JP3293086B2 - グリコシル―エトポシドプロドラツグ及びその製造方法 - Google Patents
グリコシル―エトポシドプロドラツグ及びその製造方法Info
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Description
製造方法及び癌を治療するための機能化され腫瘍特異的
酵素複合体と組み合わせるその使用方法、及び特に腫瘍
特異的酵素複合体の作用により分解して細胞毒素性活性
物質を生成することができるプロドラッグの4′−O−
グリコシル−エトポシドに関し、遊離した活性物質はそ
の細胞毒素活性により癌の治療に適している。
わせの治療剤としての使用は専門家の文献に記述されて
いる。この必然的に伴う特定の組織を指向し、プロドラ
ッグ分解酵素に共有結合した抗体を移植組織を含む動物
に注射し、次いでプロドラッグ化合物を投与すると化合
物は酵素により活性化されることができる。プロドラッ
グは組織に固定された抗体−酵素複合体の作用により細
胞毒素に変換され、このものは移植組織に対して細胞毒
素的効果を及ぼす。
されることができるプロドラッグ成分とからなる治療シ
ステムのWO第88/07378号に記述されている。この場合、
非哺乳動物酵素を抗体−酵素複合体の製造に使用するこ
とが記述されており、活性化合物が非特異的に遊離され
ることから内生酵素の使用は除外されている。外生酵素
は体により外来抗原として認識されるので、その使用は
非内生物質に応答する免疫の不利益を伴い、この理由か
ら抗体上に固定化された酵素は不活性化され、適当な場
合全体の複合体が除去される。更に、この場合において
はp−ビス−N−(2−クロロエチル)アミノベンジル
グルタミン酸とその誘導体がプロドラッグとして使用さ
れており、それらの化学的半減期は僅かに5.3〜16.5時
間である。化学的に不安定なことは副作用が予想される
ことからプロドラッグとしては不便である。
合体がプロドラッグ化合物を細胞毒素性活性化合物に分
解する治療システムは同様にEPA第0302473 A2号に記述
されている。エトポシド4′−ホスフェートとその誘導
体をプロドラッグとして、及び特徴的にそこに記述され
ているエトポシドを遊離するための抗体固定化アルカリ
ホスファターゼとを組み合わせる使用は、血清中に内生
アルカリホスファターゼが強力に存在することより不便
である。DE第38265662A1号に記述されているようにエト
ポシド4′−ホスフェートは既に腫瘍治療剤として単独
に使用されており、この場合血清中に存在するホスファ
ターゼがエトポシドをプロドラッグから遊離する。
ことのない化合物4′−O−α−D−グルコピラノシル
−エトポシドはインビトロで酵素α−グリコシダーゼ並
びに腫瘍特異的抗体−グルコシダーゼ複合体によりエト
ポシドとD−グルコースに分解できることが明らかにな
った。
−酵素複合体の組み合わせの不便を考慮にいれて、本発
明の目的は合成の酵素分解性4′−O−グルコシル−エ
トポシド並びに機能化された腫瘍特異的酵素を製造する
こと、及び二成分の組み合わせの薬理学的有用性を適当
な哺乳動物試験モデルで試験することであった。この目
的は式Iの化合物と機能化された腫瘍特異的酵素を製造
し、それらを組み合わせて使用した場合細胞毒素性活性
試験で効果を示したことにより達成された。
り、 R2は水素原子、アシル又はトリ−C1〜C4−アルキルシ
リル保護基であり、 R3はヒドロキシル基、酸素原子を介して結合するアシ
ル又はトリ−C1〜C4−アルキルシリル保護基、アミノ
基、アセチルアミノ基、ベンジルオキシカルボニルアミ
ノ基又はジメチルアミノ基であり、 R4は水素原子又はメチル基であり、 R5は水素原子、ヒドロキシル基、酸素原子を介して結
合するアシル又はトリ−C1〜C4−アルキルシリル保護
基、又はアミノ基、ベンジルオキシカルボニルアミノ
基、アジド基又はアセチルアミノ基であり、 R6はヒドロキシル基、酸素原子を介して結合するアシ
ル又はトリ−C1〜C4−アルキルシリル保護基、又はアミ
ノ基、ベンジルオキシカルボニルアミノ基又はアジド基
であり、 R7は水素原子、アシル基又はトリ−C1〜C4−アルキル
シリル保護基であり、 R8はメチル基又はヒドロキシメチル基又はメチレンオ
キシ基を介して結合するアシル保護基、又はベンジルオ
キシカルボニル基であり、 この場合、アシル基はアセチル基、ハロゲンがフッ素
又は塩素のモノ、ジ又はトリハロゲノアセチル基を意味
する式Iの4′−O−グリコシル−エトポシドに関す
る。
て式II A−Sp−E II 〔式中、 Aは腫瘍関連抗原に対する特異性を持つ抗体又はその
断片の一つであるか、もしくはEGF(上皮成長因子)、T
GF−α(形質転換成長因子α)、PDGF(血小板由来増殖
因子)、IGF I+II(インシュリン様成長因子I+II)
又はa+b FGF(酸性+塩基性繊維芽細胞成長因子)の
ような腫瘍に蓄積する生体分子であり、 Eはα−又はβ−グルコシダーゼ、α−ガラクトシダ
ーゼ、α−又はβ−マンノシダーゼ、α−フコシダー
ゼ、N−アセチル−α−ガラクトサミニダーゼ、N−ア
セチル−β−/N−アセチル−α−グルコサミニダーゼ又
はβ−グルクロニダーゼのような免疫原的でないか又は
低免疫原性のグルコシダーゼ、好ましくは哺乳動物グリ
コシダーゼであり、 Sp(スペーサー)は式III又はIV X(S)nY III X(S)n IV 〔式中、 X又はYは−CO−R9−(N−サクシンイミド)−又は
−C(=R10)−CH2−CH2−(式中R9は−CH2−CH2−、
1,4−シクロヘキシリデン、1,3−又は1,4−フェニレン
又はメトキシカルボニル基又はクロロ−1,4−フェニレ
ン、及びR10はO又はNHである)であり、及び更に Yは−C(=R10)−CH2−CH2−(式中R10は前述の意
味を持つ)であり、及び nは1又は2である)の二官能性スルフィド又はジス
ルフィド含有基、もしくはポリペプチドスペーサーであ
る〕の酵素を意味する。
真核細胞中での発現に適し選択用マーカーを持つ発現用
プラスミド中にクローン化する。結合遺伝子を持つ発現
用プラスミドを抗体に属する軽鎖遺伝子を含む発現用プ
ラスミドと共に真核発現用細胞にトランスフェクション
する。次いで適当な抗生物質を使用する選択により発現
用プラスミドを含むトランスフェクトーマクローンを確
認する。適当な検出法(BioDot,ELISA)を使用して抗体
と酵素からなる式IIの結合タンパク質を分泌するトラン
スフェクトーマクローンを確認する。
り、 R2は水素原子、アセチル又はクロロアセチル基又はト
リC1〜C4−アルキルシリル保護基であり、 R3はヒドロキシル基、酸素原子を介して結合するアセ
チル、クロロアセチル又はトリ−C1〜C4−アルキルシリ
ル保護基、又はアミノ基、アセチルアミノ基、ベンジル
オキシカルボニルアミノ基又はジメチルアミノ基であ
り、 R4は水素原子又はメチル基であり、 R5は水素原子、ヒドロキシル基、酸素原子を介して結
合するアセチル、クロロアセチル又はトリ−C1〜C4−ア
ルキルシリル保護基、又はアミノ基、ベンジルオキシカ
ルボニルアミノ基、アジド基又はアセチルアミノ基であ
り、 R6はヒドロキシル基、酸素原子を介して結合するアセ
チル、クロロアセチル又はトリ−C1〜C4−アルキルシリ
ル保護基、又はアミノ基、ベンジルオキシカルボニルア
ミノ基又はアジド基であり、 R7は水素原子、アセチル、クロロアセチル又はトリ−
C1〜C4−アルキルシリル保護基であり、及び R8はメチル基、ヒドロキシメチル基、アセチルオキシ
又はクロロアセチルオキシメチル基又はベンジルオキシ
カルボニル基である式Iの化合物、並びに、 Aは腫瘍関連抗原に対する特異性を持つ抗体又はその
断片の一つであるか、もしくはEGF(上皮成長因子)、T
GF−α(形質転換成長因子α)、PDGF(血小板由来増殖
因子)、IGF I+II(インシュリン様成長因子I+II)
又はa+b FGF(酸性+塩基性繊維芽細胞成長因子)の
ような腫瘍に蓄積する生体分子であり、 Eは免疫原的でないか又は低免疫原性のグリコシダー
ゼ、好ましくは哺乳動物グリコシダーゼ、例えばα−又
はβ−グリコシダーゼ、α−ガラクトシダーゼ、α−又
はβ−マンノシダーゼ、α−フコシダーゼ、N−アセチ
ル−α−ガラクトサミニダーゼ、N−アセチル−β−/N
−アセチル−α−グルコサミニダーゼ又はβ−グルクロ
ニダーゼであり、 Spは式III又はIV〔式中、X又はYは−CO−R9−(N
−サクシンイミド)−又は−C(=R10)−CH2−CH2−
(式中R9は−CH2−CH2−又は1,4−フェニレン、及びR10
はO又はNHである)であり、 Yは−C(=R10)−CH2−CH2−(式中R10は前述の意
味を持つ)であり、及び nは1又は2である)の二官能性ジスルフィド含有
基、又はポリペプチドスペーサーである〕の式IIの機能
化された腫瘍特異的酵素である。
中、R1はメチル基、ベンジル基又は2−チエニル基であ
り、R2は水素原子であり、R3はヒドロキシル基、アミノ
基又はジメチルアミノ基であり、R4は水素原子又はメチ
ル基であり、R5は水素原子、ヒドロキシル基、アミノ基
又はアセチルアミノ基であり、R6はヒドロキシル基又は
アミノ基であり、R7は水素原子であり、R8はメチル基又
はヒドロキシメチル基又はカルボキシル基又はメチレン
オキシ基を介して結合するアシル保護基、又はベンジル
オキシカルボニル基であり、この場合、アシル保護基は
アセチル基、ハロゲンがフッ素又は塩素のモノ、ジ又は
トリハロゲノアセチル基である)の化合物の本発明によ
る製造方法は、溶媒中で促進剤及び適当な場合酸トラッ
プ又は乾燥剤の存在下で、−50℃〜60℃で式V (式中、 R1はメチル基、ベンジル基又は2−チエニル基であ
り、 R2は水素原子、アシル又はトリ−C1〜C4−アルキルシ
リル保護基であり、 R3はヒドロキシル基、酸素を介して結合するアシル又
はトリ−C1〜C4−アルキルシリル保護基、又はアセチル
アミノ基、ベンジルオキシカルボニルアミノ基又はジメ
チルアミノ基であり、及び R4は水素原子又はメチル基である)のエトポシド化合
物を式VI (式中、 R5は水素原子、ヒドロキシル基、酸素原子を介して結
合するアシル保護基、又はベンジルオキシカルボニルア
ミノ基、アジド基又はアセチルアミノ基であり、 R6は酸素原子を介して結合するアシル保護基、又はベ
ンジルオキシカルボニルアミノ基又はアジド基であり、 R7はアシル保護基であり、 R8はメチル基、メチレンオキシ−アシル保護基又はベ
ンジルオキシカルボニル基であり、及び Zはハロゲン原子好ましくはフッ素、塩素又は臭素、
ヒドロキシル基、トリ−C1〜C4−アルキルシリルオキシ
基、又は酸素原子を介して結合するアシル保護基であ
り、 この場合、アシル保護基はアセチル基、モノ、ジ又は
トリハロゲノアセチル基であって好ましくはハロゲン原
子はフッ素又は塩素である)の炭水化物成分と反応させ
て式Iの4′−O−グリコシル−エトポシド誘導体(式
中、基R1〜R8のすべては下で定義するそれらの意味を保
持している)を得、及びこれらの化合物に存在する保護
基を水素化分解又は加水分解により除去し、及び適当な
場合、生成するアミノ基を含む化合物の一つを還元的ア
ルキル化法によりジメチルアミノ基を含む式Iの他の化
合物に変換することからなる。
O−2、O−3、O−4及び適当な場合、O−6原子が
アシル保護基で保護されている式VIの機能化された炭水
化物ユニットを使用して実行する。好ましいアシル保護
基はアセチル基、クロロアセチル基又はトリフルオロア
セチル基である。アミノ糖の場合、アミノ基はベンジル
オキシカルボニル基で一時的に、又はアセチル基で永久
的に保護する。アジド糖はそれらが水素化分解によりア
ミノ糖に簡単に変換できることから同様に使用すること
が可能である。炭水化物成分はアノマー中心が適当に機
能化されていなければならない。この目的のためフルオ
リド、クロリド又はブロミドのようなハロゲン化グリコ
シルが使用され、これらは1−O−アシル誘導体から出
発して例えばHF、HCl、HBr又はTiBr4を使用して製造す
ることができる。アノマー中心にO−アシル基又はヒド
ロキシル基を持つグリコシド化成分は炭水化物化学にお
ける通常の方法により製造される。
リコシド化は促進剤の存在下で実行する。グリコシルフ
ルオリドとその1−ヒドロキシ又は1−アセチルオキシ
アナログを使用する場合の促進剤はBF3×エーテル又は
トリ−C1〜C4−アルキルシリルトリフルオロメタンスル
ホネートである。グリコシルクロリド又はブロミドの場
合に使用する促進剤は銀又は水銀の塩である。
ルエン、ジクロロメタン又はジクロロエタンのような非
極性有機溶媒もしくはそれらの混合物中で実行する。反
応中生成する酸又は水を捕集するため、適当な場合分子
ふるい又は硫酸マグネシウムのような酸トラップ又は乾
燥剤を添加する。反応温度はグリコシルフルオリドと1
−ヒドロキシアナログを使用する場合−50℃〜0℃、及
びグリコシルクロリド又はブロミドを使用する場合0℃
〜60℃の範囲内にある。反応中生成するグリコシルエト
ポシドは次の方法により保護基を除去する。すなわち、
アシル保護基は亜鉛(II)塩により接触されるメタノリ
シス、又はクロロホルム、ジクロロメタン又はエーテル
と共にメタノール、エタノール又はそれらの混合物中ア
ルカリイオン交換剤により除かれる。ベンジル又はベン
ジルオキシカルボニル基又はアジド基はパラジウム炭素
又はパラジウム/硫酸バリウムを使用する水素化分解に
より除かれるとか、もしくはアジド基の場合アミノ基に
変換される。アミノ糖を含む式Iの化合物は更にホルム
アルデヒド/ナトリウムシアノボロヒドリドを使用する
還元的アルキル化によりジメチルアミノ誘導体に変換す
ることができる。
ノ基を介して酵素に、及び導入したいか又はジスルフィ
ド結合の分解により生成したHS基を介して抗体又は生体
分子に連結させることができ、もしくは部分A、Sp及び
Eをコードする核酸配列を分子生物学的方法により共有
結合により連結して結合遺伝子を生成させ、A−Sp−E
が遺伝子工学的方法により製造される。これは種々な方
法で実行することができる。
ンの重鎖の遺伝子のCH 1エクソンの3′末端に導入す
る。同様な制限切断部位Aをスペーサーとして作用する
オリゴペプチドをコードするオリゴヌクレオチドの5′
末端に生成させる。2つの制限切断部位Aは免疫グロブ
リン遺伝子が読み枠を妨害することなく制限切断部位A
を介してオリゴヌクレオチドに連結することができるよ
うに位置している。
成させる。この制限切断部位Bを酵素をコードする遺伝
子の成熟タンパク質をコードする核酸配列が始まる位置
に導入する。次いで酵素遺伝子を制限切断部位Bを介し
て免疫グロブリン遺伝子連結構造に連結する。制限切断
部位Bは読み枠が連結で妨害されないように位置してい
る。免疫グロブリンVHの重鎖とCH 1リンカー酵素のた
めの部分からなる結合遺伝子を真核細胞中での発現に適
し選択マーカーを持つ発現用プラスミド中にクローニン
グする。
鎖の遺伝子を持つ発現用プラスミドと共に真核細胞(例
えば骨髄腫細胞)中にトランスフェクションする。適当
な抗生物質による選択を実行して結合遺伝子と軽鎖の遺
伝子を持つプラスミドを含む細胞クローン(トランスフ
ェクトーマ)を分離する。適当な検出法(BioDot;ELIS
A)を使用してMAb Fab部分、リンカーポリペプチド及び
酵素からなる式A−Sp−Eの結合タンパク質を分泌する
トランスフェクトーマを確認する。
のヒンジエクソンの3′末端に導入する。制限切断部位
Aを酵素遺伝子の成熟タンパク質をコードするヌクレオ
チド配列が始まる位置に導入する。VH、CH 1及びヒン
ジエクソンを持つ免疫グロブリンの重鎖の遺伝子断片を
制限切断部位Aを介して酵素遺伝子に連結する。
している。抗体のヒンジ部分はこの構造においてポリペ
プチドスペーサーとして機能する。
子を真核細胞中での発現に適し選択マーカーを持つ発現
用プラスミド中にクローニングする。結合遺伝子を持つ
発現用プラスミドを抗体に属する軽鎖遺伝子を含む発現
用プラスミドと共に真核発現用細胞中にトランスフェク
ションする。適当な抗生物質による選択に続き、発現用
プラスミドを含むトランスフェクトーマクローンを確認
する。適当な検出法(BioDot,ELISA)を用いて抗体と酵
素からなる式IIの結合タンパク質を分泌するトランスフ
ェクトーマクローンを確認する。
(エー・エッチ・ブレア(A.H.Blair)及びティー・ア
イ・ゴース(T.I.Ghose)「アイ・イムノログ・メソッ
ズ(I.Immunolog,Methods)」(1983年)59巻、129〜14
3頁;ティー・アイ・ゴース(T.I.Ghose)等「メソッズ
・イン・エンザイモロジー(Methods in enzymolog
y)」(1983年)93巻、280〜333頁)に記述された方法
により実行される。
ル、N−マレイミドアルキリデン−、シクロアルキリデ
ン−又はアリーレン−1−カルボキシレートを使用する
酵素の最初の機能化を伴い、この場合マレイミド基の二
重結合は機能化された抗体、その断片又は生体分子のHS
基と反応してチオエーテル機能性を形成する。
記述されたモノクローナル抗体、好ましくは抗体431/2
6、250/183、704/152及び494/32を使用することが可能
である。腫瘍関連抗原のための抗体の特異性は免疫シン
チグラフィー及び免疫組織化学の方法により動物とヒト
で既に証明されている。
ド配列はドイツ特許願第3909799.4号に記述されてい
る。
文献記載の方法で確認された分離源から精製する酵素を
使用することが可能である。
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tic membrane)、オルラッキオ・エー(Orlacchio,
A.)、エミリアニ・シー(Emiliani,C.)、ジ・レンゾ
・ジー・シー(Di Renzo,G.C.)、コスミ・イー・ブイ
(Cosmi,E.V.)「クリン・キム・アクタ(Clin,Chim.Ac
ta)」(1986年)159巻、279〜289頁 α−N−アセチルガラクトサミニダーゼ(alpha−N
−acetylgalactosaminidase according to)、サムベイ
ル・アール(Salvayre,R.)、ネグル・エー(Negre,
A.)、マレット・エー(Maret,A.)、ドゥースト−ブラ
ジー・エル(Douste−Blazy,L.)「パトル・ビオル(パ
リス)(Pathol.Biol.(Paris))」(1984年)32巻、2
69〜284頁。
pHにおけるp−ニトロフェニルグリコシドを使用する比
較試験で求めた。
された腫瘍特異的酵素複合体と組み合わせた機能化され
た腫瘍特異的酵素複合体とを含むパックに関する。
たマウスに機能化された酵素を与え、次いで酵素の血漿
中水準が事実上0に落ちるのを待ってグリコシルエトポ
シドを与え、増殖の停止と退化が起こるか否かを観察し
た。
)中D−グルクロン酸ナトリウム(5g、23.13mmol)
の溶液に添加した。反応混合物を40℃で2時間、次いで
80℃で16時間撹拌し、真空下で蒸発した。残留物を80:2
0:1クロロホルム/メタノール/水を使用するシリカゲ
ル(130g)のカラムクロマトグラフィーにより精製し
た。
及びβ−D−グルクロネート(化合物2aと2b) ベンジル・D−グルクロネート(3.80g、13.36mmol)
をジクロロメタン(200m)に懸濁した。クロロアセチ
ルクロリド(7.90g、69.94mmol)を添加し、次いで混合
物を−30℃に冷却し、ジクロロメタン(50m)に溶解
したピリジン(4.33g、54.74mmol)を添加した。反応混
合物を−30℃で16時間撹拌し、次いで、クロロアセチル
クロリド(7.90g)とピリジン(4.33g)を添加した。混
合物を16時間撹拌し、次いで冷ジクロロメタン(150m
)を添加し、混合物を5%濃度のクエン酸ナトリウム
緩衝液(pH5、60m×2)と氷水(50m×2)で洗浄
した。得られる生成物(7.92g)は表題化合物の外に約3
0%のベンジル・2,3,4−トリ−O−クロロアセチル−
α,β−D−グルクロネートを含み、これを更に精製す
ることなく次工程で使用した。
−D−グルクロネート(化合物3a、3b) 化合物2a/2bの粗生成物(7.92g)を3:1メタノール/
クロロホルム(320m)に溶解し、アミノ化シリカゲル
(11.09g)を添加した。反応混合物を室温で6時間撹拌
し過した。液を蒸発し、次いで残留物を2:1石油エ
ーテル/酢酸エチルを使用するシリカゲル(220g)のク
ロマトグラフィーにより精製した。
クロネート(化合物4) ナトリウム・1−デオキシ−1−フルオロ−α−D−
グルクロネート(6.22g、28.51mmol)をDMF(350m)
に懸濁し、ベンジルブロミド(4.89g、28.59mmol)を添
加した。反応混合物を60℃で24時間撹拌し、次いで蒸発
した。蒸留物を3:1クロロホルム/メタノールに溶解
し、硫酸マグネシウム(12g)を添加した。懸濁液を2
時間撹拌し、次いで過し、液を蒸発した。残留物を
4:1ジクロロメタン/アセトンを使用するシリカゲル(1
60g)のカラムクロマトグラフィーにより精製した。
−O−α−D−グルクロネート(化合物5) 化合物4(5.0g、17.46mmol)をジクロロメタン(120
m)に懸濁し、0℃でベンジルブロミド(9.85g、57.6
1mmol)と酸化銀((11.2g)を添加した。反応混合写を
0℃で5時間、次いで室温で28時間撹拌した。反応混合
物を過し、液を真空下で蒸発した。残留物を3:1
石油エーテル/酢酸エチルを使用するシリカゲル(240
g)のクロマトグラフィーにより精製した。
−O−クロロアセチル−α−D−グルクロネート(化合
物6) 化合物4(5.0g、17.46mmol)をジクロロメタン(260
m)に懸濁し、30℃でクロロアセチルクロリド(9.86
g、83.30mmol)を添加した。10:1ジクロロメタン/ピリ
ジン(100ml)を添加後、反応混合物を−30℃で18時間
撹拌した。冷ジクロロメタン(80ml)を混合物に添加
し、これをクエン酸ナトリウム緩衝液(pH5.0、80m×
3)、次いで水で洗浄した。有機相を硫酸ナトリウムで
乾燥し蒸発した。残留物を5:1石油エーテル/酢酸エチ
ルを使用するシリカゲル(260g)のカラムクロマトグラ
フィーにより精製した。
クトピラノシルフルオリド(化合物7) α−D−ガラクトピラノシルフルオリド(2.30g、12.
62mmol)を乾燥ジクロロメタン(100m)に溶解し、−
25℃でクロロアセチルクロリド(9.0g、79.68mmol)と
1:1ジクロロメタン/トリエチルアミン(55m)を添加
した。反応混合物を16時間撹拌し、次いでクロロアセチ
ルクロリド(9.0g)と1:1ジクロロメタン/トリエチル
アミン(55m)を添加した。反応混合物を更に24時間
撹拌し、次いでクエン酸ナトリウム緩衝液(pH5.0、50m
×3)、次いで水で洗浄した。有機相を乾燥(硫酸ナ
トリウム)し、真空下で蒸発した。残留物を40:8:1ジク
ロロメタン/石油エーテル/酢酸エチルを使用するシリ
カゲル(300g)のカラムクロマトグラフィーにより精製
した。
ラノシルフルオリド(化合物8) α−D−ガラクトピラノシルフルオリド(2.30g、12.
62mmol)を乾燥DMF(40m)に溶解し、−20℃でベンジ
ルブロミド(12.95g、75.72mmol)と酸化銀(10g)を添
加した。反応混合物を−20℃で5時間、次いで室温で24
時間撹拌した。次いで塩を過し、液を真空下で蒸発
した。残留物を15:1石油エーテル/酢酸エチルを使用す
るシリカゲル(350g)のカラムクロマトグラフィーによ
り精製した。
アセチル−4,6−O−エチリデン−β−D−グルコピラ
ノシル)−4−エピ−ポドフィロトキシン(化合物9) 4′−O−ベンジルオキシカルボニル−4−O−デメ
チル−4−O−(2,3−ジ−O−クロロアセチル−4,6−
O−エチリデン−β−D−グルコピラノシル)−4−エ
ピ−ポドフィロトキシン(10g、11.42mmol)を10%Pd/C
(5.0g)の存在下で、2:1酢酸エチル/メタノール(200
m)中で2時間水素添加した。反応混合物を過し、
液を真空下で蒸発した。残留物をシリカゲル(50g)
の層で過した。得られる生成物をメタノール/酢酸エ
チルで結晶化した。
ロロアセチル−4,6−O−エチリデン−β−D−グルコ
ピラノシル)−4−エピ−4′−O−(2,3,4−トリ−
O−ベンジル−β−D−グルコピラノシル)−ウロネー
ト−ポドフィロトキシン(化合物9) ベンジル・1−フルオログルクロネート(化合物5、
4.23g、7.60mmol)と2″,3″−ジ−O−クロロアセチ
ル−エトポシド(化合物9、5.63g、7.60mmol)をジク
ロロメタン(220m)に溶解し、4Åの分子ふるい(10
g)を添加した。BF3−エーテル(2.5m)を−40℃で反
応混合物に添加し、次いでこれを−30℃で20時間撹拌し
た。トリエチルアミン(7.0m)を添加し、次いで混合
物を過した。液をクエン酸緩衝液(pH5、80m×
3)と水(120m×3)で洗浄し、乾燥(硫酸ナトリウ
ム)し、真空下で蒸発した。残留物を5:5:1ジクロロメ
タン/石油エーテル/アセトンを使用するシリカゲル
(360g)のカラムクロマトグラフィーにより精製した。
ル−4,6−O−エチリデン−β−D−グルコピラノシ
ル)−4−エピ−4′−O−(2,3,4,6−テトラ−O−
ベンジル−α−及びβ−D−ガラクトピラノシル)−ポ
ドフィロトキシン(化合物10aと10b) テロラ−O−ベンジル−ガラクトピラノシルフルオリ
ド(化合物8、3.60g、6.65mmol)とエトポシド誘導体
(化合物9、4.93g、6.65mmol)をジクロロメタン(250
m)に溶解した。4Åの分子ふるい(7.2g)を添加
し、次いで反応混合物を−40℃に冷却し、30%濃度のBF
3−エーテル(2.2mを滴下添加した。混合物を−30℃
で20時間撹拌し、次いでトリエチルアミン(5.5m)を
添加後過した。液をクエン酸緩衝液(pH5、75m×
3)と水(70m×2)で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾
燥し、蒸発した。残留物を5:5:1石油エーテル/ジクロ
ロメタン/アセトンを使用するシリカゲル(370g)のカ
ラムクロマトグラフィーにより予備精製した。更にカラ
ムクロマトグラフィーにより分離して表題化合物10a
(α−グリコシド:4.36g(52%))と10b(β−グリコ
シド:1.42g(17%))を得た。
(4,6−O−エチリデン−β−D−グルコピラノシル)
−4′−O−(2,3,4−トリ−O−ベンジル−β−D−
グルコラノシル)−ウロネート・ポドフィロトキシン
(化合物11) グルクロニド誘導体(化合物9、4.56g、3.57mmol)
を4:1メタノール/クロロホルム(120m)に溶解し、D
OWEX 1×8(6.2g)を添加した。反応混合物を室温で3
時間撹拌し、次いで過した。クロロホルム(150m)
を液に添加し、次いでこれを硫酸マグネシウム(10
g)と共に撹拌した。塩を過し、液を真空下で蒸発
した。残留物を5:2:1ジクロロメタン/石油エーテル/
アセトンを使用する200gのシリカゲルのカラムクロマト
グラフィーにより精製した。
エチリデン−β−D−グルコピラノシル)−4′−O−
(β−D−グルコピラノシル)−ウロン酸・ポドフィロ
トキシン(化合物12) デアシル化グルクロニド誘導体(化合物11、3.62g、
3.22mmol)を4:1メタノール/酢酸エチル(180m)に
溶解し、10%Pd/C(2.76g)の存在下で水素添加した。
触媒を過し、次いで液を真空下で蒸発した。残留物
をメタノール/ヘキサン(グラジエント)を使用するRP
−18シリカゲルのカラムクロマトグラフィーにより精製
した。
エチリデン−β−D−グルコピラノシル)−4′−O−
(2,3,4,6−テトラ−O−ベンジル−α−D−ガラクト
ピラノシル)−ポドフィロトキシン(化合物13) ポドフィロトキシンガラクトピラノシド(化合物10
a、3.0g、2.37mmol)を3:1メタノール/クロロホルムに
溶解し、Dowex 1×8を添加した。反応混合物を室温で
3時間撹拌して過した。液を真空下で蒸発した。残
留物をクロロホルムに溶解し、リン酸緩衝液(pH7、30m
×3)、次いで水で洗浄した。有機相を硫酸ナトリウ
ムで乾燥し蒸発した。残留物を5:3:1ジクロロメタン/
石油エーテル/アセトンを使用するシリカゲル(85g)
のカラムクロマトグラフィーにより精製した。
ガラクトピラノシル)−4−O−(4,6−O−エチリデ
ン−β−D−グルコピラノシル)−ポドフィロトキシン
(化合物14) デアシル化ポドフィロトキシンガラクトピラノシド
(化合物13、2.0g、1.80mmol)を3:1メタノール/酢酸
エチルに溶解し、10%Pd/C(2.5g)の存在下で24時間水
素添加した。混合物を硫酸マグネシウムと共に撹拌し
過した。液を真空下で蒸発した。残留物をメタノール
/酢酸エチル(グラジエント)を使用するRP−18シリカ
ゲルのカラムクロマトグラフィーにより精製した。
生体分子に結合させ、酵素と複合体の活性を次のように
測定した。
−ヒドロキシエチル−ピペラジン−N′−2−エタンス
ルホン酸)(pH5)中2.5mMのp−ニトロフェニル・β−
D−グルクロニド溶液の500μに添加した。試験混合
物を37゜でインキュベートし、6分後300μの0.4Mグ
リシン溶液(pH10.8)で停止した。次いで遊離したp−
ニトロフェノールを405nmの吸光度を測定して求めた。
ボ抗腫瘍効果 30匹のNMRI un/unマウスが0日目に動物当たり約5mm3
の大きさのCoCa4ヒト腫瘍片の皮下移植を受けた。ヒト
腫瘍組織がマウスで増殖した(7〜14日)後、各群5匹
の動物の内 a、b、c群は5×500μgのMAb BW 494/32−グルク
ロニダーゼ複合体、 d群は5×500μgのMAb BW 494/32、 e群は5×500μgのグルクロニダーゼ、及び f群は5×500μのPBSの連続5日間の静脈内注射に
よる投与を受けた。MAb BW 494/32−グルクロニダー
ゼ、MAb BW 494/32、グルクロニダーゼ又はPBS注射後
5、6及び7日目に、a、d及びe群のマウスは動物当
たり及び1日当たりグルコシル−エトポシドの最大許容
用量(MTD)の1/3量の静脈内注射による投与を受けた。
b群のマウスは各々MTDの1/10量、及びc群のマウスはM
TDの1/20量の投与を同じ日に受けた。
た。a、b及びc群は顕著な腫瘍増殖の抑制を示し、効
果はa群でもっとも顕著であった。
50/183の投与、及びM21外来組織移植系においてMAb BW
704の投与を受けた場合同等な結果が得られた。
シドのα−ガラクトシダーゼ(生のコーヒー豆由来)に
よる分解 4′−O−α−D−ガラクトピラノシル−エトポシド
を20mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH5)に1mg/mの濃度
に溶解し、0.3U/mのα−ガラクトシダーゼ(生のコー
ヒー豆;シグマ・コンパニー(Sigma Co.);1U=pH6.5
及び25゜で1分当当たり1μmolのp−ニトロフェニル
・α−D−ガラクトシドを分解)を添加し、混合物を37
゜でインキュベートした。4′−O−α−D−ガラクト
ピラノシル−エトポシドの分解と遊離エトポシドの出現
をHPLCで調べた。半減期は15分であった。
シドのα−ガラクトシダーゼA(ヒト胎盤由来)による
分解 4′−O−α−D−ガラクトピラノシル−エトポシド
を20mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH5)に107又は10.7mg
/mの濃度に溶解し、0.36U/mのα−ガラクトシダー
ゼA(ヒト胎盤から分離;1U=pH5及び37゜で1分間当た
り1μmolの4−メサムベリフェリル(methumbellifery
l)・α−D−ガラクトシドを分解)を添加し、混合物
を37゜でインキュベートした。4′−O−α−D−ガラ
クトピラノシル−エトポシドの分解と遊離エトポシドの
出現をHPLCで調べた。半減期はそれぞれ4又は7時間で
あった。
銀をジクロロメタン(50m)中2″,3″−ジ−O−ク
ロロアセチル−エトポシド(0.67mmol)とハロゲン化グ
リコシル(ブロミド又はクロリド、1.2mmol)の溶液に
−20℃で添加し、反応混合物を遮光して60時間撹拌し
た。ジクロロメタン(50m)を混合物に添加し、次い
でこれを過した。液を水で洗浄し、硫酸マグネシウ
ムで乾燥した。残留物のクロマトグラフィーによりα−
及びβ−O−グリコシド連結化合物を得た。
4,6−テトラ−O−ベンジル−α−D−ガラクトピラノ
シル)−エトポシド 2,3,4,6−テトラ−O−ベンジル−α−D−ガラクト
ピラノシルクロリド(又はブロミド)と2″,3″−ジ−
O−クロロアセチル−エトポシドから出発して上述の方
法により表題化合物を製造した。
ム)。
4,6−テトラ−O−ベンジル−β−D−ガラクトピラノ
シル)−エトポシド 2,3,4,6−テトラ−O−ベンジル−α−D−ガラクト
ピラノシルブロミドと2″,3″−ジ−O−クロロアセチ
ル−エトポシドから出発して上述の方法により表題化合
物を製造した。
ム)。
4,6−テトラ−O−ベンジル−α−D−グルコピラノシ
ル)−エトポシド 2,3,4,6−テトラ−O−ベンジル−α−D−グルコピ
ラノシルクロリド(又はブロミド)と2″,3″−ジ−O
−クロロアセチル−エトポシドから出発して上述の方法
により表題化合物を製造した。
ム)。
4,6−テトラ−O−ベンジル−β−D−グルコピラノシ
ル)−エトポシド 2,3,4,6−テトラ−O−ベンジル−α−D−グルコピ
ラノシルブロミドと2″,3″−ジ−O−クロロアセチル
−エトポシドから出発して上述の方法により表題化合物
を精製した。
ム)。
4,6−テトラ−O−ベンジル−β−D−グルクロニル)
−エトポシド ベンジル・2,3,4−トリ−O−ベンジル−1−クロロ
(又は−ブロモ)−1−デオキシ−α−D−グルコピラ
ヌローネートと2″,3″−ジ−O−クロロアセチル−エ
トポシドから出発して上述の方法により表題化合物を製
造した。
ム)。
護基の除去 一般的方法 3:2メタノール/ジクロロメタン(200m)中2″,
3″−ジ−O−クロロアセチル化グリコシル−エトポシ
ド(0.75mmol)とDowex 1×8イオン交換剤(3.0g)の
混合物を室温で1時間撹拌した。樹脂を過して除き、
次いで液をリン酸緩衝液(pH6)で洗浄し、乾燥(硫
酸ナトリウム)し、真空下で蒸発した。残留物をカラム
クロマトグラフィーにより精製した。次の化合物を製造
した。
−ガラクトピラノシル)−エトポシドα−グリコシド
〔α〕D+6.0゜(c=1、クロロホルム) 4′−O−(2,3,4,6−テトラ−O−ベンジル−β−D
−ガラクトピラノシル)−エトポシド 4′−O−(2,3,4,6−テトラ−O−ベンジル−α−D
−グルコピラノシル)−エトポシドα−グリコシド
〔α〕D+14.9゜(c=1、クロロホルム) 14′−O−(2,3,4,6−テトラ−O−ベンジル−β−D
−グルコピラノシル)−エトポシドβ−グリコシド
〔α〕D−53゜(c=1、クロロホルム) 4′−O−(2,3,4,6−テトラ−O−ベンジル−β−D
−グルクロニル)−エトポシド。
化分解による除去 一般的方法 氷酢酸(10m)中ベンジル化グリコシル−エトポシ
ド(0.64mmol)の混合物を10%Pd/C(1.0g)の存在下で
24時間水素添加した。触媒を過して除き、次いで液
を約0℃で真空下に蒸発した。残留物をシリカゲルカラ
ムクロマトグラフィーにより精製して次のグリコシル−
エトポシドを得た。
ド α−グリコシド〔α〕D+6.2゜(c=1、クロロホル
ム) 4′−O−(β−D−ガラクトピラノシル)−エトポシ
ド β−グリコシド〔α〕D−73.1゜(c=1、クロロホル
ム) 4′−O−(α−D−グリコピラノシル)−エトポシド 4′−O−(β−D−グルコピラノシル)−エトポシド β−グリコシド〔α〕D−76.6゜(c=0.9、クロロホ
ルム) 4′−O−(β−D−グルクロニル)−エトポシド。
Claims (6)
- 【請求項1】溶媒中で促進剤及び適当な場合酸トラップ
又は乾燥剤の存在下で、−50℃〜60℃で式V 【化1】 (式中、R1はメチル基であり、 R2は水素原子、アシル又はトリ−C1〜C4−アルキルシリ
ル保護基であり、 R3はヒドロキシル基、又は酸素を介して結合するアシル
又はトリ−C1〜C4−アルキルシリル保護基であり、そし
て R4は水素原子又はメチル基である) のエトポシド化合物を式VI 【化2】 (式中、R5はヒドロキシル基又は酸素原子を介して結合
するアシル保護基であり、 R6は酸素原子を介して結合するアシル保護基であり、 R7はアシル保護基であり、 R8はメチレンオキシ−アシル保護基であり、そして Zはハロゲン原子、ヒドロキシル基、トリ−C1〜C4−ア
ルキルシリルオキシ基、又は酸素原子を介して結合する
アシル保護基であり、 この場合、アシル保護基はアセチル基、モノ、ジ又はト
リハロゲノアセチル基である) の炭水化物と反応させ、得られた化合物に存在する保護
基を加水分解により除去することからなる、式I 【化3】 (式中、R1はメチル基であり、R2は水素原子であり、R3
はヒドロキシル基であり、R4は水素原子又はメチル基で
あり、R5はヒドロキシメチル基であり、R6はヒドロキシ
ル基であり、R7は水素原子であり、そしてR8はヒドロキ
シル基である) の4′−O−グリコシル−エトポシド誘導体の製造方
法。 - 【請求項2】アシル保護基はアセチル基、クロロアセチ
ル基又はトリフルオロアセチル基である請求項1記載の
方法。 - 【請求項3】式Iの4′−O−グリコシル−エトポシド
誘導体が4′−O−α−D−ガラクトピラノシル−エト
ポシドである請求項1または2記載の方法。 - 【請求項4】式I 【化4】 (式中、R1はメチル基であり、R2は水素原子であり、R3
はヒドロキシル基であり、R4は水素原子又はメチル基で
あり、R5はヒドロキシル基であり、R6はヒドロキシル基
であり、R7は水素原子であり、そしてR8はヒドロキシメ
チル基である) の4′−O−グリコシル−エトポシド。 - 【請求項5】4′−O−α−D−ガラクトピラノシル−
エトポシドである請求項4記載の4′−O−グリコシル
−エトポシド。 - 【請求項6】請求項4記載の式Iの化合物を有効成分と
するものであって式II A−Sp−E (II) 〔式中、Aは腫瘍関連抗原に対する特異性を持つ抗体又
はその断片の一つであるか、もしくは腫瘍に蓄積する生
体分子であり、 Eは免疫原的でないか又は低免疫原性のグリコシダーゼ
であり、 Spは式III又はIV X(S)nY III X(S)n IV {式中、X又はYは−CO−R9−(N−サクシンイミド)
−又は−C(=R10)−CH2−CH2−(式中R9は−CH2−CH
2−、1,4−シクロヘキシリデン、1,3−又は1,4−フェニ
レン又はクロロ−1,4−フェニレン、そしてR10はO又は
NHである)であり、更にYは−C(=R10)−CH2−CH2
−(式中R10は前述の意味を持つ)であり、そしてnは
1又は2である}の二官能性スルフィド又はジスルフィ
ド含有基、もしくはポリペプチドスペーサーである〕 を有する機能化された腫瘍特異的酵素と組合せて使用す
る抗腫瘍剤。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE3935016A DE3935016A1 (de) | 1989-10-20 | 1989-10-20 | Glycosyl-etoposid-prodrugs, verfahren zu ihrer herstellung und ihre anwendung in kombination mit funktionalisiertem tumorspezifischen enzym-konjugaten |
DE3935016.9 | 1989-10-20 |
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ID=6391872
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Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
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---|---|
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