JP3267933B2 - Substrate quantification method - Google Patents

Substrate quantification method

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JP3267933B2
JP3267933B2 JP17276698A JP17276698A JP3267933B2 JP 3267933 B2 JP3267933 B2 JP 3267933B2 JP 17276698 A JP17276698 A JP 17276698A JP 17276698 A JP17276698 A JP 17276698A JP 3267933 B2 JP3267933 B2 JP 3267933B2
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俊彦 吉岡
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Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、試料中の基質につ
いて、迅速かつ高精度な定量を簡便に実施するための定
量法に関する。
BACKGROUND OF THE INVENTION 1. Field of the Invention The present invention relates to a quantification method for quickly and accurately quantifying a substrate in a sample.

【0002】[0002]

【従来の技術】スクロース、グルコースなど糖類の定量
分析法として、施光度計法、比色法、還元滴定法、各種
クロマトグラフィーを用いた方法等が開発されている。
しかし、これらの方法はいずれも、糖類に対する特異性
があまり高くないので精度が悪い。これらの方法のうち
施光度計法によれば、操作は簡便ではあるが、操作時の
温度の影響を大きく受ける。従って、施光度計法は、一
般の人々が家庭などで簡易に糖類を定量する方法として
は適切でない。ところで、近年、酵素の有する特異的触
媒作用を利用した種々のタイプのバイオセンサが開発さ
れている。以下に、試料液中の基質の定量法の一例とし
てグルコースの定量法について説明する。電気化学的な
グルコースの定量法としては、グルコースオキシダーゼ
(EC1.1.3.4:以下GODと略す)と酸素電極
あるいは過酸化水素電極とを使用して行う方法が一般に
知られている(例えば、鈴木周一編「バイオセンサー」
講談社)。
2. Related Background Art As a quantitative analysis method of saccharides such as sucrose and glucose, a photometer method, a colorimetric method, a reduction titration method, a method using various types of chromatography, and the like have been developed.
However, all of these methods are not accurate because the specificity for saccharides is not very high. According to the photometer method among these methods, although the operation is simple, it is greatly affected by the temperature during the operation. Therefore, the photometer method is not suitable as a method for ordinary people to easily determine saccharides at home or the like. In recent years, various types of biosensors utilizing the specific catalytic action of enzymes have been developed. Hereinafter, a method for quantifying glucose will be described as an example of a method for quantifying a substrate in a sample solution. As an electrochemical glucose quantification method, a method using glucose oxidase (EC 1.1.3.4; hereinafter abbreviated as GOD) and an oxygen electrode or a hydrogen peroxide electrode is generally known (eg, for example). , Shuichi Suzuki "Biosensor"
Kodansha).

【0003】GODは、酸素を電子伝達体として、基質
であるβ−D−グルコースをD−グルコノ−δ−ラクト
ンに選択的に酸化する。酸素の存在下で、GODによる
酸化反応過程において、酸素が過酸化水素に還元され
る。酸素電極によって、この酸素の減少量を計測する
か、あるいは過酸化水素電極によって過酸化水素の増加
量を計る。酸素の減少量および過酸化水素の増加量は、
試料液中のグルコースの含有量に比例するので、酸素の
減少量または過酸化水素の増加量からグルコースを定量
することができる。この方法は、その反応過程からも推
測できるように、測定結果は試料液に含まれる酸素濃度
の影響を大きく受ける欠点がある。また、試料液に酸素
が存在しない場合は測定が不可能となる。
[0003] GOD selectively oxidizes β-D-glucose as a substrate to D-glucono-δ-lactone using oxygen as an electron carrier. In the presence of oxygen, oxygen is reduced to hydrogen peroxide during the oxidation reaction process by GOD. The oxygen electrode measures the decrease in oxygen, or the hydrogen peroxide electrode measures the increase in hydrogen peroxide. The amount of decrease in oxygen and the amount of increase in hydrogen peroxide
Since it is proportional to the content of glucose in the sample liquid, glucose can be determined from the amount of decrease in oxygen or the amount of increase in hydrogen peroxide. This method has a drawback that the measurement result is greatly affected by the concentration of oxygen contained in the sample solution, as can be estimated from the reaction process. Further, when oxygen does not exist in the sample liquid, the measurement becomes impossible.

【0004】そこで、酸素を電子伝達体として用いず、
フェリシアン化カリウム、フェロセン誘導体、キノン誘
導体等の有機化合物や金属錯体を電子伝達体として用い
る新しいタイプのグルコースセンサが開発されてきた。
このタイプのセンサでは、酵素反応の結果生じた電子伝
達体の還元体を電極上で酸化することにより、その酸化
電流量から試料液中に含まれるグルコース濃度が求めら
れる。このような有機化合物や金属錯体を酸素の代わり
に電子伝達体として用いることで、既知量のGODとそ
れらの電子伝達体を安定な状態で正確に電極上に担持さ
せて反応層を形成することが可能となる。この場合、反
応層を乾燥状態に近い状態で電極系と一体化させること
もできるので、この技術に基づいた使い捨て型のグルコ
ースセンサが近年多くの注目を集めている。使い捨て型
のグルコースセンサにおいては、測定器に着脱可能に接
続されたセンサに試料液を導入するだけで容易にグルコ
ース濃度を測定器で測定することができる。このような
手法は、グルコースの定量だけに限らず、試料液中に含
まれる他の基質の定量にも応用可能である。
Therefore, without using oxygen as an electron carrier,
A new type of glucose sensor using an organic compound such as potassium ferricyanide, a ferrocene derivative, a quinone derivative or a metal complex as an electron carrier has been developed.
In this type of sensor, the concentration of glucose contained in the sample solution is obtained from the amount of oxidation current by oxidizing the reduced form of the electron carrier generated as a result of the enzyme reaction on the electrode. By using such an organic compound or metal complex as an electron carrier instead of oxygen, it is possible to form a reaction layer by accurately supporting a known amount of GOD and the electron carrier in a stable state on an electrode. Becomes possible. In this case, since the reaction layer can be integrated with the electrode system in a state close to a dry state, a disposable glucose sensor based on this technology has been receiving much attention in recent years. In a disposable glucose sensor, the glucose concentration can be easily measured by the measuring device simply by introducing the sample liquid into the sensor detachably connected to the measuring device. Such a technique is applicable not only to the quantification of glucose but also to the quantification of other substrates contained in a sample solution.

【0005】[0005]

【発明が解決しようとする課題】上記の様なセンサを用
いた測定によると、還元型電子伝達体を作用極上にて酸
化し、その際に流れる酸化電流値に基づいて基質濃度が
求められる。しかしながら、血液や果汁等が試料として
用いられた場合、その試料中に含まれるアスコルビン
酸、尿酸等の易酸化性物質も、還元型電子伝達体と同時
に作用極上で酸化される。この易酸化性物質の酸化反応
が、測定結果に影響を与える場合がある。
According to the measurement using the sensor as described above, the reduced electron carrier is oxidized on the working electrode, and the substrate concentration is determined based on the value of the oxidation current flowing at that time. However, when blood, fruit juice or the like is used as a sample, oxidizable substances such as ascorbic acid and uric acid contained in the sample are oxidized on the working electrode simultaneously with the reduced electron carrier. The oxidation reaction of the easily oxidizable substance may affect the measurement result.

【0006】また、上記のようなセンサを用いた測定で
は、反応層に担持された電子伝達体が還元されると同時
に、溶存酸素を電子伝達体として過酸化水素を生成する
反応が進行する。さらに、この反応にて生成した過酸化
水素は、還元型電子伝達体を再酸化する。結果として、
還元型電子伝達体の酸化電流に基づいて基質濃度を測定
する場合、溶存酸素が測定結果に負の誤差を与える場合
がある。
In the measurement using the above-described sensor, the reaction of generating hydrogen peroxide using dissolved oxygen as an electron carrier proceeds simultaneously with the reduction of the electron carrier carried on the reaction layer. Further, the hydrogen peroxide generated by this reaction reoxidizes the reduced electron carrier. as a result,
When measuring the substrate concentration based on the oxidation current of the reduced electron carrier, dissolved oxygen may give a negative error to the measurement result.

【0007】上記の方法においては、電流応答を得るた
めに作用極と対極との間に電圧を印加する以前に、作用
極と対極との間に電圧を印加し、その両極間の電気的変
化に基づいて液絡検知を行う場合が多い。その際に、試
料液が十分量電極系に供給される前に、前記作用極−対
極間の抵抗値が変化して測定が始まる場合があり、測定
結果に影響を与える場合があった。また、作用極の界面
状態に変化を来し、測定結果に影響を与える場合があっ
た。さらに、二電極式による測定方法においては、対極
を参照極として併用する。このため、基準となる対極電
位が作用極での酸化還元反応に伴い変動するから、これ
によって測定結果に影響が与えられることがあった。
In the above method, before applying a voltage between the working electrode and the counter electrode in order to obtain a current response, a voltage is applied between the working electrode and the counter electrode, and an electrical change between the working electrode and the counter electrode is applied. In many cases, liquid junction detection is performed based on At this time, before a sufficient amount of the sample liquid is supplied to the electrode system, the resistance value between the working electrode and the counter electrode may change and the measurement may start, which may affect the measurement result. In addition, the interface state of the working electrode may change, which may affect the measurement result. Further, in the two-electrode measurement method, the counter electrode is used as a reference electrode. For this reason, the reference potential of the reference electrode fluctuates with the oxidation-reduction reaction at the working electrode, which may affect the measurement result.

【0008】本発明は、以上のような不都合をなくし、
易酸化性物質による影響を除去し、正確な基質濃度を測
定できる定量法を提供することを目的とする。本発明
は、また応答のばらつきがより減少された基質の定量法
を提供することを目的とする。
[0008] The present invention eliminates the above disadvantages,
It is an object of the present invention to provide a quantitative method capable of accurately measuring the concentration of a substrate by removing the influence of an oxidizable substance. Another object of the present invention is to provide a method for quantifying a substrate with reduced response variability.

【0009】[0009]

【課題を解決するための手段】上記の課題を解決するた
めに本発明は、電気絶縁性基板と、前記基板上に形成さ
れた作用極、対極、および、妨害物質検知電極として使
用される第3の電極を有する電極系と、前記第3の電
極を除く前記電極系上に設けられた、少なくとも酸化還
元酵素と電子伝達体を含有する反応層と、前記基板との
間に試料液供給路を形成するカバー部材とからなり、前
記第3の電極が前記反応層よりも前記試料液供給路の上
流側に配置されており、かつ前記作用極が前記対極より
も前記試料液供給路の上流側に配置されていることを特
徴とするバイオセンサを提供する。
SUMMARY OF THE INVENTION In order to solve the above-mentioned problems, the present invention provides an electrically insulating substrate, and a working electrode, a counter electrode, and an interfering substance detection electrode formed on the substrate. an electrode system having a third electrode, the provided on said electrode system, except the third electrode, and a reaction layer containing at least an oxidoreductase and an electron mediator, and the substrate
And a cover member that forms a sample liquid supply path between
The third electrode is located above the sample liquid supply path than the reaction layer.
Disposed on the flow side, and wherein the working electrode is
Is also arranged upstream of the sample liquid supply path.
A biosensor is provided.

【0010】本発明は、また、電気絶縁性基板と、前記
基板上に形成された作用極、対極、および、妨害物質検
知電極として使用される第3の電極とを有する電極系
と、第3の電極を除く電極系上に設けられた、少なくと
も酸化還元酵素と電子伝達体を含有する反応層と、前記
基板との間に試料液供給路を形成するカバー部材とから
なり、前記第3の電極が前記反応層よりも前記試料液供
給路の上流側に配置されており、かつ前記作用極が前記
対極よりも前記試料液供給路の上流側に配置されている
バイオセンサを用いて、試料液に含まれる基質と酸化還
元酵素とを反応させる際に生成する電子によって電子伝
達体を還元し、その電子伝達体の還元量を電気化学的に
計測することにより、試料液中の基質の濃度を定量する
方法であって、以下の工程を包含する定量法を提供す
る。 (1)対極と第3の電極との間に電圧を印加する工程、 (2)試料液を反応層に供給する工程、 (3)試料液の反応層への供給によって生じた、対極と
第3の電極との間の電気的変化を検知する工程、 (4)前記の検知する工程(3)の後、対極と第3の電
極との間に生じた電流を測定する工程、 (5)前記の測定する工程(4)の後、対極と第3の電
極との間の電圧印加を解除する工程、 (6)作用極と対極との間に電圧を印加する工程、およ
び (7)その後、対極と作用極との間に生じた電流を測定
する工程。
The present invention also provides an electrode system having an electrically insulating substrate, a working electrode formed on the substrate, a counter electrode, and a third electrode used as an interfering substance detection electrode. electrodes provided on the electrode system, except for a reaction layer containing at least an oxidoreductase and an electron mediator, consists of a cover member for forming a sample solution supply pathway between the substrate, the third than the electrodes the reactive layer is disposed on the upstream side of the sample solution supply pathway, and wherein the working electrode is the
Using a biosensor disposed on the upstream side of the sample liquid supply path from the counter electrode , reducing the electron carrier by electrons generated when reacting the substrate and the oxidoreductase contained in the sample liquid, Provided is a method for quantifying the concentration of a substrate in a sample solution by electrochemically measuring the amount of reduction of an electron carrier, which method includes the following steps. (1) a step of applying a voltage between the counter electrode and the third electrode; (2) a step of supplying the sample liquid to the reaction layer; and (3) a step of applying the sample liquid to the reaction layer. Detecting the electrical change between the third electrode and the third electrode; (4) measuring the current generated between the counter electrode and the third electrode after the detecting step (3); After the measuring step (4), a step of releasing the voltage application between the counter electrode and the third electrode, (6) a step of applying a voltage between the working electrode and the counter electrode, and (7) thereafter Measuring the current generated between the counter electrode and the working electrode.

【0011】本発明の定量法においては、第3の電極を
参照極として用いることが好ましい。すなわち、上記の
工程(6)において、作用極と第3の電極との間にも電
圧を印加する。また、前記基板にカバー部材を組み合わ
せたバイオセンサを用いる場合は、試料液供給路に露出
したカバー部材の壁面に、レシチンを担持する層を配置
することが好ましい。さらに、前記反応層は、親水性高
分子を含有することが好ましい。
In the quantification method of the present invention, it is preferable to use the third electrode as a reference electrode. That is, in the above step (6), a voltage is also applied between the working electrode and the third electrode. When a biosensor in which a cover member is combined with the substrate is used, it is preferable to arrange a lecithin-supporting layer on the wall surface of the cover member exposed to the sample liquid supply path. Further, the reaction layer preferably contains a hydrophilic polymer.

【0012】[0012]

【発明の実施の形態】本発明の定量法に用いられるバイ
オセンサの構成を説明する。まず、第1のタイプのバイ
オセンサを図1により説明する。このセンサは、ポリエ
チレンテレフタレートなどからなる絶縁性の基板1上
に、対極6、作用極7、および第3の電極8が設けら
れ、さらにこれらに電気接続されたリード2、3、4が
各々設けられている。カーボン層9は、反応層の作製を
容易にするために設けられた層であり、電極としては機
能しない。第3の電極8を除く、対極6、作用極7およ
びカーボン層9上に、酸化還元酵素と電子伝達体を含む
円形の反応層(図示しない)が設けられている。図中、
5は絶縁層である。
DESCRIPTION OF THE PREFERRED EMBODIMENTS The configuration of a biosensor used in the quantification method of the present invention will be described. First, a first type of biosensor will be described with reference to FIG. In this sensor, a counter electrode 6, a working electrode 7, and a third electrode 8 are provided on an insulating substrate 1 made of polyethylene terephthalate or the like, and leads 2, 3, and 4 electrically connected thereto are provided. Have been. The carbon layer 9 is a layer provided for facilitating the production of the reaction layer, and does not function as an electrode. A circular reaction layer (not shown) containing an oxidoreductase and an electron carrier is provided on the counter electrode 6, the working electrode 7, and the carbon layer 9 except for the third electrode 8. In the figure,
5 is an insulating layer.

【0013】次に、第2のタイプのバイオセンサを図2
により説明する。このセンサは、図1の基板1に、カバ
ー10およびスペーサ11からなるカバー部材を組み合
わせたものである。これらは、図2中に一点鎖線で示す
ような位置関係をもって接着されてセンサが構成され
る。スペーサ11には試料液供給路を形成するスリット
12が形成され、また、カバー10には空気孔13が形
成されている。基板1上にスペーサ11を介してカバー
10を積層し接着すると、基板1、スペーサ11および
カバー10によって試料液供給路となる空間部がスペー
サ11のスリット12の部分に形成される。この空間部
の終端部は、空気孔13に連通する。このバイセンサに
おいては、作用極7は、半月状の対極6よりも試料液供
給口12a(スリット12の解放端部に相当する)に近
い位置に配置され、第3の電極8は、作用極7よりさら
に試料液供給口12aに近い位置に配置されている。こ
れらの電極6、7、および8は、それぞれ上記空間部に
露出している。
Next, a second type of biosensor is shown in FIG.
This will be described below. This sensor is a combination of the substrate 1 of FIG. 1 and a cover member including a cover 10 and a spacer 11. These are adhered in a positional relationship as shown by a dashed line in FIG. 2 to constitute a sensor. The spacer 11 has a slit 12 for forming a sample liquid supply path, and the cover 10 has an air hole 13. When the cover 10 is laminated and adhered on the substrate 1 via the spacer 11, a space serving as a sample liquid supply path is formed in the slit 12 of the spacer 11 by the substrate 1, the spacer 11 and the cover 10. The end of this space communicates with the air hole 13. In this bisensor, the working electrode 7 is arranged at a position closer to the sample liquid supply port 12a (corresponding to the open end of the slit 12) than the half-moon-shaped counter electrode 6, and the third electrode 8 is connected to the working electrode 7 Further, it is arranged at a position closer to the sample liquid supply port 12a. These electrodes 6, 7, and 8 are respectively exposed to the space.

【0014】上記のバイオセンサを用いて基質濃度を測
定するには、まずセンサのリード2、3および4を有す
る側の端部を測定器にセットし、対極6を基準にして第
3の電極8に所定の電位を印加する。この電位を印加し
た状態で、妨害物質として例えばアスコルビン酸を含む
試料液反応層上に滴下し、反応層を試料液に溶解させ
る。試料液の供給と同時に、電極系の対極6と第3の電
極8間の電気的変化に基づいて液の供給を検知するシス
テムが動作し、これによって測定タイマーが始動する。
この時、対極6と第3の電極8間には、電位は印加され
続けており、試料液が供給されたことを検知してから一
定時間経過後に、対極6と第3の電極8間の電流値を測
定する。第3の電極8上には反応層が配置されていない
から、酵素反応の結果生成した電子伝達体の還元体が第
3の電極8近傍に到達するまでには、若干の時間を必要
とする。従って、前記の電流値は、妨害物質として含ま
れるアスコルビン酸の酸化反応に起因する。
In order to measure the substrate concentration using the above biosensor, first, the end of the sensor having the leads 2, 3 and 4 is set on a measuring instrument, and the third electrode is set with reference to the counter electrode 6. 8 is applied with a predetermined potential. In a state where this potential is applied, the reaction layer is dropped on a sample liquid reaction layer containing, for example, ascorbic acid as an interfering substance, and the reaction layer is dissolved in the sample liquid. Simultaneously with the supply of the sample liquid, the system for detecting the supply of the liquid based on the electrical change between the counter electrode 6 and the third electrode 8 of the electrode system operates, and thus the measurement timer starts.
At this time, a potential is continuously applied between the counter electrode 6 and the third electrode 8, and after a lapse of a predetermined time from the detection of the supply of the sample solution, the potential between the counter electrode 6 and the third electrode 8 is changed. Measure the current value. Since no reaction layer is disposed on the third electrode 8, it takes some time for the reduced form of the electron carrier generated as a result of the enzyme reaction to reach the vicinity of the third electrode 8. . Therefore, the above current value is caused by the oxidation reaction of ascorbic acid contained as an interfering substance.

【0015】次に、対極6と第3の電極8間の電圧印加
を解除する。その後、対極6を基準にして作用極7に、
前記電子伝達体の還元体を酸化する電位を印加し、対極
6と作用極7間の電流値を測定する。この電流は、電子
伝達体の還元体と、あらかじめ存在する妨害物質アスコ
ルビン酸の酸化反応に起因する。すなわち、アスコルビ
ン酸が測定結果に正の誤差を与えることとなる。そし
て、上述の対極6と第3の電極8間の電流値は主にアス
コルビン酸の濃度のみを反映しているから、この電流値
に基づき測定結果を補正することにより、アスコルビン
酸の影響を除去し、正確な基質濃度を求めることができ
る。第2のタイプのセンサでは、対極6と第3の電極8
間で試料液の供給を検知するため、作用極7の露出部全
てが確実に試料液で満たされる。これにより、試料液の
供給をより確実に判定することができる。
Next, the voltage application between the counter electrode 6 and the third electrode 8 is released. Then, to the working electrode 7 based on the counter electrode 6,
A potential for oxidizing the reduced form of the electron carrier is applied, and a current value between the counter electrode 6 and the working electrode 7 is measured. This current results from the oxidation of the reduced form of the electron carrier and the pre-existing interfering substance ascorbic acid. That is, ascorbic acid gives a positive error to the measurement result. Since the current value between the counter electrode 6 and the third electrode 8 mainly reflects only the concentration of ascorbic acid, the influence of ascorbic acid is removed by correcting the measurement result based on this current value. In addition, an accurate substrate concentration can be obtained. In the second type of sensor, the counter electrode 6 and the third electrode 8
Since the supply of the sample liquid is detected in the interval, the entire exposed portion of the working electrode 7 is reliably filled with the sample liquid. This makes it possible to more reliably determine the supply of the sample liquid.

【0016】[0016]

【実施例】以下、本発明を実施例により詳細に説明す
る。 《実施例1》グルコースの定量法を説明する。グルコー
スセンサの基板には図1に示すものを使用した。このグ
ルコースセンサは以下のようにして作製した。ポリエチ
レンテレフタレートからなる絶縁性の基板1上に、スク
リーン印刷により銀ペーストを印刷しリード2、3、お
よび4を各々形成した。次に、樹脂バインダーを含む導
電性カーボンペーストを基板1上に印刷して作用極7お
よび第3の電極8を形成した。作用極7および第3の電
極8は、各々リード3および4と電気的に接触してい
る。次にその基板1上に、絶縁性ペーストを印刷して絶
縁層5を形成した。絶縁層5は、作用極7および第3の
電極8の外周部を覆っており、これによって作用極5お
よび第3の電極8の露出部分の面積は一定に保たれる。
絶縁層5は、リード2、3、および4の一部を覆ってい
る。
DESCRIPTION OF THE PREFERRED EMBODIMENTS The present invention will be described below in detail with reference to embodiments. << Example 1 >> A method for quantifying glucose will be described. The substrate shown in FIG. 1 was used for the substrate of the glucose sensor. This glucose sensor was manufactured as follows. Silver paste was printed on the insulating substrate 1 made of polyethylene terephthalate by screen printing to form leads 2, 3, and 4, respectively. Next, a conductive carbon paste containing a resin binder was printed on the substrate 1 to form the working electrode 7 and the third electrode 8. The working electrode 7 and the third electrode 8 are in electrical contact with the leads 3 and 4, respectively. Next, an insulating paste was printed on the substrate 1 to form an insulating layer 5. The insulating layer 5 covers the outer peripheral portions of the working electrode 7 and the third electrode 8, so that the exposed areas of the working electrode 5 and the third electrode 8 are kept constant.
The insulating layer 5 covers a part of the leads 2, 3 and 4.

【0017】次に、第3の電極8を除く、対極6、作用
極7およびカーボン層9上にカルボキシメチルセルロー
ス(以下CMCと略称する)の水溶液を滴下し、乾燥さ
せることにより、CMC層を形成した。このCMC層上
に、酵素としてGOD、および電子伝達体としてフェリ
シアン化カリウムを含む水溶液を滴下すると、親水性高
分子からなるCMC層は一度溶解し、その後の乾燥過程
で酵素などと混合された形で反応層を形成する。しか
し、攪拌等を伴わないため完全な混合状態とはならず、
電極系表面はCMCのみによって被覆された状態とな
る。すなわち、酵素および電子伝達体などが電極系表面
に接触しないために、電極系表面へのタンパク質の吸着
などを防ぐことができる。
Next, an aqueous solution of carboxymethylcellulose (hereinafter abbreviated as CMC) is dropped on the counter electrode 6, the working electrode 7, and the carbon layer 9 except for the third electrode 8, and dried to form a CMC layer. did. When an aqueous solution containing GOD as an enzyme and potassium ferricyanide as an electron carrier is dropped on this CMC layer, the CMC layer made of a hydrophilic polymer is dissolved once, and then mixed with the enzyme and the like in a subsequent drying process. Form a reaction layer. However, since it does not involve stirring or the like, it does not become a completely mixed state,
The electrode system surface is in a state covered with only CMC. That is, since the enzyme, the electron carrier, and the like do not contact the electrode system surface, it is possible to prevent the adsorption of the protein to the electrode system surface.

【0018】このセンサを用いてグルコース濃度を測定
するために、まずリード2、3および4を有する側の端
部を測定器にセットし、対極6を基準にして第3の電極
8に500mVの電位を印加した。この電位を印加した
状態で、妨害物質としてアスコルビン酸を含むグルコー
ス水溶液30μlを、試料液として反応層上に滴下し
た。電極系上の反応層は、滴下された試料液に溶解し
た。試料液の供給と同時に、電極系の対極6と第3の電
極8間の電気的変化に基づいて液の供給を検知するシス
テムが動作する。これによって測定タイマーが始動し
た。この時、対極6と第3の電極8間には、電位は印加
され続けており、試料液が供給されたことを検知してか
ら一定時間経過後に、対極6と第3の電極8間の電流値
を測定した。この電流値は、妨害物質として含まれるア
スコルビン酸の酸化反応に起因し、その濃度に対して比
例関係を与えた。対極6と第3の電極8間の電流値測定
後、両極間の電圧印加を解除した。
In order to measure the glucose concentration using this sensor, first, the end having the leads 2, 3 and 4 is set on a measuring instrument, and 500 mV is applied to the third electrode 8 with respect to the counter electrode 6. An electric potential was applied. With this potential applied, 30 μl of a glucose aqueous solution containing ascorbic acid as an interfering substance was dropped on the reaction layer as a sample solution. The reaction layer on the electrode system was dissolved in the dropped sample solution. Simultaneously with the supply of the sample liquid, a system for detecting the supply of the liquid based on an electrical change between the counter electrode 6 of the electrode system and the third electrode 8 operates. This started the measurement timer. At this time, a potential is continuously applied between the counter electrode 6 and the third electrode 8, and after a lapse of a predetermined time from the detection of the supply of the sample solution, the potential between the counter electrode 6 and the third electrode 8 is changed. The current value was measured. This current value was caused by the oxidation reaction of ascorbic acid contained as an interfering substance, and gave a proportional relationship to the concentration. After the current value between the counter electrode 6 and the third electrode 8 was measured, the voltage application between both electrodes was released.

【0019】上述したように、第3の電極8上には反応
層が配置されていない。よって、酵素反応の結果生成し
たフェロシアン化イオンが第3の電極8近傍に到達する
までには、若干の時間を必要とする。すなわち、フェロ
シアン化イオン到達までの時間内における対極6と第3
の電極8間の電流値は、主にアスコルビン酸の濃度のみ
を反映する。さらに、試料液検知から25秒後、対極6
を基準にして作用極7に500mVを印加し、対極6と
作用極7間の5秒後の電流値を測定した。液中のフェリ
シアン化イオン、グルコース、およびGODが反応し、
その結果、グルコースがグルコノラクトンに酸化され、
フェリシアン化イオンがフェロシアン化イオンに還元さ
れる。このフェロシアン化イオンの濃度は、グルコース
の濃度に比例する。試料液検知から30秒後の対極6と
作用極7間の電流は、フェロシアン化イオンと、あらか
じめ存在するアスコルビン酸の酸化反応に起因する。す
なわち、アスコルビン酸が測定結果に正の誤差を与える
こととなる。しかしながら、上述したように、対極6と
第3の電極8間の電流値は主にアスコルビン酸の濃度の
みを反映する。そこで、その結果に基づき測定結果を補
正することにより、アスコルビン酸の影響を除去し、正
確なグルコース濃度を求めることができる。
As described above, no reaction layer is disposed on the third electrode 8. Therefore, it takes some time for the ferrocyanide ions generated as a result of the enzyme reaction to reach the vicinity of the third electrode 8. That is, the counter electrode 6 and the third electrode in the time until the arrival of the ferrocyanide ion are reached.
The current value between the electrodes 8 mainly reflects only the concentration of ascorbic acid. Further, 25 seconds after the detection of the sample liquid, the counter electrode 6
Was applied, 500 mV was applied to the working electrode 7, and the current value after 5 seconds between the counter electrode 6 and the working electrode 7 was measured. The ferricyanide ion, glucose, and GOD in the liquid react,
As a result, glucose is oxidized to gluconolactone,
Ferricyanide ions are reduced to ferrocyanide ions. The concentration of this ferrocyanide ion is proportional to the concentration of glucose. The current between the counter electrode 6 and the working electrode 30 after 30 seconds from the detection of the sample liquid is caused by an oxidation reaction between ferrocyanide ions and ascorbic acid which already exists. That is, ascorbic acid gives a positive error to the measurement result. However, as described above, the current value between the counter electrode 6 and the third electrode 8 mainly reflects only the concentration of ascorbic acid. Therefore, by correcting the measurement result based on the result, the influence of ascorbic acid can be removed, and an accurate glucose concentration can be obtained.

【0020】《実施例2》実施例1と同様に、基板1上
に電極6、7、8、およびカーボン層9を形成した。次
に、第3の電極8を除く、対極6、作用極7およびカー
ボン層9上にCMC水溶液を滴下し、乾燥させることに
より、CMC層を形成し、このCMC層上に、酵素とし
てGOD、および電子伝達体としてフェリシアン化カリ
ウムを含有する水溶液を滴下し、乾燥させることによ
り、反応層を形成した。次に、前記反応層上に、試料液
の反応層への供給をより一層円滑にするために、レシチ
ンの有機溶媒溶液、例えばトルエン溶液を、試料液供給
口12aから反応層上にわたって広げ、乾燥させること
によりレシチン層を形成した。次に、基板1に、カバー
10およびスペーサ11を図2中の一点鎖線で示すよう
な位置関係をもって接着してグルコースセンサを作製し
た。
Example 2 Similarly to Example 1, electrodes 6, 7, 8 and a carbon layer 9 were formed on a substrate 1. Next, a CMC aqueous solution is dropped on the counter electrode 6, the working electrode 7, and the carbon layer 9 except for the third electrode 8, and dried to form a CMC layer. On this CMC layer, GOD as an enzyme is formed. Then, an aqueous solution containing potassium ferricyanide as an electron carrier was dropped and dried to form a reaction layer. Next, on the reaction layer, in order to further smoothly supply the sample solution to the reaction layer, an organic solvent solution of lecithin, for example, a toluene solution, is spread from the sample solution supply port 12a over the reaction layer, and dried. By doing so, a lecithin layer was formed. Next, the cover 10 and the spacer 11 were adhered to the substrate 1 in a positional relationship as indicated by a dashed line in FIG. 2 to produce a glucose sensor.

【0021】このセンサを測定器にセットし、対極6を
基準にして第3の電極8に500mVの電位を印加し
た。この電位を印加した状態で、妨害物質としてアスコ
ルビン酸を含むグルコース水溶液3μlを、試料液とし
て試料液供給口12aより供給した。試料液は試料液供
給路を通って空気孔13にまで達し、電極系上の反応層
が溶解した。試料液の供給と同時に、電極系の対極6と
第3の電極8間の電気的変化に基づいて液の供給を検知
するシステムが動作し、これにより測定タイマーが始動
した。この時、対極6と第3の電極8間に電位は印加さ
れ続けており、試料液供給検知から一定時間経過後に、
対極6と第3の電極8間の電流値を測定した。この電流
値は、妨害物質として含まれるアスコルビン酸の酸化反
応に起因し、その濃度に対して比例関係を与えた。対極
6と第3の電極8間の電流値測定後、両極間の電圧印加
を解除した。
This sensor was set on a measuring instrument, and a potential of 500 mV was applied to the third electrode 8 with reference to the counter electrode 6. With this potential applied, 3 μl of an aqueous glucose solution containing ascorbic acid as an interfering substance was supplied as a sample liquid from the sample liquid supply port 12a. The sample liquid reached the air holes 13 through the sample liquid supply path, and the reaction layer on the electrode system was dissolved. Simultaneously with the supply of the sample liquid, the system for detecting the supply of the liquid based on the electrical change between the counter electrode 6 and the third electrode 8 of the electrode system was operated, and the measurement timer was started. At this time, the potential is continuously applied between the counter electrode 6 and the third electrode 8, and after a lapse of a certain time from the detection of the sample liquid supply,
The current value between the counter electrode 6 and the third electrode 8 was measured. This current value was caused by the oxidation reaction of ascorbic acid contained as an interfering substance, and gave a proportional relationship to the concentration. After the current value between the counter electrode 6 and the third electrode 8 was measured, the voltage application between both electrodes was released.

【0022】上述したように、第3の電極8上には反応
層が配置されていない。よって、酵素反応の結果生成し
たフェロシアン化イオンが第3の電極8近傍に到達する
までには、若干の時間を必要とする。すなわち、フェロ
シアン化イオン到達までの時間内における対極6と第3
の電極8間の電流値は、主にアスコルビン酸の濃度のみ
を反映する。さらに、試料液検知から25秒後、対極6
を基準にして作用極7に500mVを印加し、対極6と
作用極7間の5秒後の電流値を測定した。液中のフェリ
シアン化イオン、グルコース、およびGODが反応し、
その結果、グルコースがグルコノラクトンに酸化され、
フェリシアン化イオンがフェロシアン化イオンに還元さ
れる。このフェロシアン化イオンの濃度は、グルコース
の濃度に比例する。試料液検知から30秒後の対極6と
作用極7間の電流は、フェロシアン化イオンと、あらか
じめ存在するアスコルビン酸の酸化反応に起因する。す
なわち、アスコルビン酸が測定結果に正の誤差を与える
こととなる。しかしながら、上述したように、対極6と
第3の電極8間の電流値は主にアスコルビン酸の濃度の
みを反映する。そこで、その結果に基づき測定結果を補
正することにより、アスコルビン酸の影響を除去し、正
確なグルコース濃度を求めることができる。
As described above, no reaction layer is disposed on the third electrode 8. Therefore, it takes some time for the ferrocyanide ions generated as a result of the enzyme reaction to reach the vicinity of the third electrode 8. That is, the counter electrode 6 and the third
The current value between the electrodes 8 mainly reflects only the concentration of ascorbic acid. Further, 25 seconds after the detection of the sample liquid, the counter electrode 6
Was applied, 500 mV was applied to the working electrode 7, and the current value after 5 seconds between the counter electrode 6 and the working electrode 7 was measured. The ferricyanide ion, glucose, and GOD in the liquid react,
As a result, glucose is oxidized to gluconolactone,
Ferricyanide ions are reduced to ferrocyanide ions. The concentration of this ferrocyanide ion is proportional to the concentration of glucose. The current between the counter electrode 6 and the working electrode 30 after 30 seconds from the detection of the sample liquid is caused by an oxidation reaction between ferrocyanide ions and ascorbic acid which is present in advance. That is, ascorbic acid gives a positive error to the measurement result. However, as described above, the current value between the counter electrode 6 and the third electrode 8 mainly reflects only the concentration of ascorbic acid. Therefore, by correcting the measurement result based on the result, the influence of ascorbic acid can be removed, and an accurate glucose concentration can be obtained.

【0023】本実施例では、対極6と第3の電極8間で
試料液の供給を検知するため、作用極7の露出部全てが
確実に試料液で満たされる。これにより、試料液の供給
をより確実に判定することができる。
In this embodiment, since the supply of the sample liquid between the counter electrode 6 and the third electrode 8 is detected, the entire exposed portion of the working electrode 7 is reliably filled with the sample liquid. This makes it possible to more reliably determine the supply of the sample liquid.

【0024】《実施例3》実施例2と同様にグルコース
センサを作製した。測定器にセンサをセットし、対極6
を基準にして第3の電極8に500mVの電位を印加し
た。この電位を印加した状態で、妨害物質としてアスコ
ルビン酸を含むグルコース水溶液3μlを、試料液とし
て試料液供給口12aより供給した。試料液は試料液供
給路を通って空気孔13にまで達し、電極系上の反応層
が溶解した。試料液の供給と同時に、電極系の対極6と
第3の電極8間の電気的変化に基づいて液の供給を検知
するシステムが動作し、これにより測定タイマーが始動
した。この時、対極6と第3の電極8間に電位は印加さ
れ続けており、試料液供給検知から一定時間経過後に、
対極6と第3の電極8間の電流値を測定した。この電流
値は、妨害物質として含まれるアスコルビン酸の酸化反
応に起因し、その濃度に対して比例関係を与えた。対極
6と第3の電極8間の電流値測定後、両極間の電圧印加
を解除した。
Example 3 A glucose sensor was manufactured in the same manner as in Example 2. Set the sensor on the measuring instrument and set the counter electrode 6
, A potential of 500 mV was applied to the third electrode 8. With this potential applied, 3 μl of an aqueous glucose solution containing ascorbic acid as an interfering substance was supplied as a sample liquid from the sample liquid supply port 12a. The sample liquid reached the air holes 13 through the sample liquid supply path, and the reaction layer on the electrode system was dissolved. Simultaneously with the supply of the sample liquid, the system for detecting the supply of the liquid based on the electrical change between the counter electrode 6 and the third electrode 8 of the electrode system was operated, and the measurement timer was started. At this time, the potential is continuously applied between the counter electrode 6 and the third electrode 8, and after a lapse of a certain time from the detection of the sample liquid supply,
The current value between the counter electrode 6 and the third electrode 8 was measured. This current value was caused by the oxidation reaction of ascorbic acid contained as an interfering substance, and gave a proportional relationship to the concentration. After the current value between the counter electrode 6 and the third electrode 8 was measured, the voltage application between both electrodes was released.

【0025】上述したように、第3の電極8上には反応
層が配置されていない。よって、酵素反応の結果生成し
たフェロシアン化イオンが第3の電極8近傍に到達する
までには、若干の時間を必要とする。すなわち、フェロ
シアン化イオン到達までの時間内における対極6と第3
の電極8間の電流値は、主にアスコルビン酸の濃度のみ
を反映する。さらに、試料液検知から25秒後、第3の
電極8を基準にして作用極7に500mVを印加し、対
極6と作用極7間の5秒後の電流値を測定した。液中の
フェリシアン化イオン、グルコース、およびGODが反
応し、その結果、グルコースがグルコノラクトンに酸化
され、フェリシアン化イオンがフェロシアン化イオンに
還元される。このフェロシアン化イオンの濃度は、グル
コースの濃度に比例する。試料液検知から30秒後の対
極6と作用極7間の電流は、フェロシアン化イオンと、
あらかじめ存在するアスコルビン酸の酸化反応に起因す
る。すなわち、アスコルビン酸が測定結果に正の誤差を
与えることとなる。しかしながら、上述したように、対
極6と第3の電極8間の電流値は主にアスコルビン酸の
濃度のみを反映する。そこで、その結果に基づき測定結
果を補正することにより、アスコルビン酸の影響を除去
し、正確なグルコース濃度を求めることができる。ま
た、作用極7への電位印加時に、第3の電極8の電位を
銀/塩化銀電極を基準にして測定したところ、作用極7
において酸化反応が生じているにもかかわらず、第3の
電極8における電位の変動は殆ど見られなかった。ま
た、作用極−対極間の抵抗値変化に基づいて液絡検知を
行っていた従来法に比べて、応答のばらつきが減少し
た。
As described above, no reaction layer is disposed on the third electrode 8. Therefore, it takes some time for the ferrocyanide ions generated as a result of the enzyme reaction to reach the vicinity of the third electrode 8. That is, the counter electrode 6 and the third
The current value between the electrodes 8 mainly reflects only the concentration of ascorbic acid. Further, 25 seconds after the detection of the sample liquid, 500 mV was applied to the working electrode 7 with reference to the third electrode 8, and the current value between the counter electrode 6 and the working electrode 7 after 5 seconds was measured. The ferricyanide ion, glucose, and GOD in the liquid react, and as a result, glucose is oxidized to gluconolactone, and the ferricyanide ion is reduced to ferrocyanide ion. The concentration of this ferrocyanide ion is proportional to the concentration of glucose. The current between the counter electrode 6 and the working electrode 30 after 30 seconds from the detection of the sample liquid is expressed as ferrocyanide ion,
It is caused by the oxidation reaction of pre-existing ascorbic acid. That is, ascorbic acid gives a positive error to the measurement result. However, as described above, the current value between the counter electrode 6 and the third electrode 8 mainly reflects only the concentration of ascorbic acid. Therefore, by correcting the measurement result based on the result, the influence of ascorbic acid can be removed, and an accurate glucose concentration can be obtained. When the potential of the third electrode 8 was measured with the silver / silver chloride electrode as a reference when the potential was applied to the working electrode 7, the working electrode 7 was measured.
However, despite the occurrence of the oxidation reaction, almost no change in the potential at the third electrode 8 was observed. In addition, the variation in response was reduced as compared with the conventional method in which liquid junction detection was performed based on a change in resistance between the working electrode and the counter electrode.

【0026】《実施例4》実施例2と同様に、第3の電
極8を除く、対極6、作用極7およびカーボン層9上に
反応層を形成した。次に、試料液供給路を形成するため
のカバー部材上に形成された溝部に、試料液の反応層へ
の供給をより一層円滑にするために、レシチンの有機溶
媒溶液、例えばトルエン溶液を広げ、乾燥させることに
よりレシチン層を形成した。次に、基板1に、カバー1
0およびスペーサ11を図2中の一点鎖線で示すような
位置関係をもって接着してグルコースセンサを作製し
た。反応層上から第3の電極8上にわたってレシチン層
を配置した場合、第3の電極8表面上がレシチン層によ
り変化を来たし、その応答特性のばらつきが大きくなる
場合がある。上記のようにレシチン層をカバー部材側に
配置すると、そのようなばらつきは抑制され、応答特性
に向上が見られた。
Example 4 In the same manner as in Example 2, a reaction layer was formed on the counter electrode 6, the working electrode 7, and the carbon layer 9 except for the third electrode 8. Next, in a groove formed on a cover member for forming a sample liquid supply path, an organic solvent solution of lecithin, for example, a toluene solution is spread to further smoothly supply the sample liquid to the reaction layer. Then, a lecithin layer was formed by drying. Next, cover 1
0 and the spacer 11 were adhered in a positional relationship as shown by a dashed line in FIG. 2 to produce a glucose sensor. When the lecithin layer is disposed from the reaction layer to the third electrode 8, the surface of the third electrode 8 may change due to the lecithin layer, and the response characteristics may vary widely. When the lecithin layer is disposed on the cover member side as described above, such variations are suppressed, and the response characteristics are improved.

【0027】《実施例5》反応層からCMC層を除去し
た以外は、全て実施例2と同様の方法でグルコースセン
サを作製した。そして、実施例2と同様に測定を行った
結果、CMC層を配置した場合に比べて応答のばらつき
は増加したものの、アスコルビン酸およびグルコースに
対する濃度依存性が観察された。
Example 5 A glucose sensor was manufactured in the same manner as in Example 2 except that the CMC layer was removed from the reaction layer. Then, as a result of performing the measurement in the same manner as in Example 2, although the variation in the response was increased as compared with the case where the CMC layer was arranged, the concentration dependency on ascorbic acid and glucose was observed.

【0028】《実施例6》実施例4と同様にグルコース
センサを作製した。測定器にセンサをセットし、対極6
を基準にして第3の電極8に−1300mVの電位を印
加した。この電位を印加した状態で、空気飽和状態のグ
ルコース水溶液3μlを、試料液として試料液供給口1
2aより供給した。試料液は試料液供給路を通って空気
孔13にまで達し、電極系上の反応層が溶解した。試料
液の供給と同時に、電極系の対極6と第3の電極8間の
電気的変化に基づいて液の供給を検知するシステムが動
作し、これにより測定タイマーが始動した。この時、対
極6と第3の電極8間に電位は印加され続けており、試
料液供給検知から一定時間経過後に、対極6と第3の電
極8間の電流値を測定した。この電流値は、溶存酸素の
還元反応に起因し、アルゴンにて脱気したグルコース溶
液を供給した場合には、その還元電流は激減した。対極
6と第3の電極8間の電流値測定後、両極間の電圧印加
を解除した。
Example 6 A glucose sensor was manufactured in the same manner as in Example 4. Set the sensor on the measuring instrument and set the counter electrode 6
A potential of -1300 mV was applied to the third electrode 8 with reference to. With this potential applied, 3 μl of an air-saturated aqueous glucose solution was used as a sample liquid, and the sample liquid supply port 1 was used.
2a. The sample liquid reached the air holes 13 through the sample liquid supply path, and the reaction layer on the electrode system was dissolved. Simultaneously with the supply of the sample liquid, the system for detecting the supply of the liquid based on the electrical change between the counter electrode 6 and the third electrode 8 of the electrode system was operated, and the measurement timer was started. At this time, the potential was continuously applied between the counter electrode 6 and the third electrode 8, and the current value between the counter electrode 6 and the third electrode 8 was measured after a lapse of a predetermined time from the detection of the sample liquid supply. This current value was caused by a reduction reaction of dissolved oxygen, and when a glucose solution degassed with argon was supplied, the reduction current decreased sharply. After the current value between the counter electrode 6 and the third electrode 8 was measured, the voltage application between both electrodes was released.

【0029】上述したように、第3の電極8上には反応
層が配置されていない。よって、反応層に含有するフェ
リシアン化イオンが第3の電極8近傍に到達するまでに
は、若干の時間を必要とする。すなわち、フェリシアン
化イオンが第3の電極8に到達するまでの時間内におけ
る対極6と第3の電極8間の電流値は、主に溶存酸素濃
度のみを反映する。さらに、試料液検知から25秒後、
第3の電極8を基準にして作用極7に500mVを印加
し、対極6と作用極7間の5秒後の電流値を測定した。
液中のフェリシアン化イオン、グルコース、およびGO
Dが反応し、その結果、グルコースがグルコノラクトン
に酸化され、この反応に伴って、フェリシアン化イオン
がフェロシアン化イオンに還元される。一方、この反応
の競争反応として、試料液中の溶存酸素が電子伝達体と
して働き、グルコースがグルコノラクトンに酸化される
のに伴い、溶存酸素が過酸化水素に還元される反応が同
時に進行する。この反応によって生成する過酸化水素
は、フェロシアン化イオンをフェリシアン化イオンに再
酸化する。したがって、フェロシアン化イオンの酸化電
流値に基づいてグルコース濃度を測定する場合、溶存酸
素が、測定結果に負の誤差を与える。しかし、上述した
ように、対極6と第3の電極8間の電流値は主に溶存酸
素濃度のみを反映する。そこで、その結果に基づき測定
結果を補正することで、溶存酸素の影響を除去し正確な
グルコース濃度を求めることができる。
As described above, no reaction layer is disposed on the third electrode 8. Therefore, it takes some time for the ferricyanide ions contained in the reaction layer to reach the vicinity of the third electrode 8. That is, the current value between the counter electrode 6 and the third electrode 8 during the time until the ferricyanide ion reaches the third electrode 8 mainly reflects only the dissolved oxygen concentration. Furthermore, 25 seconds after the detection of the sample liquid,
500 mV was applied to the working electrode 7 with reference to the third electrode 8, and the current value between the counter electrode 6 and the working electrode 7 after 5 seconds was measured.
Ferricyanide ion, glucose, and GO in liquid
D reacts and, as a result, glucose is oxidized to gluconolactone, and with this reaction, ferricyanide ions are reduced to ferrocyanide ions. On the other hand, as a competitive reaction of this reaction, dissolved oxygen in the sample solution acts as an electron carrier, and as glucose is oxidized to gluconolactone, a reaction in which dissolved oxygen is reduced to hydrogen peroxide simultaneously proceeds. . Hydrogen peroxide generated by this reaction reoxidizes ferrocyanide ions to ferricyanide ions. Therefore, when measuring the glucose concentration based on the oxidation current value of the ferrocyanide ion, the dissolved oxygen gives a negative error to the measurement result. However, as described above, the current value between the counter electrode 6 and the third electrode 8 mainly reflects only the dissolved oxygen concentration. Then, by correcting the measurement result based on the result, the influence of dissolved oxygen can be removed and an accurate glucose concentration can be obtained.

【0030】《実施例7》実施例4と同様にグルコース
センサを作製した。測定器にセンサをセットし、対極6
を基準として第3の電極8に500mVの電位を印加し
た。この電位を印加した状態で、妨害物質としてアスコ
ルビン酸を含むグルコース水溶液3μlを、試料液とし
て試料液供給口12aより供給した。試料液は試料液供
給路を通って空気孔13にまで達し、電極系上の反応層
が溶解した。試料液の供給と同時に、電極系の対極6と
第3の電極8間の電気的変化に基づいて液の供給を検知
するシステムが動作し、これにより測定タイマーが始動
した。この時、対極6と第3の電極8間に電位は印加さ
れ続けている。さらに試料液供給検知から2秒経過後、
第3の電極8への印加電位を−1300mVにステップ
した。−1300mVに電位をステップする直前、およ
び−1300mVにステップしてから3秒後の、二点に
おける対極6と第3の電極8間の電流値を測定した。−
1300mVに電位をステップする直前の電流値は、主
としてアスコルビン酸濃度に依存する。一方、−130
0mVにステップしてから3秒後の電流値は、主として
試料液中に含まれる溶存酸素濃度に依存する。試料液供
給から2秒後、および5秒後の対極6と第3の電極8間
の電流値測定後、両極間の電圧印加を解除した。さらに
試料液検知から25秒後、第3の電極8を基準にして作
用極7に500mVを印加し、対極6と作用極7間の5
秒後の電流値を測定した。
Example 7 A glucose sensor was manufactured in the same manner as in Example 4. Set the sensor on the measuring instrument and set the counter electrode 6
, A potential of 500 mV was applied to the third electrode 8. With this potential applied, 3 μl of an aqueous glucose solution containing ascorbic acid as an interfering substance was supplied as a sample liquid from the sample liquid supply port 12a. The sample liquid reached the air holes 13 through the sample liquid supply path, and the reaction layer on the electrode system was dissolved. Simultaneously with the supply of the sample liquid, the system for detecting the supply of the liquid based on the electrical change between the counter electrode 6 and the third electrode 8 of the electrode system was operated, and the measurement timer was started. At this time, the potential is continuously applied between the counter electrode 6 and the third electrode 8. Two seconds after the detection of the sample liquid supply,
The potential applied to the third electrode 8 was stepped to -1300 mV. Current values between the counter electrode 6 and the third electrode 8 at two points were measured immediately before stepping the potential to -1300 mV and three seconds after stepping to -1300 mV. −
The current value immediately before stepping the potential to 1300 mV mainly depends on the ascorbic acid concentration. On the other hand, -130
The current value 3 seconds after stepping to 0 mV mainly depends on the concentration of dissolved oxygen contained in the sample solution. After the current value between the counter electrode 6 and the third electrode 8 was measured 2 seconds and 5 seconds after the supply of the sample liquid, the application of the voltage between the electrodes was released. Further, 25 seconds after the detection of the sample liquid, 500 mV is applied to the working electrode 7 with reference to the third electrode 8, and 5 m between the counter electrode 6 and the working electrode 7 is applied.
The current value after 2 seconds was measured.

【0031】上述したように、対極6と第3の電極8間
の電流値は主にアスコルビン酸および溶存酸素濃度を反
映するため、その電流値に基づき両物質の濃度を求める
ことができる。そこで、その結果に基づき測定結果を補
正することで、アスコルビン酸および溶存酸素の影響を
除去し、正確なグルコース濃度を求めることができる。
As described above, since the current value between the counter electrode 6 and the third electrode 8 mainly reflects the concentrations of ascorbic acid and dissolved oxygen, the concentrations of both substances can be obtained based on the current values. Therefore, by correcting the measurement result based on the result, the influence of ascorbic acid and dissolved oxygen can be removed, and an accurate glucose concentration can be obtained.

【0032】上記実施例においては、試料液供給検知、
アスコルビン酸、あるいは溶存酸素検出のための第3の
電極8への印加電位を500mV、あるいは−1300
mVとしたが、これに限定されることはない。また、応
答電流を得るための作用極7への印加電位を500mV
としたが、これに限定されることはなく、一連の反応の
結果生じた電子伝達体の還元体を酸化できる電位であれ
ばよい。電流値を測定する時間についても、上記実施例
に限定されることはない。
In the above embodiment, the detection of the sample liquid supply,
The applied potential to the third electrode 8 for detecting ascorbic acid or dissolved oxygen is set to 500 mV or -1300.
mV, but is not limited thereto. The potential applied to the working electrode 7 for obtaining a response current is 500 mV.
However, the present invention is not limited to this, and any potential may be used as long as the reduced form of the electron carrier generated as a result of a series of reactions can be oxidized. The time for measuring the current value is not limited to the above embodiment.

【0033】上記実施例においては、親水性高分子とし
てカルボキシメチルセルロースを用いたが、親水性高分
子層を形成する親水性高分子には、種々のものを使用す
ることができる。例えば、ヒドロキシエチルセルロー
ス、ヒドロキシプロピルセルロース、メチルセルロー
ス、エチルセルロース、エチルヒドロキシエチルセルロ
ース、カルボキシメチルエチルセルロース、ポリビニル
ピロリドン、ポリビニルアルコール、ポリリジン等のポ
リアミノ酸、ポリスチレンスルホン酸、ゼラチンおよび
その誘導体、ポリアクリル酸およびその塩、ポリメタア
クリル酸およびその塩、スターチおよびその誘導体、無
水マレイン酸またはその塩の重合体があげられる。その
中でも、カルボキシメチルセルロース、ヒドロキシエチ
ルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロースが好まし
い。反応層に含有される酸化還元酵素としては、試料液
に含まれる基質に応じて選択される。酸化還元酵素とし
ては、例えば、フルクトースデヒドロゲナーゼ、グルコ
ースオキシダーゼ、アルコールオキシダーゼ、乳酸オキ
シダーゼ、コレステロールオキシダーゼ、キサンチンオ
キシダーゼ、アミノ酸オキシダーゼなどがあげられる。
電子伝達体としては、フェリシアン化カリウム、p−ベ
ンゾキノン、フェナジンメトサルフェート、メチレンブ
ルー、フェロセン誘導体などがあげられる。電子伝達体
は、これらの一種または二種以上が使用される。
In the above embodiment, carboxymethylcellulose was used as the hydrophilic polymer, but various hydrophilic polymers can be used as the hydrophilic polymer forming the hydrophilic polymer layer. For example, hydroxyethylcellulose, hydroxypropylcellulose, methylcellulose, ethylcellulose, ethylhydroxyethylcellulose, carboxymethylethylcellulose, polyvinylpyrrolidone, polyvinyl alcohol, polyamino acids such as polylysine, polystyrenesulfonic acid, gelatin and its derivatives, polyacrylic acid and its salts, poly Examples include polymers of methacrylic acid and its salts, starch and its derivatives, maleic anhydride and its salts. Among them, carboxymethyl cellulose, hydroxyethyl cellulose and hydroxypropyl cellulose are preferred. The oxidoreductase contained in the reaction layer is selected according to the substrate contained in the sample solution. Examples of the oxidoreductase include fructose dehydrogenase, glucose oxidase, alcohol oxidase, lactate oxidase, cholesterol oxidase, xanthine oxidase, amino acid oxidase and the like.
Examples of the electron carrier include potassium ferricyanide, p-benzoquinone, phenazine methosulfate, methylene blue, and a ferrocene derivative. One or more of these electron carriers are used.

【0034】上記酵素および電子伝達体は、試料液に溶
解させてもよく、反応層を基板などに固定することによ
って試料液に溶けないようにしてもよい。酵素および電
子伝達体を固定化する場合、反応層は、上記親水性高分
子を含有することが好ましい。上記実施例では、特定の
電極系の例を図示したが、電極形状、電極およびリード
の配置等はこれらに限定されるものではない。また、上
記実施例では第3の電極の電極材料としてカーボンにつ
いて述べたが、これに限定されることはなく、他の導電
性材料や銀/塩化銀電極なども使用できる。
The enzyme and the electron carrier may be dissolved in a sample solution, or may not be dissolved in the sample solution by fixing the reaction layer to a substrate or the like. When the enzyme and the electron carrier are immobilized, the reaction layer preferably contains the hydrophilic polymer. In the above embodiment, an example of a specific electrode system is illustrated, but the shape of the electrode, the arrangement of the electrode and the lead, and the like are not limited thereto. In the above embodiment, carbon was described as the electrode material of the third electrode. However, the present invention is not limited to this, and other conductive materials and silver / silver chloride electrodes can be used.

【0035】[0035]

【発明の効果】以上のように本発明によると、高い信頼
性を有する基質の定量を行うことができる。
As described above, according to the present invention, highly reliable quantification of a substrate can be performed.

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図1】本発明の一実施例におけるグルコースセンサの
反応層を除去した状態の平面図である。
FIG. 1 is a plan view of a glucose sensor according to an embodiment of the present invention with a reaction layer removed.

【図2】本発明の他の実施例におけるグルコースセンサ
の反応層を除去した状態の分解斜視図である。
FIG. 2 is an exploded perspective view of a glucose sensor according to another embodiment of the present invention with a reaction layer removed.

【符号の説明】[Explanation of symbols]

1 絶縁性の基板 2、3、4 リ−ド 5 絶縁層 6 対極 7 作用極 8 第3の電極 9 カーボン層 10 カバー 11 スペーサ 12 試料液供給路を形成するスリット 12a 試料液供給口 13 空気孔 REFERENCE SIGNS LIST 1 Insulating substrate 2, 3, 4 lead 5 Insulating layer 6 Counter electrode 7 Working electrode 8 Third electrode 9 Carbon layer 10 Cover 11 Spacer 12 Slit for forming sample liquid supply path 12 a Sample liquid supply port 13 Air hole

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (56)参考文献 特開 平5−340915(JP,A) 特開 平8−320304(JP,A) (58)調査した分野(Int.Cl.7,DB名) G01N 27/327 G01N 27/416 ────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of the front page (56) References JP-A-5-340915 (JP, A) JP-A-8-320304 (JP, A) (58) Fields investigated (Int. Cl. 7 , DB name) G01N 27/327 G01N 27/416

Claims (5)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】 電気絶縁性基板と、前記基板上に形成さ
れた作用極、対極、および、妨害物質検知電極として使
用される第3の電極を有する電極系と、前記第3の電
極を除く前記電極系上に設けられた、少なくとも酸化還
元酵素と電子伝達体を含有する反応層と、前記基板との
間に試料液供給路を形成するカバー部材とからなり、前
記第3の電極が前記反応層よりも前記試料液供給路の上
流側に配置されており、かつ前記作用極が前記対極より
も前記試料液供給路の上流側に配置されていることを特
徴とするバイオセンサ
And 1. A electrically insulating substrate, effects formed on the substrate electrode, a counter electrode, and an electrode system and a third electrode used as an interfering substance detecting electrode, the third electrode provided on the electrode system, excluding a reaction layer containing at least an oxidoreductase and an electron mediator, and the substrate
And a cover member that forms a sample liquid supply path between
The third electrode is located above the sample liquid supply path than the reaction layer.
Disposed on the flow side, and wherein the working electrode is
Is also arranged upstream of the sample liquid supply path.
Biosensor
【請求項2】 前記カバー部材の試料液供給路に露出し
た面に、レシチンを主成分とする層を配置したことを特
徴とする、請求項1記載のバイオセンサ。
2. The method according to claim 1, wherein said cover member is exposed to a sample liquid supply passage.
That a layer containing lecithin as the main component was
The biosensor according to claim 1, which is a feature.
【請求項3】 前記反応層が、さらに親水性高分子を含
有することを特徴とする、請求項1または2に記載のバ
イオセンサ。
3. The reaction layer further comprises a hydrophilic polymer.
3. A bag according to claim 1, wherein
Io sensor.
【請求項4】 電気絶縁性基板と、前記基板上に形成さ
れた作用極、対極、および、妨害物質検知電極として使
用される第3の電極とを有する電極系と、第3の電極を
除く電極系上に設けられた、少なくとも酸化還元酵素と
電子伝達体を含有する反応層と、前記基板との間に試料
液供給路を形成するカバー部材とからなり、前記第3の
電極が前記反応層よりも前記試料液供給路の上流側に配
置されており、かつ前記作用極が前記対極よりも前記試
料液供給路の上流側に配置されているバイオセンサを用
いて、試料液に含まれる基質と酸化還元酵素とを反応さ
せる際に生成する電子によって電子伝達体を還元し、そ
の電子伝達体の還元量を電気化学的に計測することによ
り、試料液中の基質の濃度を定量する方法であって、 対極と第3の電極との間に電圧を印加する工程、 試料液を反応層に供給する工程、 試料液の反応層への供給によって生じた、対極と第3の
電極との間の電気的変化を検知する工程、 前記の検知する工程の後、対極と第3の電極との間に生
じた電流を測定する工程、 前記の測定する工程の後、対極と第3の電極との間の電
圧印加を解除する工程、 作用極と対極との間に電圧を印加する工程、およびその
後、対極と作用極との間に生じた電流を測定する工程、 を包含することを特徴とする基質の定量法。
4. A electrically insulating substrate, effects formed on the substrate electrode, a counter electrode, and an electrode system and a third electrode to be used as an interfering substance detecting electrodes, the third provided on the electrode system except the electrode consists of a reaction layer containing at least an oxidoreductase and an electron mediator, a cover member for forming a sample solution supply pathway between the substrate, the third electrode the trial but than the reaction layer is disposed on the upstream side of the sample solution supply path, and the working electrode than the counter electrode
Using a biosensor arranged on the upstream side of the sample liquid supply path, the electron carrier is reduced by electrons generated when reacting the substrate contained in the sample liquid with the oxidoreductase, and the electron carrier of the electron carrier is reduced. A method for quantifying the concentration of a substrate in a sample liquid by electrochemically measuring the amount of reduction, wherein a voltage is applied between a counter electrode and a third electrode, and the sample liquid is supplied to a reaction layer. A step of detecting an electrical change between the counter electrode and the third electrode caused by the supply of the sample solution to the reaction layer; after the detecting step, between the counter electrode and the third electrode. measuring the current produced, after the step of measuring the step of releasing voltage application between the counter electrode and the third electrode, applying a voltage between the working electrode and the counter electrode, and Measuring the current generated between the counter electrode and the working electrode thereafter. A method for quantifying a substrate, comprising:
【請求項5】 電気絶縁性基板と、基板上に形成された
作用極、対極、および、妨害物質検知電極あるいは参照
極として使用される第3の電極とを有する電極系と、第
3の電極を除く電極系上に設けられた、少なくとも酸化
還元酵素と電子伝達体を含有する反応層と、前記基板と
の間に試料液供給路を形成するカバー部材とからなり、
前記第3の電極が前記反応層よりも前記試料液供給路の
上流側に配置されており、かつ前記作用極が前記対極よ
りも前記試料液供給路の上流側に配置されているバイオ
センサを用いて、試料液に含まれる基質と酸化還元酵素
とを反応させる際に生成する電子によって電子伝達体を
還元し、その電子伝達体の還元量を電気化学的に計測す
ることにより、試料液中の基質の濃度を定量する方法で
あって、 対極と第3の電極との間に電圧を印加する工程、 試料液を反応層に供給する工程、 試料液の反応層への供給によって生じた、対極と第3の
電極との間の電気的変化を検知する工程、 前記の検知する工程の後、対極と第3の電極との間に生
じた電流を測定する工程、 前記の測定する工程の後、対極と第3の電極との間の電
圧印加を解除する工程、 作用極と第3の電極および対極との間に電圧を印加する
工程、および その後、対極と作用極との間に生じた電流
を測定する工程、 を包含することを特徴とする 基質の定量法。
5. An electrically insulating substrate and a substrate formed on the substrate.
Working electrode, counter electrode and interfering substance detection electrode or reference
An electrode system having a third electrode used as a pole;
At least oxidation provided on the electrode system except for the electrode 3
A reaction layer containing a reductase and an electron carrier, and the substrate
And a cover member forming a sample liquid supply path between,
The third electrode is closer to the sample liquid supply path than the reaction layer.
The working electrode is located on the upstream side and the working electrode is closer to the counter electrode.
Biomass disposed upstream of the sample liquid supply path
Substrate and oxidoreductase contained in sample solution using sensor
The electron carrier is generated by the electrons generated when reacting
And the amount of reduction of the electron carrier is measured electrochemically.
Is used to determine the concentration of the substrate in the sample solution.
A step of applying a voltage between the counter electrode and the third electrode , a step of supplying a sample liquid to the reaction layer, and a step of applying the sample liquid to the reaction layer .
Detecting an electrical change between the electrode and the electrode, and after the detecting step, a voltage is generated between the counter electrode and the third electrode.
Measuring the same current, after the measuring step, the voltage between the counter electrode and the third electrode.
Canceling the pressure application, applying a voltage between the working electrode, the third electrode and the counter electrode
Process, and then the current generated between the counter and working electrodes
Determination of the substrate, characterized by comprising the step, of measuring.
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