JP4414138B2 - 蛍光染料を通した分子のエピトープの免疫検出及び分子の相互作用の検出のための方法 - Google Patents
蛍光染料を通した分子のエピトープの免疫検出及び分子の相互作用の検出のための方法 Download PDFInfo
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この出願は、2000年7月25日に出願された米国特許出願連続番号09/624,946号の一部継続出願である、2001年2月15日に出願した米国特許09/783,896号の一部継続出願である。
発明の背景
蛋白質の検出及び定量のための慣用の方法論は、2−Dゲル電気泳動、質量分光測定及び抗体結合を含む。各方法論は相対的に大量の組織からの蛋白質レベルを定量するのに使用されてきたが、各々は感度の欠如をこうむる。
発明の概要
本発明の目的は、サンプル中の、選択されたエピトープを発現する分子を検出する方法を提供することである。この方法においては、選択されたエピトープに特異的なエピトープアンカー種を選択された表面に固定化させる。当該エピトープアンカーは、単鎖Fv断片、CDR,CDR模倣物又は工作されたCDR構造、抗体、又は他のリガンドペプチド又は選択されたエピトープと相互作用する化学物質又は医薬を含んでよい。表面を、次に、選択されたエピトープを発現する分子を含む疑いのあるサンプルと接触させて、上記分子を固定化されたエピトープアンカーに結合させる。選択されたエピトープのための単鎖Fv又はオリゴヌクレオチド、好ましくはcDNAに結合させた、強制的(constrained)エピトープ特異的CDR、CDR模倣物又は工作されたCDR構造を含むエピトープ検出器を次に使用して、あらゆる結合分子を検出する。上記オリゴヌクレオチドは、単鎖Fv,CDR,CDR模倣物又は工作されたCDR構造に結合するビオチン−ストレプトアビジン又はビオチン−アビジンを通して、化学的にコンジュゲートするか又は結合させることができる。あるいは、本発明の方法をエピトープアンカーなしに実施することができる。この態様においては、エピトープ検出器を用いて、表面へ直接結合させた分子を規定する。
発明の詳細な説明
本発明は、選択された分子のレベルを定量するための改良された方法及びこれらの改良された方法を実施するための系及びキットに関する。一つの態様において、上記方法は、分子の選択されたエピトープに特異的なエピトープアンカーを、選択された表面に結合させることを含む。エピトープアンカーは、単鎖のFv断片、CDR、CDR模倣物又は工作されたCDR構造、抗体、又は他のリガンドペプチド又は選択されたエピトープに特異的な化学物質を含んでよい。好ましい態様において、エピトープアンカーは上記表面上の指定されたスポットに結合させる。例えば、上記表面はチップを含んでよく、そしてエピトープアンカーをチップ上の規定されたスポットに結合させる。一つの態様において、エピトープアンカーは、ピペッター又は単一の部位においての適用を可能にさせる類似の装置の支援により表面又はプレート上に被覆される。結合したエピトープアンカーを伴う表面を、次に、選択されたエピトープを発現する分子を含む疑いのあるサンプルに接触させ、それにより、分子はエピトープアンカーに結合する。他の態様においては、上記分子を直接表面に、エピトープアンカーを使用せずに結合させる。
表面上に結合したあらゆる分子を結合できるエピトープ検出器を次に使用することにより、結合した分子の量を検出及び定量する。上記エピトープ検出器は、モノクローナル抗体、選択されたエピトープのための単鎖Fv又は強制的エピトープ特異的CDR、CDR模倣物又は工作されたCDR構造を含むか又はオリゴヌクレオチド、好ましくは二重鎖DNAの結合を単一部位にて可能にさせるように修飾されたものを含んでよい。あるいは、結合活性を有する抗体の断片、scFv又はCDRペプチドを用いることにより、この技術において抗体を置き換えることができる。
CDR技術はよく知られており、米国特許第5,334,702号、米国特許第5,663,144号及び米国特許第5,919,764号に記載されている。抗体分子は、相補性決定基(CDRs)と呼ばれる6つの可変ループを通してそれらの抗原に結合する。重鎖からのCDR3はしばしばその特異性を媒介する。強制的環状CDR模倣物のデザインのための一般的な方法論は、Williams et al.(Proc.Natl.Acad.Sci.USA 1989 86:5537−5541)、Sargovi et al(Science 1991 253:792−795)及びMurali et al(Immunol.Res.1998 17:163−169)により記載される。通常、CDRsは、強制的に(constrained)環状にされて芳香性残基により修飾された6から15マーのペプチドを含む。CDR模倣物は、特異性、親和性及び生物活性に関してそれらの親抗体を模倣することができる小さな分子である(約1kDa)。CDR模倣物の環状形態は約5から13の強制的アミノ酸を含む。
本発明における検出のための好ましい手段は、蛍光染料により染色することを含む。この態様においては、ポリメラーゼ、例えば、T7のRNAポリメラーゼ、T3のRNAポリメラーゼ、SP6のRNAポリメラーゼ、ψ29のポリメラーゼ又はTaqポリメラーゼによるRNA増幅の後に、反応混合物の一部を蛍光染料、例えば、溶液仲でRNAに直接結合してあとで蛍光シグナルを放出する非対称性シアニン染料である、RiboGreen試薬(Molecular Probes,Inc)(米国特許第5,436,134号)と混合する。この方法において有用な類似の特性を有する他の蛍光染料の例は、限定ではないが、PicoGreen,TOTO−1又はYOYO−1を含む。反応はマイクロプレート中で実施することが好ましく、蛍光は、蛍光計、例えばSpectra Fluoraを用いて、RNA溶液をRiboGreen染料と混合後、5から15分間読む。
実施例
実施例1:材料
使用した抗体はmAbs 7.16.4とA11であり、各々がp185neuの細胞外ドメイン内の異なるエピトープに反応する。1E1は、ヒトp185her2/neuの外部ドメインに対して生じさせたIgG1モノクローナル抗体である。rhuMAb 4D5(Herceptin)は、Genentechから得た。抗−ホスホチロシンモノクローナル抗体PY99は、Santa Cruz Biotechnology(Santa Cruz,CA)から得た。細胞系B104−1−1はラットの発癌性p185neuを発現することによりNIH3T3細胞に由来する。B104−1−1内のp185neuの発現レベルは、125I−標識された抗−neu mAb結合アッセイを用いて測定した。EGFR及びp185neuの両者に対して陰性のNR6は、NIH3T3からのサブクローンであった。T6−17は、ヒトp185her2/neu受容体を過剰発現することによりNIH3T3から誘導した。これらの細胞系は、全部、10%ウシ胎児血清(FBS,Hyclone)を含むダルベッコイーグル培地(DMEM)内で37℃において5%のCO2雰囲気中で培養した。
実施例2:Hisタグを付けた7.16.4の発現と精製
50μg/mlのアンピシリンを含むLB培地(150ml)を大腸菌DH5αの15mlの一晩培養液中に植え付けて、0.5の光学密度(600nm)が得られるまで、30℃において維持した。イソプロピル−β−(−D−チオガラクトピラノシド)(IPTG)を1mMの最終濃度にて添加して、Hisタグ付加7.16.4ScFvを誘導した。3時間後に、細胞を回収して、凍結と融解により溶解して、0.5mM フェニルメチルスルフォニルフルオリド、2μM ペプスタチンA,及び2μM ロイペプチンを付加した10mlの尿素溶解バッファー(10mM Tris−HCl,pH8.0,0.1M NaH2SO4,1M NaCl,8M尿素)中に懸濁した。不溶の細胞残渣は、遠心分離(12,000 x gにて15分間、続いて12,000 x gにて30分間)により除去した。透明にされた上清を2mlのNi−NTAアガロースと混合して、氷の上で1時間穏やかに撹拌した。混合物を空のカラムに負荷して、未結合の蛋白質を尿素溶解バッファー(pH6.3)により4℃において溶出した。His−タグを付加した蛋白質を尿素溶解バッファー(pH4.5)により溶出して、溶出した画分をSDS−PAGE及びFACS分析により、実施例3に記載されたとおりに試験した。ピーク画分中の蛋白質をプールして、TKCバッファー(50mM Tris−HCl,pH8.0,100mM KCl,10mM CaCl2,1mM EDTA,0.1mM PMSF)に対して透析した。
実施例3:FACS分析による7.16.4ScFv結合の確認
細胞表面抗原を蛍光活性化細胞分類(FACS)により検出した。B104−1−1細胞(約5X105)を、精製された7.16.4ScFvを含む200μlのFACSバッファー(0.5%ウシ血清アルブミン及び0.02%アジ化ナトリウム)中でインキュベートした(4℃にて30分間)。次に、細胞をFACSバッファー中で洗浄して、抗−His抗体(Invitrogen)とインキュベートした(30分間、4℃)。この第2のインキュベーションの後に、細胞を再びFACSバッファー中で洗浄して、さらにマウスイムノグロブリンに対するFITC−標識されたIgG(Sigma Chemical Co.,St.Louis,MO)とインキュベートした。FACSバッファーで洗浄後に、細胞沈殿物をPBSバッファーに懸濁して、FACSスキャンフローサイトメーター(Becton Dickinson)による分析のために処理した。各サンプルに関して、10,000の生存細胞をサイズ(フォワードスキャター、FSC)及び粒状性(granularity)(サイドスキャター、SSC)のパラメーターに従いゲートを通して、CellQuest Software(Becton Dickinson)を用いて分析した。競合結合に関しては、B104−1−1細胞を最初に異なる濃度の7.16.4ScFvの存在下で、モノクローナル抗体7.16.4とインキュベートした。細胞を次にFACSバッファー中で洗浄して、フローサイトメーター上の分析前に、マウスイムノグロブリンに対するFITC−標識IgG(Sigma Chemical Co.)とインキュベートした。
実施例4:ビオチン化ds−DNAとストレプトアビジンコンジュゲートの合成
以下の配列(GGCTAACTAGAGAACCCACT(配列番号:1))のオリゴヌクレオチドを5’末端にビオチンを付加して合成することにより、ストレプトアビジン又はアビジンに対する結合を可能にした。別のオリゴプライマー(GCTGGGATCTGTCTCTACAA(配列番号:2))はVCP cDNAからの内部配列に由来した。これらの2つのプライマーを用いて、約0.6kbのcDNA断片をプラスミドpcDNA−VCPから増幅した。この断片は、5’末端にビオチンを含み、そしてT7 RNAポリメラーゼの酵素活性を通してcDNA鋳型からRNAの合成を指示するように使用されるT7のプロモーター部位(TAATACGACTCACTATAGGG(配列番号:3))を含む。2.5μgの抗体の10μgのストレプトアビジンへの結合のために、半分の容量の0.8%グルタルアルデヒドを4μlのアリコートに添加した。当該溶液を回転装置上で3時間室温にて混合した。エタノールアミン(1M;1/20溶;pH7.5)を次に添加した。当該溶液をさらに2時間室温にて混合した。抗体−ストレプトアビジン複合体を4℃において保存した。
実施例5:RNA増幅手法
96ウエルのマイクロタイタープレート(Nunc−Immuno Plate,MaxiSorpTM)を、100μlのコーティングバッファーと共にプレートを4℃にてインキュベートすることにより(抗体濃度:5μg/ml)、異なる濃度のキメラp185細胞外ドメイン−Fcポリペプチドによりコートした。次に、プレートを3回、0.2% TWEEN 20を含むPBS(PBS−T;200μl/ウエル)で1時間室温にて洗浄して、再び3回PBS−Tにより洗浄した(200μl/ウエル)。このインキュベーション工程後に、プレートをPBS−Tで洗浄し(6回、200μl/ウエル)、そしてヒト化抗−p185Her2抗体4D5−ストレプトアビジンコンジュゲートと2時間室温にてインキュベートした(150ng/ml,50μl/ウエル)。プレートをPBS−Tで洗浄室温(6回)、ビオチン化cDNA(800ng/ml,0.05ml/ウエル)と1.5時間インキュベートした。次に、プレートを6回洗浄して、RNA増幅を実施した。以下の試薬を加えた:1X RNA増幅バッファー(50mM Tris(pH8.3),10mM MgCl2,50mM KCl,0.5mM スペルミジン;10mM DTT;750μM ATP,UTP,GTP及びCTP;0.5μl RNAsin;200U T7 RNA)。当該溶液を次に4時間37℃においてインキュベートした。RNA産物をウエルから取り出して、25μlを75μlのTEバッファーで希釈して、次に2000倍希釈されたRiboGreen試薬100μlと混合した。10分後に、96ウエルプレート中のサンプルを485nmにて励起して、蛍光放射を535nmにてSpectra Fluoraリーダー(Tecan,オーストリア)を用いて集めた。
Claims (17)
- 選択されたエピトープを発現する分子を検出する方法であって、
(a)選択されたエピトープを発現する分子を、選択された表面に固定化し;
(b)上記表面をエピトープ検出器に接触させることにより、表面上の固定化された分子にエピトープ検出器が結合するようにするが、但し、エピトープ検出器は、
(i)RNAプロモーターを含むオリゴヌクレオチドであって、下記(ii)に結合したオリゴヌクレオチド;
(ii)選択されたエピトープに特異的に結合するモノクローナル抗体、選択されたエピトープに特異的に結合する単鎖Fv、選択されたエピトープに特異的に結合する強制されたCDR、選択されたエピトープに特異的に結合するCDR模倣物、又は選択されたエピトープに特異的に結合する工作されたCDR構造
を含み;
(c)RNA増幅により上記オリゴヌクレオチドから増幅されたRNAを生成し;そして
(d)増幅されたRNA産物の存在を検出するが、但し、
(i)RNA産物を染色する蛍光染料に上記の増幅されたRNA産物を溶液中で接触させ、そして染色されたRNAから放射される蛍光シグナルの量を測定するが、但し、染色されたRNAから放射される蛍光が、表面上に固定化された分子上の選択されたエピトープに結合したエピトープ検出器に正比例すること、
(ii)さらに、リバーストランスクリプターゼを用いてRNA産物を増幅し、そしてさらなる増幅産物を溶液中で検出するが、但し、さらなる増幅産物の検出が、表面上に固定化された分子上の選択されたエピトープに結合したエピトープ検出器の指標であること、そして
(iii)さらに、レプリカーゼを用いてRNA産物を増幅し、そしてさらなる増幅産物を溶液中で検出するが、但し、さらなる増幅産物の検出が、表面上に固定化された分子上の選択されたエピトープに結合したエピトープ検出器の指標であること
からなる群から選択される方法により増幅されたRNA産物の存在を検出すること
を含む方法。 - 選択されたエピトープを発現する分子を検出する方法であって、
(a)選択されたエピトープを発現する分子を、選択された表面に固定化し;
(b)上記表面をエピトープ検出器に接触させることにより、表面上の固定化された分子にエピトープ検出器が結合するようにするが、但し、エピトープ検出器は、
(i)RNAプロモーターを含み、下記(ii)に結合したオリゴヌクレオチド;
(ii)選択されたエピトープに特異的に結合するモノクローナル抗体、選択されたエピトープに特異的に結合する単鎖Fv、選択されたエピトープに特異的に結合する強制されたCDR、選択されたエピトープに特異的に結合するCDR模倣物、又は選択されたエピトープに特異的に結合する工作されたCDR構造
を含み;
(c)RNA増幅により上記オリゴヌクレオチドから増幅されたRNAを生成し;
(d)RNA産物を染色する蛍光染料に上記の増幅されたRNA産物を溶液中で接触させ;そして
(e)染色された増幅RNA産物から放射される蛍光シグナルの量を測定するが、放射される蛍光シグナルの量が、サンプル中に存在するエピトープを発現する分子の数に正比例すること
を含む方法。 - 2−成分系を用いてインビトロにて分子の相互作用を監視する方法であって、
(a)第1の分子を固相表面に固定化し;
(b)第1の分子に相互作用する第2の分子を固相表面に添加するが、但し、第2の分子はユニバーサルエピトープを含み;
(c)RNAプロモーターを含むオリゴヌクレオチドをコンジュゲートしたユニバーサルエピトープ検出器を上記固相表面に添加し;
(d)RNA増幅を実施し;
(e)増幅されたRNA産物を、RNA産物を染色する蛍光染料に溶液中で接触させ;そして
(f)、染色されたRNAから放射された蛍光シグナルの量を測定するが、染色されたRNAから放射された蛍光が第1の分子の第2の分子に対する結合に正比例すること
を含む方法。 - 第1の分子及び第2の分子が、蛋白質、糖、糖質、DNA、RNA、又は構造上のコンフォメーションを伴うペプチドである、請求項3記載の方法。
- インビトロにて分子の相互作用を監視する方法であって、
(a)請求項3又は4記載の方法に従い2−成分系を使用し;
(b)第3の分子を2−成分系に添加し;そして
(c)蛍光の変化を測定することにより上記の2−成分系の第1分子と第2分子の結合及び相互作用に対する第3の分子の作用を監視するが、但し、蛍光の正の変化が第1分子と第2分子の結合を促進する第3分子の指標であり、そして負の変化が第1分子と第2分子の結合を阻害する第3分子の指標であること
を含む方法。 - 第3の分子がリガンド又は薬学上の薬剤を含む、請求項5記載の方法。
- 特異的エピトープに特異的に結合するCDR構造、特異的エピトープに特異的に結合するCDR模倣物構造又は特異的エピトープに特異的に結合する工作されたCDR構造を同定する方法であって、
(a)選択されたエピトープを発現する分子を、選択された表面に固定化し;
(b)上記表面をCDRs,CDR模倣物又は工作されたCDR構造のライブラリーに接触させるが、但し、
(i)CDRs,CDR模倣物又は工作されたCDR構造のライブラリーは、各々、RNAプロモーターを含むオリゴヌクレオチドに結合しているか;又は
(ii)CDRs,CDR模倣物又は工作されたCDR構造のライブラリーはユニバーサルエピトープを含み、且つ、ユニバーサルエピトープに結合するエピトープ検出器をさらに添加するが、エピトープ検出器はRNAプロモーターを含むオリゴヌクレオチドを含み
(c)RNA増幅によりオリゴヌクレオチドから、増幅されたRNA産物を生成し;
(d)RNA産物を染色する蛍光染料に上記の増幅されたRNA産物を溶液中で接触させることにより増幅されたRNA産物の存在を検出し;そして
(e)染色されたRNA産物から放射された蛍光シグナルの量を測定するが、但し、染料されたRNA産物をから放射される蛍光が、選択された表面上に固定化された分子上の特異的エピトープに特異的に結合するCDR構造、選択された表面上に固定化された分子上の特異的エピトープに特異的に結合するCDR模倣物構造又は選択された表面上に固定化された分子上の特異的エピトープに特異的に結合する工作されたCDR構造を同定する指標であること
を含む方法。 - 選択された表面が、チップ、96−ウエルプレート及び384−ウエルプレートからなる群から選択される、請求項1乃至7の何れか1項記載の方法。
- オリゴヌクレオチドが、
(a)ビオチン−ストレプトアビジンリンカーによるか;又は
(b)オリゴヌクレオチドがモノクローナル抗体、単鎖Fv、強制されたCDR、CDR模倣物又は工作されたCDR構造上のエピトープに特異的に結合する分子にコンジュゲートされるかにより、
モノクローナル抗体、単鎖Fv、強制されたCDR、CDR模倣物又は工作されたCDR構造に結合している、請求項1乃至8の何れか1項記載の方法。 - オリゴヌクレオチドが二重鎖cDNA分子である、請求項1乃至9の何れか1項記載の方法。
- RNAプロモーターがT7のRNAプロモーター、T3のRNAプローター及びSP6のRNAプロモーターからなる群から選択される、請求項1乃至10の何れか1項記載の方法。
- 蛍光染料が非対称性シアニン染料である、請求項1乃至11の何れか1項記載の方法。
- 選択されたエピトープを発現する分子の蛍光を用いた検出又は定量のための、
(a)(i)RNAプロモーターを含むオリゴヌクレオチドであって、下記(ii)に結合したオリゴヌクレオチド;
(ii)選択されたエピトープに特異的に結合するモノクローナル抗体、選択されたエピトープに特異的に結合する単鎖Fv、選択されたエピトープに特異的に結合する強制されたCDR、選択されたエピトープに特異的に結合するCDR模倣物、又は選択されたエピトープに特異的に結合する工作されたCDR構造
を含むエピトープ検出器;
(b)RNAポリメラーゼ;
(c)増幅反応バッファー;
(d)溶液中でRNAに結合する蛍光非対称性シアニン染料
を含むキット。 - (a)細胞溶解物の中に存在する蛋白質上の選択されたエピトープに特異的に結合するエピトープ検出器の混合物であって、上記エピトープ検出器の各々は、
(i)RNAプロモーターを含み、下記(ii)に結合したcDNA;
(ii)選択されたエピトープに特異的に結合するモノクローナル抗体、選択されたエピトープに特異的に結合する単鎖Fv、選択されたエピトープに特異的に結合する強制されたCDR、選択されたエピトープに特異的に結合するCDR模倣物、又は選択されたエピトープに特異的に結合する工作されたCDR構造を含むが、
但し、同じ特異的エピトープに特異的に結合するエピトープ検出器が同じ長さのRNA増幅産物を生じるcDNAsにコンジュゲートされており、そして異なる特異的エピトープに特異的に結合するエピトープ検出器が異なる長さのRNA増幅産物にコンジュゲートされているエピトープ検出器混合物;
(b)RNAポリメラーゼ;
(c)増幅反応バッファー;
(d)溶液中でRNAに結合する蛍光非対称性シアニン染料
を含むキット。 - オリゴヌクレオチドが、
(a)ビオチン−ストレプトアビジンリンカーによるか;又は
(b)オリゴヌクレオチドがモノクローナル抗体、単鎖Fv、強制されたCDR、CDR模倣物又は工作されたCDR構造上のエピトープに特異的に結合する分子にコンジュゲートされるかにより、
モノクローナル抗体、単鎖Fv、強制されたCDR、CDR模倣物又は工作されたCDR構造に結合している、請求項13又は14項記載のキット。 - オリゴヌクレオチドが二重鎖cDNA分子である、請求項13乃至15の何れか1項記載のキット。
- RNAプロモーターがT7のRNAプロモーターであり且つRNAポリメラーゼがT7のRNAポリメラーゼであるか、RNAプロモーターがT3のRNAプロモーターであり且つRNAポリメラーゼがT3のRNAポリメラーゼであるか、又はRNAプロモーターがSP6のRNAプロモーターであり且つRNAポリメラーゼがSP6のRNAポリメラーゼである、請求項13乃至16の何れか1項記載のキット。
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