JP4734509B2 - スキャンピの養殖方法 - Google Patents
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Description
本発明は、スキャンピの養殖方法に関するものである。
本発明において「スキャンピ」とは、十脚目アカザエビ科（Nephropidae）のMetanephrops属又はNephrops属のエビ類をいう。
即ち、スキャンピは、Metanephrops andamanicus、Metanephrops arafurensis、Metanephrops armatus、Metanephrops australensis、Metanephrops binghami、Metanephrops boschmai、Metanephrops challengeri、Metanephrops formosanus、Metanephrops japonicus、Metanephrops mozambicus、Metanephrops neptunus、Metanephrops rubellas、Metanephrops sagamiensis、Metanephrops sibogae、Metanephrops sinensis、Metanephrops Thomsoni、Metanephrops velutinus、Nephrops norvegicus等のエビ類である。
なお、本発明における「養殖」には飼育、培養、種苗生産、養成及び蓄養が含まれる。
スキャンピ（scampi）は、フランス語でラングスチ−ヌ（langostino）、スペイン語でシガラ（cigala）と呼ばれ、世界的に人気のある食材である。
世界的にスキャンピ漁業は近年乱獲状態とされ、資源管理と共に増養殖的措置をとる必要がある。しかしながら、スキャンピの増養殖に関する知見は非常に乏しく、商業的な増養殖は世界中のどこでも行なわれていない。特許関連技術も皆無で、増養殖技術を開発する必要がある。
このような状況に鑑み、スキャンピについては、資源の回復、増大のために必要な放流種苗の飼育、培養、種苗生産技術の開発や、天然資源を枯渇させないための食材の提供手法として養成、蓄養技術の開発が急務である。
即ち、本発明は、スキャンピの飼育、培養、種苗生産、養成、蓄養技術を確立し、効率良くスキャンピを飼育、培養、種苗生産、養成、蓄養する方法を提供することを目的とする。
上記課題を解決するために、本発明者は、鋭意努力した結果、良好なスキャンピの養殖条件等を見出した。
即ち、本発明は下記に示すスキャンピの養殖方法を提供する。
（１）陸上の養殖施設において、海水を収納した養殖容器内にスキャンピを収容し、該スキャンピを人為的な管理下で飼育、培養、種苗生産、養成又は蓄養し、
前記スキャンピはゾエア幼生期を持たないアカザエビであり、
前記スキャンピの成長段階は、卵、メガロパとポストラ−バとを含む幼生、稚エビを含む若令又は成体のいずれかであり、該スキャンピは天然から採取されたもの又は人為的な管理下で採取されたものであり、
人為的な管理下における養殖水として海水又は海洋深層水を、流入、循環又は汲み置き使用し、
人為的な管理下における養殖水の水温が８〜２０℃であることを特徴とするスキャンピの養殖方法（請求項１）。
前記スキャンピはゾエア幼生期を持たないアカザエビであり、
前記スキャンピの成長段階は、卵、メガロパとポストラ−バとを含む幼生、稚エビを含む若令又は成体のいずれかであり、該スキャンピは天然から採取されたもの又は人為的な管理下で採取されたものであり、
人為的な管理下における養殖水として海水又は海洋深層水を、流入、循環又は汲み置き使用し、
人為的な管理下における養殖水の水温が８〜２０℃であることを特徴とするスキャンピの養殖方法（請求項１）。
（２）人為的な管理下における餌料として魚介類、配合飼料又はアルテミアを使用することを特徴とする請求項１に記載のスキャンピの養殖方法（請求項２）。
（３）前記スキャンピの成長段階が幼生又は若令であって、その初期餌料として、アルテミアと配合飼料とを単独で又は併用して使用することを特徴とする請求項２に記載のスキャンピの養殖方法（請求項３）。
（４）前記スキャンピの成長段階が成体であって、その養殖水の水温が１６℃以下であることを特徴とする請求項１又は２に記載のスキャンピの養殖方法（請求項４）。
（５）前記スキャンピの成長段階が幼生又は若令であって、その養殖水の水温が１４〜１８℃であることを特徴とする請求項１〜３のいずれかに記載のスキャンピの養殖方法（請求項５）。
（６）人為的な管理下における養殖容器が通水性を備え、該養殖容器内に前記スキャンピを収容することを特徴とする請求項１〜５のいずれかに記載のスキャンピの養殖方法（請求項６）。
（７）前記スキャンピを低密度で養殖容器に収容し又は該養殖容器にシェルターを使用することにより、スキャンピ個体間の干渉を少なくしたことを特徴とする請求項１〜６のいずれかに記載のスキャンピの養殖方法（請求項７）。
（８）前記スキャンピを養殖容器内にて個体単独で養殖することを特徴とする請求項１〜６のいずれかに記載のスキャンピの養殖方法（請求項８）。
（９）養殖容器内で抱卵したスキャンピから幼生をふ化させることを特徴とする請求項１に記載のスキャンピの養殖方法（請求項９）。
（１０）スキャンピの親から分離した卵を養殖容器内で養殖し、ふ化させることを特徴とする請求項１に記載のスキャンピの養殖方法（請求項１０）。
（１１）前記養殖容器において下方から上方へ向けての水流により前記分離した卵が浮遊状態又は動的状態となることを特徴とする請求項１０に記載のスキャンピの養殖方法（請求項１１）。
（１２）幼生及び若令のスキャンピが出入不能であり、かつ、該スキャンピの餌料が出入可能な通水性養殖容器内に幼生又は若令のスキャンピを個別に収容し、該通水性養殖容器を餌料が存在する別の容器内に収容することを特徴とする請求項１〜３のいずれかに記載のスキャンピの養殖方法（請求項１２）。
本発明によれば、スキャンピの飼育、培養、種苗生産、養成、蓄養が可能となる。また、スキャンピを効率良く飼育、培養、種苗生産、養成、蓄養することが可能となる。更に、資源の回復、増大を目指したスキャンピの放流種苗の効率的な生産及び食材の提供を目指したスキャンピの効率的な生産が可能となる。もとより、飼育、培養、種苗生産、養成、蓄養したスキャンピを食品として利用することが可能となる。加えて、飼育、培養、種苗生産、養成、蓄養したスキャンピを展示用として利用することも可能である。
本発明において養殖されるスキャンピは、前述の如く、十脚目アカザエビ科のMetanephrops属又はNephrops属のエビ類をいうが、その中でも、ゾエア幼生期をもたないエビ類が好ましく養殖される。けだし、該エビ類は、成長段階においてゾエア幼生期がないことから、発達した成長段階から養殖が可能であるため、高い生残率が確保されるからである。
本発明においては、アカザエビ（Metanephrops japonicus）がより好ましく養殖される。アカザエビは、プレゾエアとしてふ化し、摂餌することなく３時間以内にほとんどがメガロパ（ポストラ−バ）に脱皮する。そしてメガロパは１齢稚エビに脱皮する。そのため、アカザエビは、ゾエア幼生期をもつスキャンピと比較して、その成長段階においてゾエア幼生期がなく、発達した成長段階から養殖が可能であるため、高い生残率が確保される。
人為的な管理下における養殖対象としてのスキャンピは、その成長段階が卵、幼生（メガロパとポストラ−バとを含む）、若令（稚エビ含む）又は成体のいずれかである。
また、該スキャンピは、天然から採取されたものであってもよいが、人工下で親からふ化したもの、人工下で培養卵からふ化したもの、人工養殖されたもの等の人為的な管理下で採取されたものであってもよい。
人為的な管理下における餌料として、エビ類、イカ類、貝類等の魚介類、配合飼料又はアルテミアを使用することが好ましい。けだし、それらの餌料を使用することにより、スキャンピの生残、成長が良好になるからである。
特に、スキャンピの成長段階が幼生あるいは若令時の餌料として、アルテミアや配合飼料を使用することが好ましい。けだし、それらの餌料を使用することにより、スキャンピの生残が良好になるからである。アルテミアと配合飼料は単独で用いてもよいが、アルテミアと配合飼料との両方を併用して使用することが好ましい。けだし、アルテミアと配合飼料とを併用することにより、スキャンピの成長が良好になるからである。特に、アルテミアは可能な限り使用した方がスキャンピの生残率が安定する。
人為的な管理下における養殖水は、好ましくは、海水若しくは海洋深層水又はその両者を混合して使用するが、該養殖水は流入、循環又は汲み置き使用してもよい。
養殖容器内の養殖水の水温と水質は、流入若しくは循環させる養殖水の温度を一定にすることにより安定化させ、又は養殖水と近似する水温の水を満たした大型容器内に該養殖容器を設置することにより安定化させる。
また、養殖容器に養殖水を流入、循環させると共に排水することにより、又は養殖容器の養殖水を事前に汲み置いた養殖水と交換することにより、養殖容器内の水質と水温とを安定化させる。排泄物等は、養殖水の排水、交換と共に除去し、又は人為的に養殖容器内から除去する。
スキャンピは、水温が８〜２０℃の範囲内で養殖することが好ましい。けだし、８〜２０℃の範囲内ではスキャンピの生残率が良好になるからである。この水温範囲内においては、高水温ほどスキャンピの成長速度が速くなる。
スキャンピの成体については、水温１６℃以下で養殖することにより生残率が良好となる。
スキャンピの幼生又は若令については、水温１４〜１８℃で養殖することにより生残率が良好となる。
人為的な管理下における養殖容器は、通水性のものとし、該養殖容器内にスキャンピを収容することが好ましい。通水性の養殖容器であれば、養殖水が流水状態となり、新鮮な環境を保持することができるからである。更に、その養殖容器のサイズと数とを調整することにより、対象生物たるスキャンピのグル−プ又は個体管理が容易となる。
スキャンピを、低密度に収容し、又はシェルタ−を使用することにより、スキャンピの個体間の干渉をできるかぎり少なくすることが好ましい。けだし、格闘や共食い等の個体間同士の関係において生残率が低下することを防止することができるからである。
スキャンピの個体間の干渉をできるかぎり少なくする方法として、個体単独で養殖することが最も好ましい。けだし、格闘や共食い等の個体間同士の関係を排除することにより生残率が向上するからである。
スキャンピの幼生又は若令を養殖する場合、該スキャンピを通水性養殖容器に個別に収容し、該通水性養殖容器をアルテミアが存在する別の容器内に収容して養殖することが好ましい。けだし、生残率が低い初期生活史において、餌料としてアルテミアを使用し、通水性の養殖容器にスキャンピを個体単独で収容し、個体間同士の関係を排除することによる複合的な効果として、スキャンピの生残率がより向上するからである。
本発明は、養殖容器内に抱卵したスキャンピを収容し、養殖することにより、幼生をふ化させることを特徴とするスキャンピの養殖方法をも提供する。抱卵したスキャンピから幼生をふ化させることにより、安定的に養殖対象たるスキャンピを確保することができる。この場合、個体間の干渉が少ない状態の方がスキャンピにストレスがかからず、更には卵の脱落も少なく、ふ化する幼生数が多くなることが期待される。
また、本発明は、スキャンピの卵を親から分離して、養殖容器内で養殖し、ふ化させる卵養殖方法を特徴とするスキャンピの養殖方法を提供する。へい死した親が抱える卵や、親から脱落した卵等を人為的に養殖し、幼生をふ化させることにより、安定的に養殖対象たるスキャンピを確保することができる。
この場合、養殖容器内における下方から上方へ向けての水流により分離卵が浮遊状態又は動的状態となる上昇流卵養殖方法が好ましい。上昇流卵養殖方法であれば、養殖水が流水状態となり、卵が静的な状態とならずに常に新鮮な環境が保持でき、幼生を効率的にふ化させることができるからである。
更に、本発明は、幼生や若令のスキャンピが出入不能であり、かつ、スキャンピの餌料が出入可能な通水性養殖容器１内に幼生又は若令のスキャンピ３を個別に収容し（図１）、該通水性養殖容器１を餌料５が存在する別の容器７内に収容することを特徴とするスキャンピ３の養殖装置（図２）を提供する。スキャンピの個体間同士の関係を排除し、スキャンピ収容養殖容器の外側から内側に入る餌料をスキャンピに摂餌させるようにしたものである。エアレ−ション等により水流をつくることにより、餌料をスキャンピに供給することができる。スキャンピを収容する通水性養殖容器が可能な限り小型であれば、高密度での個体養殖が可能となり、餌料の使用量も効率的となり、給餌等の管理作業の効率も極めて高くなる養殖装置である。
上記餌料は、好ましくは、アルテミアとする。アルテミアは、スキャンピにとって好ましい餌料であると共に、スキャンピより小型であり、ほぼ均一のサイズを供給することができるため、本装置を容易に実現することができる。
本発明の養殖装置を使用することにより、幼生や若令のスキャンピの養殖を容易に実施することができる。
更に、本発明は、前記方法又は装置を複合的に使用することを特徴とするスキャンピの養殖方法を提供する。各々の方法あるいは装置を複合的に使用することにより、スキャンピを効率良く養殖することができる。
以上、本発明により、スキャンピの養殖が可能となる。例えば、放流種苗として４齢の若令スキャンピを生産する場合には、その期間はふ化から２〜３ヶ月、生残率は４〜８割であり、商品サイズ（甲長４５ｍｍ）を生産する場合には、その期間はふ化から約２年、生残率は１〜２割であると思われる。
本発明は、以上の方法により飼育、培養、種苗生産、養成又は蓄養されたスキャンピを提供する。資源の回復、増大のために必要な放流種苗として、若しくは養成、蓄養のための種苗あるいは食材として、又は展示鑑賞用等として、スキャンピの用途は広い。
本発明において養殖されるスキャンピは、好ましくはアカザエビである。アカザエビは、銚子から南日向灘の水深２００〜４００ｍの砂泥底に生息し、体長２０ｃｍに成長する高級食用種である。本種の各成長段階におけるサイズは、卵径はおよそ２〜４ｍｍ、頭胸甲長はプレゾエアでおよそ３ｍｍ、メガロパでおよそ３〜４ｍｍ、１齢エビでおよそ４〜５ｍｍ、４齢エビでおよそ６〜８ｍｍ、１０齢エビでおよそ１５〜１９ｍｍ、成体でおよそ４５〜８０ｍｍである。
海水は、水深１００ｍ以浅の表層海水と水深１００ｍ以深の海洋深層水とよりなる。本発明において使用される海水は、いずれも地上に汲み上げたものである。本発明において使用される表層海水は、例えば駿河湾の水深１０〜３０ｍから汲み上げたものである。本発明において使用される海洋深層水は、例えば駿河湾の水深３００〜７００ｍから汲み上げたものである。
海水は、水深１００ｍ以浅の表層海水と水深１００ｍ以深の海洋深層水とよりなる。本発明において使用される海水は、いずれも地上に汲み上げたものである。本発明において使用される表層海水は、例えば駿河湾の水深１０〜３０ｍから汲み上げたものである。本発明において使用される海洋深層水は、例えば駿河湾の水深３００〜７００ｍから汲み上げたものである。
以下、本発明の実施例について説明する。本願発明はこれら実施例により何ら限定されるものではない。
[実施例１]異なる水温別の成体養殖
＜材料と方法＞
駿河湾で漁獲された２６個体の抱卵成体エビを実験に供試した。水温条件として、１０（８.６〜１０.７）℃、１４（１３〜１６.３）℃、１８（１６〜１８.４）℃の３実験区を設定した。３個の１.５トン容水槽内に各々通水性の２０リットル容養殖容器を設置し、当該各２０リットル容養殖容器内に１個体ずつアカザエビを収容した。１０℃区は９個体、１４℃区は１１個体、１８℃区は６個体養殖した。養殖水は、３実験区とも海洋深層水を使用し、水槽に約１０回転／日程度の換水率となるように注入することにより、各々の水温条件に調節し、養殖容器内を流水状態とした。実験開始後２００日まで養殖し、餌料は冷凍サクラエビを１日おきに十分量与え，残餌等は毎日除去し、アカザエビの生残状況等を確認した。
＜材料と方法＞
駿河湾で漁獲された２６個体の抱卵成体エビを実験に供試した。水温条件として、１０（８.６〜１０.７）℃、１４（１３〜１６.３）℃、１８（１６〜１８.４）℃の３実験区を設定した。３個の１.５トン容水槽内に各々通水性の２０リットル容養殖容器を設置し、当該各２０リットル容養殖容器内に１個体ずつアカザエビを収容した。１０℃区は９個体、１４℃区は１１個体、１８℃区は６個体養殖した。養殖水は、３実験区とも海洋深層水を使用し、水槽に約１０回転／日程度の換水率となるように注入することにより、各々の水温条件に調節し、養殖容器内を流水状態とした。実験開始後２００日まで養殖し、餌料は冷凍サクラエビを１日おきに十分量与え，残餌等は毎日除去し、アカザエビの生残状況等を確認した。
＜結果＞
１０℃区、１４℃区、１８℃区の生残率は、養殖開始１００日後で各々１００％、１００％、８３.３％、養殖開始２００日後で各々７７.８％、８１.８％、０％となり、半年以上養殖する場合において、水温１６℃以下は有効であった。
１０℃区、１４℃区、１８℃区の生残率は、養殖開始１００日後で各々１００％、１００％、８３.３％、養殖開始２００日後で各々７７.８％、８１.８％、０％となり、半年以上養殖する場合において、水温１６℃以下は有効であった。
［実施例２］成体養殖と幼生ふ化
＜材料と方法＞
駿河湾で漁獲された４１個体の抱卵成体アカザエビを実験に供試した。養殖水の条件として、海洋深層水区と表層海水区の２実験区を設定した。２個の１.５トン容水槽内に各々通水性の２０リットル容養殖容器を設置し、当該各２０リットル容養殖容器内に１個体ずつアカザエビを収容した。海洋深層水区は１４個体、表層海水区は２７個体養殖した。養殖水は、水槽に約１０回転／日程度の換水率となるように注入することにより、水温を１５（１２.１〜１７）℃に調節し、養殖容器内を流水状態とした。実験開始後２００日まで養殖し、餌料は冷凍サクラエビを１日おきに十分量与え，残餌等は毎日除去し、アカザエビの幼生ふ化状況等を確認した。
＜材料と方法＞
駿河湾で漁獲された４１個体の抱卵成体アカザエビを実験に供試した。養殖水の条件として、海洋深層水区と表層海水区の２実験区を設定した。２個の１.５トン容水槽内に各々通水性の２０リットル容養殖容器を設置し、当該各２０リットル容養殖容器内に１個体ずつアカザエビを収容した。海洋深層水区は１４個体、表層海水区は２７個体養殖した。養殖水は、水槽に約１０回転／日程度の換水率となるように注入することにより、水温を１５（１２.１〜１７）℃に調節し、養殖容器内を流水状態とした。実験開始後２００日まで養殖し、餌料は冷凍サクラエビを１日おきに十分量与え，残餌等は毎日除去し、アカザエビの幼生ふ化状況等を確認した。
＜結果＞
海洋深層水区と表層海水区の生残率は、養殖開始１００日後で各々９２.９％、８１.５％、養殖開始２００日後で各々８５.７％、４０.７％であった。両区とも半年以上の養殖が可能であった。
海洋深層水区と表層海水区の生残率は、養殖開始１００日後で各々９２.９％、８１.５％、養殖開始２００日後で各々８５.７％、４０.７％であった。両区とも半年以上の養殖が可能であった。
幼生のふ化は４〜７月に観察された。幼生のふ化が観察された個体数とその割合（ふ化が観察された個体数を実験開始個体数で除した値）は、海洋深層水区で１０個体（７１.４％）、表層海水区で９個体（３３.３％）であり、両区とも幼生のふ化が認められた。
１親当たりの平均ふ化幼生数は、海洋深層水区で１４３.２個体、表層海水区で１４９.８個体であった。
［実施例３］卵養殖
＜材料と方法＞
抱卵親から分離した６０個体のアカザエビ発眼卵を実験に供試した。上昇流区とビ−カ−区の２実験区を設定した。上昇流区は、直径１５ｃｍ、高さ４５ｃｍの６リットル容プラスチック製養殖容器の下部から養殖水を注入し、上部から排水することにより生じる湧昇流の環境下で卵を養殖する方式である。その養殖容器に４０個体卵を収容し、卵が上部より流れ出ることがなく容器内を重力と湧昇流によりバランスよく常に上下に浮遊している状態を保った。ビ−カ−区は１リットル容ビ−カ−に２０個体卵を収容し、緩やかに通気した。そして養殖水の交換を、１日おきに卵を事前に用意した養殖容器に移し替えることにより行った。養殖水は、海洋深層水を使用し、両区とも水温を平均１５.０℃に調整した。
＜材料と方法＞
抱卵親から分離した６０個体のアカザエビ発眼卵を実験に供試した。上昇流区とビ−カ−区の２実験区を設定した。上昇流区は、直径１５ｃｍ、高さ４５ｃｍの６リットル容プラスチック製養殖容器の下部から養殖水を注入し、上部から排水することにより生じる湧昇流の環境下で卵を養殖する方式である。その養殖容器に４０個体卵を収容し、卵が上部より流れ出ることがなく容器内を重力と湧昇流によりバランスよく常に上下に浮遊している状態を保った。ビ−カ−区は１リットル容ビ−カ−に２０個体卵を収容し、緩やかに通気した。そして養殖水の交換を、１日おきに卵を事前に用意した養殖容器に移し替えることにより行った。養殖水は、海洋深層水を使用し、両区とも水温を平均１５.０℃に調整した。
＜結果＞
実験開始２０〜２６日後に幼生のふ化が確認された。上昇流区とビ−カ−区の幼生のふ化率は、各々９５.０％、２０.０％で、両区ともふ化した。特に、上昇流卵養殖方法により養殖卵のふ化率が高まった。
実験開始２０〜２６日後に幼生のふ化が確認された。上昇流区とビ−カ−区の幼生のふ化率は、各々９５.０％、２０.０％で、両区ともふ化した。特に、上昇流卵養殖方法により養殖卵のふ化率が高まった。
［実施例４］異なる水温別のメガロパ養殖
＜材料と方法＞
抱卵親からふ化した２８個体のアカザエビメガロパを実験に供試した。水温条件として、４（平均４.３）℃、８（平均７.８）℃、１３（平均１２.８）℃、１５（平均１５.２）℃、１７（平均１６.５）℃、２０（平均１９.７）℃、２３（平均２２.７）℃の７実験区を設定した。１実験区に１個の１リットル容ビ−カ−を使用し、１ビ−カ−に４個体ずつメガロパを収容し養殖した。餌料は、アルテミアノ−プリウスとサクラエビ細片とを併用した。養殖水は、表層海水を使用し、ウォ−タ−バスにより水温を調整し緩やかに通気した。養殖水の交換は、１日おきに養殖生物を事前に用意した養殖容器に移し替えることにより行った。ほぼ毎日、生残、脱皮状況を観察した。
＜材料と方法＞
抱卵親からふ化した２８個体のアカザエビメガロパを実験に供試した。水温条件として、４（平均４.３）℃、８（平均７.８）℃、１３（平均１２.８）℃、１５（平均１５.２）℃、１７（平均１６.５）℃、２０（平均１９.７）℃、２３（平均２２.７）℃の７実験区を設定した。１実験区に１個の１リットル容ビ−カ−を使用し、１ビ−カ−に４個体ずつメガロパを収容し養殖した。餌料は、アルテミアノ−プリウスとサクラエビ細片とを併用した。養殖水は、表層海水を使用し、ウォ−タ−バスにより水温を調整し緩やかに通気した。養殖水の交換は、１日おきに養殖生物を事前に用意した養殖容器に移し替えることにより行った。ほぼ毎日、生残、脱皮状況を観察した。
＜結果＞
８〜２０℃区において１齢稚エビへ変態した。８℃区では１個体（２５.０％）、１３℃区では１個体（２５.０％）、１５℃区では２個体（５０.０％）、１７℃区では３個体（７５.０％）、２０℃区では１個体（２５.０％）が変態した。
８〜２０℃区において１齢稚エビへ変態した。８℃区では１個体（２５.０％）、１３℃区では１個体（２５.０％）、１５℃区では２個体（５０.０％）、１７℃区では３個体（７５.０％）、２０℃区では１個体（２５.０％）が変態した。
［実施例５］異なる水温別のメガロパと若令エビの養殖
＜材料と方法＞
抱卵親からふ化した３８個体のアカザエビメガロパを実験に供試した。水温条件として、８（平均８.８）℃、１０（平均９.８）℃、１４（平均１４.５）℃、１８（平均１８.０）℃の４実験区を設定した。８℃区は６個、１０℃区は６個、１４℃区は１６個、 １８℃区は１０個の１リットル容ビ−カ−を使用し、１ビ−カ−に１個体ずつメガロパを収容し、各実験区とも６〜１６個体養殖した。餌料は、アルテミアノ−プリウスとクルマエビ用配合飼料とを併用した。養殖水は、４実験区とも海洋深層水を使用し、緩やかに通気した。養殖水の交換は、１日おきに養殖生物を事前に用意した養殖容器に移し替えることにより行った。ほぼ毎日、生残、脱皮状況を観察した。稚エビに変態以降も、メガロパと同様の方法で３齢稚エビに脱皮するまで継続養殖した。
＜材料と方法＞
抱卵親からふ化した３８個体のアカザエビメガロパを実験に供試した。水温条件として、８（平均８.８）℃、１０（平均９.８）℃、１４（平均１４.５）℃、１８（平均１８.０）℃の４実験区を設定した。８℃区は６個、１０℃区は６個、１４℃区は１６個、 １８℃区は１０個の１リットル容ビ−カ−を使用し、１ビ−カ−に１個体ずつメガロパを収容し、各実験区とも６〜１６個体養殖した。餌料は、アルテミアノ−プリウスとクルマエビ用配合飼料とを併用した。養殖水は、４実験区とも海洋深層水を使用し、緩やかに通気した。養殖水の交換は、１日おきに養殖生物を事前に用意した養殖容器に移し替えることにより行った。ほぼ毎日、生残、脱皮状況を観察した。稚エビに変態以降も、メガロパと同様の方法で３齢稚エビに脱皮するまで継続養殖した。
＜結果＞
８℃区、１０℃区、１４℃区、１８℃区ともに、１齢稚エビへ変態した。８℃区、１０℃区、１４℃区、１８℃区において、１齢稚エビに成長した個体は、それぞれ、４個体（６６.７％）、６個体（１００％）、１６個体（１００％）、１０個体（１００％）であり、３齢稚エビに成長した個体は、それぞれ、４個体（６６.７％）、４個体（６６.７％）、１５個体（９３.８％）、１０個体（１００％）であった。
８℃区、１０℃区、１４℃区、１８℃区ともに、１齢稚エビへ変態した。８℃区、１０℃区、１４℃区、１８℃区において、１齢稚エビに成長した個体は、それぞれ、４個体（６６.７％）、６個体（１００％）、１６個体（１００％）、１０個体（１００％）であり、３齢稚エビに成長した個体は、それぞれ、４個体（６６.７％）、４個体（６６.７％）、１５個体（９３.８％）、１０個体（１００％）であった。
実験開始から１齢稚エビに脱皮するまでの平均日数は、８℃区で４０.８（３７〜４７）日、１０℃区で３０.８（３０〜３２）日、１４℃区で１５.２（１４〜１７）日、１８℃区で１２.４（１２〜１３）日、実験開始から３齢稚エビに脱皮するまでの平均日数は、８℃区で１４２.８（１３３〜１５０）日、１０℃区で１２１.８（１１５〜１３１）日、１４℃区で５７.３（５５〜６０）日、１８℃区で４８.２（４５〜５２）日であった。メガロパおよび稚エビの成長に要する所要日数は、水温が上昇すると短縮した。生残、成長結果から、水温１４〜１８℃が有効であった。
［実施例６］異なる餌料別のメガロパと若令エビの養殖（１）
＜材料と方法＞
抱卵親からふ化した４０個体のアカザエビメガロパを実験に供試した。餌料条件として、アルテミアノ−プリウス区、サクラエビ細片区、アミエビ区、配合飼料区の４実験区を設定した。１実験区につき１０個の１リットル容ビ−カ−を使用し、１ビ−カ−に１個体ずつ幼生を収容し、４実験区とも各々１０個体養殖した。養殖水は、４実験区とも表層海水を使用し、ウォ−タ−バスにより水温を平均１５.２℃に調整し緩やかに通気した。養殖水の交換は、１日おきに養殖生物を事前に用意した養殖容器に移し替えることにより行った。ほぼ毎日、生残、脱皮状況を観察した。稚エビに変態以降も、メガロパと同様の方法で４齢稚エビに脱皮するまで継続養殖した。
＜材料と方法＞
抱卵親からふ化した４０個体のアカザエビメガロパを実験に供試した。餌料条件として、アルテミアノ−プリウス区、サクラエビ細片区、アミエビ区、配合飼料区の４実験区を設定した。１実験区につき１０個の１リットル容ビ−カ−を使用し、１ビ−カ−に１個体ずつ幼生を収容し、４実験区とも各々１０個体養殖した。養殖水は、４実験区とも表層海水を使用し、ウォ−タ−バスにより水温を平均１５.２℃に調整し緩やかに通気した。養殖水の交換は、１日おきに養殖生物を事前に用意した養殖容器に移し替えることにより行った。ほぼ毎日、生残、脱皮状況を観察した。稚エビに変態以降も、メガロパと同様の方法で４齢稚エビに脱皮するまで継続養殖した。
＜結果＞
アルテミアノ−プリウス区、サクラエビ細片区、アミエビ区、配合飼料区ともに実験開始１６〜１９日後に１齢稚エビへ変態した。アルテミアノ−プリウス区、サクラエビ細片区、アミエビ区、配合飼料区において、１齢稚エビに成長した個体は、それぞれ、１０個体（１００％）、９個体（９０.０％）、６個体（６０.０％）、１０個体（１００％）であり、４齢稚エビに成長した個体は、それぞれ、８個体（８０.０％）、３個体（３０.０％）、２個体（２０.０％）、７個体（７０.０％）であった。実験開始から４齢稚エビに脱皮するまでの平均日数は、アルテミアノ−プリウス区で９５.４（８９〜１０６）日、サクラエビ細片区で８６.３（８５〜８９）日、アミエビ区で９１.０（８５〜９７）日、配合飼料区で１０５.１（９３〜１１４）日であった。アルテミアノ−プリウス、サクラエビ細片、アミエビ、配合飼料ともに稚エビまでの成長が可能であった。４齢までの生残率から初期餌料としてアルテミアノ−プリウスと配合飼料は有効であった。
アルテミアノ−プリウス区、サクラエビ細片区、アミエビ区、配合飼料区ともに実験開始１６〜１９日後に１齢稚エビへ変態した。アルテミアノ−プリウス区、サクラエビ細片区、アミエビ区、配合飼料区において、１齢稚エビに成長した個体は、それぞれ、１０個体（１００％）、９個体（９０.０％）、６個体（６０.０％）、１０個体（１００％）であり、４齢稚エビに成長した個体は、それぞれ、８個体（８０.０％）、３個体（３０.０％）、２個体（２０.０％）、７個体（７０.０％）であった。実験開始から４齢稚エビに脱皮するまでの平均日数は、アルテミアノ−プリウス区で９５.４（８９〜１０６）日、サクラエビ細片区で８６.３（８５〜８９）日、アミエビ区で９１.０（８５〜９７）日、配合飼料区で１０５.１（９３〜１１４）日であった。アルテミアノ−プリウス、サクラエビ細片、アミエビ、配合飼料ともに稚エビまでの成長が可能であった。４齢までの生残率から初期餌料としてアルテミアノ−プリウスと配合飼料は有効であった。
［実施例７］異なる餌料別のメガロパと若令エビの養殖（２）
＜材料と方法＞
抱卵親からふ化した３０個体のアカザエビメガロパを実験に供試した。餌料条件として、アルテミアノ−プリウス区、配合飼料区、両者併用区の３実験区を設定した。１実験区につき１０個の１リットル容ビ−カ−を使用し、１ビ−カ−に１個体ずつ幼生を収容し、３実験区とも各々１０個体養殖した。養殖水は、３実験区とも海洋深層水を使用し、ウォ−タ−バスにより水温を平均１５.１℃に調整し緩やかに通気した。養殖水の交換は、１日おきに養殖生物を事前に用意した養殖容器に移し替えることにより行った。ほぼ毎日、生残、脱皮状況を観察した。稚エビに変態以降も、メガロパと同様の方法で４齢稚エビに脱皮するまで継続養殖した。
＜材料と方法＞
抱卵親からふ化した３０個体のアカザエビメガロパを実験に供試した。餌料条件として、アルテミアノ−プリウス区、配合飼料区、両者併用区の３実験区を設定した。１実験区につき１０個の１リットル容ビ−カ−を使用し、１ビ−カ−に１個体ずつ幼生を収容し、３実験区とも各々１０個体養殖した。養殖水は、３実験区とも海洋深層水を使用し、ウォ−タ−バスにより水温を平均１５.１℃に調整し緩やかに通気した。養殖水の交換は、１日おきに養殖生物を事前に用意した養殖容器に移し替えることにより行った。ほぼ毎日、生残、脱皮状況を観察した。稚エビに変態以降も、メガロパと同様の方法で４齢稚エビに脱皮するまで継続養殖した。
＜結果＞
アルテミアノ−プリウス区、配合飼料区、両者併用区ともに実験開始１５〜２０日後に１齢稚エビへ変態した。アルテミアノ−プリウス区、配合飼料区、併用区において、１齢稚エビに成長した個体は、それぞれ、１０個体（１００.０％）、１０個体（１００.０％）、１０個体（１００.０％）であり、４齢稚エビに成長した個体は、それぞれ、９個体（９０.０％）、６個体（６０.０％）、８個体（８０.０％）であった。実験開始から４齢稚エビに脱皮するまでの平均日数は、アルテミアノ−プリウス区で８５.３（７８〜９７）日、配合飼料区で９４.５（８８〜１０４）日、両者併用区で７８.４（７６〜８６）日であった。餌料としてアルテミアノ−プリウスと配合飼料は有効であり、両者を併用することにより稚エビの成長に好影響をもたらした。
アルテミアノ−プリウス区、配合飼料区、両者併用区ともに実験開始１５〜２０日後に１齢稚エビへ変態した。アルテミアノ−プリウス区、配合飼料区、併用区において、１齢稚エビに成長した個体は、それぞれ、１０個体（１００.０％）、１０個体（１００.０％）、１０個体（１００.０％）であり、４齢稚エビに成長した個体は、それぞれ、９個体（９０.０％）、６個体（６０.０％）、８個体（８０.０％）であった。実験開始から４齢稚エビに脱皮するまでの平均日数は、アルテミアノ−プリウス区で８５.３（７８〜９７）日、配合飼料区で９４.５（８８〜１０４）日、両者併用区で７８.４（７６〜８６）日であった。餌料としてアルテミアノ−プリウスと配合飼料は有効であり、両者を併用することにより稚エビの成長に好影響をもたらした。
［実施例８］異なる密度別のメガロパ養殖
＜材料と方法＞
抱卵親からふ化した３１個体のアカザエビメガロパを実験に供試した。密度条件として、１リットルあたりの密度が０.５個体区、１個体区、１.５個体区、４個体区、７.５個体区の５実験区を設定した。０.５個体区は２リットルのフィンガ−ボ−ル３個に各々１個体ずつメガロパを収容し計３個体養殖した。１個体区は２リットルのフィンガ−ボ−ル１個に２個体メガロパを収容し養殖した。１.５個体区は２リットルのフィンガ−ボ−ル１個に３個体メガロパを収容し養殖した。４個体区は２リットルのフィンガ−ボ−ル１個に８個体メガロパを収容し養殖した。７.５個体区は２リットルのフィンガ−ボ−ル１個に１５個体メガロパを収容し養殖した。餌料は、アルテミアノ−プリウスとサクラエビ細片とを併用した。養殖水は、表層海水を使用し、ウォ−タ−バスにより水温を平均１５.２℃に調整し緩やかに通気した。養殖水の交換は、１日おきにメガロパを事前に用意した養殖容器に移し替えることにより行った。ほぼ毎日、生残、脱皮状況を観察した。
＜材料と方法＞
抱卵親からふ化した３１個体のアカザエビメガロパを実験に供試した。密度条件として、１リットルあたりの密度が０.５個体区、１個体区、１.５個体区、４個体区、７.５個体区の５実験区を設定した。０.５個体区は２リットルのフィンガ−ボ−ル３個に各々１個体ずつメガロパを収容し計３個体養殖した。１個体区は２リットルのフィンガ−ボ−ル１個に２個体メガロパを収容し養殖した。１.５個体区は２リットルのフィンガ−ボ−ル１個に３個体メガロパを収容し養殖した。４個体区は２リットルのフィンガ−ボ−ル１個に８個体メガロパを収容し養殖した。７.５個体区は２リットルのフィンガ−ボ−ル１個に１５個体メガロパを収容し養殖した。餌料は、アルテミアノ−プリウスとサクラエビ細片とを併用した。養殖水は、表層海水を使用し、ウォ−タ−バスにより水温を平均１５.２℃に調整し緩やかに通気した。養殖水の交換は、１日おきにメガロパを事前に用意した養殖容器に移し替えることにより行った。ほぼ毎日、生残、脱皮状況を観察した。
＜結果＞
０.５個体区、１個体区、１.５個体区、４個体区、７.５個体区ともに実験開始１５〜１７日後に１齢稚エビへ変態した。０.５個体区では３個体（１００.０％）、１個体区では２個体（１００.０％）、１.５個体区では３個体（１００.０％）、４個体区では３個体（３７.５％）、７.５個体区では３個体（２０.５％）が変態した。１.５個体以下／リットルの密度で生残率が高く、密度が増加すると生残率は減少した。
０.５個体区、１個体区、１.５個体区、４個体区、７.５個体区ともに実験開始１５〜１７日後に１齢稚エビへ変態した。０.５個体区では３個体（１００.０％）、１個体区では２個体（１００.０％）、１.５個体区では３個体（１００.０％）、４個体区では３個体（３７.５％）、７.５個体区では３個体（２０.５％）が変態した。１.５個体以下／リットルの密度で生残率が高く、密度が増加すると生残率は減少した。
［実施例９］異なる密度別のメガロパと若令エビの養殖
＜材料と方法＞
抱卵親からふ化した１０７個体のアカザエビメガロパを実験に供試した。密度条件として、１個体／リットルの低密度区、４.５個体／リットルの中密度区、１４個体／リットルの高密度区の３実験区を設定した。低密度区は１リットルのビ−カ−１個に１個体メガロパを収容し計１０個体養殖した。中密度区は６リットルの水槽１個に２７個体メガロパを収容し養殖した。高密度区は５リットルの水槽１個に７０個体メガロパを収容し養殖した。餌料は、アルテミアノ−プリウスと配合飼料とを併用した。養殖水は、３実験区とも海洋深層水を使用し、ウォ−タ−バスにより水温を平均１５.１℃に調整し緩やかに通気した。養殖水の交換は、１日おきに養殖生物を事前に用意した養殖容器に移し替えることにより行った。ほぼ毎日、生残、脱皮状況を観察した。稚エビに変態以降も、メガロパと同様の方法で稚エビをふ化後６０日まで継続養殖した。
＜材料と方法＞
抱卵親からふ化した１０７個体のアカザエビメガロパを実験に供試した。密度条件として、１個体／リットルの低密度区、４.５個体／リットルの中密度区、１４個体／リットルの高密度区の３実験区を設定した。低密度区は１リットルのビ−カ−１個に１個体メガロパを収容し計１０個体養殖した。中密度区は６リットルの水槽１個に２７個体メガロパを収容し養殖した。高密度区は５リットルの水槽１個に７０個体メガロパを収容し養殖した。餌料は、アルテミアノ−プリウスと配合飼料とを併用した。養殖水は、３実験区とも海洋深層水を使用し、ウォ−タ−バスにより水温を平均１５.１℃に調整し緩やかに通気した。養殖水の交換は、１日おきに養殖生物を事前に用意した養殖容器に移し替えることにより行った。ほぼ毎日、生残、脱皮状況を観察した。稚エビに変態以降も、メガロパと同様の方法で稚エビをふ化後６０日まで継続養殖した。
＜結果＞
低密度区、中密度区、高密度区ともに実験開始１５〜１８日後に１齢稚エビへ変態した。低密度区では８個体（８０.０％）、中密度区では２個体（７.４％）、高密度区では２個体（７.１％）が変態した。３実験区とも３齢稚エビへ成長し、低密度区では８個体（８０.０％）、中密度区では１個体（３.７％）、高密度区では１個体（１.４％）であった。低密度が稚エビの生残に好影響をもたらした。
低密度区、中密度区、高密度区ともに実験開始１５〜１８日後に１齢稚エビへ変態した。低密度区では８個体（８０.０％）、中密度区では２個体（７.４％）、高密度区では２個体（７.１％）が変態した。３実験区とも３齢稚エビへ成長し、低密度区では８個体（８０.０％）、中密度区では１個体（３.７％）、高密度区では１個体（１.４％）であった。低密度が稚エビの生残に好影響をもたらした。
［実施例１０］シェルタ−有無別のメガロパと若令エビの養殖
＜材料と方法＞
抱卵親からふ化した１９４個体のアカザエビメガロパを実験に供試した。シェルタ−条件として、有区と無区の２実験区を設定し、２事例実施した。１事例目は、６リットルの角型水槽２個を使用し、一方の水槽に格子状のシェルタ−を取り付け、各々２７個体メガロパを収容し養殖した。２事例目は、５リットルの円形水槽２個を使用し、一方の水槽にネット状のシェルタ−を取り付け、各々７０個体メガロパを収容し養殖した。餌料は、アルテミアノ−プリウスと配合飼料とを併用した。養殖水は、海洋深層水を使用し、ウォ−タ−バスにより水温を平均１５.１℃に調整し緩やかに通気した。養殖水の交換は、１日おきに養殖生物を事前に用意した養殖容器に移し替えることにより行った。ほぼ毎日、生残、脱皮状況を観察した。稚エビに変態以降も、メガロパと同様の方法で稚エビをふ化後６０日まで継続養殖した。
＜材料と方法＞
抱卵親からふ化した１９４個体のアカザエビメガロパを実験に供試した。シェルタ−条件として、有区と無区の２実験区を設定し、２事例実施した。１事例目は、６リットルの角型水槽２個を使用し、一方の水槽に格子状のシェルタ−を取り付け、各々２７個体メガロパを収容し養殖した。２事例目は、５リットルの円形水槽２個を使用し、一方の水槽にネット状のシェルタ−を取り付け、各々７０個体メガロパを収容し養殖した。餌料は、アルテミアノ−プリウスと配合飼料とを併用した。養殖水は、海洋深層水を使用し、ウォ−タ−バスにより水温を平均１５.１℃に調整し緩やかに通気した。養殖水の交換は、１日おきに養殖生物を事前に用意した養殖容器に移し替えることにより行った。ほぼ毎日、生残、脱皮状況を観察した。稚エビに変態以降も、メガロパと同様の方法で稚エビをふ化後６０日まで継続養殖した。
＜結果＞
２事例ともに実験開始１５〜１８日後に１齢稚エビへ変態した。シェルタ−有区と無区の生残数は、１事例目で各々５個体（１９.０％）と２個体（７.４％）、２事例目で各々１３個体（１９.０％）と５個体（７.１％）であった。２事例とも３齢稚エビへ成長し、シェルタ−有区と無区の生残数は、１事例目で各々３個体（１１.０％）と１個体（３.７％）、２事例目で各々４個体（５.７％）と１個体（１.４％）であった。シェルタ−の存在が稚エビの生残に好影響をもたらした。
２事例ともに実験開始１５〜１８日後に１齢稚エビへ変態した。シェルタ−有区と無区の生残数は、１事例目で各々５個体（１９.０％）と２個体（７.４％）、２事例目で各々１３個体（１９.０％）と５個体（７.１％）であった。２事例とも３齢稚エビへ成長し、シェルタ−有区と無区の生残数は、１事例目で各々３個体（１１.０％）と１個体（３.７％）、２事例目で各々４個体（５.７％）と１個体（１.４％）であった。シェルタ−の存在が稚エビの生残に好影響をもたらした。
［実施例１１］養殖容器・収容数別のメガロパと若令エビの養殖
＜材料と方法＞
抱卵親からふ化した２１５個体のアカザエビメガロパを実験に供試した。養殖容器条件として、ビ−カ−区、カプセル区、水槽区の３実験区を設定した。ビ−カ−区は、１リットルのビ−カ−１個に１個体メガロパを収容し計１０個体養殖した（１個体／リットル）。カプセル区は、０.００８リットル容通水性カプセル（組織切片用容器、直径３５ｍｍ、高さ８ｍｍ、目合い２ｍｍ） １個 に１個体メガロパを収容し計１７５個体養殖した（１２５個体／リットル）。カプセルは５リットル容円形水槽１個に収容して養殖した。水槽区は、３５リットル容コンテナ１個
に３０個体メガロパを収容し養殖した（０.８６個体／リットル）。餌料は、アルテミアノ−プリウスを使用し、カプセル区の場合はカプセルを収容した水槽内にアルテミアノ−プリウスを投与することにより給餌した。養殖水は、３実験区とも海洋深層水を使用し、ウォ−タ−バスにより水温を平均１５.１℃に調整し緩やかに通気した。養殖水の交換は、１日おきに、養殖生物又は養殖生物が収容されたカプセルを事前に用意した養殖容器又はカプセル収容水槽に移し替えることにより行った。一旦、カプセルに収容された養殖生物は実験終了までそのまま使用した。ほぼ毎日、生残、脱皮状況を観察した。稚エビに変態以降も、メガロパと同様の方法で稚エビをふ化後４０日まで継続養殖した。
＜材料と方法＞
抱卵親からふ化した２１５個体のアカザエビメガロパを実験に供試した。養殖容器条件として、ビ−カ−区、カプセル区、水槽区の３実験区を設定した。ビ−カ−区は、１リットルのビ−カ−１個に１個体メガロパを収容し計１０個体養殖した（１個体／リットル）。カプセル区は、０.００８リットル容通水性カプセル（組織切片用容器、直径３５ｍｍ、高さ８ｍｍ、目合い２ｍｍ） １個 に１個体メガロパを収容し計１７５個体養殖した（１２５個体／リットル）。カプセルは５リットル容円形水槽１個に収容して養殖した。水槽区は、３５リットル容コンテナ１個
に３０個体メガロパを収容し養殖した（０.８６個体／リットル）。餌料は、アルテミアノ−プリウスを使用し、カプセル区の場合はカプセルを収容した水槽内にアルテミアノ−プリウスを投与することにより給餌した。養殖水は、３実験区とも海洋深層水を使用し、ウォ−タ−バスにより水温を平均１５.１℃に調整し緩やかに通気した。養殖水の交換は、１日おきに、養殖生物又は養殖生物が収容されたカプセルを事前に用意した養殖容器又はカプセル収容水槽に移し替えることにより行った。一旦、カプセルに収容された養殖生物は実験終了までそのまま使用した。ほぼ毎日、生残、脱皮状況を観察した。稚エビに変態以降も、メガロパと同様の方法で稚エビをふ化後４０日まで継続養殖した。
＜結果＞
ビ−カ−区、カプセル区、水槽区ともに実験開始１５〜１８日後に１齢稚エビへ変態した。ビ−カ−区では９個体（９０.０％）、カプセル区では１４８個体（８５.０％）、水槽区では１５個体（５０.０％）が変態した。３実験区とも２齢稚エビへ成長し、ビ−カ−区では８個体（８０.０％）、カプセル区では１０１個体（５７.７％）、水槽区では２個体（６.７％）が成長した。密度は高くても個別養殖であれば生残率は高かった。さらに、通水性カプセルを使用することにより、初期成長段階において、大量にかつ簡易的に養殖できた。
ビ−カ−区、カプセル区、水槽区ともに実験開始１５〜１８日後に１齢稚エビへ変態した。ビ−カ−区では９個体（９０.０％）、カプセル区では１４８個体（８５.０％）、水槽区では１５個体（５０.０％）が変態した。３実験区とも２齢稚エビへ成長し、ビ−カ−区では８個体（８０.０％）、カプセル区では１０１個体（５７.７％）、水槽区では２個体（６.７％）が成長した。密度は高くても個別養殖であれば生残率は高かった。さらに、通水性カプセルを使用することにより、初期成長段階において、大量にかつ簡易的に養殖できた。
［実施例１２］メガロパ・若令エビ養殖による生残・成長推定
＜材料と方法＞
抱卵親からふ化した１０個体のアカザエビメガロパを実験に供試した。餌料は、アルテミアノ−プリウスとサクラエビ細片とを併用した。１リットル容ビ−カ−を使用し、１ビ−カ−に１個体ずつメガロパを収容し、１０個体養殖した。養殖水は表層海水を使用し、ウォ−タ−バスにより水温を調整し緩やかに通気した。養殖水の交換は、１日おきに養殖生物を事前に用意した養殖容器に移し替えることにより行った。ほぼ毎日、生残、脱皮状況を観察した。稚エビに変態以降も、メガロパと同様の方法で稚エビを継続養殖した。
＜材料と方法＞
抱卵親からふ化した１０個体のアカザエビメガロパを実験に供試した。餌料は、アルテミアノ−プリウスとサクラエビ細片とを併用した。１リットル容ビ−カ−を使用し、１ビ−カ−に１個体ずつメガロパを収容し、１０個体養殖した。養殖水は表層海水を使用し、ウォ−タ−バスにより水温を調整し緩やかに通気した。養殖水の交換は、１日おきに養殖生物を事前に用意した養殖容器に移し替えることにより行った。ほぼ毎日、生残、脱皮状況を観察した。稚エビに変態以降も、メガロパと同様の方法で稚エビを継続養殖した。
稚エビ４〜５齢以降は、水槽内に設置したプラスチック籠（目合い５ｍｍ、上面開口の約１５ｃｍ方形、水深１０ｃｍ）に収容し、流水により養殖した。養殖水として表層海水を使用し、籠を収容した水槽に時間あたり２回転程度注入した。餌料は冷凍サクラエビを毎日十分量与え、残餌、死亡個体、脱皮殻等は毎日除去し、ふ化後６００日まで継続養殖した。水温は１５.５（１４.２〜１７.２）℃に調整した。
＜結果＞
生残率は、養殖開始５０日後で７０％、１００日後で４０％、２００日後で２０％、３００日後で２０％、４００日後で１０％、５００日後で１０％、６００日後で１０％であった。２００日以降生残率は１〜２割で安定した。メガロパ時から１５回脱皮することにより甲長３３.８ｍｍに成長した。
生残率は、養殖開始５０日後で７０％、１００日後で４０％、２００日後で２０％、３００日後で２０％、４００日後で１０％、５００日後で１０％、６００日後で１０％であった。２００日以降生残率は１〜２割で安定した。メガロパ時から１５回脱皮することにより甲長３３.８ｍｍに成長した。
ふ化からの日数と甲長の関係について図３に示す。日数（ｘ）と甲長（ｙ）の関係は、ｙ＝０.０５４５ｘ + ３.２６３８
（ Ｒ２＝０.９９４８, ｎ＝６１） の回帰式で表される。この式より、ふ化から商品サイズの甲長４５ｍｍに達するまで７６６日、すなわち約２年かかるものと思われる。
（ Ｒ２＝０.９９４８, ｎ＝６１） の回帰式で表される。この式より、ふ化から商品サイズの甲長４５ｍｍに達するまで７６６日、すなわち約２年かかるものと思われる。
１ 通水性養殖容器
３ スキャンピ
５ 餌料
７ 別の容器
３ スキャンピ
５ 餌料
７ 別の容器
Claims (12)
- 陸上の養殖施設において、海水を収納した養殖容器内にスキャンピを収容し、該スキャンピを人為的な管理下で飼育、培養、種苗生産、養成又は蓄養し、
前記スキャンピはゾエア幼生期を持たないアカザエビであり、
前記スキャンピの成長段階は、卵、メガロパとポストラ−バとを含む幼生、稚エビを含む若令又は成体のいずれかであり、該スキャンピは天然から採取されたもの又は人為的な管理下で採取されたものであり、
人為的な管理下における養殖水として海水又は海洋深層水を、流入、循環又は汲み置き使用し、
人為的な管理下における養殖水の水温が８〜２０℃であることを特徴とするスキャンピの養殖方法。 - 人為的な管理下における餌料として魚介類、配合飼料又はアルテミアを使用することを特徴とする請求項１に記載のスキャンピの養殖方法。
- 前記スキャンピの成長段階が幼生又は若令であって、その初期餌料として、アルテミアと配合飼料とを単独で又は併用して使用することを特徴とする請求項２に記載のスキャンピの養殖方法。
- 前記スキャンピの成長段階が成体であって、その養殖水の水温が１６℃以下であることを特徴とする請求項１又は２に記載のスキャンピの養殖方法。
- 前記スキャンピの成長段階が幼生又は若令であって、その養殖水の水温が１４〜１８℃であることを特徴とする請求項１〜３のいずれかに記載のスキャンピの養殖方法。
- 人為的な管理下における養殖容器が通水性を備え、該養殖容器内に前記スキャンピを収容することを特徴とする請求項１〜５のいずれかに記載のスキャンピの養殖方法。
- 前記スキャンピを低密度で養殖容器に収容し又は該養殖容器にシェルターを使用することにより、スキャンピ個体間の干渉を少なくしたことを特徴とする請求項１〜６のいずれかに記載のスキャンピの養殖方法。
- 前記スキャンピを養殖容器内にて個体単独で養殖することを特徴とする請求項１〜６のいずれかに記載のスキャンピの養殖方法。
- 養殖容器内で抱卵したスキャンピから幼生をふ化させることを特徴とする請求項１に記載のスキャンピの養殖方法。
- スキャンピの親から分離した卵を養殖容器内で養殖し、ふ化させることを特徴とする請求項１に記載のスキャンピの養殖方法。
- 前記養殖容器において下方から上方へ向けての水流により前記分離した卵が浮遊状態又は動的状態となることを特徴とする請求項１０に記載のスキャンピの養殖方法。
- 幼生及び若令のスキャンピが出入不能であり、かつ、該スキャンピの餌料が出入可能な通水性養殖容器内に幼生又は若令のスキャンピを個別に収容し、該通水性養殖容器を餌料が存在する別の容器内に収容することを特徴とする請求項１〜３のいずれかに記載のスキャンピの養殖方法。
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