JP2759035B2 - 単純ヘルペスウイルス感染防御用ワクチン - Google Patents
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Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は感染病及び分子生物学の
分野に関する。
分野に関する。
【0002】
【従来の技術】A.単純ヘルペスウイルス型1(HSV
−1)グリコプロテインE グリコプロテインE(gE)は10の報告された単純ヘル
ペスウイルス型1(HSV−1)グリコプロテインの1つ
である。HSV−1感染細胞において、gEは59KDa
の分子量を有する非グリコシル化ペプチドとして合成さ
れる。非グリコシル化ポリペプチドは切断され、部分的
にグリコシル化されて約65kDaの前駆体gE(pgE)を
生成し、次いでこれは約80kDaの分子量を有する熟成
形のgEまでさらにグリコシル化される。
−1)グリコプロテインE グリコプロテインE(gE)は10の報告された単純ヘル
ペスウイルス型1(HSV−1)グリコプロテインの1つ
である。HSV−1感染細胞において、gEは59KDa
の分子量を有する非グリコシル化ペプチドとして合成さ
れる。非グリコシル化ポリペプチドは切断され、部分的
にグリコシル化されて約65kDaの前駆体gE(pgE)を
生成し、次いでこれは約80kDaの分子量を有する熟成
形のgEまでさらにグリコシル化される。
【0003】10のHSVグリコプロテインはウイルス
の表面に位置し、その幾らかは、HSIV−1感染への
液性(抗体)及び細胞性免疫応答の1次インヂューサー及
び標的であると報告されている。一つの研究では、ブラ
ックローズらは、グリコプロテインB及びDが高中和抗
体力価を誘導し、潜伏ヘルペス感染から保護することを
示した(文献1)。しかしながら彼等は又、グリコプロテ
インG、H及びIを発現したワクチニアが免疫マウスに
おいて保護応答を生成しないこと(文献1)、及びgEを
発現したワクチニアが、HSVに対し非常に弱い中和抗
体応答のみを示すことを見出した。ブラックローズ等は
またワクチニアウイルスにより発現されたgEのワクチ
ン接種は潜伏感染の確立に対して保護しないし、致死H
SV−1攻撃に対してマウスを保護しないことも発見し
た(文献1)。他の研究では、パラ等は補体の存在におい
てのみ、免疫親和性精製gEに対する抗体がHSV−1
感染性を中和することを見出した。しかし、さらに中和
力価は低く、中和における抗gE抗体の役割の程度は測
定されなかった(文献2)。
の表面に位置し、その幾らかは、HSIV−1感染への
液性(抗体)及び細胞性免疫応答の1次インヂューサー及
び標的であると報告されている。一つの研究では、ブラ
ックローズらは、グリコプロテインB及びDが高中和抗
体力価を誘導し、潜伏ヘルペス感染から保護することを
示した(文献1)。しかしながら彼等は又、グリコプロテ
インG、H及びIを発現したワクチニアが免疫マウスに
おいて保護応答を生成しないこと(文献1)、及びgEを
発現したワクチニアが、HSVに対し非常に弱い中和抗
体応答のみを示すことを見出した。ブラックローズ等は
またワクチニアウイルスにより発現されたgEのワクチ
ン接種は潜伏感染の確立に対して保護しないし、致死H
SV−1攻撃に対してマウスを保護しないことも発見し
た(文献1)。他の研究では、パラ等は補体の存在におい
てのみ、免疫親和性精製gEに対する抗体がHSV−1
感染性を中和することを見出した。しかし、さらに中和
力価は低く、中和における抗gE抗体の役割の程度は測
定されなかった(文献2)。
【0004】これらの報告と対照的に、我々はバキュロ
ウイルス系において、HSV−1感染に対し強い保護免
疫応答を惹起しうるgEを発現した。事実、我々の組換
えバキュロウイルス発現gEによるワクチン接種は高中
和抗体力価、DTH応答を誘発し、マウスにおける致死
HSV−1攻撃を防御した。我々が得た中和抗体力価
は、パラ等により得られたそれらの免疫親和性精製gE
に対する力価より非常に高い(2)か、又はブラックロー
ズ等により得られたそれらのワクシニアにより発現され
たgEに対する力価より非常に高かった(1)。さらに、
バキュロウイルスにより発現されたgEに対する我々の
中和抗体力価は、低中和活性でもそれらの免疫親和性精
製gEと補体の存在を必要としたパラの結果(文献2)と
対照的に、部分的に補体依存であった。大量の高品質生
物活性gEを生成するこの能力はHSVに対する有効な
ワクチンの開発に重要である。
ウイルス系において、HSV−1感染に対し強い保護免
疫応答を惹起しうるgEを発現した。事実、我々の組換
えバキュロウイルス発現gEによるワクチン接種は高中
和抗体力価、DTH応答を誘発し、マウスにおける致死
HSV−1攻撃を防御した。我々が得た中和抗体力価
は、パラ等により得られたそれらの免疫親和性精製gE
に対する力価より非常に高い(2)か、又はブラックロー
ズ等により得られたそれらのワクシニアにより発現され
たgEに対する力価より非常に高かった(1)。さらに、
バキュロウイルスにより発現されたgEに対する我々の
中和抗体力価は、低中和活性でもそれらの免疫親和性精
製gEと補体の存在を必要としたパラの結果(文献2)と
対照的に、部分的に補体依存であった。大量の高品質生
物活性gEを生成するこの能力はHSVに対する有効な
ワクチンの開発に重要である。
【0005】B.DNA技術 組換えDNA及び関連技術は、治療又は予防HSVワク
チンに必要とされる大量の高品質生物活性HSVグリコ
プロテインEを有効に供給するのに適用できる。
チンに必要とされる大量の高品質生物活性HSVグリコ
プロテインEを有効に供給するのに適用できる。
【0006】DNA技術は、部分的に、複製の起原、1
又はそれ以上の表現型選択特質、発現プロモーター、異
種遺伝子挿入及び残留ベクターのDNA組換えによる複
製可能発現伝播体又は転置(transplacement)ベクターを
生成することを含む。得られる発現伝播体は形質転換に
より細胞内に導入され、大量の組換え伝播体が転換体を
生長させることにより得られる。遺伝子がコード化され
たDNAメッセージの転写及び翻訳を制御する部分に関
連して適正に挿入される場合、発現伝播体は、挿入遺伝
子がコードするポリペプチド配列を生成しうる。ポリペ
プチドを生成するこの方法は、“発現"と呼ばれる。得
られる生成物は宿主細胞を分解し、適当な精製方法によ
り生成物を回収することにより得られる。
又はそれ以上の表現型選択特質、発現プロモーター、異
種遺伝子挿入及び残留ベクターのDNA組換えによる複
製可能発現伝播体又は転置(transplacement)ベクターを
生成することを含む。得られる発現伝播体は形質転換に
より細胞内に導入され、大量の組換え伝播体が転換体を
生長させることにより得られる。遺伝子がコード化され
たDNAメッセージの転写及び翻訳を制御する部分に関
連して適正に挿入される場合、発現伝播体は、挿入遺伝
子がコードするポリペプチド配列を生成しうる。ポリペ
プチドを生成するこの方法は、“発現"と呼ばれる。得
られる生成物は宿主細胞を分解し、適当な精製方法によ
り生成物を回収することにより得られる。
【0007】原核及び真核生物を含む広範囲の宿主細胞
を用いることができる。微生物に加えて、脊椎動物であ
れ、非脊椎動物であれ、多細胞生物から導かれる細胞の
培養物も宿主として用いうる。我々の系は、バキュロウ
イルス、ポリヘドリンプロモーター系及び宿主細胞とし
ての昆虫細胞の使用を含み、大量の生物活性gEを生成
した。我々の認識によれば、我々はこの系でのgE発現
の最初である。本明細書で記載される文献は全て引例と
して明細書記載の一部とする。
を用いることができる。微生物に加えて、脊椎動物であ
れ、非脊椎動物であれ、多細胞生物から導かれる細胞の
培養物も宿主として用いうる。我々の系は、バキュロウ
イルス、ポリヘドリンプロモーター系及び宿主細胞とし
ての昆虫細胞の使用を含み、大量の生物活性gEを生成
した。我々の認識によれば、我々はこの系でのgE発現
の最初である。本明細書で記載される文献は全て引例と
して明細書記載の一部とする。
【0008】
【発明が解決しようとする課題】発明の要約 本発明は、組換えDNA技術によるHSV−1gEの生
成及びHSV−1及び/又はHSV−2感染を防御する
ワクチンにおける免疫原としてのその用途に関する。遺
伝的に設計された免疫原から造られたワクチンは、弱毒
化ウイルスから造られた慣用のワクチンよりも安全であ
る。というのは、レシピエントへの感染の危険がなく、
特にヘルペスウイルスについては、頸部癌の危険があっ
てはならないからである。別法として遺伝的に設計され
たグリコプロテイン又は蛋白生成物を受身免疫治療での
使用のための抗体を生成するのに用いうる。本発明は
又、目的の転置ベクターを含む形質転換細胞系及びHS
V−1gEを生成するその培養物にも関する。
成及びHSV−1及び/又はHSV−2感染を防御する
ワクチンにおける免疫原としてのその用途に関する。遺
伝的に設計された免疫原から造られたワクチンは、弱毒
化ウイルスから造られた慣用のワクチンよりも安全であ
る。というのは、レシピエントへの感染の危険がなく、
特にヘルペスウイルスについては、頸部癌の危険があっ
てはならないからである。別法として遺伝的に設計され
たグリコプロテイン又は蛋白生成物を受身免疫治療での
使用のための抗体を生成するのに用いうる。本発明は
又、目的の転置ベクターを含む形質転換細胞系及びHS
V−1gEを生成するその培養物にも関する。
【0009】
【課題を解決するための手段及び発明の効果】この目的
のために、我々はSf9細胞において高レベルのHSV
−1gEを発現する組換えバキュロウイルスを構築し
た。しかしながら我々は予期に反して我々の発現gEに
よるマウスのワクチン接種が高中和抗体力価、DTH応
答及び致死HSV−1攻撃に対する防御を起こすことを
見出した。従って、方法及び組成物は単一細胞宿主生物
におけるHSVgE遺伝子のクローニング及び発現のた
めに提供される。又、これらの新規単一細胞生物を培養
してHSVgE遺伝子生成物を生成する方法及び遺伝子
生成物の精製方法をも記載する。
のために、我々はSf9細胞において高レベルのHSV
−1gEを発現する組換えバキュロウイルスを構築し
た。しかしながら我々は予期に反して我々の発現gEに
よるマウスのワクチン接種が高中和抗体力価、DTH応
答及び致死HSV−1攻撃に対する防御を起こすことを
見出した。従って、方法及び組成物は単一細胞宿主生物
におけるHSVgE遺伝子のクローニング及び発現のた
めに提供される。又、これらの新規単一細胞生物を培養
してHSVgE遺伝子生成物を生成する方法及び遺伝子
生成物の精製方法をも記載する。
【0010】次いでヒト宿主に、好ましくは免疫誘導量
のgEのみを或いは1又はそれ以上のHSVグリコプロ
テイン又は蛋白と共に、全身性経路、腸内経路又は、眼
経路により接種する。ワクチンは、又、ワクチンのグリ
コプロテイン成分と共に、前又は後に、投与される1又
はそれ以上のアジュバントを含みうる。
のgEのみを或いは1又はそれ以上のHSVグリコプロ
テイン又は蛋白と共に、全身性経路、腸内経路又は、眼
経路により接種する。ワクチンは、又、ワクチンのグリ
コプロテイン成分と共に、前又は後に、投与される1又
はそれ以上のアジュバントを含みうる。
【0011】本発明のワクチンは、溶液形、フリーズド
ライ、噴霧乾燥、又は凍結乾燥形で、処理の間にグリコ
プロテイン又は蛋白を保護するために1又はそれ以上の
適当な保存剤及び保護剤と組合せて有利に用いうる。
ライ、噴霧乾燥、又は凍結乾燥形で、処理の間にグリコ
プロテイン又は蛋白を保護するために1又はそれ以上の
適当な保存剤及び保護剤と組合せて有利に用いうる。
【0012】A.抗原 バキュロウイルス発現gEは68及び70kDaの見掛け
の分子量を有する二重バンドとしてゲル上を移動した。
組換えgEは、ツニカマイシン処理に対するその感受性
により証明されるようにグリコシル化されていた。間接
免疫蛍光もそれがSf9細胞の膜に輸送されることを証
明した。我々の発現gEをワクチン接種したマウスはH
SV−1中和抗体の高血清力価を示し、これはプラク減
少検定により証明された。グリコプロテインEもHSV
−1に対する強い遅延型過敏症(DTH)応答を誘導し、
組換えgEをワクチン接種したマウスは腹腔内及び眼球
致死HSV−1攻撃から防御された。
の分子量を有する二重バンドとしてゲル上を移動した。
組換えgEは、ツニカマイシン処理に対するその感受性
により証明されるようにグリコシル化されていた。間接
免疫蛍光もそれがSf9細胞の膜に輸送されることを証
明した。我々の発現gEをワクチン接種したマウスはH
SV−1中和抗体の高血清力価を示し、これはプラク減
少検定により証明された。グリコプロテインEもHSV
−1に対する強い遅延型過敏症(DTH)応答を誘導し、
組換えgEをワクチン接種したマウスは腹腔内及び眼球
致死HSV−1攻撃から防御された。
【0013】B.アジュバント ワクチンは種々のアジュバントとのエマルジョンでしば
しば投与される。アジュバントは、免疫原のみが投与さ
れるよりも少ない用量でより少量の抗原を用いてより永
続性でより高レベルの免疫を獲得するのを助ける。本発
明において用いるアジュバントはアラム、フロインド、
MTP−PE及びISCOMs(QuilA)を含むがこれに
限らない。加えて、ワクチンは、細胞伝達免疫応答を誘
導するため1又はそれ以上のアジュバントと共に又は非
存在下投与される1又はそれ以上のHSV−1グリコプ
ロテインを含むリポソーム又は他の膜結合小胞を含みう
る。
しば投与される。アジュバントは、免疫原のみが投与さ
れるよりも少ない用量でより少量の抗原を用いてより永
続性でより高レベルの免疫を獲得するのを助ける。本発
明において用いるアジュバントはアラム、フロインド、
MTP−PE及びISCOMs(QuilA)を含むがこれに
限らない。加えて、ワクチンは、細胞伝達免疫応答を誘
導するため1又はそれ以上のアジュバントと共に又は非
存在下投与される1又はそれ以上のHSV−1グリコプ
ロテインを含むリポソーム又は他の膜結合小胞を含みう
る。
【0014】C.免疫経路及び供与量 ワクチンは全身経路、全身ワクチン接種と組合せまたは
組合せることなく球眼経路または腸内経路により投与で
きる。全身経路は1又は多用量で、皮下、筋肉、又は静
脈内注射を含むがこれに限らない。眼球経路は、1又は
多用量での眼の結膜下注射、表面滴下、徐放装置、例え
ばコラーゲン保護、ヒドロゲルコンタクトレンズ又はA
LZA“Ocusert"を含むがこれに限らない。
組合せることなく球眼経路または腸内経路により投与で
きる。全身経路は1又は多用量で、皮下、筋肉、又は静
脈内注射を含むがこれに限らない。眼球経路は、1又は
多用量での眼の結膜下注射、表面滴下、徐放装置、例え
ばコラーゲン保護、ヒドロゲルコンタクトレンズ又はA
LZA“Ocusert"を含むがこれに限らない。
【0015】投与される用量は、変更可能で一般にワク
チン接種を含む1ないし3用量で所望の効果及び選択し
た投与経路に依存する。しかしながら、注射によるヒト
への接種用量は約10μgから500μgまで変化する。
眼球ワクチン接種については、ヒト供与量は約1μgか
ら500μgまで変わり、一方、腸内ワクチン接種につ
いてはヒト供与量は約1μgから800μgまで変わる。
チン接種を含む1ないし3用量で所望の効果及び選択し
た投与経路に依存する。しかしながら、注射によるヒト
への接種用量は約10μgから500μgまで変化する。
眼球ワクチン接種については、ヒト供与量は約1μgか
ら500μgまで変わり、一方、腸内ワクチン接種につ
いてはヒト供与量は約1μgから800μgまで変わる。
【0016】従って本発明の主たる目的は高レベルのH
SV−1gEを発現することである。
SV−1gEを発現することである。
【0017】本発明の目的は単一ベクター系において1
ウイルス種から高レベルのHSV−1gEを発現するこ
とである。
ウイルス種から高レベルのHSV−1gEを発現するこ
とである。
【0018】本発明の目的は、又、組換えバキュロウイ
ルスに感染し、又は形質転換した細胞から高レベルの生
物活性HSV−1gEを発現することである。
ルスに感染し、又は形質転換した細胞から高レベルの生
物活性HSV−1gEを発現することである。
【0019】本発明の他の目的は、HSV−1gEを生
成する形質転換された細胞系を得ることである。
成する形質転換された細胞系を得ることである。
【0020】本発明の次の目的は宿主におけるHSVの
処置又は予防のための有効なワクチンを開発することで
ある。
処置又は予防のための有効なワクチンを開発することで
ある。
【0021】これらの及び他の目的は、以下の記載及び
添付された請求の範囲からこの分野の当業者が容易に明
らかとなろう。
添付された請求の範囲からこの分野の当業者が容易に明
らかとなろう。
【0022】図面の説明 本発明を添付の図面と共に説明する。図1〜図3は、H
SV−1gE遺伝子を含むpAc−gE1組換えバキュロウ
イルス転換ベクターの構築の概要図表である。図1:H
SV−1株KOSのgE遺伝子を含む組換えベクターの
調製の詳細は以下の詳細な説明に与えられる。図2:太
い黒実線は、バキュロウイルスベクターに挿入された配
列番号1の1,822ヌクレオチド分離gE断片の範囲を
示す。矢じり形は遺伝子の3'末端を示す。破線は示さ
れたように酵素分解により除かれた部分を示す。gI及
びUS9名称は、除去されたこれらの近接遺伝子の隣接
末端の位置を示す。数はカッコにより示された部分にお
けるヌクレオチドの数を示す。gE開始ATGコドンはg
E断片の開始から27ヌクレオチドで、それは反対にg
Iの3'末端から203ヌクレオチドである。gETAA
停止コドンはgE断片の末端から141ヌクレオチドで
あり、それは逆にUS9遺伝子の開始から278ヌクレ
オチドである。従って最終gE構築体はgEを除きHSV
−1遺伝子を含まず、gE以外の如何なるHSV−1蛋
白も生成できない。図3:最終ベクターにおけるgE遺
伝子の開始近くのポリヘドリン遺伝子プロモーター配列
は、修飾BamHI/BclI部位(下線を引いた)、gE遺
伝子の27非コードヌクレオチド及びgEコード配列の
開始(ATG)に続く。
SV−1gE遺伝子を含むpAc−gE1組換えバキュロウ
イルス転換ベクターの構築の概要図表である。図1:H
SV−1株KOSのgE遺伝子を含む組換えベクターの
調製の詳細は以下の詳細な説明に与えられる。図2:太
い黒実線は、バキュロウイルスベクターに挿入された配
列番号1の1,822ヌクレオチド分離gE断片の範囲を
示す。矢じり形は遺伝子の3'末端を示す。破線は示さ
れたように酵素分解により除かれた部分を示す。gI及
びUS9名称は、除去されたこれらの近接遺伝子の隣接
末端の位置を示す。数はカッコにより示された部分にお
けるヌクレオチドの数を示す。gE開始ATGコドンはg
E断片の開始から27ヌクレオチドで、それは反対にg
Iの3'末端から203ヌクレオチドである。gETAA
停止コドンはgE断片の末端から141ヌクレオチドで
あり、それは逆にUS9遺伝子の開始から278ヌクレ
オチドである。従って最終gE構築体はgEを除きHSV
−1遺伝子を含まず、gE以外の如何なるHSV−1蛋
白も生成できない。図3:最終ベクターにおけるgE遺
伝子の開始近くのポリヘドリン遺伝子プロモーター配列
は、修飾BamHI/BclI部位(下線を引いた)、gE遺
伝子の27非コードヌクレオチド及びgEコード配列の
開始(ATG)に続く。
【0023】図4および図5は、バキュロウイルス−g
Eのウエスタンブロット分析及びクーマシーブルー染色
である。図4:バキュロウイルス−gE発現及びグリコ
シル化のウエスタンブロット分析。昆虫細胞はバキュロ
ウイルス−gE組換え体(vAc−gEI)で感染した(10
PFU/細胞のMOI、72時間)。Vero細胞はHSV
−1株KOSで感染した(10PFU/細胞のMOI、
20時間)。全細胞溶解質は1BA10モノクローナル
抗体(文献3)を用いてウエスタンブロットにより分析
した。レーン:M、分子量マーカー;1、4×105HS
V−1感染Vero細胞;2、4×103vAc−gEI感染S
f9細胞;3、ツニカマイシン処理vAc−gE1感染細胞;
4、野性型AcNPV感染昆虫細胞;5、模擬感染Sf9
細胞。示される全レーンは同じゲルの同じ暴露からであ
る。写真の目的のために、レーン4及び5はオートラジ
オグラム上、異なる位置から移動させた。図5:クーマ
シーブルー染色による発現gEの検出。組換えgE又は野
性型バキュロウイルスからの全細胞溶解質(10pfu/細
胞、感染後72時間)は10%SDS−PAGE上で流
し、クーマシーブリリアントブルーで染色した。レー
ン;M、分子量マーカー;B、野性型バキュロウイルス感
染細胞;gE、vAc−gE1感染細胞、感染後72時間。
矢印は発現gEの位置(gE)及び野性型ポリヘドリン(P)
蛋白バンドを示す。
Eのウエスタンブロット分析及びクーマシーブルー染色
である。図4:バキュロウイルス−gE発現及びグリコ
シル化のウエスタンブロット分析。昆虫細胞はバキュロ
ウイルス−gE組換え体(vAc−gEI)で感染した(10
PFU/細胞のMOI、72時間)。Vero細胞はHSV
−1株KOSで感染した(10PFU/細胞のMOI、
20時間)。全細胞溶解質は1BA10モノクローナル
抗体(文献3)を用いてウエスタンブロットにより分析
した。レーン:M、分子量マーカー;1、4×105HS
V−1感染Vero細胞;2、4×103vAc−gEI感染S
f9細胞;3、ツニカマイシン処理vAc−gE1感染細胞;
4、野性型AcNPV感染昆虫細胞;5、模擬感染Sf9
細胞。示される全レーンは同じゲルの同じ暴露からであ
る。写真の目的のために、レーン4及び5はオートラジ
オグラム上、異なる位置から移動させた。図5:クーマ
シーブルー染色による発現gEの検出。組換えgE又は野
性型バキュロウイルスからの全細胞溶解質(10pfu/細
胞、感染後72時間)は10%SDS−PAGE上で流
し、クーマシーブリリアントブルーで染色した。レー
ン;M、分子量マーカー;B、野性型バキュロウイルス感
染細胞;gE、vAc−gE1感染細胞、感染後72時間。
矢印は発現gEの位置(gE)及び野性型ポリヘドリン(P)
蛋白バンドを示す。
【0024】図6は、抗バキュロウイルス−gE血清に
よるHSV−1感染性の中和を示す。バキュロウイルス
−gE、模擬ワクチン接種(野性型バキュロウイルス)、
又はHSV−1(株KOS)接種マウスからの加熱不活性
化プール血清の系列希釈を本明細書に記載されるように
新鮮な又は加熱不活性化モルモット補体の存在下、10
0PFUのHSV−1株KOSとインキュベートし、残
留感染ウイルスを力価測定した。
よるHSV−1感染性の中和を示す。バキュロウイルス
−gE、模擬ワクチン接種(野性型バキュロウイルス)、
又はHSV−1(株KOS)接種マウスからの加熱不活性
化プール血清の系列希釈を本明細書に記載されるように
新鮮な又は加熱不活性化モルモット補体の存在下、10
0PFUのHSV−1株KOSとインキュベートし、残
留感染ウイルスを力価測定した。
【0025】詳細な説明 本発明は組換えDNA技術を利用してHSV−1gE又
はその一部をコードするDNA配列をDNA転置ベクタ
ーに挿入し、ベクターは外来宿主においてgE遺伝子の
発現を増殖し指図することが可能となる。得られる組換
えDNA分子を昆虫細胞に導入して、宿主細胞によりg
E又はその一部又はその分子変異体を大量に生成しう
る。生成したgEは次いで、HSV型1及び型2に対す
る免疫療法に用いるために分離、精製する。
はその一部をコードするDNA配列をDNA転置ベクタ
ーに挿入し、ベクターは外来宿主においてgE遺伝子の
発現を増殖し指図することが可能となる。得られる組換
えDNA分子を昆虫細胞に導入して、宿主細胞によりg
E又はその一部又はその分子変異体を大量に生成しう
る。生成したgEは次いで、HSV型1及び型2に対す
る免疫療法に用いるために分離、精製する。
【0026】以下に示す実施例はバキュロウイルス、ポ
リヘドリンプロモーター系及び宿主細胞としての昆虫細
胞の利用を記載する。しかしながら、別の宿主細胞培養
において望ましいgE及びgE生成物の発現のための発現
ベクターを構築するため類似の技術を用いることはこの
分野の当業者にとって容易である。従って以下の詳細な
記載は限定する意味にとるべきでなく、本発明の範囲は
添付の特許請求の範囲により最もよく定義される。
リヘドリンプロモーター系及び宿主細胞としての昆虫細
胞の利用を記載する。しかしながら、別の宿主細胞培養
において望ましいgE及びgE生成物の発現のための発現
ベクターを構築するため類似の技術を用いることはこの
分野の当業者にとって容易である。従って以下の詳細な
記載は限定する意味にとるべきでなく、本発明の範囲は
添付の特許請求の範囲により最もよく定義される。
【0027】A.ウイルス及び細胞 オートグラファ・カリフォルニカ(Autographa califo
rnica)核多角体病ウイルス(AcNPV)のE2株及びスポ
ドプレラ・フルギペルダ(Spodoptera frugiperda)ク
ローン9(Sf9)細胞を既に記載されるように(文献4)
10%ウシ胎児血清を含むTNM−FHを用いて生育し
た。プラク精製HSV−(McKrae及びKOS株)及びV
ero細胞を既に記載されるように(文献5)生育した。
rnica)核多角体病ウイルス(AcNPV)のE2株及びスポ
ドプレラ・フルギペルダ(Spodoptera frugiperda)ク
ローン9(Sf9)細胞を既に記載されるように(文献4)
10%ウシ胎児血清を含むTNM−FHを用いて生育し
た。プラク精製HSV−(McKrae及びKOS株)及びV
ero細胞を既に記載されるように(文献5)生育した。
【0028】B.AcNPV組換え転移ベクターの構築 図1に示すように、HSV−1株KOS(文献6)由来E
coRIH制限断片を含むプラスミドpSG25をDdeI
で消化し、HSV−1gEの完全コード部分を含む断片
を分離した。直線状断片をBal31で処理し、次いでS
alIで再び切断した。BclIリンカーの添加後、完全g
E構造遺伝子をバキュロウイルスポリヘドリン遺伝子プ
ロモーターの調整下、ベクターpAcYM1(文献4)のB
amHI部位に挿入した。下図は、gE遺伝子の開始の領
域における最終ベクターのポリヘドリン遺伝子プロモー
ター配列を示す。これは修飾BamHI/BclI部位(下
線)、gE遺伝子の27非コードヌクレオチド及びgEコ
ード配列(ATG)の開始に続く。
coRIH制限断片を含むプラスミドpSG25をDdeI
で消化し、HSV−1gEの完全コード部分を含む断片
を分離した。直線状断片をBal31で処理し、次いでS
alIで再び切断した。BclIリンカーの添加後、完全g
E構造遺伝子をバキュロウイルスポリヘドリン遺伝子プ
ロモーターの調整下、ベクターpAcYM1(文献4)のB
amHI部位に挿入した。下図は、gE遺伝子の開始の領
域における最終ベクターのポリヘドリン遺伝子プロモー
ター配列を示す。これは修飾BamHI/BclI部位(下
線)、gE遺伝子の27非コードヌクレオチド及びgEコ
ード配列(ATG)の開始に続く。
【0029】 C.組換えウイルスのトランスフェクション及び選択 Sf9細胞を文献4に記載されるように精製感染バキュ
ロウイルス(AcNPV)DNA及びpAc−gElプラスミ
ドDNAに同時移入した。3反復のプラク精製ののち、
3つのポリヘドリン陰性組換えウイルスを選択した。組
換えバキュロウイルスは全て同様の性質を有するgEを
発現した。一つをさらに研究するために独断的に選び、
vAc−gE1と名づけた。
ロウイルス(AcNPV)DNA及びpAc−gElプラスミ
ドDNAに同時移入した。3反復のプラク精製ののち、
3つのポリヘドリン陰性組換えウイルスを選択した。組
換えバキュロウイルスは全て同様の性質を有するgEを
発現した。一つをさらに研究するために独断的に選び、
vAc−gE1と名づけた。
【0030】D.ツニカマイシン処理 感染細胞(10PFU/細胞)を文献7に記載されるよう
にTNM−FH培地(J.R.H.バイオサイエンス
ズ、レネクサ、KS)中4ug/mlツニカマイシン中、感
染後0−48時間インキュベートし、SDS−PAGE
用に収集した。
にTNM−FH培地(J.R.H.バイオサイエンス
ズ、レネクサ、KS)中4ug/mlツニカマイシン中、感
染後0−48時間インキュベートし、SDS−PAGE
用に収集した。
【0031】E.ウエスタンブロット ウエスタンイムノブロットを既に記載されるように(文
献8)、変性条件下に実施した。ニトロセルロースブロ
ットを3つの抗gEモノクローナル抗体Fd172(文献
9)、7−8(カテルジー等、未発表)、IBA10(文献
3)の一つ、又は全HSV−1抗体(精製HSV−1ビリ
オンに対してウサギで造られた)と4℃で1時間反応さ
せた。次いでブロットを125I−プロテインAと25℃
で1時間インキュベートし、オートラジオグラフにかけ
た。
献8)、変性条件下に実施した。ニトロセルロースブロ
ットを3つの抗gEモノクローナル抗体Fd172(文献
9)、7−8(カテルジー等、未発表)、IBA10(文献
3)の一つ、又は全HSV−1抗体(精製HSV−1ビリ
オンに対してウサギで造られた)と4℃で1時間反応さ
せた。次いでブロットを125I−プロテインAと25℃
で1時間インキュベートし、オートラジオグラフにかけ
た。
【0032】F.マウスの免疫 20匹のBalb/cマウス(6−8週令)に、バキュロウイ
ルス発現gEに感染したSf9細胞の凍結融解全細胞溶解
質をワクチン接種した。1×106Sf9細胞からの溶解
質を、フロインド完全アジュバントと0日に、又はフロ
インド不完全アジュバントと21及び42日に、皮下注
射した。腹腔内(i.p.)注射を、PBS中1×106感
染Sf9細胞からの溶解質を用いて同時に行なった。我
々はクーマシーブルー染色から1×106バキュロウイ
ルスgE感染細胞が約30μgのgEを含むことを評価す
る。18Eの模擬ワクチン接種マウスに、同様の方法を
用いて野性型バキュロウイルスに感染したSf9細胞を
接種した。11匹のマウスの陽性コントロール群を、2
×105PFUの無毒のHSV−1株KOSで3回i.
p.免疫した。最終ワクチン接種3週間後、血清を集
め、各グループごとにプールした。
ルス発現gEに感染したSf9細胞の凍結融解全細胞溶解
質をワクチン接種した。1×106Sf9細胞からの溶解
質を、フロインド完全アジュバントと0日に、又はフロ
インド不完全アジュバントと21及び42日に、皮下注
射した。腹腔内(i.p.)注射を、PBS中1×106感
染Sf9細胞からの溶解質を用いて同時に行なった。我
々はクーマシーブルー染色から1×106バキュロウイ
ルスgE感染細胞が約30μgのgEを含むことを評価す
る。18Eの模擬ワクチン接種マウスに、同様の方法を
用いて野性型バキュロウイルスに感染したSf9細胞を
接種した。11匹のマウスの陽性コントロール群を、2
×105PFUの無毒のHSV−1株KOSで3回i.
p.免疫した。最終ワクチン接種3週間後、血清を集
め、各グループごとにプールした。
【0033】HSV−1眼球防御研究のため、5マウス
/グループを、gEを発現するバキュロウイルスに感染
した1×106Sf9細胞からの凍結融解全細胞溶解質を
用いて同様の方法で2回ワクチン接種した。注射は、フ
ロインド完全アジュバントと0日に、フロインド不完全
アジュバントと21日に皮下に行なった。腹腔内(i.
p.)注射は、PBS中1×106感染Sf9細胞からの溶
解質を用いて同時に行なった。模擬ワクチン接種マウス
は、同様のレジメを用いて野性型バキュロウイルスに感
染したSf9細胞を接種した。陽性コントロール群のマ
ウスを2×105PFUの無毒のHSV−1株KOSで
同じ時間にi.p.免疫した。
/グループを、gEを発現するバキュロウイルスに感染
した1×106Sf9細胞からの凍結融解全細胞溶解質を
用いて同様の方法で2回ワクチン接種した。注射は、フ
ロインド完全アジュバントと0日に、フロインド不完全
アジュバントと21日に皮下に行なった。腹腔内(i.
p.)注射は、PBS中1×106感染Sf9細胞からの溶
解質を用いて同時に行なった。模擬ワクチン接種マウス
は、同様のレジメを用いて野性型バキュロウイルスに感
染したSf9細胞を接種した。陽性コントロール群のマ
ウスを2×105PFUの無毒のHSV−1株KOSで
同じ時間にi.p.免疫した。
【0034】G.血清中和検定 インビトロ血清中和検定のため、熱不活性化プール血清
をMEM中希釈し、100PFUのHSV−1株KOS
と混合し、37℃で30分間インキュベートした。2.
5%の新鮮な又は熱不活性化モルモット補体を加えて混
合物をさらに30分間インキュベートした。重複試料を
24ウエルミクロタイタープレート内のCV−1細胞に
加えて残留HSV−1感染性を検定した。プレートを3
7℃72時間インキュベートし、1%クリスタルバイオ
レットで染色し、プラクを数えた。実験を2回繰り返し
て抗体力価(50%プラク減少)の平均を血清希釈の逆数
として表わした。
をMEM中希釈し、100PFUのHSV−1株KOS
と混合し、37℃で30分間インキュベートした。2.
5%の新鮮な又は熱不活性化モルモット補体を加えて混
合物をさらに30分間インキュベートした。重複試料を
24ウエルミクロタイタープレート内のCV−1細胞に
加えて残留HSV−1感染性を検定した。プレートを3
7℃72時間インキュベートし、1%クリスタルバイオ
レットで染色し、プラクを数えた。実験を2回繰り返し
て抗体力価(50%プラク減少)の平均を血清希釈の逆数
として表わした。
【0035】H.遅延型過敏症(DTH) gEに対するDTH応答を研究するために、マウスを3
回上述のようにワクチン接種した。最終ワクチン接種2
1日後に、マウスに10μlのMEM中2×106PFU
のUV不活性化HSV−1(株McKrae)を右耳の背側に
注射した。耳の厚さは注射直前、注射後24時間、48
時間及び72時間にミクロメーター(ミツトヨ、東京、
日本)を用いて測定し、正味の腫脹(攻撃後攻撃前耳の厚
さを引く)として記録した(文献10)。コントロールは
HSV−1(株KOS)ワクチン接種マウス(陽性コント
ロール)及び野性型バキュロウイルス(模擬)ワクチン接
種マウス(陰性コントール)を含んだ。
回上述のようにワクチン接種した。最終ワクチン接種2
1日後に、マウスに10μlのMEM中2×106PFU
のUV不活性化HSV−1(株McKrae)を右耳の背側に
注射した。耳の厚さは注射直前、注射後24時間、48
時間及び72時間にミクロメーター(ミツトヨ、東京、
日本)を用いて測定し、正味の腫脹(攻撃後攻撃前耳の厚
さを引く)として記録した(文献10)。コントロールは
HSV−1(株KOS)ワクチン接種マウス(陽性コント
ロール)及び野性型バキュロウイルス(模擬)ワクチン接
種マウス(陰性コントール)を含んだ。
【0036】I.ウイルス攻撃 最終ワクチン接種3週間後、マウスは2×106PFU
(i.p.経路による4LD50)又は眼球に2×105P
FU/眼(眼球経路による10LD50)のビルレントH
SV−1株Mckraeでi.p.攻撃した。攻撃したマウス
は2週間モニターした。
(i.p.経路による4LD50)又は眼球に2×105P
FU/眼(眼球経路による10LD50)のビルレントH
SV−1株Mckraeでi.p.攻撃した。攻撃したマウス
は2週間モニターした。
【0037】結果 A.組換えバキュロウイルス発現gEの構築 HSV−1株KOSから完全gEオープンリーディング
フレームを含むバキュロウイルス転移ベクター(pAc−g
E1)の構築の方法は上記し、図1に示される。図2
は、最終バキュロウイルスベクターに存在するgE遺伝
子の程度をより詳細に示す。全gE構造遺伝子は、最小
付加5'及び3'配列と共に存在する。5'DdeI切断及
び続くBal31消化の結果、開始gEATGコドンの上
流27HSV−1ヌクレオチドのみの封入体となった。
3'末端でSalI制限切断の結果、gETAA終止コドン
の下流141HSV−1ヌクレオチドのみの封入体とな
った。gE断片の5'末端は最も近い上流遺伝子、gIか
ら203ヌクレオチドに始まる。gE断片の3'末端は最
も近い下流遺伝子US9から278ヌクレオチドに終わ
る。従って、gE−バキュロウイルス構築体は、付加的
HSV−1遺伝子(又はHSV−1遺伝子の一部)を伴う
ことなく全構造gE遺伝子を含む。gE以外のHSV−1
蛋白はこのgEバキュロウイルスから発現できない。コ
トランスフェクション、ベクターのバキュロウイルスへ
の取込み及び組換え体の分離に続いて、組換えバキュロ
ウイルス中のHSV−1gEDNAの存在をサザンブロ
ットハイブリダイゼーションにより証明した。
フレームを含むバキュロウイルス転移ベクター(pAc−g
E1)の構築の方法は上記し、図1に示される。図2
は、最終バキュロウイルスベクターに存在するgE遺伝
子の程度をより詳細に示す。全gE構造遺伝子は、最小
付加5'及び3'配列と共に存在する。5'DdeI切断及
び続くBal31消化の結果、開始gEATGコドンの上
流27HSV−1ヌクレオチドのみの封入体となった。
3'末端でSalI制限切断の結果、gETAA終止コドン
の下流141HSV−1ヌクレオチドのみの封入体とな
った。gE断片の5'末端は最も近い上流遺伝子、gIか
ら203ヌクレオチドに始まる。gE断片の3'末端は最
も近い下流遺伝子US9から278ヌクレオチドに終わ
る。従って、gE−バキュロウイルス構築体は、付加的
HSV−1遺伝子(又はHSV−1遺伝子の一部)を伴う
ことなく全構造gE遺伝子を含む。gE以外のHSV−1
蛋白はこのgEバキュロウイルスから発現できない。コ
トランスフェクション、ベクターのバキュロウイルスへ
の取込み及び組換え体の分離に続いて、組換えバキュロ
ウイルス中のHSV−1gEDNAの存在をサザンブロ
ットハイブリダイゼーションにより証明した。
【0038】B.昆虫細胞における発現gEの同定 昆虫細胞におけるバキュロウイルス発現gEの大きさを
分析するため、HSV−1感染Vero細胞又はバキュロ
ウイルス−gE組換え体(vAc−gE1)感染Sf9細胞か
らの全蛋白抽出物を10%SDS−PAGE上に流し、
抗gEモノクローナル抗体IBA10(文献3)を用いウ
エスタンブロッティングにより分析した。これは図4に
示される。HSV−1感染Vero細胞からのグリコプロ
テインEは、既に報告されたgEの明らかな分子量(文献
2)と一致する80−85kDaの見掛けの分子量(図4、
レーン1)を有した。68及び70kDaの見掛けの分子
量を有する、バキュロウイルス−gE抽出物からの2つ
のバンドはgE特異抗体と強く反応した(図4、レーン
2)。同様の結果が全HSV−1抗体及び抗gEモノクロ
ーナル抗体Fd172及び7−8に見られた。ウエスタ
ン分析により見られるgE発現(蓄積)のレベルは感染後
48、72及び96時間で同じであった。
分析するため、HSV−1感染Vero細胞又はバキュロ
ウイルス−gE組換え体(vAc−gE1)感染Sf9細胞か
らの全蛋白抽出物を10%SDS−PAGE上に流し、
抗gEモノクローナル抗体IBA10(文献3)を用いウ
エスタンブロッティングにより分析した。これは図4に
示される。HSV−1感染Vero細胞からのグリコプロ
テインEは、既に報告されたgEの明らかな分子量(文献
2)と一致する80−85kDaの見掛けの分子量(図4、
レーン1)を有した。68及び70kDaの見掛けの分子
量を有する、バキュロウイルス−gE抽出物からの2つ
のバンドはgE特異抗体と強く反応した(図4、レーン
2)。同様の結果が全HSV−1抗体及び抗gEモノクロ
ーナル抗体Fd172及び7−8に見られた。ウエスタ
ン分析により見られるgE発現(蓄積)のレベルは感染後
48、72及び96時間で同じであった。
【0039】モノクローナル抗体IBA10(レーン2)
及び全HSV−1抗体(示さず)は50kDaの見掛けの分
子量を有するより小さなバンド(図4、レーン2におい
てかすかに見られる)とわずかに反応した。モノクロー
ナル抗体Fd172及び7−8はこのバンドと反応しな
かった。このバンドの同一性は明らかでないが、それは
gE分解生成物を表わしうる。抗gE抗血清は野性型バキ
ュロウイルス感染細胞(レーン4)又は未感染Sf9細胞
(レーン5)からの如何なるバンドとも反応しなかった。
及び全HSV−1抗体(示さず)は50kDaの見掛けの分
子量を有するより小さなバンド(図4、レーン2におい
てかすかに見られる)とわずかに反応した。モノクロー
ナル抗体Fd172及び7−8はこのバンドと反応しな
かった。このバンドの同一性は明らかでないが、それは
gE分解生成物を表わしうる。抗gE抗血清は野性型バキ
ュロウイルス感染細胞(レーン4)又は未感染Sf9細胞
(レーン5)からの如何なるバンドとも反応しなかった。
【0040】C.バキュロウイルス発現gEのグリコシ
ル化及び細胞局在 バキュロウイルス発現gEがN−グリコシル化を受けた
かどうかを測定するため、組換えバキュロウイルス感染
細胞を感染後0−48時間、ツニカマイシンで処理し
た。ツニカマイシン処理に続いて、ほとんどの68及び
70kDa種は、64及び66kDaの見掛けの分子量を有
する2つのバンドに置換した(図4、レーン3)。これ
は、68及び70kDaポリペプチドがともにN−連鎖糖
を含むことを示す。gE移動性における変化は、配列分
析(文献11)により測定されたように、gEポリペプチ
ドでの2つの潜在的N−連鎖グリコシル化部位の存在と
一致する。ツニカマイシン処理gEの大きさも、インビ
トロ翻訳gEについて報告された66kDaの分子量(文献
12)と一致する。
ル化及び細胞局在 バキュロウイルス発現gEがN−グリコシル化を受けた
かどうかを測定するため、組換えバキュロウイルス感染
細胞を感染後0−48時間、ツニカマイシンで処理し
た。ツニカマイシン処理に続いて、ほとんどの68及び
70kDa種は、64及び66kDaの見掛けの分子量を有
する2つのバンドに置換した(図4、レーン3)。これ
は、68及び70kDaポリペプチドがともにN−連鎖糖
を含むことを示す。gE移動性における変化は、配列分
析(文献11)により測定されたように、gEポリペプチ
ドでの2つの潜在的N−連鎖グリコシル化部位の存在と
一致する。ツニカマイシン処理gEの大きさも、インビ
トロ翻訳gEについて報告された66kDaの分子量(文献
12)と一致する。
【0041】gE−バキュロウイルス感染細胞の間接免
疫蛍光染色をFd172抗gEモノクローナル抗体を用い
て行なった。強い細胞表面蛍光が確かなHSV−1gE
(文献13)と同様に見られ、発現gEが細胞表面に輸送
されたことを示唆する。
疫蛍光染色をFd172抗gEモノクローナル抗体を用い
て行なった。強い細胞表面蛍光が確かなHSV−1gE
(文献13)と同様に見られ、発現gEが細胞表面に輸送
されたことを示唆する。
【0042】D.gEワクチン接種マウスからの血清に
よるHSV−1中和 組換えgEの免疫原性を、上述したようにバキュロウイ
ルス−gEに感染した全昆虫細胞からの溶解質でマウス
を免疫することにより研究した。これらのマウスは、
又、以下のi.p.攻撃研究に用いた。最終ワクチン接種
3週間後(且つ以下に記載されるi.p.HSV−1攻撃
前)、マウスを採血し、それらの血清のHSV−1中和
活性用を試験した。プールした血清を熱不活性化し、次
いで新鮮な又は熱不活性化モルモット補体の存在下、H
SV−1とインキュベートした。免疫マウスからの血清
は、インビトロで高HSV−1中和活性を有する(図6
及び表1)。以下の表1に示されるように、中和活性
は、熱不活性化補体(中空円)よりも新鮮な補体(黒ぬり
円)の存在で高かった。加えて、ウエスタンブロット
で、バキュロウイルス−gE免疫マウスからの血清はH
SV−1感染Vero細胞からの確かなgEと反応した。従
って、我々のバキュロウイルス発現gEは、確かなgEに
対するマウスにおける免疫応答を誘導できるようであっ
た。
よるHSV−1中和 組換えgEの免疫原性を、上述したようにバキュロウイ
ルス−gEに感染した全昆虫細胞からの溶解質でマウス
を免疫することにより研究した。これらのマウスは、
又、以下のi.p.攻撃研究に用いた。最終ワクチン接種
3週間後(且つ以下に記載されるi.p.HSV−1攻撃
前)、マウスを採血し、それらの血清のHSV−1中和
活性用を試験した。プールした血清を熱不活性化し、次
いで新鮮な又は熱不活性化モルモット補体の存在下、H
SV−1とインキュベートした。免疫マウスからの血清
は、インビトロで高HSV−1中和活性を有する(図6
及び表1)。以下の表1に示されるように、中和活性
は、熱不活性化補体(中空円)よりも新鮮な補体(黒ぬり
円)の存在で高かった。加えて、ウエスタンブロット
で、バキュロウイルス−gE免疫マウスからの血清はH
SV−1感染Vero細胞からの確かなgEと反応した。従
って、我々のバキュロウイルス発現gEは、確かなgEに
対するマウスにおける免疫応答を誘導できるようであっ
た。
【0043】
【表1】HSV−1gEを発現する組換えバキュロウイ
ルスで免疫したマウスでの中和抗体及びDTHの誘導 増加した耳の厚さa 中和抗体b (mm×10-2) 免疫 24時間 48時間 72時間 +C' −C' vAc−gE1 7.0+/-1.2 7.4+/-1.5 14.8+/-1.7c >320 247 KOS 8.3+/-1.7 14.7+/-2.7 15.5+/-3.2c >320 >320 模擬(AcNPV) 4.8+/-0.7 5.6+/-1.2 8.1+/-1.5 < 10 < 10 a 6マウス/グループの平均+/−S.D. b 中和力価は、プラク数において50%減少を生ずる
逆幾何学的平均として表わす。 c vAc−gE1及びKOSワクチン接種マウスの72時
間での増加した耳の厚さは、スチューデントのt−検定
で模擬ワクチン接種マウスと統計学的に異なった(p<
0.001)。
ルスで免疫したマウスでの中和抗体及びDTHの誘導 増加した耳の厚さa 中和抗体b (mm×10-2) 免疫 24時間 48時間 72時間 +C' −C' vAc−gE1 7.0+/-1.2 7.4+/-1.5 14.8+/-1.7c >320 247 KOS 8.3+/-1.7 14.7+/-2.7 15.5+/-3.2c >320 >320 模擬(AcNPV) 4.8+/-0.7 5.6+/-1.2 8.1+/-1.5 < 10 < 10 a 6マウス/グループの平均+/−S.D. b 中和力価は、プラク数において50%減少を生ずる
逆幾何学的平均として表わす。 c vAc−gE1及びKOSワクチン接種マウスの72時
間での増加した耳の厚さは、スチューデントのt−検定
で模擬ワクチン接種マウスと統計学的に異なった(p<
0.001)。
【0044】 E.gEワクチン接種マウスにおけるDTH応答の誘導 gEグリコプロテインに対する遅延型過敏症(DTH)応
答を研究するため、6匹マウスのグループを上のように
3回ワクチン接種し、上記したようにDTH応答測定し
た。gE及びKOSワクチン接種マウスは共にDTH応
答を現した。耳腫脹は攻撃後72時間でピークに達し
(表1)、次いで3日後腫脹は減少した。72時間で、g
Eワクチン接種マウスにおけるDTH応答(耳腫脹)はH
SV−1ワクチン接種マウスにおけるものと同等で、野
性型バキュロウイルスマウスにおける腫脹よりも有意に
高かった(p<0.001)。
答を研究するため、6匹マウスのグループを上のように
3回ワクチン接種し、上記したようにDTH応答測定し
た。gE及びKOSワクチン接種マウスは共にDTH応
答を現した。耳腫脹は攻撃後72時間でピークに達し
(表1)、次いで3日後腫脹は減少した。72時間で、g
Eワクチン接種マウスにおけるDTH応答(耳腫脹)はH
SV−1ワクチン接種マウスにおけるものと同等で、野
性型バキュロウイルスマウスにおける腫脹よりも有意に
高かった(p<0.001)。
【0045】F.gEのワクチン接種によるHSV−1
攻撃からのマウスの防御 ワクチン接種マウスを、第3接種3週間後、HSV−1
株McKraeのi.p.注射(2×106PFU)により攻撃
した。以下の表2に示すように、発現gEでワクチン接
種したマウスの95%(20の19)は致死攻撃から延命
し、一方、模擬ワクチン接種マウスのわずか39%(1
8の7)が延命した。加えてKOSで免疫したマウスの
100%が防御された(11の11)。従って、発現gE
による防御のレベルは、KOSのそれと類似しており、
模擬ワクチン接種グループより有意に高かった(p<0.
01)。
攻撃からのマウスの防御 ワクチン接種マウスを、第3接種3週間後、HSV−1
株McKraeのi.p.注射(2×106PFU)により攻撃
した。以下の表2に示すように、発現gEでワクチン接
種したマウスの95%(20の19)は致死攻撃から延命
し、一方、模擬ワクチン接種マウスのわずか39%(1
8の7)が延命した。加えてKOSで免疫したマウスの
100%が防御された(11の11)。従って、発現gE
による防御のレベルは、KOSのそれと類似しており、
模擬ワクチン接種グループより有意に高かった(p<0.
01)。
【0046】
【表2】HSV−1gEを発現する組換えバキュロウイ
ルスで免疫したマウスの致死腹腔内及び眼球攻撃 i.p.攻撃a 眼球攻撃b 免疫 生存/合計 生存/合計 バキュロウイルス−gE 19/20c (95%) 5/5c (100%) KOS 11/11c (100%) 5/5c (100%) 模擬(AcNPV) 7/18 (39%) 0/5 (0%) a マウスは上記したように3回ワクチン接種し、2×
106PFU/マウスでi.p.攻撃した。かっこ内の数
字は生存パーセントである。 b マウスは2回ワクチン接種し、2×105PFU/眼
で眼球に攻撃した。 c バキュロウイルスgE及びKOSワクチン接種マウス
の生存率(防御)は、模擬ワクチン接種生存率とは有意に
異なる(フィッシャーの正確な試験、p<0.01)。
ルスで免疫したマウスの致死腹腔内及び眼球攻撃 i.p.攻撃a 眼球攻撃b 免疫 生存/合計 生存/合計 バキュロウイルス−gE 19/20c (95%) 5/5c (100%) KOS 11/11c (100%) 5/5c (100%) 模擬(AcNPV) 7/18 (39%) 0/5 (0%) a マウスは上記したように3回ワクチン接種し、2×
106PFU/マウスでi.p.攻撃した。かっこ内の数
字は生存パーセントである。 b マウスは2回ワクチン接種し、2×105PFU/眼
で眼球に攻撃した。 c バキュロウイルスgE及びKOSワクチン接種マウス
の生存率(防御)は、模擬ワクチン接種生存率とは有意に
異なる(フィッシャーの正確な試験、p<0.01)。
【0047】発現gEによる全身性ワクチン接種が眼球
感染に対し防御するかどうかを測定するため、2回ワク
チン接種したマウスを最後のワクチン接種3週間後、2
×105PFU/眼のHSV−1株McKraeで眼に攻撃
した。マウスを10日間モニターした。5匹の模擬ワク
チン接種マウスの5匹(100%)が有意な眼疾病を示
し、続くHSV−1攻撃で死亡した。これに対し、全5
匹のgE及び全5匹のHSV−1ワクチン接種マウスは
延命し、明らかな眼疾病は示さなかった(表2参照)。こ
れらの結果は、バキュロウイルス発現gEの接種がi.
p.及び眼球致死HSV−1攻撃に対してマウスを防御
できることを示唆する。
感染に対し防御するかどうかを測定するため、2回ワク
チン接種したマウスを最後のワクチン接種3週間後、2
×105PFU/眼のHSV−1株McKraeで眼に攻撃
した。マウスを10日間モニターした。5匹の模擬ワク
チン接種マウスの5匹(100%)が有意な眼疾病を示
し、続くHSV−1攻撃で死亡した。これに対し、全5
匹のgE及び全5匹のHSV−1ワクチン接種マウスは
延命し、明らかな眼疾病は示さなかった(表2参照)。こ
れらの結果は、バキュロウイルス発現gEの接種がi.
p.及び眼球致死HSV−1攻撃に対してマウスを防御
できることを示唆する。
【0048】要するに、本発明は、バキュロウイルス発
現系におけるgEの高レベル発現を含む。この系におい
て発現されたgEは、グリコシル化され細胞表面に輸送
された。発現gE対しマウスで造られた抗体は部分的補
体依存方法でHSV−1の感染性を中和し、gEをワク
チン接種したマウスはHSV−1にDTH応答を示し
た。より重要なことはgEを全身的にワクチン接種した
マウスは、致死腹腔内及び致死眼球HSV−1攻撃を防
御し、HSV−1に対する全てのサブユニットワクチン
においてgEを有用且つ重要な成分とした。
現系におけるgEの高レベル発現を含む。この系におい
て発現されたgEは、グリコシル化され細胞表面に輸送
された。発現gE対しマウスで造られた抗体は部分的補
体依存方法でHSV−1の感染性を中和し、gEをワク
チン接種したマウスはHSV−1にDTH応答を示し
た。より重要なことはgEを全身的にワクチン接種した
マウスは、致死腹腔内及び致死眼球HSV−1攻撃を防
御し、HSV−1に対する全てのサブユニットワクチン
においてgEを有用且つ重要な成分とした。
【0049】G.gEの精製 本発明のバキュロウイルス発現gEは、免疫親和性クロ
マトグラフィ(文献15)及び細胞培養物の上清媒体から
の分泌され、先を切り取ったgEの収集(文献16)を含
むがこれらに限らない標準的技術(文献14)によってヒ
トの使用のために精製しうる。
マトグラフィ(文献15)及び細胞培養物の上清媒体から
の分泌され、先を切り取ったgEの収集(文献16)を含
むがこれらに限らない標準的技術(文献14)によってヒ
トの使用のために精製しうる。
【0050】1.免疫親和性クロマトグラフィ 免疫親和性クロマトグラフィの方法は(文献15)に記載
される通りである。本質的にはgE蛋白を回転瓶中、レ
ンズ豆レクチンクロマトグラフィ、免疫親和性クロマト
グラフィ及び限外濾過による濃縮の連続的段階により精
製した。第1段階に関し、2lの調整培地は1mMPMS
F及び0.5%アプロチニンを補充し、次いでレンズ豆
レクチン−セファロース−4B(シグマ・ケミカル・カ
ンパニー・セントルイス・MO)の30mlカラム上に5
0ml/hの流速でのせた。カラムを100mlのPBS及
び0.5MNalを含有する100mlのPBSで続けて洗
浄した。結合フラクションを0.5MNaCl、0.5Mα
−メチルマンノシド、0.1%トリトンX−100及び
0.5%アプロチニンを含有するPBSで溶出し、フラ
クションは固相酵素免疫測定法(エリザ)によりgEにつ
いて検定した。
される通りである。本質的にはgE蛋白を回転瓶中、レ
ンズ豆レクチンクロマトグラフィ、免疫親和性クロマト
グラフィ及び限外濾過による濃縮の連続的段階により精
製した。第1段階に関し、2lの調整培地は1mMPMS
F及び0.5%アプロチニンを補充し、次いでレンズ豆
レクチン−セファロース−4B(シグマ・ケミカル・カ
ンパニー・セントルイス・MO)の30mlカラム上に5
0ml/hの流速でのせた。カラムを100mlのPBS及
び0.5MNalを含有する100mlのPBSで続けて洗
浄した。結合フラクションを0.5MNaCl、0.5Mα
−メチルマンノシド、0.1%トリトンX−100及び
0.5%アプロチニンを含有するPBSで溶出し、フラ
クションは固相酵素免疫測定法(エリザ)によりgEにつ
いて検定した。
【0051】ピークカラムフラクションをプールし、7
0mgのウサギ抗gEポリクローナル抗体を臭化シアン活
性化セファロース4Bに連結することにより調製した1
0ml免疫親和性カラムに適用した。gE特異的ウサギ抗
血清をgE蛋白に対して作り、これは、HSV−1感染
Vero細胞溶解質から調製SDS−ポリアクリルアミド
ゲル電気泳動により精製した。カップリングの前に、I
gG強化フラクションを33%飽和硫酸アンモニウムに
よる沈澱によりgE特異的ウサギ抗血清から調製した。
レクチンカラム溶出を免疫親和性カラムに適用したの
ち、カラムを引き続いて20mlの10mMトリス塩酸、p
H7.5並びにSDS及びBSAの存在しない10mlの
LBで、次いで30mlの10mMトリス塩酸、pH7.5
−0.5MNaClで洗浄した。結合フラクションを3M
チオシアン酸アンモニウム、pH7.5で溶出し、gE蛋
白ピークをエリザ及びウエスタン分析により検出した。
ピークフラクションを濃縮し、PM10膜(アミコン・
コーポレーション、デンバー、Mass.)を用いる限外濾
過により貯蔵緩衝液(100mMNaCl、10mMトリス
塩酸塩、pH7.5、1mMEDTA、7.5%グリセロー
ル)中で平衡化した。膜表面に吸収された蛋白を除くた
め、膜を0.1%トリトンX−100を加えた貯蔵緩衝
液で洗浄し、次いでこの洗浄液を初めの濃縮フラクショ
ンと混ぜた。
0mgのウサギ抗gEポリクローナル抗体を臭化シアン活
性化セファロース4Bに連結することにより調製した1
0ml免疫親和性カラムに適用した。gE特異的ウサギ抗
血清をgE蛋白に対して作り、これは、HSV−1感染
Vero細胞溶解質から調製SDS−ポリアクリルアミド
ゲル電気泳動により精製した。カップリングの前に、I
gG強化フラクションを33%飽和硫酸アンモニウムに
よる沈澱によりgE特異的ウサギ抗血清から調製した。
レクチンカラム溶出を免疫親和性カラムに適用したの
ち、カラムを引き続いて20mlの10mMトリス塩酸、p
H7.5並びにSDS及びBSAの存在しない10mlの
LBで、次いで30mlの10mMトリス塩酸、pH7.5
−0.5MNaClで洗浄した。結合フラクションを3M
チオシアン酸アンモニウム、pH7.5で溶出し、gE蛋
白ピークをエリザ及びウエスタン分析により検出した。
ピークフラクションを濃縮し、PM10膜(アミコン・
コーポレーション、デンバー、Mass.)を用いる限外濾
過により貯蔵緩衝液(100mMNaCl、10mMトリス
塩酸塩、pH7.5、1mMEDTA、7.5%グリセロー
ル)中で平衡化した。膜表面に吸収された蛋白を除くた
め、膜を0.1%トリトンX−100を加えた貯蔵緩衝
液で洗浄し、次いでこの洗浄液を初めの濃縮フラクショ
ンと混ぜた。
【0052】2.分泌された先を切り取ったgEの収集 分泌された、先を切り取ったgEの収集方法は(文献1
6)に記載され、本明細書では繰り返さない。しかしな
がら、基本的に、トランスメンブランアンカー配列をコ
ードしている断片はgE遺伝子から除去した。次いで除
去されたgE遺伝子を再結合により再構築し、膜外及び
C末端細胞質内ドメインをコードしている枠配列に入れ
た。生成物は、抗gEモノクローナル抗体を伴う細胞培
養の上清媒体の免疫沈澱によるトランスフェクション後
測定した。
6)に記載され、本明細書では繰り返さない。しかしな
がら、基本的に、トランスメンブランアンカー配列をコ
ードしている断片はgE遺伝子から除去した。次いで除
去されたgE遺伝子を再結合により再構築し、膜外及び
C末端細胞質内ドメインをコードしている枠配列に入れ
た。生成物は、抗gEモノクローナル抗体を伴う細胞培
養の上清媒体の免疫沈澱によるトランスフェクション後
測定した。
【0053】H.医薬組成物 本発明のgEは、製薬上許容しうる担体賦形剤と混合し
て製薬上有用な組成物を調製する既知方法により処方で
きる。適当な賦形剤やそれらの処方は、例えばイー.ダ
ブリュー.マーチンによるレミントンズ・ファーマシュ
ーティカル・サイエンスズに記載される。これらの組成
物は、有効量のgEを、宿主に有効に投与するのに適し
た製薬上許容しうる組成物を調製するために適当量の賦
形剤と共に含む。
て製薬上有用な組成物を調製する既知方法により処方で
きる。適当な賦形剤やそれらの処方は、例えばイー.ダ
ブリュー.マーチンによるレミントンズ・ファーマシュ
ーティカル・サイエンスズに記載される。これらの組成
物は、有効量のgEを、宿主に有効に投与するのに適し
た製薬上許容しうる組成物を調製するために適当量の賦
形剤と共に含む。
【0054】全く説明のためであって限定を目的とする
ものでなく、本発明による調製された非経口投与のため
の医薬製品の例を記載する。
ものでなく、本発明による調製された非経口投与のため
の医薬製品の例を記載する。
【0055】ワクチンは、単一用量バイアルの凍結乾燥
バキュロウイルス発現HSV−1gE単独として、又は
1又はそれ以上の免疫原性HSV−1グリコプロテイ
ン、及びアラムを伴う希釈剤のバイアルと組合せて与え
うる。別法としてワクチンは多投与量バイアル及びアラ
ムを伴う希釈剤のバイアルで与えうる。
バキュロウイルス発現HSV−1gE単独として、又は
1又はそれ以上の免疫原性HSV−1グリコプロテイ
ン、及びアラムを伴う希釈剤のバイアルと組合せて与え
うる。別法としてワクチンは多投与量バイアル及びアラ
ムを伴う希釈剤のバイアルで与えうる。
【0056】記載された本発明から、これらの方法が修
飾できることは明らかであり、修飾は、本発明の精神及
び目的から逸脱せず、この分野の当業者にとって明らか
である。従って本発明は、それらに限るものとして解釈
すべきでなく、添付の請求の範囲の法的範囲に限られる
と解釈すべきことが理解される。
飾できることは明らかであり、修飾は、本発明の精神及
び目的から逸脱せず、この分野の当業者にとって明らか
である。従って本発明は、それらに限るものとして解釈
すべきでなく、添付の請求の範囲の法的範囲に限られる
と解釈すべきことが理解される。
【0057】引用文献 1.ブラックローズ、ビー.エイ.、クリシュナ.エ
ス.、ミンソン、エイ.シー.及びナシユ、エイ.エ
イ.ワクチニアウイルス組換え体において発現された単
純ヘルペスウイルス型1グリコプロテインの免疫原性、
バイロロジイ(Virology)、177、727−736(1
990)。 2.パラ、エム.エフ.、バウケ.アール.ビー.及び
スペア、ピー.ジー.単純ヘルペスウイルス型1のグリ
コプロテインgE: ビリオン感染性に対する及びfc結合
レセプターを誘発したウイルスに対する抗gEの効果、
ジャーナル・オブ・バイロロジイ(J.Virol.)、4
1、129−136(1982)。 3.ドビン、ジー.フランク.アイ.及びフリードマ
ン、エイチ.エム.単純ヘルヘスウイルス型1は、単量
体免疫グロブリンG(IgG)及びIgG錯体について異な
る結合特性を有する2つのFcレセプターをコード化す
る。ジャーナル・オブ・バイロロジイ(J.Virol.)、
64,2725−2731(1990)。 4.サマーズ.エム.ディ.及びスミス.ジー.エー.
バキュロウイルスベクター及び昆虫細胞培養方法の手
引、テキサス・アグリカルチュラル・エクスペリメンタ
ル・ステイション・ブレチン(Texas Agricultural
ExperimentalStation Bulletin)#1555(198
7)。 5.ロック、ディ.エル.ネスバーン、エイ.ビー.ギ
アシ、エイチ.オング.ジェイ.、レウィス、ティ.エ
ル.、ロークンスガード、ジェイ.アール.及びウェシ
ュラー.エス.エル.単純ヘルペスウイルス型1で潜伏
的に感染したウサギの三節神経節におけるウイルスRN
Asに関連する潜伏の検出、ジャーナル・オブ・バイロ
ロジイ(J.Virol.)61、3820−3826(19
87)。 6.ゴルディン.エイ.アイ.、サンドリーゴルディ
ン、アール.エム.、レビン.エム.、及びグロギオ
ソ、ジェイ.シー.全ゲノムを表現する単純ヘルペスウ
イルス型1配列のクローニング、ジォーナル・オブ・バ
イロロジイ(J.Virol.)、38、50−58(198
1)。 7.ラスキィ、エル.エイ.、ドゥベンコ.ディ.、シ
モンセン.シー.シー.、及びバーマン、ピー.ダブリ
ュ.分泌形のクローンされたグリコプロテインDの予防
接種による致死単純ヘルペスウイルスからマウスの防
御、バイオテクノロジイ(BioTech.)、4、527−
532(1984)。 8.ギアシ、エイチ.、カイワー.アール.、ネスバー
ン.エイ.ビー.及びウェクスラー、エス.エル.高レ
ベルの生物学的に活性な単純ヘルペスウイルス型1グリ
コプロテインDを発現する組換えバキュロウイルスの免
疫選択、アーカイブス・オブ・バイロロジィ(Arch.V
ir.)、印刷中(1991a)。 9.チャタージー,エス.コガ.ジェイ.及びウィトレ
イ、アール.ジェイ.細胞融合の誘導における単純性ヘ
ルペスウイルス型1グリコプロテインEの役割、ジャー
ナル・オブ・ジェネラル・バイロロジィ(J.Gen.Vi
rol.)70、2157−2161(1989)。 10.ハシュ、エイ.エイ.フィード、エイチ.ジェ
イ.及びフォーティーパパフィオ,アール。単純性ヘル
ペスウイルス感染マウスにおける細胞性免疫:遅延型過
敏症効果の誘導、特徴づけ及び抗ウイルス性効果、ジャ
ーナル・オブ・ジェネラル・バイロロジイ(J.Gen.
Virol.)、48、351−357(1980)。 11.マクゲオク、ディ.ジェイ.、ドラン、エイ.ド
ラン、エス.及びリクソン、エフ.ジェイ。単純性ヘル
ペスウイルス型1のゲノムにおける短ユニーク部分の配
列測定及び遺伝含量、ジャーナル・オブ・モレキュラー
・バイオロジイ.(J.Mol.Biol.)181、1−1
3(1985)。 12.リー、ジェイ.ティ.ワイ.、パラ、エム.エ
フ.及びスペア、ピィ.ジェイ。単純性ヘルペスウイル
ス型1DNAのS成分におけるグリコプロテインgD及
びgEの、及び他のポリペプチデの構造遺伝子の位置、
ジャーナル・オブ・バイロロジイ(J.Virol.)43、
41−49(1982)。 13.ベル、エス.、クラネイジ、エム.、ボリシーウ
ィックズ、エル.及びミンソン、ティー。単純性ヘルペ
スウイルス型1のグリコプロテイン及びIを発現する組
換えワクチニアウイルスによる免疫グロブリンGFcレ
セプターの誘導、ジャーナル・オブ・バイロロジイ
(J.Virol.)64、2181−2186(1990)。 14.マニアティス.ティ.、フラッツ、オー.エフ.
及びサンブルック.ジェイ.分子クローニング、実験手
引書、コールド・スプリング・ハーバー・ラボラトリィ
ー、コールド・スプリング・ハーバー、N.Y. 15.ハクル.シー.、バーク.アール.エル.、スツ
ーグ、エル.エル.、サンチェズーペスカダー、エ
ル.、バン・ネスト、ジィ.マシアーズ、エフ及びディ
ナ、ディ.哺乳動物細胞における細胞内及び分泌形の単
純性ヘルペスウイルス型1グリコプロテインgBの発現
ジャーナル・オブ・バイロロジイ(Jnl.Virol.)61
(2)、315−325(1987)。 16.マンサービジ、アール.、グロッシィ、エム.ア
ール.グアランドリ、アール、バルドニ、ピー.ジ
ィ.、マーチニ、エイ.ロタラ、エイ.、リメッシ、ピ
ー.、ディ・ルカ、ディ.、カッサイ、イー.及びバー
バンティーブロダノ、ジィ.BKウイルスエピゾームベ
クターでヒト細胞において本質的に発現された分泌組換
えグリコプロテインBによる単純性ヘルペスウイルス型
1致死及び潜伏感染からの防御、ジャーナル・オブ・バ
イロロジイ(Jnl.Virol.)64(1)、431−43
6。
ス.、ミンソン、エイ.シー.及びナシユ、エイ.エ
イ.ワクチニアウイルス組換え体において発現された単
純ヘルペスウイルス型1グリコプロテインの免疫原性、
バイロロジイ(Virology)、177、727−736(1
990)。 2.パラ、エム.エフ.、バウケ.アール.ビー.及び
スペア、ピー.ジー.単純ヘルペスウイルス型1のグリ
コプロテインgE: ビリオン感染性に対する及びfc結合
レセプターを誘発したウイルスに対する抗gEの効果、
ジャーナル・オブ・バイロロジイ(J.Virol.)、4
1、129−136(1982)。 3.ドビン、ジー.フランク.アイ.及びフリードマ
ン、エイチ.エム.単純ヘルヘスウイルス型1は、単量
体免疫グロブリンG(IgG)及びIgG錯体について異な
る結合特性を有する2つのFcレセプターをコード化す
る。ジャーナル・オブ・バイロロジイ(J.Virol.)、
64,2725−2731(1990)。 4.サマーズ.エム.ディ.及びスミス.ジー.エー.
バキュロウイルスベクター及び昆虫細胞培養方法の手
引、テキサス・アグリカルチュラル・エクスペリメンタ
ル・ステイション・ブレチン(Texas Agricultural
ExperimentalStation Bulletin)#1555(198
7)。 5.ロック、ディ.エル.ネスバーン、エイ.ビー.ギ
アシ、エイチ.オング.ジェイ.、レウィス、ティ.エ
ル.、ロークンスガード、ジェイ.アール.及びウェシ
ュラー.エス.エル.単純ヘルペスウイルス型1で潜伏
的に感染したウサギの三節神経節におけるウイルスRN
Asに関連する潜伏の検出、ジャーナル・オブ・バイロ
ロジイ(J.Virol.)61、3820−3826(19
87)。 6.ゴルディン.エイ.アイ.、サンドリーゴルディ
ン、アール.エム.、レビン.エム.、及びグロギオ
ソ、ジェイ.シー.全ゲノムを表現する単純ヘルペスウ
イルス型1配列のクローニング、ジォーナル・オブ・バ
イロロジイ(J.Virol.)、38、50−58(198
1)。 7.ラスキィ、エル.エイ.、ドゥベンコ.ディ.、シ
モンセン.シー.シー.、及びバーマン、ピー.ダブリ
ュ.分泌形のクローンされたグリコプロテインDの予防
接種による致死単純ヘルペスウイルスからマウスの防
御、バイオテクノロジイ(BioTech.)、4、527−
532(1984)。 8.ギアシ、エイチ.、カイワー.アール.、ネスバー
ン.エイ.ビー.及びウェクスラー、エス.エル.高レ
ベルの生物学的に活性な単純ヘルペスウイルス型1グリ
コプロテインDを発現する組換えバキュロウイルスの免
疫選択、アーカイブス・オブ・バイロロジィ(Arch.V
ir.)、印刷中(1991a)。 9.チャタージー,エス.コガ.ジェイ.及びウィトレ
イ、アール.ジェイ.細胞融合の誘導における単純性ヘ
ルペスウイルス型1グリコプロテインEの役割、ジャー
ナル・オブ・ジェネラル・バイロロジィ(J.Gen.Vi
rol.)70、2157−2161(1989)。 10.ハシュ、エイ.エイ.フィード、エイチ.ジェ
イ.及びフォーティーパパフィオ,アール。単純性ヘル
ペスウイルス感染マウスにおける細胞性免疫:遅延型過
敏症効果の誘導、特徴づけ及び抗ウイルス性効果、ジャ
ーナル・オブ・ジェネラル・バイロロジイ(J.Gen.
Virol.)、48、351−357(1980)。 11.マクゲオク、ディ.ジェイ.、ドラン、エイ.ド
ラン、エス.及びリクソン、エフ.ジェイ。単純性ヘル
ペスウイルス型1のゲノムにおける短ユニーク部分の配
列測定及び遺伝含量、ジャーナル・オブ・モレキュラー
・バイオロジイ.(J.Mol.Biol.)181、1−1
3(1985)。 12.リー、ジェイ.ティ.ワイ.、パラ、エム.エ
フ.及びスペア、ピィ.ジェイ。単純性ヘルペスウイル
ス型1DNAのS成分におけるグリコプロテインgD及
びgEの、及び他のポリペプチデの構造遺伝子の位置、
ジャーナル・オブ・バイロロジイ(J.Virol.)43、
41−49(1982)。 13.ベル、エス.、クラネイジ、エム.、ボリシーウ
ィックズ、エル.及びミンソン、ティー。単純性ヘルペ
スウイルス型1のグリコプロテイン及びIを発現する組
換えワクチニアウイルスによる免疫グロブリンGFcレ
セプターの誘導、ジャーナル・オブ・バイロロジイ
(J.Virol.)64、2181−2186(1990)。 14.マニアティス.ティ.、フラッツ、オー.エフ.
及びサンブルック.ジェイ.分子クローニング、実験手
引書、コールド・スプリング・ハーバー・ラボラトリィ
ー、コールド・スプリング・ハーバー、N.Y. 15.ハクル.シー.、バーク.アール.エル.、スツ
ーグ、エル.エル.、サンチェズーペスカダー、エ
ル.、バン・ネスト、ジィ.マシアーズ、エフ及びディ
ナ、ディ.哺乳動物細胞における細胞内及び分泌形の単
純性ヘルペスウイルス型1グリコプロテインgBの発現
ジャーナル・オブ・バイロロジイ(Jnl.Virol.)61
(2)、315−325(1987)。 16.マンサービジ、アール.、グロッシィ、エム.ア
ール.グアランドリ、アール、バルドニ、ピー.ジ
ィ.、マーチニ、エイ.ロタラ、エイ.、リメッシ、ピ
ー.、ディ・ルカ、ディ.、カッサイ、イー.及びバー
バンティーブロダノ、ジィ.BKウイルスエピゾームベ
クターでヒト細胞において本質的に発現された分泌組換
えグリコプロテインBによる単純性ヘルペスウイルス型
1致死及び潜伏感染からの防御、ジャーナル・オブ・バ
イロロジイ(Jnl.Virol.)64(1)、431−43
6。
【0058】
配列番号:1 配列の長さ:1822塩基対 配列の型:核酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:genomic DNA 配列 ATGGATCGCG GGGCGGTGGT GGGGTTTCTT CTCGGTGTTT GTGTTGTATC GTGCTTGGCG 60 GGAACGCCCA AAACGTCCTG GAGACGGGTG AGTGTCGGCG AGGACGTTTC GTTGCTTCCA 120 GCTCCGGGGC CTACGGGGCG CGGCCCGACC CAGAAACTAC TATGGGCCGT GGAACCCCTG 180 GATGGGTGCG GCCCCTTACA CCCGTCGTGG GTCTCGCTGA TGCCCCCCAA GCAGGTGCCC 240 GAGACGGTCG TGGATGCGGC GTGCATGCGC GCTCCGGTCC CGCTGGCGAT GGCGTACGCC 300 CCCCCGGCCC CATCTGCGAC CGGGGGTCTA CGAACGGACT TCGTGTGGCA GGAGCGCGCG 360 GCCGTGGTTA ACCGGAGTCT GGTTATTCAC GGGGTCCGAG AGACGGACAG CGGCCTGTAT 420 ACCCTGTCCG TGGGCGACAT AAAGGACCCG GCTCGCCAAG TGGCCTCGGT GGTCCTGGTG 480 GTGCAACCGG CCCCAGTTCC GACCCCACCC CCGACCCCAG CCGATTACGA CGAGGATGAC 540 AATGACGAGG GCGAGGACGA AAGTCTCGCC GGCACTCCCG CCAGCGGGAC CCCCCGGCTC 600 CCGCCTCCCC CCGCCCCCCC GAGGTCTTGG CCCAGCGCCC CCGAAGTCTC ACATGTGCGT 660 GGGGTGACCG TGCGTATGGA GACTCCGGAA GCTATCCTGT TTTCCCCCGG GGAGACGTTC 720 AGCACGAACG TCTCCATCCA TGCCATCGCC CACGACGACC AGACCTACTC CATGGACGTC 780 GTCTGGTTGA GGTTCGACGT GCCGACCTCG TGTGCCGAGA TGCGAATATA CGAATCGTGT 840 CTGTATCACC CGCAGCTCCC AGAATGTCTG TCCCCGGCCG ACGCGCCGTG CGCCGCGAGT 900 ACGTGGACGT CTCGCCTGGC CGTCCGCAGC TACGCGGGGT GTTCCAGAAC AAACCCCCCA 960 CCGCGCTGTT CGGCCGAGGC TCACATGGAG CCCGTCCCGG GGCTGGCGTG GCAGGCGGCC 1020 TCCGTCAATC TGGAGTTCCG GGACGCGTCC CCACAACACT CCGGCCTGTA TCTGTGTGTG 1080 GTGTACGTCA ACGACCATAT TCACGCCTGG GGCCACATTA CCATCAGCAC CGCGGCGCAG 1140 TACCGGAACG CGGTGGTGGA ACAGCCCCTC CCACAGCGCG GCGCGGATTT GGCCGAGCCC 1200 ACCCACCCGC ACGTCGGGGC CCCTCCCCAC GCGCCCCCAA CCCACGGCGC CCTGCGGTTA 1260 GGGGCGGTGA TGGGGGCCGC CCTGCTGCTG TCTGCACTGG GGTTGTCGGT GTGGGCGTGT 1320 ATGACCTGTT GGCGCAGGCG TGCCTGGCGG GCGGTTAAAA GCAGGGCCTC GGGTAAGGGG 1380 CCCACGTACA TTCGCGTGGC CGACAGCGAG CTGTACGCGG ACTGGAGCTC GGACAGCGAG 1440 GGAGAACGCG ACCAGGTCCC GTGGCTGGCC CCCCCGGAGA GACCCGACTC TCCCTCCACC 1500 AATGGATCCG GCTTTGAGAT CTTATCACCA ACGGCTCCGT CTGTATACCC CCGTAGCGAT 1560 GGGCATCAAT CTCGCCGCCA GCTCACAACC TTTGGATCCG GAAGGCCCGA TCGCCGTTAC 1620 TCCCAGGCCT CCGATTCGTC CGTCTTCTGG TAAGGCGCCC CATCCCGAGG CCCCACGTCG 1680 GTCGCCGAAC TGGGCGACCG CCGGCGAGGT GGACGTCGGA GACGAGCTAA TCGCGATTTC 1740 CGACGAACGC GGACCCCCCC GACATGACCG CCCGCCCCTC GCCACGTCGA CCGCGCCCTC 1800 GCCACACCCG CGACCCCCGG GC 1822
【図1】 HSV−1株KOSのgE遺伝子を含む組換
えベクターの調製を示す。
えベクターの調製を示す。
【図2】 バキュロウイルスベクターに挿入された1,
822ヌクレオチド分離gE断片の範囲を示す。
822ヌクレオチド分離gE断片の範囲を示す。
【図3】 最終ベクターにおけるgE遺伝子の開始近く
のポリヘドリン遺伝子プロモーター配列を示す。
のポリヘドリン遺伝子プロモーター配列を示す。
【図4】 バキュロウイルス−gE発現及びグリコシル
化のウエスタンブロット分析を示す薄膜の写真である。
化のウエスタンブロット分析を示す薄膜の写真である。
【図5】 クーマシーブルー染色による発現gEの検出
を示す薄膜の写真である。
を示す薄膜の写真である。
【図6】 抗バキュロウイルス−gE血清によるHSV
−1感染性の中和を示す。
−1感染性の中和を示す。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 FI C12N 15/09 ZNA C12N 5/00 B (C12P 21/02 C12R 1:92) (72)発明者 スティーブン・ルイス・ウェクスラー アメリカ合衆国91361カリフォルニア州 ウエストレイク・ビレッジ、セブンオー クス・コート4401番 (72)発明者 ホマヨン・ギアシ アメリカ合衆国90034カリフォルニア州 ロサンジェルス、クレスト・ドライブ 1904番 (56)参考文献 VIROLOGY,VOL.177, (1990),P.727−736 J.VIROL.,VOL.41, (1982)P.129−136 MOL.CELL.BIOL.,VO L.3,(1983)P.2156− (58)調査した分野(Int.Cl.6,DB名) A61K 39/245 C12P 21/00 - 21/02 C12N 15/00 - 15/90 C07K 14/035 C12N 5/00 - 5/10 C12N 7/00 - 7/08 BIOSIS(DIALOG) EPAT(QUESTEL) GenBank/EMBL/DDBJ(G ENETYX) WPI(DIALOG)
Claims (16)
- 【請求項1】 (a) 完全長のHSV−1gEとトラン
スメンブランアンカー配列を除去したHSV−1gEの
少なくとも1つをコードする遺伝子配列および(b) 該
遺伝子配列がその調節要素に機能的に結合しており、バ
キュロウイルス発現系で作動するプロモーター配列を含
む遺伝子構築体を有する組換えバキュロウイルスの発現
により産生される、HSV−1gEを含む、単純ヘルペ
スウイルス感染の処置または予防のためのワクチン。 - 【請求項2】 遺伝子構築体がpAc−gEを含む、請求
項1記載のワクチン。 - 【請求項3】 更に薬理学的に許容可能な担体を含む、
請求項1記載のワクチン。 - 【請求項4】 更に少なくとも一つのアジュバントを含
む、請求項1記載のワクチン。 - 【請求項5】 アジュバントがアラム、フロインド、M
TP−PEおよびISCOMsからなる群から選択され
る、請求項4記載のワクチン。 - 【請求項6】 プロモーターがポリヘドロン遺伝子プロ
モーターである、請求項1記載のワクチン。 - 【請求項7】 完全長のHSV−1gEとトランスメン
ブランアンカー配列を除去したHSV−1gEの少なく
とも1つをコードする遺伝子配列および該遺伝子配列が
その調節要素に機能的に結合しており、バキュロウイル
ス発現系で作動するプロモーター配列を含む遺伝子構築
体を有する組換えバキュロウイルスを調製する工程、 組換えバキュロウイルスを第1群の宿主細胞に挿入する
工程、 この宿主細胞を培養する工程および培養物からHSV−
1gEを回収する工程を含む、単純ヘルペスウイルス感
染の処置または予防のためのワクチンの製造法。 - 【請求項8】 HSV−1gEと薬理学的に許容可能な
担体を含むエマルジョンを調製する工程を更に含む、請
求項7記載の方法。 - 【請求項9】 エマルジョンが少なくとも一つのアジュ
バントを含む、請求項8記載の方法。 - 【請求項10】 アジュバントがアラム、フロインド、
MTP−PEおよびISCOMsからなる群から選択さ
れる、請求項9記載の方法。 - 【請求項11】 組換えバキュロウイルスが遺伝子構築
体をバキュロウイルスゲノムへ組込むことによって調製
されるものである、請求項7記載の方法。 - 【請求項12】 遺伝子構築体がpAc−gEを含む、請
求項7記載の方法。 - 【請求項13】 第1群の宿主細胞が遺伝子構築体を発
現する昆虫細胞である、請求項7記載の方法。 - 【請求項14】 昆虫細胞がスポドプテラ・フルギペル
ダ由来のものである、請求項13記載の方法。 - 【請求項15】 プロモーターがポリヘドロン遺伝子プ
ロモーターである、請求項7記載の方法。 - 【請求項16】 更に第2群の宿主細胞を遺伝子構築体
と野生型バキュロウイルスDNAで共形質転換する工程
と第2群の宿主細胞をスクリーニングして組換えバキュ
ロウイルスを保持する細胞を同定する工程を含む、請求
項7記載の方法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US84592092A | 1992-03-04 | 1992-03-04 | |
US845920 | 1992-03-04 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0614769A JPH0614769A (ja) | 1994-01-25 |
JP2759035B2 true JP2759035B2 (ja) | 1998-05-28 |
Family
ID=25296432
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP4378493A Expired - Fee Related JP2759035B2 (ja) | 1992-03-04 | 1993-03-04 | 単純ヘルペスウイルス感染防御用ワクチン |
Country Status (3)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP0561525A1 (ja) |
JP (1) | JP2759035B2 (ja) |
AU (1) | AU660528B2 (ja) |
Families Citing this family (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6100064A (en) * | 1984-04-06 | 2000-08-08 | Chiron Corporation | Secreted viral proteins useful for vaccines and diagnostics |
CA2090303A1 (en) * | 1992-03-18 | 1993-09-19 | Anthony B. Nesburn | Process for the expression of herpes simplex virus type 1 glycoprotein 1 and methods of use |
Family Cites Families (3)
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1993
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Non-Patent Citations (3)
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Also Published As
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