JP3944586B2 - フォンビルブランド因子切断酵素の特異的基質および活性測定法 - Google Patents

Description

本発明は、血漿蛋白の切断酵素、詳細には、フォンビルブランド因子切断酵素の特異的基質および活性測定方法、ならびにフォンビルブランド因子切断酵素活性のハイスループット測定系に関する。

フォンビルブランド因子（以下、「ＶＷＦ」という）は、血液凝固において重要な役割を果たす血漿蛋白質である。ＶＷＦは主に血管内皮で合成され、高分子多量体の形態で血中に放出される。通常、血漿中のフォンビルブランド因子切断酵素（ＡＤＡＭＴＳ−１３あるいはＶＷＦ−ＣＰと呼ばれており、以下、「ＡＤＡＭＴＳ−１３という）」によって適度な大きさに限定分解されることで、その凝固促進活性が調節されている。ＡＤＡＭＴＳ−１３の活性が著しく低下した場合、ＶＷＦの異常高分子化が起こる。その結果、特に血小板の過剰凝集による血栓が生じ、血栓性血小板減少性紫斑病（以下、「ＴＴＰ」という）と呼ばれる重篤な全身性疾患を引き起こす。ＴＴＰは、先天性と後天性に大別される。
近年、ＡＤＡＭＴＳ−１３が単離され、それをコードする遺伝子ＡＤＡＭＴＳ１３が同定された^（１）。この遺伝子の変異は、先天性ＴＴＰの原因となる。一方、ＴＴＰの大半を占め、妊娠や薬剤の副作用等で誘発される後天性ＴＴＰの発症機構は解明されていない。
ＴＴＰは、血小板減少を伴う血栓性の全身性疾患であり、放置すればほぼ確実に死に至る。血漿交換の有効性が知られて以来、致死率は著しく減少した。しかしながら、２〜３週間に１度の血漿交換は患者にとって大きな負担であり、感染等の危険も無視できない。そこで、ＡＤＡＭＴＳ−１３活性を正確かつ迅速に測定し、血漿交換のタイミングを正確に判断し、血漿交換の回数を減少させ、かつ治療効果を増大させることが必要となっている。また、後天性ＴＴＰの予知にもＡＤＡＭＴＳ−１３活性の正確な測定が不可欠である。ＡＤＡＭＴＳ−１３の正確な活性測定により、ＴＴＰ発症の副作用を有する薬剤の服用時や、ＴＴＰを誘発しやすい妊娠時等に血中ＡＤＡＭＴＳ−１３活性を定期的に測定し、それが低下していないか、すなわち、ＴＴＰ発症の徴候が現れていないか、といった臨床情報を得ることが可能となる。また、ＡＤＡＭＴＳ−１３の活性低下を根拠に、患者がＴＴＰにかかっていることの確定診断を迅速に行なうこともできる。
ＴＴＰとよく似た臨床的症状を示す疾病としてＨＵＳ（溶血性尿毒症症候群）がある。しかしながら、ＨＵＳ患者においてはＡＤＡＭＴＳ−１３活性は正常レベルであり、ＴＴＰ患者におけるＡＤＡＭＴＳ−１３活性の低下または欠失とは対照をなす。したがって、患者のＡＤＡＭＴＳ−１３活性を的確に測定することによって、ＴＴＰとＨＵＳとを識別することもできる。
ＡＤＡＭＴＳ−１３は、ＶＷＦサブユニットのＴｙｒ^１６０５−Ｍｅｔ^１６０６間のペプチド結合を特異的に切断する^（２）。この部位を特異的に切断する酵素はＡＤＡＭＴＳ−１３以外に知られていない。現在、ＡＤＡＭＴＳ−１３の活性測定法として、（ｉ）精製ヒトＶＷＦを基質とした反応液の電気泳動とウェスタンブロットの組み合わせ^（３）、（ｉｉ）ＶＷＦのコラーゲン結合能の測定^（４）、（ｉｉｉ）ＶＷＦ部位特異的モノクローナル抗体を利用した定量^（５）などが知られている。しかしながら、操作に時間や熟練を要する、定量性に欠ける、感度が低い、などといった欠点があり、さらに簡便性、多検体処理能にも欠けるものであり、臨床現場への普及は困難である。また、プロテアーゼ活性のハイスループット測定系として広く普及している発色性あるいは蛍光性合成ペプチド基質の利用は、ＡＤＡＭＴＳ−１３の場合、基質特異性の問題から不可能であるといわれている^（６）。

発明が解決しようとする課題

上述のごとく、ＡＤＡＭＴＳ−１３活性の低下により引き起こされるＴＴＰが非常に重篤な疾患であるにもかかわらず、ＡＤＡＭＴＳ−１３活性の正確かつ迅速な測定法が未だ確立されていないのが現状である。したがって、本発明は、従来のＡＤＡＭＴＳ−１３活性測定法の欠点を克服し、ＴＴＰの効果的な治療およびＴＴＰ発症予知、ＴＴＰの確定診断、およびＴＴＰとＨＵＳの識別等に資することを課題とするものである。

発明が解決しようとする課題

上記事情に鑑みて、本発明者らは鋭意研究を重ねたところ、配列番号：１に示す野生型ヒトＶＷＦのアミノ酸配列の１６０５番目のチロシンと１６０６番目のメチオニンとの間の切断部位（以下、Ｔｙｒ^１６０５−Ｍｅｔ^１６０６と表記することがあり、単に「切断部位」という場合がある）を含む、成熟ＶＷＦサブユニットの末端切断された比較的短い部分アミノ酸配列またはその変異配列であっても、ＡＤＡＭＴＳ−１３により特異的に切断されることを見出し、簡便、特異的、高感度かつ定量的にＡＤＡＭＴＳ−１３活性を測定することに成功し、本発明を完成させるに至った。
すなわち本発明は、
（１）配列表の配列番号：１に示された野生型ヒトＶＷＦのアミノ酸配列のアミノ酸７６４から１６０５のうちの１つから始まり、アミノ酸１６０６から２８１３のうちの１つで終わるＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチド（ただし、配列表の配列番号：１のアミノ酸７６４から始まり、アミノ酸２８１３で終わるものを除く）、
（２）配列表の配列番号：１に示された野生型ヒトＶＷＦのアミノ酸配列のアミノ酸１４５９から１６０５のうちの１つから始まり、アミノ酸１６０６から１６６８のうちの１つで終わるＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチド、
（３）配列表の配列番号：１に示された野生型ヒトＶＷＦのアミノ酸配列のアミノ酸１４５９から１６００のうちの１つから始まり、アミノ酸１６１１から１６６８のうちの１つで終わるＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチド、
（４）配列表の配列番号：１に示された野生型ヒトＶＷＦのアミノ酸配列のアミノ酸１５５４から１６００のうちの１つから始まり、アミノ酸１６６０から１６６８で終わるＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチド、
（５）配列表の配列番号：１に示された野生型ヒトＶＷＦのアミノ酸配列のアミノ酸１５８７から始まり、アミノ酸１６６８で終わるＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチド、
（６）配列表の配列番号：１に示された野生型ヒトＶＷＦのアミノ酸配列のアミノ酸１５９６から始まり、アミノ酸１６６８で終わるＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチド、
（７）上記（１）ないし（６）のいずれかに記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドに対して少なくとも５０％以上のアミノ酸配列相同性を有する変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチド、
（８）上記（１）ないし（６）のいずれかに記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドに対して少なくとも７０％以上のアミノ酸配列相同性を有する変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチド、
（９）上記（１）ないし（６）のいずれかに記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドに対して少なくとも９０％以上のアミノ酸配列相同性を有する変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチド、
（１０）上記（１）ないし（６）のいずれかに記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドのアミノ酸配列において、１個ないし数個のアミノ酸の欠失、挿入、置換または付加（あるいはこれらの組み合わせ）により、上記（１）ないし（６）のいずれかに記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドとは異なっているものである変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチド、
（１１）Ｎ末端および／またはＣ末端にタグ配列が結合している上記（１）ないし（１０）のいずれかに記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチド、
（１２）タグが蛋白、ペプチド、カップリング剤、放射性標識、発色団からなる群より選択されるものである上記（１１）に記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチド、
（１３）タグが固相に固定化するためのものである上記（１１）または（１２）に記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチド、
（１４）固相に固定化された上記（１３）に記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチド、
（１５）上記（１）ないし（１４）のいずれかに記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドと正常対象から得た血漿とを接触させて、生成するポリペプチド断片を分析してこれを対照とし、上記（１）ないし（１４）のいずれかに記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドと対象から得た血漿とを接触させて生成するポリペプチド断片を同様に分析し、対照と比較することを特徴とする、対象中のＡＤＡＭＴＳ−１３活性測定方法、
（１６）上記（１）ないし（１４）のいずれかに記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドを用いることを特徴とする、対象から得た血漿中のＡＤＡＭＴＳ−１３活性のハイスループット測定方法、
（１７）上記（１）ないし（１４）のいずれかに記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドを含む、対象におけるＡＤＡＭＴＳ−１３活性低下または欠失をインビトロで調べるための診断組成物、
（１８）上記（１）ないし（１４）のいずれかに記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドを必須構成成分として含む、対象におけるＡＤＡＭＴＳ−１３活性低下または欠失をインビトロで調べるためのキット、ならびに
（１９）上記（１７）に記載の診断組成物または上記（１８）に記載のキットを製造するための、上記（１）ないし（１４）のいずれかに記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドの使用を提供するものである。

図１は、ＧＳＴ−Ａｓｐ^１４５９−Ａｒｇ^１６６８−Ｈ、ＧＳＴ−Ｇｌｕ^１５５４−Ａｒｇ^１６６８−Ｈ、ＧＳＴ−Ａｓｐ^１５８７−Ａｒｇ^１６６８−Ｈ、ＧＳＴ−Ａｓｐ^１５９６−Ａｒｇ^１６６８−ＨおよびＧＳＴ−Ａｓｐ^１５９６−Ａｒｇ^１６５９−Ｈを正常血漿と３７℃で２時間反応させ、ＳＤＳ−ＰＡＧＥで分離した後、抗ＧＳＴ抗体を一次抗体として用いたウェスタンブロットを行なった結果を示す。
図２は、ＧＳＴ−Ａｓｐ^１５９６−Ａｒｇ^１６６８−Ｈの基質特異性および反応の定量性を示す。反応条件は図１と同じである。
発明の詳細な説明
野生型ヒトＶＷＦは、そのシグナルペプチドおよびプロ領域を含めて全部で２８１３個のアミノ酸からなるポリペプチドである。野生型ヒトＶＷＦのアミノ酸配列を配列表の配列番号：１に示す。野生型ヒト成熟ＶＷＦサブユニットはそのシグナルペプチドおよびプロ領域を除いた部分であり、配列表の配列番号：１のアミノ酸７６４からアミノ酸２８１３までのポリペプチドである。そのアミノ酸の番号付けは、野生型ヒトＶＷＦのアミノ（Ｎ）末端の開始メチオニンを１（アミノ酸１）としてカルボキシル（Ｃ）末端方向に順に数えていく（配列表の配列番号：１参照）。本明細書において、例えば、配列表の配列番号：１のＮ末端から１４５９番目のアミノ酸をアミノ酸１４５９と表示することがある。さらに配列表の配列番号：１のＮ末端から１４５９番目のアミノ酸はアスパラギン酸（Ａｓｐ）であるので、Ａｓｐ^１４５９と表示することがある。また例えば、アミノ酸１４５９（Ａｓｐ）からアミノ酸１６６８（Ａｒｇ）までのポリペプチドをＡｓｐ^１４５９−Ａｒｇ^１６６８と表示することがある。
「野生型」ＶＷＦのアミノ酸配列は、変異していないヒトのＶＷＦのアミノ酸配列を意味する。本明細書において、「変異」している旨を特記しないかぎり、「野生型」の表示がなくてもアミノ酸配列は変異していないものである。
したがって、本明細書においては、ヒト成熟ＶＷＦサブユニットの部分アミノ酸配列が、その部分に対応する天然型ヒト成熟ＶＷＦサブユニットの配列と同じであれば「野生型」であり、異なっていれば「変異」したものである。
また、本明細書において、ヒト起源でないことを特記しないかぎり、ＶＷＦはヒト起源のものである。ヒト以外の生物を起源とするＶＷＦは、本明細書においては「変異」したものに含められる。
本明細書において「ポリペプチド」はアミノ酸残基が２よりも多いペプチドをいう。さらに本明細書において「ポリペプチド」と「蛋白」または「蛋白質」なる語は同義として扱う。
本明細書においてアミノ酸は慣用的な３文字標記とする。
本発明は、１の態様において、配列表の配列番号：１に示された野生型ヒトＶＷＦのアミノ酸配列のアミノ酸７６４から１６０５のうちの１つから始まり、アミノ酸１６０６から２８１３のうちの１つで終わるＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチド（ただし、配列表の配列番号：１のアミノ酸７６４から始まり、アミノ酸２８１３で終わるものを除く）を提供する。
本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドは切断部位Ｔｙｒ^１６０５−Ｍｅｔ^１６０６を必須として含むヒト成熟ＶＷＦサブユニットの部分アミノ酸配列である。したがって、アミノ酸７６４から始まり、アミノ酸２８１３で終わる全長の野生型ヒト成熟ＶＷＦサブユニットは除かれる。
配列表の配列番号：１に示された野生型ヒトＶＷＦのアミノ酸配列のアミノ酸１４５９（Ａｓｐ）からアミノ酸１６６８（Ａｒｇ）までの領域はＣｙｓ残基を含まないので、ジスルフィド結合の形成により多量体化することがなく、ＡＤＡＭＴＳ−１３に対する特異性、ＡＤＡＭＴＳ−１３活性測定の定量性、再現性、取り扱い等に問題を生じることがない。したがって、本発明は、好ましい態様において、配列表の配列番号：１に示された野生型ヒトＶＷＦのアミノ酸配列のアミノ酸１４５９から１６０５のうちの１つから始まり、アミノ酸１６０６から１６６８のうちの１つで終わるＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドを提供する。
また、切断部位の前後アミノ酸４個までの短いポリペプチドはＡＤＡＭＴＳ−１３基質として特異性があまり高くない。したがって、本発明は、より好ましい態様において、配列表の配列番号：１に示された野生型ヒトＶＷＦのアミノ酸配列のアミノ酸１４５９から１６００のうちの１つから始まり、アミノ酸１６１１から１６６８のうちの１つで終わるＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドを提供する。この態様のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドは、上述のごとくＣｙｓ残基を含まないので、ジスルフィド結合の形成により多量体化することがなく、ＡＤＡＭＴＳ−１３に対する特異性、ＡＤＡＭＴＳ−１３活性測定の定量性、再現性、取り扱い等に問題を生じることがなく、この態様のＡＤＡＭＴＳ−１３ポリペプチドは組み換え法による製造に十分に適した小型のものであり、ＡＤＡＭＴＳ−１３に対する特異性も高い。
本発明は、さらに好ましい態様において、配列表の配列番号：１に示された野生型ヒトＶＷＦのアミノ酸配列のアミノ酸１５５４から１６００のうちの１つから始まり、アミノ酸１６６０から１６６８のうちの１つで終わるＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドを提供する。上述のごとく、この態様のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドはＣｙｓ残基を含まないので、ジスルフィド結合の形成により多量体化することがなく、ＡＤＡＭＴＳ−１３に対する特異性、ＡＤＡＭＴＳ−１３活性測定の定量性、再現性、取り扱い等に問題を生じることがなく、この態様のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドは上記態様のものよりも小型なので組み換え法による製造に特に適している。また、この態様のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドは上記態様のものよりもＡＤＡＭＴＳ−１３に対する特異性がさらに高い（実施例のセクション参照）。
本発明は、特に好ましい具体例として、配列表の配列番号：１に示された野生型ヒトＶＷＦのアミノ酸配列のアミノ酸１５８７から始まり、アミノ酸１６６８で終わるＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチド、ならびに配列表の配列番号：１に示された野生型ヒトＶＷＦのアミノ酸配列のアミノ酸１５９６から始まり、アミノ酸１６６８で終わるＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドを提供する。
本発明のこれらのＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドはＡＤＡＭＴＳ−１３によりＴｙｒ^１６０５−Ｍｅｔ^１６０６間が切断される。
さらに、本発明は、さらなる態様において、上記態様のいずれかのＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドに対して少なくとも５０％以上、好ましくは７０％以上、より好ましくは９０％以上のアミノ酸配列相同性を有する変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドを提供する。
好ましくは、変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドは切断部位Ｔｙｒ^{１６０ ５}−Ｍｅｔ^１６０６をその中に含む。しかしながら、変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドは、ＡＤＡＭＴＳ−１３に対する特異性を保持する限り、切断部位の２つのアミノ酸が上記のもの（Ｔｙｒ^１６０５、Ｍｅｔ^１６０６）と異なっていてもよく、かかる変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドも本発明に包含される。
アミノ酸配列の「相同性」とは、比較される２つまたはそれ以上のアミノ酸配列が同一または類似のアミノ酸配列を有する度合いをいう。本発明の変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドの場合には、野生型のものに対して１００％同一のアミノ酸配列を有するものは除かれる。
さらに好ましくは、本発明の変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドは、上記ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドのアミノ酸配列において、１個ないし数個のアミノ酸が欠失、挿入、置換または付加（あるいはこれらの組み合わせ）により、上記ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドとは異なっているものである変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドである。
変異アミノ酸配列は上記のものであればいかなるものであってもよく、好ましくは、例えば、野生型アミノ酸配列中の１またはそれ以上のアミノ酸が、欠失、挿入、置換または付加されたものであってもよく（これらの組み合わせであってもよい）、あるいは野生型アミノ酸配列中の１またはそれ以上のアミノ酸の側鎖が修飾されたもの（例えば、合成非天然アミノ酸）であってもよく、あるいはこれらの組み合わせであってもよい。
これらの変異は自然発生的な突然変異によるものであってもよく、あるいは人為的な突然変異誘発によるものであってもよい。人為的な突然変異誘発法は当該分野においてよく知られており、例えば、組み換え法を用いた部位特異的突然変異誘発法、化学的方法による変異ポリペプチドの合成、例えば固相合成および液相合成、またはアミノ酸残基の化学修飾等があり、それぞれの詳細は当業者のよく知るところである。また、かかる変異および／または修飾の位置はいずれの位置におけるものであってもよい。
アミノ酸の修飾例としては、アセチル化、アシル化、アミド化、糖鎖付加、ヌクレオチドまたはヌクレオチド誘導体の付加、脂質または脂質誘導体の付加、環化、ジスルフィド結合形成、脱メチル化、架橋形成、シスチン形成、ピログルタミン酸形成、ホルミル化、ヒドロキシル化、ハロゲン化、メチル化、側鎖の酸化、蛋白加水分解酵素による処理、リン酸化、硫酸化、ラセミ化等があり、当該分野においてよく知られている。
特に、真核細胞発現系において本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドを製造した場合には、ポリペプチド中のセリンまたはスレオニン残基において糖鎖付加される可能性が高く、このように真核細胞において発現されて糖鎖付加されたＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドも本発明に含まれる。
次に、上記の本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドの製造方法について説明する。以下の説明は本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドの製造についてのものであるが、以下の説明が変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドの製造についても適用できることは当業者に明らかである。
化学合成による場合は、固相または液相ペプチド合成が一般的である。例えば、固相ペプチド合成装置を用いることもできる。アミノ酸残基の修飾が必要な場合には、適宜、修飾アミノ酸を合成装置に導入することもできる。合成中に感受性の高い残基に保護基を導入することも公知である。また、アミノ酸配列が得られた後、修飾を行なってもよい。いうまでもなく、これらの化学合成法および他の化学合成法は当該分野において公知であり、当業者は適切な方法を選択して目的ポリペプチドを合成することができる。
あるいは、本発明のポリペプチドを含有するポリペプチドを適当なプロテアーゼおよび／またはペプチダーゼで切断することによって製造することもできる。例えば、血漿からＶＷＦ画分を精製し、特異的な切断部位を有するプロテアーゼおよび／またはペプチダーゼを作用させてもよい。
得られたポリペプチドを単離・精製する方法も当該分野においてよく知られており、例えば、各種クロマトグラフィー、塩析、電気泳動、限外濾過等の方法がある。
組み換え法により本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドを製造することもできる。組み換え法によるポリペプチドの製造は当業者に公知の方法、例えばＳａｍｂｒｏｏｋらのＭｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ ２ｎｄ Ｅｄ．，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ（１９８９）に記載された方法により行うことができるが、以下に典型例を示す。
先ず、本発明のポリペプチドをコードするＤＮＡをクローニングする。ＤＮＡクローニングの手段としては、例えば、本発明のポリペプチドの部分塩基配列を有する合成ＤＮＡプライマーを用いて、当該分野で公知の方法、例えばＰＣＲ法により増幅することができる。クローン化されたＤＮＡを適切な発現ベクター中に連結し、適切な宿主中に導入して宿主を形質転換させ、形質転換宿主を培養することにより発現されたポリペプチドを得ることができる。クローン化されたＤＮＡを適切な発現ベクター中に連結する際に、適切なプロモーターの下流に連結して発現を促進し、ポリペプチドを多く得ることが好ましい。なお、ヒトＶＷＦのヌクレオチド配列は、例えば、ＧｅｎＢａｎｋ受託番号ＮＭ０００５５２としてデータベースに登録されており、利用可能である。
発現ベクターとしては、大腸菌由来のプラスミド（例えば、ｐＢＲ３２２、ｐＢＲ３２５、ｐＵＣ１２、ｐＵＣ１３等）、枯草菌由来のプラスミド（例えば、ｐＵＢ１０、ｐＴＰ５、ｐＣ１９４等）、酵母由来のプラスミド（例えば、ｐＳＨ１９、ｐＳＨ１５等）、バクテリオファージ（例えば、λファージ等）、バキュロウイルス、動物ウイルス（例えば、レトロウイルス、ワクシニアウイルス等）、あるいはｐＡ１−１１、ｐＸＸＴ１、ｐＲｃ、ｐｃＤＮＡＩ等がある。これらのベクターおよび他のベクターは当業者によく知られており、市販されているものも多い（例えば、アマシャム・バイオサイエンス社から市販されているｐＧＥＸ−６Ｐ−１は、タグ蛋白であるグルタチオン−Ｓ−トランスフェラーゼとの融合蛋白を発現させるベクターである）。
宿主としては、細菌細胞、例えば大腸菌（例、Ｋ１２株、ＨＢ１０１株、ＪＭ１０３株、ＪＡ２２１株、Ｃ６００株、ＢＬ２１株等）、枯草菌、ストレプトコッカス属、スタフィロコッカス属、エンテロコッカス属；真菌細胞、例えば酵母細胞およびアスペルギルス属細胞；昆虫細胞、例えばドロソフィラＳ２およびスポドプテラＳｆ９細胞；動物細胞、例えばＣＨＯ、ＣＯＳ、ＨｅＬａ、Ｃ１２７、３Ｔ３、ＢＨＫ、２９３細胞等の動物細胞；ならびに植物細胞等がある。
プロモーターとしては、目的ポリペプチドをコードするＤＮＡの発現に用いる宿主に適したものであればよく、大腸菌宿主の場合には、例えばｔｒｐプロモーター、ｌａｃプロモーター、ｒｅｃＡプロモーター等が用いられ、枯草菌宿主の場合には、例えばＳＰＯ１プロモーター、ＳＰＯ２プロモーター、ｐｅｎＰプロモーター等が用いられ、酵母宿主の場合には、例えばＰＨＯ５プロモーター、ＰＧＫプロモーター等が用いられ、昆虫宿主の場合には、例えばＰ１０プロモーター、ポリヘドロンプロモーター等が用いられ、動物細胞宿主の場合には、例えばＳＶ４０初期プロモーター、ＳＲαプロモーター、ＣＭＶプロモーター等が用いられる。
発現ベクターは、所望により、エンハンサー、スプライシングシグナル、ポリＡ付加シグナル、選択マーカー（抗生物質耐性遺伝子（例、メトトレキセート耐性遺伝子、アンピシリン耐性遺伝子、ネオマイシン耐性遺伝子等）、ジヒドロ葉酸還元酵素遺伝子等）をさらに含んでいてもよい。
宿主細胞の形質転換は上記Ｓａｍｂｒｏｏｋらのテキストをはじめとする多くのテキストにある方法により行なうことができ、例えばリン酸カルシウム法、ＤＥＡＥ−デキストランを用いる方法、マイクロインジェクション、エレクトロポレーション、ウイルス感染等がある。
形質転換体を培養する際、使用される培地としては液体培地が適当であり、それぞれの宿主の種類に応じて好ましい培地組成、培養条件が当該分野において公知であり、当業者はこれらの培地組成、培養条件を選択できる。
翻訳ポリペプチドを、小胞体内腔、ペリプラスミックスペースまたは細胞外環境へ分泌させるために、適当な分泌シグナルを発現するポリペプチドに組み込むことができる。これらのシグナルはポリペプチドに本来的なものであってもよく、あるいは異種性のシグナルでもよい。
発現された組み換えポリペプチドは周知の方法により、組換え細胞培養物から回収および精製でき、その方法には、例えば硫酸アンモニウムまたはエタノール沈殿、有機溶媒による沈殿、電気泳動、限外濾過、陰イオンまたは陽イオン交換クロマトグラフィー、ホスホセルロースクロマトグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィー、親和性クロマトグラフィー、ヒドロキシルアパタイトクロマトグラフィーおよびレクチンクロマトグラフィー等がある。高速液体クロマトグラフィーを精製に用いるのが好ましい。ポリペプチドが単離および／または精製中に変性した場合、例えば、細菌中の封入体として産生された場合、再び活性なコンホーメーションにするために、ポリペプチド再生のための公知の技法、例えば尿素処理を用いることができる。
以下に、本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドの活性測定、ならびにそれらを含む診断組成物またはキット等について説明する。以下の説明はＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドに関するものであるが、以下の説明が変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドについても適用できることは当業者に明らかである。
対象におけるＡＤＡＭＴＳ−１３活性は、本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドを用いて、例えば、以下のようにして測定することができる。適当な反応条件下において、本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドと正常対象から得た血漿とを接触させて、生成するポリペプチド断片を例えばＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル（以下、「ＳＤＳ−ＰＡＧＥ」という）により分析し、これを対照とし、本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドと対象から得た血漿とを接触させて同様にＳＤＳ−ＰＡＧＥを行なった後クーマシーブルーあるいは銀染色等で蛋白を染色して生成物を分析し、バンド位置、濃さ等を対照と比較する。あるいはＳＤＳ−ＰＡＧＥからウェスタンブロッティングを行なってもよい。なお、反応液は、ＡＤＡＭＴＳ−１３の活性化因子であるＢａ^２＋などの２価金属イオンを含み、さらにＡＤＡＭＴＳ−１３の至適ｐＨ８ないし９の緩衝液を含むことが好ましい。
したがって、本発明は、上記のごとく本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドに対象から得た血漿を接触させ、反応生成物を分析することを特徴とする、対象血漿中のＡＤＡＭＴＳ−１３活性測定方法に関する。
また、本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドを含む、対象におけるＡＤＡＭＴＳ−１３活性の低下または欠失、ひいてはＴＴＰの存在またはＴＴＰ素質、あるいはＴＴＰの確定診断およびＴＴＰとＨＵＳとの識別をインビトロで調べるための診断組成物にも関する。さらに本発明は、本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドを必須構成成分として含む、対象におけるＡＤＡＭＴＳ−１３活性の低下または欠失、ひいてはＴＴＰの存在またはＴＴＰ素質、あるいはＴＴＰの確定診断およびＴＴＰとＨＵＳとの識別をインビトロで調べるためのキットにも関する。キットには取扱説明書を添付するのが通例である。
本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドは、そのＮ末端および／またはＣ末端にタグ配列が結合していてもよい。以下の説明はＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドに関するものであるが、変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドに関しても同様にタグを付すことができ、同様に使用できることは、当業者に明らかである。タグ配列はいかなるものであってもよいが、ＡＤＡＭＴＳ−１３による切断生成物の検出、定量、分離等を容易化させるものが好ましい。また、タグ配列は、本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドを固相に固定化するためのものであってもよい。このようなタグ配列を用いて固相に固定化されたＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドも本発明に包含される。タグ配列としては、蛋白（例えば、グルタチオントランスフェラーゼ（以下、「ＧＳＴ」という）、ルシフェラーゼ、β−ガラクトシダーゼ等）、ペプチド（例えば、Ｈｉｓタグ等）、カップリング剤（カルボジイミド試薬等）、各種標識（例えば、放射性標識、発色団、酵素等）等があり、当業者は目的に応じて、タグの種類を選択することができる。また、タグ付加方法も当業者のよく知るところである。
例えば、実施例１で詳述するように、大腸菌発現ベクターｐＧＥＸ−６Ｐ−１に、本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドをコードするＤＮＡを挿入し、本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドのＮ末端にタグとしてＧＳＴが融合した融合蛋白を得てもよい。その際、例えばグルタチオンセファロースカラムを用いるアフィニティークロマトグラフィーにより精製することもできる。例えばＧＳＴ蛋白のごとき高分子物質を融合させておくと、反応後、分子量が大きく異なる２つの断片を分析すればよく、例えば反応生成物をＳＤＳ−ＰＡＧＥにおいて分離し、解析することが容易となる。また、上記の例において抗ＧＳＴ抗体が使用できる場合には、これを用いてウェスタンブロットを行なうこともできる。
また、例えば、本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドのＣ末端にタグ配列としてルシフェラーゼやガラクトシダーゼを融合させておき、Ｎ末端にＧＳＴを融合させておく。グルタチオンビーズ等で融合蛋白をトラップし、ＡＤＡＭＴＳ−１３での切断後に遊離したタグ付き生成物を、公知のルシフェラーゼあるいはガラクトシダーゼ活性測定方法により定量することにより、ＡＤＡＭＴＳ−１３活性を定量することもできる。
さらに、タグ配列としては、公知のＨｉｓタグや抗Ｍｙｃタグ等も使用できる。例えば、本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドのＮ末端にＨｉｓタグを付加して固相に固定化し、Ｃ末端にセイヨウワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）標識した抗Ｍｙｃタグを付加しておく。ＡＤＡＭＴＳ−１３との反応後、液相に遊離したＨＲＰを公知の方法で比色定量するすることにより、ＡＤＡＭＴＳ−１３活性を測定することができる。
さらに以下のような具体例も本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドにタグを付したものと考えられる。すなわち、活性測定法が確立されている既知蛋白を選択し、該既知蛋白の活性を保持するように該既知蛋白のアミノ酸配列中に本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドのアミノ酸配列を挿入して融合蛋白を得る。この融合蛋白を対象から得た血漿と反応させ、血漿中のＡＤＡＭＴＳ−１３活性により切断部位が切断されると元の既知蛋白の活性も消失するようにしておく。このような融合蛋白を用いて、その活性の消失の程度を調べることにより血漿中のＡＤＡＭＴＳ−１３活性を測定することもできる。
また、本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドは、例えば、検出を可能または容易にするタグを付する、あるいは固相に固定化する等により、ハイスループット化されたＡＤＡＭＴＳ−１３活性測定に適したものとすることもできる。したがって、本発明は、好ましくはタグの付いた本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドを用いることを特徴とする、対象から得た血漿中のＡＤＡＭＴＳ−１３活性についての活性測定法、好ましくはハイスループット化された測定方法にも関する。また本発明は、タグの付いた本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドを含む血漿ＡＤＡＭＴＳ−１３活性測定用組成物またはキットにも関する。
さらなる態様において、本発明は、上記診断組成物または上記キットを製造するための、上記のいずれかのＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドの使用に関するものである。

Ａ．ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドの製造
上述のごとく、ＡＤＡＭＴＳ−１３はＶＷＦのＴｙｒ^１６０５−Ｍｅｔ^ｌ６０６間のペプチド結合を特異的に切断する。しかしながら、実際にはＶＷＦは成熟サブユニットが多数会合して巨大分子化しており、従来の測定法のように、これをそのまま基質として使用したのでは定量性、再現性、操作性等に問題を生じる。本発明において、ＡＤＡＭＴＳ−１３の酵素活性測定は、この切断部位の周辺配列を含む成熟ＶＷＦサブユニットの部分配列を基質として利用することとして、かかる問題を解決した。
ＡＤＡＭＴＳ−１３の基質特異性を維持するためには、一般的には、部分配列は一定の長さを有するものとすべきであろうが、大腸菌による組み換え発現による製造に適したものとするためには部分配列は小さいほうがよい。また、基質として使用する場合、ＳＨ基を有するシステイン残基がポリペプチド中に存在すると、これにより多量体化し、定量性、取り扱い、再現性等に問題を生じるので、部分配列としてはシステイン残基を含まない領域が望ましい。このような条件を満たすものの１つとして、ポリペプチドＡｓｐ^ｌ４５９−Ａｒｇ^１６６８を選択した。すなわち、この領域は切断部位を含み、かつＣｙｓ残基を含まない最大のサイズの領域である。
市販のヒト臍帯静脈内皮細胞より抽出したＲＮＡを鋳型にしてＲＴ−ＰＣＲを行い、ＶＷＦサブユニットのＡｓｐ^１４５９−Ａｒｇ^１６６８領域（配列番号：２）をコードするｃＤＮＡを得た。このとき使用したセンス方向のプライマーは５’−ｃｇｇｇａｔｃｃＧＡＣＣＴＴＧＣＣＣＣＴＧＡＡＧＣＣＣＣＴＣ−３’（配列番号：７）、アンチセンス方向のプライマーは５’−ｃｇｇａａｔｔｃＴＣＡＧＴＧＡＴＧＧＴＧＡＴＧＧＴＧＡＴＧＣＣＴＣＴＧＣＡＧＣＡＣＣＡＧＧＴＣＡＧＧＡ−３’（配列番号：８）であった（小文字部分は、サブクローニングのために付加した制限酵素認識部位を示す）。アンチセンス方向のプライマーには６ｘＨｉｓタグ配列を付加してある。これをＢａｍＨＩおよびＥｃｏＲＩで切断処理した後、同じくＢａｍＨＩおよびＥｃｏＲＩで切断処理した大腸菌発現ベクターｐＧＥＸ−６Ｐ−１（アマシャム・バイオサイエンス社）に挿入した。すなわち、ＶＷＦサブユニットのＡｓｐ^１４５９−Ａｒｇ^１６６８領域のＮ端側にグルタチオン−Ｓ−トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）が、Ｃ端側に６ｘＨｉｓタグ配列が結合した融合蛋白質（以下、ＧＳＴ−Ａｓｐ^１４５９−Ａｒｇ^１６６８−Ｈと表記）が発現されるようにした。得られた発現プラスミドを大腸菌ＢＬ２１株に導入し、ＩＰＴＧ誘導によって一過性に発現させ、ニッケル親和性クロマトグラフィーとグルタチオン親和性クロマトグラフィーで精製して、融合蛋白ＧＳＴ−Ａｓｐ^１４５９−Ａｒｇ^１６６８−Ｈを得た。
さらに、上記のものよりも短いポリペプチドは大腸菌などを用いた組み換え法による製造にさらに適したものである。そこで、Ｇｌｕ^１５５４−Ａｒｇ^１６６８（配列番号：３）、Ａｓｐ^１５８７−Ａｒｇ^１６６８（配列番号：４）、Ａｓｐ^１５９６−Ａｒｇ^１６６８（配列番号：５）およびＡｓｐ^１５９６−Ａｒｇ^１６５９（配列番号：６）領域をコードするｃＤＮＡを得るために３種類のセンス方向プライマー５’−ｃｇｇｇａｔｃｃＧＡＧＧＣＡＣＡＧＴＣＣＡＡＡＧＧＧＧＡＣＡ−３’（配列番号：９）、５’−ｃｇｇｇａｔｃｃＧＡＣＣＡＣＡＧＣＴＴＣＴＴＧＧＴＣＡＧＣＣ−３’（配列番号：１０）、５’−ｃｇｇｇａｔｃｃＧＡＣＣＧＧＧＡＧＣＡＧＧＣＧＣＣＣＡＡＣＣ−３’（配列番号：１１）と１種類のアンチセンス方向プライマー５’−ｃｇｇａａｔｔｃＴＣＡＧＴＧＡＴＧＧＴＧＡＴＧＧＴＧＡＴＧＴＣＧＧＧＧＧＡＧＣＧＴＣＴＣＡＡＡＧＴＣＣ３’（配列番号：１２）を用い、これらを組み合わせて同様の過程を行い、４種類の融合蛋白質ＧＳＴ−Ｇｌｕ^１５５４−Ａｒｇ^１６６８−Ｈ、ＧＳＴ−Ａｓｐ^１５８７−Ａｒｇ^１６６８−Ｈ、ＧＳＴ−Ａｓｐ^１５９６−Ａｒｇ^１６６８−Ｈ、ＧＳＴ−Ａｓｐ^１５９６−Ａｒｇ^１６５９−Ｈが発現されるプラスミドも作成した。これら発現プラスミドを大腸菌ＢＬ２１株に導入し、ＩＰＴＧ誘導によって一過性に発現させ、ニッケル親和性クロマトグラフィーとグルタチオン親和性クロマトグラフィーで精製して、各融合蛋白を得た。
このようにして得た５種類の融合蛋白質ＧＳＴ−Ａｓｐ^１４５９−Ａｒｇ^１６６８−Ｈ、ＧＳＴ−Ｇｌｕ^１５５４−Ａｒｇ^１６６８−Ｈ、ＧＳＴ−Ａｓｐ^１５８７−Ａｒｇ^１６６８−Ｈ、ＧＳＴ−Ａｓｐ^１５９６−Ａｒｇ^１６６８−Ｈ、ＧＳＴ−Ａｓｐ^１５９６−Ａｒｇ^１６５９−Ｈは、ＡＤＡＭＴＳ−１３によって特異的に切断された場合、すなわち、ＶＷＦサブユニットのＴｙｒ^１６０５−Ｍｅｔ^１６０６間に相当する部位で切断された場合、それぞれ４３．１ｋＤａ（ＧＳＴ部分を含む）と７．７ｋＤａ（Ｈｉｓ６タグ配列部分を含む）の断片、３２．７ｋＤａと７．７ｋＤａの断片、２９．０ｋＤａと７．７ｋＤａの断片、２８．０ｋＤａと７．７ｋＤａの断片、２８．０ｋＤａと６．７ｋＤａの断片に分離するはずである。
Ｂ．ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドと血漿ＡＤＡＭＴＳ−１３との反応
これら融合蛋白質を、正常血漿０．２５μＬと３７℃で０時間あるいは２時間反応させた。反応液総容量は２０μＬで、２５ｍＭ Ｔｒｉｓ（ｐＨ８．０）、１０ｍＭ ＢａＣｌ_２、４ｍＭ グルタチオン、１ｍＭ ＡＰＭＳＦを含んでいた。これをＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動で分離した後、抗ＧＳＴ抗体を一次抗体として用いたウェスタンブロットを行った。結果を図１に示す。
２時間反応させた場合、ＧＳＴ−Ａｓｐ^１５８７−Ａｒｇ^１６６８−Ｈ、ＧＳＴ−Ａｓｐ^１５９６−Ａｒｇ^１６６８−Ｈでは予想された断片（図中の矢頭）が明確に生じた。一方、それよりも領域の長いＧＳＴ−Ｇｌｕ^{１ ５５４}−Ａｒｇ^１６６８−Ｈでも予想位置に非常に薄いバンドが生じた。さらに領域の長いＧＳＴ−Ａｓｐ^１４５９−Ａｒｇ^１６６８−Ｈ、あるいは領域の短いＧＳＴ−Ａｓｐ^１５９６−Ａｒｇ^１６５９−Ｈでは断片が生じない、あるいは生じにくいことがわかった。つまり、ＧＳＴ−Ａｓｐ^１５８７−Ａｒｇ^１６６８−ＨとＧＳＴ−Ａｓｐ^１５９６−Ａｒｇ^１６６８−ＨはＡＤＡＭＴＳ−１３の基質として適していることが示唆された。
Ｃ．ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドの基質特異性および反応の定量性
次に、Ｂで得られた特に好ましいＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドのうち、ＧＳＴ−Ａｓｐ^ｌ５９６−Ａｒｇ^１６６８−Ｈの基質としての特異性を調べるため、ＴＴＰ患者家族の血漿と反応させた。反応条件および検出方法は上述と同じである。結果を図２に示す。
２名の患者血漿それぞれとＧＳＴ−Ａｓｐ^１５９６−Ａｒｇ^１６６８−Ｈを反応させた場合、正常血漿との反応で生じる断片（図中の矢頭）は検出されなかった。一方、別の方法でＡＤＡＭＴＳ−１３の活性が正常血漿の約半分しかないことがわかっている家族Ａの母と姉、家族Ｂの父と母の血漿では、正常血漿よりも少ない量の断片が生じた。さらに活性が低いことがわかっている家族Ａの父の血漿では、より少ない量の断片しか生じなかった。以上の結果から、ＧＳＴ−Ａｓｐ^１５９６−Ａｒｇ^１６６８−Ｈは血漿中のＡＤＡＭＴＳ−１３で定量的に切断され、かつ、他の酵素では切断されない、特異的な人工基質であることが示唆された。

産業上の利用の可能性

本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３活性測定用基質ポリペプチドは、基質特異性を維持しつつも、大腸菌による組み換え発現による製造に適した小型のものである。また、ＳＨ基を有するシステイン残基がポリペプチド中に存在しないので、多量体化の問題を回避でき、定量性、取り扱い、再現性等に関しても問題を生じることが少ない。したがって、本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３活性測定用基質ポリペプチドにより、簡便で、特異的で、定量性、再現性が良く、感度の高いＡＤＡＭＴＳ−１３活性測定が可能となる。また本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３活性測定用基質は多検体処理能にも適する。例えば、本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３活性測定用基質を固定化、標識する等により多検体処理能を行うこともできる。
本発明によりＴＴＰの効果的な治療およびＴＴＰ発症予知が可能となる。具体的には、本発明によって、ＴＴＰ発症の副作用を持つ薬剤の服用時や、ＴＴＰを誘発しやすい妊娠時等に血中ＡＤＡＭＴＳ−１３活性を定期的に測定し、それが低下していないかどうか、すなわち、ＴＴＰ発症の徴候が現れていないかどうか、といった臨床情報を得ることが可能となる。また、本発明は、ＡＤＡＭＴＳ−１３活性と種々の疾患との関連を疫学的研究で明らかにするための強力な道具となる。また、本発明により患者がＴＴＰにかかっていることの迅速な確定診断を行なうこともできる。さらに本発明により患者のＡＤＡＭＴＳ−１３活性を的確に測定することができるので、ＴＴＰとＨＵＳとを識別することもできる。

配列番号：１は野生型ヒトＶＷＦのアミノ酸配列を示す。
配列番号：２は本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドＡｓｐ^１４５９−Ａｒｇ^１６６８のアミノ酸配列を示す。
配列番号：３は本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドＧｌｕ^１５５４−Ａｒｇ^１６６８のアミノ酸配列を示す。
配列番号：４は本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドＡｓｐ^１５８７−Ａｒｇ^１６６８のアミノ酸配列を示す。
配列番号：５は本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドＡｓｐ^１５９６−Ａｒｇ^１６６８のアミノ酸配列を示す。
配列番号：６は本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドＡｓｐ^１５９６−Ａｒｇ^１６５９のアミノ酸配列を示す。
配列番号：７は本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドＡｓｐ^１４５９−Ａｒｇ^１６６８を製造するために使用したセンスプライマーのヌクレオチド配列を示す。
配列番号：８は本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドＡｓｐ^１４５９−Ａｒｇ^１６６８を製造するために使用したアンチセンスプライマーのヌクレオチド配列を示す。
配列番号：９は本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドＧｌｕ^１５５４−Ａｒｇ^１６６８、Ａｓｐ^１５８７−Ａｒｇ^１６６８、Ａｓｐ^１５９６−Ａｒｇ^１６６８、Ａｓｐ^１５９６−Ａｒｇ^１６５９を製造するために使用したセンスプライマーのヌクレオチド配列を示す。
配列番号：１０は本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドＧｌｕ^１５５４−Ａｒｇ^１６６８、Ａｓｐ^１５８７−Ａｒｇ^１６６８、Ａｓｐ^１５９６−Ａｒｇ^１６６８、Ａｓｐ^１５９６−Ａｒｇ^１６５９を製造するために使用したセンスプライマーのヌクレオチド配列を示す。
配列番号：１１は本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドＧｌｕ^１５５４−Ａｒｇ^１６６８、Ａｓｐ^１５８７−Ａｒｇ^１６６８、Ａｓｐ^１５９６−Ａｒｇ^１６６８、Ａｓｐ^１５９６−Ａｒｇ^１６５９を製造するために使用したセンスプライマーのヌクレオチド配列を示す。
配列番号：１２は本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドＧｌｕ^１５５４−Ａｒｇ^１６６８、Ａｓｐ^１５８７−Ａｒｇ^１６６８、Ａｓｐ^１５９６−Ａｒｇ^１６６８、Ａｓｐ^１５９６−Ａｒｇ^１６５９を製造するために使用したアンチセンスプライマーのヌクレオチド配列を示す。

Claims (13)

1. 配列表の配列番号：１に示された野生型ヒトＶＷＦのアミノ酸配列のアミノ酸１５８７から始まり、アミノ酸１６６８で終わるＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチド。
2. 配列表の配列番号：１に示された野生型ヒトＶＷＦのアミノ酸配列のアミノ酸１５９６から始まり、アミノ酸１６６８で終わるＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチド。
3. 請求項１または２に記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドに対して少なくとも９０％以上のアミノ酸配列同一性を有し、ＡＤＡＭＴＳ−１３に対する特異性を保持している変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチド。
4. 請求項１または２に記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドのアミノ酸配列において、１個ないし数個のアミノ酸の欠失、挿入、置換または付加（あるいはこれらの組み合わせ）により、請求項１または２に記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドとは異なっており、ＡＤＡＭＴＳ−１３に対する特異性を保持している変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチド。
5. Ｎ末端および／またはＣ末端にタグ配列が結合している請求項１ないし４のいずれかに記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチド。
6. タグが蛋白、ペプチド、カップリング剤、放射性標識、発色団からなる群より選択されるものである請求項５記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチド。
7. タグが固相に固定化するためのものである請求項５または６に記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチド。
8. 固相に固定化された請求項７記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチド。
9. 請求項１ないし８のいずれかに記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドと正常対象から得た血漿とを接触させて、生成するポリペプチド断片を分析してこれを対照とし、請求項１ないし８のいずれかに記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドと対象から得た血漿とを接触させて生成するポリペプチド断片を同様に分析し、対照と比較することを特徴とする、対象中のＡＤＡＭＴＳ−１３活性測定方法。
10. 請求項１ないし８のいずれかに記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドを用いることを特徴とする、対象から得た血漿中のＡＤＡＭＴＳ−１３活性のハイスループット測定方法。
11. 請求項１ないし８のいずれかに記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドを含む、対象におけるＡＤＡＭＴＳ−１３活性低下または欠失をインビトロで調べるための診断組成物。
12. 請求項１ないし８のいずれかに記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドを必須構成成分として含む、対象におけるＡＤＡＭＴＳ−１３活性低下または欠失をインビトロで調べるためのキット。
13. 請求項１１記載の診断組成物または請求項１２記載のキットを製造するための、請求項１ないし８のいずれか１項に記載のＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドまたは変異ＡＤＡＭＴＳ−１３基質ポリペプチドの使用。

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