JP3539021B2 - バイオセンサ - Google Patents
バイオセンサInfo
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- JP3539021B2 JP3539021B2 JP33610695A JP33610695A JP3539021B2 JP 3539021 B2 JP3539021 B2 JP 3539021B2 JP 33610695 A JP33610695 A JP 33610695A JP 33610695 A JP33610695 A JP 33610695A JP 3539021 B2 JP3539021 B2 JP 3539021B2
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- Japan
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- glucose
- electrode
- biosensor
- albumin
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- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】本発明は、バイオセンサに関
する。更に詳しくは、直線検量性および選択性にすぐれ
たバイオセンサに関する。
する。更に詳しくは、直線検量性および選択性にすぐれ
たバイオセンサに関する。
【０００２】
【従来の技術】従来のグルコースバイオセンサを用いて
のグルコース濃度の測定方法では、測定試料を電極表面
に滴下もしくは注入した後一定電位を電極に与え、一定
時間後の電流値を測定するポテンシャルステップ法がと
られており、試料溶液が希釈かつ連続供給されないた
め、酵素反応に必要な溶存酸素量が不足し、検量範囲が
狭いという欠点がみられる。また、アスコルビン酸等の
他の酸化還元物質が共存する場合には、一様に電気化学
的応答が示されるため、選択性の点では全く不満足な結
果しか示していない。
のグルコース濃度の測定方法では、測定試料を電極表面
に滴下もしくは注入した後一定電位を電極に与え、一定
時間後の電流値を測定するポテンシャルステップ法がと
られており、試料溶液が希釈かつ連続供給されないた
め、酵素反応に必要な溶存酸素量が不足し、検量範囲が
狭いという欠点がみられる。また、アスコルビン酸等の
他の酸化還元物質が共存する場合には、一様に電気化学
的応答が示されるため、選択性の点では全く不満足な結
果しか示していない。
【０００３】
【発明が解決しようとする課題】本発明の目的は、絶縁
性基板上に作用極および対極の少なくとも２電極を設
け、作用極上に酸化還元酵素を固定化せしめたバイオセ
ンサであって、直線検量性および共存する他の酸化還元
物質多孔質に対する選択性の点ですぐれたものを提供す
ることにある。
性基板上に作用極および対極の少なくとも２電極を設
け、作用極上に酸化還元酵素を固定化せしめたバイオセ
ンサであって、直線検量性および共存する他の酸化還元
物質多孔質に対する選択性の点ですぐれたものを提供す
ることにある。
【０００４】
【課題を解決するための手段】かかる本発明の目的は、
絶縁性基板上に作用極および対極の少なくとも２電極を
設け、該作用極上にアルブミン-ジアルデヒド化合物架
橋物層および (1)酸化還元酵素 - 電子伝達体混合物層 または(2) 酸化還元酵素-アルブミン-電子伝達体混合物層 を順次形成させたバイオセンサによって達成される。
絶縁性基板上に作用極および対極の少なくとも２電極を
設け、該作用極上にアルブミン-ジアルデヒド化合物架
橋物層および (1)酸化還元酵素 - 電子伝達体混合物層 または(2) 酸化還元酵素-アルブミン-電子伝達体混合物層 を順次形成させたバイオセンサによって達成される。
【０００５】
【発明の実施の形態】セラミックス、ガラス、プラスチ
ック、紙、生分解性材料(例えば、微生物生産ポリエス
テル等)などの絶縁性基板上には、作用極および対極あ
るいは作用極、対極および参照極が設けられる。作用
極、対極および参照極リードは、スクリーン印刷法、蒸
着法、スパッタリング法などによって白金、金、カーボ
ン等から形成され、参照極は参照極リード上にスクリー
ン印刷法、蒸着法、スパッタリング法などによって一旦
銀電極を形成させた後、定電流電解する方法あるいは塩
化第２鉄水溶液中に浸漬する方法、更にはスクリーン印
刷法によって塩化銀を塗布、積層させる方法などによっ
て形成される。その後、各電極の中央部分が樹脂製絶縁
膜などによって被覆される。なお、参照極を設けない２
電極構造のものとすることもできる。
ック、紙、生分解性材料(例えば、微生物生産ポリエス
テル等)などの絶縁性基板上には、作用極および対極あ
るいは作用極、対極および参照極が設けられる。作用
極、対極および参照極リードは、スクリーン印刷法、蒸
着法、スパッタリング法などによって白金、金、カーボ
ン等から形成され、参照極は参照極リード上にスクリー
ン印刷法、蒸着法、スパッタリング法などによって一旦
銀電極を形成させた後、定電流電解する方法あるいは塩
化第２鉄水溶液中に浸漬する方法、更にはスクリーン印
刷法によって塩化銀を塗布、積層させる方法などによっ
て形成される。その後、各電極の中央部分が樹脂製絶縁
膜などによって被覆される。なお、参照極を設けない２
電極構造のものとすることもできる。
【０００６】かかる２電極構造または３電極構造の作用
極上へは、アルブミン-ジアルデヒド化合物架橋物層が
まず形成される。架橋物層の形成は、約5〜50μg、好ま
しくは約10〜30μgの牛血清アルブミンを１mlの蒸留水
に溶解させた水溶液にグルタルアルデヒド、ジアルデヒ
ドでん粉等のジアルデヒド化合物を最終濃度が約0.001
〜0.4重量%、好ましくは約0.1〜0.3重量%になるような
量で水溶液として添加し、このようにして調製された混
合液を作用極上に適当量(約0.1〜10μl、好ましくは約1
〜3μl)滴下した後、ジアルデヒド化合物水溶液の飽和
蒸気圧下、約2〜25℃の条件下に約0.01〜5時間、好まし
くは約0.5〜3時間程度放置し、更に約10〜45℃、好まし
くは約30〜45℃の恒温雰囲気中に約1〜60分間程度放置
し、アルブミンとジアルデヒド化合物との間の架橋反応
を完結させることにより行われる。このようなアルブミ
ン-ジアルデヒド化合物架橋物層の形成は、測定サンプ
ル中に共存する他の酸化還元物質に対する選択性を大幅
に改善させる。
極上へは、アルブミン-ジアルデヒド化合物架橋物層が
まず形成される。架橋物層の形成は、約5〜50μg、好ま
しくは約10〜30μgの牛血清アルブミンを１mlの蒸留水
に溶解させた水溶液にグルタルアルデヒド、ジアルデヒ
ドでん粉等のジアルデヒド化合物を最終濃度が約0.001
〜0.4重量%、好ましくは約0.1〜0.3重量%になるような
量で水溶液として添加し、このようにして調製された混
合液を作用極上に適当量(約0.1〜10μl、好ましくは約1
〜3μl)滴下した後、ジアルデヒド化合物水溶液の飽和
蒸気圧下、約2〜25℃の条件下に約0.01〜5時間、好まし
くは約0.5〜3時間程度放置し、更に約10〜45℃、好まし
くは約30〜45℃の恒温雰囲気中に約1〜60分間程度放置
し、アルブミンとジアルデヒド化合物との間の架橋反応
を完結させることにより行われる。このようなアルブミ
ン-ジアルデヒド化合物架橋物層の形成は、測定サンプ
ル中に共存する他の酸化還元物質に対する選択性を大幅
に改善させる。
【０００７】アルブミン-ジアルデヒド化合物架橋物層
上には、前記(1)〜(2)の各層のいずれかが形成される。
上には、前記(1)〜(2)の各層のいずれかが形成される。
【０００８】酸化還元酵素- 電子伝達体混合物層(1)は、
グルコースオキシダーゼ(GOD)によって代表される酸化
還元酵素、例えば165800単位/gのGODの場合その約1〜50
mg、好ましくは約１〜20mgとフェリシアン化カリウム、
パラベンゾキノン等の電子伝達体、例えばフェリシアン
化カリウムにあっては約 1 〜 100mg 、好ましくは約 40 〜 60
mg 、パラベンゾキノンにあっては約 1 〜 200mg 、好ましく
は約 100 〜 200mgを蒸留水１mlに溶解させ、その水溶液(G
OD水溶液)約0.5〜10μl、好ましくは約0.5〜2μlを滴下
法、スピンコート法などによって滴下し、室温で乾燥さ
せて、膜厚約0.05〜10μm、好ましくは約0.1〜2μmの層
を形成させることにより行われる。酸化還元酵素として
は、GOD以外にも乳酸オキシダーゼ、アルコールオキシ
ダーゼ等が用いられる。
グルコースオキシダーゼ(GOD)によって代表される酸化
還元酵素、例えば165800単位/gのGODの場合その約1〜50
mg、好ましくは約１〜20mgとフェリシアン化カリウム、
パラベンゾキノン等の電子伝達体、例えばフェリシアン
化カリウムにあっては約 1 〜 100mg 、好ましくは約 40 〜 60
mg 、パラベンゾキノンにあっては約 1 〜 200mg 、好ましく
は約 100 〜 200mgを蒸留水１mlに溶解させ、その水溶液(G
OD水溶液)約0.5〜10μl、好ましくは約0.5〜2μlを滴下
法、スピンコート法などによって滴下し、室温で乾燥さ
せて、膜厚約0.05〜10μm、好ましくは約0.1〜2μmの層
を形成させることにより行われる。酸化還元酵素として
は、GOD以外にも乳酸オキシダーゼ、アルコールオキシ
ダーゼ等が用いられる。
【０００９】混合物層(2)の場合も、この場合と同様の
形成方法が行われ、ただしGOD- 電子伝達体混合物水溶液
中に更に牛血清アルブミン約 1 〜 100mg 、好ましくは約 1
〜 20mgが添加された水溶液が用いられる。
形成方法が行われ、ただしGOD- 電子伝達体混合物水溶液
中に更に牛血清アルブミン約 1 〜 100mg 、好ましくは約 1
〜 20mgが添加された水溶液が用いられる。
【００１０】グルコースがGODの作用により酵素の存在
下で酸化されてグルコノラクトンを生成させ、そのとき
発生するH２O２を作用極上で酸化し、その際の酸化電流
値を測定することにより、グルコース濃度を間接的に求
める方法は周知である。しかしながら、測定液が水で希
釈されない原液サンプルの場合には、酸化反応が溶存酸
素濃度に律速されるため、グルコース濃度が約100mg/dl
程度迄しか直線検量範囲を示さないが、酸化還元酵素 (-
アルブミン混合物 ) 層を形成させた場合には、その直線
検量範囲を0〜250mg/dlに拡大できるものの、それ以上
の濃度では直線検量性がみられなくなる。
下で酸化されてグルコノラクトンを生成させ、そのとき
発生するH２O２を作用極上で酸化し、その際の酸化電流
値を測定することにより、グルコース濃度を間接的に求
める方法は周知である。しかしながら、測定液が水で希
釈されない原液サンプルの場合には、酸化反応が溶存酸
素濃度に律速されるため、グルコース濃度が約100mg/dl
程度迄しか直線検量範囲を示さないが、酸化還元酵素 (-
アルブミン混合物 ) 層を形成させた場合には、その直線
検量範囲を0〜250mg/dlに拡大できるものの、それ以上
の濃度では直線検量性がみられなくなる。
【００１１】酸化還元酵素にさらに電子伝達体(- アルブ
ミン ) を混合して用いることにより、その選択性を良好
に維持しながら、直線検量範囲を0〜1000mg/dlまたはそ
れ以上に拡大することが可能となる。
ミン ) を混合して用いることにより、その選択性を良好
に維持しながら、直線検量範囲を0〜1000mg/dlまたはそ
れ以上に拡大することが可能となる。
【００１２】電子伝達体がフェリシアン化カリウムK3Fe
(CN)6の場合、グルコース等との反応は次のように進行
する。 この際発生したフェロシアンイオンは、作用極で酸化さ
れて酸化電流を生ずる。
(CN)6の場合、グルコース等との反応は次のように進行
する。 この際発生したフェロシアンイオンは、作用極で酸化さ
れて酸化電流を生ずる。
【００１３】また、電子伝達体としてフェリシアン化カ
リウムの代わりにパラベンゾキノンを用いた場合には、
GOD存在下でのグルコースとパラベンゾキノンとの反応
でヒドロキノンが生成し、この際生成したヒドロキノン
は作用極で酸化され、酸化電流を生ずるのでその値が測
定される。
リウムの代わりにパラベンゾキノンを用いた場合には、
GOD存在下でのグルコースとパラベンゾキノンとの反応
でヒドロキノンが生成し、この際生成したヒドロキノン
は作用極で酸化され、酸化電流を生ずるのでその値が測
定される。
【００１４】従って、原液サンプル等の溶液中濃度が有
限である酸素の代わりに、電子伝達体をGOD等と共に用
いると、酸素の共存量とは関係なく、グルコース濃度な
どを正確にかつより広範囲に測定することができる。
限である酸素の代わりに、電子伝達体をGOD等と共に用
いると、酸素の共存量とは関係なく、グルコース濃度な
どを正確にかつより広範囲に測定することができる。
【００１５】
【発明の効果】作用極上にグルコースオキシダーゼによ
って代表される酸化還元酵素またはそれの混合物層を形
成させるに際し、予めアルブミン-ジアルデヒド化合物
架橋物層をその下層として形成させておき、さらに酸化
還元酵素を電子伝導体 ( およびアルブミン ) との混合物層
とすることにより、直線検量性にすぐれ、しかも測定サ
ンプル中に共存する他の酸化還元物質の影響を殆んど受
けることなく、即ち良好な選択性でグルコース等の濃度
を測定することができるので、このようなバイオセンサ
は原液サンプルが測定液とされる使い捨てバイオセンサ
として、家庭内健康診断(セルフケァ)、特に血糖、尿糖
の測定による糖尿病の自己管理、糖尿病の予防および早
期発見などに効果的に用いることができ、また食品製造
工程中のグルコース管理に用いられるなど、幅広い用途
を期待することができる。
って代表される酸化還元酵素またはそれの混合物層を形
成させるに際し、予めアルブミン-ジアルデヒド化合物
架橋物層をその下層として形成させておき、さらに酸化
還元酵素を電子伝導体 ( およびアルブミン ) との混合物層
とすることにより、直線検量性にすぐれ、しかも測定サ
ンプル中に共存する他の酸化還元物質の影響を殆んど受
けることなく、即ち良好な選択性でグルコース等の濃度
を測定することができるので、このようなバイオセンサ
は原液サンプルが測定液とされる使い捨てバイオセンサ
として、家庭内健康診断(セルフケァ)、特に血糖、尿糖
の測定による糖尿病の自己管理、糖尿病の予防および早
期発見などに効果的に用いることができ、また食品製造
工程中のグルコース管理に用いられるなど、幅広い用途
を期待することができる。
【００１６】
【実施例】次に、実施例について本発明を説明する。
【００１７】実施例
ポリエチレンテレフタレートフィルム(厚さ0.25mm)上
に、スクリーン印刷法によって、いずれもカーボン製の
対極、作用極および参照極リードを作用極を中心とし
て、膜厚5μmで形成させた。次いで、参照極リード上
に、銀ペーストをスクリーン印刷法によって5μmの厚さ
で印刷し、焼成して銀電極とした。これらの各電極の中
央部分を厚さ15μmのポリエステル樹脂製絶縁膜で覆っ
た後、銀電極部分を0.1M塩酸中に浸漬し、0.6mA/cm2の
電流密度で20分間の定電流電解を行い、その表面を塩化
銀化して、銀/塩化銀参照極を形成させた。この定電流
電解には、ポテンショガルバノスタット(北斗電工製HA5
01)が用いられた。
に、スクリーン印刷法によって、いずれもカーボン製の
対極、作用極および参照極リードを作用極を中心とし
て、膜厚5μmで形成させた。次いで、参照極リード上
に、銀ペーストをスクリーン印刷法によって5μmの厚さ
で印刷し、焼成して銀電極とした。これらの各電極の中
央部分を厚さ15μmのポリエステル樹脂製絶縁膜で覆っ
た後、銀電極部分を0.1M塩酸中に浸漬し、0.6mA/cm2の
電流密度で20分間の定電流電解を行い、その表面を塩化
銀化して、銀/塩化銀参照極を形成させた。この定電流
電解には、ポテンショガルバノスタット(北斗電工製HA5
01)が用いられた。
【００１８】このような構成の各電極の内の作用極(面
積0.16cm2)上に、牛血清アルブミン(シグマ社製品A-600
3)20μgを蒸留水１mlに溶解させた水溶液および20重量%
グルタルアルデヒド水溶液10μlから調製した混合液の
2.5μlを滴下し、グルタルアルデヒド水溶液の飽和蒸気
下、4℃の条件下に2時間放置した後、40℃で30分間の架
橋処理が行われた。
積0.16cm2)上に、牛血清アルブミン(シグマ社製品A-600
3)20μgを蒸留水１mlに溶解させた水溶液および20重量%
グルタルアルデヒド水溶液10μlから調製した混合液の
2.5μlを滴下し、グルタルアルデヒド水溶液の飽和蒸気
下、4℃の条件下に2時間放置した後、40℃で30分間の架
橋処理が行われた。
【００１９】このようにして形成された作用極上のアル
ブミン-グルタルアルデヒド架橋物層の上に、次のよう
な各層の形成が行われた。 Ａ層：GOD(165800単位／g；以下同じものを使用)10mgを
蒸留水１mlに溶解させて調製した水溶液1.5μlを滴下
し、室温で乾燥させて形成 Ｂ層：GOD 10mgおよび牛血清アルブミン10mgを蒸留水１
mlに溶解させて調製した水溶液1.5μlを滴下し、室温で
乾燥させて形成 Ｃ層：GOD 10mgおよびフェリシアン化カリウム48mgを蒸
留水１mlに溶解させて調製した水溶液1.5μlを滴下し、
室温で乾燥させて形成 Ｄ層：GOD 10mgおよびパラベンゾキノン160mgを蒸留水
１mlに溶解させて調製した水溶液1.5μlを滴下し、室温
で乾燥させて形成 Ｅ層：GOD 10mg、牛血清アルブミン10mgおよびフェリシ
アン化カリウム48mgを蒸留水１mlに溶解させて調製した
水溶液1.5μlを滴下し、室温で乾燥させて形成 Ｆ層：GOD 10mg、牛血清アルブミン10mgおよびパラベン
ゾキノン160mgを蒸留水１mlに溶解させて調製した水溶
液1.5μlを滴下し、室温で乾燥させて形成
ブミン-グルタルアルデヒド架橋物層の上に、次のよう
な各層の形成が行われた。 Ａ層：GOD(165800単位／g；以下同じものを使用)10mgを
蒸留水１mlに溶解させて調製した水溶液1.5μlを滴下
し、室温で乾燥させて形成 Ｂ層：GOD 10mgおよび牛血清アルブミン10mgを蒸留水１
mlに溶解させて調製した水溶液1.5μlを滴下し、室温で
乾燥させて形成 Ｃ層：GOD 10mgおよびフェリシアン化カリウム48mgを蒸
留水１mlに溶解させて調製した水溶液1.5μlを滴下し、
室温で乾燥させて形成 Ｄ層：GOD 10mgおよびパラベンゾキノン160mgを蒸留水
１mlに溶解させて調製した水溶液1.5μlを滴下し、室温
で乾燥させて形成 Ｅ層：GOD 10mg、牛血清アルブミン10mgおよびフェリシ
アン化カリウム48mgを蒸留水１mlに溶解させて調製した
水溶液1.5μlを滴下し、室温で乾燥させて形成 Ｆ層：GOD 10mg、牛血清アルブミン10mgおよびパラベン
ゾキノン160mgを蒸留水１mlに溶解させて調製した水溶
液1.5μlを滴下し、室温で乾燥させて形成
【００２０】アルブミン-グルタルアルデヒド架橋物層
上にＡ〜Ｆ層を形成させたグルコースバイオセンサに、
所定濃度のグルコース水溶液40μlを滴下して5秒間反応
を進行させた後、0.6Vの電圧を印加し、印加20秒後の電
流値を測定した。測定には、ポテンショガルバノスタッ
ト(HA501)およびファンクションジェネレータ(北斗電工
製HB-104)が用いられた。
上にＡ〜Ｆ層を形成させたグルコースバイオセンサに、
所定濃度のグルコース水溶液40μlを滴下して5秒間反応
を進行させた後、0.6Vの電圧を印加し、印加20秒後の電
流値を測定した。測定には、ポテンショガルバノスタッ
ト(HA501)およびファンクションジェネレータ(北斗電工
製HB-104)が用いられた。
【００２１】測定は、参照極を形成させたもの(３電極
構造)および形成させないもの(２電極構造)のそれぞれ
について行われ、次の表に示されるような出力結果(単
位：μA)を得た。これらの結果から、グルコース水溶液
濃度0〜250mg/dl(Ａ〜Ｂ層形成)または0〜1000mg/dl(Ｃ
〜Ｆ層形成)の範囲での直線検量性が得られることが分
かる。なお、各センサは、１サンプル測定毎に使い捨て
とした。また、グルコース濃度100mg/dlでの各センサ間
の再現性(n＝10)を示す変動係数および選択性[グルコー
ス水溶液濃度100mg/dlの出力を100としたときの同濃度
のアスコルビン酸水溶液(40μlをセンサに滴下)の出力]
についても、それらの値が併記されている。
構造)および形成させないもの(２電極構造)のそれぞれ
について行われ、次の表に示されるような出力結果(単
位：μA)を得た。これらの結果から、グルコース水溶液
濃度0〜250mg/dl(Ａ〜Ｂ層形成)または0〜1000mg/dl(Ｃ
〜Ｆ層形成)の範囲での直線検量性が得られることが分
かる。なお、各センサは、１サンプル測定毎に使い捨て
とした。また、グルコース濃度100mg/dlでの各センサ間
の再現性(n＝10)を示す変動係数および選択性[グルコー
ス水溶液濃度100mg/dlの出力を100としたときの同濃度
のアスコルビン酸水溶液(40μlをセンサに滴下)の出力]
についても、それらの値が併記されている。
【００２２】
【図１】Ａ層を形成させたグルコースバイオセンサにお
けるグルコース水溶液濃度と出力との関係を示す検量線
グラフである。
けるグルコース水溶液濃度と出力との関係を示す検量線
グラフである。
【図２】Ｂ層を形成させたグルコースバイオセンサにお
けるグルコース水溶液濃度と出力との関係を示す検量線
グラフである。
けるグルコース水溶液濃度と出力との関係を示す検量線
グラフである。
【図３】Ｃ層を形成させたグルコースバイオセンサにお
けるグルコース水溶液濃度と出力との関係を示す検量線
グラフである。
けるグルコース水溶液濃度と出力との関係を示す検量線
グラフである。
【図４】Ｄ層を形成させたグルコースバイオセンサにお
けるグルコース水溶液濃度と出力との関係を示す検量線
グラフである。
けるグルコース水溶液濃度と出力との関係を示す検量線
グラフである。
【図５】Ｅ層を形成させたグルコースバイオセンサにお
けるグルコース水溶液濃度と出力との関係を示す検量線
グラフである。
けるグルコース水溶液濃度と出力との関係を示す検量線
グラフである。
【図６】Ｆ層を形成させたグルコースバイオセンサにお
けるグルコース水溶液濃度と出力との関係を示す検量線
グラフである。
けるグルコース水溶液濃度と出力との関係を示す検量線
グラフである。
【図７】(Ｂ層)を形成させたグルコースバイオセンサに
おけるグルコース水溶液濃度と出力との関係を示す検量
線グラフである。
おけるグルコース水溶液濃度と出力との関係を示す検量
線グラフである。
Claims (2)
- 【請求項１】 絶縁性基板上に作用極および対極の少な
くとも２電極を設け、該作用極上にアルブミン - ジアル
デヒド化合物架橋物層および酸化還元酵素 - 電子伝達体
混合物層を順次形成せしめてなるバイオセンサ。 - 【請求項２】 絶縁性基板上に作用極および対極の少な
くとも２電極を設け、該作用極上にアルブミン - ジアル
デヒド化合物架橋物層および酸化還元酵素 - アルブミン -
電子伝達体混合物層を順次形成せしめてなるバイオセン
サ。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP33610695A JP3539021B2 (ja) | 1995-11-30 | 1995-11-30 | バイオセンサ |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP33610695A JP3539021B2 (ja) | 1995-11-30 | 1995-11-30 | バイオセンサ |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH09152414A JPH09152414A (ja) | 1997-06-10 |
| JP3539021B2 true JP3539021B2 (ja) | 2004-06-14 |
Family
ID=18295763
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP33610695A Expired - Fee Related JP3539021B2 (ja) | 1995-11-30 | 1995-11-30 | バイオセンサ |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP3539021B2 (ja) |
Families Citing this family (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN113138220B (zh) * | 2021-04-23 | 2023-02-10 | 广州万孚生物技术股份有限公司 | 电化学生物传感器及其制备方法 |
| CN115165982A (zh) * | 2022-06-20 | 2022-10-11 | 上海联影微电子科技有限公司 | 天然高分子化合物在生物传感器中的应用 |
-
1995
- 1995-11-30 JP JP33610695A patent/JP3539021B2/ja not_active Expired - Fee Related
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| JPH09152414A (ja) | 1997-06-10 |
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