JP4745525B2 - Cultured epithelial cell sheet for corneal treatment and method for producing the same - Google Patents
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Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は患者眼の角膜治療に利用される角膜治療用培養上皮細胞シート及びその製造方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
従来、角膜炎、結膜炎等の炎症や、角膜上皮損傷のような角膜疾患に対して、点眼剤や軟膏剤が利用されている。この点眼剤や軟膏剤のみによる治療は、比較的軽度の角膜疾患に適用している。
【０００３】
これに対し、中度〜重度の角膜疾患、例えば瘢痕性角結膜症では、角結膜上皮下瘢痕組織を除去した後、露出した強膜又は角膜実質上に羊膜組織を逢着することによる治療が知られている。同様の術式による対象疾患としては、Stevens-Johnson症候群、眼類天庖蒼、化学傷・熱傷、翼状片等が考えられる。
【０００４】
また、近年では、角膜上皮細胞を培養する技術も確立されつつある。この技術により作製される培養角膜上皮細胞が、上記疾患の治療に利用されることも考えられる。
【０００５】
【発明が解決しようとする課題】
しかしながら、羊膜組織の逢着による治療では、羊膜組織が入手困難であるだけでなく、十分な量の組織を確保することが困難であり、さらに、免疫拒絶反応に対する考慮が必要であるという問題がある。
【０００６】
一方、培養角膜上皮細胞を用いた治療では、採取可能な角膜上皮細胞の量が極めて少ないため、十分な量の組織を確保することが困難であるという問題がある。また、角膜上皮細胞の培養に関しても、基となる細胞数が少ないことから培養によって細胞を大量に得ることも困難であった。
【０００７】
本発明は上記従来技術の問題点を鑑み、角膜の治療に有効であり且つ容易に作製可能な角膜治療用培養上皮細胞シート及びその製造方法を提供することを技術課題とする。
【０００８】
【課題を解決するための手段】
本発明の角膜治療用培養上皮細胞シートは、口腔粘膜上皮細胞である、角膜上皮細胞以外の上皮細胞に由来する培養上皮細胞の層を有し、角膜上皮性疾患に対して利用されることを特徴としている。
このような培養上皮細胞シートは、角膜上皮細胞以外の上皮細胞の層を有しているので、角膜上皮性疾患の治療を目的として角膜へ移植した場合には、培養上皮細胞から生理活性物質が周囲の角膜上皮細胞に向けて産生される。これにより、角膜上皮細胞の再生が促進され、効率的な角膜治療を行うことができる。
【０００９】
また、このような培養上皮細胞シートは、口腔粘膜上皮細胞由来の上皮細胞で構成されているので、免疫原性が低いという口腔粘膜上皮細胞の特性を培養上皮細胞シートについても保持することができる。これにより、免疫原性の低い培養上皮細胞シートとすることができ、拒絶反応を起こり難くすることができる。
さらに、本発明の培養上皮細胞シートの上皮細胞層は、少なくとも一層あればよいが、二層以上に重層化させた多層構成となっていることが好ましい。
【００１０】
本発明の角膜治療用培養上皮細胞シートの製造方法は、支持細胞上に又は支持細胞と共に、角膜上皮細胞以外の上皮細胞を播種する播種工程と、該細胞を前記支持細胞の存在下でシート状に培養する培養工程と、を具備することを特徴としている。
この方法によれば、角膜細胞以外の上皮細胞が支持細胞と共に培養されるので、支持細胞が産生する産生物質の影響を受けて重層化された上皮細胞シートを容易に作製できる。また支持細胞の存在によって上皮細胞の重層化が容易に行われ、充分な量の生理活性物質の産生も可能となる。これにより、角膜治療に有効な上皮細胞シートを効率よく作製することができる。
【００１１】
【発明の実施の形態】
本発明の角膜治療用培養上皮細胞シートは、口腔粘膜上皮細胞である、角膜上皮細胞以外の上皮細胞に由来する培養上皮細胞の層を少なくとも一層有するシート状の角膜治療用培養上皮細胞シートである。
このような角膜治療用の培養上皮細胞シートは、角膜上皮細胞以外の上皮細胞から構成されているので、角膜上皮細胞よりも充分な量の細胞数を確保することができ、治療に必要な細胞シートを培養することによって早期に且つ容易に提供することができる。また、角膜に移植した後に、接触している角膜に対しＥＧＦ（上皮細胞増殖因子）等の生理活性物質を放出するので、移植部における角膜上皮細胞の再生を促すことができ、これにより角膜障害や角膜疾患を効率的に治療することができるという利点も有する。また、患者自身から上皮細胞を得た場合（自家）には、免疫拒絶反応を回避することができ、より長期間に亘り角膜上皮細胞と一体化できるため、同部位における治癒促進作用が期待できる。以下に本培養上皮細胞シートについて説明する。
【００１２】
本発明の培養上皮細胞シートを構成する上皮細胞には、角膜上皮細胞以外の上皮細胞、すなわち、口腔粘膜上皮細胞が利用できる。口腔粘膜上皮細胞は、容易に採取可能であり、また更に例えば表皮細胞と比較して細胞の増殖速度が速く免疫原性も低いという特性も備えているため、特に好ましい。殊に、口腔粘膜上皮細胞の１種で、歯肉溝の一部を形成する口腔内縁粘膜上皮細胞は、通常の口腔粘膜上皮細胞と比べても分裂能が高く、拒絶反応が起こり難いので、更に好ましい。
【００１３】
これらの粘膜上皮細胞は、適当な生体から採取することができる。
例えば、口腔粘膜細胞は、粘膜下組織ごと健常者の口腔内から採取することができる。採取された粘膜組織には粘膜細胞以外に結合組織などが含まれているため、粘膜細胞を単離する必要がある。粘膜細胞の単離では、採取された粘膜組織から結合組織や真皮を除去するために、適当な酵素、例えばディスパーゼ、トリプシンなどが用いられる。また、ナイロンメッシュなどを用いてデブリスなどを除去する。
【００１４】
また、口腔粘膜上皮細胞は、角膜治療を行う患者自身から直接採取することが可能である。このような患者自身から直接採取された上皮細胞は、免疫拒絶反応を回避することができるため、好ましい。
【００１５】
本発明の培養上皮細胞シートは、上記のような上皮細胞の層を少なくとも一層有している。この上皮細胞層は、少なくとも一層あればよいが、二層以上に重層化させた多層構成となっていることが、培養細胞シートの移植操作時に適度な強度を付与する観点から好ましい。また培養上皮細胞シートは、培養上皮細胞シートに対して何ら影響を与えない上皮細胞層以外の層を有することもできるが、他種の層を含めたものは作製に手間がかかるため、効率よく培養上皮細胞シートを作製する観点から、培養上皮細胞層のみを含むことが好ましい。
【００１６】
次に本発明の角膜治療用培養上皮細胞シートの製造方法について説明する。
本発明の角膜治療用培養上皮細胞シートは、支持細胞上に又は支持細胞と共に、上記上皮細胞を播種する播種工程と、播種された上皮細胞をシート状に培養する培養工程とを含む方法により製造される。
【００１７】
本発明では、導入細胞である粘膜上皮細胞を層状に且つ高効率で成育させるために、支持細胞を用いる。支持細胞には、例えば線維芽細胞、例えばマウスＮＩＨ３Ｔ３細胞、３Ｔ３Ｊ２、スイス３Ｔ３が含まれ、得られる導入細胞の層の厚みや支持細胞上での導入細胞の増殖速度の観点から、３Ｔ３Ｊ２細胞が好ましい。支持細胞は、導入細胞の成育を干渉しないように増殖能が消失される。増殖能の消失は、当技術分野において周知の方法、例えば、マイトマイシンＣによる処理や放射線照射によって行うことができる。また、培養は、通常のプラスチックディッシュのような培養容器を用いて行う。
【００１８】
上皮細胞は、先に支持細胞を播種し、ディッシュ底面に接着させた後に播種してもよく、支持細胞と共に播種してもよい。このとき、上皮細胞は、１×１０3個／ｃｍ2以上、好ましくは１×１０4個／ｃｍ2〜１×１０5個／ｃｍ2の細胞密度で播種することができる。一方、支持細胞は、１×１０3個／ｃｍ2〜１×１０4個／ｃｍ3以上で播種することができる。支持細胞が、これよりも少ないと支持細胞としての役割を十分に果たすことができず、またこれよりも多いと上皮細胞の増殖の妨げとなるため好ましくない。また、上皮細胞が、この範囲よりも少ない又は多いと効率よく増殖することができないため、好ましくない。
【００１９】
本発明において、上皮細胞を支持細胞の存在下でシート状に成育させるために成育培地が用いられる。この目的に用いられる成育培地には、当業界で既知の種々の培地から選択することができる。成育培地中での培養によって、上皮細胞は容易に層を形成し、シート状となる。一方、支持細胞は、上皮細胞の成育を支持するのみで死滅し、上皮細胞がシートを形成したときには、もはや培養系には存在しない。
【００２０】
成育培地には、シート形成能がある上皮シート形成培地（ＥＦＭ）を用いることが好ましい。ＥＦＭは、通常、表皮細胞を層状に成育させるために用いられている培地であり、ＤＭＥＭとハムＦ−１２培地の３：１混合液で構成され、５％ＦＢＳ、５μｇ／ｍｌのインシュリン、５μｇ／ｍｌのトランスフェリン、２×１０-9Ｍのトリヨードサイロニン、１×１０-9Ｍのコレラ毒素、０.４μｇ／ｍｌのハイドロコルチゾン、１００Ｕ／ｍｌのペニシリン、０.１μｇ／ｍｌのカナマイシン、０.２５μｇ／ｍｌのアンホテリチンＢ及び１０ｎｇ／ｍｌのヒト リコンビナント上皮細胞増殖因子（ＥＧＦ）等を補充することができる。
【００２１】
シート状の培養上皮細胞は、シート状を維持したまま培養容器から分離される。この分離は、当業界において既知の方法によって行うことができ、例えばディスパーゼなどの適当な酵素を用いて基底層の接着を阻害することにより容易に行うことができる。
【００２２】
本発明の培養上皮細胞シートは、角膜治療に用いられる。
本発明の培養上皮細胞シートの使用に適した角膜障害及び疾患には、瘢痕性角結膜症、Stevens-Johnson症候群、眼類天庖蒼、化学傷・熱傷、翼状片等の角膜上皮性疾患である。
このような角膜障害及び疾患に本発明の培養上皮細胞シートを使用する場合には、角膜欠損部分に培養上皮細胞シートを移植する。移植は、欠損部分の全面を覆うように培養上皮細胞シートを被覆すればよい。なお移植部分の保護や乾燥防止の観点から、移植部分をコンタクトレンズなどで被覆することが好ましい。
【００２３】
本発明の培養上皮細胞シートは、角膜治療のために移植された後、角膜の欠損部と接触する。この際、培養上皮細胞シートは欠損部に対して生理活性物質を放出し、角膜の上皮化を促進させることができるので、角膜を効率よく再生させることによって角膜の治療を行うことができる。なお培養上皮細胞シートは、治療対象となる角膜の再生に必要な時期に存在していればよく、その後、脱落してもよい。
【００２４】
【実施例】
以下、本発明について培養細胞として口腔粘膜上皮細胞を利用したものを一実施例として挙げ、図面に基づいて説明する。但し、本発明は以下の実施例のみに限定されるものではない。
【００２５】
播種細胞となる口腔粘膜上皮細胞は、患者の了解を得て健康な口腔粘膜から採取した。採取された口腔粘膜組織を、粘膜下組織を鋏で除去した後、小片に刻んだ。粘膜組織の小片を、１０００Ｕ／ｍｌのペニシリン、１ｍｇ／ｍｌのカナマイシン及び２．５μｇのアンホテリシンＢを含有するリン酸緩衝液（ＰＢＳ）で、３０分間３７℃で２回浸漬した。次いで、１０００ＰＵ／ｍｌのディスパーゼ（合同酒精株式会社製）を含有するダルベッコ改変イーグル培地（ＤＭＥＭ）に１６時間４℃で、組織を浸漬し、その後、３０分間室温で０．２５％トリプシンで酵素処理して、細胞を分離した。酵素活性は１０％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）を含有するＤＭＥＭで洗浄することにより停止させた。その後、１０％ＦＢＳを含有するＤＭＥＭで３０分間攪拌してから、５０μｍのナイロンガーゼでデブリスをろ過して、口腔粘膜上皮細胞を単離した。１×１０4細胞／ｍｌの細胞密度となるように細胞懸濁液を調整した。
【００２６】
支持細胞として選択された３Ｔ３−Ｊ２細胞を、血清を含有しないＤＭＥＭ中４μｇ／ｍｌのマイトマイシンＣにより処理し、不活性化させた。２時間後に、ＰＢＳ（−）で数回洗浄（リンス）してマイトマイシンＣを除去し、トリプシン処理した後、１×１０4細胞／ｍｌの細胞懸濁液を調整した。
【００２７】
１×１０4細胞／ｍｌの細胞密度に調整した口腔粘膜上皮細胞の懸濁液と、１×１０4細胞／ｍｌの細胞密度で調整した支持細胞懸濁液とを、３５ｍｍディッシュに１ｍｌずつ添加して、ＥＦＭ培地（上皮シート形成培地）中で培養した。２−３日毎に培地を、新鮮なＥＦＭ選択培地と交換した。上皮細胞を播種してから約１０日ほど培養すると、使用可能な粘膜上皮細胞シートが形成された。一方、支持細胞の増殖能は消失しているので、支持細胞は口腔粘膜上皮細胞の培養期間中に死滅し、粘膜上皮細胞シートが形成されるときには、培養系から除去されていた。
【００２８】
培養口腔粘膜上皮細胞シートを切断し、ヘマトキシリン−エオジン染色剤により染色処理を行い、染色断面像を得た。この染色断面像を観察すると、形成された粘膜上皮細胞シートは、口腔粘膜上皮細胞から構成されていた。この粘膜上皮細胞シートを使用する際には、上皮細胞シートをディスパーゼ（４００ＰＵ／ｍｌ）でディッシュから剥離し、ＰＢＳで数回洗浄してから使用に供する。
【００２９】
前述の方法にて作製された培養口腔粘膜上皮細胞シートを角膜欠損層に移植する目的にて、以下の移植を実施した。５週齢雄日本白色家兎角膜に水酸化ナトリウムを用いて角膜化学傷を作製した（図１（ａ）参照）。すなわち直径８ｍｍの濾紙に０．１Ｎ水酸化ナトリウム溶液を浸潰し、兎角膜上に９０秒間接触させ、角膜を傷害した。その後、フローレス染色液およびブラックライトを用いて、角膜表面部に直径８ｍｍ以上の上皮欠損が存在することを確認した（図１（ｃ）参照）。
【００３０】
同部に、あらかじめ作製したヒト口腔粘膜を用いた培養口腔粘膜上皮細胞シート、および当該兎の口腔粘膜細胞（自家細胞）を用いた培養口腔粘膜上皮細胞シートを市販のソフトコンタクトレンズをキャリアとして（図１（ｂ）参照）、それぞれ移植（上皮欠損全面を覆うように培養口腔粘膜上皮細胞シートで被覆）し（図１（ｄ）参照）、ディスポーザブルコンタクトレンズにて移植部の保護を行った。その後、用いたコンタクトレンズが脱落しないように移植眼の上下眼瞼を３−０絹糸にて縫合し、移植を終了した。移植後、創部の感染を予防する目的にて抗生剤の注射投与を行った。
【００３１】
移植後５日目に縫合固定した上下眼瞼を解除し、移植部を観察した。移植則の角膜表面には、移植された培養口腔粘膜上皮シートが、肉眼的に凹凸を認める表面不正な形態として観察できた（図２（ｃ）参照）。一方、非移植群にはこれらの所見はなかった（図２（ｂ）参照）。図２（ａ）には、比較対象として正常角膜の観察像を示した。また両者をフローレス染色液にて染色し、上皮化の程度について観察した結果、移植側は染色部位がほとんどなく、実験的に作製した上皮欠損部位が、周囲からの上皮化または移植した培養口腔粘膜上皮シートが生着している所見であった。これに対して、非移植群ではフローレス染色陽性を示し、周囲からの上皮化を認めるものの明らかな上皮欠損を認めた。この所見は、ヒト口腔粘膜細胞および当該兎口腔粘膜細胞（自家）について違いはほとんどみられなかった。
【００３２】
さらに、図３にヘマトキシリン−エオジン染色剤による染色断面像を示す。図３（ｃ）に示す移植側の角膜上皮層は、図３（ａ）に示す正常角膜の染色断面像と比較しても分かるように、十分な厚さを有していることが観察できる。これに対して、図３（ｂ）に示す非移植側の角膜上皮層は、薄い状態のままであることが観察できる。
【００３３】
移植後７日目には、移植した培養口腔粘膜上皮シートの角膜上を占める面積が減少し、口腔粘膜細胞から速やかに表面滑沢な角膜上皮細胞に置き換わっていることが示唆された。移植１０日目には移植した培養口腔粘膜由来の表面不正部分は認められず、移植部はすべて角膜由来細胞にて置き換わっていた。一方、非移植群では移植後１０日目にて点状に角膜欠損を認め、角膜上皮化が遅れていた。
【００３４】
移植７日目について、移植部をヘマトキシリン−エオジン染色し、組織学的に観察した。その結果、移植された培養口腔粘膜上皮シートと移植部周囲の角膜上皮の境界においては、培養口腔粘膜上皮シートを除去する方向に宿主の角膜細胞が中心部に向かって進展している像がみられ、同部における角膜細胞の増殖が示唆された。以上の所見については、ヒト口腔粘膜由来細胞および自家細胞ともに同様な所見であった。また、これらの所見は非移植群では認めなかった。
【００３５】
上記のように本実施例の培養上皮細胞シートは、培養の基となる口腔粘膜上皮細胞を容易に収集することができるので、容易に作製することができる。
【００３６】
また、本培養上皮細胞シートは、手術後には、患者眼角膜と接触し、その細胞層から種々の生理活性物質（特に各種細胞成長因子）を放出するので、患者眼角膜の上皮化を促進させ、治癒能力を向上させることができる。また、自家組織を利用した場合には、移植後の免疫拒絶反応が惹起されることないので、その後の角膜治療形態にも有利に働くと考えられる。
【００３７】
【発明の効果】
以上説明したように本発明によれば、角膜の治療に有効であり且つ容易に作製可能な角膜治療用培養上皮細胞シートを提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【図１】 本発明の実施例における移植術の様子であって、（ａ）はウサギ角膜を水酸化ナトリウムで処理している様子、（ｂ）はソフトコンタクトレンズをキャリアとして用いた培養口腔粘膜上皮細胞シート、（ｃ）は移植前の角膜上皮欠損、（ｄ）は培養口腔粘膜上皮細胞シートを移植している様子、をそれぞれ示す図である。
【図２】 （ａ）は正常角膜組織の観察像、（ｂ）は非移植の角膜組織の観察像、（ｃ）は移植５日後の角膜組織の観察像である。
【図３】 それぞれ、（ａ）正常角膜組織、（ｂ）非移植側の角膜組織及び、（ｃ）移植５日後の移植側の角膜組織のヘマトキシリン−エオジン染色剤による染色断面像を示す図である。[0001]
BACKGROUND OF THE INVENTION
The present invention relates to a cultured epithelial cell sheet for corneal treatment used for corneal treatment of a patient's eye and a method for producing the same.
[0002]
[Prior art]
Conventionally, eye drops and ointments are used for inflammation such as keratitis and conjunctivitis and corneal diseases such as corneal epithelial damage. This treatment with only eye drops and ointments is applied to relatively mild corneal diseases.
[0003]
On the other hand, for moderate to severe corneal diseases such as scarring keratoconjunctivitis, treatment by removing amniotic tissue on the exposed sclera or keratoma after removing the subkeratoconjunctival subcutaneous scar tissue is known. It has been. Examples of target diseases by the same surgical procedure include Stevens-Johnson syndrome, eyelids, chemical and burns, and pterygium.
[0004]
In recent years, techniques for culturing corneal epithelial cells are being established. It is also conceivable that cultured corneal epithelial cells produced by this technique are used for the treatment of the above diseases.
[0005]
[Problems to be solved by the invention]
However, the treatment by adhesion of amniotic tissue not only makes it difficult to obtain the amniotic tissue, but also has a problem that it is difficult to secure a sufficient amount of tissue, and further, it is necessary to consider immune rejection. .
[0006]
On the other hand, the treatment using cultured corneal epithelial cells has a problem that it is difficult to secure a sufficient amount of tissue because the amount of corneal epithelial cells that can be collected is extremely small. In addition, regarding the culturing of corneal epithelial cells, since the number of base cells is small, it is difficult to obtain a large number of cells by culturing.
[0007]
In view of the above problems of the prior art, an object of the present invention is to provide a cultured epithelial cell sheet for corneal treatment that is effective for the treatment of the cornea and can be easily produced, and a method for producing the same.
[0008]
[Means for Solving the Problems]
Cultured epithelial cell sheet for corneal treatment of the present invention is a mouth腔粘membrane epithelial cells, a layer of cultured epithelial cells derived from epithelial cells other than corneal epithelial cells, to be utilized for corneal epithelial disorders It is characterized by.
Since such a cultured epithelial cell sheet has a layer of epithelial cells other than corneal epithelial cells, when transplanted to the cornea for the purpose of treating corneal epithelial disease, a physiologically active substance is cultured from the cultured epithelial cells. Produced towards the surrounding corneal epithelial cells. Thereby, regeneration of corneal epithelial cells is promoted, and efficient corneal treatment can be performed.
[0009]
In addition, since such cultured epithelial cell sheets are composed of epithelial cells derived from oral mucosal epithelial cells, the characteristics of oral mucosal epithelial cells that have low immunogenicity can be retained for cultured epithelial cell sheets. . Thereby, it can be set as a culture | cultivation epithelial cell sheet | seat with low immunogenicity, and it can make it difficult to produce rejection.
Further, the cultured epithelial cell sheet of the present invention may have at least one epithelial cell layer, but preferably has a multilayer structure in which two or more layers are laminated.
[0010]
The method for producing a cultured epithelial cell sheet for corneal treatment according to the present invention comprises a seeding step of seeding epithelial cells other than corneal epithelial cells on or together with supporting cells, and the cells in the form of a sheet in the presence of the supporting cells. And a culturing step for culturing.
According to this method, since epithelial cells other than corneal cells are cultured together with the supporting cells, it is possible to easily produce a layered epithelial cell sheet under the influence of the product produced by the supporting cells. In addition, the presence of supporting cells facilitates the stratification of epithelial cells, and a sufficient amount of physiologically active substance can be produced. Thereby, an epithelial cell sheet effective for corneal treatment can be efficiently produced.
[0011]
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
Cultured epithelial cell sheet for corneal treatment of the present invention, Ru mouth腔粘membrane epithelial cells der, at least one layer sheet for treating cornea cultured epithelial cells having sheet a layer of cultured epithelial cells derived from epithelial cells other than corneal epithelial cells It is.
Since such a cultured epithelial cell sheet for corneal treatment is composed of epithelial cells other than corneal epithelial cells, it can ensure a sufficient number of cells than corneal epithelial cells, and cells necessary for treatment It can be provided early and easily by culturing the sheet. In addition, since a physiologically active substance such as EGF (epidermal growth factor) is released to the cornea that is in contact with the cornea after transplantation to the cornea, regeneration of the corneal epithelial cells at the transplanted portion can be promoted, thereby causing damage to the cornea. There is also an advantage that corneal diseases can be efficiently treated. In addition, when the epithelial cells are obtained from the patient himself (self), immune rejection can be avoided and the corneal epithelial cells can be integrated for a longer period of time, so that a healing promoting effect at the same site can be expected. . The main cultured epithelial cell sheet will be described below.
[0012]
Epithelial cells constituting the cultured epithelial cell sheet of the present invention, epithelial cells other than corneal epithelial cells, i.e., mouth腔粘membrane epithelial cells can be used. Oral mucosal epithelial cells are particularly preferred because they can be easily collected and further have, for example, the property that the cell growth rate is higher and the immunogenicity is lower than that of epidermal cells. In particular, the oral mucosal epithelial cells, which are one type of oral mucosal epithelial cells and form part of the gingival crevice, have higher mitotic activity than normal oral mucosal epithelial cells and are less likely to cause rejection. preferable.
[0013]
These mucosal epithelial cells can be collected from a suitable living body.
For example, oral mucosal cells can be collected from the healthy subject's oral cavity together with the submucosa. Since the collected mucosal tissue contains connective tissue in addition to mucosal cells, it is necessary to isolate the mucosal cells. In the isolation of mucosal cells, an appropriate enzyme such as dispase or trypsin is used to remove connective tissue or dermis from the collected mucosal tissue. Moreover, debris etc. are removed using nylon mesh etc.
[0014]
Also, mouth腔粘membrane epithelial cells may be taken directly from the patient himself performing corneal treatment. Epithelial cells directly collected from such patients themselves are preferred because they can avoid immune rejection.
[0015]
The cultured epithelial cell sheet of the present invention has at least one layer of epithelial cells as described above. The epithelial cell layer may be at least one layer, but it is preferable that the epithelial cell layer has a multilayer structure in which two or more layers are layered from the viewpoint of imparting an appropriate strength during the transplantation operation of the cultured cell sheet. In addition, the cultured epithelial cell sheet can have a layer other than the epithelial cell layer that does not affect the cultured epithelial cell sheet. From the viewpoint of producing a cultured epithelial cell sheet, it is preferable to include only a cultured epithelial cell layer.
[0016]
Next, a method for producing a cultured epithelial cell sheet for corneal treatment according to the present invention will be described.
The cultured epithelial cell sheet for corneal treatment of the present invention is produced by a method comprising a seeding step of seeding the epithelial cells on or together with supporting cells, and a culture step of culturing the seeded epithelial cells in a sheet form. Is done.
[0017]
In the present invention, supporting cells are used to grow mucosal epithelial cells, which are introduced cells, in a layered manner and with high efficiency. The feeder cells include, for example, fibroblasts such as mouse NIH3T3 cells, 3T3J2, and Swiss 3T3, and 3T3J2 cells are preferable from the viewpoint of the thickness of the layer of introduced cells obtained and the growth rate of the introduced cells on the feeder cells. . The feeder cells lose their ability to proliferate so as not to interfere with the growth of the introduced cells. Loss of proliferative ability can be performed by methods well known in the art, for example, treatment with mitomycin C or irradiation. The culture is performed using a culture vessel such as a normal plastic dish.
[0018]
Epithelial cells may be seeded after seeding feeder cells first and adhering to the bottom of the dish, or may be seeded together with feeder cells. At this time, epithelial cells can be seeded at a cell density of 1 × 10 3 cells / cm 2 or more, preferably 1 × 10 4 cells / cm 2 to 1 × 10 5 cells / cm 2 . On the other hand, feeder cells can be seeded at 1 × 10 3 cells / cm 2 to 1 × 10 4 cells / cm 3 or more. If the number of supporting cells is smaller than this, the role as a supporting cell cannot be sufficiently achieved, and if the number is larger than this, it is not preferable because it prevents the proliferation of epithelial cells. Further, if the number of epithelial cells is less than or greater than this range, it cannot be efficiently propagated, which is not preferable.
[0019]
In the present invention, a growth medium is used for growing epithelial cells into a sheet in the presence of supporting cells. The growth medium used for this purpose can be selected from various media known in the art. By culturing in the growth medium, the epithelial cells easily form a layer and become a sheet. On the other hand, supporting cells die only by supporting the growth of epithelial cells, and when epithelial cells form a sheet, they no longer exist in the culture system.
[0020]
As the growth medium, it is preferable to use an epithelial sheet formation medium (EFM) capable of forming a sheet. EFM is a medium usually used to grow epidermal cells in a layered manner, and is composed of a 3: 1 mixture of DMEM and Ham F-12 medium, 5% FBS, 5 μg / ml insulin, 5 μg. / Ml transferrin, 2 × 10 −9 M triiodothyronine, 1 × 10 −9 M cholera toxin, 0.4 μg / ml hydrocortisone, 100 U / ml penicillin, 0.1 μg / ml kanamycin, 0.25 μg / ml amphotericin B, 10 ng / ml human recombinant epidermal growth factor (EGF) and the like can be supplemented.
[0021]
The sheet-shaped cultured epithelial cells are separated from the culture container while maintaining the sheet shape. This separation can be performed by a method known in the art, and can be easily performed by inhibiting adhesion of the basal layer using an appropriate enzyme such as dispase.
[0022]
The cultured epithelial cell sheet of the present invention is used for corneal treatment.
Corneal disorders and diseases suitable for the use of the cultured epithelial cell sheet of the present invention include keratoepithelial diseases such as scar keratoconjunctivitis, Stevens-Johnson syndrome, eyelids, chemical wounds / burns, and pterygium. is there.
When using the cultured epithelial cell sheet of the present invention for such corneal disorders and diseases, the cultured epithelial cell sheet is transplanted into the corneal defect portion. The transplantation may be performed by covering the cultured epithelial cell sheet so as to cover the entire surface of the defective part. From the viewpoint of protecting the transplanted part and preventing drying, it is preferable to cover the transplanted part with a contact lens or the like.
[0023]
The cultured epithelial cell sheet of the present invention is brought into contact with a corneal defect after being transplanted for corneal treatment. At this time, since the cultured epithelial cell sheet can release a physiologically active substance to the defect and promote the epithelialization of the cornea, the cornea can be treated by efficiently regenerating the cornea. Note that the cultured epithelial cell sheet only needs to be present at a time necessary for regeneration of the cornea to be treated, and may then be removed.
[0024]
【Example】
Hereinafter, the present invention using oral mucosal epithelial cells as cultured cells will be described as an example and described with reference to the drawings. However, the present invention is not limited to the following examples.
[0025]
Oral mucosal epithelial cells to be seeded cells were collected from healthy oral mucosa with the consent of the patient. The collected oral mucosal tissue was chopped into small pieces after the submucosa was removed with scissors. Small pieces of mucosal tissue were soaked twice in phosphate buffer (PBS) containing 1000 U / ml penicillin, 1 mg / ml kanamycin and 2.5 μg amphotericin B for 30 minutes at 37 ° C. Next, the tissue was immersed in Dulbecco's modified Eagle's medium (DMEM) containing 1000 PU / ml dispase (manufactured by Godo Sakesei Co., Ltd.) for 16 hours at 4 ° C., followed by enzyme treatment with 0.25% trypsin for 30 minutes at room temperature. Then, the cells were separated. Enzyme activity was stopped by washing with DMEM containing 10% fetal bovine serum (FBS). Then, after stirring for 30 minutes with DMEM containing 10% FBS, debris was filtered with 50 μm nylon gauze to isolate oral mucosal epithelial cells. The cell suspension was adjusted to a cell density of 1 × 10 4 cells / ml.
[0026]
3T3-J2 cells selected as feeder cells were treated with 4 μg / ml mitomycin C in serum-free DMEM and inactivated. Two hours later, mitomycin C was removed by washing (rinsing) several times with PBS (−), and after trypsinization, a cell suspension of 1 × 10 4 cells / ml was prepared.
[0027]
A suspension of 1 × 10 4 cells / ml of the oral mucosal epithelial cells were adjusted to a cell density, and a support cell suspension adjusted at a cell density of 1 × 10 4 cells / ml, added to the 35mm dish by 1ml Then, the cells were cultured in EFM medium (epithelial sheet formation medium). Every 2-3 days, the medium was replaced with fresh EFM selection medium. When the epithelial cells were seeded and cultured for about 10 days, a usable mucosal epithelial cell sheet was formed. On the other hand, since the proliferating ability of the supporting cells has disappeared, the supporting cells are killed during the culture period of the oral mucosal epithelial cells and removed from the culture system when the mucosal epithelial cell sheet is formed.
[0028]
The cultured oral mucosal epithelial cell sheet was cut and stained with a hematoxylin-eosin stain to obtain a stained cross-sectional image. When this stained cross-sectional image was observed, the formed mucosal epithelial cell sheet was composed of oral mucosal epithelial cells. When using this mucosal epithelial cell sheet, the epithelial cell sheet is peeled from the dish with dispase (400 PU / ml) and washed several times with PBS before use.
[0029]
The following transplantation was performed for the purpose of transplanting the cultured oral mucosal epithelial cell sheet prepared by the above-mentioned method into the corneal defect layer. A corneal chemical wound was prepared on a 5-week-old male Japanese white rabbit cornea using sodium hydroxide (see FIG. 1 (a)). That is, a 0.1N sodium hydroxide solution was immersed in a filter paper having a diameter of 8 mm and contacted on the cornea for 90 seconds to damage the cornea. Thereafter, using a flowless staining solution and black light, it was confirmed that an epithelial defect having a diameter of 8 mm or more was present on the corneal surface (see FIG. 1C).
[0030]
In the same part, a cultured oral mucosal epithelial cell sheet using human oral mucosa prepared in advance and a cultured oral mucosal epithelial cell sheet using oral mucosa cells (autologous cells) of the sputum using a commercially available soft contact lens as a carrier ( (See FIG. 1 (b)), transplanted (covered with a cultured oral mucosal epithelial cell sheet so as to cover the entire epithelial defect) (see FIG. 1 (d)), and the transplanted part was protected with a disposable contact lens. Thereafter, the upper and lower eyelids of the transplanted eye were sutured with 3-0 silk thread so that the used contact lens did not fall off, and the transplantation was completed. After transplantation, antibiotics were injected for the purpose of preventing infection of the wound.
[0031]
On the fifth day after transplantation, the upper and lower eyelids fixed with sutures were released, and the transplanted part was observed. The transplanted cultured oral mucosal epithelial sheet was observed as a surface irregular shape in which irregularities were visually observed on the corneal surface of the transplantation rule (see FIG. 2 (c)). On the other hand, these findings were not found in the non-transplanted group (see FIG. 2 (b)). FIG. 2A shows an observation image of a normal cornea as a comparison target. In addition, both were stained with a flowless staining solution, and the degree of epithelialization was observed. As a result, there were almost no stained sites on the transplanted side, and the experimentally produced epithelial defect sites were epithelialized from the surrounding or transplanted cultured oral mucosa. It was a finding that the epithelial sheet was engrafted. On the other hand, the non-transplanted group showed positive flowless staining, and a clear epithelial defect was recognized although epithelialization from the surroundings was observed. In this finding, there was almost no difference between the human oral mucosa cells and the vaginal oral mucosa cells (autologous).
[0032]
Further, FIG. 3 shows a cross-sectional image stained with a hematoxylin-eosin stain. It can be observed that the corneal epithelial layer on the transplant side shown in FIG. 3 (c) has a sufficient thickness, as can be seen from comparison with the stained cross-sectional image of the normal cornea shown in FIG. 3 (a). . On the other hand, it can be observed that the corneal epithelial layer on the non-transplant side shown in FIG. 3B remains thin.
[0033]
Seven days after transplantation, the area of the transplanted cultured oral mucosa epithelial sheet occupying on the cornea decreased, suggesting that the oral mucosa cells were quickly replaced with smooth corneal epithelial cells. On the 10th day after transplantation, no surface irregularities derived from the cultured oral mucosa were observed, and all transplanted sites were replaced with cornea-derived cells. On the other hand, in the non-transplanted group, a corneal defect was observed on the 10th day after transplantation, and corneal epithelialization was delayed.
[0034]
On day 7 of transplantation, the transplanted part was stained with hematoxylin-eosin and observed histologically. As a result, at the boundary between the transplanted cultured oral mucosal epithelial sheet and the corneal epithelium around the transplanted part, an image of the host corneal cells developing toward the center in the direction of removing the cultured oral mucosal epithelial sheet is seen. It was suggested that corneal cells proliferated in the same region. The above findings were similar for both human oral mucosa-derived cells and autologous cells. These findings were not observed in the non-transplanted group.
[0035]
As described above, the cultured epithelial cell sheet of this example can be easily produced because it can easily collect oral mucosal epithelial cells that are the basis of culture.
[0036]
Moreover, since this cultured epithelial cell sheet comes into contact with the patient's cornea after surgery and releases various physiologically active substances (particularly various cell growth factors) from the cell layer, it promotes epithelialization of the patient's cornea. , Can improve healing ability. In addition, when autologous tissue is used, immune rejection after transplantation is not induced, and it is considered that it will work advantageously for subsequent corneal treatment forms.
[0037]
【The invention's effect】
As described above, according to the present invention, it is possible to provide a cultured epithelial cell sheet for corneal treatment that is effective for the treatment of the cornea and can be easily produced.
[Brief description of the drawings]
1A and 1B show a state of transplantation in an embodiment of the present invention, in which FIG. 1A shows a state where a rabbit cornea is treated with sodium hydroxide, and FIG. 1B shows a cultured oral mucosa using a soft contact lens as a carrier. (C) is a diagram showing a corneal epithelial defect before transplantation, and (d) is a diagram showing a state of transplanting a cultured oral mucosal epithelial cell sheet.
2A is an observation image of normal corneal tissue, FIG. 2B is an observation image of non-transplanted corneal tissue, and FIG. 2C is an observation image of corneal tissue 5 days after transplantation.
FIGS. 3A and 3B are cross-sectional images of (a) normal corneal tissue, (b) non-transplanted corneal tissue, and (c) transplanted corneal tissue 5 days after transplantation with a hematoxylin-eosin staining agent, respectively. is there.
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