JP5042725B2 - プライマーおよび該プライマーを用いた細菌の検出方法 - Google Patents
プライマーおよび該プライマーを用いた細菌の検出方法 Download PDFInfo
- Publication number
- JP5042725B2 JP5042725B2 JP2007172401A JP2007172401A JP5042725B2 JP 5042725 B2 JP5042725 B2 JP 5042725B2 JP 2007172401 A JP2007172401 A JP 2007172401A JP 2007172401 A JP2007172401 A JP 2007172401A JP 5042725 B2 JP5042725 B2 JP 5042725B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- oligonucleotide
- bacteria
- primer
- seq
- base sequence
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
Images
Classifications
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
- Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change
Description
本発明は、コリネバクテリウム属細菌、ミクロコッカス属細菌、ロイコノストック属細菌、腸内細菌科細菌、シュードモナス属細菌、バチルス属細菌またはスタフィロコッカス属細菌をそれぞれ検出するためのプライマーに関する。本発明はまた、これらのプライマーを用いて食品中の菌叢を評価する方法に関する。
従来、食品中に含まれる細菌の菌数および菌叢を調べる場合には、平板培養法によって菌数を計数し、平板上に得られたコロニーについて、形態観察、グラム染色、生化学的性状試験等を行うことによって菌叢を評価する方法が行われてきた（非特許文献１）。この方法では、菌数の計数に1日間以上、菌叢の評価に２日間以上を要し、また、菌叢の評価に熟練技術が必要とされる。従って、製造直後に出荷する食品に対してこの方法を適用する場合には、細菌汚染が発生した際に迅速な対応が取れないという欠点があった。
近年、平板培養法に替わる細菌の迅速検出法として、遺伝子検出を原理とするPCR法が用いられようになった。例えば、真正細菌の16S rRNAをコードするDNA(16S rDNA)とハイブリダイズできるプライマー（ユニバーサルプライマー）を用い、被験試料に含まれる細菌からDNA抽出操作により得られるDNAを対象にしてPCR法を行い、細菌全般を検出する方法が知られている（例：Eubacteria Detection Kir for conventional PCR、Minerva Biolabs BmbH：非特許文献２）。しかし、この方法は、細菌の定性検出を目的としているために細菌の定量はできず、また、菌叢を評価することも不可能である。
また、各種の食中毒細菌の16S rDNAとハイブリダイズできる特異的なプライマーを用いたPCR法を行うことによって各種の食中毒細菌を検出する方法も提案されている（例：O-157（ベロ毒素遺伝子）One Shot PCR Screening Kit、TaKaRa：非特許文献３）。しかし、これらの方法は、特定の株、種、グループ（いくつかの種の集合体）を検出する方法であり、特定の範囲の細菌群について包括的かつ迅速に検出することはできない。
「最新微生物同定法」堀込広明編、有限会社 研修社・工業技術会株式会社（1994）
Eubacteria Detection Kit for conventional PCR Instruction Manual
O-157（ベロ毒素遺伝子）One Shot PCR Screening Kit 説明書
一般的な食品には多種の汚染細菌群が見られることから、本発明は、食品を汚染する可能性のある種々の細菌群について、特定の種や株に限定されることなく、包括的に菌叢の評価を実施するための簡便かつ迅速な方法を提供することを目的とする。
本発明者らは前記課題を解決するため研究を重ねた結果、食品を汚染する可能性のある一定の範囲の細菌群の16S rRNAをコードするDNAにおいて保存された領域を見出し、食品を汚染する可能性のある一定の範囲の細菌群を、特定の種や株に限定することなく検出できるプライマーを開発することに成功し、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は以下の発明を包含する。
（１）コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、以下の（ａ）または（ｂ）のオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと以下の（ｃ）または（ｄ）のオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌を検出するためのプライマーセット：
（ａ）配列番号１で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｂ）配列番号１で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド
（ｃ）配列番号２で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｄ）配列番号２で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド。
（ａ）配列番号１で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｂ）配列番号１で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド
（ｃ）配列番号２で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｄ）配列番号２で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド。
（２）コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、以下の（ａ）または（ｂ）のオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと以下の（ｃ）または（ｄ）のオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌を検出するためのプライマーセット：
（ａ）配列番号１で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｂ）配列番号１で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド
（ｃ）配列番号３で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｄ）配列番号３で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド。
（ａ）配列番号１で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｂ）配列番号１で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド
（ｃ）配列番号３で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｄ）配列番号３で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド。
（３）ロイコノストック属細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、以下の（ａ）または（ｂ）のオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと以下の（ｃ）または（ｄ）のオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、ロイコノストック属細菌を検出するためのプライマーセット：
（ａ）配列番号４で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｂ）配列番号４で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、ロイコノストック属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド
（ｃ）配列番号５で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｄ）配列番号５で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、ロイコノストック属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド。
（ａ）配列番号４で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｂ）配列番号４で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、ロイコノストック属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド
（ｃ）配列番号５で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｄ）配列番号５で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、ロイコノストック属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド。
（４）ロイコノストック属細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、以下の（ａ）または（ｂ）のオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと以下の（ｃ）または（ｄ）のオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、ロイコノストック属細菌を検出するためのプライマーセット：
（ａ）配列番号６で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｂ）配列番号６で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、ロイコノストック属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド
（ｃ）配列番号７で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｄ）配列番号７で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、ロイコノストック属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド。
（ａ）配列番号６で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｂ）配列番号６で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、ロイコノストック属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド
（ｃ）配列番号７で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｄ）配列番号７で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、ロイコノストック属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド。
（５）腸内細菌科細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、以下の（ａ）または（ｂ）のオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと以下の（ｃ）または（ｄ）のオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、腸内細菌科細菌を検出するためのプライマーセット：
（ａ）配列番号８で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｂ）配列番号８で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、腸内細菌科細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド
（ｃ）配列番号９で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｄ）配列番号９で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、腸内細菌科細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド。
（ａ）配列番号８で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｂ）配列番号８で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、腸内細菌科細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド
（ｃ）配列番号９で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｄ）配列番号９で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、腸内細菌科細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド。
（６）シュードモナス属細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、以下の（ａ）または（ｂ）のオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと以下の（ｃ）または（ｄ）のオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、シュードモナス属細菌を検出するためのプライマーセット：
（ａ）配列番号１０で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｂ）配列番号１０で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、シュードモナス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド
（ｃ）配列番号１１で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｄ）配列番号１１で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、シュードモナス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド。
（ａ）配列番号１０で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｂ）配列番号１０で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、シュードモナス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド
（ｃ）配列番号１１で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｄ）配列番号１１で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、シュードモナス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド。
（７）バチルス属細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、以下の（ａ）または（ｂ）のオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと以下の（ｃ）または（ｄ）のオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、バチルス属細菌を検出するためのプライマーセット：
（ａ）配列番号１２で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｂ）配列番号１２で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、バチルス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド
（ｃ）配列番号１３で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｄ）配列番号１３で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、バチルス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド。
（ａ）配列番号１２で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｂ）配列番号１２で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、バチルス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド
（ｃ）配列番号１３で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｄ）配列番号１３で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、バチルス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド。
（８）スタフィロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、以下の（ａ）または（ｂ）のオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと以下の（ｃ）または（ｄ）のオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、スタフィロコッカス属細菌を検出するためのプライマーセット：
（ａ）配列番号１４で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｂ）配列番号１４で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、スタフィロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド
（ｃ）配列番号９で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｄ）配列番号９で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、スタフィロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド。
（ａ）配列番号１４で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｂ）配列番号１４で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、スタフィロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド
（ｃ）配列番号９で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｄ）配列番号９で表される塩基配列において１もしくは２個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、スタフィロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチド。
（９）（１）〜（８）に記載のプライマーセットから選択される少なくとも１つのプライマーセットを用いて増幅反応を行って増幅産物を検出することを含む、細菌の検出方法。
（１０）（９）に記載の方法を用いて細菌を検出し、定量することを含む、食品中の菌叢を評価する方法。
（１１）（１）〜（８）に記載のプライマーセットから選択される少なくとも１つのプライマーセットを含む、食品中の菌叢を評価するためのキット。
（１２）（１）〜（８）に記載のプライマーセットから選択される少なくとも１つのプライマーセットによって増幅される標的細菌の16S rDNA領域を含むプラスミドを標準として用い、被検試料における該標的細菌の16S rDNAのコピー数を定量することにより該標的細菌の菌数を定量する、（９）に記載の方法。
（１３）標的細菌の菌株を標準として用い、被検試料における該標的細菌の菌数を定量する、（９）に記載の方法。
本発明により、食品を汚染する可能性のある種々の細菌群について、包括的に菌叢の評価を実施するための簡便かつ迅速な方法が提供される。
プライマーセット
一実施形態において本発明は、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、（ａ）配列番号１で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと（ｃ）配列番号２で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌を検出するためのプライマーセットに関する。上記プライマーセットにおけるフォワードプライマーとして、（ａ）のオリゴヌクレオチドとプライマーとして同等に機能しうるオリゴヌクレオチドを用いることもできる。そのようなオリゴヌクレオチドとして、配列番号１で表される塩基配列において１もしくは２個、好ましくは１個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドが挙げられる。同様に上記プライマーセットにおけるリバースプライマーとして、（ｃ）のオリゴヌクレオチドとプライマーとして同等に機能しうるオリゴヌクレオチドを用いることもできる。そのようなオリゴヌクレオチドとして、（ｄ）配列番号２で表される塩基配列において１もしくは２個、好ましくは１個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドが挙げられる。本明細書において上記プライマーセットをCM1プライマーセットと称する。
一実施形態において本発明は、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、（ａ）配列番号１で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと（ｃ）配列番号２で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌を検出するためのプライマーセットに関する。上記プライマーセットにおけるフォワードプライマーとして、（ａ）のオリゴヌクレオチドとプライマーとして同等に機能しうるオリゴヌクレオチドを用いることもできる。そのようなオリゴヌクレオチドとして、配列番号１で表される塩基配列において１もしくは２個、好ましくは１個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドが挙げられる。同様に上記プライマーセットにおけるリバースプライマーとして、（ｃ）のオリゴヌクレオチドとプライマーとして同等に機能しうるオリゴヌクレオチドを用いることもできる。そのようなオリゴヌクレオチドとして、（ｄ）配列番号２で表される塩基配列において１もしくは２個、好ましくは１個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドが挙げられる。本明細書において上記プライマーセットをCM1プライマーセットと称する。
一実施形態において本発明は、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、（ａ）配列番号１で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと（ｃ）配列番号３で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌を検出するためのプライマーセットに関する。上記プライマーセットにおけるフォワードプライマーとして、（ａ）のオリゴヌクレオチドとプライマーとして同等に機能しうるオリゴヌクレオチドを用いることもできる。そのようなオリゴヌクレオチドとして、配列番号１で表される塩基配列において１もしくは２個、好ましくは１個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドが挙げられる。同様に上記プライマーセットにおけるリバースプライマーとして、（ｃ）のオリゴヌクレオチドとプライマーとして同等に機能しうるオリゴヌクレオチドを用いることもできる。そのようなオリゴヌクレオチドとして、（ｄ）配列番号３で表される塩基配列において１もしくは２個、好ましくは１個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドが挙げられる。本明細書において上記プライマーセットをCM2プライマーセットと称する。
CM1プライマーセットまたはCM2プライマーセットを用いて増幅反応を行うことにより、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌の双方を検出することができる。CM1プライマーセットまたはCM2プライマーセットによって、コリネバクテリウム属に属する種々の細菌種およびミクロコッカス属に属する種々の細菌種を、特定の種に限定されることなく検出できるが、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌以外の細菌はほとんど検出されない。すなわち、CM1プライマーセットまたはCM2プライマーセットによってコリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌を特異的に検出できる。コリネバクテリウム（Corynebacterium）属細菌としては、例えば、C. aquaticum、C. renale、C. efficiens、C. ulcerans、C. accolens、C. afermentans、C. ammoniagenes、C. amycolatum、C. argentoratense、C. auris、C. bovis、C. callunae、C. confusum、C. coyleae、C. cystitidis、C. diphtheriae、C. falsenii、C. flavescens、C. glucuronolyticum、C. glutamicum、C. hoagii、C. imitans、C. jeikeium、C. kutscheri、C. lipophiloflavum、C. macginleyi、C. matruchotii、C. minutissimum、C. mucifaciens、C. mycetoides、C. pilosum、C. propinquum、C. pseudodiphtheriticum、C. pseudotuberculosis、C. riegelii、C. seminale、C. striatum、C. urealyticum、C. variabile、C. vitaeruminis、C. xerosisなどが挙げられる。ミクロコッカス（Micrococcus）属細菌としては、例えば、M. lylae、M. luteus、M. sedentariusなどが挙げられる。
一実施形態において本発明は、ロイコノストック属細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、（ａ）配列番号４で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと（ｃ）配列番号５で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、ロイコノストック属細菌を検出するためのプライマーセットに関する。上記プライマーセットにおけるフォワードプライマーとして、（ａ）のオリゴヌクレオチドとプライマーとして同等に機能しうるオリゴヌクレオチドを用いることもできる。そのようなオリゴヌクレオチドとして、配列番号４で表される塩基配列において１もしくは２個、好ましくは１個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、ロイコノストック属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドが挙げられる。同様に上記プライマーセットにおけるリバースプライマーとして、（ｃ）のオリゴヌクレオチドとプライマーとして同等に機能しうるオリゴヌクレオチドを用いることもできる。そのようなオリゴヌクレオチドとして、（ｄ）配列番号５で表される塩基配列において１もしくは２個、好ましくは１個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、ロイコノストック属の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドが挙げられる。本明細書において上記プライマーセットをL1プライマーセットと称する。
一実施形態において本発明は、ロイコノストック属細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、（ａ）配列番号６で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと（ｃ）配列番号７で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、ロイコノストック属細菌を検出するためのプライマーセットに関する。上記プライマーセットにおけるフォワードプライマーとして、（ａ）のオリゴヌクレオチドとプライマーとして同等に機能しうるオリゴヌクレオチドを用いることもできる。そのようなオリゴヌクレオチドとして、配列番号６で表される塩基配列において１もしくは２個、好ましくは１個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、ロイコノストック属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドが挙げられる。同様に上記プライマーセットにおけるリバースプライマーとして、（ｃ）のオリゴヌクレオチドとプライマーとして同等に機能しうるオリゴヌクレオチドを用いることもできる。そのようなオリゴヌクレオチドとして、（ｄ）配列番号７で表される塩基配列において１もしくは２個、好ましくは１個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、ロイコノストック属の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドが挙げられる。本明細書において上記プライマーセットをL2プライマーセットと称する。
L1プライマーセットまたはL2プライマーセットを用いて増幅反応を行うことにより、ロイコノストック属細菌を検出することができる。L1プライマーセットまたはL2プライマーセットによって、ロイコノストック属に属する種々の細菌種を、特定の種に限定されることなく検出できるが、ロイコノストック属細菌以外の細菌はほとんど検出されない。すなわち、L1プライマーセットまたはL2プライマーセットによってロイコノストック属細菌を特異的に検出できる。ロイコノストック（Leuconostoc）属細菌としては、例えば、L. citreum、L. mesenteroides、L. lactis、L. carnosum、L. gelidum、L. pseudomesenteroidesなどが挙げられる。
一実施形態において本発明は、腸内細菌科細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、（ａ）配列番号８で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと（ｃ）配列番号９で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、腸内細菌科細菌を検出するためのプライマーセットに関する。上記プライマーセットにおけるフォワードプライマーとして、（ａ）のオリゴヌクレオチドとプライマーとして同等に機能しうるオリゴヌクレオチドを用いることもできる。そのようなオリゴヌクレオチドとして、配列番号８で表される塩基配列において１もしくは２個、好ましくは１個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、腸内細菌科細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドが挙げられる。同様に上記プライマーセットにおけるリバースプライマーとして、（ｃ）のオリゴヌクレオチドとプライマーとして同等に機能しうるオリゴヌクレオチドを用いることもできる。そのようなオリゴヌクレオチドとして、（ｄ）配列番号９で表される塩基配列において１もしくは２個、好ましくは１個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、腸内細菌科細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドが挙げられる。本明細書において上記プライマーセットをEnプライマーセットと称する。Enプライマーセットを用いて増幅反応を行うことにより、腸内細菌科細菌を検出することができる。Enプライマーセットによって、腸内細菌科細菌に属する種々の細菌群を検出できるが、腸内細菌科細菌以外の細菌はほとんど検出されない。すなわち、Enプライマーセットにより、腸内細菌科細菌を特異的に検出できる。
腸内細菌科細菌には、Escherichia属細菌、Arsenophilus属細菌、Budvicia属細菌、Buttiauxella属細菌、Cedecea属細菌、Citrobacter属細菌、Edwardsiella属細菌、Enterobacter属細菌、Erwinia属細菌、Ewingella属細菌、Hafnia属細菌、Klebsiella属細菌、Kluyvera属細菌、Leclercia属細菌、Leminorella属細菌、Levinea属細菌、Moellerella属細菌、Morganella属細菌、Obesumbacterium属細菌、Pantoea属細菌、Pectobacterium属細菌、Photorhabdus属細菌、Pragia属細菌、Proteus属細菌、Providencia属細菌、Rahnella属細菌、Salmonella属細菌、Serratia属細菌、Shigella属細菌、Tatumella属細菌、Xenorhabdus属細菌、Yersinia属細菌、Yokenella属細菌などが包含される。本発明のプライマーセットは、特に、Enterobacter属細菌、例えば、E. sakazakii、E. cloacae、E. aerogenes、E. amnigenus、E. asburiae、E. cancerogenus、E. dissolvens、E. gergoviae、E. hormaechei、E. intermedius、E. nimipressuralis、E. pyrinus；Pantoea属細菌、例えば、P. agglomerans、P. ananatis、P. dispersa、P. stewartii indologenes；Escherichia属細菌、例えば、E. coli、E. fergusonii、E. hermannii、E. vulneris；Klebsiella属細菌、例えば、K. oxytoca、K. orinthinolytica、K. pneumoniae K. terrigenaの検出に好適に用いられる。
一実施形態において本発明は、シュードモナス属細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、（ａ）配列番号１０で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと（ｃ）配列番号１１で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、シュードモナス属細菌を検出するためのプライマーセットに関する。上記プライマーセットにおけるフォワードプライマーとして、（ａ）のオリゴヌクレオチドとプライマーとして同等に機能しうるオリゴヌクレオチドを用いることもできる。そのようなオリゴヌクレオチドとして、配列番号１０で表される塩基配列において１もしくは２個、好ましくは１個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、シュードモナス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドが挙げられる。同様に上記プライマーセットにおけるリバースプライマーとして、（ｃ）のオリゴヌクレオチドとプライマーとして同等に機能しうるオリゴヌクレオチドを用いることもできる。そのようなオリゴヌクレオチドとして、（ｄ）配列番号１１で表される塩基配列において１もしくは２個、好ましくは１個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、シュードモナス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドが挙げられる。本明細書において上記プライマーセットをPsプライマーセットと称する。Psプライマーセットを用いて増幅反応を行うことにより、シュードモナス属細菌を検出することができる。Psプライマーセットによって、シュードモナス属に属する種々の細菌種を検出できるが、それ以外の細菌はほとんど検出されない。すなわち、Psプライマーセットにより、シュードモナス属細菌を特異的に検出できる。
シュードモナス（Pseudomonas）属細菌としては、例えば、P. putida、P. aeruginosa、P. fluorescens、P. maltophilia、P. acidovorans、P. alcaligenes、P. cepacia、P. mallei、P. mendocina、P. pseudoalcaligenes、P. pseudomallei、P. paucimobilis、P. pickettii、P. stutzeri、P. vesicularisなどが挙げられる。
一実施形態において本発明は、バチルス属細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、（ａ）配列番号１２で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと（ｃ）配列番号１３で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、バチルス属細菌を検出するためのプライマーセットに関する。上記プライマーセットにおけるフォワードプライマーとして、（ａ）のオリゴヌクレオチドとプライマーとして同等に機能しうるオリゴヌクレオチドを用いることもできる。そのようなオリゴヌクレオチドとして、配列番号１２で表される塩基配列において１もしくは２個、好ましくは１個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、バチルス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドが挙げられる。同様に上記プライマーセットにおけるリバースプライマーとして、（ｃ）のオリゴヌクレオチドとプライマーとして同等に機能しうるオリゴヌクレオチドを用いることもできる。そのようなオリゴヌクレオチドとして、（ｄ）配列番号１３で表される塩基配列において１もしくは２個、好ましくは１個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、バチルス属の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドが挙げられる。本明細書において上記プライマーセットをBプライマーセットと称する。
Bプライマーセットを用いて増幅反応を行うことにより、バチルス属細菌を検出することができる。Bプライマーセットによって、バチルス属に属する種々の細菌種を、特定の種に限定されることなく検出できるが、バチルス属細菌以外の細菌はほとんど検出されない。すなわち、Bプライマーセットによってバチルス属細菌を特異的に検出できる。バチルス（Bacillus）属細菌としては、例えば、B. cereus、B. licheniformis、B. megaterium、B. pumilus、B. subtilisなどが挙げられる。
一実施形態において本発明は、スタフィロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、（ａ）配列番号１４で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと（ｃ）配列番号９で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、スタフィロコッカス属細菌を検出するためのプライマーセットに関する。上記プライマーセットにおけるフォワードプライマーとして、（ａ）のオリゴヌクレオチドとプライマーとして同等に機能しうるオリゴヌクレオチドを用いることもできる。そのようなオリゴヌクレオチドとして、配列番号１４で表される塩基配列において１もしくは２個、好ましくは１個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、スタフィロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ａ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドが挙げられる。同様に上記プライマーセットにおけるリバースプライマーとして、（ｃ）のオリゴヌクレオチドとプライマーとして同等に機能しうるオリゴヌクレオチドを用いることもできる。そのようなオリゴヌクレオチドとして、（ｄ）配列番号９で表される塩基配列において１もしくは２個、好ましくは１個の塩基が欠失、置換、付加もしくは挿入された塩基配列からなり、スタフィロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAにおいて（ｃ）のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドが挙げられる。本明細書において上記プライマーセットをSプライマーセットと称する。
Sプライマーセットを用いて増幅反応を行うことにより、スタフィロコッカス属細菌を検出することができる。Sプライマーセットによって、スタフィロコッカス属に属する種々の細菌種を、特定の種に限定されることなく検出できるが、スタフィロコッカス属細菌以外の細菌はほとんど検出されない。すなわち、Sプライマーセットによってスタフィロコッカス属細菌を特異的に検出できる。スタフィロコッカス（Staphylococcus）属細菌としては、例えば、S. aureus、S. capitis、S. epidermidis，S. equorum、S. sciuriなどが挙げられる。
本明細書において、16S rRNAをコードするDNA（16S rDNA）を標的とするプライマーセットとは、検出対象である細菌（標的細菌と称する場合もある）の16S rRNAをコードするDNAにプライマーがハイブリダイズし、該DNAにおける特定の領域（標的配列）を増幅しうるプライマーセットをさす。細菌の16S rRNAをコードするDNAは、通常、細菌のゲノムDNAをさす。本発明のプライマーセットは、16S rRNAをコードするDNAにおいて、各細菌属またはその群に特異的な部分を標的配列とすることから、各細菌属またはその群を特異的に検出および定量することが可能である。なお、各細菌の16S rDNAの塩基配列は、NCBI（National Center for Biotechnology Information）の遺伝子データベースGenBankから取得できる。
特定のオリゴヌクレオチドとプライマーとして同等に機能しうるオリゴヌクレオチドは、当該特定のオリゴヌクレオチドが標的とする16S rRNAをコードするDNAに同様にハイブリダイズし、かつ、該16S rRNAをコードするDNAにおいて当該特定のオリゴヌクレオチドが増幅する領域を増幅できるプライマーを意味する。ここで、ハイブリダイズは、特定のオリゴヌクレオチドが、その標的である16S rRNAをコードするDNAにハイブリダイズする条件において生じればよい。
本発明のプライマーは、好ましくはストリンジェントな条件下で、その標的である16S rRNAをコードするDNAにハイブリダイズするものである。ストリンジェントな条件とは、特異的なハイブリッドが形成され、非特異的なハイブリッドが形成されない条件をいう。ストリンジェントな条件は、例えば、ハイブリダイゼーション後の洗浄において、65℃、0.1×SSCおよび0.1% SDSで洗浄する条件である。
本明細書において、プライマーとしてのオリゴヌクレオチドは、好ましくは一本鎖DNAをさす。また、プライマーには、オリゴヌクレオチドを構成するデオキシリボースや塩基について、その一部に他の分子が付加する、その一部が他の分子で置換されるなどにより修飾されているものも含まれる。例えば、プライマーとするオリゴヌクレオチドの5’末端に蛍光色素などの標識を付したものなどが含まれる。
本発明のプライマーセットが標的とするコリネバクテリウム属細菌、ミクロコッカス属細菌、ロイコノストック属細菌、腸内細菌科細菌、シュードモナス属細菌、バチルス属細菌およびスタフィロコッカス属細菌は、食品を汚染する可能性のある細菌として頻出するものである。従って、これらの細菌の食品中での存在、およびその割合を明らかにすることによって、汚染原因の推定、汚染原因の排除方法の最適化を図ることが可能となる。
細菌の検出
本発明はまた、本発明の上記プライマーセットを用いて増幅反応を行って増幅産物を検出することにより該プライマーセットが対象とする細菌、すなわち標的細菌を検出する方法に関する。
本発明はまた、本発明の上記プライマーセットを用いて増幅反応を行って増幅産物を検出することにより該プライマーセットが対象とする細菌、すなわち標的細菌を検出する方法に関する。
本発明の検出方法は、被検試料に含まれる標的細菌のゲノムDNAを鋳型として、本発明のプライマーセットを用いて増幅反応を行い、増幅産物を検出することにより、被検試料に含まれる標的細菌を検出するものである。細菌の検出には、細菌の有無の判定および細菌の定量が包含される。
被検試料としては、使用するプライマーの標的細菌を含みうる試料であれば特に制限されない。本発明の検出方法は、食品試料に含まれる細菌の検出に、特に好適に用いられる。食品には飲料も含まれ、本発明の検出方法は、例えば、野菜類、肉類、果実類、穀類、卵類、魚介類、香辛料類（ハーブ類、スパイス類）、イモ類、豆／種実類、キノコ類、藻類、乳類およびこれらの加工製品等を広く対象とすることができる。
上記被検試料からDNAを抽出しそれを鋳型として増幅反応を行う。DNAの抽出は、従来のゲノムDNAの調製の場合と同様の手法により行うことができ、例えばフェノール／クロロホルム、エタノール、水酸化ナトリウム、CTABなどを用いたDNA抽出法を用いることができる。
増幅手法としては、特に限定されないが、ポリメラーゼ連鎖反応（PCR）法の原理を利用した公知の方法を挙げることができる。例えば、PCR法、LAMP(Loop-mediated isothermal AMPlification)法、ICAN(Isothermal and Chimeric primer-initiated Amplification of Nucleic acids)法、RCA(Rolling Circle Amplification)法、LCR(Ligase Chain Reaction)法、SDA(Strand Displacement Amplification)法等を挙げることができる。増幅は、増幅産物が検出可能なレベルになるまで行う。
PCR法は、被検試料に含まれるDNAを鋳型として、DNAポリメラーゼにより、プライマーセットに含まれる一対のプライマー間の塩基配列を合成するものである。PCR法によれば、変性、アニーリング及び合成からなるサイクルを繰り返すことによって、増幅産物を指数関数的に増幅させることができる。PCRの最適条件は、当業者であれば容易に決定することができる。
上記増幅反応後の増幅産物の検出には、このような産物を特異的に認識することができる公知の手段を用いることができる。例えば、増幅反応の過程で取り込まれるdNTPに、放射性同位体、蛍光物質、発光物質などの標識体を作用させ、この標識体を検出することができる。標識したdNTPを取り込んだ増幅産物を観察する方法としては、上述した標識体を検出するための当技術分野で公知の方法であればいずれの方法でもよい。例えば、標識体として放射性同位体を用いた場合には、放射活性を、例えば液体シンチレーションカウンター、γ−カウンターなどにより計測することができる。また標識体として蛍光を用いた場合には、その蛍光を蛍光顕微鏡、蛍光プレートリーダーなどを用いて検出することができる。
本発明の検出方法では、増幅反応として好ましくは定量的PCRを実施することにより、細菌の定量を行う。定量的PCRとしては、リアルタタイムPCRが好ましい。リアルタイムPCRは、PCRの増幅量をリアルタイムでモニターし解析する方法であり、電気泳動が不要で迅速性と定量性に優れている。この方法には、通常、サーマルサイクラーと分光蛍光光度計を一体化したリアルタイムPCR専用の装置を用いる。まず、段階希釈した既知量のDNAを標準としてPCRを行い、これをもとに、増幅が指数関数的に起こる領域で一定の増幅産物量になるサイクル数（threshold cycle；Ct値）を横軸に、初発のDNA量を縦軸にプロットし、検量線を作成する。未知濃度の試料についても、同じ条件下で反応を行い、Ct値を求め、この値と検量線から、試料中の目的のDNA量を測定することができる。
リアルタイムPCRは、当技術分野で通常用いられる方法により実施することができる。例えば、インターカレーター法、TaqManプローブ法およびサイクリングプローブ法などが挙げられる。
インターカレーター法は、二本鎖DNAに結合することで蛍光を発する試薬（例えば、インターカレーター：SYBR（登録商標）Green I）をPCR反応系に加える方法である。インターカレーターによるリアルタイムPCRは、SYBR Green Iの存在下でPCRを行い、標的配列の増幅に伴って増加する蛍光強度を測定することにより、試料中の標的配列を検出・定量する技術である。当該技術は、増幅反応と蛍光強度の測定を同時に実施するものであり、増幅産物にSYBR Green Iがインターカレートすることによって生じる蛍光を定量的に検出する。蛍光強度は、あるサイクル数を過ぎると検出限界を超え、急激に増加する。そして、試料中の標的配列を有するDNAの量が多いほど、少ないサイクル数で蛍光強度が急に増加する。従って、蛍光強度の対数的増加が始まるサイクル数を調べることにより、試料中の標的配列を有するDNAを定量することができる。
TaqManプローブ法は、5'末端を蛍光物質（FAMなど）で、3'末端をクエンチャー物質（TAMRAなど）で修飾したオリゴヌクレオチド（TaqManプローブ）をPCR反応系に加える方法である。TaqManプローブは、アニーリングステップで鋳型DNAに特異的にハイブリダイズするが、プローブ上にクエンチャーが存在するため、励起光を照射しても蛍光の発生は抑制される。伸長反応ステップのときに、Taq DNA ポリメラーゼのもつ5'→3'エキソヌクレアーゼ活性により、鋳型にハイブリダイズしたTaqManプローブが分解されると、蛍光色素がプローブから遊離し、クエンチャーによる抑制が解除されて蛍光を発する。
サイクリングプローブ法は、RNAとDNAからなるキメラプローブとRNase Hの組み合わせによる高感度な検出方法で、増幅中や増幅後の遺伝子断片の特定配列を効率良く検出することができる。プローブは5'端が蛍光物質（リポーター）で、3'端が蛍光を消光する物質（クエンチャー）で標識される。このプローブは、インタクトな状態ではクエンチングにより強い蛍光を発することはないが、配列が相補的な増幅産物とハイブリッドを形成した後にRNaseHによりRNA部分が切断されると、強い蛍光を発する。この蛍光強度を測定することで、増幅産物の量をモニターすることができる。
リアルタイムPCR用の装置は市販されており、本発明においては、そのような市販の装置（例えば、Applied Biosystems社製ABI PRISM 7700 Sequence Detector等）を用いることができる。
本発明の検出方法は、本発明のプライマーセットから選択される少なくとも１つのプライマーセットを用いて増幅反応を行って増幅産物を検出することを含むが、好ましくは少なくとも２つ、より好ましくは少なくとも３つ、さらに好ましくは少なくとも４つ、特に好ましくはすべてのプライマーセットについて増幅反応を行って増幅産物を検出することを含む。
本発明の検出方法において、各細菌属を検出し、定量する、すなわち菌数を定量するためには、標的細菌の菌株を標準として用いてもよいし、本発明のプライマーセットによって増幅される16S rDNA領域を含むプラスミド等の標準DNAを標準として用いてもよい。
標的細菌の菌株を標準として用いる場合（標準菌株を用いる場合）は、検査すべき被検試料に加えて、各標準菌株の2種以上の希釈系列についても定量的PCRを行って検量線を求め、得られた検量線から試料中の各細菌属の菌数を定量する。また、この標準菌株はPCRにおけるポジティブコントロールとしても利用することができる。
標準プラスミドなどの標準DNAを用いる場合は、標準菌株の代わりに、本発明の各プライマーセットにより増幅される標的細菌の16S rDNA領域を含むプラスミド等の標準DNAの2種以上の希釈系列を用いて検量線を求め、得られた検量線から、試料中の標的細菌の16S rDNAのコピー数を定量することにより、試料中の標的細菌の菌数を定量することができる。この場合、予め各標準菌株の菌数と標準DNAの量とを相関させておく必要があるが、プラスミド等の標準DNAは標準菌株と比較して取り扱いや保存等が容易である。このため、標準DNAを用いる定量方法は、食品または食品原料の保存、製造または流通の現場で実施する場合に特に好ましい。
食品中の菌叢の評価
本発明はまた、本発明のプライマーセットを用いて細菌を検出することにより、食品中の菌叢を評価する方法に関する。本明細書において食品中の菌叢の評価には、食品中に存在する標的細菌の状態に関する評価全般をさし、被検食品中に存在する細菌属の同定、各細菌属の定量、総生菌数の定量および細菌属の存在比の同定が包含される。食品の汚染評価においては、一般的に、細菌の菌数が1gあたり105を越える場合に、食品が汚染されていると判定される。本発明の細菌の検出方法により、各標的細菌の細菌数をオーダーレベルで測定でき、各細菌の数または総細菌数が1gあたり105を越えるかどうかを迅速かつ簡便に判定できるため、食品の汚染評価に好適である。
本発明はまた、本発明のプライマーセットを用いて細菌を検出することにより、食品中の菌叢を評価する方法に関する。本明細書において食品中の菌叢の評価には、食品中に存在する標的細菌の状態に関する評価全般をさし、被検食品中に存在する細菌属の同定、各細菌属の定量、総生菌数の定量および細菌属の存在比の同定が包含される。食品の汚染評価においては、一般的に、細菌の菌数が1gあたり105を越える場合に、食品が汚染されていると判定される。本発明の細菌の検出方法により、各標的細菌の細菌数をオーダーレベルで測定でき、各細菌の数または総細菌数が1gあたり105を越えるかどうかを迅速かつ簡便に判定できるため、食品の汚染評価に好適である。
本発明のプライマーセットが標的とするコリネバクテリウム属細菌、ミクロコッカス属細菌、ロイコノストック属細菌、腸内細菌科細菌、シュードモナス属細菌、バチルス属細菌およびスタフィロコッカス属細菌は、食品を汚染する可能性のある細菌として頻出するものであるため、これらの細菌の食品中での存在、ならびにその数および割合を明らかにすることによって、食品中の菌叢を適切に評価することができる。そして、上記標的細菌群のうち、どの細菌属が最も多く存在するか、あるいはどの細菌属が有害な量で存在するかを評価することにより、汚染原因の推定、汚染原因の排除方法の最適化を図ることが可能となる。食品については、被検試料についてすでに記載したとおりである。本発明の評価方法においては、１つのプライマーセットを用いてもよいし、複数種を組み合わせて用いてもよい。好ましくは少なくとも２つ、より好ましくは少なくとも３つ、さらに好ましくは少なくとも４つ、特に好ましくは６つ、最も好ましくはすべてのプライマーセットについて細菌の検出を行って、食品中の菌叢を評価する。複数のプライマーセットについて検出を行う場合、好ましい組合せとしては、より具体的には、CM2プライマーセットとL1プライマーセットとEnプライマーセットとPsプライマーセットとBプライマーセットの組合せが挙げられる。
キット
本発明はまた、本発明のプライマーセットから選択される少なくとも１つのプライマーセットを含む、食品中の菌叢を評価するためのキットに関する。本発明のキットは、上記プライマーセットのうちの１つを含むものでもよいし、複数種のプライマーセットを含むものでもよい。本発明のキットは、前記プライマーセットのほか、必要に応じて遺伝子増幅及び増幅産物の確認に利用可能な分子量マーカー、酵素、dNTP、NTP、緩衝液、減菌水、標品（標準菌株、標準DNAなど）等を含んだものとして構成される。
本発明はまた、本発明のプライマーセットから選択される少なくとも１つのプライマーセットを含む、食品中の菌叢を評価するためのキットに関する。本発明のキットは、上記プライマーセットのうちの１つを含むものでもよいし、複数種のプライマーセットを含むものでもよい。本発明のキットは、前記プライマーセットのほか、必要に応じて遺伝子増幅及び増幅産物の確認に利用可能な分子量マーカー、酵素、dNTP、NTP、緩衝液、減菌水、標品（標準菌株、標準DNAなど）等を含んだものとして構成される。
以下に実施例を挙げて本発明をより具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
実施例１（標準菌株を用いた場合の検出）
＜DNAの調製＞
Corynebacterium renale NBRC 15290（C-1株）、Leuconostoc mesenteroides NBRC 3426（L-1株）、Pantoea agglomerans NBRC 12686（Pa-1株）、Pseudomonas putida NBRC 100650（Ps-1株）、Bacillus cereus ATCC13061（B-1株）、Staphylococcus epidermidis NBRC 12993（S-1株）をそれぞれTryptic Soy Broth (Difco)で35℃、一晩培養して、12,000rpm、5分間の遠心分離によって集菌したものをミリQ水に再懸濁し、菌濃度を103、104、105、106cfu/mLとした。各菌液からDNeasy Tissue Kit（QIAGEN）を用いて、DNA溶液を調製した。
＜DNAの調製＞
Corynebacterium renale NBRC 15290（C-1株）、Leuconostoc mesenteroides NBRC 3426（L-1株）、Pantoea agglomerans NBRC 12686（Pa-1株）、Pseudomonas putida NBRC 100650（Ps-1株）、Bacillus cereus ATCC13061（B-1株）、Staphylococcus epidermidis NBRC 12993（S-1株）をそれぞれTryptic Soy Broth (Difco)で35℃、一晩培養して、12,000rpm、5分間の遠心分離によって集菌したものをミリQ水に再懸濁し、菌濃度を103、104、105、106cfu/mLとした。各菌液からDNeasy Tissue Kit（QIAGEN）を用いて、DNA溶液を調製した。
＜PCR反応＞
定量的PCR反応は、得られたDNA溶液およびSYBR Premix Ex Taq (Perfect Real Time) (TaKaRa)を用いて行った。プライマーセットとして、配列番号１の塩基配列からなるプライマーと配列番号２の塩基配列からなるプライマーとのCM1プライマーセット、配列番号１の塩基配列からなるプライマーと配列番号３の塩基配列からなるプライマーとのCM2プライマーセット、配列番号４の塩基配列からなるプライマーと配列番号５の塩基配列からなるプライマーとのL1プライマーセット、配列番号６の塩基配列からなるプライマーと配列番号７の塩基配列からなるプライマーとのL2プライマーセット、配列番号８の塩基配列からなるプライマーと配列番号９の塩基配列からなるプライマーとのEnプライマーセット、配列番号１０の塩基配列からなるプライマーと配列番号１１の塩基配列からなるプライマーとのPsプライマーセット、配列番号１２の塩基配列からなるプライマーと配列番号１３の塩基配列からなるプライマーとのBプライマーセット、ならびに配列番号１４の塩基配列からなるプライマーと配列番号９の塩基配列からなるプライマーとのSプライマーセットをそれぞれ用いた。
定量的PCR反応は、得られたDNA溶液およびSYBR Premix Ex Taq (Perfect Real Time) (TaKaRa)を用いて行った。プライマーセットとして、配列番号１の塩基配列からなるプライマーと配列番号２の塩基配列からなるプライマーとのCM1プライマーセット、配列番号１の塩基配列からなるプライマーと配列番号３の塩基配列からなるプライマーとのCM2プライマーセット、配列番号４の塩基配列からなるプライマーと配列番号５の塩基配列からなるプライマーとのL1プライマーセット、配列番号６の塩基配列からなるプライマーと配列番号７の塩基配列からなるプライマーとのL2プライマーセット、配列番号８の塩基配列からなるプライマーと配列番号９の塩基配列からなるプライマーとのEnプライマーセット、配列番号１０の塩基配列からなるプライマーと配列番号１１の塩基配列からなるプライマーとのPsプライマーセット、配列番号１２の塩基配列からなるプライマーと配列番号１３の塩基配列からなるプライマーとのBプライマーセット、ならびに配列番号１４の塩基配列からなるプライマーと配列番号９の塩基配列からなるプライマーとのSプライマーセットをそれぞれ用いた。
PCR反応液容量は20μLとし、SYBR Premix Ex Taq (Perfect Real Time) (TaKaRa) 10μL、10μMフォワードプライマーおよび10μMリバースプライマー各0.4μL、ROX Reference Dye (TaKaRa) 0.4μL、DNA抽出液2μL、滅菌蒸留水6.8μLの組成でPCR反応を行った。PCR反応条件は、95℃ 10秒間の後、95℃ 5秒間の熱変性と60℃ 30秒間のアニーリング処理と伸長反応を1サイクルとして、40サイクル行った。PCR反応により生成した増幅産物量は、二本鎖DNAにSYBR Green Iが結合して発生する蛍光強度を検出することによって測定した。測定データは ABI PRISM7700 Sequence Detection System (PE Applied Biosystems)で解析した。PCR反応後に増幅産物の融解曲線分析（95℃ 15秒間、60℃ 20秒間の後、20分間かけて95℃まで温度を上昇させ、95℃ 15秒間保持）を行い、増幅産物のTm値を確認することによって増幅産物が目的物であることを確認した。
その結果、菌株液中に103 cfu/mL以上程度の細菌が存在していればそのDNAを検出できることを確認した。また、103〜106cfu/mLの範囲で菌濃度とCt値に直線性があることを確認した（図１）。すなわち、本発明のプライマーセットを用いて、上記範囲で菌数を定量できることが示された。
実施例２（標準プラスミドを用いた場合の検出）
＜DNAの調製＞
食品から分離し、同定キットにより同定したCorynebacterium aquaticum （C-2株）、Leuconostoc citreum （L-2株）、Pantoea agglomerans （Pa-2株）、Pseudomonas putida （Ps-2株）をそれぞれTryptic Soy Brothで35℃、一晩培養して、12,000rpm、5分間の遠心分離によって集菌したものをミリQ水に再懸濁し、菌濃度を106cfu/mLとした。各菌液からDNeasy Tissue Kitを用いてDNA抽出液を調製し、これらを鋳型として以下のPCR反応を行った。PCR反応液容量は25μＬとし、DNA抽出液2μL、2.5ｍM dNTP 2μL、25mM MgCl2 1.5 μL、実施例１で用いた10μMフォワードプライマーおよび10μMリバースプライマー各0.5μL 、AmpliTaq Gold (Applied Biosystems) 0.25μL、×10 PCR buffer II（Applied Biosystems）2.5 μL、の組成で行った。PCR反応条件は、95℃ 10分間の後、95℃ 5秒間の熱変性と60℃ 30秒間のアニーリング処理および伸長反応を1サイクルとして、35サイクル行った。得られたPCR産物を、TOPO TA cloning Kit for Sequencing (Invitrogen) を用いてTOPO CloningベクターpCR4-TOPOにライゲーションした後、大腸菌DH5αコンピテントセルにトランスフォームした。この大腸菌を培養して、QIAprep Spin Miniprep Kit (QIAGEN)を用いてPCR産物を導入した標準プラスミドを回収した。なお、本実施例で用いた菌株のGenBank番号は、C-2株：D45057、L-2株：AF111949、Pa-2株：AY395010、Ps-2株：AY450556である。
＜DNAの調製＞
食品から分離し、同定キットにより同定したCorynebacterium aquaticum （C-2株）、Leuconostoc citreum （L-2株）、Pantoea agglomerans （Pa-2株）、Pseudomonas putida （Ps-2株）をそれぞれTryptic Soy Brothで35℃、一晩培養して、12,000rpm、5分間の遠心分離によって集菌したものをミリQ水に再懸濁し、菌濃度を106cfu/mLとした。各菌液からDNeasy Tissue Kitを用いてDNA抽出液を調製し、これらを鋳型として以下のPCR反応を行った。PCR反応液容量は25μＬとし、DNA抽出液2μL、2.5ｍM dNTP 2μL、25mM MgCl2 1.5 μL、実施例１で用いた10μMフォワードプライマーおよび10μMリバースプライマー各0.5μL 、AmpliTaq Gold (Applied Biosystems) 0.25μL、×10 PCR buffer II（Applied Biosystems）2.5 μL、の組成で行った。PCR反応条件は、95℃ 10分間の後、95℃ 5秒間の熱変性と60℃ 30秒間のアニーリング処理および伸長反応を1サイクルとして、35サイクル行った。得られたPCR産物を、TOPO TA cloning Kit for Sequencing (Invitrogen) を用いてTOPO CloningベクターpCR4-TOPOにライゲーションした後、大腸菌DH5αコンピテントセルにトランスフォームした。この大腸菌を培養して、QIAprep Spin Miniprep Kit (QIAGEN)を用いてPCR産物を導入した標準プラスミドを回収した。なお、本実施例で用いた菌株のGenBank番号は、C-2株：D45057、L-2株：AF111949、Pa-2株：AY395010、Ps-2株：AY450556である。
＜PCR反応＞
得られた各標準プラスミドを、1反応あたり106、105、104、103、102、101コピーとなるように添加して、実施例１と同様に、４つのプライマーセットを用いて定量的PCR反応を行った。1反応あたりのプラスミド量が101〜106コピーの範囲でコピー数とCt値に直線性があることを確認した（図２）。すなわち、本発明のプライマーセットを用いて、該プライマーセットが検出対象とする各細菌の16S rDNAのコピー数を定量できることが示された。
得られた各標準プラスミドを、1反応あたり106、105、104、103、102、101コピーとなるように添加して、実施例１と同様に、４つのプライマーセットを用いて定量的PCR反応を行った。1反応あたりのプラスミド量が101〜106コピーの範囲でコピー数とCt値に直線性があることを確認した（図２）。すなわち、本発明のプライマーセットを用いて、該プライマーセットが検出対象とする各細菌の16S rDNAのコピー数を定量できることが示された。
従って、本発明のプライマーセットおよび上記で得られた検量線を用いて、試料中の標的細菌の16S rDNAのコピー数を定量することができ、ひいては、試料中の標的細菌の菌数を定量できることが示された。
実施例３（本発明のプライマーの菌種特異性の確認）
実施例１と同様にして、図３に示す各菌株（標準菌株以外は食品から分離し、市販の同定キットによって属種を同定した）を培養して菌濃度を106 cfu/mL相当とした菌液からDNAを抽出し、定量的PCR反応を行った。結果を図３に示す。判定結果の基準は以下のとおりである。
実施例１と同様にして、図３に示す各菌株（標準菌株以外は食品から分離し、市販の同定キットによって属種を同定した）を培養して菌濃度を106 cfu/mL相当とした菌液からDNAを抽出し、定量的PCR反応を行った。結果を図３に示す。判定結果の基準は以下のとおりである。
図３に示すように、CM1プライマーセット（配列番号１および２）を用いた場合には、コリネバクテリウム属およびミクロコッカス属細菌のCt値は25以下であり、それ以外の細菌のCt値は35以上であった。CM2プライマーセット（配列番号１および３）を用いた場合には、コリネバクテリウム属およびミクロコッカス属細菌のCt値は26以下であり、それ以外の細菌のCt値は38以上であった。L1プライマーセット（配列番号４および５）、またはL2プライマーセット（配列番号６および７）を用いた場合には、ロイコノストック属細菌のCt値は30以下であり、それ以外の細菌のCt値は40であった。Enプライマーセット（配列番号８および９）を用いた場合には、腸内細菌科に属するエンテロバクター（Enterobacter）属、エシェリキア（Escherichia）属、クレブシエラ（Klebsiella）属、パントエア（Pantoea）属の各細菌のCt値は17以下であり、それ以外の細菌のCt値は40であった。Psプライマーセット（配列番号１０および１１）を用いた場合には、シュードモナス属の各細菌のCt値が22以下であり、それ以外の細菌のCt値は35以上であった。Bプライマーセット（配列番号１２および１３）を用いた場合には、バチルス属の各細菌のCt値が19以下であり、それ以外の細菌のCt値は39以上であった。Sプライマーセット（配列番号１４および９）を用いた場合には，スタフィロコッカス属細菌のCt値は23以下であり、それ以外の細菌のCt値は34以上であった。
各プライマーセットにおいて、標的細菌のCt値と標的細菌以外の細菌のCt値との差はいずれも10以上であった。試料液の初期DNA量差、すなわち初期菌濃度差が1000倍以上のとき、Ct値差は10以上となることから、菌液濃度が106cfu/mLの標的細菌液のCt値より10以上高いCt値を示す菌液においては、標的細菌属が103 cfu/mL以下であることが推定できる。したがって、本発明の各プライマーセットは、標的細菌を特異的に検出可能であることが確認された。
実施例４（食品に接種した細菌の定量）
食品として、市販のキャベツ、キュウリ、タマネギ、ニンジン、レタスを用いた。各食品から細菌汚染が少ない部分を採取して、各食品1gあたり103個、104個、105個、106個程度となるようにC-2株、L-2株、Pa-2株、Ps-2株、B-1株、S-1株をそれぞれ接種した。菌を接種した各食品に9倍量のリン酸緩衝液(pH7.2)を加えてストマッカー処理した。これらの処理液からDNAを抽出し、実施例１と同様にして定量的PCR反応を行った。また、食品毎に各プライマーセットを用いた場合の定量的PCR反応における各菌株の検量線を作成した。その結果、接種した菌量が104log cfu/g以上の食品検体において、食品中の各標的細菌を定量的に検出できることを確認した。キャベツについて作成した検量線を図４に示す。
食品として、市販のキャベツ、キュウリ、タマネギ、ニンジン、レタスを用いた。各食品から細菌汚染が少ない部分を採取して、各食品1gあたり103個、104個、105個、106個程度となるようにC-2株、L-2株、Pa-2株、Ps-2株、B-1株、S-1株をそれぞれ接種した。菌を接種した各食品に9倍量のリン酸緩衝液(pH7.2)を加えてストマッカー処理した。これらの処理液からDNAを抽出し、実施例１と同様にして定量的PCR反応を行った。また、食品毎に各プライマーセットを用いた場合の定量的PCR反応における各菌株の検量線を作成した。その結果、接種した菌量が104log cfu/g以上の食品検体において、食品中の各標的細菌を定量的に検出できることを確認した。キャベツについて作成した検量線を図４に示す。
実施例５（食品中に含まれる細菌の定量および菌叢の評価）
食品検体として、市販のキャベツ、キュウリ、タマネギ、ニンジン、レタス、ポテトサラダを用いた。各食品検体に9倍量のリン酸緩衝液(pH7.2)を加えてストマッカー処理した。これらの処理液からDNAを抽出し、実施例１と同様にして定量的PCR反応を行った。各検体で得られたCt値から、実施例４で作成した検量線を用いて各検体における各細菌属の菌数を算出した。結果を図５及び図６に示す。平板培養法により求めた各細菌属の菌数を、＊印を付して併記した。
食品検体として、市販のキャベツ、キュウリ、タマネギ、ニンジン、レタス、ポテトサラダを用いた。各食品検体に9倍量のリン酸緩衝液(pH7.2)を加えてストマッカー処理した。これらの処理液からDNAを抽出し、実施例１と同様にして定量的PCR反応を行った。各検体で得られたCt値から、実施例４で作成した検量線を用いて各検体における各細菌属の菌数を算出した。結果を図５及び図６に示す。平板培養法により求めた各細菌属の菌数を、＊印を付して併記した。
算出した各細菌属の菌数は、常法である平板培養法によって評価した菌分布とよく対応していた。また、各食品検体で算出した各細菌属菌数の合計値と、平板培養法により求められた一般生菌数（合計細菌数）とは良く対応していた。以上から、本発明のプライマーセットにより、食品における菌叢の評価、すなわち食品に含まれる細菌属の同定および各細菌の定量が可能であることが示された。
本発明により、食品中の細菌の定量および菌叢の評価を簡単かつ迅速に実施できるPCR用プライマー、および、当該プライマーを用いて食品中の特定細菌群を簡単かつ迅速に検出できる方法などが提供される。本発明の方法は、食品工業における簡単かつ迅速な細菌検出・定量に有用である。本発明により、食品の一般生菌数を迅速に推定することが可能となり、さらに、細菌汚染の可能性のある食品について、その菌叢を迅速に推定することによって、食品製造現場における汚染原因への迅速な対応が可能となる。
Claims (11)
- コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、以下の（ａ）のオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと以下の（ｃ）のオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌を検出するためのプライマーセット：
（ａ）配列番号１で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｃ）配列番号２で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。 - コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、以下の（ａ）のオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと以下の（ｃ）のオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、コリネバクテリウム属細菌およびミクロコッカス属細菌を検出するためのプライマーセット：
（ａ）配列番号１で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｃ）配列番号３で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。 - ロイコノストック属細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、以下の（ａ）のオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと以下の（ｃ）のオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、ロイコノストック属細菌を検出するためのプライマーセット：
（ａ）配列番号４で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｃ）配列番号５で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。 - ロイコノストック属細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、以下の（ａ）のオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと以下の（ｃ）のオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、ロイコノストック属細菌を検出するためのプライマーセット：
（ａ）配列番号６で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｃ）配列番号７で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。 - 腸内細菌科細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、以下の（ａ）のオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと以下の（ｃ）のオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、腸内細菌科細菌を検出するためのプライマーセット：
（ａ）配列番号８で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｃ）配列番号９で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。 - シュードモナス属細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、以下の（ａ）のオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと以下の（ｃ）のオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、シュードモナス属細菌を検出するためのプライマーセット：
（ａ）配列番号１０で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｃ）配列番号１１で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。 - バチルス属細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、以下の（ａ）のオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと以下の（ｃ）のオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、バチルス属細菌を検出するためのプライマーセット：
（ａ）配列番号１２で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｃ）配列番号１３で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。 - スタフィロコッカス属細菌の16S rRNAをコードするDNAを標的とし、以下の（ａ）のオリゴヌクレオチドからなるフォワードプライマーと以下の（ｃ）のオリゴヌクレオチドからなるリバースプライマーとを含む、スタフィロコッカス属細菌を検出するためのプライマーセット：
（ａ）配列番号１４で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド
（ｃ）配列番号９で表される塩基配列からなるオリゴヌクレオチド。 - 請求項１〜８に記載のプライマーセットから選択される少なくとも１つのプライマーセットを用いて増幅反応を行って増幅産物を検出することを含む、細菌の検出方法。
- 請求項９に記載の方法を用いて細菌を検出し、定量することを含む、食品中の菌叢を評価する方法。
- 請求項１〜８に記載のプライマーセットから選択される少なくとも１つのプライマーセットを含む、食品中の菌叢を評価するためのキット。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2007172401A JP5042725B2 (ja) | 2006-07-18 | 2007-06-29 | プライマーおよび該プライマーを用いた細菌の検出方法 |
Applications Claiming Priority (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2006195760 | 2006-07-18 | ||
| JP2006195760 | 2006-07-18 | ||
| JP2007172401A JP5042725B2 (ja) | 2006-07-18 | 2007-06-29 | プライマーおよび該プライマーを用いた細菌の検出方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2008043324A JP2008043324A (ja) | 2008-02-28 |
| JP5042725B2 true JP5042725B2 (ja) | 2012-10-03 |
Family
ID=39177683
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2007172401A Active JP5042725B2 (ja) | 2006-07-18 | 2007-06-29 | プライマーおよび該プライマーを用いた細菌の検出方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP5042725B2 (ja) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2009268413A (ja) * | 2008-05-08 | 2009-11-19 | Nisshin Seifun Group Inc | プライマーおよび該プライマーを用いたバチルス属細菌の検出方法 |
Family Cites Families (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP3423597B2 (ja) * | 1997-11-05 | 2003-07-07 | 三井農林株式会社 | 細菌の同定方法 |
| JP2001157598A (ja) * | 1999-12-01 | 2001-06-12 | Matsushita Electric Ind Co Ltd | 遺伝子検出方法およびその方法を利用した装置 |
| AU2005323451B2 (en) * | 2004-05-21 | 2010-11-18 | Qiagen Sciences Llc | Kits and processes for removing contaminants from nucleic acids in environmental and biological samples |
-
2007
- 2007-06-29 JP JP2007172401A patent/JP5042725B2/ja active Active
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JP2008043324A (ja) | 2008-02-28 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Ye et al. | Rapid detection of viable Listeria monocytogenes in chilled pork by real-time reverse-transcriptase PCR | |
| US20100075305A1 (en) | Detection of bacterium by utilizing dnaj gene and use thereof | |
| EP3087198A1 (en) | Metagenomic analysis of samples | |
| JP2015039320A (ja) | 複数細菌の同時検出及び／又は定量方法 | |
| Ranjbar et al. | Use of TaqMan® real-time PCR for rapid detection of Salmonella enterica serovar Typhi | |
| Xiao et al. | Critical issues in detecting viable Listeria monocytogenes cells by real-time reverse transcriptase PCR | |
| JP5766216B2 (ja) | 核酸修飾方法 | |
| EP1772522A1 (en) | Control of preservation by biomarkers | |
| WO2015190106A1 (ja) | 食中毒菌検出用担体、食中毒菌検出用キット、食中毒菌の検出方法、及び食中毒菌用ｐｃｒ反応液 | |
| JP5042725B2 (ja) | プライマーおよび該プライマーを用いた細菌の検出方法 | |
| JP2009268413A (ja) | プライマーおよび該プライマーを用いたバチルス属細菌の検出方法 | |
| JP5243814B2 (ja) | 細菌属特異的プライマーおよび該プライマーを用いた細菌の検出方法 | |
| JP5286997B2 (ja) | 抗酸菌属細菌の検出用オリゴヌクレオチドおよびその用途 | |
| US20060088833A1 (en) | Detection of mycobacteria in clinical material | |
| Löfström et al. | Fluorescence-based real-time quantitative polymerase chain reaction (qPCR) technologies for high throughput screening of pathogens | |
| Aslan et al. | Nucleic Acid–Based Methods in the Detection of Foodborne Pathogens | |
| JP6446907B2 (ja) | 食中毒原因菌を分離検出する方法 | |
| EP2889380A1 (en) | Metagenomic analysis of samples | |
| US20130149708A1 (en) | Multiplex PCR for Identification of B. anthracis and Detection of Plasmid Presence | |
| KR20160135775A (ko) | 대장균의 검출 방법 및 대장균 검출용 담체 | |
| JP2016000015A (ja) | 食中毒菌検出用担体、及び食中毒菌検出用キット | |
| Dolan et al. | A novel quantitative reverse-transcription PCR (qRT-PCR) for the enumeration of total bacteria, using meat micro-flora as a model | |
| WO2023214588A1 (ja) | 芽胞形成細菌の検出方法 | |
| JPWO2018199279A1 (ja) | リボソームｒｎａ前駆体を利用した微生物の生死判定方法 | |
| JP7474065B2 (ja) | 複数の変敗原因菌の同時検出方法および複数の変敗原因菌の同時検出用組成物 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20091130 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20120306 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20120420 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20120515 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20120613 |
|
| TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20120703 |
|
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 |
|
| A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20120711 |
|
| R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Ref document number: 5042725 Country of ref document: JP Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20150720 Year of fee payment: 3 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |