JP3150862B2

JP3150862B2 - ｎ−ヘキサン抽出物含有廃水の処理方法

Info

Publication number: JP3150862B2
Application number: JP02456595A
Authority: JP
Inventors: 昭渡辺; 智子大野; 信和木幡
Original assignee: Ebara Corp
Current assignee: Ebara Corp
Priority date: 1995-01-20
Filing date: 1995-01-20
Publication date: 2001-03-26
Anticipated expiration: 2016-03-26
Also published as: JPH08197086A

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】

【産業上の利用分野】本発明はシュードモナス(Pseudom
onas)属に属し、各種のｎ−へキサン抽出物に対して高
い分解能を有する新規なシュードモナスエスピー(Pse
udomonas sp.) ＥＲ−Ｂ１菌株（ＦＥＲＭＰ−１４６
９９以下、本明細書中では単に、ＥＲ−Ｂ１株とも称
する）を用いて、廃水に含まれるｎ−へキサン抽出物を
生物学的に分解除去する方法に関するものである。

【０００２】

【従来の技術】廃水中のｎ−へキサン抽出物は、その性
状から、これまでは自然分離法や加圧浮上分離法、なら
びに各種の油吸着材を利用した吸着法等、物理化学的方
法により除去されてきた。この中で、凝集剤を併用した
加圧浮上分離法は、ｎ−へキサン抽出物の除去に効果的
であり、これまで多くの処理施設において適用されてい
る。しかしながら、凝集剤を併用した加圧浮上分離法
は、汚泥発生量が多く、処分地の不足が問題となってい
る今日、該方法を敬遠する事業所が増えてきている。ま
た、ｎ−へキサン抽出物を含む分離汚泥の臭気も問題と
なっている。グリーストラップ等の他の物理化学的方法
では、乳化したｎ−へキサン抽出物の多い廃水の場合、
放流基準値まで安定に除去することが困難な場合が多
い。

【０００３】ｎ−へキサン抽出物質とは、ｎ−へキサン
によって抽出され、８０±５℃、３０分間の乾燥で揮散
しないものをいう。それらの中には、炭化水素やその誘
導体、各種動植物性油脂や鉱物油、ステロール類等が含
まれる。その中で、厨房廃水等に含まれる動植物性油脂
の場合、活性汚泥法等の生物学的処理方法により、ある
程度までは分解・除去できるが、油脂分の負荷量が増え
た場合、油脂が汚泥フロックや生物膜表面に付着して、
酸素や基質の透過性に悪影響を及ぼし、徐々に処理性が
悪化して、最終的には処理不能に陥ることもある。この
ような方法とは別に、特開平５−１４６７９８号公報に
は、リパーゼを使って廃水中の油脂分を予め脂肪酸とグ
リセリンに加水分解し、微生物が資化しやすい形にした
後、後段の活性汚泥により処理する方法が提案されてい
る。しかし、この方法では、加水分解物である脂肪酸の
不溶化を防止するためにアルカリ剤を添加して、ｐＨを
６．５以上に維持する必要があり、また、主に菌体外酵
素として得られるリパーゼは蛋白質を主成分とする有機
物であることから、微生物分解やＳＳ分への吸着等によ
り、リパーゼ処理の効果が低下することが考えられる。
さらに、この方法の対象となるのは、リパーゼの基質と
なる動植物性油脂を含む廃水に特定されるため、鉱物油
等の他のｎ−へキサン抽出物を含む廃水には、適用出来
ない。

【０００４】また、特開平５−３４６０３６号公報、特
開平５−２４５４８９号公報、特開平４−１７９７４５
号公報および特開平３−２５４８９３号公報には、油脂
類または油分を資化・分解する微生物を使用することが
記載されている。しかし、上記の文献には、使用する微
生物についての詳細な開示はほとんどされていない。特
開平３−２７０７８１号公報および特開平３−２７５１
９５号公報には、油成分を資化・分解する微生物が具体
的にその種名を挙げて例示されている。しかし、これら
の文献に例示された微生物の油成分資化・分解能力につ
いては詳細に開示されていない。特開平３−９４８９８
号公報には好気性脂質資化菌を使用すること及びそれら
の脂質資化・分解能力が開示されている。しかし、この
文献に記載の好気性脂質資化菌は、鉱物油までも資化・
分解することはできなかった。

【０００５】勿論、動植物性脂質だけでなく鉱物油を資
化できる微生物は存在する。しかしながら従来は両種油
分は通常別々のものとして処理されている。動植物性油
脂と鉱物油とが混在する可能性がある廃水を一括して浄
化するには、例えば動植物性油脂を分解するリパーゼを
分泌する菌および鉱物油を摂食する菌をそれぞれ又は混
合して作用させることになるが、それぞれ異なった菌を
混在させる場合には、至適成育条件などの違いや成育の
競合により、ｎ−へキサン抽出物が好適に分解されない
という問題があった。また、別々に作用させることは施
設的にも問題がある。

【０００６】

【発明が解決しようとする課題】本発明の目的は、上記
の従来技術の有する課題を解決するためのものであり、
新規のｎ−へキサン抽出物分解菌を使って、これまで困
難であった（例えば、動植物性油脂と鉱物油とが混在す
る場合を含む）各種ｎ−へキサン抽出物の除去を生物学
的に効率よく分解する方法を提供することである。

【０００７】

【課題を解決するための手段】上記目的を達成するため
に、本発明者らは、ｎ−へキサン抽出物分解能の高い微
生物を自然界から分離することを試み、土壌や活性汚泥
等を分離源としてスクリーニングを行った結果、活性汚
泥からｎ−へキサン抽出物分解能の高いシュードモナス
エスピー(Pseudomonas sp.)ＥＲ−Ｂ１菌株を分離
し、本発明を完成するに至った。即ち、本発明は、シュ
ードモナス(Pseudomonas)属に属し、ｎ−へキサン抽出
物分解能を有するシュードモナスエスピー(Pseudomon
as sp.)ＥＲ−Ｂ１菌株を用いて、廃水中に含まれる各
種ｎ−へキサン抽出物を分解処理することを特徴とする
ｎ−へキサン抽出物含有廃水の処理方法である。この方
法の態様としては、活性汚泥または各種生物膜中にＥＲ
−Ｂ１菌株を成育させてｎ−へキサン抽出物含有廃水の
処理を行うことが試みられる。

【０００８】また、前記ＥＲ−Ｂ１菌株の培養物を生物
学的廃水処理法に組み込む場合は、乾燥物相当重量が１
００重量部の汚泥に対して、０．０１〜１０重量部添加
することをが好ましい。該菌体の組み込みは培養液の注
入・散布や粉体製剤としての添加・その他等適宜の方法
による。又、組み込みのタイミングは連続的でも間欠的
でも運転・負荷等の状況に合うように行うことができ
る。乾燥物相当重量とは、通常スラリー状にある汚泥を
乾燥した場合の重量に相当するスラリー状汚泥の量を示
すものであり、汚泥乾重とも称する。０．０１重量部未
満では十分な量のＥＲ−Ｂ１菌株の定着が観られず、ｎ
−へキサン抽出物の分解が好適に行われない。また１０
重量部を越えるとコストが高くなり、例えば培養液等に
由来するＢＯＤ値も上がり廃水処理装置に負担がかかる
ようになることもあり、好ましくない。なお、添加する
ＥＲ−Ｂ１菌株培養物は、通常、菌体濃度０．０１〜１
００×１０¹⁰個／ｍｌで定常期の培養液を用いる。

【０００９】以下に、シュードモナスエスピー(Pseud
omonas sp.)ＥＲ−Ｂ１菌株の（１）分離方法、（２）
菌学的性質、（３）培養方法、（４）保存方法、ならび
に（５）同菌株が生産するリパーゼの性状と（６）添加
方法について説明する。なお、菌学的性質の試験および
分類方法は、下記の文献に基づいて行った。藪内英子
他；菜根出版「新しい分類学に伴走する細菌同定法」
（１９８７）、江崎孝行他；日本細菌学雑誌、４５，８
５１（１９９０）、バージェイズマニュアルオブ
システマティクバクテリオロジー（Bergey's Manual
of Systematic Bacterio1ogy）（１９８４）およびバー
ジェイズマニュアルオブデターミネイティブバ
クテリオロジー（Bergey's Manual of Determinative B
acterio1ogy）（１９９４）。

【００１０】（１）分離方法ラード１％、酵母エキス０．１％、リン酸アンモニウム
０．１％、塩化カリウム０．０２％、硫酸マグネシウム
０．０２％、炭酸カルシウム０．５％を含む培地（ｐＨ
７．６）を１２１℃で１５分間オートクレーブで滅菌し
た後、滅菌水で適当に希釈した土壌（７サンプル）およ
び活性汚泥（６サンプル）を添加して、２８℃の培養温
度で３日間振とうした。その後、培養液１％を前記培地
に植え継ぐ操作を２度繰り返した。一方、前記培地に寒
天１．５％を加え、ホモジナイザーによりラードを乳化
分散させた寒天培地を用意して、先の培養液の希釈液
０．２ｍｌを塗抹して、クリアーゾーンを形成する菌を
１８株分離した。次に前記の培地において、ラードの添
加量を０．１％とした液体培地と、ラードの代わりに鉱
物油を主体としたエマルジョンタイプの水溶性切削油を
０．１％添加した液体培地をそれぞれ用意し、滅菌水に
濁度を一定（ＯＤ₆₆₀１．０）に調製した先の分離菌の
懸濁液を５％添加して、２４時間後のラードと切削油の
減少率をそれぞれ調べた。その結果、表１に示すよう
に、活性汚泥から分離したＥＲ−Ｂ１株が、ラードおよ
び切削油ともに最も高い分解率を示した。

【００１１】

【表１】

【００１２】（２）菌学的性状１）形態 (a) 細胞の形および大きさ：長さ約２ミクロン、幅約１
ミクロンの桿菌、 (b) 運動性：あり、(c) 鞭毛：極単毛、(d) 胞子：な
し、 (e) グラム染色性：陰性２）生育状態 (a) 肉汁寒天平板培養：円形、表面は滑らかで光沢あ
り。特徴的集落色素を生成せず。 (b) 肉汁寒天斜面培養：糸状、表面は滑らかで光沢あ
り。特徴的集落色素を生成せず。 (c) 肉汁液体培養：生育普通、懸濁、色素生成せず。 (d) 肉汁ゼラチン穿刺培養：ゼラチンを液化する。

【００１３】３）生理的性質 (a) 酸素に対する態度：好気性、(b) オキシダーゼ：陽
性、 (c) カタラーゼ：陽性、(d) ＯＦテスト：好気的に酸を
生成、 (e) ＰＨＢの蓄積：陰性、(f) インドール生産：陰性、 (g) エスクリン分解：陰性、(h) 水溶性色素の生成：陽
性、 (i) 蛍光色素の生成：陽性、(j) アルギニンジヒドラー
ゼ：陽性、 (k) ４１℃での生育：陽性、(l) シュークロースからの
レバン生成：陰性、 (m) 脱窒素反応：陰性、(n) デンプン分解：陰性、 (o) 資化性：グルコース、ゲラニオール、Ｌ−バリン、
β−アラニン、ＤＬ−アルギニン、クエン酸は資化する
が、トレハロース、２−ケトグルコン酸、meso−イノシ
トールは資化せず。４）その他の性質 (a) キノン系：Ｑ−９、(b) ＧＣ含量：６６（モル％；
ＨＰＬＣ法） (c) アシルアミダーゼ：陰性

【００１４】以上の菌学的性質と前記の文献の分類方法
に基づいて検索した結果、本菌株はグラム陰性桿菌で、
極鞭毛を有し、キノン系がＱ−９であることからシュー
ドモナス(Pseudomonas)に属する細菌と同定された。さ
らに、鞭毛が極単毛であり、蛍光色素を生産すること、
また４１℃で生育し、ＧＣ含量が高い等、シュードモナ
スエアロジノーサ(Pseudomonas aeruginosa)に類似し
た性状を示した。しかし、シュードモナスエアロジノ
ーサ(Pseudomonas aeruginosa)の大きな特徴である脱窒
素能やアシルアミダーゼ活性が本菌株の場合は陰性であ
ること、また、２−ケトグルコン酸を資化できないな
ど、シュードモナスエアロジノーサ(Pseudomonas aer
uginosa)とは異なる性状を有していることなどから、他
の菌種であることも考えられた。そこで、上記の生理形
態学的特質に類似した４種類のシュードモナス(Pseudom
onas)属細菌（シュードモナスプチダ(Pseudomonas pu
tida)、シュードモナスメンドシーナ(Pseudomonas me
ndocina) 、シュードモナスシュードアルカリゲネス
サブスピーシスシュードアルカリゲネス(Pseudomonas
pseudoalcaligenes subsp. pseudoalcaligenes)、およ
びシュードモナスエアロジノーサ(Pseudomonas aerugin
osa)）の基準株とシュードモナスエスピー(Pseudomon
as sp.)ＥＲ−Ｂ１株とのＤＮＡ相同性試験を行った。
その結果、表２に示すように、いずれの菌種とも高い相
同性は得られなかった。

【００１５】

【表２】

【００１６】以上の知見より、形態や生理的特質ではシ
ュードモナスエアロジノーサ(Pseudomonas aeruginos
a)に類縁の菌株と同定されるが、遺伝学的な性質は全く
異なることから、本菌株はシュードモナス(Pseudomona
s)に属する新菌株であると判断し、シュードモナスエ
スピー(Pseudomonas sp.)ＥＲ−Ｂ１株と命名した。本
菌株は、平成６年１２月１２日に通商産業省工業技術院
生命工学工業技術研究所に寄託した。微生物受託番号
は、ＦＥＲＭＰ−１４６９９である。

【００１７】（３）培養方法本発明のシュードモナスエスピー(Pseudomonas sp.)
ＥＲ−Ｂ１株の培養は、炭素源、窒素源、リン酸等の各
種無機塩やビタミン、アミノ酸等の微量栄養源を調製し
た通常の培地で培養することができる。好ましくは、炭
素源および窒素源として、ペプトンや肉エキス、トリプ
トン等、無機塩としては硫酸アンモニウム、リン酸第二
カリウム、硫酸マグネシウム等を用いて、培地ｐＨ５〜
１０、好ましくはｐＨ６〜８、培養温度１５〜４５℃、
好ましくは２５〜３０℃の条件下で好気的培養するのが
望ましい。また、同菌株は、細胞外にリパーゼを生産す
るが、その場合、炭素源および窒素源として脱脂大豆粉
を用いるとリパーゼ活性の高い培養物が得られ、さらに
レシチンを添加することでリパーゼ活性はさらに高くな
る。なお、肉汁培地では、菌体の生育性は変わらない
が、リパーゼはほとんど生産されない。また、培養温度
は３０℃以下で行うことが好ましく、３０℃以上ではリ
パーゼの生産性は低下し、４０℃以上では生産されな
い。培養時間は２４〜４８時間が適当であり、その間、
培養液ｐＨは８．５程度に上昇するが、特にｐＨコント
ロールを行う必要はない。また、通気培養を行う場合
は、発泡を抑制するために消泡剤を添加する必要がある
が、シリコン系の消泡剤が有効であり、０．５％程度添
加することでリパーゼ活性が上昇する。

【００１８】（４）保存方法培養した菌体は、真空乾燥法や凍結真空乾燥法等の各種
の乾燥法により保存可能であり、培養上澄液を除いた
後、生理食塩水やリン酸緩衝液等の有機物を含まない溶
液に菌体を懸濁して、冷蔵庫内で長期間液体保存するこ
ともできる。なお、凍結法で保存することが最も簡便で
あり、その場合、−２０℃で保存する場合は、グリセロ
ール等の凍結保護剤を必要とするが、−６０℃以下では
保護剤を添加することなく、培養液のまま凍結すること
で長期間、安定に保存できる。

【００１９】（５）リパーゼの性状リパーゼ活性の測定方法は、山田−町田法（日本農芸化
学会誌、第３６巻、第８６０〜８６４頁、１９６２年）
を用い、オリーブ油とポリビニルアルコールのエマルジ
ョンを基質として、３７℃の反応温度において１分間に
１マイクロモルの脂肪酸を遊離せしめる酵素量を１単位
（ユニット：Ｕと略する）とした。試験に用いたシュー
ドモナスエスピー(Pseudomonas sp.)ＥＲ−Ｂ１株の
リパーゼは、表３の培地を用いて、５００ｍｌ容振とう
フラスコ（培地量１００ｍｌ）により、４８時間振とう
培養した培養液を遠心分離により菌体を除去した上澄液
であり、そのリパーゼ活性は４２．４Ｕ／ｍｌ（培養液
の活性は７０．５Ｕ／ｍｌ）であった。

【００２０】

【表３】

【００２１】表４に、シュードモナスエスピー(Pseud
omonas sp.)ＥＲ−Ｂ１株の生産するリパーゼの性状を
示す。

【００２２】

【表４】

【００２３】（６）添加方法上記の方法によって得られたシュードモナスエスピー
(Pseudomonas sp.)ＥＲ−Ｂ１株培養液を含油廃水処理
に利用する場合の添加方法は、連続注入法または間欠注
入法のいずれでも良い。廃水の種類や運転条件等の影響
により、生物処理槽でシュードモナスエスピー(Pseud
omonas sp.)ＥＲ−Ｂ１株の定着性が悪い場合は、連続
的に注入する方が好ましく、別途、濃厚な培養物を添加
することもできる。連続的に注入する場合の注入量は、
廃水の種類やｎ−へキサン抽出物濃度、また活性汚泥の
凝集・沈降性、生物膜の状態、ならびに原生動物による
補食の程度等によって異なるが、通常は生物槽内の汚泥
乾重当たり、１日に０．０１〜１％（ｗ／ｗ）、好まし
くは０．０５％以上添加することが、処理水中のｎ−へ
キサン抽出物濃度を低下させる上でも、また、シュード
モナスエスピー(Pseudomonas sp.)ＥＲ−Ｂ１株が他
の微生物と生態学的に競合し、生物処理系内に一定量存
在するためにも必要な添加量となる。一方、間欠的に注
入する場合は、第１回目の注入時に汚泥乾重当たり、
０．１〜１０％（ｗ／ｗ）、好ましくは１％以上添加
し、その後は、処理水質の良否によって随時添加しても
良いが、３日から１ケ月に１回、好ましくは１週間に１
回、汚泥乾重当たり、０．１％（ｗ／ｗ）添加するのが
良い。なお、注入法にかかわらず、活性汚泥の凝集性が
良い状態、あるいは各種担体表面に生物膜が形成される
時期にシュードモナスエスピー(Pseudomonas sp.)Ｅ
Ｒ−Ｂ１株の培養液を添加すると、その定着性が良く、
その後の処理が良好に行われるとともに、培養液の注入
量も減らすことができる。なお、生物処理槽から流出し
たＥＲ−Ｂ１株を含む汚泥を返送汚泥として再度生物処
理槽に添加する等の公知技術も、併用して行うことがで
きる。

【００２４】なお、活性汚泥あるいは生物膜に定着した
シュードモナスエスピー(Pseudomonas sp.)ＥＲ−Ｂ
１株の菌数を計数する場合は、抗生物質であるアンピシ
リン５０ｍｇ／リットルを添加したキングＢ培地（プロ
テオースペプトン２％、グリセロール１％、リン酸第二
カリウム０．１５％、硫酸マグネシウム０．１５％、寒
天１．５％、ｐＨ７．２）を用いて、４１℃の培養温度
で２４時間培養することで、選択的に同菌株のコロニー
を計数することができる。

【００２５】

【実施例】次に本発明の実施例について示す。（実施例１）２００リットル容発酵槽に、表３の培地を
１２０リットル仕込み、１２１℃、３０分間殺菌した。
培地が十分に冷えた後、予め前培養しておいたシュード
モナスエスピー(Pseudomonas sp.)ＥＲ−Ｂ１株の培
養液を接種し、２５℃、撹拌翼回転数２００ｒｐｍ、通
気量１２０リットル／分の好気的条件下で３０時間培養
した。このようにして得た培養液を限外ろ過膜により２
倍濃縮した後、−８０℃で凍結保存した。得られた培養
濃縮液のリパーゼ活性は、１２０Ｕ／ｍｌであり、生菌
数は１．５×１０¹¹個／ｍｌであった。また、同培養液
の固形物濃度は、１．６％であった。この凍結培養液の
残存リパーゼ活性と生菌数の経日変化を調べた結果、生
菌数は７日後に６．６×１０¹⁰個／ｍｌに低下したが、
その後菌数の低下は認められなかった（１８０日目まで
測定）。一方、リパーゼ活性は、凍結前の活性を維持
し、酵素活性の低下は全く認められなかった。

【００２６】（実施例２）肉エキス４０ｍｇ／リット
ル、ペプトン４０ｍｇ／リットル、炭酸水素ナトリウム
２５０ｍｇ／リットル、リン酸第一カリウム１０ｍｇ／
リットル、硫酸マグネシウム２０ｍｇ／リットル、ｐＨ
７．０に調製した人工廃水１００ｍｌに、オリーブ油、
大豆油、ラード、鉱物油を主体としたエマルジョンタイ
プの水溶性切削油（以下、単に切削油ともいう）、軽
油、Ａ重油をそれぞれ１，０００ｍｇ／リットルの濃度
になるように添加して、シュードモナスエスピー(Pse
udomonassp.)ＥＲ−Ｂ１株培養液による分解性を調べ
た。反応温度２５℃、反応時間１２時間、培養液固形物
濃度１６０ｍｇ／リットル（濃縮培養液を１％（ｖ／
ｖ）添加）の条件下で行った。反応容器は、５００ｍｌ
容振とうフラスコを用いた。また、シュードモナスエ
スピー(Pseudomonas sp.)ＥＲ−Ｂ１株培養液は、実施
例１で調製した凍結培養液を３０℃の水浴中で解凍して
使用した。実験結果は、表５に示す通りであり、動植物
油の場合、７０〜９０％、鉱物油の場合は５０〜７０％
の分解率であった。

【００２７】

【表５】

【００２８】（実施例３）オリーブ油の添加濃度を変え
た人工廃水（実施例２と同じ）に、解凍したシュードモ
ナスエスピー(Pseudomonas sp.)ＥＲ−Ｂ１株培養液
を添加して、オリーブ油の分解性を調べた。実験条件と
方法は実施例２に準じた。実験結果を表６に示す。初期
オリーブ油濃度４００ｍｇ／リットル以下の場合、その
除去率は９０％以上であり、初期オリーブ油濃度１，６
００ｍｇ／リットルの場合でも６８％の除去率であっ
た。

【００２９】

【表６】

【００３０】（実施例４）シュードモナスエスピー(P
seudomonas sp.)ＥＲ−Ｂ１株の解凍培養液を、ｎ−へ
キサン抽出物質を約１５０ｍｇ／リットル含む食堂廃水
に添加して、その効果を活性汚泥と比較した。５００ｍ
ｌ容振とうフラスコに、下水処理場の濃縮汚泥（ＭＬＳ
Ｓ７，８００ｍｇ／リットル）２５ｍｌと食堂廃水７５
ｍｌを添加した。同様に調製したフラスコに、解凍培養
液をそれぞれ汚泥乾重当たり０．０１％、０．１％、
１．０％添加して、２５℃の温度条件下で１２時間振と
うした。実験結果を表７に示す。シュードモナスエス
ピー(Pseudomonas sp.)ＥＲ−Ｂ１株培養液を添加する
ことで、ｎ−へキサン抽出物質の除去率が上がった。

【００３１】

【表７】

【００３２】（実施例５）実施例４の食堂廃水に、実施
例２で使用した切削油を最終濃度５０ｍｇ／リットルに
なるように添加して、シュドモナスエスピー(Pseudom
onas sp.)ＥＲ−Ｂ１株の培養液を加えて、その効果を
活性汚泥と比較した。実験方法と条件は、実施例４と同
様であり、活性汚泥と廃水を加えた５００ｍｌ容振とう
フラスコに、培養液を汚泥乾重当たり０．０１％、０．
１％、１．０％それぞれ添加した。実験結果を表８に示
す。シュードモナスエスピー(Pseudomonas sp.)ＥＲ
−Ｂ１株培養液を添加することで、ｎ−へキサン抽出物
質の除去率が上がった。

【００３３】

【表８】

【００３４】（実施例６）曝気槽と沈殿池で構成された
活性汚泥処理実験装置を２系列設けて、実施例１で調製
したシュードモナスエスピー(Pseudomonas sp.)ＥＲ
−Ｂ１株の解凍培養液を添加した場合の、ｎ−へキサン
抽出物の除去性と同菌株の定着性を調べた。２系列の実
験系は、ＲＵＮ１が培養液を添加しない対照区であり、
ＲＵＮ２は培養液を汚泥乾重当たり１．０％（ｗ／ｗ）
添加した実験区である。活性汚泥濃度は２，０００ｍｇ
／リットルに調整し、廃水は実施例４で使用した食堂廃
水を用いた。曝気槽は有効容積１０リットルのものを用
い、食堂廃水は、３０リットル／日の流量で連続通水し
た。実験結果を表９に示す。培養液を添加したＲＵＮ２
は、ＲＵＮ１（対照区）に比べて処理水中のｎ−へキサ
ン抽出物濃度が低く、アンピシリンを添加したキングＢ
培地を用いて、シュードモナスエスピー(Pseudomonas
sp.)ＥＲ−Ｂ１株の生菌数を計数した結果、培養液添
加２８日後においても２．２×１０¹⁰個／ｍｌの菌数が
維持されていた。

【００３５】

【表９】

【００３６】（実施例７）１０ｍｍ角に成形したポリエ
ーテル系スポンジを反応槽容積当たり２０％（ｖ／ｖ）
充填した処理装置を３系列設けて、実施例６と同様にシ
ュードモナスエスピー(Pseudomonas sp.)ＥＲ−Ｂ１
株のｎ−へキサン抽出物の除去性と同菌株の定着性を調
べた。３系列の実験系は、ＲＵＮ１が培養液を添加しな
い対照区であり、ＲＵＮ２は培養液をスポンジに付着し
た汚泥乾重当たり０．１％（ｗ／ｗ）添加した実験区で
あり、ＲＵＮ３は、１．０％（ｗ／ｗ）添加した実験区
である。スポンジに付着した活性汚泥濃度は６，８００
ｍｇ／リットル−スポンジ（スポンジ体積１リットル当
たり）であり、廃水は実施例４で使用した食堂廃水を用
いた。曝気槽は有効容積２０リットルのものを用い、食
堂廃水は、６０リットル／日の流量で連続通水した。実
験結果を表１０に示す。培養液を添加したＲＵＮ２、３
は、ＲＵＮ１（対照区）に比べて処理水中のｎ−へキサ
ン抽出物濃度が低かったが、ＲＵＮ２は、培養液添加３
日後にはｎ−へキサン抽出物の除去率が低下した。それ
に対して、ＲＵＮ３は、培養液添加後はＲＵＮ１に比べ
て処理水中のｎ−へキサン抽出物濃度が低く、安定に処
理された。また、アンピシリンを添加したキングＢ培地
を用いて、シュードモナスエスピー(Pseudomonas s
p.)ＥＲ−Ｂ１株の生菌数を計数した結果、ＲＵＮ２で
はｎ−へキサン抽出物の除去率との相関が認められ、実
験開始３日後から菌数が減少した。それに対して、ＲＵ
Ｎ３では、実験期間中、１０¹⁰個／リットル−スポンジ
以上の菌数が保持されていた。

【００３７】

【表１０】

【００３８】

【発明の効果】以上の通り、本発明によれば、ｎ−へキ
サン抽出物含有廃水を物理化学的な方法により油水分離
することなく、ＥＲ−Ｂ１株の生物処理により廃水中の
ｎ−へキサン抽出物を効率よく分解・除去することがで
きる。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号ＦＩＣ１２Ｒ 1:38） (72)発明者木幡信和神奈川県藤沢市本藤沢４丁目２番１号株式会社荏原総合研究所内 (56)参考文献特開平７−8270（ＪＰ，Ａ) 特開平５−276933（ＪＰ，Ａ) 特開昭52−120181（ＪＰ，Ａ) (58)調査した分野(Int.Cl.⁷，ＤＢ名) C02F 3/34 C12N 1/20

Claims

(57)【特許請求の範囲】

【請求項１】シュードモナス(Pseudomonas)属に属
し、ｎ−へキサン抽出物分解能を有するシュードモナス
エスピー(Pseudomonas sp.)ＥＲ−Ｂ１菌株を用い
て、廃水中に含まれる各種ｎ−へキサン抽出物を分解処
理することを特徴とするｎ−へキサン抽出物含有廃水の
処理方法。
【請求項２】活性汚泥を用いる廃水の処理方法におい
て、該活性汚泥を構成する微生物群にシュードモナス
エスピー(Pseudomonas sp.)ＥＲ−Ｂ１菌株の培養物を
添加することを特徴とする請求項１記載のｎ−へキサン
抽出物含有廃水の処理方法。
【請求項３】生物膜を用いる廃水の処理方法におい
て、該生物膜を構成する微生物群に、シュードモナス
エスピー(Pseudomonas sp.)ＥＲ−Ｂ１菌株の培養物を
添加することを特徴とする請求項１記載のｎ−へキサン
抽出物含有廃水の処理方法。
【請求項４】乾燥物相当重量が１００重量部の前記微
生物群に対して、シュードモナスエスピー(Pseudomon
as sp.)ＥＲ−Ｂ１菌株の培養物を０．０１〜１０重量
部添加することを特徴とする請求項２又は３記載のｎ−
へキサン抽出物含有廃水の処理方法。