JP3538203B2 - Beer production method - Google Patents

Beer production method

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Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

発明の技術分野 本発明はビールの製造方法、特に、ビールを濾材に通
して濾過し、濾材をビール濾過に再使用できるように酵
素によって濾材を洗浄する方法に関する。 発明の背景 拡大された販路を考慮すると、ビールを貯蔵可能にす
るために、ビールから微生物(例えば、細菌)を除去し
なければならない。現在、微生物除去は主としてビール
の低温殺菌によって行われている。このために、ビール
を例えばびん又は缶に入れて、62〜69℃の温度に加熱し
て、微生物を殺す。 しかし、この低温殺菌はかなりのエネルギー消費を必
要とする。これは、導入されたエネルギーが化学反応を
誘発する可能性があり、これらの化学反応が製品をそこ
ない、制御されることが困難であるというさらなる欠点
を有する。これらの反応は、例えば、製品のフレーバー
に不利な影響を与え(“低温殺菌味(pasteurized tast
e)”)、さらに好ましくない物質が形成されるという
危険性がある。それ故、低温殺菌は、高いエネルギー消
費を必要とし、その結果、環境に有害な影響を与え、製
品の質を低下させる、比較的費用のかかる微生物除去方
法である。 他の、知られた微生物除去方法は低温濾過である。低
温濾過ビールは例えば合衆国、日本及び韓国においてい
わゆる“ドラフトビール”として入手可能である。この
ビールは工業的酵素(technical enzyme)を含有するの
で、ヨーロッパでは禁止されている。 これらの工業的酵素は、低温−濾過方法に固有の欠
点:フィルターが閉塞しやすいを防止するために、ビー
ル中に存在する。この閉塞は、フィルター、例えば、膜
フィルターの上流側に、ビールから濾過されるべき物質
の付着物による。この付着物はフィルターから除去され
ることが困難であるか又は不可能でさえあり、フィルタ
ーの耐用寿命を減ずる。このことは、膜フィルターが高
価であるので、ビールの製造コストを高めることにな
る。 フィルターの耐用寿命を長くするために、膜フィルタ
ーの製造者は使用済み膜をプロテアーゼ、グルカナーゼ
及びキシラナーゼと、例えば界面活性剤、酸/アルカリ
及び酸化剤のような化学薬品とで処理することによって
膜を洗浄して、使用済み膜を再使用可能にすることを薦
めている。この洗浄は例えば2段階で、第1段階では上
記酵素によって、その後任意に第2段階における上記化
学薬品による追加洗浄によって行うことができる。 文献はさらに、多様な技法を含む、ビールの濾過に用
いた膜フィルターの洗浄方法を開示している。例えば、
米国特許5,227,819は、ビールの低温濾過に用いたポリ
アミド微孔質膜の洗浄方法であって、この微孔質膜に希
薄なアルカリ溶液を通すことによる方法を開示してい
る。国際特許出願WO96/23579は、ビールの濾過に用いた
膜フィルターの幾らか異なる方法を開示している。この
方法は、膜フィルターをβ−グルカナーゼ、キシラナー
ゼ及びセルラーゼの酵素含有水溶液によって処理し、こ
の膜フィルターを酸性洗浄水溶液によって洗浄し、かつ
過酸化物含有アルカリ性洗浄溶液によって洗浄すること
を特徴とする。 例えば、約320m2のフィルター面積を想定するなら
ば、洗浄方法は例として5,000ヘクトリットルを濾過し
た後毎に酵素洗浄を用意し、20,000ヘクトリットルを濾
過した後毎に追加の化学洗浄を用意する。製造者が薦め
る洗浄を受けた、約320m2の上記フィルター面積を有す
るフィルターの典型的な耐用寿命は約100,000ヘクトリ
ットルである。 しかし、今までに知られた洗浄方法は、フィルター上
の付着物を充分に除去することができず、このことが膜
フィルターの使用年数(age)が増すにつれて、洗浄効
率を強度に低下させるという欠点を有する。 さらに他の欠点は、総窒素含量又はオリジナルのウワ
ート%のような標準規格に関係ない、フィルター膜の突
然のランダムな閉塞である。完全に閉塞した膜フィルタ
ーは最新技術による方法で充分に洗浄されることができ
ず、フィルターの耐用寿命を強度に低下させる。何時フ
ィルターが充分に洗浄されることができないほど閉塞し
た状態になるかを知ることは困難であるので、フィルタ
ーは早期に又は適時にではなく、即ち、早すぎるか又は
遅すぎて洗浄される可能性がある。 上記問題を考慮すると、改良されたビール製造方法、
特に充分に洗浄することができ、再使用することができ
る濾材に通してビールを濾過することができる方法の必
要性が存在する。本発明はこのような方法を提供する。
本発明の上記その他の利点並びに他の本発明の特徴は、
本明細書に提供する本発明の説明から明らかになるであ
ろう。 発明の簡単な概要 本発明は、多孔質膜が洗浄を必要とするようなときま
で多孔質膜に通してビールを濾過し、この多孔質膜をセ
ルラーゼ、アミラーゼ及びこれらの組み合わせから成る
群から選択された酵素、特に、60分間目の結晶質:溶解
性セルロース活性比率少なくとも約0.1を有するセルラ
ーゼと接触させて、多孔質膜を洗浄し、その後にこの多
孔質膜を再使用して、ビールの濾過を続けることを含
む、ビールの製造方法を提供する。本発明はさらに、濾
過中に徐々に閉塞する多孔質膜に通してビールを濾過
し、多孔質膜の流出(streaming)又はゼータ・ポテン
シャルを多孔質膜の閉塞度を尺度としてモニターし、多
孔質膜の流出又はゼータ・ポテンシャルによって判定し
て多孔質膜が完全に閉塞する前に、多孔質膜を通しての
ビールの濾過を停止し、多孔質膜を洗浄してから、多孔
質膜を再使用して、ビールの濾過を続けることを含む、
ビールの製造方法を提供する。 図面の簡単な説明 図1は、未使用の、即ち、新しい多孔質膜を通しての
ビール濾過に関するビール濾過量(g)対濾過時間
(秒)のグラフである。 図2は、閉塞した多孔質膜を通してのビール濾過に関
するビール濾過量(g)対濾過時間(秒)のグラフであ
る。 図3は、以前に閉塞して、先行技術方法によって洗浄
された多孔質膜を通してのビール濾過に関するビール濾
過量(g)対濾過時間(秒)のグラフである。 図4は、以前に閉塞して、本発明よって洗浄された多
孔質膜を通してのビール濾過に関するビール濾過量
(g)対濾過時間(秒)のグラフである。 図5は、濾材のゼータ・ポテンシャルを測定するため
のデバイスを示す概略図である。 図6は、濾材のゼータ・ポテンシャル(mV)対電解質
溶液pHのグラフであり、曲線“a"は新しい多孔質膜に関
し、曲線“b"はビール濾過に関連して部分的に閉塞して
いる多孔質膜に関し、曲線“c"はビール濾過に関連して
ほぼ完全に閉塞している多孔質膜に関する。 図7は、バイパス系と図5の測定デバイスとを用いて
ビールを濾過するための装置を示す概略図である。 好ましい実施態様の説明 本発明は、ビール、特に低温濾過ビールの製造方法を
提供する。この方法は多孔質膜、即ち膜フィルターに通
して、膜フィルターが洗浄を必要とするようなときまで
ビールを濾過し、この多孔質膜を酵素と接触させて多孔
質膜を洗浄し、その後に多孔質膜を再使用して、ビール
の濾過を続けることを含む。 多孔質膜がプロテアーゼ、キシラナーゼ及び/又はグ
ルカナーゼによるよりもセルラーゼによって及び/又は
アミラーゼによってより良好にかつより穏やかに洗浄さ
れうることが、意外にも判明している。本発明による洗
浄は、ビール濾過に用いられる多孔質膜の耐用寿命をか
なり延長させるので、ビール製造における多孔質膜の使
用に付随する商業的利益を大きく改良する。 酵素はセルラーゼ、アミラーゼ及びこれらの組み合わ
せから成る群から選択される。上述したように、多孔質
膜の洗浄にセルラーゼ及び/又はアミラーゼと共に、プ
ロテアーゼ、キシラナーゼ及び/又はグルカナーゼを用
いる必要はなく、用いないことが好ましい。セルラーゼ
は望ましくは少なくとも約0.1、より望ましくは少なく
とも約0.3、好ましくは少なくとも約0.4、より好ましく
は少なくとも約0.5、最も好ましくは少なくとも約1、
特に少なくとも約1.2の結晶質:溶解性セルロース活性
比率(以下でさらに詳しく説明)を有する。適当なセル
ラーゼはAspergillus、特にAspergillus nigerに由来
するセルラーゼを包含する。好ましいセルラーゼはTric
hoderma、好ましくはTrichoderma reesei及びTrichode
rma IongibrachiatumとThermomonospora、好ましくはT
hermomonospora fuscaとに由来するセルラーゼを包含
する。セルラーゼの他のソースは米国特許4,912,056に
記載されている。適当なアミラーゼはα−アミラーゼ、
β−アミラーゼ及びこれらの組み合わせを包含する。よ
り好ましくは、本発明の方法にセルラーゼとアミラーゼ
以外の酵素を用いない、即ち、多孔質膜をセルラーゼ又
はアミラーゼ以外の酵素に接触させない。最も好ましく
は、本発明の方法に用いる酵素はセルラーゼであり、最
適には、セルラーゼ以外の酵素を用いない、即ち、多孔
質膜をセルラーゼと接触させて、他の酵素と接触させな
い。 多孔質膜はビールの濾過に適した任意の膜でよい。本
発明に関連して、多孔質膜は典型的に微孔質膜、即ち、
約0.02〜1μmの孔等級を有する多孔質膜である。多孔
質膜は好ましくは約0.1〜1μmの孔等級、最も好まし
くは約0.45μmの孔等級を有する。このような多孔質膜
は細菌と他の好ましくない微生物をビールから除去する
ために用いることができ、好ましくは、ビールを低温殺
菌する必要性を回避する。多孔質膜はまた、ビールから
酵母と、他の好ましくない物質を除去するために用いる
ことができる。適当な多孔質膜は例えばセラミック及び
金属のような無機物質と、好ましくは、例えばポリアミ
ド、ポリエーテルスルホン、ポリオレフィン、ポリビニ
リデンフルオリド等のような、有機ポリマーから製造さ
れた多孔質膜を包含する。多孔質膜は好ましくはポリア
ミド多孔質膜、特にナイロン−6,6多孔質膜である。 本発明による方法の好ましい実施態様は、多孔質膜を
付加的に塩基水溶液と接触させることを特徴とし、望ま
しくは、多孔質膜を第1段階では塩基水溶液と接触さ
せ、第2段階では酵素と接触させる。塩基水溶液として
はNaOH及び/又はKOHの水溶液の使用が好都合であると
判明している。塩基が0.1〜1N、より好ましくは0.25〜1
N、最も好ましくは0.5〜1Nの濃度で存在することが好ま
しい。塩基水溶液による処理は40〜90℃の温度において
最も良く行われる。 本発明による方法のさらなる有利な実施態様は、セル
ラーゼによる処理を40〜50℃の温度及び4.5〜5.5のpHに
おいて行い、α−アミラーゼによる処理を60〜75℃の温
度及び4.6〜5.8のpHにおいて行い、β−アミラーゼによ
る処理を40〜60℃の温度及び4.6〜5.8のpHにおいて行う
ことを特徴とする。 多孔質膜の流出ポテンシャル(streaming potentia
l)又はゼータ・ポテンシャルがもはや変化しない時点
まで、洗浄を行うことが好都合である。操作中に多孔質
膜において生じる流出ポテンシャル又はそれから算出さ
れるゼータ・ポテンシャル(以下参照)は、多孔質膜を
閉塞させた物質が除去されている程度の良好な指標であ
る。 本発明はまた、多孔質膜が適時に洗浄されることを保
証することによって、多孔質膜の耐用寿命を延長させる
ことを目的とする。したがって、本発明は、濾過が進行
するにつれて徐々に閉塞する多孔質膜を通してビールを
濾過することを含むビールの製造を提供する。多孔質膜
が部分的にのみ閉塞する、即ち、完全に閉塞した状態に
まだ達していない特定の時点において、濾過を停止す
る。閉塞度は任意の適当な手段によって、望ましくは、
例えば米国特許5,449,465に一般的に述べられているよ
うに、多孔質膜を横切っての圧力低下をモニターするこ
とによって判定することができる。或いは、本発明は、
フィルターからの流出ポテンシャル及び/又はゼータ・
ポテンシャルの測定による洗浄時間の確認を提供する。 本発明のこの態様は、流出ポテンシャル−−又は、前
者の記録データから補外されるゼータ・ポテンシャル−
−が閉塞度に応じてpH範囲(このpH範囲内でビール醸造
又は濾過が行われる)において変化し、したがって、閉
塞状態の信頼できる、殆ど定量的なインジケーターを意
味するという認識に基づく。そのため、多孔質膜の流出
ポテンシャル及び/又はゼータ・ポテンシャルの測定
は、特定の閉塞状態の正確な像を与えることができる。 多孔質膜が二通りに作用することが知られている。第
一に、多孔質膜はふるい作用する、この場合にはフィル
ターの孔より大きい粒子が媒質から機械的に濾過され
る。第二に、多孔質膜は静電引力によって作用すること
が知られている。膜の孔度より非常に小さい直径の粒子
は、濾材のゼータ・ポテンシャルと粒子のゼータ・ポテ
ンシャルとが反対の極性であるときに、膜上に付着する
(例えば、Pall Filtrationstechnik GmbH,ドイツのI
nformational Brochure SD 872h Gを参照のこ
と)。 ゼータ・ポテンシャルを用いて、多孔質膜の閉塞度を
測定することができるという事実は、本発明の前にはま
だ知られていない。 多孔質膜のゼータ・ポテンシャルは膜の化学的性質に
よって影響される。専門家は、そのゼータ・ポテンシャ
ルが閉塞度に比例して充分に大きい速度で変化するフィ
ルターのみを選択することに困難を有さない−−本発明
を認識する。フィルターのオンラインと、データ獲得を
介しての連続モニターリングとによって、濾過プロセス
を適時に、例えば、閉塞が開始したならば、停止するこ
とができる。 まだ完全には閉塞していないフィルターの洗浄は、完
全に閉塞したフィルターの洗浄よりも非常に容易であ
り、より長い態様寿命を保証する。したがって、本発明
の好ましい方法は、フィルターのゼータ・ポテンシャル
が、フィルターがその未使用状態で示した値の最大20%
に低下した時点で、又は閉塞が80%を超えない時点でフ
ィルターを停止させる。 この方法の他の工夫は、ポリアミドの多孔質膜を用い
て、ゼータ・ポテンシャルが4.2のpHにおいて測定して
−5mVを超えるときに濾過が停止することである。 ビールは正式の濾過、即ち多孔質膜を通しての濾過の
前に、予備濾過を受けることが好ましい。ダイアトマイ
ト(diatomite)としても知られる珪藻土(滴虫土)が
予備濾過の前に殆ど排他的に用いられる。珪藻土と厚い
層濾過(deep−bedfiltration)との組み合わせも実行
可能である。 本発明は任意の適当なビール製造系に用いることがで
きる。好ましくは、本発明は米国特許5,417,101と5,59
4,161に記載されているような、クラスターフィルター
に関して用いられる。 本発明はまた、濾過を受けるビールのフィーダーライ
ンと、多孔質膜と、濾過済みビールの搬出ライン(run
−off line)とを備えた、ビールを濾過するための濾過
ユニットにも関する。これは、バイパスとして機能し、
多孔質膜と、ビールがそれを通って流れるメーターセル
(meter cell)の膜フィルターの流出ポテンシャル及び
/又はゼータ・ポテンシャルをモニターするための例え
ば電極のような手段とを特徴とする、メーターセルとし
てのモジュールを特徴とする。 本発明はまた、濾過を受けるビールのフィーダーライ
ンと、多孔質膜と、濾過済みビールの搬出ラインとを特
徴とする、ビールを濾過するための濾過ユニットをも取
り扱う。上記パラグラフとは異なり、この濾過ユニット
は、多孔質膜を通ってビールが流れるときの流出ポテン
シャル及び/又はゼータ・ポテンシャルをモニター又は
読み取るために多孔質膜に取り付けられた、例えば電極
のような手段を特徴とする。このバリエーションでは、
ゼータ・ポテンシャルは、膜フィルターにバイパスとし
て備えられたメーターセルを介して測定されず、むしろ
膜フィルター自体において測定される。 本発明の実施態様に関連して、任意の適当なバイパス
形態を用いることができる。好ましくは、本発明は米国
特許5,449,465に記載された装置と方法を組み込む。 フィルターのゼータ・ポテンシャルが閉塞の一般状態
に相関するという発見はビール濾過に次のように実現す
ることができる; 1.濾過プロセス中の多孔質膜の流出ポテンシャル及び/
又はゼータ・ポテンシャルに生じる変化を絶えず観察す
ることによって、予想外の又はランダムな発生を防止す
るために、膜の閉塞度を正確に指摘することができ、フ
ィルター交換のためのタイミングの良い測定値を知るこ
とができる。 2.多孔質膜が完全に閉塞する前に濾過を停止することが
できる。このことはフィルターの容易な洗浄を促進す
る。完全に閉塞したフィルター中の閉塞物質は慣用的な
洗浄方法によっては非常な困難を伴ってのみ除去される
ことができるか、又はフィルターから全く除去されるこ
とができず、耐用寿命の短縮をもたらす。 完全な閉塞の前に濾過を停止するならば、洗浄プロセ
スは非常に容易になり、より完全になり、フィルターは
長い寿命を保持する。ポリアミド多孔質膜の場合には、
ゼータ・ポテンシャルがそのオリジナル値の約80%より
多く失っていない点で、即ち80%より以上に閉塞されて
いないときに、濾過を停止するならば、多孔質膜からの
全ての閉塞物質の上首尾な除去を達成することができ
る。 3.洗浄方法の成功は、洗浄済み膜のゼータ・ポテンシャ
ルを測定することによって試験することができる。洗浄
の作用がゼータ・ポテンシャルをほぼそのオリジナル値
に復帰させる。 この方法によって、洗浄プロセスをその効率に関して
評価及び/又は最適化することができる。 4.反復使用の理由からの多孔質膜のエージングを追跡し
て、その残留耐用寿命予測に関する手ごろな推定値を与
えることができる。 5.ゼータ・ポテンシャルを測定することによって、液体
系の閉塞物質とフィルター材料及び/又はフィルターの
シャント手段との間の相互作用を評価して、フィルター
材料(filter material)とシャント材料(shunting ma
terial)(例えば、ダイアトマイト、ベントナイト、パ
ーライト、ポリビニルピロリドン)をビール濾過におけ
る適合性に関して試験することができる。 6.閉塞が開始する時点まで比膜負荷(specific membran
e load)(hl/m2)がその下で記録されるゼータ・ポテ
ンシャルを測定することによって、多孔質膜の耐用寿命
を推定することができる。 閉塞度に比例して顕著な変化を示すゼータ・ポテンシ
ャルを有する多孔質膜がこの方法にとって最も適してい
ることを、当業者は気づいている。これらのパラメータ
ーの実証は上記の簡単な試験方法を用いることによって
充分に容易である。 下記実施例はさらに本発明を説明するが、これらの実
施例を如何なる意味でも本発明の範囲を限定するものと
解釈すべきでない。 実施例1 この実施例は、本発明のビール製造方法の有効性を説
明する。特に、この実施例は、セルラーゼとアミラーゼ
を用いて、ビール濾過の過程において閉塞した多孔質膜
を充分に、この多孔質膜が連続ビール濾過に再使用され
ることができるように洗浄することができることを実証
する。 ナイロン−6,6(NB型、Pall Filtrationstechnik G
mbH,ドイツから商業的に入手可能)から製造された多孔
質膜をフィルターとして用いた。このようなフィルター
は最新技術においてビールの低温濾過にしばしば用いら
れる。 Esserによる、いわゆる膜フィルター試験(Monatszei
tschrift fuer Brauerei(Monthly Magazine for
Breweries),25th年,6号,145〜151頁,1972)を用いて、
フィルターの濾過性能を評価した。この試験は、濾過可
能性を改良するための対策(measures)をチェックする
ために信頼できる。 新しい、即ち、未使用の多孔質膜の濾過効率を測定す
るために、加圧濾過装置(SM16536型、200ml容量;Serto
rius GmbH,Goettingen,ドイツから商業的に入手可能)
を、47mm直径と0.2μm孔度を有するポリアミド ナイ
ロン−6,6多孔質膜に対して用いた。 0℃に冷却したビールを等圧条件(1bar)下で多孔質
膜に通し、濾液量を10秒間毎に秤量した。200gの濾液が
得られた後に、試験を停止した。結果は図1の線図にグ
ラフとして示す。図1は、上記条件下で未使用フィルタ
ーによって約210秒間後に200gの濾液が得られたことを
示す。 同じ条件下で、閉塞した、即ち使用済みの多孔質膜の
濾過性能を試験した。結果は図2に示す、図2は720秒
間においても僅か約60gの濾液が得られたに過ぎないこ
とを示す。 この閉塞した多孔質膜を先行技術方法に従って洗浄し
た。この方法では、以下に説明するように、膜を最初に
酵素によって、次に化学的に洗浄した。 酵素洗浄のためには、閉塞した膜を、pH5(界面活性
剤と酸成分との混合物(P3−Ultrasil 75;Henkelから
商業的に入手可能)の0.05%水溶液によって設定)を有
する、β−グルカナーゼとキシラナーゼとの混合物(P3
−Ultrasil 65;Henkelから商業的に入手可能)の1%
水溶液によって50℃の温度において1時間処理した。そ
の後、この処理をもう1回行った。 次に、膜を、pH9〜9.5(界面活性剤とアルカリ成分と
の混合物(P3−Ultrasil 91;Henkelから商業的に入手
可能)の0.15%水溶液によって設定)を有する、界面活
性剤と、グルカナーゼと、プロテアーゼとの混合物(P3
−Ultrasil 62;Henkelから商業的に入手可能)の0.5%
水溶液によって50℃の温度において3時間処理し、続い
て、温水(50℃)によってすすぎ洗いした。 化学的洗浄のためには、膜を界面活性剤と酸成分との
混合物(P3−Ultrasil 75;Henkelから商業的に入手可
能)の1%水溶液によって60℃において30分間処理し、
次に新鮮な水によってすすぎ洗いした。続いて、膜を界
面活性剤とアルカリ成分との混合物(P3−Ultrasil 9
1;Henkelから商業的に入手可能)1%と、界面活性剤と
酸素ドナーとの混合物(P3−Ultrasil 05;Henkelから
商業的に入手可能)1%とを含有する水溶液によって、
60℃の温度において30分間処理し、次に新鮮な水によっ
てすすぎ洗いした。膜を次に、界面活性剤と酸成分との
混合物(P3−Ultrasil 75;Henkelから商業的に入手可
能)の0.5%水溶液によってもう1回30分間処理し、続
いて、新鮮な水によって、すすぎ水が新鮮な水の導電率
に達するまで、すすぎ洗いした。 次に、この洗浄済み多孔質膜の濾過性能を上記条件下
で再び試験した。結果は図3に示す。図3は、約600秒
間後に200gの濾液が得られたので、濾過性能が幾らか改
良されたことを示す。 その濾過効率を図2に示した、同様に閉塞した膜を本
発明の方法によって洗浄した。この膜をC1−及びCx−セ
ルラーゼの水溶液(この溶液は4.7のpH値を有する)に
よって45℃の温度において30分間処理した。次に膜を同
じ溶液によって、但し5.0のpH値と50℃の温度におい
て、最後に、4.7のpH値と60℃の温度において60分間処
理した。 続いて、膜を50℃の温水によってすずぎ洗いした。本
発明の方法によって洗浄した膜の濾過性能を上記方法に
よって試験した。結果は図4に示す。 図4は、約220秒間後に200gの濾液が得られたことを
示す。これは先行技術(図3)を凌駕する有意な改良を
表す。それ故、本発明による方法は、先行技術の洗浄方
法によって可能であるよりも、使用済み膜のかなり良好
な洗浄を可能にする。 本発明によって、セルラーゼの代りにアミラーゼを用
いた場合にも、同様に良好な結果が得られた。このよう
に、本発明による洗浄方法によって、多孔質膜の耐用寿
命を延長させることができる。 実施例2 この実施例は、多孔質膜の洗浄をアシストするための
多孔質膜の流出ポテンシャル又はゼータ・ポテンシャル
の使用を説明する。特に、流出ポテンシャル又はゼータ
・ポテンシャルが膜の洗浄程度と、何時、膜が最も充分
に洗浄されるかを判定するために有用であることが実証
されている。 膜フィルターのゼータ・ポテンシャルをAnton Paar
GmbH,オーストリアのエレクトロカイネチック測定系
(electrokinetic measuring system)EKAによって測定
した。この測定は流出ポテンシャル法に基づく。電解質
はフィルターを通って流れ、対イオンのせん断(sheari
ng−off)によって生じるポテンシャル(流出ポテンシ
ャル)を電極によって検出して、この測定量からゼータ
・ポテンシャルを算出する(以下参照)。 図5は、流出ポテンシャル又はゼータ・ポテンシャル
を測定した測定セルを概略的に示す。参照番号1は測定
セルを示し、このセルでは多孔質膜2をポリテトラフル
オロエチレンから製造されたフィルターホルダー3と4
に、たわまないように、クランプされている。フィルタ
ーホルダー3と4は、それぞれ、2ツノピストン5と6
の末端部であり、測定セル1の円筒形部分7内に移動の
ために取り付けられている。 ピストン5と6の末端部3と4は、それぞれ、濾過さ
れるべき流体のための微細孔10と11を有し、穿孔電極8
と9を多孔質膜2に押圧する。電極8と9はピストン5
と6の内側に伸びる電気端子12と13に接続するので、膜
2を通って流体が流れるときに生じる流出ポテンシャル
を測定することができる。電流の通過中に低い分極を示
す銀電極又は塩化銀電極が電極として好ましい。ピスト
ン6と7は、それぞれ、シール14と15に、一方では、こ
れらが移動可能であり,他方ではこれらが測定セルから
流体が漏出するのを許さないように取り付けられる。 濾過されるべき流体は供給ライン16を通って測定セル
1の円筒形部分7に流入し、ピストン6の微細孔10を通
り、電極8を通り、多孔質膜2を通って、電位が生じ
る。濾過済み流体は電極9を通って流れて、同様にポテ
ンシャルを形成しながら、ピストンの微細孔11を通り、
放出ライン17を通って測定セルを出る。 測定された流出ポテンシャルからゼータ・ポテンシャ
ルを算出するために、供給ライン16と放出ライン17との
間の測定セル内の差圧の測定(説明せず)、導電率、及
びpH値も必要である。ゼータ・ポテンシャルはこれらの
測定量から次のように算出される: 式中、Uは流出ポテンシャルであり、△Pは差圧であ
り、LFは導電率であり、ηは粘度であり、εεは比誘
電率である。 閉塞が進行するときの膜フィルターのゼータ・ポテン
シャル変化は図6に示す。この図は、ミリボルトでのゼ
ータ・ポテンシャルが縦座標にプロットされ、ゼータ・
ポテンシャルを測定したpH値が横座標にプロットされた
線図である。電解質溶液(0.001NのKCl水溶液)のpH値
は0.1N HCl又は0.1N NaOHによって設定した。指定し
た圧力差は350mbarであった。 上述した測定セルによって、新しい、即ち、未使用の
ポリアミド製多孔質膜(NB型;Pall Filtrationstechni
k GmbH,6072 Dreieich 1,ドイツから商業的に入手可
能)のゼータ・ポテンシャルを種々なpH値において最初
に測定することによって、線図を得た。 未使用多孔質膜に関する結果を曲線“a"としてプロッ
トする。未使用多孔質膜がアルカリ性pHによって約−18
mVのゼータ・ポテンシャルを有し、pHの低下によってゼ
ータ・ポテンシャルが上昇して、最後には、約3のpHに
おいて零に達することが明らかである。 曲線“b"は、上述した同じ条件下で、但し、ビールの
濾過に使用した後の、それ故、部分的閉塞を有する多孔
質膜のpH値へのゼータ・ポテンシャルの依存性を示す。
明らかであるように、このゼータ・ポテンシャルは部分
的閉塞によって幾らか上昇するが、約7のpH値において
約−15mVの値に達するに過ぎない。 曲線“c"は、ほぼ完全に閉塞した状態の同じ多孔質膜
に関してプロットしたものである。このゼータ・ポテン
シャルが今や、pH値によって極僅かに変化するに過ぎ
ず、アルカリ性範囲においても約−2mV未満に低下しな
いことが明らかである。 本発明による洗浄を試験するために、洗浄すべき膜の
ゼータ・ポテンシャルを測定する、洗浄済み膜のゼータ
・ポテンシャルが未使用膜のゼータ・ポテンシャルの方
向にできる限り大きくシフトするならば、洗浄は成功で
あった。 そのゼータ・ポテンシャルが閉塞度の関数として充分
に大きな程度に変化する多孔質膜が、本発明による方法
に用いるために特に良好に適することは、当業者に明ら
かであろう。この特徴は、簡単な試験によって当業者が
容易に判定することができる。 ポリアミドの多孔質膜が、濾過を受けるビールのpH
(約pH=4.2)におけるゼータ・ポテンシャルが漸進的
な閉塞によって重度な変化を受けるので、このプロセス
に関して特に適する。図6から知ることができるよう
に、濾過の開始時のこの特定のpHにおける膜は約−8mV
のゼータ・ポテンシャルを示す。完全に閉塞した膜は約
−2mVのゼータ・ポテンシャルを有する。 図7は、図5に示した、バイパスとしてそれに付属す
るメーターセル22を有する濾過室18を特徴とする上記濾
過ユニットの変形を示す。この濾過室18はフィルター・
キャンドル(filter candles)を有する。 濾過を受けるビールはライン20から濾過室18に供給さ
れ、フィルター・キャンドル(膜フィルター)19を通っ
て流れて、濾過室18から搬出ライン21を通って濾過済み
ビールとして出る。 メーターセルを図7に細部なしに示す。メーターセル
22を通る実際の流れは、濾過室18の多孔質膜表面のcm2
当りの量に等しい、多孔質膜表面のcm2当りのビール量
が濾過される程度に制御されなければならない。 フィルター試験膜2(図5)の濾過中のメーターセル
1内側のゼータ・ポテンシャルの重度な変化は、濾過室
18内のフィルター・キャンドル19の状態の評価を可能に
する。 実施例3 この実施例は、溶解性及び結晶性セルロース基質の酵
素分解におけるAspergillus niger由来のセルラーゼの
有効性を説明する。 Aspergillus niger由来のセルラーゼはFluka(品目
番号22178)から入手した。この酵素を2種類の異なる
セルロース:溶解性カルボキシメチルセルロース(CMC,
品目番号41927−3としてAldrichから入手可能)と結晶
質セルロース(Avicel,品目番号PH−105としてFMCから
入手可能)に関して評価した。 試験方法は(i)18ml CMC(1%)又はAvicel(1
%)、(ii)5ml 酢酸ナトリウム緩衝液(50mM,pH4.
8)及び(iii)30℃における酢酸ナトリウム緩衝液(50
mM,pH4.8)中の酵素溶液 5mlのインキュベーション溶
液の調製を必要とした。次に、1.4mlのインキュベーシ
ョン溶液に0.1mlのグルコース溶液(0.15%)と、1.5ml
の3,5−ジニトロサリチル酸(DNS)試薬(Sigmaから品
目番号D−0550として入手可能)とを混合することによ
って、試験溶液を調製した。試験溶液を15分間煮沸し
た。時間(分)の関数としての総μmolグルコース当量/
mg酵素を、2つの並行サンプルを用いて、Miller,Anal.
Chem.31,426〜28(1959)に記載された方法に従って、
グルコース標準による直線キャリブレーションを用い
て、分光測光法(575nm)によって測定した。たんぱく
質量はBradford,Anal.Biochem.72,248〜64(1976)に記
載された方法によって、ウシ血清アルブミン(BSA)標
準を用いて測定した。 セルロースの酵素分解はグルコースの産生を生じるの
で、総μmolグルコース当量/mg酵素の測定は、特定の種
類のセルロース、例えば溶解性(CMC)又は結晶質(Avi
cel)セルロースに関する酵素活性の尺度である。 アスペルギルス ニガー(Aspergillus niger)から
誘導したセルラーゼに関するこの評価の結果を表1に示
す。可溶性(CMC)セルロース基質の試験溶液は、0.8mg
酵素/28ml培養液(約17.6μg蛋白質)を含んでいた。
結晶質(Avicel)セルロース基質の試験溶液は、0.35mg
酵素/28ml培養液(約7.7μg蛋白質)を含んでいた。 可溶性セルロース基質と比較して結晶質セルロース基
質に対して比較的強い活性を有するこれらの酵素は、ビ
ールの濾過で使用した多孔質膜の清浄に特に有効である
ことが知見された。結晶質セルロース基質に対して生成
したグルコース当量と可溶性セルロース基質に対して生
成したグルコース当量の割合は本発明における酵素の有
効性の指標であり、結晶質:可溶性セルロース活性比と
して記載する。結晶質:可溶性セルロース活性比は、こ
の実施例で記載した試験プロトコルの時間の範囲、例え
ば、30分、60分及び/または90分、特に60分で先に記載
した値を有するのが望ましい。 表1に示されたデータから明らかなように、アスペル
ギルス ニガー由来のセルラーゼは60分における結晶
質:可溶性セルロース活性比0.11を有し、かかるセルラ
ーゼがビール濾過で使用した多孔質膜の清浄目的に関し
て適度に有効な酵素であることを示している。 実施例 4 この実施例は、酵素分解性の可溶性セルロース基質と
結晶質セルロース基質におけるトリコデルマ レーセイ
(Trichoderma reesei)から誘導したセルラーゼの有効
性を示す。 トリコデルマ レーセイから誘導したセルラーゼは、
Flukaより入手した(品目番号22173)。この酵素を実施
例3と同様の方法で評価した。 トリコデルマ レーセイから誘導したセルラーゼに関
して評価した結果を表2に示す。可溶性(CMC)セルロ
ース基質の試験溶液は0.37mg酵素/28ml培養液(約128μ
g蛋白質)を含んでいた。結晶質(Avicel)セルロース
基質の試験溶液は、0.08mg酵素/28ml培養液(約25.6μ
g蛋白質)を含んでいた。 表2のデータから明らかなように、トリコデルマ レ
ーセイから誘導したセルラーゼの60分における結晶質:
可溶性セルロース活性比は0.54であり、かかるセルラー
ゼがビールの濾過で使用した多孔質膜の清浄目的に関し
て優れた酵素であることを示している。 実施例5 この実施例は、酵素分解性の可溶性セルロース基質及
び結晶質セルロース基質におけるバシラス サチリス
(Bacillus subtilis)から誘導したβ−セルラーゼの
有効性を示す。 バシラス サチリスから誘導したセルラーゼは、Fluk
aより入手した(品目番号49106)。この酵素を実施例3
と同様の方法で評価した。 バシラス サチリスから誘導したβ−セルラーゼに関
して評価した結果を表3に示す。可溶性(CMC)セルロ
ース基質の試験溶液は14.4mg酵素/28ml培養液(約8.3μ
g蛋白質)を含んでいた。結晶質(Avicel)セルロース
基質の試験溶液は、16.6mg酵素/28ml培養液(約8.8μg
蛋白質)を含んでいた。 表3に示されたデータから明らかなように、バシラス
サチリス由来のβ−セルラーゼは60分における結晶
質:可溶性セルロース活性比0.10を有し、かかるセルラ
ーゼがビール濾過で使用した多孔質膜の清浄目的に関し
て適度に有効な酵素であることを示している。 実施例6 この実施例は、酵素分解性の可溶性セルロース基質と
結晶質セルロース基質におけるサーモモノスポラ フス
カ(Thermomonospora fusca)から誘導したエキソセル
ラーゼ(exocellulase)の有効性を示す。 サーモモノスポラ フスカから誘導したエキソセルラ
ーゼE3は、コーネル大学より入手した。培養液が50℃で
振盪した(i)18mlCMC(1%)またはAvicel(1
%)、(ii)9ml酢酸ナトリウム緩衝液(50mM,pH5.
6)、及び(iii)酢酸ナトリウム緩衝液(50mM,pH5.6)
中酵素溶液1mlを含んでいた(約960μm蛋白質)以外に
は、この酵素を実施例3と同様の方法で評価した。試験
溶液は、実施例3に記載のDNS試験よりもむしろ着色試
験を使用して評価した。 サーモモノスポラ フスカから誘導したセルラーゼに
関して評価した結果を表4に示す。 表4に示されたデータから明らかなように、サーモモ
ノスポラ フスカ由来のエキソセルラーゼは60分におけ
る結晶質:可溶性セルロース活性比1.33を有し、かかる
セルラーゼがビール濾過で使用した多孔質膜の清浄目的
に関して優れた酵素であることを示している。 実施例7 この実施例は、酵素分解性の可溶性セルロース基質と
結晶質セルロース基質におけるバシラス サチリス(Ba
cillus subtilis)から誘導したα−アミラーゼの有効
性を示す。 バシラス サチリスから誘導したα−アミラーゼは、
Flukaより入手した(品目番号10069)。培養液が30℃で
振盪した(i)18mlCMC(1%)またはAvicel(1
%)、(ii)5ml酢酸ナトリウム緩衝液(50mM,pH6.
9)、及び(iii)酢酸ナトリウム緩衝液(50mM,pH6.9)
中酵素溶液5mlを含んでいた(約8.5μm蛋白質)以外に
は、この酵素を実施例3と同様の方法で評価した。試験
溶液は、実施例3に記載のDNS試験よりもむしろ着色試
験を使用して評価した。 バシラス サチリスから誘導したα−アミラーゼに関
して評価した結果を表5に示す。 表5に示されたデータから明らかなように、バシラス
サチリス由来のα−アミラーゼは、60分における結晶
質:可溶性セルロース活性比約0(<0.1μmol検出限
界)を有し、かかるアミラーゼは先に記載したセルラー
ゼほどビール濾過で使用した多孔質膜の清浄目的に関し
て有効な酵素ではないことが解る。 実施例8 この実施例は、酵素分解性の可溶性セルロース基質と
結晶質セルロース基質における種々のセルラーゼの有効
性を示す。 セルラーゼ調製物:(a)Cx−セルラーゼ(粉末、品
目番号VP0945/2)、(b)トリコデルマ レーセイ由来
のC1−セルラーゼ(粉末、品目番号VP0965/2)、(c)
C1−セルラーゼ(液体、品目番号Cleanzym SB1)、
(d)C1−セルラーゼ(液体、品目番号VP0976/4)、
(e)セルラーゼ(液体、品目番号VP0971/1)、及び
(f)セルラーゼ(液体、品目番号VP0971/4)はErbslo
h Companyより入手した。培養液が(i)酢酸ナトリウ
ム緩衝液(50mM,pH4.8)中の23ml CMC(1%)またはA
vicel(1%)、及び(ii)酢酸ナトリウム緩衝液(50m
M,pH4.8)中の酵素溶液5mlを含んでいた以外には、この
酵素を実施例3と同様の方法で評価した。粉末化酵素調
製物(5mg/ml)と液体酵素調製物(5μl/ml)から0.5
%ストック溶液を製造した。溶液を30℃で振盪した。試
験溶液は、1:5に希釈した後に、実施例3に記載のDNS試
験よりもむしろ着色試験を使用して評価した。 種々のセルラーゼに関する評価結果を表6に示す。グ
ルコース当量データは平均のμmolグルコース当量/分
(全時間間隔)であり、(表1〜5に記載のデータの条
件のように)酵素mg当たりで標準化していない。勿論、
割合を計算する際に単位を配分する限り、結晶質:可溶
性セルロース活性比はグルコース当量の単位により変化
しない(即ち、割合には単位がない)。 表6に示したデータから明らかなように、種々のセル
ラーゼは60分で0.4〜1.0の範囲の結晶質:可溶性セルロ
ース活性比を有し、これらがビール濾過で使用した多孔
質膜の清浄の目的に関して優れた酵素であることを示し
ている。 実施例9 この実施例は、ビールを製造する本発明の方法の有効
性について詳細に説明するものである。特に、本実施例
は、セルラーゼだけを使用する(即ち、他の酵素を使用
しない)と、連続ビール濾過で使用するために多孔質膜
を戻す目的に関して、ビールを濾過する間に目詰まりし
た多孔質膜の清浄に非常に優れていることを示す。 種々の特徴を有するビールをクラスターフィルター装
置で0.45μmの口径(pore rating)を有するナイロン
−6,6多孔質膜(約300m2)(PALL−CFS、Pall Filtrati
onstechnik GmbH,ドイツ)を通して濾過した。特定のビ
ール濾過間隔で、多孔質膜を本発明の清浄工程にかけ
た。 清浄工程は、0.5%NaOH溶液で15分間の循環、続いて6
0分間のソーキングを含んでいた。次いで多孔質膜を水
でバックフラッシュした。38℃の水でクラスターフィル
ター装置を通して内部ループを設置した。乳酸を水に添
加してpHを4.2±0.3に調節し、次いでErbsloh Company
より入手したトリコデルマ ロンジブラチアタム(Tric
hoderma longibrachiatum)から誘導したセルラーゼ
(品目番号VP0945/1)を含有する酵素調製物6lを投与ポ
ンプを介して水に添加した。水中酵素調製物(約20〜40
g酵素/100kgフィルターハウジング流体容積の濃度)を
約15分間循環させ、続いて30分ソーキング、さらに15分
間循環し、最後に6時間ソーキングした。次いで多孔質
膜を水でバックフラッシュした。 約90,000hlの全ビールを多孔質膜で濾過した後に多孔
質膜を清浄し、次いで多孔質膜を施設に戻した。即ち、
ビール濾過を継続した。約100,000hl、約140,000hl及び
約160,000hlの全ビールを多孔質膜を通して濾過した後
に、多孔質膜を同様に清浄し、施設に戻した。約190,00
0hlの全ビール(total beer)を多孔質膜で濾過した
後、多孔質膜は機械的に破壊した。 上記データは、本発明を使用すると思い通りにビール
を製造し得ることを示す。特に、本発明によって多孔質
膜を効果的に清浄し且つ施設に戻し得るというこの実施
例の結果により、ビール製造工程で多孔質媒体の有効耐
用時間を延長できることを示す。 特許、特許出願及び刊行物を含む本明細書中で引用し
た全ての文献は、本明細書中その全体を参照として含む
ものとする。 好ましい実施態様を強調して本発明を記載してきた
が、当業者には好ましい態様の種々の変形が可能であ
り、本明細書中に特記した以外にも本発明を実施し得る
ことが明らかであろう。従って、本発明は、以下の請求
項により定義されるように本発明の趣旨及び範囲内に全
ての変形を包含するものとする。
TECHNICAL FIELD OF THE INVENTION   The present invention relates to a method for producing beer, in particular, passing beer through a filter medium.
And ferment so that the filter media can be reused for beer filtration.
The present invention relates to a method for washing a filter medium with element. Background of the Invention   Considering the expanded sales channels, making beer storable
To remove microorganisms (eg, bacteria) from beer
There must be. At present, microbe removal is mainly beer
It is done by pasteurization. For this, beer
Into a bottle or can, for example, and heat to a temperature of 62-69 ° C.
To kill microorganisms.   However, this pasteurization requires considerable energy consumption.
I need it. This is because the energy introduced is a chemical reaction.
These chemical reactions can trigger the product
No further disadvantage that it is difficult to control
Having. These reactions are, for example,
Adversely affect the pasteurization (“pasteurized tast
e) "), further undesired substances being formed
There is a risk. Therefore, pasteurization requires high energy consumption.
Costly and, consequently, harmful to the environment,
Relatively expensive microbial removal methods that reduce product quality
Is the law.   Another known microbial removal method is cryogenic filtration. Low
Hot filtered beer is available, for example, in the United States, Japan and Korea.
Available as so-called "draft beer". this
Beer contains technical enzymes
And is banned in Europe.   These industrial enzymes lack the inherent cryogenic-filtration methods.
Point: To prevent the filter from blocking easily,
Exist in the file. This occlusion can occur in filters, e.g. membranes
The material to be filtered from the beer, upstream of the filter
Depending on the deposits. This deposit is removed from the filter
Filtering is difficult or even impossible
The service life of the machine. This means that the membrane filter
The cost of making beer.
You.   Membrane filter to extend the service life of the filter
Manufacturer manufactures used membranes for protease, glucanase
And xylanase, eg, detergents, acids / alkali
And by treating with chemicals such as oxidants
Recommend to clean the membrane and make the used membrane reusable
I'm worried. This cleaning is, for example, in two stages, the first in which
Optionally with the enzyme described above,
This can be done by additional cleaning with chemicals.   The literature is also used for beer filtration, including various techniques.
A method for cleaning a membrane filter is disclosed. For example,
U.S. Pat.
A method for cleaning an amide microporous membrane, wherein the microporous membrane is diluted.
Discloses a method by passing a thin alkaline solution.
You. International patent application WO96 / 23579 used for beer filtration
Several different methods of membrane filters are disclosed. this
The method uses a membrane filter of β-glucanase, xylana
Treated with an enzyme-containing aqueous solution of
Washing the membrane filter with an acidic washing aqueous solution, and
Cleaning with a peroxide containing alkaline cleaning solution
It is characterized by.   For example, about 320mTwoAssuming a filter area of
For example, the washing method is to filter 5,000 ha
After each wash, prepare an enzyme wash and filter 20,000 hectares.
Provide additional chemical cleaning after each pass. Manufacturer recommends
About 320mTwoHas the above filter area
Filters have a typical useful life of about 100,000 hectares
This is the title.   However, the cleaning method known until now
Deposits could not be sufficiently removed, which
As the age of the filter increases, the cleaning effect
It has the drawback of reducing the rate to strength.   Yet another disadvantage is the total nitrogen content or the original wool.
Filter membrane protrusions that are not related to standards such as
Natural random blockage. Completely closed membrane filter
Can be thoroughly cleaned with state-of-the-art methods
And strongly reduce the service life of the filter. What time
The filter is too occluded to be cleaned enough
It is difficult to know if the
Is not early or timely, i.e. too early or
May be too slow to be cleaned.   In view of the above problems, an improved beer production method,
Can be cleaned especially well and can be reused
Must be able to filter beer through filter media
The necessity exists. The present invention provides such a method.
These and other advantages of the present invention, as well as other features of the present invention,
It will be apparent from the description of the invention provided herein.
Would. BRIEF SUMMARY OF THE INVENTION   The present invention is useful when the porous membrane requires cleaning.
The beer is filtered through a porous membrane with
Consisting of lulase, amylase and combinations thereof
Enzymes selected from the group, especially crystalline for 60 minutes: dissolution
Having a cellulosic cellulose activity ratio of at least about 0.1
The porous membrane is washed by contact with
Includes reuse of porous membrane and continued filtration of beer
To provide a method for producing beer. The present invention further provides a filter.
Filtration of beer through a porous membrane that gradually blocks in the middle
And porous membrane streaming or zeta potential
The char is monitored using the degree of occlusion of the porous membrane as a measure.
Judge by porous membrane runoff or zeta potential
Before the porous membrane is completely closed
Stop beer filtration, wash the porous membrane,
Including reusing the membrane and continuing filtration of the beer,
A method for producing beer is provided. BRIEF DESCRIPTION OF THE FIGURES   FIG. 1 shows an unused, ie, new, porous membrane through
Beer filtration volume (g) vs. filtration time for beer filtration
It is a graph of (second).   FIG. 2 relates to beer filtration through a closed porous membrane.
Is a graph of the amount of beer filtration (g) to be performed versus the filtration time (sec)
You.   FIG. 3 shows a previously closed and cleaned by prior art method.
Beer Filtration for Beer Filtration Through Improved Porous Membrane
5 is a graph of excess (g) versus filtration time (seconds).   FIG. 4 shows a multi-cell tube previously closed and cleaned according to the present invention.
Beer filtration volume for beer filtration through porous membranes
(G) Graph of filtration time (seconds).   Figure 5 shows the measurement of the zeta potential of the filter media.
It is a schematic diagram showing a device.   Figure 6 shows the zeta potential (mV) of the filter media versus the electrolyte
Graph of solution pH, curve “a” relates to a new porous membrane
And curve "b" is partially obstructed in connection with beer filtration.
For a given porous membrane, curve "c" is related to beer filtration.
It relates to a porous membrane that is almost completely occluded.   FIG. 7 illustrates the use of the bypass system and the measuring device of FIG.
FIG. 2 is a schematic diagram showing an apparatus for filtering beer. Description of the preferred embodiment   The present invention relates to a method for producing beer, in particular low temperature filtered beer.
provide. This method involves passing through a porous membrane, a membrane filter.
Until the membrane filter needs cleaning
Filter the beer and contact the porous membrane with the enzyme
Wash the porous membrane and then reuse the porous membrane to
Continuation of the filtration.   The porous membrane is made of protease, xylanase and / or
By cellulase rather than by lucanase and / or
Better and more gentle washing with amylase
It has been surprisingly found that this can be done. Washing according to the invention
Purification depends on the useful life of the porous membrane used for beer filtration.
The use of porous membranes in beer production.
Greatly improve the commercial benefits associated with   Enzymes include cellulase, amylase and combinations thereof
Selected from the group consisting of As mentioned above, porous
Along with cellulase and / or amylase,
Use Rotase, Xylanase and / or Glucanase
It is not necessary to use it and it is preferable not to use it. Cellulase
Preferably at least about 0.1, more preferably less
Both about 0.3, preferably at least about 0.4, more preferably
Is at least about 0.5, most preferably at least about 1,
Crystalline at least about 1.2: soluble cellulose activity
Ratio (described in more detail below). Suitable cell
Lase from Aspergillus, especially Aspergillus niger
And cellulase. The preferred cellulase is Tric
hoderma, preferably Trichoderma reesei and Trichode
rma Iongibrachiatum and Thermomonospora, preferably T
Includes cellulase derived from hermomonospora fusca
I do. Other sources of cellulases are in US Patent 4,912,056
Has been described. Suitable amylases are α-amylases,
β-amylase and combinations thereof. Yo
More preferably, the method of the present invention comprises a cellulase and an amylase.
No other enzymes are used, that is, the porous membrane is treated with cellulase or
Do not come into contact with enzymes other than amylase. Most preferred
Means that the enzyme used in the method of the present invention is cellulase,
Suitably, no enzymes other than cellulase are used, i.e.
Contact the membrane with cellulase and not with other enzymes.
No.   The porous membrane can be any membrane suitable for filtering beer. Book
In connection with the invention, the porous membrane is typically a microporous membrane, i.e.
It is a porous membrane having a pore size of about 0.02 to 1 μm. porous
The membrane preferably has a pore size of about 0.1-1 μm, most preferably
It has a pore size of about 0.45 μm. Such a porous membrane
Removes bacteria and other unwanted microorganisms from beer
Preferably, beer is pasteurized
Avoid the need to germs. Porous membranes also come from beer
Used to remove yeast and other undesirable substances
be able to. Suitable porous membranes are, for example, ceramics and
An inorganic material such as a metal, preferably
, Polyether sulfone, polyolefin, polyvinyl
Manufactured from organic polymers, such as redene fluoride
Porous membranes. The porous membrane is preferably poly
Mido porous membranes, especially nylon-6,6 porous membranes.   In a preferred embodiment of the method according to the invention, the porous membrane
It is characterized by additionally contacting with an aqueous base solution.
Alternatively, in the first step, the porous membrane is brought into contact with an aqueous base solution.
In the second step, the enzyme is brought into contact with the enzyme. As an aqueous base solution
Is advantageous to use an aqueous solution of NaOH and / or KOH
It is known. The base is 0.1-1N, more preferably 0.25-1.
N, most preferably at a concentration of 0.5-1N.
New Treatment with aqueous base at a temperature of 40 to 90 ° C
Best done.   A further advantageous embodiment of the method according to the invention comprises a cell
Raise the treatment to a temperature of 40-50 ° C and a pH of 4.5-5.5.
And treatment with α-amylase at a temperature of 60 to 75 ° C.
At a pH of 4.6 to 5.8 and by β-amylase.
At a temperature of 40-60 ° C and a pH of 4.6-5.8.
It is characterized by the following.   Streaming potentia of porous membrane
l) or when the zeta potential no longer changes
It is convenient to carry out the washing until. Porous during operation
Outflow potential generated in the membrane or calculated from it
Zeta potential (see below) depends on the porous membrane
This is a good indicator that the occluded material has been removed.
You.   The present invention also ensures that the porous membrane is cleaned in a timely manner.
To extend the useful life of porous membranes
The purpose is to: Therefore, in the present invention, the filtration proceeds
Beer through a porous membrane that gradually closes as
There is provided a production of beer comprising filtering. Porous membrane
Is only partially occluded, ie completely occluded
Stop filtration at a specific point that has not yet been reached
You. The degree of occlusion is preferably determined by any suitable means,
For example, as generally described in US Patent 5,449,465
Monitor the pressure drop across the porous membrane
Can be determined by Alternatively, the present invention
Outflow potential from the filter and / or zeta
Provides confirmation of cleaning time by measuring potential.   This aspect of the invention is based on the runoff potential
Zeta potential extrapolated from recorded data
-Indicates the pH range according to the degree of blockage (beer brewing within this pH range)
Or the filtration takes place) and therefore closes
A reliable, almost quantitative indicator of occlusion status
Based on the perception of taste. Therefore, the outflow of the porous membrane
Measurement of potential and / or zeta potential
Can provide an accurate image of a particular occlusion.   It is known that porous membranes work in two ways. No.
First, the porous membrane acts as a sieve, in this case
Particles larger than the pores of the
You. Second, the porous membrane acts by electrostatic attraction
It has been known. Particles with a diameter much smaller than the porosity of the membrane
Is the zeta potential of the filter media and the zeta potential of the particles.
Adheres to the membrane when the polarity is opposite
(For example, Pall Filtrationstechnik GmbH, I
nformational Brochure SD 872h See G
When).   Use the zeta potential to determine the degree of blockage of the porous membrane
The fact that it can be measured
Not known.   Zeta potential of porous membrane depends on membrane chemistry
Affected by Experts say that Zeta Potentia
Filter changes at a sufficiently high rate in proportion to the degree of blockage.
There is no difficulty in selecting only Luther--the present invention
Recognize. Filter online and data acquisition
Through continuous monitoring and through the filtration process
Should be stopped in a timely manner, for example, if occlusion begins.
Can be.   Washing of filters that are not yet completely blocked is complete.
It is much easier than cleaning a completely blocked filter.
And guarantees a longer mode life. Therefore, the present invention
The preferred method is the zeta potential of the filter
Is up to 20% of the value that the filter showed in its unused state
At the time of the drop or the occlusion does not exceed 80%.
Stop the filter.   Another approach to this method is to use a porous polyamide film.
The zeta potential measured at a pH of 4.2
Filtration stops when it exceeds -5 mV.   Beer has a formal filtration, ie filtration through a porous membrane
Before, it is preferred to undergo a pre-filtration. Diatomie
Diatomite, also known as diatomite,
Used almost exclusively before prefiltration. Diatomaceous earth and thick
Combined with deep-bedfiltration
It is possible.   The invention can be used in any suitable beer production system.
Wear. Preferably, the present invention relates to U.S. Patents 5,417,101 and 5,595.
Cluster filter as described in 4,161
Used for   The invention also relates to a feeder line for beer that is subjected to filtration.
, Porous membrane, and filtered beer discharge line (run
-Off line) for filtration of beer
Also regarding units. This acts as a bypass,
Porous membrane and meter cell through which beer flows
(Meter cell) membrane filter outflow potential and
// Illustration for monitoring zeta potential
A meter cell characterized by means such as electrodes
All modules are featured.   The invention also relates to a feeder line for beer that is subjected to filtration.
, A porous membrane, and a line for unloading filtered beer.
It also has a filtration unit for filtering beer.
Treat. Unlike this paragraph, this filtration unit
Is the outflow potential when beer flows through the porous membrane
Monitor Char and / or Zeta potential
E.g. electrodes attached to a porous membrane for reading
It is characterized by the following means. In this variation,
Zeta potential is bypassed to the membrane filter
Not measured via the provided meter cell, but rather
It is measured at the membrane filter itself.   Any suitable bypass in connection with embodiments of the present invention
Forms can be used. Preferably, the invention is a US
Incorporates the apparatus and method described in Patent 5,449,465.   General condition where the zeta potential of the filter is blocked
Is discovered in beer filtration as follows:
Can be 1. The outflow potential of the porous membrane during the filtration process and / or
Or constantly observe changes in the zeta potential
Prevent unexpected or random occurrences
Therefore, the degree of membrane occlusion can be accurately identified,
Know timely measurements for filter replacement
Can be. 2. It is possible to stop filtration before the porous membrane is completely closed
it can. This facilitates easy cleaning of the filter
You. Occlusion material in a completely occluded filter should be
Removed only with extreme difficulty depending on the cleaning method
Can be removed from the filter
And shorten the useful life.   If filtration is stopped before complete occlusion, the washing process
Filters are much easier and more complete, filters are
Keeps a long life. In the case of a polyamide porous membrane,
Zeta potential is about 80% of its original value
Not lost much, ie more than 80% occluded
If the filtration is stopped when not
Successful removal of all occlusive substances can be achieved
You. 3. Success of cleaning method depends on zeta potential of cleaned membrane
Can be tested by measuring the Washing
Action reduces the zeta potential to almost its original value
To return to.   In this way, the cleaning process can be
It can be evaluated and / or optimized. 4. Track the aging of porous membranes due to repeated use
To provide a reasonable estimate of the residual service life prediction.
Can be obtained. 5. By measuring the zeta potential, the liquid
Of the system occluding material and filter material and / or filter
Assess the interaction between the shunt means and filter
Material (filter material) and shunting material (shunting ma)
terial) (for example, diatomite, bentonite,
-Light, polyvinylpyrrolidone) in beer filtration
Can be tested for compliance. 6. Until the time when occlusion starts, specific membrane load
e load) (hl / mTwo) Is recorded under it
The service life of the porous membrane
Can be estimated.   Zeta potential showing a significant change in proportion to the degree of obstruction
A porous membrane with a vial is most suitable for this method.
Those skilled in the art are aware of this. These parameters
Demonstration can be performed using the simple test method described above.
Easy enough.   The following examples further illustrate the invention, but do not
The examples are intended to limit the scope of the invention in any way
Should not be interpreted. Example 1   This example illustrates the effectiveness of the beer production method of the present invention.
I will tell. In particular, this example demonstrates cellulase and amylase
Porous membrane clogged in the process of beer filtration using
Enough, this porous membrane is reused for continuous beer filtration
Demonstration that it can be cleaned so that it can be
I do.   Nylon-6,6 (NB type, Pall Filtrationstechnik G
porosity manufactured from mbH, commercially available from Germany)
The membrane was used as a filter. Such a filter
Is often used in the latest technology for low-temperature filtration of beer
It is.   The so-called membrane filter test by Esser (Monatszei
tschrift fuer Brauerei (Monthly Magazine for
Breweries), 25thYear 6, No. 145-151, 1972)
The filtration performance of the filter was evaluated. This test is filterable
Check for measures to improve performance
Reliable for you.   Measure the filtration efficiency of a new, i.e., unused, porous membrane.
Pressure filter (SM16536, 200ml capacity; Serto
commercially available from rius GmbH, Goettingen, Germany)
With a polyamide nylon having a diameter of 47 mm and a porosity of 0.2 μm.
Used for Ron-6,6 porous membrane.   Beer cooled to 0 ° C is porous under isobar conditions (1bar)
Through the membrane, the filtrate volume was weighed every 10 seconds. 200 g of filtrate
After being obtained, the test was stopped. The results are plotted in the diagram of FIG.
Shown as rough. Figure 1 shows a filter that has not been used under the above conditions.
-After about 210 seconds, 200 g of filtrate was obtained.
Show.   Under the same conditions, the closed or used porous membrane
The filtration performance was tested. The results are shown in FIG. 2, which is 720 seconds.
Only about 60 g of filtrate were obtained
And   The clogged porous membrane is washed according to prior art methods.
Was. In this method, as described below, the membrane is first
It was then chemically washed by the enzyme.   For enzyme cleaning, occluded membranes should be pH 5
Mixture of agent and acid component (P3-Ultrasil 75; from Henkel
(Commercially available) set with 0.05% aqueous solution
A mixture of β-glucanase and xylanase (P3
-1% of Ultrasil 65; commercially available from Henkel)
The solution was treated with the aqueous solution at a temperature of 50 ° C. for 1 hour. So
After this, this treatment was performed once more.   Next, the membrane was adjusted to pH 9 to 9.5 (with a surfactant and an alkali component).
(P3-Ultrasil 91; commercially available from Henkel)
Surface active with (possible) 0.15% aqueous solution)
Mixture of sexually active agent, glucanase and protease (P3
0.5% of -Ultrasil 62; commercially available from Henkel)
Treated with an aqueous solution at a temperature of 50 ° C. for 3 hours,
And rinsed with warm water (50 ° C.).   For chemical cleaning, the membrane is combined with a surfactant and an acid component.
Mixture (P3-Ultrasil 75; commercially available from Henkel
Treated with 1% aqueous solution of Noh) at 60 ° C for 30 minutes,
It was then rinsed with fresh water. Next, the membrane
Mixture of surfactant and alkali component (P3-Ultrasil 9
1; commercially available from Henkel) 1% plus surfactant
Mixture with oxygen donor (P3-Ultrasil 05; from Henkel
(Commercially available) with an aqueous solution containing 1%
Treat at a temperature of 60 ° C for 30 minutes and then with fresh water.
Rinsed. The membrane is then combined with a surfactant and an acid component.
Mixture (P3-Ultrasil 75; commercially available from Henkel
Another 30 minutes treatment with 0.5% aqueous solution of
Rinsing water with fresh water, the conductivity of fresh water
Rinsed until reaching.   Next, the filtration performance of the washed porous membrane was measured under the above conditions.
Was tested again. The results are shown in FIG. Figure 3 is about 600 seconds
After a short time, 200 g of filtrate was obtained, so that the filtration performance was slightly improved.
Indicates that it was good.   The filtration efficiency is shown in FIG.
Washed by the method of the invention. This film is C1-And Cx
To an aqueous solution of lulase (this solution has a pH value of 4.7)
Therefore, the treatment was performed at a temperature of 45 ° C. for 30 minutes. Next, attach the membrane
The same solution, but at a pH value of 5.0 and a temperature of 50 ° C.
And finally at a pH of 4.7 and a temperature of 60 ° C for 60 minutes.
I understood.   Subsequently, the membrane was rinsed with warm water at 50 ° C. Book
The filtration performance of the membrane washed by the method of the invention
Tested accordingly. The results are shown in FIG.   FIG. 4 shows that 200 g of filtrate was obtained after about 220 seconds.
Show. This represents a significant improvement over the prior art (Figure 3).
Represent. Therefore, the method according to the present invention is based on the prior art cleaning method.
Much better for used membranes than is possible with the method
Cleaning is possible.   According to the present invention, amylase is used instead of cellulase.
, Good results were obtained as well. like this
In addition, the cleaning method according to the present invention makes it possible to
You can extend your life. Example 2   This example is intended to assist in cleaning the porous membrane.
Outflow potential or zeta potential of porous membrane
The use of is explained. In particular, runoff potential or zeta
・ When the potential is the cleaning degree of the membrane, the membrane is most sufficient when
Demonstrated to be useful to determine if it will be washed
Have been.   Anton Paar shows zeta potential of membrane filters
  GmbH, an electrokinetic measuring system in Austria
(Electrokinetic measuring system) Measured by EKA
did. This measurement is based on the runoff potential method. Electrolytes
Flows through the filter and the counterion shears
ng-off) (potential potential)
Is detected by the electrode, and the zeta
Calculate the potential (see below).   Figure 5 shows the runoff or zeta potential
Fig. 1 schematically shows a measurement cell for which is measured. Reference number 1 is measurement
In this cell, the porous membrane 2 is made of polytetrafluur.
Filter holders 3 and 4 made from polyethylene
It is clamped so as not to bend. filter
-Holders 3 and 4 have two horn pistons 5 and 6, respectively.
Of the measuring cell 1 that moves into the cylindrical portion 7 of the measuring cell 1.
Installed for.   The ends 3 and 4 of the pistons 5 and 6, respectively, are filtered
It has micropores 10 and 11 for the fluid to be
And 9 are pressed against the porous membrane 2. Electrodes 8 and 9 are pistons 5
Connect to the electrical terminals 12 and 13 extending inside the
Outflow potential generated when fluid flows through 2
Can be measured. Low polarization during passage of current
A silver electrode or a silver chloride electrode is preferred as the electrode. Fixie
6 and 7 are attached to seals 14 and 15, respectively, while
They are mobile, while on the other hand they are
Mounted so as not to allow fluid to leak.   The fluid to be filtered passes through the supply line 16 and the measuring cell
1 into the cylindrical portion 7 and through the micro holes 10 in the piston 6.
And an electric potential is generated through the electrode 8 and the porous membrane 2.
You. The filtered fluid flows through the electrode 9 and likewise
Passing through the micro holes 11 of the piston while forming the
The measurement cell exits through the discharge line 17.   Zeta potential from measured runoff potential
To calculate the supply line 16 and the discharge line 17
Measurement of differential pressure in the measuring cell during the measurement (not explained), conductivity and
And pH values are also required. The zeta potential is
It is calculated from the measured quantities as follows: Where U is the outflow potential and ΔP is the differential pressure.
, LF is the conductivity, η is the viscosity, εε0Is invitation
The electric power.   Zeta potential of membrane filter as occlusion progresses
The change in char is shown in FIG. This figure shows the dimensions in millivolts.
Data potential is plotted on the ordinate and the zeta
The measured pH value of the potential is plotted on the abscissa
FIG. PH value of electrolyte solution (0.001N KCl aqueous solution)
Was set with 0.1N HCl or 0.1N NaOH. Specify
The resulting pressure difference was 350 mbar.   With the measuring cell described above, a new, i.e.
Polyamide porous membrane (NB type; Pall Filtrationstechni)
k GmbH, 6072 Dreieich 1, commercially available from Germany
Zeta potential at various pH values
, A diagram was obtained.   The results for the unused porous membrane are plotted as curve “a”.
To Unused porous membrane is about -18 depending on alkaline pH.
It has a zeta potential of mV and
Data potential rises to a final pH of about 3.
It is evident that the number reaches zero.   Curve “b” is plotted under the same conditions described above, except that beer
Porous after use for filtration and therefore with partial occlusion
3 shows the dependence of zeta potential on the pH value of the membrane.
As is evident, this zeta potential is partially
Somewhat increased due to mechanical occlusion, but at a pH value of about 7
It only reaches a value of about -15 mV.   Curve “c” shows the same porous membrane almost completely closed.
Is plotted with respect to. This zeta poten
The char now changes only slightly with the pH value
Not fall below about −2 mV even in the alkaline range.
It is clear that   To test the cleaning according to the invention, the membrane to be cleaned is
Cleaned membrane zeta for measuring zeta potential
・ Zeta potential of unused membrane
If the shift is as large as possible,
there were.   Its zeta potential is sufficient as a function of the degree of occlusion
The porous membrane, which varies to a large extent,
It is obvious to a person skilled in the art that they are particularly well suited for use in
Or maybe. This feature is easily tested by those skilled in the art
It can be easily determined.   The pH of the beer that is filtered by the porous polyamide membrane
The zeta potential at (about pH = 4.2) is progressive
This process is subject to severe changes due to
Particularly suitable for As can be seen from FIG.
In addition, the membrane at this particular pH at the start of the filtration is approximately -8 mV
Shows the zeta potential of A completely occluded membrane is about
It has a zeta potential of −2 mV.   FIG. 7 shows the bypass shown in FIG.
Filter comprising a filtration chamber 18 having a meter cell 22
9 shows the deformation of the excess unit. This filtration chamber 18 is
Holds candles (filter candles).   Beer to be filtered is supplied from line 20 to filtration chamber 18.
Through the filter candle (membrane filter) 19
And filtered from the filtration chamber 18 through the discharge line 21
Serve as beer.   The meter cell is shown in FIG. 7 without details. Meter cell
The actual flow through 22 is the cm of the surface of the porous membrane in filtration chamber 18.Two
Per cm of porous membrane surfaceTwoBeer per bottle
Must be controlled to the extent that is filtered.   Meter cell during filtration of filter test membrane 2 (FIG. 5)
1 Severe changes in zeta potential inside the filtration chamber
Enables evaluation of the condition of filter candles 19 in 18
I do. Example 3   This example demonstrates the use of fermentation of soluble and crystalline cellulose substrates.
Of cellulase from Aspergillus niger in elemental degradation
Explain effectiveness.   Cellulase derived from Aspergillus niger is Fluka (item
No. 22178). This enzyme has two different types
Cellulose: soluble carboxymethylcellulose (CMC,
(Available from Aldrich as item number 41927-3) and crystals
Cellulose (Avicel, item number PH-105 from FMC
(Available). The test method was (i) 18 ml CMC (1%) or Avicel (1%).
%), (Ii) 5 ml sodium acetate buffer (50 mM, pH 4.
8) and (iii) sodium acetate buffer (50
5 ml of enzyme solution in mM, pH 4.8)
Preparation of the solution was required. Next, incubate 1.4ml
0.1 ml glucose solution (0.15%) and 1.5 ml
3,5-dinitrosalicylic acid (DNS) reagent from Sigma
(Available as eye number D-0550).
Thus, a test solution was prepared. Boil the test solution for 15 minutes
Was. Total μmol glucose equivalents as a function of time (minutes) /
mg enzyme using two parallel samples, Miller, Anal.
According to the method described in Chem. 31, 426-28 (1959),
Using linear calibration with glucose standard
And measured by spectrophotometry (575 nm). Protein
The mass is described in Bradford, Anal. Biochem. 72, 248-64 (1976).
Bovine serum albumin (BSA) standard
It was measured using the standard.   Enzymatic degradation of cellulose leads to glucose production
The total μmol glucose equivalent / mg enzyme is measured for a specific species.
A class of celluloses such as soluble (CMC) or crystalline (Avi
cel) is a measure of enzyme activity for cellulose.   From Aspergillus niger
Table 1 shows the results of this evaluation of the induced cellulase.
You. 0.8mg test solution of soluble (CMC) cellulose substrate
Contains enzyme / 28 ml culture (approximately 17.6 μg protein).
0.35 mg test solution of crystalline (Avicel) cellulose substrate
Contains enzyme / 28 ml culture (approximately 7.7 μg protein).   Crystalline cellulose groups compared to soluble cellulose substrates
These enzymes, which have relatively strong activity on quality,
Especially effective for cleaning porous membranes used in filtration of steel
It was found that Generated on crystalline cellulose substrates
Glucose equivalents and soluble cellulose substrates
The ratio of glucose equivalents formed depends on the presence of the enzyme in the present invention.
It is an index of efficacy, crystalline: soluble cellulose activity ratio and
To be described. The crystalline: soluble cellulose activity ratio is
Time range of the test protocol described in the examples of
30 minutes, 60 minutes and / or 90 minutes, especially above 60 minutes
It is desirable to have the following values.   As is clear from the data shown in Table 1,
Cellulase from Gils niger crystallizes in 60 minutes
Quality: soluble cellulose having an activity ratio of 0.11, such a cellular
Regarding the purpose of cleaning porous membranes used in beer filtration
It is a moderately effective enzyme. Example 4   This example demonstrates the use of an enzymatically degradable soluble cellulose substrate.
Trichoderma reesei on crystalline cellulose substrates
Of cellulase derived from Trichoderma reesei
Shows sex.   Cellulase derived from Trichoderma reesei
Obtained from Fluka (item no. 22173). Perform this enzyme
Evaluation was performed in the same manner as in Example 3.   Cellulase derived from Trichoderma reesei
Table 2 shows the results of the evaluation. Soluble (CMC) cellulo
The test solution of the substrate is 0.37mg enzyme / 28ml culture solution (about 128μ
g protein). Crystalline (Avicel) cellulose
The test solution for the substrate was 0.08 mg enzyme / 28 ml culture solution (about 25.6 μl
g protein).   As is evident from the data in Table 2,
Crystalline Cellulase Derived from Sauce at 60 Minutes:
The soluble cellulose activity ratio is 0.54, such a cellular
For the purpose of cleaning porous membranes used by Beer for filtration of beer
It is an excellent enzyme. Example 5   This example demonstrates the use of a soluble cellulose substrate that is
Subtilis on crystalline and crystalline cellulose substrates
Of β-cellulase derived from Bacillus subtilis
Shows effectiveness.   Cellulase derived from Bacillus subtilis
Obtained from a (item number 49106). This enzyme was used in Example 3
Was evaluated in the same manner as described above.   Β-cellulase derived from Bacillus subtilis
Table 3 shows the results of the evaluation. Soluble (CMC) cellulo
The test solution of the substrate is 14.4mg enzyme / 28ml culture solution (about 8.3μ
g protein). Crystalline (Avicel) cellulose
The substrate test solution was 16.6 mg enzyme / 28 ml culture solution (about 8.8 μg
Protein).   As is evident from the data shown in Table 3, Bacillus
  Β-cellulase from subtilis crystallizes in 60 minutes
Quality: soluble cellulose having an activity ratio of 0.10, such a cellular
Regarding the purpose of cleaning porous membranes used in beer filtration
It is a moderately effective enzyme. Example 6   This example demonstrates the use of an enzymatically degradable soluble cellulose substrate.
Thermomonospora fuss on crystalline cellulose substrates
Exocell derived from mosquito (Thermomonospora fusca)
Shows the efficacy of exocellulase.   Exocellular derived from Thermomonospora fusca
Rose E3 was obtained from Cornell University. At 50 ° C
Shake (i) 18 ml CMC (1%) or Avicel (1
%), (Ii) 9 ml sodium acetate buffer (50 mM, pH 5.
6), and (iii) sodium acetate buffer (50 mM, pH 5.6)
In addition to containing 1ml of medium enzyme solution (about 960μm protein)
Evaluated this enzyme in the same manner as in Example 3. test
The solution should be stained rather than the DNS test described in Example 3.
Was evaluated using the test.   Cellulase derived from Thermomonospora fusca
Table 4 shows the results of the evaluation.   As is clear from the data shown in Table 4,
Exocellulase from Nospora fusca in 60 minutes
Crystalline: soluble cellulose having an active ratio of 1.33,
Purification purpose of porous membrane used by cellulase in beer filtration
Is an excellent enzyme with respect to Example 7   This example demonstrates the use of an enzymatically degradable soluble cellulose substrate.
Bacillus subtilis (Ba
of α-amylase derived from Cillus subtilis)
Shows sex.   Α-amylase derived from Bacillus subtilis
Obtained from Fluka (item number 10069). At 30 ° C
Shake (i) 18 ml CMC (1%) or Avicel (1
%), (Ii) 5 ml sodium acetate buffer (50 mM, pH 6.
9), and (iii) sodium acetate buffer (50 mM, pH6.9)
In addition to containing 5ml of medium enzyme solution (about 8.5μm protein)
Evaluated this enzyme in the same manner as in Example 3. test
The solution should be stained rather than the DNS test described in Example 3.
Was evaluated using the test.   Α-amylase derived from Bacillus subtilis
Table 5 shows the results of the evaluation.   As is evident from the data shown in Table 5, Bacillus
  Α-amylase from subtilis is crystallized at 60 minutes
Quality: Soluble cellulose activity ratio about 0 (<0.1 μmol detection limit
), Wherein the amylase is of the cellular type described above.
About the purpose of cleaning porous membranes used in beer filtration
Is not an effective enzyme. Example 8   This example demonstrates the use of an enzymatically degradable soluble cellulose substrate.
Effectiveness of various cellulases on crystalline cellulose substrates
Shows sex.   Cellulase preparation: (a) Cx-Cellulase (powder, goods
Eye number VP0945 / 2), (b) from Trichoderma reesei
C1Cellulase (powder, item number VP0965 / 2), (c)
C1Cellulase (liquid, item number Cleanzym SB1),
(D) C1Cellulase (liquid, item number VP0976 / 4),
(E) cellulase (liquid, item number VP0971 / 1), and
(F) Cellase (liquid, item number VP0971 / 4) is Erbslo
h Obtained from Company. The culture solution is (i) sodium acetate
23 ml CMC (1%) or A in buffer buffer (50 mM, pH 4.8)
vicel (1%) and (ii) sodium acetate buffer (50m
M, pH 4.8)
The enzyme was evaluated in the same manner as in Example 3. Powdered enzyme tone
0.5 mg / ml (5 mg / ml) and liquid enzyme preparation (5 μl / ml)
% Stock solutions were prepared. The solution was shaken at 30 ° C. Trial
The test solution was diluted 1: 5 before the DNS test described in Example 3.
Was evaluated using a color test rather than a test.   Table 6 shows the evaluation results for various cellulases. G
Lucose equivalent data is average μmol glucose equivalent / min
(All time intervals) and (the data conditions described in Tables 1 to 5).
Not standardized per mg enzyme). Of course,
Crystalline: soluble as long as the units are allocated when calculating the ratio
Activity ratio varies with units of glucose equivalent
No (ie, the ratio has no units).   As is apparent from the data shown in Table 6, various cells
Lase is crystalline in the range of 0.4-1.0 in 60 minutes: soluble cellulo
Have the same activity ratio as the porosity used for beer filtration.
A superior enzyme for the purpose of cleaning membranes
ing. Example 9   This example demonstrates the effectiveness of the method of the present invention for making beer.
This is to explain the nature in detail. In particular, this embodiment
Uses only cellulase (ie uses other enzymes)
No) and a porous membrane for use in continuous beer filtration
Clogged while filtering the beer for the purpose of returning
It shows that the porous membrane is very excellent in cleaning.   Beer with various characteristics is equipped with a cluster filter
Nylon with 0.45 μm pore rating
−6,6 porous membrane (about 300mTwo) (PALL-CFS, Pall Filtrati
onstechnik GmbH, Germany). Specific bee
At the filtration interval, the porous membrane is subjected to the cleaning step of the present invention.
Was.   The cleaning process consists of a circulation of 0.5% NaOH solution for 15 minutes, followed by 6 minutes.
Included 0 minutes soaking. Then the porous membrane is washed with water
Backflushed. Cluster fill with 38 ° C water
An internal loop was installed through the heater device. Add lactic acid to water
To adjust the pH to 4.2 ± 0.3, then the Erbsloh Company
Trichoderma Longibrachiatum (Tric
hoderma longibrachiatum)
6 l of enzyme preparation containing (item number VP0945 / 1)
Added to water via pump. Enzyme preparation in water (about 20-40
g enzyme / 100kg filter housing fluid volume concentration)
Circulate for about 15 minutes, then soak for 30 minutes, then another 15 minutes
And soaked for a final 6 hours. Then porous
The membrane was backflushed with water.   After filtering about 90,000hl of all beer with a porous membrane,
The porous membrane was cleaned and then the porous membrane was returned to the facility. That is,
Beer filtration was continued. About 100,000hl, about 140,000hl and
After filtering about 160,000hl of whole beer through porous membrane
At the same time, the porous membrane was similarly cleaned and returned to the facility. About 190,00
0hl total beer filtered through porous membrane
Later, the porous membrane was broken mechanically.   The above data shows that the beer
Can be produced. In particular, the porous material according to the invention
This practice of effectively cleaning the membrane and returning it to the facility
The results of the example show that the beer production process
Indicates that the working time can be extended.   Cited herein, including patents, patent applications and publications
All references herein are incorporated by reference in their entirety.
Shall be.   The invention has been described with emphasis on the preferred embodiments.
However, various modifications of the preferred embodiment are possible for those skilled in the art.
The present invention may be practiced other than as specifically described in the present specification.
It will be clear. Accordingly, the present invention provides the following
Within the spirit and scope of the present invention as defined by
All modifications shall be included.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 ツァンカー,ゲラルト オーストリア共和国アー―8075 ハル ト・ベイ・グラーツ,シュルガッセ 1 (72)発明者 ゼルロ,ヴァルター オーストリア共和国アー―2440 ライゼ ンベルク,アップラス 5 (72)発明者 リビッシュ,フォルカー オーストリア共和国アー―8010 グラー ツ,ハインリヒシュトラーセ 28 (72)発明者 ラントハーン,ホルスト ドイツ連邦共和国デー―64297 ダルム シュタット,フランケンシュタイナー・ シュトラーセ 58 (72)発明者 デジェン,ピーター・ジェイ アメリカ合衆国ニューヨーク州11748, ハンティントン,グレイズ・ウェイ 24 (56)参考文献 特開 平1−228509(JP,A) 特開 平4−267933(JP,A)   ────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of front page    (72) Inventor Tsunker, Geralt               Republic of Austria-8075 Hull               To Bei Graz, Schurgasse 1 (72) Inventor Zello, Walter               Republic of Austria Ar-2440 Reise               Nberg, Upras 5 (72) Inventor Ribish, Volker               Republic of Austria-8010 Gra               Tu, Heinrichstrasse 28 (72) Inventor Landhahn, Horst               Federal Republic of Germany Day 64297 Darm               Stadt, Frankensteiner               Strase 58 (72) Inventors Degen, Peter Jay               United States of America New York 11748,               Huntington, Grays Way 24                (56) References JP-A-1-228509 (JP, A)                 JP-A-4-267933 (JP, A)

Claims (28)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】多孔質膜を清浄しなければならない時間ま
で多孔質膜を通してビールを濾過し、前記多孔質膜を清
浄するためにプロテアーゼまたはグルカナーゼの非存在
下、セルラーゼ、アミラーゼ及びその組み合わせからな
る群から選択される酵素と前記多孔質膜とを接触させ、
次いでビールの濾過を継続するために前記多孔質膜を再
利用することを含む、ビール製造法。
1. The method of claim 1, wherein the beer is filtered through the porous membrane until the time when the porous membrane has to be cleaned, and comprises cellulase, amylase and a combination thereof in the absence of a protease or glucanase to clean the porous membrane. Contacting an enzyme selected from the group with the porous membrane,
A method of making beer, comprising then reusing the porous membrane to continue filtering beer.
【請求項2】前記多孔質膜を前記セルラーゼまたは前記
アミラーゼ以外の酵素とは接触させない、請求項1に記
載の方法。
2. The method according to claim 1, wherein the porous membrane is not contacted with an enzyme other than the cellulase or the amylase.
【請求項3】前記多孔質膜を前記セルラーゼと接触させ
る、請求項1または2に記載の方法。
3. The method according to claim 1, wherein the porous membrane is contacted with the cellulase.
【請求項4】多孔質膜を清浄しなければならない時間ま
で多孔質膜を通してビールを濾過し、前記多孔質膜を清
浄するために60分で少なくとも約0.1の結晶質:可溶性
セルロース活性比を有するセルラーゼと前記多孔質膜と
を接触させ、次いでビールの濾過を継続するために前記
多孔質膜を再利用することを含む、ビール製造法。
4. Filtering the beer through the porous membrane until the time the porous membrane must be cleaned and having a crystalline: soluble cellulose activity ratio of at least about 0.1 in 60 minutes to clean said porous membrane. A process for producing beer comprising contacting cellulase with the porous membrane and then reusing the porous membrane to continue filtration of the beer.
【請求項5】前記多孔質膜を前記セルラーゼと接触さ
せ、他の酵素とは接触させない、請求項3または4に記
載の方法。
5. The method according to claim 3, wherein the porous membrane is brought into contact with the cellulase but not with other enzymes.
【請求項6】前記セルラーゼが60分で少なくとも0.1の
結晶質:可溶性セルロース活性比を有する、請求項1〜
3または5のいずれか1項に記載の方法。
6. The cellulase having a crystalline: soluble cellulose activity ratio of at least 0.1 in 60 minutes.
6. The method according to any one of 3 or 5.
【請求項7】前記セルラーゼが60分で少なくとも0.3の
結晶質:可溶性セルロース活性比を有する、請求項6に
記載の方法。
7. The method of claim 6, wherein said cellulase has a crystalline: soluble cellulose activity ratio of at least 0.3 in 60 minutes.
【請求項8】前記セルラーゼが60分で少なくとも0.4の
結晶質:可溶性セルロース活性比を有する、請求項7に
記載の方法。
8. The method of claim 7, wherein said cellulase has a crystalline: soluble cellulose activity ratio of at least 0.4 in 60 minutes.
【請求項9】前記セルラーゼが60分で少なくとも0.5の
結晶質:可溶性セルロース活性比を有する、請求項8に
記載の方法。
9. The method of claim 8, wherein said cellulase has a crystalline: soluble cellulose activity ratio of at least 0.5 in 60 minutes.
【請求項10】前記セルラーゼが60分で少なくとも1の
結晶質:可溶性セルロース活性比を有する、請求項9に
記載の方法。
10. The method of claim 9 wherein said cellulase has a crystalline: soluble cellulose activity ratio of at least 60 minutes.
【請求項11】前記セルラーゼが60分で少なくとも1.2
の結晶質:可溶性セルロース活性比を有する、請求項10
に記載の方法。
11. The method according to claim 11, wherein said cellulase is at least 1.2 minutes in 60 minutes.
11. A crystalline: soluble cellulose activity ratio of
The method described in.
【請求項12】前記セルラーゼがトリコデルマ(Tricho
derma)から誘導される、請求項1〜11のいずれか1項
に記載の方法。
12. The method according to claim 12, wherein said cellulase is Trichoderma (Trichoderma).
12. The method according to any one of claims 1 to 11, wherein the method is derived from derma).
【請求項13】前記トリコデルマがトリコデルマ レー
セイ(Trichoderma reesei)またはトリコデルマ ロン
ジブラチアタム(Trichoderma longibrachiatum)であ
る、請求項12に記載の方法。
13. The method of claim 12, wherein said Trichoderma is Trichoderma reesei or Trichoderma longibrachiatum.
【請求項14】前記セルラーゼがサーモモノスポラ(Th
emomonospora)から誘導される、請求項1〜11のいずれ
か1項に記載の方法。
14. The method according to claim 14, wherein the cellulase is thermomonospora (Th
emomonospora).
【請求項15】前記サーモモノスポラがサーモモノスポ
ラ フスカ(Thermomonospora fusca)である、請求項1
4に記載の方法。
15. The thermomonospora fusca according to claim 1, wherein said thermomonospora is Thermomonospora fusca.
The method described in 4.
【請求項16】前記多孔質膜を前記アミラーゼと接触さ
せる、請求項1〜3及び6〜15のいずれか1項に記載の
方法。
16. The method according to claim 1, wherein said porous membrane is contacted with said amylase.
【請求項17】前記アミラーゼがα−アミラーゼ、β−
アミラーゼ及びその組み合わせからなる群から選択され
る、請求項16に記載の方法。
17. The method according to claim 17, wherein the amylase is α-amylase, β-amylase.
17. The method according to claim 16, wherein the method is selected from the group consisting of amylase and combinations thereof.
【請求項18】再利用する前に、前記多孔質膜をさらに
塩基性水溶液と接触させる、請求項1〜17のいずれか1
項に記載の方法。
18. The method according to claim 1, wherein the porous membrane is further contacted with a basic aqueous solution before reuse.
The method described in the section.
【請求項19】前記酵素と接触させる前に、前記多孔質
膜を前記塩基性水溶液と接触させる、請求項18に記載の
方法。
19. The method according to claim 18, wherein the porous membrane is contacted with the basic aqueous solution before contacting with the enzyme.
【請求項20】前記塩基性水溶液がNaOH及び/またはKO
Hの水溶液である、請求項18または19に記載の方法。
20. The method according to claim 19, wherein the basic aqueous solution is NaOH and / or KO.
20. The method according to claim 18 or 19, wherein the method is an aqueous solution of H.
【請求項21】前記塩基性水溶液中に前記塩基が0.1〜1
Nの濃度で存在する、請求項18〜20のいずれか1項に記
載の方法。
21. The method according to claim 21, wherein the base is 0.1 to 1 in the basic aqueous solution.
21. The method according to any one of claims 18 to 20, wherein the method is present at a concentration of N.
【請求項22】前記多孔質膜を温度40〜90℃で前記塩基
性水溶液と接触させる、請求項18〜21のいずれか1項に
記載の方法。
22. The method according to claim 18, wherein the porous membrane is contacted with the basic aqueous solution at a temperature of 40 to 90 ° C.
【請求項23】前記多孔質膜を温度40〜50℃、pH4.5〜
5.5で前記セルラーゼと接触させる、請求項1〜22のい
ずれか1項に記載の方法。
23. The method according to claim 19, wherein the porous membrane has a temperature of 40 to 50 ° C. and a pH of 4.5 to 4.5.
23. The method of any one of claims 1-22, wherein the method is contacted with the cellulase at 5.5.
【請求項24】前記多孔質膜を温度60〜75℃、pH4.6〜
5.8でα−アミラーゼと接触させる、請求項1〜3及び
6〜23のいずれか1項に記載の方法。
24. The method according to claim 19, wherein the porous membrane has a temperature of 60 to 75 ° C. and a pH of 4.6 to 65.
24. The method of any one of claims 1-3 and 6-23, wherein the method is contacted with an α-amylase at 5.8.
【請求項25】前記多孔質膜を温度40〜60℃、pH4.6〜
5.8でβ−アミラーゼと接触させる、請求項1〜3及び
6〜23のいずれか1項に記載の方法。
25. The method according to claim 25, wherein the porous membrane has a temperature of 40 to 60 ° C. and a pH of 4.6 to 40.
24. The method of any one of claims 1-3 and 6-23, wherein the method is contacted with a β-amylase at 5.8.
【請求項26】前記多孔質膜のゼータ電位が変化し終わ
るまで前記多孔質膜を清浄する、請求項1〜25のいずれ
か1項に記載の方法。
26. The method according to claim 1, wherein the porous membrane is cleaned until the zeta potential of the porous membrane has been changed.
【請求項27】前記多孔質膜を清浄しなければならない
時間を、前記多孔質膜を横切る圧力降下により決定す
る、請求項1〜26のいずれか1項に記載の方法。
27. The method according to claim 1, wherein the time during which the porous membrane has to be cleaned is determined by the pressure drop across the porous membrane.
【請求項28】前記多孔質膜を清浄しなければならない
時間を、前記多孔質膜の流出またはゼータ電位により決
定する、請求項1〜26のいずれか1項に記載の方法。
28. The method according to claim 1, wherein the time during which the porous membrane has to be cleaned is determined by the outflow or zeta potential of the porous membrane.
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