JP3770624B2 - ウィルス感染・増殖抑制剤 - Google Patents
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Description
【０００１】
【産業上の利用分野】
本発明は、副作用の少ないペプチド性のウィルス感染・増殖抑制剤に関する。
【０００２】
【従来の技術】
ウィルス感染による疾患の克服のために、これまで多くの努力がなされてきた。しかし近年、世界的にも猛威をふるっているヒト免疫不全ウィルス（ＨＩＶ）や毎年流行するインフルエンザウィルスのようにいまだ有効な予防法や治療法の無いものもある。ウィルス感染による疾患に対する治療法として抗ウィルス剤による化学療法がある。しかし現在のところ、全身的に投与され明白な効果を示す抗ウィルス剤はほとんど無い。その理由として、ウィルスは細胞内で増殖し、増殖のための機能をほとんど細胞に依存している。つまりウィルスは感染後、その増殖を治療すべき人体の構成細胞自体の増殖機能を利用して行っている。従ってウィルスの増殖を抑える化学物質の多くは細胞にも作用して毒性を示すからである。抗ウィルス剤の問題点としては上述のように薬剤の選択毒性が低いこと以外にもウィルス感染症の特徴から由来するいくつかの問題点がある。特に急性・全身性のウィルス感染症では、症状が現れる時期がウィルスの体内増殖のピークが過ぎてしまった後なので、むしろウィルスの感染を阻止し増殖を抑制する物質が求められている。この様なウィルスの感染を防御する方法としてワクチンの予防接種による方法があるが、この方法はしばしばアレルギー反応や種々の副作用を示すことが知られており、しかもウィルスの変異に対しては対処できないのが現実である。
【０００３】
この様な状況において、本発明者らは、ラクトフェリン（ＬＦ）、トランスフェリン、オボトランスフェリンなど鉄結合能を有するタンパク質が、インフルエンザウィルスやサイトメガロウィルス（ＣＭＶ）の感染・増殖を抑制することを見出し特許出願を行った（特開平２−２３３６１９）。ＬＦは、乳中に分泌される鉄結合性のタンパク質で抗菌活性があることが知られている。ＬＦは、ヒトおよびウシ由来のものについて詳細な研究が行われており、ヒトＬＦ、ウシＬＦともその全アミノ酸配列がすでに決定されている(M.W. Rey,et al., Neucleic Acid Res.,Vol.18,5288,1990およびP.E. Mead et al., Neucleic Acid Res.,Vol.18,7167,1990)。特開平１−２３３２２６にはＬＦ等の乳タンパク質を有効成分とする抗ウィルス剤が開示されており、この中にＬＦが、外被性ウィルスおよび非外被性ウィルスに対して有効であることが記載されている。また最近、本発明者らは、ＨＩＶに対するこれら鉄結合性タンパク質の感染・増殖抑制効果についても確認し、ＬＦを有効成分とするＨＩＶ感染・増殖抑制剤について特許出願を行った（特願平４−２２０６３５）。
【０００４】
この様に、ＬＦなど鉄結合性タンパク質はウィルスの感染・増殖抑制効果を持つことが次第に明らかとなり、抗ウィルス剤として、その実用化が期待されてきた。これらタンパク質が実際に感染・増殖抑制剤として用いられるためには、(i)体内に投与した場合抗原性の点で問題が無いこと、(ii)大量に供給できることが必要である。これらの鉄結合性タンパク質のうち、ウシＬＦやウシトランスフェリン、又は鶏卵から得られるオボトランスフェリンは大量に供給できるが人体内に投与した場合抗原性を示すという問題がある。一方、ヒトＬＦは抗原性に関しては問題無いが大量に供給することが困難である。
この様な問題を解決するために、本発明者らはＬＦ由来のペプチドフラグメントのうち〔化４〕および〔化５〕が抗ウィルス活性を持つことを見出し特許出願をおこなった（特願平５‐６９２１０）。
【０００５】
【化４】
Cys-Phe-Gln-Trp-Gln-Arg-Asn-Met-Arg-Lys-Val-Arg-Gly-Pro-Pro-Val-Ser-Cys
（ただし、式中 Cys は還元型でもよく、またペプチド内の２個の Cys が−Ｓ−Ｓ−結合して酸化型となってもよい。 )
【０００６】
【化５】
Cys-Arg-Arg-Trp-Gln-Trp-Arg-Met-Lys-Lys-Leu-Gly-Ala-Pro-Ser-Ile-Thr-Cys
（ただし、式中Cys は還元型でもよく、またペプチド内の２個のCysが−Ｓ−Ｓ−結合して酸化型となってもよい。)
【０００７】
これらのペプチドはそれぞれヒトＬＦの２０〜３７残基およびウシＬＦの１９〜３６残基に相当するもので分子内のＳ−Ｓ結合は抗ウィルス活性に必須ではなかった。これらのペプチドは天然のＬＦに比べて極めて鎖長が短いため、化学合成や遺伝子操作による合成により容易に供給することができる。またマウスを用いた感染防御試験においては、ＣＭＶの感染を完全に抑制するのに必要な〔化４〕および〔化５〕のペプチド量は、 0.1g/体重kgであった。
【本発明が解決しようとする課題】
【０００８】
本発明者らは、さらに強力な抗ウィルス活性を有するＬＦフラグメントを得る目的で、いくつかのＬＦフラグメントを化学的に合成し、その抗ウィルス活性を検討することで、ヒトＬＦの抗ウィルス活性に関する必須部分を検索した。その結果、ヒトＬＦでは次の〔化６〕で示される２５〜４０残基部分が、抗ウィルス活性に必須であることを見出した。なお以後のＬＦペプチドの残基の番号は天然のヒトラクトフェリンのアミノ酸配列に付与された番号を用いる。
【０００９】
【化６】
Arg-Asn-Met-Arg-Lys-Val-Arg-Gly-Pro-Pro-Val-Ser-Cys-Ile-Lys-Arg
【００１０】
本発明者らは、この活性部分を含み、さらに高活性な抗ウィルスペプチドを開発する目的で、〔化６〕に示したペプチドを中心にＮ端側およびＣ端側にペプチド鎖を延長したところ、ヒトＬＦでは１〜５２残基〔化７〕に相当する部分および２５〜５２残基〔化８〕に相当する部分が、これまで知られていたＬＦ由来ペプチドに比べてより高活性であることを見出した。
【００１１】
【化７】
Gly-Arg-Arg-Arg-Arg-Ser-Val-Gln-Trp-Cys-Ala-Val-Ser-Gln-Pro-Glu-Ala-Thr-Lys-Cys-Phe-Gln-Trp-Gln-Arg-Asn-Met-Arg-Lys-Val-Arg-Gly-Pro-Pro-Val-Ser-Cys-Ile-Lys-Arg-Asp-Ser-Pro-Ile-Gln-Cys-Ile-Gln-Ala-Ile-Ala-Glu
【００１２】
【化８】
Arg-Asn-Met-Arg-Lys-Val-Arg-Gly-Pro-Pro-Val-Ser-Cys-Ile-Lys-Arg-Asp-Ser-Pro-Ile-Gln-Cys-Ile-Gln-Ala-Ile-Ala-Glu
【００１３】
また、これらのペプチドフラグメントのうち〔化７〕は、分子内に２つのＳ−Ｓ結合をもつことができるが、このＳ−Ｓ結合はウイルス活性の発現には必須ではなかった。Ｓ−Ｓ結合は存在していても、存在していなくとも良い。
従って、〔化７〕のCys は還元型であってもあるいは相互にＳ−Ｓ結合して酸化型になってもよい。
【００１４】
これらのＬＦフラグメントに関するこれまでの知見としては、ヒトＬＦの１〜５０残基部分がＬＦ分子の受容体結合領域であるとする報告（B.F. Anderson,et al,J.Mol.Biol.,209,711,1989）、ヒトＬＦの４〜５２に相当するペプチドがＬＦとリンパ球の結合を阻害したという報告（D.Legrand,et al,Biochemistry,31,9243,1992)、ヒトＬＦの１〜４７残基に相当するペプチドおよびウシＬＦの１７〜４１残基に相当するペプチドが抗菌活性をもつという報告(W.Bellamy,et al., Biochem Biophys.Acta,1121,130,1992 ）などがあるが抗ウィルス活性についての記載は無い。またこの抗菌活性に関して、特開平５−７８３９２ではヒトＬＦの１９〜２９残基あるいはウシＬＦ１８〜２８残基部分を含むペプチドが、特開平５−１４８２９５ではヒトＬＦの２１〜２６残基あるいはウシＬＦ２０〜２４残基部分を含むペプチドが、特開平５−１４８２９６ではウシＬＦの２１〜２５残基あるいはウシＬＦ２５〜２９残基部分を含むペプチドが、特開平５−１４８２９７ではウシＬＦの２０〜２４残基部分を含むペプチドについてそれぞれ記載されているが、いずれも本発明の抗ウィルス効果に必須な部位とは異なっている。
【００１５】
【課題を解決するための手段】
本発明は、次の〔化９〕で表されるペプチドを有効成分とするウィルス感染・増殖抑制剤に関する。
また、このペプチドは薬理的に許容される塩の形となっていてもよい。
【００１６】
【化９】
Arg-Asn-Met-Arg-Lys-Val-Arg-Gly-Pro-Pro-Val-Ser-Cys-Ile-Lys-Arg
【００１７】
また〔化９〕に示す配列を基にＮ末端側およびＣ末端側にペプチド鎖を延長したペプチドを有効成分とすることができる。このようなペプチドとしては、例えば、前記した、〔化７〕、〔化８〕に示すペプチドが例示される。さらにこれらの薬理的に許容される塩、例えば塩酸塩、酢酸塩なども用いることができる。〔化９〕に示すペプチドは、ヒトＬＦの２５〜４０残基に相当する配列であり、前述のように本発明における抗ウィルス活性に必須な領域である。以下本発明のウィルス感染・増殖抑制剤中の有効成分のＬＦ由来のアミノ酸配列を含むペプチドはヒトＬＦ（２５−４０）のようにＬＦ中のアミノ酸配列の番号で記載する。
本発明のペプチドを得るためには、通常の化学合成による方法、ＬＦのプロテアーゼ分解物から単離する方法、遺伝子組み換えによる方法などどれでもよい。さらに、市販のペプチドシンセサイザー等の合成装置を用いて直鎖ペプチドを得た後、通常の方法でＳ−Ｓ結合を形成させることもできるし、Ｓ−Ｓ結合を形成させなくても良い。
【００１８】
これらのペプチドまたはペプチド誘導体は単独もしくは賦型剤、安定剤を添加して製剤化することができる。本発明のウィルス感染・増殖抑制剤は、経口、注射、座薬として投与することができる。通常は、成人１日あたり０．１〜１．０ｇを投与することにより効果を示す。またこれらのペプチドは、従来から食品素材として用いられているタンパク質の一部なので安全性の面でも問題無い。特にヒト由来のペプチドフラグメントは、その抗原性が非常に低いため実用上好ましい。
【００１９】
以下に本発明によるウィルス感染・増殖抑制剤について実施例により詳細に説明する。なお、合成は、泉谷ら著「ペプチド合成の基礎と実験」（1985年丸善刊）p194-233に記載の方法に従い固相合成法にて行った。
【実施例１】
【００２０】
ヒトＬＦ（２５−４０）の合成
ペプチドシンセサイザー４３１Ａ（ＡＢＩ社）により、パラヒドロキシメチルフェノキシメチルポリスチレン（ＨＭＰ）樹脂を用い、９−フルオレニルメチルオキシカルボニル（Ｆｍｏｃ）基をアミノ末端の保護基としてＣ末端側からペプチド鎖を順次延長することにより０．２５ｍｍｏｌスケールで直鎖保護ペプチドを合成した。得られたＨＭＰ樹脂結合保護ペプチド１２３３ｍｇをフェノール、１，２−エタンジチオール、チオアニソール存在下、トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）によりペプチドのＨＭＰ樹脂からの切り離しと保護基の除去を同時に行った。減圧濃縮によりＴＦＡを除去した後、エチルエーテルで粗ペプチドを結晶化させ、これを５％酢酸に溶解し凍結乾燥を行った。得られた直鎖粗ペプチド５００ｍｇは、ＨＰＬＣ〔カラム：オクタデシル４ＰＷ（２１．５×１５０ｍｍ，東ソー社），溶出：０．１％ＴＦＡを含む水−アセトニトリルにてグラジエント溶出〕により精製しヒトＬＦ（２５−４０）の直鎖精製ペプチド３４０ｍｇを得た。得られた精製ペプチドの純度は、ＨＰＬＣによる分析の結果９３％であった。
【実施例２】
【００２１】
ヒトＬＦ（２５−５２）の合成
実施例１と同様の方法で合成し、純度９６％のヒトＬＦ（２５−５２）の鎖状ペプチド３８６ｍｇを得た。
【実施例３】
【００２２】
Ｎ−アセチル−ヒトＬＦ（２５−４０）−アミド（Ａｃ−ヒトＬＦ（２５−４０）−ＮＨ2）の合成
ペプチドシンセサイザー４３１Ａ（ＡＢＩ社）によりベンズヒドリルアミン樹脂を用い第３ブチルオキシカルボニル（ｔ−Ｂｏｃ）基をアミノ末端の保護基としてＣ末端側から遂次ペプチド鎖を延長することにより０．２５ｍｍｏｌスケールで合成を行った。縮合反応をすべて終えた後、アミノ末端のｔ−Ｂｏｃ基を除去し、無水酢酸でこれをアセチル化した。ＨＦ処理によりペプチドの樹脂からの切り離しと保護基の除去を同時に行った。減圧濃縮によりＨＦを除去し目的の粗Ａｃ−ヒトＬＦ（２５−４０）−ＮＨ2を得た。この粗ペプチドを実施例１と同様にしてＨＰＬＣで精製し、純度９１％の上記精製ペプチド４２ｍｇを得た。
【実施例４】
【００２３】
ヒトＬＦ（１−５２）、〔20Cys(Acm),37Cys(Acm) 〕ヒトＬＦ（１−５２）および〔10CysSH,20Cys(Acm),37Cys(Acm),46CysSH 〕ヒトＬＦ（１−５２）の合成
ペプチドシンセサイザー４３１Ａ（ＡＢＩ社）により、パラヒドロキシメチルフェノキシメチルポリスチレン（ＨＭＰ）樹脂を用い、９−フルオレニルメチルオキシカルボニル（Ｆｍｏｃ）基をアミノ末端の保護基とし、20Cys および37Cys のＳＨ基をアセトアミドメチル（Ａｃｍ）基で保護してＣ末端側から遂次ペプチド鎖を延長することにより０．２５ｍｍｏｌスケールで直鎖保護ペプチドを合成した。得られたＨＭＰ樹脂結合保護ペプチド２３３７ｍｇをフェノール、１，２−エタンジチオール、チオアニソール存在下、トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）によりペプチドのＨＭＰ樹脂からの切り離しと保護基の除去を同時に行った。減圧濃縮によりＴＦＡを除去した後、エチルエーテルで粗ペプチドを結晶化させ、これを５％酢酸に溶解し凍結乾燥を行った。得られた直鎖粗ペプチド９７０ｍｇは、ＨＰＬＣ〔カラム：オクタデシル４ＰＷ（２１．５×１５０ｍｍ，東ソー社），溶出：０．１％ＴＦＡを含む水−アセトニトリルにてグラジエント溶出〕により精製し直鎖精製ペプチド〔10CysSH,20Cys(Acm),37Cys(Acm),46CysSH 〕ヒトＬＦ（１−５２）６０７ｍｇを得た。得られた精製ペプチドの純度は、ＨＰＬＣによる分析の結果９６％であった。このペプチドをフェリシアン化カリウム存在下空気酸化により10Cys,46Cys にＳ−Ｓ結合を形成させさらにＨＰＬＣにて精製することで、純度９０％の〔20Cys(Acm),37Cys(Acm) 〕ヒトＬＦ（１−５２）４５０ｍｇを得た。さらにこのペプチドをヨウ素処理しＡｃｍ基の除去とＳ−Ｓ結合の形成を同時に行い、ＨＰＬＣで精製することでヒトＬＦ（１−５２）１２０ｍｇを得た。ＨＰＬＣによる分析の結果このペプチドの純度は８９％であった。
【実施例５】
【００２４】
ウィルス感染、増殖抑制剤の製造
本実施例においては、上記実施例１〜４の方法により得ることのできたペプチドの注射製剤の生産例を示した。
(i) ヒトＬＦ（２５−４０） 100mg
ヒト血清アルブミン 100mg
上記組成をｐＨ7.0 の0.01M のPBS で溶解し、全量を20mlに調製し、滅菌後、バイアル瓶に2ml ずつ分注し、凍結乾燥密封した。
(ii) ヒトＬＦ（２５−５２) 100mg
ツイーン80 1mg
ヒト血清アルブミン 100mg
上記組成を注射用生理食塩水に溶解し、全量を20mlに調製し、滅菌後、バイアル瓶に2ml ずつ分注し、凍結乾燥密封した。
(iii) ヒトＬＦ（１−５２) 100mg
ツイーン80 1mg
ヒト血清アルブミン 100mg
上記組成を注射用生理食塩水に溶解し、全量を20mlに調製し、滅菌後、バイアル瓶に2ml ずつ分注し、凍結乾燥密封した。
(iv) Ａｃ−ヒトＬＦ（２５−４０）−ＮＨ2 100mg
ツイーン80 2mg
ソルビトール 4ｇ
上記組成をｐＨ7.0 の0.01M のPBS で溶解し、全量を20mlに調製し、滅菌後、バイアル瓶に2ml ずつ分注し、凍結乾燥密封した。
【発明の効果】
【００２５】
本発明の実施により、ウィルス感染・増殖抑制剤が提供される。
本発明によるウィルス感染・増殖阻止作用のある組成物の作用効果を要約すると次のとおりである。
（１）ウィルスの感染を防ぐことができ、また、既感染者に対しては、体内でさらにウィルスが増殖して感染細胞が増加することを防ぐことができる。
（２）通常食品として摂取している成分を有効成分とする組成であるため、投与することによる副作用の心配が少ない。
（３）低分子であるため、ＬＦなど 結合性タンパク質に比べ化学合成法などで比較的容易にしかも大量に調製できる。ゆえに特定の患者の治療に使用が限定されることがなく、広くウィルスの感染・増殖を予防することもできる。
本発明のウィルス感染・増殖抑制剤は、インフルエンザあるいはエイズの予防または治療や臓器移植の際のサイトメガロウィルス感染防御に有用である。
以下に実験例を示し、本発明の効果をさらに詳細に説明する。
【００２６】
【実験例１】
ＬＦ由来ペプチドのサイトメガロウィルス（ＣＭＶ）に対する感染・増殖抑制効果
方法：ＬＦ由来ペプチドを２％血清添加ＭＥＭ培地に溶解し、濾過滅菌しストック溶液とした。このストック溶液を必要に応じて２％血清添加ＭＥＭ培地により希釈して用いた。ヒト胎児繊維芽細胞（ＨＥＬ細胞）を試料を含む２％血清添加ＭＥＭ培地に懸濁させ１０分間インキュベートした。遠心分離により細胞を取り出しさらに２％血清添加ＭＥＭ培地で細胞を２回洗浄した後、細胞を２％血清添加ＭＥＭ培地に懸濁させた。これにヒトＣＭＶ（ＴＡＮＡＫＡ株）を添加し、２４時間培養後、ヒトＣＭＶ陽性血清で蛍光染色し細胞へのヒトＣＭＶの吸着能力を測定した。
【００２７】
結果：表１にヒトＬＦ由来ペプチドのＣＭＶに対する感染・増殖阻害効果を示す。表１に示すペプチドのうち抗ウィルス活性をもつペプチドに共通する配列から、２５〜４０残基部分が活性に必須な構造を含むものと推察された。また表２では、ヒトＬＦ由来ペプチドがＣＭＶの感染・増殖を、コントロールと比較して９０％阻害するのに必要な最少濃度を示している。この結果より、本発明によるペプチドは、天然のＬＦやこれまで知られていたＬＦ由来のペプチドより低濃度で抗ウィルス効果を示すことが明らかとなった。なおここで使用したペプチドのうち本発明を構成するペプチド以外のものについても、実施例１に示した方法と同様にして化学的に合成したものであり、その純度はＨＰＬＣによる分析の結果いずれも８５％以上であることを確認している。
【００２８】
【表１】
ヒトＬＦ由来ペプチドのＣＭＶに対する感染増殖阻害効果
＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
ペプチド*1 Ｓ−Ｓ結合 感染阻害率（％）
＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
ＬＦ(1−52) 10Cys‐46Cys,20Cys‐37Cys 95
ＬＦ(1−52) 10Cys‐46Cys, 95
ＬＦ(1−52) 97
ＬＦ(18‐52) 24
ＬＦ(25‐52) 91
ＬＦ(1‐40) 97
ＬＦ(28‐40) 0
ＬＦ(19‐31) 2
ＬＦ(2‐19) 14
ＬＦ(4‐29) 0
ＬＦ(18‐42) 97
＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
*1 ペプチド濃度は、０．５ｍｇ／ｍｌ
【００２９】
【表２】
ＬＦ由来ペプチドの抗ＣＭＶ効果における最少活性発現濃度
＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
サンプル 最少活性発現濃度*1（mg／ml）
＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
ヒトＬＦ 1.0
ヒトＬＦ（25‐40） 1.0
ヒトＬＦ（25‐52） 0.5
ヒトＬＦ（1−52） 0.05
ヒトＬＦ（18−42） 1.5
＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
*1 ９０％の感染阻止率を示す濃度
【００３０】
【実験例２】
ＬＦ由来ペプチドのＨＩＶに対する感染・増殖抑制効果
方法： ＨＩＶの一株であるＨＴＬＶ−III B 持続感染株であるＭＯＬＴ−４／ＨＴＬＶ−III B（以下ＭＴ−４と略記する）細胞の培養上清をウィルス液として用いた。上清は−８０℃に保存した。検定に用いる細胞はヒトＴ細胞系のＭＴ−４を用いた。ＭＴ−４は１０％牛胎児血清（ＦＣＳ）を含むＲＰＭＩ１６４０培地を用いて継代した。試料（ＬＦ由来ペプチド）は、培地（ＲＰＭＩ１６４０）に溶解し目的の濃度として細胞に１ｍｌ添加した。６０分間インキュベートした後、ＨＩＶをｍｏｉ（細胞／感染ウィルス比）＝０．０１となるようにＭＴ−４細胞に感染させ、３×１０5／ｍｌに調製した細胞液を１ｍｌ加えた。細胞を３日間培養後、ＨＩＶ感染細胞を間接蛍光抗体法を用いて測定した。
ＨＩＶ感染細胞は、ＨＩＶ感染患者血清を一次抗体とした間接蛍光抗体法で測定した。蛍光顕微鏡下で細胞５００個以上を観察し、蛍光染色された細胞の割合を算出した。なお、陽性コントロールとして試料を加えずに培養したＨＩＶ感染ＭＴ−４細胞、陰性コントロールとしてウィルス液を添加しない細胞培養を同時に行った。
【００３１】
結果：実験結果を表３に示す。結果はＨＩＶの感染を９０％阻止するのに必要な濃度を示している。この結果より、本発明によるペプチドは、天然のＬＦやこれまで知られていたＬＦ由来のペプチドより低濃度で抗ウィルス効果を示すことが明らかとなった。
【００３２】
【表３】
ＬＦ由来ペプチドの抗ＨＩＶ効果における最少活性発現濃度
＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
サンプル 最少活性発現濃度*1（mg／ml）
＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
ヒトＬＦ 0.1
ヒトＬＦ（25‐40） 0.05
ヒトＬＦ（25‐52） 0.05
ヒトＬＦ（1−52） 0.02
ヒトＬＦ（18‐42） 0.1
＿＿＿＿_＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
*1 ９０％の感染阻止率を示す濃度
【００３３】
【実験例３】
ＬＦ由来ペプチドのインフルエンザウィルスに対する感染・増殖抑制効果
方法：インフルエンザウィルスに対するＬＦ由来ペプチドの感染・増殖抑制効果は、ウィルス実験学総論、国立予防衛生研究所学友会編、ｐ．１１３−１２９ 丸善（１９７３）に従い、ふ化鶏卵内培養法によって行った。ヒトＬＦ、および実施例１ 〜 ４で調製したペプチドを生理食塩水に溶解し、濾過滅菌した。卵令１０日のふ化鶏卵２５個を５個ずつ５群にわけ、コントロール群には生理食塩水のみを、他の群には試料溶液１００μｌを尿液腔内に接種した。３時間後、各ふ化鶏卵にインフルエンザウィルスＡ／ＰＲ／８／３４のウィルス液１００μｌを尿液腔内に接種した。なおここで用いたウィルス量は、尿液腔内に接種した後採取した尿液を６４倍希釈した溶液で赤血球凝集（ＨＡ）反応を示すことのできるウィルス量である。２日後それぞれの卵を氷室中で一夜静置しその後尿液を採取した。得られた尿液を生理食塩水で段階的に希釈しこれにヒヨコ安定化赤血球（武田薬品）を加え、ＨＡ反応を行うことでウィルスを定量した。
【００３４】
結果：実験結果を表４に示す。結果はインフルエンザウィルスの感染を９０％阻止するのに必要な濃度を示している。この結果より、本発明によるペプチドは、天然のＬＦやこれまで知られていたＬＦ由来のペプチドより低濃度で抗ウィルス効果を示すことが明らかとなった。
【００３５】
【表４】
ＬＦ由来ペプチドの抗インフルエンザウィルス効果における最少活性発現濃度
__________________________________________＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
サンプル 最少活性発現濃度*1（mg／ml）
_________________________________________________________＿＿＿＿＿＿＿
ヒトＬＦ 2.0
ヒトＬＦ（25‐40） 0.5
ヒトＬＦ (25‐52) 0.5
ヒトＬＦ (1−52) 0.2
ヒトＬＦ (18‐42) 1.0
_________________________________________＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
*1 ９０％の感染阻止率を示す濃度
【００３６】
【実験例４】
ｉｎ ｖｉｖｏにおけるＣＭＶ感染防御試験
方法：４週令雄のＢａｌｂｃ／ＡＪｃｌマウス（１群１０匹）を用いた。リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）に試料を溶かし、マウス腹腔内に投与した。６時間後、１×１０6ＰＦＵのマウスＣＭＶを腹腔内に投与し、１０日後のマウスの生存率で感染防御率を評価した。
【００３７】
結果：実験結果を表５に示す。本発明によるペプチドは０．０１ｇ／体重ｋｇ以上の投与でマウスＣＭＶに対して感染防御効果をもつことが明らかとなった。
【００３８】
【表５】
ｉｎ ｖｉｖｏにおけるマウスＣＭＶ感染防御試験
__________________________＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
試料 投与量（g／体重kg） 生存率（％）
________________＿________________________＿＿＿＿＿＿＿
― ― 100
ＣＭＶ 0
ＣＭＶ＋ヒトＬＦ(1−52) 0.002 40
0.005 60
0.01 100
0.02 100
0.05 100
__________________________＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
【００３９】
【配列表】
配列番号：１
配列の長さ：１６
配列の型：アミノ酸
トポロジー：直鎖状
配列の種類：ペプチド
配列
Arg Asn Met Arg Lys Val Arg Gly Pro Pro Val Ser Cys Ile Lys Arg
1 5 10 15
【００４０】
配列番号：２
配列の長さ：５２
配列の型：アミノ酸
トポロジー：直鎖状
配列の種類：ペプチド
配列
Gly Arg Arg Arg Arg Ser Val Gln Trp Cys Ala Val Ser Gln Pro Glu
1 5 10 15
Ala Thr Lys Cys Phe Gln Trp Gln Arg Asn Met Arg Lys Val Arg Gly
20 25 30
Pro Pro Val Ser Cys Ile Lys Arg Asp Ser Pro Ile Gln Cys Ile Gln
35 40 45
Ala Ile Ala Glu
50
【００４１】
配列番号：３
配列の長さ：２８
配列の型：アミノ酸
トポロジー：直鎖状
配列の種類：ペプチド
配列
Arg Asn Met Arg Lys Val Arg Gly Pro Pro Val Ser Cys Ile Lys Arg
1 5 10 15
Asp Ser Pro Ile Gln Cys Ile Gln Ala Ile Ala Glu
20 25
【産業上の利用分野】
本発明は、副作用の少ないペプチド性のウィルス感染・増殖抑制剤に関する。
【０００２】
【従来の技術】
ウィルス感染による疾患の克服のために、これまで多くの努力がなされてきた。しかし近年、世界的にも猛威をふるっているヒト免疫不全ウィルス（ＨＩＶ）や毎年流行するインフルエンザウィルスのようにいまだ有効な予防法や治療法の無いものもある。ウィルス感染による疾患に対する治療法として抗ウィルス剤による化学療法がある。しかし現在のところ、全身的に投与され明白な効果を示す抗ウィルス剤はほとんど無い。その理由として、ウィルスは細胞内で増殖し、増殖のための機能をほとんど細胞に依存している。つまりウィルスは感染後、その増殖を治療すべき人体の構成細胞自体の増殖機能を利用して行っている。従ってウィルスの増殖を抑える化学物質の多くは細胞にも作用して毒性を示すからである。抗ウィルス剤の問題点としては上述のように薬剤の選択毒性が低いこと以外にもウィルス感染症の特徴から由来するいくつかの問題点がある。特に急性・全身性のウィルス感染症では、症状が現れる時期がウィルスの体内増殖のピークが過ぎてしまった後なので、むしろウィルスの感染を阻止し増殖を抑制する物質が求められている。この様なウィルスの感染を防御する方法としてワクチンの予防接種による方法があるが、この方法はしばしばアレルギー反応や種々の副作用を示すことが知られており、しかもウィルスの変異に対しては対処できないのが現実である。
【０００３】
この様な状況において、本発明者らは、ラクトフェリン（ＬＦ）、トランスフェリン、オボトランスフェリンなど鉄結合能を有するタンパク質が、インフルエンザウィルスやサイトメガロウィルス（ＣＭＶ）の感染・増殖を抑制することを見出し特許出願を行った（特開平２−２３３６１９）。ＬＦは、乳中に分泌される鉄結合性のタンパク質で抗菌活性があることが知られている。ＬＦは、ヒトおよびウシ由来のものについて詳細な研究が行われており、ヒトＬＦ、ウシＬＦともその全アミノ酸配列がすでに決定されている(M.W. Rey,et al., Neucleic Acid Res.,Vol.18,5288,1990およびP.E. Mead et al., Neucleic Acid Res.,Vol.18,7167,1990)。特開平１−２３３２２６にはＬＦ等の乳タンパク質を有効成分とする抗ウィルス剤が開示されており、この中にＬＦが、外被性ウィルスおよび非外被性ウィルスに対して有効であることが記載されている。また最近、本発明者らは、ＨＩＶに対するこれら鉄結合性タンパク質の感染・増殖抑制効果についても確認し、ＬＦを有効成分とするＨＩＶ感染・増殖抑制剤について特許出願を行った（特願平４−２２０６３５）。
【０００４】
この様に、ＬＦなど鉄結合性タンパク質はウィルスの感染・増殖抑制効果を持つことが次第に明らかとなり、抗ウィルス剤として、その実用化が期待されてきた。これらタンパク質が実際に感染・増殖抑制剤として用いられるためには、(i)体内に投与した場合抗原性の点で問題が無いこと、(ii)大量に供給できることが必要である。これらの鉄結合性タンパク質のうち、ウシＬＦやウシトランスフェリン、又は鶏卵から得られるオボトランスフェリンは大量に供給できるが人体内に投与した場合抗原性を示すという問題がある。一方、ヒトＬＦは抗原性に関しては問題無いが大量に供給することが困難である。
この様な問題を解決するために、本発明者らはＬＦ由来のペプチドフラグメントのうち〔化４〕および〔化５〕が抗ウィルス活性を持つことを見出し特許出願をおこなった（特願平５‐６９２１０）。
【０００５】
【化４】
Cys-Phe-Gln-Trp-Gln-Arg-Asn-Met-Arg-Lys-Val-Arg-Gly-Pro-Pro-Val-Ser-Cys
（ただし、式中 Cys は還元型でもよく、またペプチド内の２個の Cys が−Ｓ−Ｓ−結合して酸化型となってもよい。 )
【０００６】
【化５】
Cys-Arg-Arg-Trp-Gln-Trp-Arg-Met-Lys-Lys-Leu-Gly-Ala-Pro-Ser-Ile-Thr-Cys
（ただし、式中Cys は還元型でもよく、またペプチド内の２個のCysが−Ｓ−Ｓ−結合して酸化型となってもよい。)
【０００７】
これらのペプチドはそれぞれヒトＬＦの２０〜３７残基およびウシＬＦの１９〜３６残基に相当するもので分子内のＳ−Ｓ結合は抗ウィルス活性に必須ではなかった。これらのペプチドは天然のＬＦに比べて極めて鎖長が短いため、化学合成や遺伝子操作による合成により容易に供給することができる。またマウスを用いた感染防御試験においては、ＣＭＶの感染を完全に抑制するのに必要な〔化４〕および〔化５〕のペプチド量は、 0.1g/体重kgであった。
【本発明が解決しようとする課題】
【０００８】
本発明者らは、さらに強力な抗ウィルス活性を有するＬＦフラグメントを得る目的で、いくつかのＬＦフラグメントを化学的に合成し、その抗ウィルス活性を検討することで、ヒトＬＦの抗ウィルス活性に関する必須部分を検索した。その結果、ヒトＬＦでは次の〔化６〕で示される２５〜４０残基部分が、抗ウィルス活性に必須であることを見出した。なお以後のＬＦペプチドの残基の番号は天然のヒトラクトフェリンのアミノ酸配列に付与された番号を用いる。
【０００９】
【化６】
Arg-Asn-Met-Arg-Lys-Val-Arg-Gly-Pro-Pro-Val-Ser-Cys-Ile-Lys-Arg
【００１０】
本発明者らは、この活性部分を含み、さらに高活性な抗ウィルスペプチドを開発する目的で、〔化６〕に示したペプチドを中心にＮ端側およびＣ端側にペプチド鎖を延長したところ、ヒトＬＦでは１〜５２残基〔化７〕に相当する部分および２５〜５２残基〔化８〕に相当する部分が、これまで知られていたＬＦ由来ペプチドに比べてより高活性であることを見出した。
【００１１】
【化７】
Gly-Arg-Arg-Arg-Arg-Ser-Val-Gln-Trp-Cys-Ala-Val-Ser-Gln-Pro-Glu-Ala-Thr-Lys-Cys-Phe-Gln-Trp-Gln-Arg-Asn-Met-Arg-Lys-Val-Arg-Gly-Pro-Pro-Val-Ser-Cys-Ile-Lys-Arg-Asp-Ser-Pro-Ile-Gln-Cys-Ile-Gln-Ala-Ile-Ala-Glu
【００１２】
【化８】
Arg-Asn-Met-Arg-Lys-Val-Arg-Gly-Pro-Pro-Val-Ser-Cys-Ile-Lys-Arg-Asp-Ser-Pro-Ile-Gln-Cys-Ile-Gln-Ala-Ile-Ala-Glu
【００１３】
また、これらのペプチドフラグメントのうち〔化７〕は、分子内に２つのＳ−Ｓ結合をもつことができるが、このＳ−Ｓ結合はウイルス活性の発現には必須ではなかった。Ｓ−Ｓ結合は存在していても、存在していなくとも良い。
従って、〔化７〕のCys は還元型であってもあるいは相互にＳ−Ｓ結合して酸化型になってもよい。
【００１４】
これらのＬＦフラグメントに関するこれまでの知見としては、ヒトＬＦの１〜５０残基部分がＬＦ分子の受容体結合領域であるとする報告（B.F. Anderson,et al,J.Mol.Biol.,209,711,1989）、ヒトＬＦの４〜５２に相当するペプチドがＬＦとリンパ球の結合を阻害したという報告（D.Legrand,et al,Biochemistry,31,9243,1992)、ヒトＬＦの１〜４７残基に相当するペプチドおよびウシＬＦの１７〜４１残基に相当するペプチドが抗菌活性をもつという報告(W.Bellamy,et al., Biochem Biophys.Acta,1121,130,1992 ）などがあるが抗ウィルス活性についての記載は無い。またこの抗菌活性に関して、特開平５−７８３９２ではヒトＬＦの１９〜２９残基あるいはウシＬＦ１８〜２８残基部分を含むペプチドが、特開平５−１４８２９５ではヒトＬＦの２１〜２６残基あるいはウシＬＦ２０〜２４残基部分を含むペプチドが、特開平５−１４８２９６ではウシＬＦの２１〜２５残基あるいはウシＬＦ２５〜２９残基部分を含むペプチドが、特開平５−１４８２９７ではウシＬＦの２０〜２４残基部分を含むペプチドについてそれぞれ記載されているが、いずれも本発明の抗ウィルス効果に必須な部位とは異なっている。
【００１５】
【課題を解決するための手段】
本発明は、次の〔化９〕で表されるペプチドを有効成分とするウィルス感染・増殖抑制剤に関する。
また、このペプチドは薬理的に許容される塩の形となっていてもよい。
【００１６】
【化９】
Arg-Asn-Met-Arg-Lys-Val-Arg-Gly-Pro-Pro-Val-Ser-Cys-Ile-Lys-Arg
【００１７】
また〔化９〕に示す配列を基にＮ末端側およびＣ末端側にペプチド鎖を延長したペプチドを有効成分とすることができる。このようなペプチドとしては、例えば、前記した、〔化７〕、〔化８〕に示すペプチドが例示される。さらにこれらの薬理的に許容される塩、例えば塩酸塩、酢酸塩なども用いることができる。〔化９〕に示すペプチドは、ヒトＬＦの２５〜４０残基に相当する配列であり、前述のように本発明における抗ウィルス活性に必須な領域である。以下本発明のウィルス感染・増殖抑制剤中の有効成分のＬＦ由来のアミノ酸配列を含むペプチドはヒトＬＦ（２５−４０）のようにＬＦ中のアミノ酸配列の番号で記載する。
本発明のペプチドを得るためには、通常の化学合成による方法、ＬＦのプロテアーゼ分解物から単離する方法、遺伝子組み換えによる方法などどれでもよい。さらに、市販のペプチドシンセサイザー等の合成装置を用いて直鎖ペプチドを得た後、通常の方法でＳ−Ｓ結合を形成させることもできるし、Ｓ−Ｓ結合を形成させなくても良い。
【００１８】
これらのペプチドまたはペプチド誘導体は単独もしくは賦型剤、安定剤を添加して製剤化することができる。本発明のウィルス感染・増殖抑制剤は、経口、注射、座薬として投与することができる。通常は、成人１日あたり０．１〜１．０ｇを投与することにより効果を示す。またこれらのペプチドは、従来から食品素材として用いられているタンパク質の一部なので安全性の面でも問題無い。特にヒト由来のペプチドフラグメントは、その抗原性が非常に低いため実用上好ましい。
【００１９】
以下に本発明によるウィルス感染・増殖抑制剤について実施例により詳細に説明する。なお、合成は、泉谷ら著「ペプチド合成の基礎と実験」（1985年丸善刊）p194-233に記載の方法に従い固相合成法にて行った。
【実施例１】
【００２０】
ヒトＬＦ（２５−４０）の合成
ペプチドシンセサイザー４３１Ａ（ＡＢＩ社）により、パラヒドロキシメチルフェノキシメチルポリスチレン（ＨＭＰ）樹脂を用い、９−フルオレニルメチルオキシカルボニル（Ｆｍｏｃ）基をアミノ末端の保護基としてＣ末端側からペプチド鎖を順次延長することにより０．２５ｍｍｏｌスケールで直鎖保護ペプチドを合成した。得られたＨＭＰ樹脂結合保護ペプチド１２３３ｍｇをフェノール、１，２−エタンジチオール、チオアニソール存在下、トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）によりペプチドのＨＭＰ樹脂からの切り離しと保護基の除去を同時に行った。減圧濃縮によりＴＦＡを除去した後、エチルエーテルで粗ペプチドを結晶化させ、これを５％酢酸に溶解し凍結乾燥を行った。得られた直鎖粗ペプチド５００ｍｇは、ＨＰＬＣ〔カラム：オクタデシル４ＰＷ（２１．５×１５０ｍｍ，東ソー社），溶出：０．１％ＴＦＡを含む水−アセトニトリルにてグラジエント溶出〕により精製しヒトＬＦ（２５−４０）の直鎖精製ペプチド３４０ｍｇを得た。得られた精製ペプチドの純度は、ＨＰＬＣによる分析の結果９３％であった。
【実施例２】
【００２１】
ヒトＬＦ（２５−５２）の合成
実施例１と同様の方法で合成し、純度９６％のヒトＬＦ（２５−５２）の鎖状ペプチド３８６ｍｇを得た。
【実施例３】
【００２２】
Ｎ−アセチル−ヒトＬＦ（２５−４０）−アミド（Ａｃ−ヒトＬＦ（２５−４０）−ＮＨ2）の合成
ペプチドシンセサイザー４３１Ａ（ＡＢＩ社）によりベンズヒドリルアミン樹脂を用い第３ブチルオキシカルボニル（ｔ−Ｂｏｃ）基をアミノ末端の保護基としてＣ末端側から遂次ペプチド鎖を延長することにより０．２５ｍｍｏｌスケールで合成を行った。縮合反応をすべて終えた後、アミノ末端のｔ−Ｂｏｃ基を除去し、無水酢酸でこれをアセチル化した。ＨＦ処理によりペプチドの樹脂からの切り離しと保護基の除去を同時に行った。減圧濃縮によりＨＦを除去し目的の粗Ａｃ−ヒトＬＦ（２５−４０）−ＮＨ2を得た。この粗ペプチドを実施例１と同様にしてＨＰＬＣで精製し、純度９１％の上記精製ペプチド４２ｍｇを得た。
【実施例４】
【００２３】
ヒトＬＦ（１−５２）、〔20Cys(Acm),37Cys(Acm) 〕ヒトＬＦ（１−５２）および〔10CysSH,20Cys(Acm),37Cys(Acm),46CysSH 〕ヒトＬＦ（１−５２）の合成
ペプチドシンセサイザー４３１Ａ（ＡＢＩ社）により、パラヒドロキシメチルフェノキシメチルポリスチレン（ＨＭＰ）樹脂を用い、９−フルオレニルメチルオキシカルボニル（Ｆｍｏｃ）基をアミノ末端の保護基とし、20Cys および37Cys のＳＨ基をアセトアミドメチル（Ａｃｍ）基で保護してＣ末端側から遂次ペプチド鎖を延長することにより０．２５ｍｍｏｌスケールで直鎖保護ペプチドを合成した。得られたＨＭＰ樹脂結合保護ペプチド２３３７ｍｇをフェノール、１，２−エタンジチオール、チオアニソール存在下、トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）によりペプチドのＨＭＰ樹脂からの切り離しと保護基の除去を同時に行った。減圧濃縮によりＴＦＡを除去した後、エチルエーテルで粗ペプチドを結晶化させ、これを５％酢酸に溶解し凍結乾燥を行った。得られた直鎖粗ペプチド９７０ｍｇは、ＨＰＬＣ〔カラム：オクタデシル４ＰＷ（２１．５×１５０ｍｍ，東ソー社），溶出：０．１％ＴＦＡを含む水−アセトニトリルにてグラジエント溶出〕により精製し直鎖精製ペプチド〔10CysSH,20Cys(Acm),37Cys(Acm),46CysSH 〕ヒトＬＦ（１−５２）６０７ｍｇを得た。得られた精製ペプチドの純度は、ＨＰＬＣによる分析の結果９６％であった。このペプチドをフェリシアン化カリウム存在下空気酸化により10Cys,46Cys にＳ−Ｓ結合を形成させさらにＨＰＬＣにて精製することで、純度９０％の〔20Cys(Acm),37Cys(Acm) 〕ヒトＬＦ（１−５２）４５０ｍｇを得た。さらにこのペプチドをヨウ素処理しＡｃｍ基の除去とＳ−Ｓ結合の形成を同時に行い、ＨＰＬＣで精製することでヒトＬＦ（１−５２）１２０ｍｇを得た。ＨＰＬＣによる分析の結果このペプチドの純度は８９％であった。
【実施例５】
【００２４】
ウィルス感染、増殖抑制剤の製造
本実施例においては、上記実施例１〜４の方法により得ることのできたペプチドの注射製剤の生産例を示した。
(i) ヒトＬＦ（２５−４０） 100mg
ヒト血清アルブミン 100mg
上記組成をｐＨ7.0 の0.01M のPBS で溶解し、全量を20mlに調製し、滅菌後、バイアル瓶に2ml ずつ分注し、凍結乾燥密封した。
(ii) ヒトＬＦ（２５−５２) 100mg
ツイーン80 1mg
ヒト血清アルブミン 100mg
上記組成を注射用生理食塩水に溶解し、全量を20mlに調製し、滅菌後、バイアル瓶に2ml ずつ分注し、凍結乾燥密封した。
(iii) ヒトＬＦ（１−５２) 100mg
ツイーン80 1mg
ヒト血清アルブミン 100mg
上記組成を注射用生理食塩水に溶解し、全量を20mlに調製し、滅菌後、バイアル瓶に2ml ずつ分注し、凍結乾燥密封した。
(iv) Ａｃ−ヒトＬＦ（２５−４０）−ＮＨ2 100mg
ツイーン80 2mg
ソルビトール 4ｇ
上記組成をｐＨ7.0 の0.01M のPBS で溶解し、全量を20mlに調製し、滅菌後、バイアル瓶に2ml ずつ分注し、凍結乾燥密封した。
【発明の効果】
【００２５】
本発明の実施により、ウィルス感染・増殖抑制剤が提供される。
本発明によるウィルス感染・増殖阻止作用のある組成物の作用効果を要約すると次のとおりである。
（１）ウィルスの感染を防ぐことができ、また、既感染者に対しては、体内でさらにウィルスが増殖して感染細胞が増加することを防ぐことができる。
（２）通常食品として摂取している成分を有効成分とする組成であるため、投与することによる副作用の心配が少ない。
（３）低分子であるため、ＬＦなど 結合性タンパク質に比べ化学合成法などで比較的容易にしかも大量に調製できる。ゆえに特定の患者の治療に使用が限定されることがなく、広くウィルスの感染・増殖を予防することもできる。
本発明のウィルス感染・増殖抑制剤は、インフルエンザあるいはエイズの予防または治療や臓器移植の際のサイトメガロウィルス感染防御に有用である。
以下に実験例を示し、本発明の効果をさらに詳細に説明する。
【００２６】
【実験例１】
ＬＦ由来ペプチドのサイトメガロウィルス（ＣＭＶ）に対する感染・増殖抑制効果
方法：ＬＦ由来ペプチドを２％血清添加ＭＥＭ培地に溶解し、濾過滅菌しストック溶液とした。このストック溶液を必要に応じて２％血清添加ＭＥＭ培地により希釈して用いた。ヒト胎児繊維芽細胞（ＨＥＬ細胞）を試料を含む２％血清添加ＭＥＭ培地に懸濁させ１０分間インキュベートした。遠心分離により細胞を取り出しさらに２％血清添加ＭＥＭ培地で細胞を２回洗浄した後、細胞を２％血清添加ＭＥＭ培地に懸濁させた。これにヒトＣＭＶ（ＴＡＮＡＫＡ株）を添加し、２４時間培養後、ヒトＣＭＶ陽性血清で蛍光染色し細胞へのヒトＣＭＶの吸着能力を測定した。
【００２７】
結果：表１にヒトＬＦ由来ペプチドのＣＭＶに対する感染・増殖阻害効果を示す。表１に示すペプチドのうち抗ウィルス活性をもつペプチドに共通する配列から、２５〜４０残基部分が活性に必須な構造を含むものと推察された。また表２では、ヒトＬＦ由来ペプチドがＣＭＶの感染・増殖を、コントロールと比較して９０％阻害するのに必要な最少濃度を示している。この結果より、本発明によるペプチドは、天然のＬＦやこれまで知られていたＬＦ由来のペプチドより低濃度で抗ウィルス効果を示すことが明らかとなった。なおここで使用したペプチドのうち本発明を構成するペプチド以外のものについても、実施例１に示した方法と同様にして化学的に合成したものであり、その純度はＨＰＬＣによる分析の結果いずれも８５％以上であることを確認している。
【００２８】
【表１】
ヒトＬＦ由来ペプチドのＣＭＶに対する感染増殖阻害効果
＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
ペプチド*1 Ｓ−Ｓ結合 感染阻害率（％）
＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
ＬＦ(1−52) 10Cys‐46Cys,20Cys‐37Cys 95
ＬＦ(1−52) 10Cys‐46Cys, 95
ＬＦ(1−52) 97
ＬＦ(18‐52) 24
ＬＦ(25‐52) 91
ＬＦ(1‐40) 97
ＬＦ(28‐40) 0
ＬＦ(19‐31) 2
ＬＦ(2‐19) 14
ＬＦ(4‐29) 0
ＬＦ(18‐42) 97
＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
*1 ペプチド濃度は、０．５ｍｇ／ｍｌ
【００２９】
【表２】
ＬＦ由来ペプチドの抗ＣＭＶ効果における最少活性発現濃度
＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
サンプル 最少活性発現濃度*1（mg／ml）
＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
ヒトＬＦ 1.0
ヒトＬＦ（25‐40） 1.0
ヒトＬＦ（25‐52） 0.5
ヒトＬＦ（1−52） 0.05
ヒトＬＦ（18−42） 1.5
＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
*1 ９０％の感染阻止率を示す濃度
【００３０】
【実験例２】
ＬＦ由来ペプチドのＨＩＶに対する感染・増殖抑制効果
方法： ＨＩＶの一株であるＨＴＬＶ−III B 持続感染株であるＭＯＬＴ−４／ＨＴＬＶ−III B（以下ＭＴ−４と略記する）細胞の培養上清をウィルス液として用いた。上清は−８０℃に保存した。検定に用いる細胞はヒトＴ細胞系のＭＴ−４を用いた。ＭＴ−４は１０％牛胎児血清（ＦＣＳ）を含むＲＰＭＩ１６４０培地を用いて継代した。試料（ＬＦ由来ペプチド）は、培地（ＲＰＭＩ１６４０）に溶解し目的の濃度として細胞に１ｍｌ添加した。６０分間インキュベートした後、ＨＩＶをｍｏｉ（細胞／感染ウィルス比）＝０．０１となるようにＭＴ−４細胞に感染させ、３×１０5／ｍｌに調製した細胞液を１ｍｌ加えた。細胞を３日間培養後、ＨＩＶ感染細胞を間接蛍光抗体法を用いて測定した。
ＨＩＶ感染細胞は、ＨＩＶ感染患者血清を一次抗体とした間接蛍光抗体法で測定した。蛍光顕微鏡下で細胞５００個以上を観察し、蛍光染色された細胞の割合を算出した。なお、陽性コントロールとして試料を加えずに培養したＨＩＶ感染ＭＴ−４細胞、陰性コントロールとしてウィルス液を添加しない細胞培養を同時に行った。
【００３１】
結果：実験結果を表３に示す。結果はＨＩＶの感染を９０％阻止するのに必要な濃度を示している。この結果より、本発明によるペプチドは、天然のＬＦやこれまで知られていたＬＦ由来のペプチドより低濃度で抗ウィルス効果を示すことが明らかとなった。
【００３２】
【表３】
ＬＦ由来ペプチドの抗ＨＩＶ効果における最少活性発現濃度
＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
サンプル 最少活性発現濃度*1（mg／ml）
＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
ヒトＬＦ 0.1
ヒトＬＦ（25‐40） 0.05
ヒトＬＦ（25‐52） 0.05
ヒトＬＦ（1−52） 0.02
ヒトＬＦ（18‐42） 0.1
＿＿＿＿_＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
*1 ９０％の感染阻止率を示す濃度
【００３３】
【実験例３】
ＬＦ由来ペプチドのインフルエンザウィルスに対する感染・増殖抑制効果
方法：インフルエンザウィルスに対するＬＦ由来ペプチドの感染・増殖抑制効果は、ウィルス実験学総論、国立予防衛生研究所学友会編、ｐ．１１３−１２９ 丸善（１９７３）に従い、ふ化鶏卵内培養法によって行った。ヒトＬＦ、および実施例１ 〜 ４で調製したペプチドを生理食塩水に溶解し、濾過滅菌した。卵令１０日のふ化鶏卵２５個を５個ずつ５群にわけ、コントロール群には生理食塩水のみを、他の群には試料溶液１００μｌを尿液腔内に接種した。３時間後、各ふ化鶏卵にインフルエンザウィルスＡ／ＰＲ／８／３４のウィルス液１００μｌを尿液腔内に接種した。なおここで用いたウィルス量は、尿液腔内に接種した後採取した尿液を６４倍希釈した溶液で赤血球凝集（ＨＡ）反応を示すことのできるウィルス量である。２日後それぞれの卵を氷室中で一夜静置しその後尿液を採取した。得られた尿液を生理食塩水で段階的に希釈しこれにヒヨコ安定化赤血球（武田薬品）を加え、ＨＡ反応を行うことでウィルスを定量した。
【００３４】
結果：実験結果を表４に示す。結果はインフルエンザウィルスの感染を９０％阻止するのに必要な濃度を示している。この結果より、本発明によるペプチドは、天然のＬＦやこれまで知られていたＬＦ由来のペプチドより低濃度で抗ウィルス効果を示すことが明らかとなった。
【００３５】
【表４】
ＬＦ由来ペプチドの抗インフルエンザウィルス効果における最少活性発現濃度
__________________________________________＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
サンプル 最少活性発現濃度*1（mg／ml）
_________________________________________________________＿＿＿＿＿＿＿
ヒトＬＦ 2.0
ヒトＬＦ（25‐40） 0.5
ヒトＬＦ (25‐52) 0.5
ヒトＬＦ (1−52) 0.2
ヒトＬＦ (18‐42) 1.0
_________________________________________＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
*1 ９０％の感染阻止率を示す濃度
【００３６】
【実験例４】
ｉｎ ｖｉｖｏにおけるＣＭＶ感染防御試験
方法：４週令雄のＢａｌｂｃ／ＡＪｃｌマウス（１群１０匹）を用いた。リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）に試料を溶かし、マウス腹腔内に投与した。６時間後、１×１０6ＰＦＵのマウスＣＭＶを腹腔内に投与し、１０日後のマウスの生存率で感染防御率を評価した。
【００３７】
結果：実験結果を表５に示す。本発明によるペプチドは０．０１ｇ／体重ｋｇ以上の投与でマウスＣＭＶに対して感染防御効果をもつことが明らかとなった。
【００３８】
【表５】
ｉｎ ｖｉｖｏにおけるマウスＣＭＶ感染防御試験
__________________________＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
試料 投与量（g／体重kg） 生存率（％）
________________＿________________________＿＿＿＿＿＿＿
― ― 100
ＣＭＶ 0
ＣＭＶ＋ヒトＬＦ(1−52) 0.002 40
0.005 60
0.01 100
0.02 100
0.05 100
__________________________＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿
【００３９】
【配列表】
配列番号：１
配列の長さ：１６
配列の型：アミノ酸
トポロジー：直鎖状
配列の種類：ペプチド
配列
Arg Asn Met Arg Lys Val Arg Gly Pro Pro Val Ser Cys Ile Lys Arg
1 5 10 15
【００４０】
配列番号：２
配列の長さ：５２
配列の型：アミノ酸
トポロジー：直鎖状
配列の種類：ペプチド
配列
Gly Arg Arg Arg Arg Ser Val Gln Trp Cys Ala Val Ser Gln Pro Glu
1 5 10 15
Ala Thr Lys Cys Phe Gln Trp Gln Arg Asn Met Arg Lys Val Arg Gly
20 25 30
Pro Pro Val Ser Cys Ile Lys Arg Asp Ser Pro Ile Gln Cys Ile Gln
35 40 45
Ala Ile Ala Glu
50
【００４１】
配列番号：３
配列の長さ：２８
配列の型：アミノ酸
トポロジー：直鎖状
配列の種類：ペプチド
配列
Arg Asn Met Arg Lys Val Arg Gly Pro Pro Val Ser Cys Ile Lys Arg
1 5 10 15
Asp Ser Pro Ile Gln Cys Ile Gln Ala Ile Ala Glu
20 25
Claims (3)
- 次の〔化１〕で表されるペプチドまたはその薬理学的に許容される塩を有効成分とするウィルス感染・増殖抑制剤。
- 次の〔化２〕で表されるペプチドまたはその薬理学的に許容される塩を有効成分とするウィルス感染・増殖抑制剤。
- 次の〔化３〕で表されるペプチドまたはその薬理学的に許容される塩を有効成分とするウィルス感染・増殖抑制剤。
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