JP4238319B2 - マイコプラズマの検出方法 - Google Patents
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Description
このキットには増幅産物の長さによってマイコプラズマ種が同定できるという利点があるが、2度のPCRを終えた時点では増幅鎖長が同じものがあり、確実に種を特定するためには制限酵素での切断が必要となる。これにはさらに時間と手間を要し、種の同定が必要でない場合にはこれらの利点は不要である。その他にも16S rRNA 領域を用いてプライマーを作り、PCR を行う方法が一般に知られているが、増幅する鎖長が長く増幅に時間がかかり、ゲルに流し染色を行うため時間と手間を要する。また16S rRNA 領域は大腸菌等の原核生物のそれとも相同性が高いため、マイコプラズマに対する特異性が低くなる場合がある。
(1)配列表の配列番号2、3および4で表されるDNAと、同配列番号5で表されるDNAとを含み、かつ2本鎖DNAにインターカレートする蛍光試薬を含むことを特徴とする、マイコプラズマの検出試薬キット。
また、本発明ではプローブを用いないため蛍光標識されたプローブに係る費用も要しない。したがって、これらのことから企業や細胞バンクなどで業務として大量の細胞の検査を行う場合などにも本発明は極めて有効な手段である。
本発明においては、マイコプラズマのDNA中、マイコプラズマに特異的な配列を有する領域部分をプライマーとし、被験試料から得られた全DNAを鋳型としてPCRを行う。このとき被験試料がマイコプラズマを含んでいれば、これから得られたDNA中にはマイコプラズマDNAが含まれ、マイコプラズマDNA中の上記プライマー間に対応する領域が増幅され、この領域に対応する2本鎖DNAが多量に形成される。
しかし、上記PCR反応において使用するプライマーは、マイコプラズマに特異的な配列であるため、マイコプラズマ以外のDNAとは塩基対を形成せず、マイコプラズマ以外のDNAがPCR反応系に含まれていても、増幅されない。
したがって、PCR反応のサイクルが進むにつれ、蛍光強度が増大していけば、マイコプラズマ由来のDNAが含まれていたことになり、この蛍光強度の増大をグラフ化することにより、被験試料中のマイコプラズマを検出できる。すなわち、本発明はリアルタイムPCR法により被験試料中のマイコプラズマを検出するものである。
本発明において、PCRのプライマーとして用いるDNAとしては、例えば配列番号1〜5の塩基配列を有するDNAが挙げられる。
これらプライマーは、培養細胞に感染することが確認されている代表的なマイコプラズマ7種およびアコレプラズマ1種を迅速に、特異的に検出することを目的として設計したものである。すなわち、上記混合プライマーを用い、被験試料から得られるDNAを鋳型とし、2本鎖DNAにインターカレートする蛍光試料を用いてリアルタイムPCR を行う。本発明においてはプローブを用いない。
16s rRNA 領域は核酸配列がデータベースに一般公開されているため、プライマーの作製が容易であるが、同じく培養細胞に汚染する可能性の高い大腸菌等の原核生物との共通配列が多いので、マイコプラズマに特異性の高い核酸領域を23S rRNA 領域から見いだしたものである。
“16S-23S rRNA intergenic spacer complete sequence and 23S rRNA gene, partial sequence” (The Entrez Nucleotides database) を用いた。ただしM.salivariumとM.pirum については同領域の核酸配列は不明である。配列番号1又は2で示される核酸配列は,6種のマイコプラズマ ( M.arginini, M.fermentans, M.hominis, M.hyorhinis, M.orale,
M.salivarium ) に共通の配列である。図 1の(1)に示される、5種のマイコプラズマ( M.arginini, M.fermentans, M.hominis, M.hyorhinis, M.orale, )に共通であることを確認したセンスプライマー(配列表の配列番号1又は2)とアンチセンスプライマー(配列表の配列番号5)でマイコプラズマ7種及びアコレプラズマ1種のDNAについてPCRを行ったところ、M.salivarium は検出されたため、同様の配列を有すると考えられた。M.pirum, A.laidlawiiについては検出されなかった。
これらの結果を総合して、5種のプライマー1〜5を決定した(同配列番号1〜5)。
プライマー1: TCTGAAT(C/T)TGCCGGGACC
プライマー2: TCTGAAT(C/T)TGCCGGGACCACC
プライマー3: GGAATCCCGTTTGAAGATAGGA
プライマー4: GGAAAATGTTATTTTGACGGAACCT
プライマー5: CTTTCC(A/C)TCAC(G/T)GTACT(A/G)GTTCACT
このプライマーによってリアルタイムPCRを行ったが、培養細胞に汚染する可能性の高い大腸菌、また人の疾患に関与すると言われるM.pneumoniae, M.genitalium, M.gallisepticum のDNA は検出されなかった。
上記5種のプライマーのうち4種(プライマー1、3、4、5、又はプライマー2、3、4、5)を同時に用いることで、培養細胞に汚染することが確認されているマイコプラズマ7種及びアコレプラズマ1種の検出を特異的に、迅速に行うことが可能となる。プライマー2はプライマー1に3塩基付加することで、マイコプラズマに対する特異性をより向上させたもので、通常混合プライマーとしては1又は2、および3、4、5を混合して用いる。またM.pirum, A.laidlawii におけるプライマー3(同配列番号3)、およびプライマー4(同配列番号4)は、これら各マイコプラズマに特異的DNA配列を用いているため、これら各プライマーをプライマー5とともに個別に用いることで種の同定も可能である。
これらの試料から、DNAの調製のための通常の方法によりDNAを得ることができる。具体的には、細胞を遠心により回収し、Proteinase Kによって融解し、その希釈液をそのままPCR用試料として用いたり、DNAを精製したものを蒸留水(またはT/E)に溶かしたりする方法がある。
本発明において使用するインターカレート蛍光試薬としては、例えば
エチジウムブロマイド( EtBr )、YO-PRO-I、及びSYBR Green I等が挙げられる。
一方、プローブを用いるリアルタイムPCRと比較しての問題点として、非特異的増幅による2本鎖DNAも検出してしまうことがあげられるが、目的とする増幅産物とこれらの非特異的増幅産物における2本鎖DNAとは、通常、融解温度(Tm値)が異なる場合が多いので、融解曲線を描かせることで区別が容易につく。この原理を説明する。
各PCR 産物のTm 値に達した時、2本鎖DNAは1本鎖となり、急激に蛍光値が下がる。Tm 値は各PCR 産物の GC 含有量や鎖長等によって決定される。
目的の増幅産物と非特異的増幅産物は、増幅される領域、長さ共に異なると考えられるので、Tm 値も異なると考えられる。したがって、温度に対する蛍光強度変化を示すことで各 PCR 産物の Tm 値を求めることができ、それにより両者を区別することができる。本検出方法においても、目的の増幅産物と非特異的増幅産物における2本鎖DNAの融解温度(Tm値)が異なることを確認している。
以下に、実施例を示すが、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。
また、すべての例においてはリアルタイムPCR 解析機能の付属したPCR 機器 I Cycler iQ (Bio-Rad社)を用いたため、測定時間に関与する加熱速度、冷却速度は一定である。
〔実施例1〕
また、この際要する時間は反応開始から終了まで約75分であった。
これによれば、目的増幅物のTm 値は80.5〜81.5、非特異的増幅物のTm値は76.5〜77.5である。また図4に示されるように、大腸菌DNAは検出されず、その他のマイコプラズマのDNA(例えば、M.pneumoniae, M.genitalium, M.gallisepticum等)も検出されないことを確認した。
〔実施例2〕
〔実施例3〕
〔実施例4〕
〔比較例1〕
実施例1と同様にして各DNAを含有する被験試料溶液およびコントロール溶液をそれぞれ調製した。
マスターミクスチャー ( 1st stage Primers 1 μl, Taq Polymerase Buffer 45 μl, Taq Polymerase 1unit ) のうち45μl に上記各試料溶液及びコントロール溶液をそれぞれ5μl 加えて、94℃ 2分を1サイクル、94 ℃ 30秒+ 55 ℃ 30秒+72℃ 1分を30サイクルの条件で1回目の増幅反応を行った。この際要する時間は反応の開始から終了まで約100分であった。さらに1回目の増幅産物を用いて2回目の増幅反応を行った。1st stage primers の代わりに2nd stage primers を加えたマスターミクスチャー 45μl に1回目PCR 反応液を5 μl加えて1回目と同条件で増幅反応を行った。この際も要する時間は約100分であった。2回目の増幅反応終了後、アガロースゲルを用いて増幅物の電気泳動を行った。この泳動に要する時間は約30分から40分であった。さらに、ゲルの染色を(約15分)行い、UV 照射装置でバンドの有無、サイズを確認した。これらを含めて検出過程に要する時間における時間は、最短でも4時間以上であった。
〔比較例2〕
実施例1と同様にして各DNAを含有する被験試料溶液およびコントロール溶液をそれぞれ調製した。
次いで、マスターミクスチャー( water 12.1μl, 10 X reaction buffer 2.5μl, primer/mucleotide mix 2.5 μl, internal control probe 2.5 μl, internal control 2.5 μl, Taq Polymerase 1unit, UNG 0.2 unit ) 22.5 μlに、上記各DNA含有試料溶液 2.5 μlを加えて、95℃ 10分を1サイクル、95 ℃ 30秒+55 ℃ 30秒+60 ℃ 30秒を45サイクルの条件(本キット説明書記載条件)でリアルタイムPCR を行った。この際要した時間は反応開始から終了まで約130分であった。
の系としては長いと思われる。このキットに関しては論文が示されておらず、説明書にも詳細は記載されていないが、リアルタイムPCR としての条件の最適化が不十分であると考えられる。また、図7に示すように、大腸菌DNAが検出されており、マイコプラズマ特異的検出法としては不十分な結果が生じた。
Claims (1)
- 配列表の配列番号2、3および4で表されるDNAと、同配列番号5で表されるDNAとを含み、かつ2本鎖DNAにインターカレートする蛍光試薬を含むことを特徴とする、マイコプラズマの検出試薬キット。
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