性はスフィンゴイド塩基のリン酸化を促進し、スフィンゴイド塩基の細胞内量を減少させる。ヒト型セラミドをより効率的に生産されるためには、ＬＣＢ４遺伝子を破壊し、スフィンゴイド塩基の細胞内量を増加させるほうがより有効である。よって、本発明はＬＣＢ４の発現を欠失させることを含む。

限定されるわけではないが、ＬＣＢ４は、好ましくは、配列番号１０のアミノ酸配列又は配列番号１０において１またはそれ以上のアミノ酸残基が欠失、付加または置換しているアミノ酸配列を有しており、かつ、スフィンゴイド塩基リン酸化活性を有するタンパク質をコードする。

ＬＣＢ４は、好ましくは配列番号９の塩基配列を有する。これは配列番号１０のアミノ酸配列を有する酵母スフィンゴイド塩基リン酸化酵素タンパク質をコードする塩基配列であり、例えば、SGD(Saccharomyces Genome Database, http://www.yeastgenome.org/)に開示されている。

ＬＣＢ４は、好ましくは配列番号１０に記載のアミノ酸配列をコードする。しかしながら、これに限定されることなく、１またはそれ以上のアミノ酸配列が欠失、付加または置換しているアミノ酸配列を有していてもよい。スフィンゴイド塩基リン酸化活性を有する限り、全ての相同タンパク質を含むことが意図される。配列番号１０と同等の機能を有するアミノ酸配列をコードする限り、配列番号１０に限定されるものではない。「アミノ酸変異」は１から複数個、好ましくは、１ないし２０個、より好ましくは１ないし１０個、最も好ましくは１ないし５個である。

「スフィンゴイド塩基リン酸化活性を有する」とは、例えば図１−図３に示されているようにジヒドロスフィンゴシンをリン酸化してジヒドロスフィンゴシン１リン酸を合成する活性を有する、ことを意味する。本発明では、酵母細胞の形質転換によって、ＬＣＢ４の発現を部分的又は完全に欠失させることによって、好ましくないジヒドロスフィンゴシンのリン酸化を抑制する。

ＬＣＢ４にコードされるアミノ酸配列は、配列番号１０に記載のアミノ酸配列と、少なくとも約７０％、好ましくは約８０％以上、より好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上、最も好ましくは９８％以上の同一性を有する。

本発明の好ましい酵母スフィンゴイド塩基リン酸化酵素遺伝子（ＬＣＢ４）はまた、配列番号９の塩基配列にストリンジェントな条件下、例えば、中程度又は高程度にストリンジェントな条件下でハイブリダイズすることが可能であり、かつ、酵母スフィンゴイド塩基リン酸化活性を有する核酸を含む。

同様に、本発明の酵母スフィンゴイド塩基リン酸化酵素遺伝子（ＬＣＢ４）には、１つまたは複数の塩基の欠失、挿入または置換のため、配列番号９の塩基配列とは異なるが、スフィンゴイド塩基リン酸化活性を有するタンパク質をコードする核酸を含む。

酵母スフィンゴ脂質 α−ヒドロキシラーゼ遺伝子（ＳＣＳ７）
本発明の方法はさらに所望により、構成要件４）として酵母細胞の形質転換によって、酵母スフィンゴ脂質 α−ヒドロキシラーゼ遺伝子（ＳＣＳ７）の発現を欠失させることを含んでもよい。ＳＣＳ７は、例えば図２又は図３のフィトセラミド、ジヒドロセラミド、セラミドＮＳのスフィンゴイド塩基にアミド結合した脂肪酸のα位の炭素に水酸基を付加し、各々Ｃｅｒ（ＡＰ）、Ｃｅｒ（ＡＳａ）、Ｃｅｒ（ＡＳ）を合成する活性を有する。ＳＣＳ７活性の存在により、所望のジヒドロセラミド、セラミドＮＳが合成されても、さらに水酸化されてしまう。よって、本発明は好ましくは、ＳＣＳ７の発現を欠失させることを含む。

限定されるわけではないが、ＳＣＳ７は、好ましくは、配列番号８のアミノ酸配列又は配列番号８において１またはそれ以上のアミノ酸残基が欠失、付加または置換しているアミノ酸配列を有しており、かつ、スフィンゴ脂質 α−ヒドロキシラーゼ活性を有するタンパク質をコードする。

ＳＣＳ７は、好ましくは配列番号７の塩基配列を有する。これは配列番号８のアミノ酸配列を有する酵母スフィンゴ脂質 α−ヒドロキシラーゼタンパク質をコードする塩基配列であり、例えば、SGD(Saccharomyces Genome Database, http://www.yeastgenome.org/)に開示されている。

ＳＣＳ７は、好ましくは配列番号８に記載のアミノ酸配列をコードする。しかしながら、これに限定されることなく、１またはそれ以上のアミノ酸配列が欠失、付加または置換しているアミノ酸配列を有していてもよい。スフィンゴ脂質 α−ヒドロキシラーゼ活性を有する限り、全ての相同タンパク質を含むことが意図される。配列番号８と同等の機能を有するアミノ酸配列をコードする限り、配列番号８に限定されるものではない。「アミノ酸変異」は１から複数個、好ましくは、１ないし２０個、より好ましくは１ないし１０個、最も好ましくは１ないし５個である。

「スフィンゴ脂質 α−ヒドロキシラーゼ活性を有する」とは、例えば図７に示されているように、フィトセラミド、ジヒドロセラミド、セラミドＮＳのスフィンゴイド塩基にアミド結合している脂肪酸のα位の炭素に水酸基を付加し、各々Ｃｅｒ（ＡＰ）、Ｃｅｒ（ＡＳａ）、Ｃｅｒ（ＡＳ）を合成する活性を有する、ことを意味する。本発明では、好ましくは、酵母細胞の形質転換によって、ＳＣＳ７の発現を部分的又は完全に欠失させることによって、ジヒドロセラミド、セラミドＮＳの好ましくない水酸化を抑制する。

ＳＣＳ７にコードされるアミノ酸配列は、配列番号８に記載のアミノ酸配列と、少なくとも約７０％、好ましくは約８０％以上、より好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上、最も好ましくは９８％以上の同一性を有する。

本発明の好ましい酵母スフィンゴ脂質 α−ヒドロキシラーゼ遺伝子（ＳＣＳ７）はまた、配列番号７の塩基配列にストリンジェントな条件下、例えば、中程度又は高程度にストリンジェントな条件下でハイブリダイズすることが可能であり、かつ、酵母スフィンゴ脂質 α−ヒドロキシラーゼ活性を有する核酸を含む。

同様に、本発明の酵母スフィンゴ脂質 α−ヒドロキシラーゼ遺伝子（ＳＣＳ７）には、１つまたは複数の塩基の欠失、挿入または置換のため、配列番号７の塩基配列とは異なるが、スフィンゴ脂質 α−ヒドロキシラーゼ活性を有するタンパク質をコードする核酸を含む。

酵母の形質転換による遺伝子の導入及び発現方法
本発明において、酵母細胞内におけるＤＥＳ１の発現は限定されず、公知の方法を用いて行うことが可能である。好ましくは、ＤＥＳ１を含む発現ベクターで宿主酵母細胞を形質転換し、そして、核酸の発現を可能にする条件下で形質転換酵母細胞を培養する、ことを含む。

本発明の方法に利用可能な酵母は、限定されるわけではないが、好ましくは、サッカロミセス属（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）由来の酵母である。より好ましくは、サッカロミセス・セレビジエ、サッカロミセス・パストリアヌス、サッカロミセス・バイヤヌス、サッカロミセス・クルベリである。サッカロミセス属を含む出芽酵母は、遺伝子レベルでセラミドの合成・代謝の解析が最も進んでいる。そのため、本発明のヒト型セラミドの製造方法を迅速に最適化することが可能である。また酵母細胞は培養が容易で、また、伝統的に食品製造に利用されている。簡便、安全、安価にセラミドを大量に抽出・精製する方法を確立することが可能である。

本発明において、遺伝子の導入・発現のために公知の酵母発現ベクターを使用可能である。本発明の実施例では、公知の酵母用遺伝子発現ベクターｐＲＳｓｅｒｉｅｓ（ｐ４ＸＸ）（Ｍｕｍｂｅｒｇｅｔａｌ．，Ｇｅｎｅ，１５６，１１９，１９９５）及びｐＹＥ２２ｍ（Ａｓｈｉｋａｒｉｅｔａｌ．，ＡｐｐｌＭｉｃｒｏｂｉｏｌＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌ，３０，５１５，１９８９）を使用した。

酵母に導入する際に用いるベクターとしては、多コピー型（ＹＥｐ型）、単コピー型（ＹＣｐ型）、染色体組み込み型（ＹＩｐ型）のいずれもが利用可能である。例えば、ＹＥｐ型ベクターとしてはＹＥｐ２４ (J. R. Broach et al., Experimental Manipulation of Gene Expression, Academic Press, New York, 83, 1983)、ＹＣｐ型ベクターとしてはＹＣｐ５０ (M. D. Rose et al., gene, 60, 237, 1987)、ＹＩｐ型ベクターとしてはＹＩｐ５(K. Struhl et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 76, 1035, 1979)等多数の酵母用発現ベクターが当業者に公知であり、本発明の方法に利用可能である。

発現ベクターは、各遺伝子の他に、一般的に、宿主における増殖のため、選択可能マーカーおよび複製起点を含むベクター内に含有されることが可能である。ベクターにはさらに、好ましくは酵母由来の適切な転写または翻訳制御配列が、所望により本発明の核酸に連結されて、含まれる。

制御配列の例には、転写プロモーター、オペレーター、またはエンハンサー、ｍＲＮＡリボソーム結合部位、並びに転写および翻訳開始および終結を調節する適切な配列が含まれる。ヌクレオチド配列は、制御配列が該ＤＮＡ配列に機能的に関連しているとき、機能可能であるように連結されている。したがって、プロモーターヌクレオチド配列は、該プロモーターヌクレオチド配列がＤＮＡ配列の転写を調節するならば、ＤＮＡ配列に、機能可能であるように連結されている。宿主細胞において複製する能力を与える複製起点、および形質転換体を同定する選択遺伝子が、一般的に発現ベクターに取り込まれている。

選択マーカーとしては、通常使用されるものを常法により用いることができる。例えばテトラサイクリン、アンピシリン、またはカナマイシンもしくはネオマイシン、ハイグロマイシンまたはスペクチノマイシン等の抗生物質耐性遺伝子やＨＩＳ３、ＴＲＰ１などの栄養要求性遺伝子などが例示される。

本発明の好ましい態様において、１）スフィンゴイド Δ４−デサチュラーゼ遺伝子（ＤＥＳ１）の導入に際し、各々異なる選択マーカーを含む２種以上のＤＥＳ１発現ベクターを用いてもよい。例えば、本明細書中の実施例７ではウラシル、トリプトファン、リジンの３種の異なる栄養要求性選択マーカーを含む、３種の発現ベクターを使用したところ酵母形質転換細胞での生産量が約２倍近くに増加した。複数の選択マーカーは栄養要求性遺伝子に限定されず、所期の公知の選択マーカーを適宜組み合わせて使用することができる。

酵母ベクターは、しばしば、２μ酵母プラスミド由来の複製起点配列、自律複製配列（ＡＲＳ）、プロモーター領域、ポリアデニル化のための配列、転写終結のための配列、および選択可能マーカー遺伝子を含有するであろう。

べクターは、簡便には当業界において入手可能な組換え用べクター（例えば、プラスミドＤＮＡなど）に所望の遺伝子を常法により連結することによって調製することができる。プラスミドなどのベクターに遺伝子のＤＮＡ断片を組み込む方法としては、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｊ．，ａｎｄＲｕｓｓｅｌｌ，Ｄ．Ｗ．（２００１）．ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ，３ｒｄｅｄ．（ＮｅｗＹｏｒｋ：ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ）に記載の方法などが挙げられる。簡便には、市販のライゲーションキット（例えば、宝酒造製等）を用いることもできる。

ベクターを宿主細胞に導入する方法としては、一般に、Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｊ．ら（２００１）（上述）に記載のリン酸カルシウム法または塩化カルシウム／塩化ルビジウム法、エレクトロポレーション法、エレクトロインジェクション法、ＰＥＧなどの化学的な処理による方法、遺伝子銃などを用いる方法などが挙げられる。

酵母の形質転換による各遺伝子の欠失方法
本発明の方法は、酵母細胞の形質転換によって、
２）酵母細胞の形質転換によって、酵母スフィンガニンＣ４−ヒドロキシラーゼ遺伝子（ＳＵＲ２）の発現を欠失させること；及び
３）酵母細胞の形質転換によって、酵母スフィンゴイド塩基リン酸化酵素遺伝子（ＬＣＢ４)の発現を欠失させること
を含む。

本発明の方法はさらに、好ましい態様において、
４）酵母細胞の形質転換によって、酵母スフィンゴ脂質 α−ヒドロキシラーゼ遺伝子（ＳＣＳ７）の発現を欠失させることを含む。

本発明において、各遺伝子の発現を欠失させるとは、各遺伝子によってコードされるタンパク質活性が発揮されないことを意味する。酵母細胞のゲノム上の各遺伝子を破壊する、遺伝子の転写を阻害するなど結果的に遺伝子によってコードされるタンパク質活性が発揮されなければ、本発明の方法における目的を達成するため、本発明の範囲に含まれる。欠失は、部分的な欠失であっても完全な欠失であってもよい。典型的には、母細胞のゲノム上の各遺伝子を破壊し、遺伝子を部分的又は完全に欠失させる。

ＳＵＲ２、ＬＣＢ４、ＳＣＳ７の各遺伝子の発現の欠失は公知の方法によって行うことができる。
例えば、本明細書中の実施例では各遺伝子の上流及び下流の塩基配列、及び選択マーカーを連結させたＤＮＡ断片を用い、酵母の天然のゲノム配列との相同組換えによって、各遺伝子を欠失させた。

遺伝子の破壊は、ターゲットとする遺伝子における遺伝子産物の発現に関与する領域、例えば、コード領域やプロモーター領域の内部へ単一あるいは複数の塩基を付加あるいは欠失させたり、これらの領域全体を欠失させることにより行うことができる。このような遺伝子破壊の手法は、公知の文献を参照することができる（例えば、Yeast 10, 1793 (1994)、Yeast 15,1541(1999)、Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 76, 4951(1979) 、Methods in Enzymology, 101, 202(1983)など参照）。

セラミド合成の確認方法
本発明の方法によって、製造されたヒト型セラミド（セラミドＮＳ）は、公知の方法を用いることによって、抽出・精製することができる。本発明の方法は、酵母細胞を使用するため、大量の培養、セラミドの簡便かつ迅速な抽出・精製が可能である。精製されたセラミドは、公知のスフィンゴイド分析のための方法を用いて確認することが可能である。分析方法は、例えば、図４に示すＴＬＣやＨＰＬＣ、マススペクトル（例えば、ＬＣ−ＭＳ、ＬＣ−ＭＳ/ＭＳ、ＦＴ−ＭＳ）等を含む。

本発明の形質転換酵母を用いるセラミドの製造法によれば、ヒトの皮膚で機能性の高いヒト型セラミドを安価に製造することが可能となる。

以下、実施例によって本発明を具体的に説明するが、これらは本発明の技術的範囲を限定するためのものではない。当業者は本明細書の記載に基づいて容易に本発明に修飾・変更を加えることができ、それらは本発明の技術的範囲に含まれる。

実施例１：ヒトスフィンゴイド Δ４−デサチュラーゼ遺伝子（ＤＥＳ１）発現ベクターの作製
公開されているデータベース中のヒトスフィンゴイド Δ４−デサチュラーゼ（ｓｐｈｉｎｇｏｉｄ Δ４−ｄｅｓａｔｕｒａｓｅ）遺伝子（ＤＥＳ１）の塩基配列（ＧｅｎＢａｎＫ^TM：ａｃｃｅｓｓｉｏｎｎｕｍｂｅｒＡＦ４６６３７５）（配列番号２３、そのうちのＣＤＳは配列番号１）を参考にプライマーｄｅｓ１Ｆ（配列番号１１）およびｄｅｓ１Ｒ（配列番号１２）を作製した。

配列番号１１：
５’−ＣＣＴＴＣＴＣＴＡＧＡＧＧＡＴＣＣＡＴＧＧＧＧＡＧＣＣＧＣＧＴＣＴＣＧＣＧＧＧＡＡＧＡＣ−３’
配列番号１２：
５’−ＣＣＴＴＣＧＡＡＴＴＣＣＣＣＧＧＧＣＣＡＧＧＧＧＡＧＣＴＴＣＴＧＡＧＣＡＴＣＡＣＴＧＧＴＣ−３’
上記プライマー対を利用して、ヒトｃＤＮＡライブラリーを鋳型にＰＣＲを行った。得られたＰＣＲ産物（約１．１ｋｂ）のＢａｍＨＩとＳｍａＩサイトを利用して酵母用遺伝子発現ベクターｐＫＯ１１（Ｋａｍｅｉｅｔａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２７３，２８３４１，１９９８；Ｄｒ．Ｋ．Ｔａｎａｋａより提供）にクローニングした。

サンガー法による塩基配列決定を行い、クローンの塩基配列がデータベースと一致することを確認した。ＢａｍＨＩとＸｈｏ１サイトを利用して酵母用遺伝子発現ベクターｐＲＳｓｅｒｉｅｓ（ｐ４ＸＸ）（Ｍｕｍｂｅｒｇｅｔａｌ．，Ｇｅｎｅ，１５６，１１９，１９９５）にサブクローニングした。

実施例２：酵母スフィンガニンＣ４−ヒドロキシラーゼ遺伝子（ＳＵＲ２）破壊株の作製
公開されている酵母ゲノムデータベース（SGD(Saccharomyces Genome Database, http://www.yeastgenome.org/)）中の酵母スフィンガニンＣ４−ヒドロキシラーゼ（ｓｐｈｉｎｇａｎｉｎｅＣ４−ｈｙｄｒｏｘｙｌａｓｅ）遺伝子（ＳＵＲ２）の塩基配列（配列番号５）とその上流および下流領域を含む配列（配列番号３）を参考にプライマーｓｕｒ２Ｆ（配列番号１３）およびｓｕｒ２Ｒ（配列番号１４）を作製した。

配列番号１３：
５’−ＣＴＣＣＧＧＣＴＴＣＴＧＣＧＧＴＴＴＴＴＣＴＴＡＧＴＣＴＴＴＣＣＧＣＡＣＣＡＡＴＴＴＴＣＡＣＡＧＧＡＡＴＴＣＣＣＧＧＧＧＡＴＣＣＧＧ−３’
配列番号１４：
５’−ＧＧＡＴＡＡＴＡＡＡＴＡＣＡＡＡＣＧＴＧＧＧＡＡＧＴＣＧＧＡＧＡＣＡＴＴＧＣＣＴＴＴＡＣＣＣＡＧＣＡＡＧＣＴＡＧＣＴＴＧＧＣＴＧＣＡＧＧ−３’
上記プライマー対を利用して、プラスミドｐＹＤｐ―Ｌ（Ｂｅｒｂｅｎｅｔａｌ．，Ｙｅａｓｔ，７，４７５，１９９１）を鋳型としてＰＣＲを行い、ＳＵＲ２遺伝子上流２９５ｂｐ、選択マーカーおよびＳＵＲ２遺伝子下流７５ｂｐが連結したＰＣＲ産物を得た。このＰＣＲ産物を用いてＦＫ１１３株（ＭＡＴａ，ｕｒａ３，ｈｉｓ３，ｌｅｕ２，ｌｙｓ２，ｔｒｐ１，ｂａｒ１−１）の形質転換を常法に従って行い、栄養要求性培地で形質転換体を選抜し、ＳＵＲ２遺伝子破壊株を得た。

正常遺伝子と破壊遺伝子で増幅する断片の長さが異なるように設計した確認用のプライマー（配列番号１５および１６）を用いて、ＰＣＲ法によりＳＵＲ２遺伝子破壊の確認を行った。

配列番号１５：
５’−ＣＴＣＣＧＧＣＴＴＣＴＧＣＧＧＴＴＴＴＴＣＴＴＡＧＴＣＴＴＴＣ−３’
配列番号１６：
５’−ＧＧＡＡＧＴＣＧＧＡＧＡＣＡＴＴＧＣＣＴＴＴＡＣＣＣＡＧ−３’
実施例３：酵母ＳＵＲ２、および酵母スフィンゴ脂質 α−ヒドロキシラーゼ遺伝子（ＳＣＳ７）二重破壊株の作製
公開されている酵母ゲノムデータベース（ＳＧＤ）中の酵母スフィンゴ脂質 α−ヒドロキシラーゼ（ｓｐｈｉｎｇｏｌｉｐｉｄａｌｐｈａ−ｈｙｄｒｏｘｙｌａｓｅ）遺伝子（ＳＣＳ７）の塩基配列（配列番号７）とその上流および下流領域を含む配列（配列番号４）を参考にプライマーｓｃｓ７ｕｐ２８０Ｆ（配列番号１７）およびｓｃｓ７ｕｐ２８０Ｒ＿Ｇ４１８（配列番号１８）、ｓｃｓ７ｄｏｗｎ２８０Ｆ＿Ｇ４１８（配列番号１９）およびｓｃｓ７ｄｏｗｎ２８０Ｒ（配列番号２０）を作製した。

配列番号１７：
５’−ＣＧＡＡＴＴＣＡＧＣＣＧＡＡＡＡＣＡＧＴＣＴＴＧＣＴＴ−３’
配列番号１８：
５’−ＣＴＣＣＡＴＧＴＣＧＣＴＴＡＣＣＡＣＣＧＣＴＴＴＴＡＧＴＧＣ−３’
配列番号１９：
５’−ＣＧＣＴＡＴＡＣＴＧＣＡＧＣＣＴＣＧＴＣＣＡＡＡＡＴＴＧＴＣＡ−３’
配列番号２０：
５’−ＣＧＡＡＴＴＣＴＴＧＣＣＡＡＣＣＴＧＡＴＣＴＧＴＧＡＡ−３’
上記プライマー対を利用して、常法により調製した酵母ゲノムＤＮＡを鋳型にＰＣＲを行い、ＳＣＳ７遺伝子上流域約２８０ｂｐ、下流域約２８０ｂｐにそれぞれ相当するＰＣＲ産物を得た。

次に２段階目のＰＣＲとして、これら２種類のＰＣＲ断片を混合し、既存プライマーをＧ−５０ゲル濾過カラム（ＱｕｉｃｋＳｐｉｎＣｏｌｕｍｎｓｆｏｒｒａｄｉｏｌａｂｅｌｅｄＤＮＡｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ，Ｒｏｃｈｅ社）で除去した後、ジェネティシン（Ｇ４１８）抵抗性遺伝子をマーカーにもつｐＦＡ６ａ−ｋａｎＭＸ４（ＥＭＢＬＡＪ００２６８０）ベクターを鋳型に、上記プライマーｓｃｓ７ｕｐ２８０Ｆとｓｃｓ７ｄｏｗｎ２８０Ｒの組み合わせで約２．３ｋｂのＰＣＲ断片を増幅した。この最終ＰＣＲ産物を用いて、実施例２記載の酵母ＳＵＲ２破壊株の形質転換を常法に従って行った。Ｇ４１８３００ｍｇ／Ｌを含むＹＰＤ平板培地（１％酵母エキス、２％ポリペプトン、２％グルコース、２％寒天）で形質転換体を選抜し、ＳＵＲ２／ＳＣＳ７二重破壊株を取得した。

目的の場所にＧ４１８遺伝子が挿入されＳＣＳ７遺伝子が破壊されているかどうか調べるために、ＳＣＳ７遺伝子上流でプライマーＳＣＳ７ＧＤＣｈｅｃｋＦ２（配列番号２１）を、Ｇ４１８遺伝子内でプライマーＧ４１８ＣｈｅｃｋＲ（配列番号２２）を作製した。ＰＣＲで１．２ｋｂの断片が増幅したものについて、遺伝子破壊株と確認した。

配列番号２１：
５’−ＧＣＧＣＴＧＣＡＴＡＣＡＴＡＧＡＣＡＴＡＴＡＣＡＣ−３’
配列番号２２：
５’−ＡＴＡＣＧＣＧＡＴＣＧＣＴＧＴＴＡＡＡＡＧＧＡＣＡ−３’
実施例４：酵母ＳＵＲ２、ＳＣＳ７および酵母スフィンゴシンキナーゼ遺伝子（ＬＣＢ４）三重破壊株の作製
実施例１―３と同様に、公開されている酵母ゲノムデータベース（ＳＧＤ）中のスフィンゴシンキナーゼ遺伝子（ＬＣＢ４）（配列番号９）とその上流および下流領域を含む配列（配列番号２４）の塩基配列を参考に、プライマーＬＣＢ４．ＫＯ−Ｆ（配列番号２５）およびＬＣＢ４．ＫＯ−Ｒ（配列番号２６）を作製した。Ｈｉｓ３をマーカーにもつプラスミドｐＹＤｐ−Ｈ（Ｂｅｒｂｅｎｅｔａｌ．実施例３で引用）を鋳型に、上記プライマー対を用いてＰＣＲを行い、約１．２ｋｂの断片を増幅した。このＰＣＲ産物を用いて、実施例４記載の酵母ＳＵＲ２／ＳＣＳ７二重破壊株の形質転換を常法に従って行った。ヒスチジンを含まない最小完全平板培地（ＳＣ−Ｈｉｓ）で選抜し、ＳＵＲ２／ＳＣＳ７／ＬＣＢ４の３重破壊株を取得した。

配列番号２５：
５’−ＡＧＧＴＴＡＴＣＡＡＧＡＡＣＡＣＡＡＡＡＧＴＣＴＡＧＣＡＧＣＧＡＡＡＡＧＴＡＣＧＧＡＡＴＴＣＣＣＧＧＧＧＡＴＣＣＧ−３’
配列番号２６：
５’−ＡＡＧＧＡＣＧＣＡＡＣＴＴＣＣＡＡＧＴＧＡＡＴＧＡＴＴＴＡＡＴＧＴＧＣＡＴＡＴＡＴＧＡＡＧＣＴＡＧＣＴＴＧＧＣＴＧＣＡＧ−３’
正常遺伝子と破壊遺伝子ではＰＣＲで増幅する断片の長さが異なるように、プライマーＬＣＢ４．ＫＯＣ−Ｆ（配列番号２７）とＬＣＢ４．ＫＯＦ−Ｒ（配列番号２８）を設計し、ＰＣＲで遺伝子破壊を確認した。

配列番号２７：
５’−ＧＡＡＧＡＡＡＧＧＣＡＴＡＣＡＡＧＡＡＧＧＴＧＡＡＡＡＴＴＣＧ−３’
配列番号２８：
５’−ＴＣＴＧＧＡＴＡＡＡＧＡＧＡＧＴＡＣＧＡＣＴＴＣＴＡＡＧＧ−３’
実施例５ヒトＤＥＳ１発現ベクターの栄養要求性マーカーをウラシルからトリプトファン・リジンに変えた２種ベクターの作製
実施例１記載のｈＤＥＳ１発現ベクター（ｐｈＤＥＳ１）からプロモーター・ターミネーターを含む約１．３ｋｂのｈＤＥＳ１遺伝子断片をＢａｍＨＩとＸｈｏＩで消化して切り出し、Ｔｒｐ１をマーカーにもつｐＲＳ４２４（２μ）ＧＰＤベクター（Ｍｕｍｂｅｒｇｅｔａｌ．，ＧＥＮＥ，１５６，１１９−１２２，１９９５）の同部位に挿入、トリプトファンマーカーをもつｈＤＥＳ１発現ベクターを構築した（ｐｈＤＥＳ１ｗ）。

実施例１−４と同じく、ＳＧＤ中のαアミノアジピン酸リダクターゼ（ＬＹＳ２）とその上流および下流領域を含む塩基配列（配列番号２９）を参考にＬＹＳ２クローニング用のプライマーＬＹＳ２−ＰｓｔＩ−Ｆ（配列番号３０）およびＬＹＳ２−ＳｍａＩ−Ｒ（配列番号３１）を作製した。常法により調製した酵母ゲノムＤＮＡを鋳型に上記プライマーを用いてＰＣＲを行い、約５．１ｋｂの断片を増幅した。得られた断片は一旦ｐＣＲ−ＢｌｕｎｔＩＩ−ＴＯＰＯベクターにサブクローニングした後、制限酵素ＰｓｔＩとＳｍａＩ消化で約５．１ｋｂのＬｙｓ２断片を切り出し、実施例１記載のｐｈＤＥＳ１をＰｓｔＩとＮａｅＩ消化してＵｒａ３のマーカーを除いた部分に挿入し、リジンマーカーをもつｈＤＥＳ１発現ベクターを構築した（ｐｈＤＥＳ１ｋ）。

配列番号３０：
５’− ＡＣＴＧＣＡＧＡＡＴＴＣＣＧＧＣＧＧＴＴＴＴＴＣＧＣＧＴＧ−３’
配列番号３１：
５’− ＡＣＣＣＧＧＧＧＡＴＴＴＧＴＣＴＣＡＡＣＣＴＧＣＴＴＴＧＧ−３’
実施例６ヒトＤＥＳ１発現プラスミドをもつ酵母ＳＵＲ２、ＳＣＳ７、ＬＣＢ４三重破壊株の作製
実施例１で作製したヒトＤＥＳ１（ｈＤＥＳ１）発現ベクター（ｐｈＤＥＳ１）と、実施例５で作製したｐｈＤＥＳ１ｗとｐｈＤＥＳ１ｋを酵母ＳＵＲ２、ＳＣＳ７、ＬＣＢ４三重破壊株に形質転換した。

形質転換の方法は常法に従った。形質転換体の選抜はｐｈＤＥＳ１の場合はウラシルを含まない最小完全平板培地（ＳＣ−Ｕｒａ）を、ｐｈＤＥＳ１、ｐｈＤＥＳ１ｗ、ｐｈＤＥＳ１ｋを３種同時に発現させる場合はウラシル・トリプトファン・リジンを含まない最小完全平板培地（ＳＣ−Ｕｒａ，Ｔｒｐ，Ｌｙｓ）を使用した。

実施例７ヒトＤＥＳ１発現プラスミドをもつ酵母セラミド合成系・代謝系形質転換株のスフィンゴイド分析
（１）親株ＦＫ１１３株；
（２）実施例６で得られたヒトＤＥＳ１遺伝子発現酵母（ｐｈＤＥＳ１）ＳＵＲ２、ＳＣＳ７、ＬＣＢ４三重破壊株、および
（３）ヒトＤＥＳ１遺伝子発現酵母（ｐｈＤＥＳ１、ｐｈＤＥＳ１ｗ、ｐｈＤＥＳ１ｋ）ＳＵＲ２、ＳＣＳ７、ＬＣＢ４三重破壊株
をＳＣ培地で３０℃、２４時間培養した。次いで、３７℃、９０分のヒートショック培養を行い、菌体からスフィンゴイドを文献（Ｓｐｅｒｌｉｎｇｅｔａｌ．，ＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｉｏｌｏｇｉｃａｌｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，２７３，２８５９０，１９９８）に従って、スフィンゴイド抽出、ジニトロフェノール化した。

上記スフィンゴイドを用いて薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）による分析を行った。以下に簡潔にその方法を示す。
菌体（湿重量３５０ｍｇ）を直接、１０％（ｗ／ｖ）Ｂａ（ＯＨ）₂を含む１，４−ジオキサン／水，１：１（ｖ／ｖ）３ｍｌ中で、１１０℃、２４時間、加水分解した。遊離したスフィンゴイドをクロロホルム／１，４−ジオキサン／水，８：３：８（ｖ／ｖ／ｖ）で層分離することによって抽出した。有機層を等量の０．１ＭＫＯＨ、０．５ＭＫＣｌで洗浄した後、０．５％（ｖ／ｖ）１−フルオロ−２，４−ジニトロベンゼンメタノール溶液０．２ｍｌと２Ｍホウ酸／ＫＯＨ（ｐＨ１０．５）０．８ｍｌを６０℃、３０分間反応させてスフィンゴイドをジニトロフェノール化合物化（ＤＮＰ化）した。反応後、回収した有機層を真空乾燥させて得られたＤＮＰ化スフィンゴイドをクロロホルムに溶解した後、シリカゲル６０ＴＬＣプレート上でクロロホルム／メタノール，９：１（ｖ／ｖ）を用いて展開した。ＤＮＰ化スフィンゴイドは黄色（ＵＶ照射下では暗青色）を呈しており、これを観察した。

次に、ＤＮＰ化ｓｐｈｉｎｇｏｉｄをＴＬＣプレートから回収し、クロロホルム／メタノール，２：１（ｖ／ｖ）で抽出後、クロロホルム／メタノール／０．１ＭＫＯＨ，２：１：１（ｖ／ｖ／ｖ）で層分離を行った。有機層を回収し、真空乾燥した後、メタノールに溶解させてＨＰＬＣサンプルとして供試した。ＨＰＬＣはシリカゲルＯＤＳカラムを用い、８０％メタノール／アセトニトリル／２−プロパノール（１０：３：１，ｖ／ｖ／ｖ）、および２０％水から０％水への直線勾配溶出（流速１ｍｌ／分、４０分）を行い、３５０ｎｍ紫外線吸収をモニタリングした。

理解を容易にするために、ＴＬＣ、ＨＰＬＣによるスフィンゴイド分析のためのスキームを図４に示した。
Ｓｉｇｍａ社から購入した既定量の合成スフィンゴシンを同様に分析したＨＰＬＣデータを基準値にして菌体内のスフィンゴシンの定量を行った。菌体１００ｍｇあたりに蓄積したスフィンゴシンの計算値は以下の通りであった。

（１）親株ＦＫ１１３株０．１３μｇ；
（２）ヒトＤＥＳ１遺伝子発現酵母（ｐｈＤＥＳ１）ＳＵＲ２、ＳＣＳ７、ＬＣＢ４三重破壊株２７．６μｇ；及び
（３）ヒトＤＥＳ１遺伝子発現酵母（ｐｈＤＥＳ１、ｐｈＤＥＳ１ｗ、ｐｈＤＥＳ１ｋ）ＳＵＲ２、ＳＣＳ７、ＬＣＢ４三重破壊株４６．２μｇ。

実施例８：トリチウム標識（ ³ Ｈ）したＤ−ｅｒｙｔｈｒｏ−ｄｉｈｙｄｒｏｓｐｈｉｎｇｏｓｉｎｅを用いたセラミドの解析
上述のセラミド合成系遺伝子形質転換酵母を最少液体培地で２５℃、１５０ｒｐｍで２３時間振盪培養した後、酵母を回収し、最少液体培地に懸濁させた懸濁液０．５ｍｌ（１６ＯＤ₆₀₀ｕｎｉｔｓ／ｍｌ）を調製した。トリチウム標識（³Ｈ）したＤ−エリスロ−ジヒドロスフィンゴシンを１０μｌ（１０μＣｉ）加え、一晩２５℃で培養を行った（Ｚａｎｏｌａｒｉｅｔａｌ．，ＴｈｅＥＭＢＯＪｏｕｒｎａｌ，１９，２８２４，２０００）。２５０ｍＭのＮａＦと２５０ｍＭのＮａＮ₃を２００μｌ加え、反応を停止させた後、氷冷した滅菌水で３度洗浄し、菌体を６６μｌの滅菌水に懸濁させた。

本懸濁液にグラスビーズを加え、激しく攪拌することにより菌体を破砕した。これにクロロホルム、メタノール、懸濁液の比が１０：１０：３になるようにクロロホルム、メタノールを加え、脂質を抽出した。抽出液の遠心分離を行い、得られた上清を回収した後、窒素ガスを吹き付けて濃縮乾燥させた。試料を１００μｌのクロロホルム−メタノール−水（１０：１０：３）に溶解し、０．６ＮＮａＯＨメタノール溶液を２０μｌ加え、３０℃、９０ｍｉｎ反応させた後、０．６Ｎ酢酸溶液で中和させた。ブタノール抽出により塩を除去し、得られたブタノール層（上層）を窒素ガスを吹き付けて濃縮乾燥させた。

脂質を２０μｌのクロロホルム−メタノール（１：１）に溶解させ、ｂｏｒａｔｅ処理した薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）プレートにスポットし、クロロホルム−メタノール（９：１）で展開した（Ｔｒｉｏｌａｅｔａｌ．，ＭｏｌｅｃｕｌａｒＰｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ，６６，１６７１，２００４）。展開後、放射能標識セラミドをバイオイメージアナライザー（ＢＡＳ）で分析した。結果を図５に示す。

ヒトＤＥＳ１発現酵母ＳＵＲ２／ＳＣＳ７二重破壊株のみでＤＥＳ１を発現させない場合、セラミドＮＳ（ＣｅｒＮＳ）は全く観察されなかった（０％）。ヒトＤＥＳ１発現酵母ＳＵＲ２／ＳＣＳ７二重破壊株のセラミドＮＳ（ＣｅｒＮＳ）を１００％とした場合、ヒトＤＥＳ１遺伝子発現酵母ＳＵＲ２／ＳＣＳ７／ＬＣＢ４三重破壊株のセラミドＮＳ（ＣｅｒＮＳ）は２１４％であった。

図１は、酵母及び高等動物細胞におけるスフィンゴ脂質合成代謝経路を示す。図２は、本発明のヒト型セラミドを酵母細胞内で製造する方法の好ましい態様の概要を示す。図３は、酵母及び高等動物のスフィンゴイド及びセラミドの分子種とその構造式を示す。図４は、酵母菌体の培養からＴＬＣ及びＨＰＬＣによる分析までの工程を模式的に示したものである。図５は、トリチウム標識（³Ｈ）したＤ−ｅｒｙｔｈｒｏ−ｄｉｈｙｄｒｏｓｐｈｉｎｇｏｓｉｎｅを用いた酵母のセラミドのＴＬＣによる分析結果とバイオイメージアナライザー（ＢＡＳ）を用いた放射能標識セラミドの定量結果を示す。標識時間は２３時間、温度は２５℃であった。左からサンプル１−３は以下の通りである。

１．ＳＵＲ２／ＳＣＳ７二重破壊（実施例３）＋空ベクター
２．ＳＵＲ２／ＳＣＳ７二重破壊（実施例３）＋ＤＥＳ１遺伝子発現
３．ＳＵＲ２／ＳＣＳ７／ＬＣＢ４三重破壊（実施例４）＋ＤＥＳ１遺伝子発現

Claims

ヒト型セラミドを酵母細胞内で製造する方法であって、
１）酵母細胞の形質転換によって、スフィンゴイド Δ４−デサチュラーゼ遺伝子（ＤＥＳ１）を導入すること；
２）酵母細胞の形質転換によって、酵母スフィンガニンＣ４−ヒドロキシラーゼ遺伝子（ＳＵＲ２）の発現を欠失させること；及び
３）酵母細胞の形質転換によって、酵母スフィンゴイド塩基リン酸化酵素遺伝子（ＬＣＢ４)の発現を欠失させること
を含む、前記製造方法。
酵母スフィンゴイド塩基リン酸化酵素遺伝子（ＬＣＢ４)が、配列番号１０のアミノ酸配列又は配列番号１０において１またはそれ以上のアミノ酸残基が欠失、付加または置換しているアミノ酸配列を有しており、かつ、スフィンゴイド塩基リン酸化活性を有するタンパク質をコードする、請求項１に記載の方法。
スフィンゴイド Δ４−デサチュラーゼ遺伝子（ＤＥＳ１）が、配列番号２のアミノ酸配列又は配列番号２において１またはそれ以上のアミノ酸残基が欠失、付加または置換しているアミノ酸配列を有しており、かつ、スフィンゴイド Δ４−デサチュラーゼ活性を有するタンパク質をコードする、請求項１又は２に記載の方法。
酵母スフィンガニンＣ４−ヒドロキシラーゼ遺伝子（ＳＵＲ２）が、配列番号６のアミノ酸配列又は配列番号６において１またはそれ以上のアミノ酸残基が欠失、付加または置換しているアミノ酸配列を有しており、かつ、スフィンガニンＣ４−ヒドロキシラーゼ活性を有するタンパク質をコードする、請求項１ないし３のいずれか１項に記載の方法。
さらに、４）酵母細胞の形質転換によって、酵母スフィンゴ脂質 α−ヒドロキシラーゼ遺伝子（ＳＣＳ７）の発現を欠失させることを含む、請求項１ないし４のいずれか１項に記載の方法。
酵母スフィンゴ脂質 α−ヒドロキシラーゼ遺伝子（ＳＣＳ７）が、配列番号８のアミノ酸配列又は配列番号８において１またはそれ以上のアミノ酸残基が欠失、付加または置換しているアミノ酸配列を有しており、かつ、スフィンゴ脂質 α−ヒドロキシラーゼ活性を有するタンパク質をコードする、請求項１ないし５のいずれか１項に記載の方法。
酵母が、サッカロミセス属の酵母から選択される、請求項１ないし６のいずれか１項に記載の方法。
１）スフィンゴイド Δ４−デサチュラーゼ遺伝子（ＤＥＳ１）の導入に際し、各々異なる選択マーカーを含む２種以上のＤＥＳ１発現ベクターを用いる、請求項１ないし７のいずれか１項に記載の方法。