JP2844455B2 - ポリペプチド、ｄｎａおよびその用途 - Google Patents

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【発明の詳細な説明】 【０００１】 【発明の属する技術分野】本発明は、カルシウムおよび
リン脂質依存性蛋白質リン酸化酵素（蛋白質リン酸化酵
素ＣあるいはＣ−キナーゼと略称することもある。）お
よびその製造のための組み換えＤＮＡ技術に関し、中で
もラットＣ−キナーゼに関するものである。 【０００２】 【従来の技術】生体の多彩な機能発揮や適応現象には、
細胞の生長因子、ホルモンあるいは神経伝達物質など多
種類の生理活性物質の関与が知られている。これらの細
胞外シグナルは、サイクリックＡＭＰ（ｃＡＭＰ）、サ
イクリックＧＭＰ（ｃＧＭＰ）、ジアシールグリセロー
ル（ＤＧ）、カルシウム（Ｃａ++）などの細胞内伝達物
質を通じて発揮される。特にＤＧは細胞機能の活性化を
引き起す多くのホルモンや神経伝達物質によって細胞膜
のイノシトール燐脂質が分解された結果生じることが判
明している。このＤＧがカルシウムの存在下にＣ−キナ
ーゼを活性化し、この酵素による細胞内各種蛋白質のリ
ン酸化反応が種々の細胞機能の活性化や細胞増殖をもた
らすと考えられている。つまりＣ−キナーゼは外界シグ
ナルの主要な情報伝達機構の一つにおいて重要な役割を
担っている酵素である。ラット大脳より精製された該酵
素は等電点がｐＨ５．６の酸性蛋白質であり、分子量は
約７７，０００である。またこの酵素は疎水性の部分と
親水性の部分とからなる単一ペプチドからできており、
疎水性部分を介して細胞膜に結合し、親水性部分に活性
中心が存在する。Ｃ−キナーゼは通常不活性型であり、
カルシウムとフォスファチジールセリンおよびＤＧの三
者によって活性化される。またリン酸供与体はＡＴＰで
あることがわかっている。このようにＣ−キナーゼは蛋
白質リン酸化酵素の一つとして蛋白質のリン酸化を通じ
て細胞外シグナルの細胞内伝達を行うことから、細胞外
シグナルの受容伝達機構の研究には欠くことのできない
酵素であり、その試薬としての価値は非常に高い。ま
た、本酵素は発ガンプロモーターであるフォルボールエ
ステルにより直接活性化される。フォルボールエステル
は発ガン過程の促進を引き起こすだけではなく、細胞分
裂や分化、酵素の誘導、脂質の代謝昂進など多くの生物
反応に深く関与していることが知られている。これらの
ことは細胞膜受容伝達機構の異常が成因となる種々の病
的細胞やガン細胞において、Ｃ−キナーゼが重要な指標
酵素となる可能性が高く、Ｃ−キナーゼに対する抗体な
どが診断剤や検査薬として用いられることが考えられ
る。これらの目的のためには十分な量のヒトＣ−キナー
ゼの供給が必要となる。しかし、天然に存在するヒトＣ
−キナーゼは微量であり、またこれをヒトの組織から得
る試みは種々の制約によって極めて困難なため、未だに
ヒトＣ−キナーゼのアミノ酸配列や遺伝子の塩基配列は
決定されていない。一方、材料が比較的容易に得られる
動物由来のＣ−キナーゼは、例えばラット脳から既に精
製されているが、この場合もアミノ酸配列や遺伝子の塩
基配列が決定されていないし、またラットＣ−キナーゼ
についても大量生産は非常に難かしいのである。 【０００３】 【発明が解決しようとする課題】上記のようにヒトＣ−
キナーゼやラットＣ−キナーゼの性質、アミノ酸配列お
よび遺伝子については不明の点が多い。従って試薬や検
査薬として例えばそれをコードする遺伝子を同定し、そ
の蛋白質を遺伝子組み換え技術によって生産する方法が
望まれていた。 【０００４】 【課題を解決するための手段】一般に、ヒトにより近い
動物の蛋白質はそのアミノ酸配列において非常に高い相
同性があり、アミノ酸の異なっている部分もその大部分
はコドンのone pointmutation によって導びかれるもの
である。そこで、本発明者等はまず材料の入手が容易な
ラット脳由来のＣ−キナーゼを精製し、得られるアミノ
酸配列を決定するとともに、それをもとにクローニング
されたラットＣ−キナーゼ遺伝子のＤＮＡ配列を解明し
た。このラットＣ−キナーゼ遺伝子のＤＮＡ配列につい
ては後述の参考例１、２、４及び実施例１に具体的に述
べているとおりであり、その塩基配列および該塩基配列
より予測されるアミノ酸配列は図２、図８および図１３
に示している。そしてこのクローニングされたラットＣ
−キナーゼ遺伝子のＤＮＡ配列は、コドンの縮重により
多数のＤＮＡ配列が可能となるものの、その一部はヒト
Ｃ−キナーゼ遺伝子のＤＮＡ配列に極めて良く似ている
ものと推定される。そこで本発明者らはこのような考え
に基づいて、いったんラットＣ−キナーゼ遺伝子をクロ
ーニングし、このｃＤＮＡをＤＮＡプローブとして用い
てヒトＣ−キナーゼ遺伝子をヒト細胞よりクローニング
した。該遺伝子を含む組み換えＤＮＡを構築し、該ＤＮ
Ａで形質転換された形質転換体を培養するとヒトＣ−キ
ナーゼが生産される。本発明者らは、これらの知見に基
づき、さらに研究した結果、本発明を完成した。 【０００５】 【０００６】 【０００７】 【０００８】 【０００９】 【００１０】本発明は、（１）以下の式（Ｉ）［図１３
で示されるアミノ酸配列を有するものである。］で示さ
れるアミノ酸配列を有するポリペプチドであるラット蛋
白質リン酸化酵素Ｃをコ−ドする塩基配列を含有するＤ
ＮＡを含有するベクターで形質転換された形質転換体を
培地に培養し、培養物中に該ラット蛋白質リン酸化酵素
Ｃを生成蓄積せしめ、これを採取することを特徴とする
該酵素の製造法： （Ｉ） Met Ala Asp Val Tyr Pro Ala Asn Asp Ser Thr Ala Ser Gln Asp Val Ala Asn Arg Phe Ala Arg Lys Gly Ala Leu Arg Gln Lys Asn Val His Glu Val Lys Asp His Lys Phe Ile Ala Arg Phe Phe Lys Gln Pro Thr Phe Cys Ser His Cys Thr Asp Phe Ile Trp Gly Phe Gly Lys Gln Gly Phe Gln Cys Gln Val Cys Cys Phe Val Val His Lys Arg Cys His Glu Phe Val Thr Phe Ser Cys Pro Gly Ala Asp Lys Gly Pro Asp Thr Asp Asp Pro Arg Ser Lys His Lys Phe Lys Ile His Thr Tyr Gly Ser Pro Thr Phe Cys Asp His Cys Gly Ser Leu Leu Tyr Gly Leu Ile His Gln Gly Met Lys Cys Asp Thr Cys Asp Met Asn Val His Lys Gln Cys Val Ile Asn Val Pro Ser Leu Cys Gly Met Asp His Thr Glu Lys Arg Gly Arg Ile Tyr Leu Lys Ala Glu Val Thr Asp Glu Lys Leu His Val Thr Val Arg Asp Ala Lys Asn Leu Ile Pro Met Asp Pro Asn Gly Leu Ser Asp Pro Tyr Val Lys Leu Lys Leu Ile Pro Asp Pro Lys Asn Glu Ser Lys Gln Lys Thr Lys Thr Ile Arg Ser Thr Leu Asn Pro Gln Trp Asn Glu Ser Phe Thr Phe Lys Leu Lys Pro Ser Asp Lys Asp Arg Arg Leu Ser Val Glu Ile Trp Asp Trp Asp Arg Thr Thr Arg Asn Asp Phe Met Gly Ser Leu Ser Phe Gly Val Ser Glu Leu Met Lys Met Pro Ala Ser Gly Trp Tyr Lys Leu Leu Asn Gln Glu Glu Gly Glu Tyr Tyr Asn Val Pro Ile Pro Glu Gly Asp Glu Glu Gly Asn Val Glu Leu Arg Gln Lys Phe Glu Lys Ala Lys Leu Gly Pro Ala Gly Asn Lys Val Ile Ser Pro Ser Glu Asp Arg Lys Gln Pro Ser Asn Asn Leu Asp Arg Val Lys Leu Thr Asp Phe Asn Phe Leu Met Val Leu Gly Lys Gly Ser Phe Gly Lys Val Met Leu Ala Asp Arg Lys Gly Thr Glu Glu Leu Tyr Ala Ile Lys Ile Leu Lys Lys Asp Val Val Ile Gln Asp Asp Asp Val Glu Cys Thr Met Val Glu Lys Arg Val Leu Ala Leu Leu Asp Lys Pro Pro Phe Leu Thr Gln Leu His Ser Cys Phe Gln Thr Val Asp Arg Leu Tyr Phe Val Met Glu Tyr Val Asn Gly Gly Asp Leu Met Tyr His Ile Gln Gln Val Gly Lys Phe Lys Glu Pro Gln Ala Val Phe Tyr Ala Ala Glu Ile Ser Ile Gly Leu Phe Phe Leu His Lys Arg Gly Ile Ile Tyr Arg Asp Leu Lys Leu Asp Asn Val Met Leu Asp Ser Glu Gly His Ile Lys Ile Ala Asp Phe Gly Met Cys Lys Glu His Met Met Asp Gly Val Thr Thr Arg Thr Phe Cys Gly Thr Pro Asp Tyr Ile Ala Pro Glu Ile Ile Ala Tyr Gln Pro Tyr Gly Lys Ser Val Asp Trp Trp Ala Tyr Gly Val Leu Leu Tyr Glu Met Leu Ala Gly Gln Pro Pro Phe Asp Gly Glu Asp Glu Asp Glu Leu Phe Gln Ser Ile Met Glu His Asn Val Ser Tyr Pro Lys Ser Leu Ser Lys Glu Ala Val Ser Ile Cys Lys Gly Leu Met Thr Lys His Pro Ala Lys Arg Leu Gly Cys Gly Pro Glu Gly Glu Arg Asp Val Arg Glu His Ala Phe Phe Arg Arg Ile Asp Trp Glu Lys Leu Glu Asn Arg Glu Ile Gln Pro Pro Phe Lys Pro Lys Val Cys Gly Lys Gly Ala Glu Asn Phe Asp Lys Phe Phe Thr Arg Gly Gln Pro Val Leu Thr Pro Pro Asp Gln Leu Val Ile Ala Asn Ile Asp Gln Ser Asp Phe Glu Gly Phe Ser Tyr Val Asn Pro Gln Phe Val His Pro Ile Leu Gln Ser Ala Val、および 【００１１】（２）ラット蛋白質リン酸化酵素Ｃをコー
ドする塩基配列が式（ｉ）で示される塩基配列を有する
（１）記載のラット蛋白質リン酸化酵素Ｃの製造法： （ｉ） ATGGCTGACG TTTACCCGGC CAACGACTCC ACGGCGTCTC AGGACGTGGC CAACCGCTTC GCCCGCAAAG GGGCGCTGAG GCAGAAGAAC GTGCATGAGG TGAAAGACCA CAAATTCATC GCCCGCTTCT TCAAGCAACC CACCTTCTGC AGCCACTGCA CCGACTTCAT CTGGGGGTTT GGAAAACAAG GCTTCCAGTG CCAAGTTTGC TGTTTTGTGG TTCACAAGAG GTGCCATGAG TTTGTTACTT TCTCTTGTCC GGGTGCGGAT AAGGGACCTG ACACTGATGA CCCCAGAAGC AAGCACAAGT TCAAAATCCA CACCTATGGA AGCCCTACCT TCTGTGATCA CTGTGGGTCC CTGCTCTACG GACTTATCCA CCAAGGGATG AAATGCGACA CCTGCGACAT GAATGTTCAC AAGCAGTGCG TGATCAATGT CCCCAGCCTC TGCGGAATGG ATCACACAGA GAAGAGGGGG CGGATTTACC TGAAGGCAGA GGTCACAGAT GAAAAGCTGC ACGTCACCGT ACGAGATGCA AAAAATCTAA TCCCTATGGA TCCAAATGGG CTTTCGGATC CTTACGTGAA GCTGAAACTT ATTCCTGACC CCAAGAATGA GAGCAAACAG AAAACCAAAA CCATCCGATC CACACTGAAC CCTCAGTGGA ATGAGTCCTT CACGTTCAAA TTAAAACCTT CAGACAAAGA CCGGCGACTG TCCGTAGAAA TCTGGGACTG GGATCGGACG ACACGGAATG ACTTCATGGG CTCCCTTTCC TTCGGCGTCT CAGAGCTGAT GAAGATGCCA GCCAGTGGAT GGTACAAGTT GCTCAACCAA GAGGAGGGTG AATACTACAA TGTGCCCATT CCAGAAGGAG ATGAAGAAGG CAACGTGGAA CTCAGGCAGA AGTTCGAGAA AGCCAAGCTG GGCCCCGCTG GAAACAAAGT CATCAGCCCT TCAGAAGACA GGAAGCAGCC ATCTAACAAC CTGGACAGGG TGAAACTCAC AGACTTCAAC TTCCTCATGG TGCTGGGGAA GGGGAGTTTT GGAAAGGTGA TGCTTGCTGA CAGGAAGGGA ACAGAGGAGC TGTACGCCAT CAAAATCCTG AAGAAGGACG TGGTGATCCA GGATGACGAC GTGGAGTGCA CCATGGTGGA GAAGCGGGTT CTGGCCCTGC TCGACAAGCC CCCGTTCCTG ACACAGCTGC ACTCCTGCTT CCAGACAGTG GACCGGCTGT ACTTCGTCAT GGAATACGTC AACGGTGGGG ACCTCATGTA CCACATTCAG CAAGTCGGAA AATTTAAGGA GCCACAAGCA GTATTCTATG CAGCCGAGAT CTCCATCGGA CTGTTCTTTC TTCACAAAAG AGGAATCATT TACAGGGATC TGAAGCTGGA CAACGTCATG CTGGACTCAG AAGGGCATAT CAAAATCGCC GACTTCGGGA TGTGCAAGGA ACACATGATG GACGGGGTCA CGACCAGGAC CTTCTGTGGG ACTCCGGATT ACATTGCCCC AGAGATAATC GCTTACCAGC CATATGGAAA GTCTGTGGAC TGGTGGGCGT ACGGCGTGCT CCTGTATGAG ATGCTAGCTG GGCAGCCTCC GTTCGATGGC GAAGACGAAG ATGAACTGTT TCAGTCTATA ATGGAGCACA ATGTGTCCTA CCCCAAATCC TTGTCCAAGG AAGCTGTCTC CATCTGCAAA GGGCTTATGA CCAAACACCC TGCCAAGCGG CTGGGCTGCG GGCCCGAGGG GGAAAGGGAT GTCAGAGAGC ATGCCTTCTT TAGGAGGATC GACTGGGAGA AGTTGGAGAA CAGGGAGATC CAACCGCCAT TCAAGCCCAA AGTGTGCGGC AAAGGAGCAG AAAACTTTGA CAAGTTCTTC ACACGAGGGC AGCCTGTCTT AACACCACCA GATCAGCTGG TCATCGCTAA CATAGACCAG TCTGATTTTG AAGGGTTCTC GTATGTCAAC CCCCAGTTTG TGCACCCAAT CTTGCAAAGT GCAGTATGA、に関するものである。 【００１２】ラットＣ−キナーゼとしては、図１３のア
ミノ酸配列（Ｎｏ．１〜６７２）で表されるものが挙げ
られる。ラットＣ−キナーゼをコードする塩基配列を含
有する組み換えＤＮＡとしては、図１３に示されるアミ
ノ酸配列をコードする塩基配列あるいはその一部であっ
て、得られる蛋白質がラットＣ−キナーゼ活性を有する
ものであればどのような塩基配列も用いることができる
が、図１３に示される塩基配列を含有するものが好まし
く用いられる。更に具体的に述べれば図１３におけるア
ミノ酸配列をコードする塩基配列を含有するＤＮＡが特
に好ましく用いられる。また、本発明のラットＣ−キナ
ーゼのクローニング、形質転換体の製造、該形質転換体
を用いたラットＣ−キナーゼ蛋白の製造及びその有用性
は、以下に記載するヒトＣ−キナーゼのクローニング、
形質転換体の製造、該形質転換体を用いたヒトＣ−キナ
ーゼ蛋白の製造と同様に行なうことができ、また同様の
有用性を有するものである。 【００１３】 【発明の実施の形態】本発明方法におけるヒトＣ−キナ
ーゼ蛋白質のポリペプチドをコードする塩基配列を有す
るＤＮＡを含有する発現型ベクターは、例えば、（イ）
ヒトＣ−キナーゼをコードするＲＮＡを分離し、（ロ）
該ＲＮＡから単鎖の相補ＤＮＡ（ｃＤＮＡ）を、次いで
二重鎖ＤＮＡを合成し、（ハ）該相補ＤＮＡをプラスミ
ドに組み込み、（ニ）得られた組み換えプラスミドで宿
主を形質転換し、（ホ）得られた形質転換体を培養後、
形質転換体から適当な方法、例えばラットｃＤＮＡをプ
ローブとして用いたコロニーハイブリダイゼーション
法、により目的とするＤＮＡを含有するプラスミドを単
離し、（ヘ）そのプラスミドから目的とするクローン化
ＤＮＡを切り出し、（ト）該クローン化ＤＮＡをビーク
ル中のプロモーターの下流に連結する、ことにより製造
することができる。ヒトＣ−キナーゼをコードするＲＮ
Ａは、種々のヒトＣ−キナーゼ産生細胞、例えばヒト脳
由来細胞あるいはヒト線維芽細胞から得ることができ
る。該ヒト線維芽細胞としてはＷＩ３８（ＡＴＣＣ番号
ＣＣＬ−７５）あるいはＩＭＲ９０（ＡＴＣＣ番号ＣＣ
Ｌ−１８６）などがあげられる。上記細胞ＷＩ３８ある
いはＩＭＲ９０は、ジ・アメリカン・タイプ・カルチャ
ー・コレクション(The American Type Culture Collect
ion)発行のカタログ・オブ・セル・ラインズ・アンド・ハイ
ブリドーマズ(Catalogue of Cell Lines & Hybridomas)
５th edition,1985に掲載されている。ヒトＣ−キナー
ゼ産生細胞からＲＮＡを調製する方法としては、グアニ
ジンチオシアネート法〔J.M..Chirgwin ら、バイオケミ
ストリー（Bio-chemistry),18,5294(1979)〕などが挙げ
られる。このようにして得られたＲＮＡを鋳型とし、逆
転写酵素を用いて、例えばＨ．Ｏkayama らの方法〔モ
レキュラ−・アンド・セルラ−・バイオロジ−（Molecu
lar and Cellular Biology）2,161(1982)および同誌 3,
280(1983)〕に従いcＤＮＡを合成し、得られたcＤＮＡ
をプラスミドに組み込む。 【００１４】cＤＮＡを組み込むプラスミドとしては、
たとえば大腸菌由来のpＢＲ322〔ジ−ン（gene),2,95(1
977)〕,pＢＲ325〔ジーン,4,121(1978)〕,pＵＣ12〔ジ
ーン,19,,259(1982)〕,pＵＣ13〔ジーン,19,259(198
2)〕、枯草菌由来のpＵＢ110〔バイオケミカル・バイオ
フィジカル・リサーチ・コミュニケーョン（Biochemica
land Biophysical Research Communication),112,678
(1983)〕などが挙げられるが、その他のものであって
も、宿主内で複製保持されるものであれば、いずれをも
用いることができる。プラスミドに組み込む方法として
は、たとえば、T.Maniatis ら，モレキュラー・クロー
ニング(Molecular Cloning) コールド・スプリング・ハ
ーバー・ラボラトリー（Cold Spring Harbor La-borato
ry),第239頁(1982)に記載の方法などが挙げられる。上
記cＤＮＡが組み込まれたプラスミドとしては、ヒト正
常２倍体細胞mＲＮＡより合成したcＤＮＡをpＣＤベク
ター〔Okyamaら,モレキュラー・セル・バイオロジー(Mole
cular Cell Biology),3,280(1983)参照〕に組み込んで
作成した大腸菌x1776を宿主としたcＤＮＡライブラリー
(National Institute of Child Healthand Human Devel
opment,Bethesda,U.S.A.の岡山博士より分与を受けるこ
とができる。)を用いて得られたプラスミドでもよい。
このようにして得られたプラスミドは、適当な宿主たと
えばエシェリキア(Escherichia)属菌，バチルス(Bacill
us)属菌などに導入する。 【００１５】上記エシェリキア属菌の例としては、エシ
ェリキア・コリ(Escherichia coli)Ｋ12ＤＨ1〔プロシ
ージング・オブ・ナショナル・アカデミー・オブ・サイ
エンス(Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A.)60,160(196
8)〕,Ｍ103〔ヌクレイック・アシッズ・リサーチ,(Nuclei
c Acids Research),9,309(1981)〕,ＪＡ221〔ジャーナ
ル・オブ・モレキュラー・バイオロジー(Journal of Mo
lecular Biology)〕,120,517(1978)〕，ＨＢ101〔ジャ
ーナル・オブ・モレキュラー・バイオロジー41,459(196
9)〕,Ｃ600〔ジェネティックス(Genetics),39,440(195
4)〕などが挙げられる。上記バチルス属菌としては、た
とえばバチルス・サチルス(Bacillus subtilis)ＭＩ11
4(ジーン，24,255(1983)〕,207−21〔ジャーナル・オブ
・バイオケミストリー(Journal of Biochemistry)95,87
(1984)〕などが挙げられる。形質転換する方法として
は、たとえばＴ．Maniatisら，モレキュラー・クローニ
ング(Molecular Cloning),コールド・スプリング・ハー
バー・ラボラトリー(Cold Spring Harbor Laboratory),
第249頁(1982)に記載のカルシウムクロライド法あるい
はカルシウムクロライド／ルビジウムクロライド法など
が挙げられる。このようにして得られた形質転換体中か
ら自体公知の方法、例えばコロニー・ハイブリダイゼー
ション法〔ジ−ン，10,63(1980)〕およびＤＮＡ塩基配
列決定法〔プロシージング・オブ・ナショナル・アカデ
ミー・オブ・サイエンス(Proc.Natl. Acad. Sci. U.S.
A.)74,560(1977),ヌクレイック・アシッズ・リサーチ(N
ucleic Acids Research)9,309(1981)〕を用い、求める
クローンを選出する。このようにして、クローン化され
たヒトＣ−キナーゼをコードする塩基配列を含有するＤ
ＮＡを有するベクターを保持する微生物が得られる。 【００１６】後述の参考例１(1)で得られた Escherichi
a coli Ｋ１２ＤＨ１／ｐＴＢ６３７が保持するプラス
ミドｐＴＢ６３７は、ヒトＣ−キナーゼをコードする塩
基配列を含有するＤＮＡを有する。該ＤＮＡ中の、ヒト
Ｃ−キナーゼをコードする塩基配列は、ＤＮＡの一部分
であると考えられる。該ＤＮＡの制限酵素切断位置を図
３に示す。図３に示すように該ＤＮＡは全長約１．２ｋ
ｂｐであり、制限酵素ＰｓｔＩあるいはＢａｍＨＩによ
り断片に切断される。次に、該微生物からプラスミドを
単離する。該単離法としては、アルカリ法〔H.C.Birmbo
imら、ヌクレイック・アシッズ・リサーチ,(Nucleic Acid
s Research),1,1513(1979)〕などが挙げられる。上記ク
ローン化されたヒトＣ−キナーゼをコードする塩基配列
を含有するＤＮＡを有するプラスミドはそのまま、また
は所望により制限酵素で切り出す。クローン化された遺
伝子は、発現に適したビークル（ベクター）中のプロモ
ーターの下流に連結して発現型ベクターを得ることがで
きる。 【００１７】ベクターとしては、上記の大腸菌由来のプ
ラスミド（例、ｐＢＲ３２２，ｐＢＲ３２５，ｐＵＣ１
２，ｐＵＣ１３），枯草菌由来プラスミド（例、ｐＵＢ
１１０，ｐＴＰ５，ｐＣ１９４），酵母由来プラスミド
（例、ｐＳＨ１９，ｐＳＨ１５)，あるいはλファージ
などのバクテリオファージおよびレトロウィルス、ワク
シニアウィルスなどの動物ウィルスなどが挙げられる。
該遺伝子はその５’末端に翻訳開始コドンとしてのＡＴ
Ｇを有し、また３’末端には翻訳終止コドンとしてのＴ
ＡＡ，ＴＧＡまたはＴＡＧを有していてもよい。さらに
該遺伝子を発現させるにはその上流にプロモーターを接
続する。本発明で用いられるプロモーターとしては、遺
伝子の発現に用いる宿主に対応して適切なプロモーター
であればいかなるものでもよい。また、形質転換する際
の宿主がエシェリキア属菌である場合は、ｔｒｐプロモ
ーター，ｌａｃプロモーター，ｒｅｃＡプロモーター，
λＰＬプロモーター，ｌｐｐプロモーターなどが、宿主
がバチルス属菌である場合は、ＳＰＯ１プロモーター，
ＳＰＯ２プロモーター，ｐｅｎＰプロモーターなど、宿
主が酵母である場合は、ＰＨＯ５プロモーター，ＰＧＫ
プロモーター，ＧＡＰプロモーター，ＡＤＨプロモータ
ーなどが好ましい。とりわけ宿主がエシェリキア属菌で
プロモーターがｔｒｐプロモーターまたはλＰＬプロモ
ーターであることが好ましい。宿主が動物細胞である場
合には、ＳＶ４０由来のプロモーター、レトロウィルス
のプロモーターなどが挙げられ、とりわけＳＶ４０由来
のプロモーターが好ましい。 【００１８】このようにして構築されたＤＮＡを含有す
るベクターを用いて、形質転換体を製造する。宿主とし
ては、たとえばエシェリキア属菌、バチルス属菌、酵
母、動物細胞などが挙げられる。上記エシェリキア属
菌、バチルス属菌の具体例としては、前記したものと同
様のものが挙げられる。上記酵母としては、たとえばサ
ッカロマイセス セレビシアエ(Saccaromycescerevisia
e) ＡＨ２２Ｒ~，ＮＡ８７−１１Ａ，ＤＫＤ−５Ｄなど
が挙げられる。動物細胞としては、たとえばサル細胞Ｃ
ＯＳ−７,Ｖｅｒｏ,チャイニーズハムスター細胞ＣＨ
Ｏ，マウスＬ細胞，ヒトＦＬ細胞などが挙げられる。上
記エシェリキア属菌を形質転換するには、たとえばプロ
シージング・オブ・ナショナル・アカデミー・オブ・サ
イエンス（Proc.Natl.Acad.Sci.USA),69,2110(1972)や
ジーン,17,107(1982)などに記載の方法に従って行なわ
れる。バチルス属菌を形質転換するには、たとえばモレ
キュラー・アンド・ジェネラル・ジェネティックス(Mol
ecular & General Genetics）,168,111(1979)などに記
載の方法に従って行なわれる。酵母を形質転換するに
は、たとえばプロシージング・オブ・ナショナル・アカ
デミー・オブ・サイエンス（Proc.Natl.Acad.Sci.USA),
75,1929(1978)に記載の方法に従って行なわれる。動物
細胞を形質転換するには、たとえばヴィロロジー(Virol
ogy)52,456(1973)に記載の方法に従って行なわれる。こ
のようにして、ＤＮＡを含有するベクターで形質転換さ
れた形質転換体が得られる。 【００１９】その一例としては、たとえば後述の参考例
１(1)で得られた Escherichia coliＫ１２ＤＨ１／ｐＴ
Ｂ６３７が挙げられ、該微生物は、昭和６１年(１９８
６年）６月１３日に財団法人発酵研究所(ＩＦＯ）の受
託番号ＩＦＯ１４５１０として寄託され、また、本微生
物は、昭和６１年６月２０日に通商産業省工業技術院微
生物工業技術研究所(ＦＲＩ）に受託番号ＦＥＲＭ Ｐ
−８８１５として寄託され、該寄託はブダペスト条約に
基づく寄託に切換えられて、受託番号 ＦＥＲＭ ＢＰ−
１３７１として同研究所（ＦＲＩ）に保管されている。
宿主がエシェリキア属菌、バチルス属菌である形質転換
体を培養する際、培養に使用される培地としては液体培
地が適当であり、その中には該形質転換体の生育に必要
な炭素源、窒素源、無機物その他が含有せしめられる。
炭素源としては、たとえばグルコース、デキストリン、
可溶性澱粉、ショ糖など、窒素源としては、たとえばア
ンモニウム塩類、硝酸塩類、コーンスチープ・リカー、
ペプトン、カゼイン、肉エキス、大豆粕、バレイショ抽
出液などの無機または有機物質、無機物としてはたとえ
ば塩化カルシウム、リン酸二水素ナトリウム、塩化マグ
ネシウムなどが挙げられる。また、酵母、ビタミン類、
生長促進因子などを添加してもよい。培地のｐＨは約６
〜８が望ましい。 【００２０】エシェリキア属菌を培養する際の培地とし
ては、例えばグルコース、カザミノ酸を含むＭ９培地
〔Miller,ジャーナル・オブ・エクスペリメンツ・イン・モ
レキュラー・ジェネティックス(Journal of Experiments
in Molecular Genetics),431−433,Cold Spring Harbo
r Laboratory, New York 1972〕が好ましい。ここに必
要によりプロモーターを効率よく働かせるために、たと
えば３β−インドリルアクリル酸のような薬剤を加える
ことができる。宿主がエシェリキア属菌の場合、培養は
通常約15〜43℃で約３〜24時間行い、必要により、通気
や攪拌を加えることもできる。宿主がバチルス属菌の場
合、培養は通常約３０〜４０℃で約６〜２４時間行な
い、必要により通気や攪拌を加えることもできる。宿主
が酵母である形質転換体を培養する際、培地としては、
たとえばバークホールダー(Burkholder)最小培地〔Bost
ian, K. L. ら、「プロシージング・オブ・ナショナル・ア
カデミー・オブ・サイエンス(Proc.Natl.Acad.Sci.USA)7
7,4505(1980)〕が挙げられる。培地のｐＨは約５〜８に
調整するのが好ましい。培養は通常約２０℃〜３５℃で
約２４〜７２時間行い、必要に応じて通気や攪拌を加え
る。宿主が動物細胞である形質転換体を培養する際、培
地としては、たとえば約５〜２０％の胎児牛血際を含む
ＭＥＭ培地〔サイエンス（Science)122,501(1952)〕，
ＤＭＥＭ培地〔ヴィロロジー(Viro-logy),8,396(195
9)〕，ＲＰＭＩ１６４０培地〔ジャーナル・オブ・ザ・
アメリカン・メディカル・アソシエーション（The Joun
al of the American Medical Association) 199,519(19
67)〕,１９９培地〔プロシージング・オブ・ザ・ソサイエ
ティ・フォー・ザ・バイオロジカル・メディスン（Pro-
ceeding of the Society for the Biological Medicin
e)73, 1 (1950)〕などが挙げられる。ｐＨは約６〜８で
あるのが好ましい。培養は通常約３０℃〜４０℃で約１
５〜６０時間行い、必要に応じて通気や攪拌を加える。 【００２１】上記培養物からヒトＣ−キナーゼ蛋白を分
離精製するには、例えば下記の方法により行なうことが
できる。ヒトＣ−キナーゼ蛋白を培養菌体あるいは細胞
から抽出するに際しては、培養後、公知の方法で菌体あ
るいは細胞を集め、これを塩酸グアニジンなどの蛋白変
性剤を含む緩衝液に懸濁し、超音波、リゾチームおよび
(または凍結融解)によって菌体あるいは細胞を破壊した
のち、遠心分離によりヒトＣ−キナーゼ蛋白を得る方法
などが適宜用い得る。上記上澄液からヒトＣ−キナーゼ
蛋白を精製するには、自体公知の分離・精製法を適切に
組み合わせて行なうことができる。これらの公知の分
離、精製法としては、塩析や溶媒沈澱法などの溶解度を
利用する方法、透析法、限外ろ過法、ゲルろ過法、およ
びＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気応動法などの主
として分子量の差を利用する方法、イオン交換クロマト
グラフィーなどの荷電の差を利用する方法、アフィニテ
ィークロマトグラフィーなどの特異的親和性を利用する
方法、逆相高速液体クロマトグラフィーなどの疎水性の
差を利用する方法、等電点電気泳動法などの等電点の差
を利用する方法などが挙げられる。遺伝子組み換え技術
によって得られたヒトＣ−キナーゼ蛋白の一例として、
例えば図１におけるアミノ酸配列で示されるポリペプチ
ドを含有する蛋白質を挙げることができる。該ポリペプ
チドはそのＮ末端にＭｅｔを有していてもよい。かくし
て生成するヒトＣ−キナーゼの活性は公知の蛋白質リン
酸化などにより測定することができる。上記ＤＮＡで遺
伝子感染または形質転換した細胞では、本来わずかのヒ
トＣ−キナーゼしか合成されない、あるいは全く合成さ
れない各種細胞においても大量のヒトＣ−キナーゼを産
生せしめることができ、ヒトＣ−キナーゼ生産を有利に
導くことができる。上記ヒトＣ−キナーゼ蛋白をコード
する遺伝子を含有する発現型プラスミドは、これを各種
細胞に導入することにより該細胞にヒトＣ−キナーゼを
産生させることができるため、ヒトＣ−キナーゼを大量
に取得することができる。ここに製造されるヒトＣ−キ
ナーゼは、試薬としてまた抗体を調製しその抗体と共に
診断・検査薬として用いることができる。たとえば本発
明のＣ−キナーゼは、細胞膜受容伝達機構などの研究用
試薬、細胞膜受容伝達機構の異常が原因となる疾病
（例：腫瘍）に対する診断・検査薬、あるいはこれらの
疾病に対する予防・治療薬のスクリーニング用試薬とし
て用いることができる。たとえば、１回の診断・検査に
約 0.001〜10μｇのＣ−キナーゼが用いられる。 【００２２】本発明明細書および図面において、塩基や
アミノ酸などを略号で表示する場合、ＩＵＰＡＣ−ＩＵ
Ｂ Commision on Biochemical Nomenclature による略
号あるいは当該分野における慣用略号に基づくものであ
り、その例を下記する。またアミノ酸に関し光学異性体
があり得る場合は、特に明示しなければＬ−体を示すも
のとする。 ＤＮＡ ：デオキシリボ核酸 ｃＤＮＡ：相補的デオキシリボ核酸 Ａ ：アデニン Ｔ ：チミン Ｇ ：グアニン Ｃ ：シトシン ＲＮＡ ：リボ核酸 ｄＡＴＰ：デオキシアデノシン三リン酸 ｄＴＴＰ：デオキシチミジン三リン酸 ｄＧＴＰ：デオキシグアノシン三リン酸 ｄＣＴＰ：デオキシシチジン三リン酸 ＡＴＰ ：アデノシン三リン酸 ＥＤＴＡ：エチレンジアミン四酢酸 ＳＤＳ ：ドデシル硫酸ナトリウム 【００２３】Ｇｌｙ ：グリシン Ａｌａ ：アラニン Ｖａｌ ：バリン Ｌｅｕ ：ロイシン Ｉｌｅ ：イソロイシン Ｓｅｒ ：セリン Ｔｈｒ ：スレオニン Ｃｙｓ ：システイン Ｍｅｔ ：メチオニン Ｇｌｕ ：グルタミン酸 Ａｓｐ ：アスパラギン酸 Ｌｙｓ ：リジン Ａｒｇ ：アルギニン Ｈｉｓ ：ヒスチジン Ｐｈｅ ：フェニールアラニン Ｔｙｒ ：チロシン Ｔｒｐ ：トリプトファン Ｐｒｏ ：プロリン Ａｓｎ ：アスパラギン Ｇｌｎ ：グルタミン 【００２４】 【実施例】以下の実施例により本発明をより具体的に説
明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
なお、参考例２で得られた形質転換体Ｅ．ｃｏｌｉ Ｋ
１２ＤＨ１／ｐＴＢ６３８は昭和６１年（１９８６年）
６月２０日にＩＦＯに受託番号ＩＦＯ １４５１４とし
て寄託され、本形質転換体は昭和６１年６月２８日にＦ
ＲＩに受託番号ＦＥＲＭ Ｐ−８８２９として寄託さ
れ、該寄託はブダペスト条約に基づく寄託に切換えられ
て、受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１３７２としてＦＲＩに
保管されている。また、参考例４で得られた形質転換体
Ｅ．ｃｏｌｉ Ｋ１２ＤＨ１／ｐＴＢ６５２は昭和６１
年８月２９日にＩＦＯに受託番号ＩＦＯ １４５３９と
して寄託され、また本形質転換体は昭和６１年９月５日
にＦＲＩに受託番号ＦＥＲＭ Ｐ−８９５８として寄託
され、該寄託はブダペスト条約に基づく寄託に切換えら
れて、受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１３７３としてＦＲＩ
に保管されている。参考例４で得られた形質転換体Ｅ．
ｃｏｌｉ Ｋ１２ＤＨ１／ｐＴＢ６５３は昭和６１年８
月２９日にＩＦＯに受託番号ＩＦＯ １４５４０として
寄託され、本形質転換体は昭和６１年９月５日にＦＲＩ
に受託番号ＦＥＲＭ Ｐ−８９５９として寄託され、該
寄託はブダペスト条約に基づく寄託に切換えられて、受
託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１３７４としてＦＲＩに保管さ
れている。実施例１で得られた形質転換体Ｅ．ｃｏｌｉ
ＤＨ１／ｐＴＢ７５５は昭和６２年５月２１日にＩＦ
Ｏに受託番号ＩＦＯ １４６１２として寄託され、本形
質転換体は昭和６２年５月２９日にＦＲＩに受託番号Ｆ
ＥＲＭ ＢＰ−１３８２としてブダペスト条約に基づい
て寄託された。 【００２５】参考例１ (1)ラット-Ｃキナーゼのアミノ酸配列の決定 ラット-Ｃキナーゼは吉川らの方法〔ジャーナル・オブ
・バイオロジカル・ケミストリィ（J. Biol. Chem.)25
7, 13341 (1982)〕に従ってラット脳より抽出精製し
た。２４０匹のラット脳より、２．０mgの精製Ｃ−キナ
ーゼ標品を得た。この標品１．９mgを６Ｍ尿素を含む５
０ｍＭ Tris-HCl(ｐＨ9.0)溶液１．９ｍlにとかし、リ
ジルエンドペプチダーゼを２５μl／ｍlに添加して３７
℃２１時間消化した。生成したペプチドを逆相ＨＰＬＣ
(Micro pak Protein C18-10,0.4×30cm カラム)にかけ
アセトニトリルのグラジエント溶出により分画、分取し
た。分画された約５０のペプチドのうちの４種類（ペプ
チドＮｏ．２４，３７，４９，５１）についてそのアミ
ノ酸配列を気相プロティンシークエンサー（モデル４７
０Ａ，Applied Biosystems, Inc.)を用いた自動エドマ
ン分解法により決定した。エドマン分解により生じたア
ミノ酸のチオヒダントイン化物はMicro pak SPC18-3カ
ラム(Varian Associates, Inc)を用いたＨＰＬＣにより
分析した。得られた４種類のペプチドのアミノ酸配列を
図１に示した。 【００２６】参考例２ (1)ラット脳ｍＲＮＡ由来のｃＤＮＡライブラリーの作
製 ラット脳よりＲＮＡをグアニジンイソチオシアネート法
（Chirgwimら、Biochemistry 18, 5294,1978)を用いて
抽出した。このＲＮＡよりポリ(Ａ)ＲＮＡをオリゴｄＴ
セルロースカラムクロマトグラフィーにより精製した
〔AvivとLeder,「プロシージング・オブ・ナショナル・アカ
デミー・オブ・サイエンス(Proc.Natl.Acad.Sci.USA）69,
1408（1972)〕。このポリ(Ａ)ＲＮＡを鋳型としてｃＤ
ＮＡライブラリーをＯｋａｙａｍａとＢｅｒｇの方法
〔Okayama & Berg,「モレキュラー アンド セルラー・バ
イオロジー(Mol.Cell.Biol.)」2,161,1982,同誌,3,280,
1983〕に従ってｐｃＤＶ１ベクター、ｐＬ１リンカーを
用いて作製した。環状化したｃＤＮＡを含むベクターｐ
ｌａｓｍｉｄは大腸菌ＤＨ−１に感染させ、５μｇのポ
リ(Ａ)ＲＮＡより出発して約５×１０⁵個のクローンよ
りなる大腸菌ＤＨ−１を宿主としたｃＤＮＡライブラリ
ーを得ることができた。 【００２７】(2)ラット-ＣキナーゼｃＤＮＡを含むプラ
スミドの単離とその塩基配列の決定 上記大腸菌ＤＨ１を用いたラットｃＤＮＡライブラリー
をニトロセルロースフィルター（ミリポア社、ＨＡＴＦ
フィルター）上に約３×１０⁴クローン／フィルターと
なるように１０枚まき、このフィルターをマスターフィ
ルターとしている各２枚ずつを１組としたレプリカフィ
ルター計２０枚を作製した。このレプリカフィルター上
の大腸菌を0.5N ＮａＯＨ溶液でとかし露出変性したプ
ラスミドＤＮＡをフィルター上に乾燥固定した〔Grunst
ein,M, & Hogness,D.S. 「プロシージング・オブ・ナショ
ナル・アカデミー・オブ・サイエンス(Proc.Natl.Acad.S
ci.USA)72,3961(1975)〕。一方、参考例１の(1)で決定
したペプチドのアミノ酸配列より、その配列に対応する
塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを化学合成した。
即ち、ペプチドＮｏ．２４の７−１２のアミノ酸配列
（Ｔｙｒ-Ｉｌｅ-Ａｓｐ-Ｔｒｐ-Ｇｌｕ-Ｌｙｓ）に対
応する 【００２８】 【化１】 【００２９】ペプチドＮｏ．５１の３−８のアミノ酸配
列 （Ａｓｐ-Ｔｒｐ-Ｔｒｐ-Ａｌａ-Ｐｈｅ-Ｇｌｙ）に
対応する 【化２】 【００３０】さらにペプチドＮｏ．５１の２４−２９の
アミノ酸配列（Ｇｌｕ-Ａｓｐ-Ｇｌｕ-Ａｓｐ-Ｇｌｕ-
Ｌｅｕ）に対応する 【化３】 を合成してラットＣキナーゼｃＤＮＡのスクリーニング
プローブとした。 【００３１】これらオリゴヌクレオチドプローブの５’
末端をＴ４ポリヌクレオチドキナーゼ，〔γ−³²Ｐ〕Ａ
ＴＰを用いて³²Ｐで標識した。標識したプローブＮｏ．
２とプローブＮｏ．３をＤＮＡを固定したレプリカフィ
ルターに別々に会合させた。会合反応は１０μＣｉの標
識プローブを含む５×ＳＳＣ（0.15M ＮａＣｌ，0.015M
Sodium citrate),５×Denhardt's，0.1％ＳＤＳ，100
μｇ／ｍｌ変性サケ精子ＤＮＡ溶液１０ｍｌ中で４２℃
１６時間行い、反応後、フィルターを６×ＳＳＣ，０．
１％ＳＤＳ溶液で室温で３０分ずつ３回、さらにプロー
ブＮｏ．２を用いた場合では４７℃、プローブＮｏ．３
では４３℃で６０分ずつ２回洗浄した（T. Maniatis
ら,「モレキュラー クローニング(Molecular Cloning) C
old Spring Harbor Laboratory, p309, 1982)洗浄した
フィルターよりラジオオートグラムをとり、二種類のプ
ローブの両方に対して反応する菌株を１組２枚のレプリ
カフィルターのラジオオートグラムを重ね合わせること
により探した。この方法により３×１０⁵colonies よ
り、二種類のプローブの両方に対して反応する１株Ｅ.c
oli Ｋ12ＤＨ１/ｐＴＢ６３８(ＩＦＯ １４５１４，Ｆ
ＥＲＭ ＢＰ−１３７２)を得た。この菌株よりプラスミ
ドＤＮＡ（ｐＴＢ６３８）をアルカリ法〔Birnboim, H.
C. & Doｌy,J.「ヌクレイック アシッズ リサーチ（Nucl
eic Acids Res.),」1,1513,(1979)〕によって抽出精製し
た。ＤＮＡを制限酷素ＢａｍＨＩ（宝酒造製）で切断
し、アガロースゲル電気泳動で分画した後、ＤＮＡ断片
をアガロースゲル中よりニトロセルロースフィルター
（エス アンド エス社,ＢＡ８５）上に移した〔サザン
ブロッティング法、T.Maniatisら,「モレキュラー ク
ローニング（Molecular Cloning) Cold Spring Harbor
Laboratory, pp382, 1982〕。このフィルターを前記三
種のオリゴヌクレオチドプローブ(プローブＮｏ．１，
２，３)と会合させると、プラスミドＤＮＡ断片は三種
のプローブのいずれとも反応した。 【００３２】このプラスミドＤＮＡのｃＤＮＡ部分の塩
基配列をジデオキシヌクレオチド合成鎖停止法〔J． Me
ssingら「ヌクレイック アシッズ リサーチ（Nucleic A
cidsRes.),」９,309,(1981)〕によって決定した。その塩
基配列および塩基配列より予測されるアミノ酸配列を図
２に示した。この配列で、参考例１の(1)で決定したペ
プチドＮｏ．２４のアミノ酸配列はＮｏ．４４５−４８
０の塩基配列にまたペプチドＮｏ．５１のアミノ酸配列
はＮｏ．２２０−３１２の塩基配列に正しく対応してい
ることがわかる。従って、このプラスミドｐＴＢ６３８
がラットＣキナーゼｃＤＮＡであることが確認された。
また、このｃＤＮＡはポリ(Ａ)構造を含んでいることか
ら、Ｃ−キナーゼのＣ末端側コード部分と、ｍＲＮＡの
３’末端側非翻訳部分の構造を保持していることがわか
った。なお、ラットのＣ−キナーゼとしては図２に示し
たアミノ酸配列をその一部として含む。 【００３３】参考例３ (1)ヒトＣ−キナーゼｃＤＮＡを含有するプラスミドの
単離 ヒト包皮由来初代培養細胞ｍＲＮＡより合成したｃＤＮ
ＡをｐＣＤベクター〔Okayamaら,「モレキュラー アンド
セルラー バイオロジー（Mol．Cell.Biol.)」3,280,(1
983)参照〕に組み込んで作成した大腸菌ｘ１７７６を宿
主としたｃＤＮＡライブラリーを National Institute
of Child Health and Human Development, Bethesda,U.
S.A.の岡山博士より分与を受けた。このｃＤＮＡライブ
ラリーよりアルカリ法〔Birnboim, H.C.& Doｌy,J.「ヌ
クレイック アシッズ リサーチ（Nucleic Acids Re
s.),」1,1513,(1979)〕でプラスミドＤＮＡを抽出し、こ
のＤＮＡを大腸菌ＤＨ１に感染させ、約２×１０⁶個のc
loneよりなる大腸菌ＤＨ１を宿主としたｃＤＮＡライブ
ラリーを作成した。上記大腸菌ＤＨ１を用いたｃＤＮＡ
ライブラリーをニトロセルロースフィルター（ミリポア
社、ＨＡＴＦフィルター）上に約５×１０⁴クローン／
フィルターとなるように１２枚まき、このフィルターを
マスターフィルターとしてレプリカフィルターを作製し
た。このレプリカフィルター上の大腸菌を0.5N ＮａＯ
Ｈ溶液でとかし露出変性したプラスミドＤＮＡをフィル
ター上に乾燥固定した〔Grunstein,M, & Hogness,D.S.
「プロシージング・オブ・ナショナル・アカデミー・オブ・サ
イエンス(Proc.Natl.Acad.Sci.USA)72,3961(1975)〕。
一方、参考例２の(2)で単離したプラスミドｐＴＢ６３
８を制限酵素ＰｓｔＩで切断して得られる約０．７ｋｂ
のＤＮＡ断片を〔α−³²Ｐ〕αＡＴＰ，ＤＮＡポリメラ
ーゼＩを用いて³²Ｐ標識した〔ニックトランスレーショ
ン法、P.W.Rigbyら「ジャーナル・オブ・モレキュラー・バ
イオロジー(J.Mol.Biol.」113,237(1977)〕。この標識Ｄ
ＮＡ断片をプローブとしてＤＮＡを固定したレプリカフ
ィルターと会合させた。会合反応は５μＣｉのプローブ
を含む２０％ホルムアミド、５×ＳＳＰＥ，５×Denhar
dt's，0.1％ＳＤＳ，100μｇ／ｍｌ変性サケ精子ＤＮＡ
溶液１０ｍｌ中で４２℃１６時間行い、反応後、フィル
ターを２×ＳＳＣ，０．１％ＳＤＳ溶液で室温で３０分
３回、さらに５０℃で３０分ずつ２回洗浄した〔T. Man
iatis ら,「モレキュラー クローニング（Molecular Clo
ning) Cold Spring Harbor Laboratory, pp309, 198
2〕。洗浄したフィルターよりラジオオートグラムをと
り、プローブと反応する菌株Ｅ.ｃｏｌｉ Ｋ１２ＤＨ
１／ｐＴＢ６３７(ＩＦＯ １４５１０，ＦＥＲＭ Ｂ
Ｐ−１３７１）を得た。 【００３４】(2)ｃＤＮＡの塩基配列の決定 上記(1)で得た菌株Ｅ.ｃｏｌｉ Ｋ１２ＤＨ１／ｐＴＢ
６３７(ＩＦＯ １４５１０，ＦＥＲＭ ＢＰ−１３７
１）よりプラスミドＤＮＡ（ ｐＴＢ６３７）をアルカ
リ法〔Birnboim, H.C. & Doｌy,J.「ヌクレイック アシ
ッズ リサーチ（Nucleic Acids Res.),」1,1513,(197
9)〕によって抽出精製した。このプラスミドに含まれる
ｃＤＮＡ部分は全長約１．２Ｋｂｐであり、その簡単な
制限酵素地図を図３に示した。このｃＤＮＡ部分の塩基
配列の一部をジデオキシヌクレオチド合成鎖停止法〔Me
ssing J.ら「ヌクレイック アシッズ リサーチ（Nucleic
Acids Res.),」９,309,(1981)〕によって決定した。決
定された塩基配列およびその配列より推測されるアミノ
酸配列を図４に示した。推測されたアミノ酸配列は、参
考例２の(2)で示したラットＣキナーゼｃＤＮＡより推
測されるアミノ酸配列に高い相同性を示しており、プラ
スミドｐＴＢ６３７に含まれるｃＤＮＡがヒトＣ−キナ
ーゼｃＤＮＡであることを示している（図５及び図６参
照）。なお、図５は、図２を基に図４の第２６番目のア
ミノ酸（Ａｌａ）から重ね合わせ、アミノ酸の相同性を
みたものであり、囲みが同一アミノ酸を示す。また図６
は、図４を基に、図４の第２６番目のアミノ酸（Ａｌ
ａ）の先頭のコドンＧに図２の先頭のコドンを重ね合わ
せ、塩基配列の相同性をみたものであり、囲みが同一塩
基を示す。 【００３５】参考例４ （１）ラット脳 ｍＲＮＡ由来のcＤＮＡライブラリーの
作製 ラット脳より、ＲＮＡをグアニジンイソチオシアネート
法〔Chirgwimら,「バイオケミストリー（Biochemistr
y)」,18,5294,1978〕 を用いて抽出した。このＲＮＡよ
りポリ(A)ＲＮＡをオリゴdＴセルロースカラムクロマト
グラフィーにより精製した〔AvivとLader,「プロシージ
ング・オブ・ナショナル・アカデミー・オブ・サイエンス(Pr
oc.Natl.Acad.Sci.U.S.A)69,1408,(1972) 〕。このポリ
(A)ＲＮＡを鋳型としてｃＤＮＡライブラリーを、Watso
nとJackson の方法〔Watson.C.J.and Jackson,J.F.,Ｄ
ＮＡクローニング・ア・プラクティカル・アプローチ (Ｄ
ＮＡCloning A Practical approach)IRL press,Oxford,
p79,1985〕に従って、λファージベクターλgt10(Huyn
h,T.V.ら、ＤＮＡクローニング・ア・プラクティカル・ア
プローチ,IRL press,Oxford,p49,1985)を用いて作成し
た。10μgのポリ(A)ＲＮＡより出発して、約1.5×10⁶個
のクローンよりなる大腸菌 Ｃ６００，ＨｆｌＡ（Huynh
T,Vら、同上)を宿主としたｃＤＮＡライブラリーを得
ることができた。 【００３６】（２）ラットＣキナーゼ cＤＮＡを含むフ
ァージの単離とそのＤＮＡ塩基配列の決定 上記ファージｃＤＮＡライブラリーを大腸菌Ｃ６００，
ＨｆｌＡを宿主として、軟寒天プレート上に、約 1× 1
0⁵クローンずつ、10枚まき、これを、ニトロセルロース
フィルター (ミリポア社，HATFフィルター)上に移した
後、0.5Ｎ ＮａＯＨ 溶液でとかし露出変性したファー
ジＤＮＡをフィルター上に乾燥固定した。（ Maniatis
ら,「モレキュラー・クローニング(Moleculler Cloning)」
Cold Spring Harbor Laboratory,p320,1982)。一方、
参考例２の(2)で得られたＥ.ｃｏｌｉ．Ｋ１２，ＤＨ１
／ｐＴＢ６３８（ＩＦＯ１４５１４，ＦＥＲＭ ＢＰ−
１３７２)を制限酵素 PstＩで切断して得られる0.7 Kb
のＤＮＡ断片をニックトランスレーション法( Mainatis
ら,同上 p109)により³²Ｐ標識し、プローブとした。標
識したプローブと、ＤＮＡを固定したフィルターを、標
識プローブを含む、5×SSPE（0.9Ｍ ＮａＣｌ 50mMリン
酸ナトリウム緩衝液(ｐＨ７．４),５mM EDTA),50％ ホ
ルムアミド，5× Denhardt's，0.1％ SDS,100μg/ｍｌ
変性サケ精子ＤＮＡ溶液10ｍｌ中で42℃，16時間, 会合
反応を行い、反応後、フィルターを２×SSC(１×SSC＝
0.15Ｍ ＮａＣｌ,0.015Ｍクエン酸ナトリウム),0.1％SD
S溶液中で室温で30分ずつ２回,1×SSC，0.1％SDS溶液中
で、68℃で30分ずつ２回洗浄した。洗浄したフィルター
を乾燥させた後、ラジオオートグラムをとり、プローブ
と反応するクローンを検索した。この方法により得られ
たクローンλCKR107よりDavisらの方法 (Davisら,「アド
バンスト・バクテリアル・ジェネティクス(AdvancedBacte
rial Genetics)」,Cold Spring Harbor Laboratory 198
0)によりファージＤＮＡを抽出し、これより制限酵素Bg
lIIとEcoRＩの切断により、約0.5KbのＤＮＡ断片を切り
出し、上記と同様の方法により³²Ｐ標識し、再び、上記
と同様の方法により会合反応をテリアル・ジェネティク
ス(Advanced Bacterial Genetics)」,Cold Spring Harbo
r Laboratory 1980) によりファージＤＮＡを抽出し、
これより制限酵素 BglIIとEcoRＩの切断により、約 0.5
KbのＤＮＡ断片を切り出し、上記と同様の方法により³²
Ｐ標識し、再び、上記と同様の方法により会合反応を行
い、プローブと反応するクローンの検索を行った。以上
の検索の結果得られた数種類のクローンのｃＤＮＡ部分
の塩基配列をジデオキシヌクレチオド合成鎖停止法〔Me
ssingら,「ヌクレイック・アシッズ・リサーチ (Nucleic A
cids Reserch)」 9,309,(1981)〕 によって決定した。こ
の結果、得られたファージクローンの cＤＮＡ部分を組
み合わせることにより、ラット脳Ｃキナーゼのコード領
域全体をカバーすることができた。塩基配列より予想さ
れるアミノ酸配列を調べることにより、ラット脳Ｃキナ
ーゼには、Ｃ末端部分のみ異なるアミノ酸残基数６７１
〔Ｉ型（β−１）〕および６７３〔II型（β−２）〕の
少くとも２種類の分子型が存在することが判明した。図
７に得られたクローンの重なりの様子、図８に全塩基配
列および、これより予想されるアミノ酸配列を示した。 【００３７】（３）ラット脳Ｃキナーゼの動物細胞発現
用プラスミドの構築 図７に示した、ファージクローンλCKR152ＤＮＡを制限
酵素 EcoRＩで部分分解し、1.4KbのｃＤＮＡを分離し
た。このＤＮＡを、特開昭 61−63282号公報に記載のプ
ラスミドpＴＢ106のインターロイキン−２遺伝子領域の
５′末端側のＰstＩ切断部位及び３′末端側のＢamＨＩ
切断部位をEcoRＩに変換しインターロイキン−２遺伝子
領域を除去したプラスミド pＴＢ389を制限酵素 EcoRＩ
で切断し５′末端のリン酸基をアルカリ性ホスファター
ゼ処理により除去したものと混合し、Ｔ4 ＤＮＡリガー
ゼを作用させて、プラスミドpＴＢ648を構築した。さら
に、このプラスミドpＴＢ648をEcoRＩで部分分解し、c
ＤＮＡの５′末端側937bpを含む 4.0kbのＤＮＡを分離
し、５′末端のリン酸基を除去した。このＤＮＡを、第
７図に示したファージクローンλCKR 107を制限酵素 Ec
oRＩで部分分解し、分離した2.5kbのcＤＮＡまたは、フ
ァージクローンλCKR108を EcoRＩで分解し、分離した
2.3 kbの cＤＮＡと混合し、Ｔ4 ＤＮＡリガーゼを作用
させて、ラット脳Ｃキナーゼのコード領域全体をカバー
する動物細胞形質転換用プラスミドpＴＢ651及び pＴＢ
650を構築した。 【００３８】別に、動物細胞用インターロイキン−２遺
伝子発現ベクターpＴＢ106〔特開昭61−63282号公報〕
を制限酵素ＨgiＡＩで切断し、インターロイキン−２遺
伝子リーダー配列を含む1.0kb ＤＮＡ断片を分離した。
Ｔ4 ＤＮＡポリメラーゼ反応により付着末端を平滑化
し、EcoRＩリンカーＣＣＧＧＡＡＴＴＣＣＧＧをＴ4 Ｄ
ＮＡリガーゼにより付加したのち、EcoRＩおよび HindI
II で完全消化をおこなってＳＶ40ＤＮＡ由来の配列
(プロモーターおよびスプライス部位)と、IＬ−２遺伝
子リーダー配列からなる0.64kbＤＮＡ断片を分離した。
また、前記pＴＢ106を別にBamHＩおよび HindIIIで切断
し、プラスミドpＢＲ322に由来するＤＮＡの大腸菌での
複製のためのＤＮＡ複製開始部位と、アンピシリン耐性
遺伝子を含む配列およびＳＶ40ＤＮＡ由来のポリＡ付加
部位を含む2.6kbＤＮＡ断片を分離した。一方、ヒト表
皮細胞増殖因子（ＥＧＦ）合成遺伝子がクローニングさ
れたプラスミドpＴＢ361〔特開昭 61−88881号公報〕
から、ヒトＥＧＦをコードする0.18kb EcoRＩ-BamHＩＤ
ＮＡ断片を製造した。これら３種のＤＮＡ断片を、Ｔ4
ＤＮＡリガーゼ反応により結合させ、プラスミドpＴＢ4
06を構築した。上記で得られたプラスミドpＴＢ406を、
ＳＶ40プロモーター上流に存在するClaＩおよびHindIII
で切断し、pＴＢ314〔特開昭 61−63282 号公報〕 から
分離精製したエーベルソンマウス白血病ウィルス(Ａ−
ＭuＬＶ）ＬＴＲ領域を含む 1.1kbClaＩ−HindIII ＤＮ
Ａ断片を挿入して、プラスミドpＴＢ505を構築した。さ
らに、プラスミドpＴＢ505を制限酵素 ClaＩおよびBamH
Ｉで切断し、1.5kbのＭuＬＶ−ＬＴＲを含むＤＮＡを分
離した。このＤＮＡをプラスミドpＴＢ650またはプラス
ミド pＴＢ651の ClaＩ・BamHＩＤＮＡ断片と混合し、Ｔ
4 ＤＮＡリガーゼを作用させることにより、ＭuＬＶ−
ＬＴＲ を上流にもつ動物細胞形質転換用プラスミドpＴ
Ｂ652及びプラスミド pＴＢ653をそれぞれ構築した(図
９）。 【００３９】（４）上記(２)で得られたプラスミドpＴ
Ｂ652またはプラスミドpＴＢ653を用い、大腸菌（E.col
i)Ｋ12ＤＨ１を「プロシージング・オブ・ナショナル・アカ
デミー・オブ・サイエンス(Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.
A.)」,69,2110(1972)に記載の方法に従って形質転換し、
形質転換体 E.coli Ｋ12DH１/pＴＢ652(ＩＦＯ 14539，
ＦＥＲＭ ＢＰ−１３７３）および E.coli Ｋ12ＤＨ１/
pＴＢ653(ＩＦＯ 14540,ＦＥＲＭ ＢＰ−１３７４）を
それぞれ得た。 【００４０】（５）ラット脳ＣキナーゼｃＤＮＡの動物
細胞での発現：サルCOS-７細胞〔「セル(Ｃell)」,27,279
-288(1981)]を5%胎児牛血清を含むＤＭＥＭ培地で単層
培養（ファルコン径100 mmプラスチックディシュ５枚)
した後、同培地で培地交換した。交換の４時間後に公知
の方法〔Grahamら、「ヴィロロジー(Virology」,52，456
(1973)〕に従いディシュ1枚当りプラスミドpTB652また
はpTB653のＤＮＡ 30μgを含むカルシウムホスフェート
ゲルを調製し細胞に添加し、ｐTB652感染細胞またはpTB
653感染細胞をそれぞれ得た。さらにその４時間後グリ
セロール処理して５％胎児牛血清を含む培地で上記ｐTB
652感染COS-７細胞またはTB653感染COS-７細胞の培養を
続けた。70〜72時間後に培養上清をすて、細胞を1.5mｌ
の0.25Mショ糖、20mM Tris HCｌ(pH7.5),10mM EGTA,2mM
EDTA,20μg/mｌリューペプチン緩衝液中に懸濁させテ
フロンホモジナイザーで細胞をホモジナイズした。この
ホモジネートをベックマン100.2ローターを用いて55000
rpm, 60分間遠心することにより、細胞質分画を得た。p
TB652感染細胞またはpTB653感染細胞のそれぞれより得
たこの分画について、公知の方法[Ki-kkawaら、「ジャー
ナル・オブ バイオロジカル・ケミストリー(J.Biol.Che
m.)」,257.13341(1982)]に従ってＣキナーゼ活性を測定
し、タンパク量１mg当りの活性値を測定した。表１に示
したように、pTB652感染COS-７細胞またはpTB653感染CO
S-７細胞の細胞質分画には、対照実験として用いた非感
染細胞の細胞質分画にくらべて、約３倍程度のＣキナー
ゼ活性が検出された。 【００４１】 【表１】 【００４２】(６）感染細胞より得られたＣキナーゼの
解折：上記の方法で得られた細胞質分画を、それぞれ６
倍量の 0.5mＭ ＥＧＴＡ，0.5mＭ ＥＤＴＡ 10mＭ ２−
メルカプトエタノールを含む20mＭトリス塩酸緩衝液
（ｐＨ7.5)（緩衝液Ａ）で希釈した後、ファルマシアＦ
ＰＬＣ−Ｍono Ｑカラム（0.5×５cm,ファルマシアＨＲ
5／5 ）にのせた。緩衝液Ａでカラムを洗った後、20mｌ
の０−0.6Ｍ ＮaＣｌを含む緩衝液Ａの直線濃度勾配に
より、Ｃキナーゼ活性を溶出した。図１０に示すよう
に、ｐＴＢ652 感染細胞およびｐＴＢ653 感染細胞由来
の検体においては、非感染細胞由来のそれに比べ、明ら
かに多量の酵素活性が検出された。Ｍono Ｑカラムより
溶出された活性画分（ 各30μg）をLaemmliの方法〔 La
emmli，U．K．(1970)「ネイチャー(Nature)」 227 680−6
85〕により8.5％ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳
動した後、Towbinらの方法〔Towbin H．ら(1979)「プロ
シージング・オブ・ザ・ナショナル・アカデミー・オブ
・サイエンス」（Proc.Natl.Accid.Sci.U.S.A.）76,435
0−4354〕により、ニトロセルロースフィルターに移し
た。これを４℃で 150mＭ ＮaＣｌ,５％カゼイン、20％
正常ウマ血清を含む10mＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ7.5）
中で一晩置き、次に、150 mＭ ＮaＣｌ,１％カゼインお
よび抗Ｃキナーゼ抗体〔P．J Parker博士より分与、Cou
ssensL.S.(1986)「サイエンス」(Science)233,859−86
6〕を含む10mＭトリス塩酸緩衝液（pＨ7.5）中にて、室
温で１時間放置した。0.05％Tween 20,150mＭ ＮaＣｌ
を含む10mＭトリス塩酸緩衝液（pＨ7.5）中でフィルタ
ーを洗った後、１％カゼイン、150 mＭ ＮaＣｌ、0.1μ
Ｃi／mｌ¹²⁵ＩプロテインＡを含むトリス塩酸緩衝液中
にて、室温で1.5時間放置した。フィルターを上記と同
様にして洗った後、Ｘ線フィルムに抗体と反応したタン
パクバンドを露光させた。第11図に示すように、感染細
胞由来の検体では、ラット脳より精製したＣキナーゼと
同じ位置に、明らかに抗体と反応するタンパクバンドが
検出された。 【００４３】(７）感染細胞より得られたＣキナーゼの
精製：ｐＴＢ652 の５′非翻訳領域を短くしたｐＴＢ70
7(55塩基対の５′−非翻訳領域をもつ）およびｐＴＢ65
3の５′非翻訳領域を短くしたｐＴＢ708（55塩基対の
５′−非翻訳領域をもつ）を感染させたCOS-７細胞にお
いても、上記と同様の結果が得られた。そこでｐＴＢ70
7およびｐＴＢ708感染COS-７細胞（各100mm シャーレ50
枚分）より上記と同様の方法にて、細胞質画分を得た
後、Ｍono Ｑカラム(１×10cm,ファルマシアＨＲ10／1
0）により活性画分を分取し、さらにヒドロキシルアパ
タイトカラムにより部分精製した。Ｍono Ｑカラムの活
性画分を等量の0.5mＭ ＥＧＴＡ，0.5mＭ ＥＤＴＡ10％
グリセロール、10mＭメルカプトエタノールを含む20m
Ｍリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ7.5)(緩衝液Ｂ）で希釈
した後、ハイドロキシルアパタイトカラム（0.78×10c
m,KOKEN Type S）を用いて、ファルマシアＦＰＬＣシス
テムにより、20−280mＭリン酸カリウムを含む緩衝液Ｂ
の直線濃度勾配により、Ｃキナーゼ活性を溶出させた。
図１２に示すように、ラット脳より精製したＣキナーゼ
は３つのピーク（図１２のＤの左よりピーク１,２,３）
に分かれるのに対して、非感染細胞由来の検体ではピー
ク３のみの活性しか観察されなかった。一方、感染細胞
由来の検体では、ピーク２およびピーク３に対応する活
性が観察された。このことより感染細胞においてはピー
ク２に対応するＣキナーゼ活性がプラスミドＤＮＡを感
染させることにより発現されたと考えられる。 【００４４】実施例１ （１）ラットＣキナーゼIII型（α型）ｃＤＮＡを含む
ファージの単離とそのＤＮＡ塩基配列の決定 参考例４（１）で得られたラット脳ｍＲＮＡ由来のｃＤ
ＮＡライブラリーを大腸菌Ｃ600、ＨflAを宿主として、
軟寒天プレート上に、約１×10⁵ クローンずつ10枚ま
き、これをニトロセルロースフィルター（ ミリポア
社、ＨＡＴＦフィルター）上に移した後、0.5Ｎ ＮａＯ
Ｈ溶液でとかし露出変性したファージＤＮＡをフィルタ
ー上に乾燥固定した。一方、既に公知〔 Parkerら、サ
イエンス(Science) 233, 853-859（1986）〕のウシＣキ
ナーゼαのアミノ酸配列（アミノ酸No.162−170）に対
応する塩基配列を有するオリゴペプチド(5′ＴＣＣＧＴ
ＧＡＣＣＴＣＧＧＣＣＴＴＣＡＧＧＴＡＧＡＴ3′）を
化学合成し、この５′末端をＴ４ポリヌクレオチドキナ
ーゼ、〔γ-³²Ｐ〕ＡＴＰを用いて ³²Ｐで標識してラッ
トＣキナーゼIII型（α型）のスクリーニングプローブ
とした。 標識したプローブと、ＤＮＡを固定したフィ
ルターを標識プローブを含む、５×ＳＳＰＥ（ 0.9Ｍ
ＮaＣｌ50mＭリン酸ナトリウム緩衝液ｐＨ７．４)，５
×Denhardts，0.1％ＳＤＳ，100μg／mｌ変性サケ精子
ＤＮＡ溶液10mｌ中で42℃、16 時間会合反応を行い、反
応後、フィルターを６×ＳＳＣ(１×ＳＳＣ＝0.15Ｍ Ｎ
aＣｌ、0.015Ｍクエン酸ナトリウム）0.1％ＳＤＳ溶液
中で室温で 30分ずつ２回、さらに同溶液で60℃で30分
間ずつ２回洗浄した。洗浄したフィルターを乾燥させた
後、ラジオオートグラムをとり、プローブと反応するク
ローンを検索した。この方法により得られたクローン
λCKRα５のｃＤＮＡ部分の塩基配列をジデオキシヌク
レオチド合成鎖停止法によって決定した。図１３にラッ
トＣキナーゼIII型（α型）のアミノ酸コード領域の塩
基配列、およびこれより予想されるアミノ酸配列を示し
た。 【００４５】（２）ラットＣキナーゼIII型（α型）ｃ
ＤＮＡの動物細胞での発現 λCKRα５を制限酵素ＥcoＲＩで分解し、約3.1KbのｃＤ
ＮＡ部分を分離した。一方、参考例４(3)で得られたｐ
ＴＢ 652をＥcoＲＩで分解し、ｃＤＮＡ部分を除いた約
4.3KbのＤＮＡ断片を分離した。これら２つのＤＮＡ断
片をＴ４ＤＮＡリガーゼで連結し、動物細胞発現用プラ
スミド ｐＴＢ 755を構築した。このｐＴＢ755より大腸
菌形質転換体Ｅ．coil ＤＨ1／ｐＴＢ755（ＩＦＯ １４
６１２，ＦＥＲＭ ＢＰ−１３８２）を得た。このプラ
スミド ｐＴＢ755を参考例４(5）に示した方法により、
サルＣＯＳ７細胞に感染させた後、細胞質分画を得た。
この細胞質分画を参考例４(7）に示した方法により、Ｍ
ono Ｑカラム、および、ハイドロキシルアパタイトカラ
ムクロマトグラフィーを行い、発現されたラットＣキナ
ーゼIII型（α型）のカラムクロマトグラフィー上での
挙動を調べた（図１４）。 【００４６】

【図面の簡単な説明】 【図１】参考例１の（1)でラットＣ−キナーゼから得ら
れた４種類のペプチド分画分のアミノ酸配列を示す図で
ある。 【図２】ラットＣ−キナーゼｃＤＮＡ部分の塩基配列お
よび該塩基配列より予測されるアミノ酸配列を示した図
である。 【図３】ヒトＣ−キナーゼｃＤＮＡ部分の簡単な制限酵
素図である。 【図４】ヒトＣ−キナーゼｃＤＮＡの一部の塩基配列お
よびその配列より推測されるアミノ酸配列を示した図で
ある。 【図５】ラットＣ−キナーゼｃＤＮＡ部分の塩基配列お
よび該塩基配列より予測されるアミノ酸配列（図２）と
ヒトＣ−キナーゼｃＤＮＡの一部の塩基配列およびその
配列より推測されるアミノ酸配列（図４）との相同関係
を示す図である。 【図６】ラットＣ−キナーゼｃＤＮＡ部分の塩基配列お
よび該塩基配列より予測されるアミノ酸配列（図２）と
ヒトＣ−キナーゼｃＤＮＡの一部の塩基配列およびその
配列より推測されるアミノ酸配列（図４）との相同関係
を示す図である。 【図７】参考例４で得られた２つの型のラット脳Ｃ−キ
ナーゼクローンの重なりの様子を示す図である。 【図８】ラット脳ＣキナーゼＩ型（β−１）及びII型
（β−２）のｃＤＮＡの全塩基配列および、これより予
想されるアミノ酸配列を示す。四角で囲った部分は、II
型（β−２）のアミノ酸配列第６２２〜６７３番目に相
当する部分を示す。 【図９】ラット脳Ｃキナーゼの動物発現用プラスミドの
構築を示す。 【図１０】感染細胞または非感染細胞由来の細胞質画分
の Ｍono Ｑカラムクロマトグラフィーにおける、Ｃキ
ナーゼ活性の挙動を示している。 Ａ:ｐＴＢ652感染細胞由来、Ｂ:ｐＴＢ653感染 細胞由
来、Ｃ:非感染細胞由来 【図１１】ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動で分
画した抗体タンパクの抗Ｃキナーゼ抗体を反応させた後
のオートラジオグラムを示している。 ａ:ラット脳より精製したＣキナーゼ、ｂ:非感 染細胞
由来、ｃ:ｐＴＢ652感染細胞由来、ｄ:ｐＴＢ653感染細
胞由来 【図１２】感染細胞または非感染細胞由来の細胞質画分
のＭono Ｑカラム上での活性画分をハイドロキシルアパ
タイトカラムクロマトグラフィーした時のＣキナーゼ活
性の挙動を示している。 Ａ:ｐＴＢ707感染細胞由来、Ｂ:ｐＴＢ708感染 細胞由
来、Ｃ:非感染細胞由来、Ｄ:ラット脳Ｃ キナーゼ 【図１３】ラットＣキナーゼIII型（α型）のタンパク
コード領域の塩基配列および、それより推測されるアミ
ノ酸配列を示す。 【図１４】感染細胞または非感染細胞由来の細胞質画分
のＭono Ｑカラム上での活性画分をハイドロキシルアパ
タイトカラムクロマトグラフィーした時のＣキナーゼ活
性の挙動を示している。 Ａ:ラット脳由来Ｃキナーゼ、Ｂ:ｐＴＢ755 感染細胞由
来〔ＣキナーゼIII型（α型）発現細胞由来〕、Ｃ:ｐＴ
Ｂ707感染細胞由来〔ＣキナーゼＩ型（β−１）発現細
胞由来〕、Ｄ:ｐＴＢ756 感染細胞由来〔Ｃキナーゼγ
型発現細胞由来、(Knopfら セル(Cell) 46, 491-502（1
986)〕、Ｅ:非感染細胞由来。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (31)優先権主張番号 特願昭62−40160 (32)優先日 昭62(1987)２月25日 (33)優先権主張国 日本（ＪＰ） (72)発明者 西塚 泰美 兵庫県芦屋市平田町３番６号 (56)参考文献 Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．260（18) ｐ．10039−10043（1985) (58)調査した分野(Int.Cl.⁶，ＤＢ名) C12N 15/54 C12N 9/12 ＢＩＯＳＩＳ（ＤＩＡＬＯＧ) ＣＡ（ＳＴＮ) ＷＰＩ（ＤＩＡＬＯＧ)

Claims (1)

1. (57)【特許請求の範囲】 １．以下の式（Ｉ）で示されるアミノ酸配列を有するポ
   リペプチドであるラット蛋白質リン酸化酵素Ｃをコ−ド
   する塩基配列を含有するＤＮＡを含有するベクターで形
   質転換された形質転換体を培地に培養し、培養物中に該
   ラット蛋白質リン酸化酵素Ｃを生成蓄積せしめ、これを
   採取することを特徴とする該酵素の製造法： （Ｉ） Met Ala Asp Val Tyr Pro Ala Asn Asp Ser Thr Ala Ser Gln Asp Val Ala Asn Arg Phe Ala Arg Lys Gly Ala Leu Arg Gln Lys Asn Val His Glu Val Lys Asp His Lys Phe Ile Ala Arg Phe Phe Lys Gln Pro Thr Phe Cys Ser His Cys Thr Asp Phe Ile Trp Gly Phe Gly Lys Gln Gly Phe Gln Cys Gln Val Cys Cys Phe Val Val His Lys Arg Cys His Glu Phe Val Thr Phe Ser Cys Pro Gly Ala Asp Lys Gly Pro Asp Thr Asp Asp Pro Arg Ser Lys His Lys Phe Lys Ile His Thr Tyr Gly Ser Pro Thr Phe Cys Asp His Cys Gly Ser Leu Leu Tyr Gly Leu Ile His Gln Gly Met Lys Cys Asp Thr Cys Asp Met Asn Val His Lys Gln Cys Val Ile Asn Val Pro Ser Leu Cys Gly Met Asp His Thr Glu Lys Arg Gly Arg Ile Tyr Leu Lys Ala Glu Val Thr Asp Glu Lys Leu His Val Thr Val Arg Asp Ala Lys Asn Leu Ile Pro Met Asp Pro Asn Gly Leu Ser Asp Pro Tyr Val Lys Leu Lys Leu Ile Pro Asp Pro Lys Asn Glu Ser Lys Gln Lys Thr Lys Thr Ile Arg Ser Thr Leu Asn Pro Gln Trp Asn Glu Ser Phe Thr Phe Lys Leu Lys Pro Ser Asp Lys Asp Arg Arg Leu Ser Val Glu Ile Trp Asp Trp Asp Arg Thr Thr Arg Asn Asp Phe Met Gly Ser Leu Ser Phe Gly Val Ser Glu Leu Met Lys Met Pro Ala Ser Gly Trp Tyr Lys Leu Leu Asn Gln Glu Glu Gly Glu Tyr Tyr Asn Val Pro Ile Pro Glu Gly Asp Glu Glu Gly Asn Val Glu Leu Arg Gln Lys Phe Glu Lys Ala Lys Leu Gly Pro Ala Gly Asn Lys Val Ile Ser Pro Ser Glu Asp Arg Lys Gln Pro Ser Asn Asn Leu Asp Arg Val Lys Leu Thr Asp Phe Asn Phe Leu Met Val Leu Gly Lys Gly Ser Phe Gly Lys Val Met Leu Ala Asp Arg Lys Gly Thr Glu Glu Leu Tyr Ala Ile Lys Ile Leu Lys Lys Asp Val Val Ile Gln Asp Asp Asp Val Glu Cys Thr Met Val Glu Lys Arg Val Leu Ala Leu Leu Asp Lys Pro Pro Phe Leu Thr Gln Leu His Ser Cys Phe Gln Thr Val Asp Arg Leu Tyr Phe Val Met Glu Tyr Val Asn Gly Gly Asp Leu Met Tyr His Ile Gln Gln Val Gly Lys Phe Lys Glu Pro Gln Ala Val Phe Tyr Ala Ala Glu Ile Ser Ile Gly Leu Phe Phe Leu His Lys Arg Gly Ile Ile Tyr Arg Asp Leu Lys Leu Asp Asn Val Met Leu Asp Ser Glu Gly His Ile Lys Ile Ala Asp Phe Gly Met Cys Lys Glu His Met Met Asp Gly Val Thr Thr Arg Thr Phe Cys Gly Thr Pro Asp Tyr Ile Ala Pro Glu Ile Ile Ala Tyr Gln Pro Tyr Gly Lys Ser Val Asp Trp Trp Ala Tyr Gly Val Leu Leu Tyr Glu Met Leu Ala Gly Gln Pro Pro Phe Asp Gly Glu Asp Glu Asp Glu Leu Phe Gln Ser Ile Met Glu His Asn Val Ser Tyr Pro Lys Ser Leu Ser Lys Glu Ala Val Ser Ile Cys Lys Gly Leu Met Thr Lys His Pro Ala Lys Arg Leu Gly Cys Gly Pro Glu Gly Glu Arg Asp Val Arg Glu His Ala Phe Phe Arg Arg Ile Asp Trp Glu Lys Leu Glu Asn Arg Glu Ile Gln Pro Pro Phe Lys Pro Lys Val Cys Gly Lys Gly Ala Glu Asn Phe Asp Lys Phe Phe Thr Arg Gly Gln Pro Val Leu Thr Pro Pro Asp Gln Leu Val Ile Ala Asn Ile Asp Gln Ser Asp Phe Glu Gly Phe Ser Tyr Val Asn Pro Gln Phe Val His Pro Ile Leu Gln Ser Ala Val 。 【請求項２】ラット蛋白質リン酸化酵素Ｃをコードする
   塩基配列が式（ｉ）で示される塩基配列を有する請求項
   １記載のラット蛋白質リン酸化酵素Ｃの製造法： （ｉ） ATGGCTGACG TTTACCCGGC CAACGACTCC ACGGCGTCTC AGGACGTGGC CAACCGCTTC GCCCGCAAAG GGGCGCTGAG GCAGAAGAAC GTGCATGAGG TGAAAGACCA CAAATTCATC GCCCGCTTCT TCAAGCAACC CACCTTCTGC AGCCACTGCA CCGACTTCAT CTGGGGGTTT GGAAAACAAG GCTTCCAGTG CCAAGTTTGC TGTTTTGTGG TTCACAAGAG GTGCCATGAG TTTGTTACTT TCTCTTGTCC GGGTGCGGAT AAGGGACCTG ACACTGATGA CCCCAGAAGC AAGCACAAGT TCAAAATCCA CACCTATGGA AGCCCTACCT TCTGTGATCA CTGTGGGTCC CTGCTCTACG GACTTATCCA CCAAGGGATG AAATGCGACA CCTGCGACAT GAATGTTCAC AAGCAGTGCG TGATCAATGT CCCCAGCCTC TGCGGAATGG ATCACACAGA GAAGAGGGGG CGGATTTACC TGAAGGCAGA GGTCACAGAT GAAAAGCTGC ACGTCACCGT ACGAGATGCA AAAAATCTAA TCCCTATGGA TCCAAATGGG CTTTCGGATC CTTACGTGAA GCTGAAACTT ATTCCTGACC CCAAGAATGA GAGCAAACAG AAAACCAAAA CCATCCGATC CACACTGAAC CCTCAGTGGA ATGAGTCCTT CACGTTCAAA TTAAAACCTT CAGACAAAGA CCGGCGACTG TCCGTAGAAA TCTGGGACTG GGATCGGACG ACACGGAATG ACTTCATGGG CTCCCTTTCC TTCGGCGTCT CAGAGCTGAT GAAGATGCCA GCCAGTGGAT GGTACAAGTT GCTCAACCAA GAGGAGGGTG AATACTACAA TGTGCCCATT CCAGAAGGAG ATGAAGAAGG CAACGTGGAA CTCAGGCAGA AGTTCGAGAA AGCCAAGCTG GGCCCCGCTG GAAACAAAGT CATCAGCCCT TCAGAAGACA GGAAGCAGCC ATCTAACAAC CTGGACAGGG TGAAACTCAC AGACTTCAAC TTCCTCATGG TGCTGGGGAA GGGGAGTTTT GGAAAGGTGA TGCTTGCTGA CAGGAAGGGA ACAGAGGAGC TGTACGCCAT CAAAATCCTG AAGAAGGACG TGGTGATCCA GGATGACGAC GTGGAGTGCA CCATGGTGGA GAAGCGGGTT CTGGCCCTGC TCGACAAGCC CCCGTTCCTG ACACAGCTGC ACTCCTGCTT CCAGACAGTG GACCGGCTGT ACTTCGTCAT GGAATACGTC AACGGTGGGG ACCTCATGTA CCACATTCAG CAAGTCGGAA AATTTAAGGA GCCACAAGCA GTATTCTATG CAGCCGAGAT CTCCATCGGA CTGTTCTTTC TTCACAAAAG AGGAATCATT TACAGGGATC TGAAGCTGGA CAACGTCATG CTGGACTCAG AAGGGCATAT CAAAATCGCC GACTTCGGGA TGTGCAAGGA ACACATGATG GACGGGGTCA CGACCAGGAC CTTCTGTGGG ACTCCGGATT ACATTGCCCC AGAGATAATC GCTTACCAGC CATATGGAAA GTCTGTGGAC TGGTGGGCGT ACGGCGTGCT CCTGTATGAG ATGCTAGCTG GGCAGCCTCC GTTCGATGGC GAAGACGAAG ATGAACTGTT TCAGTCTATA ATGGAGCACA ATGTGTCCTA CCCCAAATCC TTGTCCAAGG AAGCTGTCTC CATCTGCAAA GGGCTTATGA CCAAACACCC TGCCAAGCGG CTGGGCTGCG GGCCCGAGGG GGAAAGGGAT GTCAGAGAGC ATGCCTTCTT TAGGAGGATC GACTGGGAGA AGTTGGAGAA CAGGGAGATC CAACCGCCAT TCAAGCCCAA AGTGTGCGGC AAAGGAGCAG AAAACTTTGA CAAGTTCTTC ACACGAGGGC AGCCTGTCTT AACACCACCA GATCAGCTGG TCATCGCTAA CATAGACCAG TCTGATTTTG AAGGGTTCTC GTATGTCAAC CCCCAGTTTG TGCACCCAAT CTTGCAAAGT GCAGTATGA 。