JP2024517954A - 肝疾患を治療するための方法および組成物 - Google Patents

Abstract

必要とする対照に治療有効量の活性化幹細胞を罹患組織または器官に投与することを含む治療方法が提供される。本明細書に記載の方法は、幹細胞の「活性化」または「プレコンディショニング」を含むＭＳＣの精製および製剤化方法である。【選択図】図１

Description

本開示は、幹細胞を用いて肝疾患を治療するための方法および組成物に関する。本明細書でより具体的に記載されるのは、哺乳類の治療において間葉系幹細胞（ＭＳＣ）を用いた治療方法、ならびに、幹細胞の「活性化」または「プレコンディショニング」を含むＭＳＣの精製および製剤化方法である。

幹細胞は、特殊な細胞であり、細胞分裂を通じて自己を複製し、多系統の細胞に分化することができる。これらの細胞は、胚性幹細胞（ＥＳＣ）、人工多能性幹細胞（ｉＰＳＣ）および成体幹細胞に分類される。間葉系幹細胞（ＭＳＣ）は、ヒトおよび動物から単離することができる成体幹細胞である。ヒトＭＳＣ（ｈＭＳＣまたはｈｕＭＳＣ）は、骨細胞、脂肪細胞、および軟骨細胞等の中胚葉系、ならびに外胚葉系（神経細胞）および内胚葉系（肝細胞）への分化能を有する、非造血性の多能性幹細胞である。ＭＳＣは、分化クラスタ（ＣＤ）２９、ＣＤ４４、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ１０５を含む細胞表面マーカーを発現し、ＣＤ１４、ＣＤ３４、ＣＤ４５、およびＨＬＡ（ヒト白血球型抗原）－ＤＲの発現を欠く。ｈＭＳＣは、脂肪組織、羊水、子宮内膜、歯組織、臍帯、ホウォートンゼリーを含む様々な組織から単離されている。ｈＭＳＣは、重篤な異常なしに特定の培地で長期培養されている。

ＭＳＣは免疫調節機能を示し、ホスト組織において微小環境を制御するサイトカインおよび免疫受容体を分泌することができる。多分化能、免疫調節、抗炎症分子の分泌により、ＭＳＣは慢性疾患の治療に効果的なツールとなる。

本開示は、少なくとも部分的には、ＭＳＣを用いて肝疾患の治療において有益な因子を産生することにより、ＭＳＣは様々な状態、たとえば、肝疾患等の哺乳類が罹患する状態を治療し得るという非限定的な理論に基づく。このような因子には、サイトカイン、たとえばＩＬ－６が含まれ得る。ＩＬ－６は、多面的サイトカインであり、適応免疫の調節により、炎症、肝再生、および感染防御に様々な作用を及ぼす。炎症が起きている環境ではＩＬ－６が多く存在するため、ＩＬ－６は有害なサイトカインとみなされることが多い。しかし、累積しゆく証拠は、肝再生および特定の状態における抗炎症反応の促進におけるＩＬ－６の役割により、ＩＬ－６は多くの肝病態において有益な影響を及ぼすという見解を支持する。ＩＬ－６は、増殖、血管新生、および代謝を促進し、アポトーシスおよび酸化ストレスを下方制御する。これらの機能は共に肝保護を仲介するために重要である。また、ＩＬ－６は、それがＴ細胞の分化を誘導し自己免疫を制御する適応免疫の重要な制御因子でもある。これは、抗ウイルス適応免疫応答を増強し、慢性感染時のＴ細胞の枯渇を緩和することができる。

開示される実施形態には、患者を、たとえば、肝疾患またはその症状に罹患しているヒトまたは非ヒト哺乳類を治療するための組成物が含まれ、該組成物は、たとえば、脂肪組織、臍帯、胎盤組織、骨髄、歯組織、精巣組織、子宮組織、臍帯組織、または皮膚組織から単離された前駆細胞由来であり、標的患者と同種他家または自己由来であるＭＳＣと、生理食塩水とを含み、該組成物は、標的患者における肝疾患の症状を予防、軽減、または除去することができる。

開示される実施形態には、「活性化された」ＭＳＣの治療的使用が含まれる。たとえば、実施形態には、たとえば磁気活性化セルソーティング（ＭＡＣＳ）または蛍光活性化セルソーティング（ＦＡＣＳ）を用いること等により、異なる能力を有するＭＳＣを精製して、特定の用途向けのその治療上の利点を最大化することが含まれる。さらなる実施形態には、たとえばサイトカイン、反応性タンパク質、化学物質、小分子、およびそれらの組み合わせを含む特定の刺激剤によりＭＳＣを活性化することが含まれる。これらの刺激剤は、ＭＳＣの機能、たとえば、炎症誘導性サイトカインにより誘導され得るＭＳＣによる免疫抑制を増強または抑制することができる。

開示される実施形態には、冷凍され解凍されたＭＳＣが含まれる。ＭＳＣには、不活性化された、または活性化されたＭＳＣが含まれ得る。活性化された後に冷凍されたＭＳＣの使用を含む実施形態では、ＭＳＣは再度活性化され得る。活性化された後に冷凍されたＭＳＣの使用を含む実施形態では、活性化されたＭＳＣはさらなる活性化を必要としない。

さらなる実施形態には、併用療法におけるＭＳＣの使用、たとえば、薬剤もしくは医薬活性剤、または医薬組成物と組み合わせたＭＳＣの使用が含まれる。たとえば、開示された実施形態には、たとえば、精製エクソソーム等のエクソソームと組み合わせたＭＳＣの投与が含まれる。

ＭＳＣ処理により、アルコール性肝炎のヒト化ＦＲＧマウスの死亡率が改善されたことを示す（全生存期間）。アルコール過剰コホート（Ａｌｃｏｈｏｌ ｂｉｎｇｉｎｇ Ｃｏｈｏｒｔ）は、ＰＢＳ対照群と比較して、ＭＳＣ処理マウスにおいて高い生存率を示す。ログランク（マンテル・コックス）検定Ｐ＜０．０００１。ゲーハン・ブレスロウ・ウィルコクソン検定Ｐ＜０．０００１。 コホート１のＡＬＴおよびＡＳＴを示す。ＡＬＴおよびＡＳＴは、生化学アッセイにより測定された。アルコール性肝炎のマウスに非活性化ＭＳＣを反復注射した後、ＡＬＴとＡＳＴの両方の濃度が低下した。スチューデントのＴ検定解析は、処理後のＡＬＴおよびＡＳＴがＭＳＣ反復注射群で有意に低い値を示したが、ＰＢＳ注射ではＡＬＴとＡＳＴの値に有意な変化がなかったことを示す。 活性化ＭＳＣ処理により、アルコール性肝炎のヒト化ＦＲＧマウスの死亡率が改善されたことを示す（全生存期間）。ＭＳＣ注射の有／無でのＦＲＧマウスの生存データを示す。ログランク（マンテル・コックス）検定のＰ値は０．０１３０、ログランク・トレンド検定のＰ値は０．００３２、ゲーハン・ブレスロウ・ウィルコクソン検定のＰ値は０．０２７０であった。 アルコール性肝炎のヒト化ＦＲＧマウスの死亡時または屠殺時の組織学的所見を示す。（Ａ）軽度の（１＋）脂肪症を示すＰＢＳ対照マウスである（ＨＥ×１００倍）。（Ｂ）軽度（１＋脂肪症）を示すＰＢＳ対照マウスである（ＨＥ×１００倍）。（Ｃ）軽度（１＋脂肪症）と３０％の壊死を示す、非活性化ＩＰで処理したマウスである（ＨＥ×１００倍）。（Ｄ）脂肪症を示さない、非活性化ＭＳＣ ＩＰで処理したマウスである（ＨＥ×１００倍）。（Ｅ）有意な脂肪症を示さない（＜５％）、活性化ＭＳＣ ＩＰで処理したマウスである（ＨＥ×１００倍）。（Ｆ）軽度（１＋脂肪症）と２０％の壊死を示す、活性化ＭＳＣ ＩＶで処理したマウスである（ＨＥ×１００倍）。 コホート２のＡＳＴおよびＡＬＴの濃度を示す。ＡＳＬおよびＡＬＴは、処理開始時、および安楽死を含む死亡時に測定された。スチューデントのＴ検定解析は、処理後のＡＬＴおよびＡＳＴがＭＳＣ反復注射群で有意に低い値を示したが、ＰＢＳ注射ではマウス血清のＡＬＴとＡＳＴの値に有意な変化がなかったことを示す。 ＭＳＣ活性化後のＭＳＣによるサイトカイン発現を示す。 ベースラインの化学パネルデータ（ブタ）を示す。 ベースラインの化学パネルデータ（ブタ）を示す。 図７および図８のブタのエンドポイントの化学パネルデータを示す。 図７および図８のブタのエンドポイントの化学パネルデータを示す。 ベースラインの化学パネルデータ（ブタ）を示す。 ベースラインの化学パネルデータ（ブタ）を示す。 図１１および図１２のブタのエンドポイントの化学パネルデータを示す。 図１１および図１２のブタのエンドポイントの化学パネルデータを示す。 ベースラインの化学パネルデータ（ブタ）を示す。 ベースラインの化学パネルデータ（ブタ）を示す。 図１５および図１６のブタのエンドポイントの化学パネルデータを示す。 図１５および図１６のブタのエンドポイントの化学パネルデータを示す。 試験動物の健康状態を示す全血球計算のベースラインデータを示す。 実施例８に記載されるように、フラスコごとに採取された細胞数を示す。 実施例６に記載されるように、４８時間培養後の細胞集団の倍加時間を示す。 実施例８の活性化細胞の平均生存率を示す。 「オリジナル」のＰ．５細胞（実施例８）が、細胞あたりでより高い濃度を放出したことを示す。事前に活性化された細胞を凍結・解凍して４８時間培養した場合、細胞は依然として重要なサイトカイン（ＩＬ６、ＭＣＰ１、ＴＧＦＢ等のサイトカイン）を高レベルで産生することができた。また、グラフのデータは、事前に活性化された細胞を凍結・解凍して４８時間培養し、２度目の再活性化をさせた場合も示す。細胞は、依然として、既に一度活性化された細胞、または既に活性化され、凍結／解凍され、４８時間培養された細胞と同様に、重要なサイトカインを産生することができた。 間葉系幹細胞（ＭＣＳ）処理により、アルコール性肝炎のヒト化Ｆａｈ－／－、Ｒａｇ２－／－、Ｉｌ２ｒｇｃ－／－（ＦＲＧ）マウスの死亡率が改善されたことを示す。（Ａ）ＡＳＨ１コホートの関連時点を示す概略図である。（Ｂ）非活性化ＭＳＣで処理したマウスの生存率は、リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）で処理したマウスよりも有意に良好であった（ウィルコクソン ｐ＜０．０００１）。ＨＳＣ、造血幹細胞；Ｈｅｐ、肝細胞；ＩＰ、腹腔内；ＩＶ、静脈内；ｑＲＴ－ＰＣＲ、定量的リアルタイムポリメラーゼ連鎖反応。 ＭＳＣ処理により、アルコール性肝炎のヒト化ＦＲＧマウスの死亡率が改善されたことを示す。（Ａ）ＡＳＨ２コホートの関連時点を示す概略図である。（Ｂ）活性化されたＭＳＣでいずれかの経路により処理したマウスの生存率は、非活性化ＭＳＣまたはＰＢＳ単独で処理されたマウスよりも有意に良好であった（ウィルコクソン ｐ＜０．０００１）。活性化ＭＳＣ ＩＰ＋ＩＶ群、活性化ＭＳＣ ＩＶ群、活性化ＭＳＣ ＩＰ群、および活性化ＭＳＣ ＩＰ＋ＩＶ群は重なり、いずれも同様の１００％の生存ラインであった。ＨＦＣＤ、高脂肪食。＊＝ｐ＜０．０５。 コホート２のアスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ（ＡＳＴ）およびアラニンアミノトランスフェラーゼ（ＡＬＴ）濃度を示す。ＡＳＴおよびＡＬＴは、処理開始時、および屠殺を含む死亡時に測定された。（Ａ）最終日のＡＬＴのボンフェローニ補正による事後解析：活性化対ＰＢＳ：＜０．０００１；非活性化対ＰＢＳ：＜０．０００１。（Ｂ）最終日のＡＳＴのボンフェローニ補正による事後解析：活性化対ＰＢＳ：＜０．０００１；非活性化対ＰＢＳ：＜０．０００１。ＡＳＴの変化のボンフェローニ補正による事後解析：活性化対ＰＢＳ：＜０．０００１；非活性化対ＰＢＳ：＜０．０００１。 ビメンチンが肝臓におけるヒトＭＳＣの位置を検証することを示す。（Ａ）ビメンチン（ヒト特異的）免疫組織化学（ＩＨＣ）は、活性化ＭＳＣ処理群のみで最小の発現を示す。スケールバー＝１０μｍ。（Ｂ）定量的ＰＣＲは、ＰＢＳ対照群と比較して、ビメンチンＭＳＣマーカーが有意に２倍増加したことを示す。（Ｃ）活性化ＭＳＣ群において、ＰＢＳおよび非活性化ＭＳＣ群と比較して、Ｋｉ－６７マーカーが有意に上昇した。（Ｄ）活性化および非活性化ＭＳＣの両方で、ＰＢＳ処理群と比較して、ミエロペルオキシダーゼ（ＭＰＯ）発現マーカーが有意に減少した。（Ｅ）活性化ＭＳＣは、ＰＢＳ対照と比較して、有意に低いレベルでヒト血清アルブミンを発現した。ＤＡＰＩ、４’，６－ジアミジノ－２－フェニルインドール。＊＝ｐ＜０．０５、＊＊：Ｐ＜０．０１、＊＊＊＊：ｐ＜０．０００１。 受容体相互作用タンパク質キナーゼ（ＲＩＰＫ３）ＩＨＣがネクロトーシス経路に関する洞察を提供することを示す。（Ａ）ＰＢＳ、非活性化ＭＳＣ、および活性化ＭＳＣにおけるＤＡＰＩ（青）およびＲＩＰＫ３（赤）の発現を示す共焦点蛍光画像である。スケールバー＝１０μｍ。（Ｂ）免疫反応性スコア（ＩＲＳ）は、活性化ＭＳＣ組織においてＲＩＰＳ３の発現が有意に減少したことを示す。各群について、代表的な３つのパラフィン包埋肝組織を染色した。（Ｃ）活性化ＭＳＣ処理マウス群およびＰＢＳ処理マウス群におけるＲＩＰ３の発現を示すウェスタンブロッティングである。活性化ＭＳＣ群では、ＰＢＳ対照群と比較して、ＲＩＰ３の発現が減少した。（Ｄ）Ｂ細胞リンパ腫２（ＢＣＬ－２）の発現を示すウェスタンブロッティングである。活性化ＭＳＣ処理群は、ＰＢＳおよび非活性化ＭＳＣ群と比較して、最も高いＢＣＬ－２の発現を示す。（Ｅ）ＢＣＬ－２プロモーターは、シグナル伝達兼転写活性化因子３（Ｓｔａｔ３）および環状アデノシン一リン酸応答配列結合タンパク質（ＣＲＥＢ１）結合部位により制御される。（Ｆ）活性化ＭＳＣ処理マウスにおける切断型ガスダーミンＤ（ＧＳＤＭＤ）発現の減少を示すウェスタンブロッティングである。切断型ガスダーミンＤは、非活性化およびＰＢＳ処理マウスにおいて高度に発現した。（Ｇ）提案される仮説メカニズムである。＊：ｐ＜０．０５、＊＊：Ｐ＝＜０．０１、＊＊＊：ｐ＜０．００１。 短鎖ヘアピンＣＤ４４（ｓｈ－ＣＤ４４）導入後のＭＳＣの減少を示す生物発光画像を示す。（Ａ）ｓｈ－スクランブル活性化ＭＳＣ ＩＰ注射後のマウスの像である。（Ｂ）ｓｈ－ＣＤ４４導入活性化ＭＳＣ後のマウスの像である。画像は、ｓｈ－スクランブルと比較してルシフェラーゼの量が少ないことを示す。ＲＯＩ、関心領域。 性別に基づく全生存期間を示す。カプラン・マイヤープロットは、雄マウスと雌マウスとの間の生存における最小の差を示す。 ＦＲＧ置換率を示すヒトミトコンドリア染色を示す。ヒトミトコンドリアＤＮＡのＩＨＣは、ヒト化ＦＲＧマウスが６０～７０％の置換率を有することを示す。 活性化ＭＳＣにおけるＩＬ－６、ＩＬ－１０、およびＭＣＰの重要性を明らかにするＥｌｉｓａアッセイを示す。 雄マウスが雌マウスよりも有意に生存率が高かったことを示す（ｐ＝０．０３）。但し、これらは群間で同等であった。 処理群による生存率を示す。１００万個の細胞を投与されたマウスの生存率は、プラセボ群より有意に良好な生存率である唯一のコホートであった（ｐ＝０．０３）。 各用量処理群中に死亡したマウスと、処理後２８日間生存した各用量処理群のマウスとの肝臓組織像の比較を示す。（Ａ）は、中等度（２＋）の脂肪症を示して死亡した、プラセボを注射したマウス＃６０４を示す（ＨＥ×１００倍）。（Ｂ）は、中等度（２＋）の脂肪症を示して処理後２８日間生存した、プラセボを注射したマウス＃６０６を示す（ＨＥ×１００倍）。（Ｃ）は、中等度（２＋）の脂肪症を示して死亡した、２８，０００個の活性化ＭＳＣを注射したマウス＃６４５を示す（ＨＥ×１００倍）。（Ｄ）は、軽度（１＋）の脂肪症を示して処理後２８日間生存した、２８，０００個の活性化ＭＳＣを注射したマウス＃６５４を示す（ＨＥ×１００倍）。（Ｅ）は、中等度（２＋）の脂肪症を示して死亡した、１００，０００個の活性化ＭＳＣを注射したマウス＃６５８を示す（ＨＥ×１００倍）。（Ｆ）は、軽度（１＋）の脂肪症を示して処理後２８日間生存した、１００，０００個の活性化ＭＳＣを注射したマウス＃１１９を示す（ＨＥ×１００倍）。（Ｇ）は、顕著（３＋）な脂肪症および壊死を示して死亡した、２５０，０００個の活性化ＭＳＣを注射したマウス＃７０１を示す（ＨＥ×１００倍）。（Ｈ）は、軽度（１＋）の脂肪症を示して処理後２８日間生存した、２５０，０００個の活性化ＭＳＣを注射したマウス＃６０７を示す（ＨＥ×１００倍）。（Ｉ）は、顕著（３＋）な脂肪症および壊死を示して死亡した、５００，０００個の活性化ＭＳＣを注射したマウス＃６９１を示す（ＨＥ×１００倍）。（Ｊ）は、軽度（１＋）の脂肪症を示して処理後２８日間生存した、５００，０００個の活性化ＭＳＣを注射したマウス＃６３２を示す（ＨＥ×１００倍）。（Ｋ）は、顕著（３＋）な脂肪症を示して死亡した、１，０００，０００個の活性化ＭＳＣを注射したマウス＃７２７を示す（ＨＥ×１００倍）。（Ｌ）は、軽度（１＋）の脂肪症を示して処理後２８日間生存した、１，０００，０００個の活性化ＭＳＣを注射したマウス＃６０１を示す（ＨＥ×１００倍）。

肝臓は、腹部の右上に位置する重要な器官である。重量は２～３ポンドであり、体内において、有害物質の代謝と解毒、食物由来の栄養素の変換、血液凝固の調節、ホルモンバランスの維持、ビタミンの貯蔵、免疫系成分の生成、消化に不可欠な胆汁の生成を含む多くの機能を果たす。

したがって、肝疾患は生活の質に重大な影響を与え得る。原因には、感染症、怪我、薬物または毒性化合物への曝露、自己免疫プロセス、薬物やアルコールの過剰摂取等が含まれ得る。肝疾患の影響には、炎症、瘢痕化、閉塞、血液凝固異常、及び肝不全を含むことができる。

本開示は、少なくとも部分的には、ＭＳＣ、たとえば、臍帯由来、胎盤由来、脂肪由来のＭＳＣを用いて患者を治療することの利点に基づく。治療には、疼痛または他の疾患もしくは状態症状を改善または軽減する方法、たとえば、肝疾患の少なくとも１つの症状を軽減する、たとえば、疼痛、吐き気、疲労、食欲不振、皮膚の黄変、およびそれらの組み合わせを軽減する方法が含まれる。本開示の治療に適した対象には、たとえば、ヒトまたは動物等の哺乳類が含まれる。本明細書で開示される治療には、他の生物活性剤、たとえば免疫抑制剤の投与を含むことができる。

本明細書で開示されるのは、ＭＳＣ、たとえば、臍帯ＭＳＣ、胎盤ＭＳＣ、脂肪由来ＭＳＣ等を単離および精製する方法である。さらなる実施形態には、ＭＳＣ、たとえば、臍帯ＭＳＣ、胎盤ＭＳＣ、または脂肪由来ＭＳＣ等を増殖および貯蔵する方法が含まれる。実施形態には、たとえば磁気活性化セルソーティング（ＭＡＣＳ）または蛍光活性化セルソーティング（ＦＡＣＳ）を用いること等により、細胞の異なる能力に基づいてＭＳＣを精製して、特定の使用のためにその治療上の利点を最大化することが含まれる。

さらなる実施形態には、ＭＳＣを活性化して、それらの治療利益を調節すること、たとえば、それらの能力を増大させて免疫応答を抑制または増強することが含まれる。さらなる実施形態では、ＭＳＣに、少なくとも１種のサイトカイン、たとえば、インターフェロンガンマ（ＩＦＮγ）、腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦα）、インターロイキン－１（ＩＬ－１）、インターロイキン－６（ＩＬ－６）、インターロイキン－１０（ＩＬ－１０）、インターロイキン－１２（ＩＬ－１２）、インターロイキン－８（ＩＬ－８）、マクロファージ炎症性タンパク質－１ベータ（ＭＩＰ－１ｂ）、またはインターロイキン－１７（ＩＬ－１７）を接触させることにより、患者への投与の前にＭＳＣを活性化させることができる。

（定義）
ＡＬＤ：アルコール性肝疾患
ＡＬＴ：アラニンアミノトランスフェラーゼ
ＡＳＴ：アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ
ＨＦＣＤ：高脂肪高コレステロール食
ＨＳＣ：ヒト造血幹細胞
ｈＵＣＭＳＣ：ヒト臍帯間葉系幹細胞
ＬＰＳ：リポ多糖
ＭＳＣ：間葉系幹細胞
ＰＢＳ：リン酸緩衝食塩水

本明細書では、単数の表記はその対象１つまたは１つより多くを（すなわち、少なくとも１つを）指すて用いられる。たとえば、『１つの要素』は、１つの要素または１つより多くの要素を意味する。

本明細書でＭＳＣに関して用いる場合、『活性化』（または『プレコンディション』）は、ＭＳＣに刺激剤を接触させることでＭＳＣ機能を増強するための、たとえばサイトカイン、反応性タンパク質、化学物質、小分子、およびそれらの組み合わせを含む刺激剤の使用を指す。

『含む』、『備える』、『有する』は、包括的且つ開放的な意味で用いられ、追加の要素が含まれ得ることを意味する。本明細書で用いられる場合、『等』、『たとえば』といった用語は、非限定的で、例示のみを目的としており、『を含む』、『これらに限定される分けではないが、～を含む』が互換的に用いられる。

『有効』、『有効量』、及び『治療有効量』は、投与後に有益な結果を生じるＭＳＣまたはその医薬組成物の量を指す。

『インビトロ』は、人工的環境および人工的環境内で生じる処理または反応を指す。インビトロ環境は、これらに限定されるわけではないが、試験管及び細胞培養を含む。『インビボ』は、自然環境（たとえば、動物または細胞）および自然環境内で生じる処理または反応を指す。

『肝疾患』は、肝臓の炎症または損傷を引き起こし肝機能に影響を与え得る任意の状態である。

本明細書で用いる場合、『または』、『もしくは』は、文脈が明白に他の意味を示さない限り、『および／または』を意味すると解すべきである。

『非経口投与』および『非経口的に投与される』は、本技術分野で周知の用語であり、経腸投与および局所投与を除く注射等の投与の形態を含み、これらに限定されるわけではないが、後眼窩、眼内、静脈内、筋肉内、腹膜内、血管内、心膜内、動脈内、くも膜下腔内、嚢内、眼窩内、心臓内、皮内、腹腔内、経気管、皮下、表皮下、関節内、嚢下、くも膜下、脊髄内、および、胸骨内の、注射および注入を含む。

主題の方法により治療される予定の、『患者』、『対象』、または『ホスト』は、ヒト、または、哺乳類、魚類、鳥類、爬虫類、または両生類等の、非ヒト動物のいずれかを意味し得る。

『医薬的に許容可能な』または『治療上許容可能な』は、活性成分の有効性または生物活性と干渉せず患者に有毒ではない物質を指す。

『医薬的に許容可能な担体』は、本技術分野で周知であり、たとえば、任意の主題の組成物を１つの器官または身体の一部から別の器官または身体の一部へと運ぶまたは輸送することに関与する、医薬的に許容可能な、材料、組成物、または、媒体（液体または固体の充填剤、希釈剤、賦形剤、溶剤、または、封入材料等）を含む。各担体は対象組成物の他の成分に適合する患者に有害ではないという意味で『許容可能』でなければならない。特定の実施形態では、医薬的に許容可能な担体は非発熱性である。医薬的に許容可能な担体として働き得る例示的な材料は、糖類（ラクトース、グルコース、およびスクロース等）、デンプン類（トウモロコシデンプンおよびジャガイモデンプン等）、セルロースおよびその誘導体（カルボキシメチルナトリウムセルロース、エチルセルロース、および酢酸セルロース等）、粉末トラガカント、麦芽、ゼラチン、タルク、賦形剤（ココアバターおよび坐剤ワックス等）、油（ピーナツ油、綿実油、向日葵油、ごま油、オリーブ油、トウモロコシ油、および大豆油等）、グリコール類（プロピレングリコール等）、ポリオール類（グリセリン、ソルビトール、マンニトール、およびポリエチレングリコール等）、エステル類（オレイン酸エチルおよびラウリン酸エチル等）、アガー、緩衝剤（水酸化マグネシウムおよび水酸化アルミニウム等）、アルギン酸、無発熱物質水、等張食塩水、リンゲル液、エチルアルコール、リン酸緩衝液、および、医薬製剤で採用される他の無毒な適合する物質を含む。

『医薬組成物』は、対象への投与に適した形態の、本明細書に記載の治療活性剤を含有する製剤を指す。実施形態では、医薬組成物はバルクまたは単位投与量形態である。組成物の単位用量での活性成分（たとえば、ＭＳＣ）の量は有効量であり、関連する特定の治療にしたがって変わり得る。当業者であれば、患者の年齢および状態に応じて投与量へのルーチン的な変更がときに必要とされることを理解するだろう。投与量は投与の経路にも依存するだろう。好ましい実施形態では、活性成分は、医薬的に許容可能な担体と、また、必要とされる、任意の保存料、緩衝剤、または噴射剤と無菌条件下で混合される。

『治療』は、哺乳類、たとえば、ヒトまたはペット等の動物における、任意の治療的介入を指し、（ｉ）予防、すなわち、臨床症状が発症しないようにすること、たとえば、感染または炎症が生じることおよび／または有害な状態に発展すること、（ｉｉ）阻害、すなわち、臨床症状の発症を抑止すること、たとえば、感染症が完全に取り除かれるように、または、感染症がもはや有害ではなくなる程度まで、進行中の感染症を止めること、および／または、（ｉｉｉ）軽減、すなわち、臨床症状の後退を引き起こすこと、たとえば、微生物感染により引き起こされたまたはそれに関連する発熱および／または炎症の軽減を引き起こすこと、を含む。治療は本明細書に記載の組成物を複数回投与することを含み得る。

『減少』、『抑制』、および『阻害』は、少なくするまたは減らすというそれらが一般的に理解されている意味を有する。

（ＭＳＣの単離）
開示の実施形態は、ＭＳＣを採取および単離する方法を含み得る。

開示の実施形態では、ＭＳＣは種々の組織から採取および単離され、これらに限定されるわけではないが、胎盤、骨格筋、脂肪組織、臍帯、滑膜、循環器系（たとえば、血液）、歯髄、羊水、胎児血液、肺、肝臓、性腺組織、および骨髄を含む。

実施形態では、こうした方法は、適格な哺乳類ドナーから組織を無菌的に収集することを含み得る。たとえば、臍帯または胎盤のＭＳＣを用いる実施形態では、組織は正常満期出産の胎児からまたは妊娠第三期中に収集され得る。実施形態では、胎盤は、特定病原体除去ドナーから、または、外来性病原性因子のない、健康および旅行履歴が既知の健康ドナーから、収集される。胎盤の複数の部分がＭＳＣの誘導のために用いられ得、たとえば、内皮絨毛膜、絨毛尿膜、羊膜、臍帯、およびホウォートンゼリーを含む。

臍帯または胎盤のＭＳＣの単離を含む実施形態では、以下の工程は、認証済みクリーンルームで、たとえば、ｃＧＭＰ条件下で、実行され得る。実施形態では、組織はリンス緩衝液内で広範に洗われ、その後、小片（１～５グラム）に切り分けられる。実施形態では、脱落膜巨細胞が工程の１つまたはそれらの組み合わせにより、たとえば、無菌さじによる脱落膜表面の機械的剥離により、除去される。その後、組織は、プロテアーゼ、たとえば、セリンプロテアーゼ、たとえば、トリプシンとともに、３０～９０分間、３７℃、５％ＣＯ_２で、インキュベートされ得る。その後、たとえば、ナイロンメッシュを用いて、たとえば、２０、２５、および３０ミクロンのナイロンメッシュを用いて、濾過が実行され得る。その後、細胞の勾配分離が、たとえば、ＢＳＡ、パーコール、またはフィコールを用いて、実行され得る。実施形態では、差次接着法が用いられ、迅速に接着する細胞が培地中で浮遊している接着しない細胞から分離されるに任される。その後、胎盤組織は、たとえば、９０秒間または１５０切断周期の間、刻まれ得る。

開示の実施形態では、その後、組織、たとえば、胎盤組織は、消化に、たとえば、コラゲナーゼ等の酵素を用いた３７℃の酵素消化に、たとえば１００から１４０周期／分の速度で、攪拌しながら、６０～１８０分間、掛けられる。コラゲナーゼ濃度は１ｍｇ／ｍｌから５ｍｇ／ｍｌの範囲であり得る。実施形態では、その後、細胞は、一連のセルストレイナー（たとえば、１００ミクロン、４０ミクロン等）を通過させられ、その後、たとえば、２０、２５、または３０ミクロンの、ナイロンメッシュを通過させられる。実施形態では、細胞は勾配を通過させられる。赤血球（ＲＢＣ）はＲＢＣ溶解緩衝液で除去される（４℃３分）。ＲＢＣ溶解は、ＰＢＳを添加することにより、たとえば、１５～２０回のＰＢＳにより、中和される。その後、細胞は、たとえば、１０分間にわたり４００ｇで、遠心分離される。その後、細胞は、たとえば２００～３００×１０^３／ｃｍ^２の密度で、培養フラスコ内で、たとえば５～７日の培養期間にわたり、培養される。場合によっては、混合液から残余の巨細胞を除去するために、差次接着法が適用され、細胞は１～１０時間等の期間にわたり接着するに任され、その後、浮遊細胞が接着細胞から分離される。培養期間後、胎盤ＭＳＣがフラスコからＰ０（ｐａｓｓａｇｅ ｚｅｒｏ、初代細胞）として採取できる。

開示の実施形態では、ＭＳＣは、組織、たとえば、臍帯組織から、１×１０^６ＭＳＣ／グラム臍帯、２×１０^６ＭＳＣ／グラム臍帯、３×１０^６ＭＳＣ／グラム臍帯、４×１０^６ＭＳＣ／グラム臍帯、５×１０^６ＭＳＣ／グラム臍帯、６×１０^６ＭＳＣ／グラム臍帯、７×１０^６ＭＳＣ／グラム臍帯、８×１０^６ＭＳＣ／グラム臍帯、９×１０^６ＭＳＣ／グラム臍帯、１×１０^７ＭＳＣ／グラム臍帯、２×１０^７ＭＳＣ／グラム臍帯、３×１０^７ＭＳＣ／グラム臍帯、または４×１０^６ＭＳＣ／グラム臍帯などの量で、単離され得る。

実施形態では、ＭＳＣは、単離後に、５０％超、６０％超、７０％超、８０％超、または９０％超などの、生存率を示し得る。実施形態では、ＭＳＣは、単離後に、５０％以上、６０％以上、７０％以上、８０％以上、または９０％以上などの、生存率を示し得る。実施形態では、ＭＳＣは、単離後に、５０％と６０％との間の、６０％と７０％との間の、７０％と８０％との間の、８０％と９０％との間の、または９０％と１００との間の、生存率を示し得る。

ＭＳＣは、Ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ａｎｄ Ｔｉｓｓｕｅ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ Ｃｏｍｍｉｔｔｅｅ ｏｆ ｔｈｅ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｆｏｒ Ｃｅｌｌｕｌａｒ Ｔｈｅｒａｐｙにより確立された最小基準を用いて同定できる。これらの基準は、第１に、ＭＳＣが標準培養条件で維持したときにプラスチック接着性でなければならないこと、第２に、ＭＳＣが、ＣＤ１０５、ＣＤ７３、およびＣＤ９０を発現し、ＣＤ４５、ＣＤ３４、ＣＤ１４またはＣＤ１１ｂ、ＣＤ７９αまたはＣＤ１９、およびＨＬＡ－ＤＲ表面分子を発現しないものでなければならないこと、第３に、ＭＳＣが、インビトロで、骨芽細胞、脂肪細胞、および軟骨芽細胞への分化能を有するものでなければならないことを含む。

実施形態では、ＭＳＣは、治療分子、たとえば、サイトカインを産生するそれらの能力に基づいて分離できる。たとえば、磁気活性化セルソーティング（ＭＡＣＳ）が、特定のサイトカインを産生する細胞の能力に基づいてＭＳＣを精製するために用いられ得る。開示の実施形態は、特定のサイトカインを産生する細胞の能力に基づいてＭＳＣを精製するためのフローサイトメトリーの使用も含み得る。開示の実施形態は、特定のサイトカインを産生する細胞の能力に基づいてＭＳＣを精製するためのクロマトグラフィー、たとえば、アフィニティークロマトグラフィーの使用も含み得る。

実施形態では、単離ＭＳＣ細胞の１００％がＩＬ－６を発現する。実施形態では、細胞が継代されるにつれて、ＩＬ－６の発現が増加する。実施形態では、サイトカインの発現は上方制御される。たとえば、実施形態では、ＩＬ－６、ＩＬ－１７Ａ、ＩＦＮγ、ＴＮＦα、ＴＧＦβ、ＭＣＰ１、ＨＧＦ、ＩＬ－８、ＴＩＭＰ－１、ＴＩＭＰ－２、ＶＥＧＦ、ＩＤＯ、ＩＬ－１０、およびこれらの組み合わせの発現が、上方制御され得る。

実施形態では、単離ＭＳＣは、たとえば、フローサイトメトリーによる表面マーカーの発現、３血球系中胚葉分化能（脂肪細胞、骨細胞、および軟骨細胞）、インドールアミン－２，３－ジオキシゲナーゼ（ＩＤＯ）活性、無菌性、エンドトキシン、およびマイコプラズマ試験について特性評価される。

（ＭＳＣの拡大培養）
実施形態では、任意の上述の組織に由来する細胞についての細胞拡大培養は、細胞治療製造を目的として建てられたＧＭＰクリーンルームクラス分類を満たすクリーンルーム設備で行われる。実施形態では、細胞拡大培養はバイオリアクター、たとえば、４０Ｌバイオリアクター（４０Ｌ Ｂｉｏｒｅａｃｔｏｒ）で行われる。

たとえば、クラス１０，０００クリーン製造スイートに位置する無菌クラスＩＩ生物学的安全キャビネットで、細胞は制御された条件下で解凍され、１００ＥＵ／ｍＬ以下のエンドトキシンレベル（ルーチン的には１０ＥＵ／ｍＬ以下のレベル）および３０ｍｇ／ｄｌ以下のヘモグロビンレベル（ルーチン的には２５ｍｇ／ｄｌ以下のレベル）を有するように規定されている１０％ウシ胎児血清（Ｈｙｃｌｏｎｅ）を補充された１０ＭＬの完全ＤＭＥＭ低グルコース培地（ｃＤＭＥＭ）（ＧｉｂｃｏＢＲＬ、ニューヨーク州グランドアイランド）を含む１５ｍＬのコニカルチューブ内で洗われる。実施形態では、用いられた血清ロットは隔離されており、一つのロットが全ての実験について用いられる。実施形態では、培地は、たとえば、１０％ヒトプラズマライト（Ｐｌａｓｍａｌｙｔｅ）またはヒト血清アルブミンまたはこれらの組み合わせ等により補充され得る。

実施形態では、細胞は次にＲｏｏｓｔｅｒＮｏｕｒｉｓｈ－ＭＳＣ－ＸＦ－ｂａｓａｌ ｍｅｄｉｕｍおよびＲｏｏｓｔｅｒＲｅｐｌｅｎｉｓｈ－ＭＳＣ－ＸＦ ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔから構成される２５ｍＬのＲＢ完全培地を含有するＴ－２２５フラスコの中に入れられ、完全加湿雰囲気中、３７℃、５％ＣＯ_２で、４８時間培養される。非接着細胞はｃＤＭＥＭを用いてフラスコを穏やかにリンスすることにより洗い落とされる。実施形態では、フラスコに入れられた細胞の数は、たとえば、２．５×１０^５細胞から３×１０^６細胞の間、１．５×１０^６細胞から２×１０^６細胞の間などであり得る。実施形態では、接着細胞は、次に、完全加湿雰囲気中、３７℃、５％ＣＯ_２で、２分間、ＰＢＳおよびたとえばＥＤＴＡ含有０．０５％トリプシン（Ｇｉｂｃｏ、米国ニューヨーク州グランドアイランド）の添加により細胞を洗うことにより解離される。実施形態では、細胞は、組換え組成物、たとえば、ＴｒｙｐＬＥ ＣＴＳを用いて解離され得る。

細胞は、遠心分離され、洗われ、４５ｍＬのｃＤＭＥＭの入ったＴ－２２５の中に入れられる。

実施形態では、開示の細胞拡大培養方法は、開始時のＴ－２２５フラスコ１個当たりで６００万から２０００万個の間の細胞を製造し得る。その後、最初のフラスコの細胞は、たとえば、複数のフラスコに分割され得る。その後、たとえば４日にわたり、細胞は生育され得るが、その後には、フラスコ１つ当たりおよそ６００万個の細胞が存在する（合計では２４００万細胞）。実施形態では、この方法は繰り返されるが１０代を超えて拡大培養されはせず、その後、配送のために封止されたバイアル内に６００万細胞の分割量で保管される。

さらなる実施形態では、細胞は培地中で生育され、約２～１０日後に培地と併せて細胞は回収される。細胞はこの『条件』培地で輸注のために約１００，０００細胞／ｍＬ未満の濃度で調製される。実施形態では、生理的電解質添加剤が添加されてもよい。実施形態では、細胞溶液は静脈内投与され得る。

さらなる方法では、細胞は約５～１０日にわたり培地中で生育される。その後、この培地は、細胞をともなわず静脈内輸注され、または、傷害部位に局所投与される。さらなる方法は、幹細胞産生因子の単離および／もしくは濃縮ならびに／またはこれらの化学物質および／もしくは化合物のさらなる改良をともなう。

実施形態では、細胞増殖は継代毎の生育量により表現できる。たとえば、開示の実施形態では、単離ＭＳＣの数は、継代毎に４０％、継代毎に５０％、継代毎に６０％、継代毎に７０％、継代毎に８０％、継代毎に９０％、継代毎に１００％、継代毎に１２０％、継代毎に１５０％、継代毎に２００％、継代毎に２５０％等だけ、増加し得る。

実施形態では、細胞は増殖後に凍結され、その後、以降の使用のために解凍され得る。

（ＭＳＣの活性化）
実施形態では、幹細胞、たとえば、単離ＭＳＣは、所望の性質を有するＭＳＣを産生するために活性化され得る。たとえば、ＭＳＣは刺激されたＴｏｌｌ様受容体（ＴＬＲ）に依存して炎症誘発性または抗炎症性に向けて極性化され得る。実施形態では、ＭＳＣは炎症性サイトカイン等の刺激因子に暴露される。炎症性サイトカインまたは炎症誘発性サイトカインは、ヘルパーＴ細胞（Ｔ_ｈ）およびマクロファージのような免疫細胞ならびに炎症を促進する特定の他の細胞種から分泌されるシグナル伝達分子の一種である。炎症性サイトカインは、インターロイキン－１（ＩＬ－１）、ＩＬ－１２、ＩＬ－１７、およびＩＬ－１８、腫瘍壊死因子α（ＴＮＦ－α）、インターフェロンγ（ＩＦＮγ）、ならびに、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ－ＣＳＦ）を含む。開示の実施形態は、ＩＬ－１、ＩＬ－８、ＭＩＰ－１ｂ、ＩＬ－１２、ＩＬ－１７、ＩＬ－１８、ＴＮＦ－α、ＩＦＮγ、およびＧＭ－ＣＳＦのうち少なくとも１つによるＭＳＣの活性化を含む。開示の実施形態は、ＩＬ－１、ＩＬ－８、ＭＩＰ－１ｂ、ＩＬ－１２、ＩＬ－１７、ＩＬ－１８、ＴＮＦ－α、ＩＦＮγ、およびＧＭ－ＣＳＦのうち少なくとも２つによるＭＳＣの活性化を含む。開示の実施形態は、ＩＬ－１、ＩＬ－８、ＭＩＰ－１ｂ、ＩＬ－１２、ＩＬ－１７、ＩＬ－１８、ＴＮＦ－α、ＩＦＮγ、およびＧＭ－ＣＳＦのうち少なくとも３つによるＭＳＣの活性化を含む。開示の実施形態は、ＩＬ－１、ＩＬ－８、ＭＩＰ－１ｂ、ＩＬ－１２、ＩＬ－１７、ＩＬ－１８、ＴＮＦ－α、ＩＦＮγ、およびＧＭ－ＣＳＦのうち少なくとも４つによるＭＳＣの活性化を含む。

開示の実施形態は以下の実施例でさらに詳細に記載される。実施形態では、各刺激因子の活性化量は、たとえば、１ｎｇ／ｍＬから５ｎｇ／ｍＬの間、または２ｎｇ／ｍＬから４ｎｇ／ｍＬの間等であり得る。実施形態では、各刺激因子の量は、たとえば、１ｎｇ／ｍＬ、２ｎｇ／ｍＬ、３ｎｇ／ｍＬ、４ｎｇ／ｍＬ、５ｎｇ／ｍＬ、６ｎｇ／ｍＬ、７ｎｇ／ｍＬ、８ｎｇ／ｍＬ、９ｎｇ／ｍＬ、１２ｎｇ／ｍＬ、１４ｎｇ／ｍＬ、１６ｎｇ／ｍＬ、１８ｎｇ／ｍＬ、２０ｎｇ／ｍＬ、２２ｎｇ／ｍＬ、２４ｎｇ／ｍＬ、２６ｎｇ／ｍＬ、２８ｎｇ／ｍＬ、３０ｎｇ／ｍＬ、３２ｎｇ／ｍＬ、３４ｎｇ／ｍＬ、３６ｎｇ／ｍＬ、３８ｎｇ／ｍＬ、４０ｎｇ／ｍＬ、４２ｎｇ／ｍＬ、４４ｎｇ／ｍＬ、４６ｎｇ／ｍＬ、または、これより多く等であり得る。実施形態では、刺激因子は等量で適用される。たとえば、ある実施形態では、刺激因子は、等量のＩＬ－１７、ＴＮＦ－α、およびＩＦＮγを含み得る。ある実施形態では、刺激因子は、異なる量の（非等量の）、たとえば、ＩＬ－１７、ＴＮＦ－α、およびＩＦＮγを含み得る。

実施形態では、ＭＳＣの活性化は、ＭＳＣを、刺激因子、たとえば、サイトカイン、たとえば、ＩＬ－１、ＩＬ－８、ＭＩＰ－１ｂ、ＩＬ－１２、ＩＬ－１７、ＩＬ－１８、ＴＮＦ－α、ＩＦＮγ、またはＧＭ－ＣＳＦに接触させることを含む。実施形態では、たとえば、３７℃で、たとえば、１時間、２時間、３時間、４時間、５時間、６時間、７時間、８時間、９時間、１０時間、１１時間、１２時間、１３時間、１４時間、１５時間、１６時間、１７時間、１８時間、１９時間、２０時間、２１時間、２２時間、２３時間、２４時間、これより長い時間を含む期間にわたり、実行される。実施形態では、活性化期間は、１から２０時間の間、２から１８時間の間、３から１６時間の間、４から１４時間の間、６から１２時間の間、８から１０時間の間等であり得る。実施形態では、活性化期間は、たとえば、１０から１２時間の間であり得る。実施形態では、活性化期間は異なる刺激因子について異なり得る。

実施形態では、ＭＳＣの活性化は、ＭＳＣを、刺激因子、たとえば、サイトカイン、たとえば、ＩＬ－１、ＩＬ－８、ＭＩＰ－１ｂ、ＩＬ－１２、ＩＬ－１７、ＩＬ－１８、ＴＮＦ－α、ＩＦＮγ、またはＧＭ－ＣＳＦに接触させることを含む。実施形態では、３７℃で、たとえば、少なくとも１時間、少なくとも２時間、少なくとも３時間、少なくとも４時間、少なくとも５時間、少なくとも６時間、少なくとも７時間、少なくとも８時間、少なくとも９時間、少なくとも１０時間、少なくとも１１時間、少なくとも１２時間、少なくとも１３時間、少なくとも１４時間、少なくとも１５時間、少なくとも１６時間、少なくとも１７時間、少なくとも１８時間、少なくとも１９時間、少なくとも２０時間、少なくとも２１時間、少なくとも２２時間、少なくとも２３時間、少なくとも２４時間等を含む期間にわたり、実行される。

実施形態では、ＭＳＣの活性化は、ＭＳＣを、刺激因子、たとえば、サイトカイン、たとえば、ＩＬ－１、ＩＬ－８、ＭＩＰ－１ｂ、ＩＬ－１２、ＩＬ－１７、ＩＬ－１８、ＴＮＦ－α、ＩＦＮγ、またはＧＭ－ＣＳＦに接触させることを含む。実施形態では、３７℃で、たとえば、多くとも１時間、多くとも２時間、多くとも３時間、多くとも４時間、多くとも５時間、多くとも６時間、多くとも７時間、多くとも８時間、多くとも９時間、多くとも１０時間、多くとも１１時間、多くとも１２時間、多くとも１３時間、多くとも１４時間、多くとも１５時間、多くとも１６時間、多くとも１７時間、多くとも１８時間、多くとも１９時間、多くとも２０時間、多くとも２１時間、多くとも２２時間、多くとも２３時間、多くとも２４時間等を含む期間にわたり、実行される。

実施形態では、ＭＳＣの活性化は、ＭＳＣを、刺激因子、たとえば、サイトカイン、たとえば、ＩＬ－１、ＩＬ－８、ＭＩＰ－１ｂ、ＩＬ－１２、ＩＬ－１７、ＩＬ－１８、ＴＮＦ－α、ＩＦＮγ、またはＧＭ－ＣＳＦに接触させることを含む。実施形態では、室温で、たとえば、１から２４時間の間、２から２２時間の間、４から１８時間の間、６から１６時間の間、８から１４時間の間、１０から１２時間の間等を含む期間にわたり、実行される。

実施形態では、ＭＳＣは活性化後に凍結され、その後、以降の使用のために解凍され得る。実施形態では、ＭＳＣは活性化前に凍結され、その後、解凍され、活性化され得る。

（ＭＳＣの収集）
実施形態では、Ｔ２２５フラスコからの細胞採取は以下のように行うことができる。培地、たとえば、Ｒｏｏｓｔｅｒ培養液が除去され、フラスコが１０ｍＬのＤ－ＰＢＳ^－／－（Ｇｉｂｃｏ）で洗われ、ＰＢＳが除去され、その後、１０ｍＬのＣＴＳ－ＴｒｙｐＬＥ（Ｇｉｂｃｏ）がフラスコに添加され、３７℃で５～６分間インキュベートされる。その後、培地、たとえば、１０ｍＬのＲｏｏｓｔｅｒ培地が、トリプシン活性を消すために添加される。実施形態では、細胞懸濁液が除去され、培養容器が２５ｍＬのＤ－ＰＢＳ^－／－で追加的に洗われる。実施形態では、その後、細胞懸濁混合液は、たとえば、２８０×ｇ、４℃で、１０分間、遠心分離される。

（ＭＳＣ組成物）
実施形態では、単離ＭＳＣは、たとえば少なくとも１つの医薬的に許容可能な担体を用いることで、医薬的に許容可能な組成物へと製剤化され得る。実施形態では、医薬的に許容可能な担体は、一般的に安全で無毒で且つ生物学的にもその他の意味でも望ましくないものではない医薬組成物または製剤を調製するのに役立つ担体を意味し、ヒトでの医薬的使用のみならず獣医学的使用に許容可能な担体を含む。医薬的に許容可能な担体は、たとえば、生理食塩水、リン酸緩衝食塩水、プラズマライト、リンゲル血清、リンゲル乳酸血清、ラクトース、デキストロース、スクロース、ソルビトール、マンニトール、デンプン、ラバーアラブル（ｒｕｂｂｅｒ ａｒａｂｌｅ）、リン酸カリウム、アルギネート、ゼラチン、ケイ酸カリウム、微結晶セルロース、ポリビニルピロリドン、セルロース、水、シロップ、メチルセルロース、ヒドロキシ安息香酸メチル、ヒドロキシ安息香酸プロピル、タルク、ステアリン酸マグネシウム、および鉱物油を含み得る。

開示の製剤は、組成物、たとえば、それによる治療を必要とする対象への投与に適した医薬組成物の形態で、サイトカインと組み合わされたＭＳＣを含む。

開示の製剤は、使用前に、投与装置、たとえば、シリンジに、『事前充填』され得る。

開示の製剤は、キットとして提供され得る。たとえば、開示のキットは、医薬的に許容可能な担体、間葉系幹細胞の単離集団、単離インターフェロン、単離インターロイキン、および免疫応答を減弱するための方法でキットを用いるための説明書を含み得る。キットの、細胞、および、刺激因子、たとえば、サイトカイン成分は、個別に投与されてもよいし、インビトロで組み合わせた後に混合物として投与されてもよい。キットは、任意で、組成物をたとえば注射により投与する手段を含んでもよい。

実施形態では、ペレット状のｈＵＣ－ＭＳＣが、たとえば１×１０^６ｈＵＣ－ＭＳＣが注射されることを保証するよう２００ｕＬのＤ－ＰＢＳ^－／－中に１．３×１０^６細胞の濃度で、Ｄ－ＰＢＳ^－／－に再懸濁される。実施形態では、ｈＵＣ－ＭＳＣ／Ｄ－ＰＢＳ溶液（２００ｕＬ）が、マウスでの注射、たとえば、尾静脈注射のために、ひとつのＵ－１００ ＢＤ Ｕｌｔｒａ－Ｆｉｎｅ Ｓｈｏｒｔ Ｉｎｓｕｌｉｎ Ｓｙｒｉｎｇｅｓ（Ｂｅｃｋｔｏｎ，Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ，ａｎｄ Ｃｏｍｐａｎｙ）に充填される。

（ＭＳＣを用いた治療法）
開示の実施形態は、さまざまな状態および疾患を治療するためのＭＳＣの投与を含み得る。たとえば、胎盤ＭＳＣに由来する小胞が治療的使用のために採用され得る。実施形態では、幹細胞は対象に自己由来するものでもよい。利用可能であれば、自己由来幹細胞は、有害な免疫応答の可能性を、たとえば、幹細胞の拒絶または移植片対宿主疾患を減少または排除するので、対象に有益であり得る。自己由来幹細胞は、たとえば、対象から直接単離された幹細胞（たとえば、ＭＳＣ）、または、対象に由来する非幹細胞から産生されたｉＰＳ細胞であり得る。

いくつかの実施形態では、自己由来幹細胞が利用可能でないまたは特定対象向けに適応されない場合、同種異系幹細胞が用いられ得る。実施形態では、拒絶または移植片対宿主疾患の可能性を減少させるために、同種異系幹細胞は（たとえば、ＨＬＡ遺伝子型を介して）対象に可能な限り厳密に『一致』させられる。別の実施形態では、幹細胞ドナーは対象の第一度近親者（たとえば、親、兄弟姉妹、または子）であり、これは厳密に一致するドナーを見つける可能性を増やす。さらに別の実施形態では、幹細胞ドナーは対象の拡大近親者であり得る。いくつかの実施形態では、幹細胞ドナーは対象と同じ人種または民族集団に由来し得る。しかし、特定の幹細胞は、免疫特権を有し得、ドナーと対象との間の一致を要せず同種異系間で用いられ得る。

実施形態では、ＭＳＣが、患者の治療、たとえば、疾患、状態、障害等、たとえば、肝疾患、およびその症状の、治療のために、用いられる。

ＭＳＣは、任意の適切な方法で、たとえば、皮下、関節内、病巣内（腱、靱帯、ディスク）、静脈内、腹腔内、または筋肉内の投与で、投与、たとえば、注入され得る。実施形態では、投与は、たとえば、注射を含み得る。たとえば、実施形態では、投与は、ＭＳＣを、たとえば、血漿、ＨｙｐｏＴｈｅｒｍａｓｏｌ ＨＴＳ－ＦＲＳ、Ｃｒｙｏｓｔｏｒ（ＣＳＢ、ＣＳ２、ＣＳ５、およびＣＳ１０として、０、２、５、および１０％のＤＭＳＯを含有する）、ヒト血清、ヒト血清アルブミン、０．７～０．９％の等張食塩水、プラズマライト、リン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）、幹細胞培養培地（Ｒｏｏｓｔｅｒ Ｒｅｐｌｅｎｉｓｈ ＣＣ／ＲｏｏｓｔｅｒＮｏｕｒｉｓｈ ＣＣなど）、エクソソーム単離培地（ＲｏｏｓｔｅｒＣｏｌｌｅｃｔ－ＥＶ ＣＣなど）、Ｉｎｆｕｖｉｔｅ、乳酸リンゲル液等と、混合するまたは懸濁させることを含み得る。これらの溶液は単独でまたは互いに組み合わせて用いられ得る。

適切なＭＳＣ投与量は、たとえば、１×１０^３細胞、２．５×１０^３細胞、５×１０^３細胞、１×１０^４細胞、２．５×１０^４細胞、５×１０^４細胞、１×１０^５細胞、２．５×１０^５細胞、５×１０^５細胞、１×１０^６細胞、２．５×１０^６細胞、５×１０^６細胞、１×１０^７細胞、２．５×１０^７細胞、５×１０^７細胞、１×１０^８細胞、２．５×１０^８細胞、５×１０^８細胞、１×１０^９細胞、２．５×１０^９細胞、５×１０^９細胞、１×１０^１０細胞、２．５×１０^１０細胞、５×１０^１０細胞、１×１０^１１細胞、２．５×１０^１１細胞、５×１０^１１細胞、１×１０^１２細胞、２．５×１０^１２細胞、５×１０^１２細胞、１×１０^１３細胞、２．５×１０^１３細胞、５×１０^１３細胞、１×１０^１４細胞、２．５×１０^１４細胞、５×１０^１４細胞、１×１０^１５細胞、２．５×１０^１５細胞、５×１０^１５細胞、または、これより多く等であり得る。

実施形態では、適切なＭＳＣ投与量は、たとえば、１×１０^３細胞から２．５×１０^３細胞の間、５×１０^３細胞から１×１０^４細胞の間、２．５×１０^４細胞から５×１０^４細胞の間、１×１０^５細胞から２．５×１０^５細胞の間、５×１０^５細胞から１×１０^６細胞の間、２．５×１０^６細胞の間、５×１０^６細胞から１×１０^７細胞の間、２．５×１０^７細胞から５×１０^７細胞の間、１×１０^８細胞から２．５×１０^８細胞の間、５×１０^８細胞から１×１０^９細胞の間、２．５×１０^９細胞から５×１０^９細胞の間、１×１０^１０細胞から２．５×１０^１０細胞の間、５×１０^１０細胞から１×１０^１１細胞の間、２．５×１０^１１細胞から５×１０^１１細胞の間、１×１０^１２細胞から２．５×１０^１２細胞の間、５×１０^１２細胞から１×１０^１３細胞の間、２．５×１０^１３細胞から５×１０^１３細胞の間、１×１０^１４細胞から２．５×１０^１４細胞の間、５×１０^１４細胞から１×１０^１５細胞の間、２．５×１０^１５細胞から５×１０^１５細胞の間、または、これより多く等であり得る。

実施形態では、適切なＭＳＣ投与量は、たとえば、少なくとも１×１０^３細胞^、少なくとも２．５×１０^３細胞、少なくとも５×１０^３細胞、少なくとも１×１０^４細胞^、少なくとも２．５×１０^４細胞、少なくとも５×１０^４細胞、少なくとも１×１０^５細胞、少なくとも２．５×１０^５細胞、少なくとも５×１０^５細胞、少なくとも１×１０^６細胞、少なくとも２．５×１０^６細胞、少なくとも５×１０^６細胞、少なくとも１×１０^７細胞、少なくとも２．５×１０^７細胞、少なくとも５×１０^７細胞、少なくとも１×１０^８細胞、少なくとも２．５×１０^８細胞、少なくとも５×１０^８細胞、少なくとも１×１０^９細胞、少なくとも２．５×１０^９細胞、少なくとも５×１０^９細胞、少なくとも１×１０^１０細胞、少なくとも２．５×１０^１０細胞、少なくとも５×１０^１０細胞、少なくとも１×１０^１１細胞、少なくとも２．５×１０^１１細胞、少なくとも５×１０^１１細胞、少なくとも１×１０^１２細胞、少なくとも２．５×１０^１２細胞、少なくとも５×１０^１２細胞、少なくとも１×１０^１３細胞、少なくとも２．５×１０^１３細胞、少なくとも５×１０^１３細胞、少なくとも１×１０^１４細胞、少なくとも２．５×１０^１４細胞、少なくとも５×１０^１４細胞、少なくとも１×１０^１５細胞、少なくとも２．５×１０^１５細胞、少なくとも５×１０^１５細胞、または、これより多く等であり得る。

実施形態では、適切なＭＳＣ投与量は、たとえば、多くとも１×１０^３細胞、多くとも２．５×１０^３細胞、多くとも５×１０^３細胞、多くとも１×１０^４細胞、多くとも２．５×１０^４細胞、多くとも５×１０^４細胞、多くとも１×１０^５細胞、多くとも２．５×１０^５細胞、多くとも５×１０^５細胞、多くとも１×１０^６細胞、多くとも２．５×１０^６細胞、多くとも５×１０^６細胞、多くとも１×１０^７細胞、多くとも２．５×１０^７細胞、多くとも５×１０^７細胞、多くとも１×１０^８細胞、多くとも２．５×１０^８細胞、多くとも５×１０^８細胞、多くとも１×１０^９細胞、多くとも２．５×１０^９細胞、多くとも５×１０^９細胞、多くとも１×１０^１０細胞、多くとも２．５×１０^１０細胞、多くとも５×１０^１０細胞、多くとも１×１０^１１細胞、多くとも２．５×１０^１１細胞、多くとも５×１０^１１細胞、多くとも１×１０^１２細胞、多くとも２．５×１０^１２細胞、多くとも５×１０^１２細胞、多くとも１×１０^１３細胞、多くとも２．５×１０^１３細胞、多くとも５×１０^１３細胞、多くとも１×１０^１４細胞、多くとも２．５×１０^１４細胞、多くとも５×１０^１４細胞、多くとも１×１０^１５細胞、多くとも２．５×１０^１５細胞、多くとも５×１０^１５細胞、または、これより多く等であり得る。

実施形態では、各ＭＳＣ注射の用量は、たとえば、５×１０^６細胞／ｋｇから５×１０^７細胞／ｋｇの間であり得る。

実施形態では、ＭＳＣは、１回、２回、３回、４回、５回、毎月、または、３ヶ月、６ヶ月、または、毎年、投与され得る。

開示の方法は、幹細胞と生物活性剤の共投与もともない得る。『共投与』は、上述の治療組成物の投与の前、（たとえば、同一の製剤としてまたは個別の製剤としての生物活性剤と併用しての）当該投与と同時、または、当該投与の後での、投与を意図している。本明細書では、『生物活性剤』は、生物学的に活性のあるまたは関連する任意の有機剤、無機剤、または生物剤を指す。たとえば、生物活性剤は、タンパク質（たとえば、アルブミン）、ポリペプチド、核酸、多糖（たとえば、ヘパリン）、オリゴ糖、単糖、二糖、有機化合物、有機金属化合物、または、無機化合物であり得る。生物活性剤は、生細胞または老化細胞、細菌、ウイルス、またはこれらの一部を含み得る。生物活性剤は、ホルモン、増殖因子、増殖因子産生ウイルス、増殖因子阻害剤、増殖因子受容体、抗炎症剤、代謝拮抗剤、インテグリンブロッカー、または、完全なまたは部分的な機能的センスまたはアンチセンス遺伝子（ｓｉＲＮＡを含む）などの、生物活性分子を含み得る。生物活性剤は、生物関連材料または生物活性材料を担持する人造粒子または材料、たとえば、薬物を有する芯と当該芯上のコーティングとを含むナノ粒子なども含み得る。生物活性剤は、生物有機体への治療効果を有し得る化学的または生物学的化合物などの薬物も含み得る。非限定的例は、これらに限定されるわけではないが、増殖因子、抗拒絶反応剤、抗炎症剤、抗感染症剤（たとえば、抗生物質および抗ウイルス剤）、ならびに、鎮痛剤および鎮痛配合剤を含む。抗炎症剤は、線維形成過程の炎症側面を相殺する追加剤として役立ち得る。

前述の例の任意の、合剤、混合剤、または、他の製剤が、作られ得るが、それらも依然として本明細書の意図した意味に含まれる生物活性剤と考えられ得る。生物活性剤を対象とする本開示の態様では、前述の例のいずれかまたは全てを含み得る。別の実施形態では、生物活性剤は増殖因子でもよい。増殖因子は、移植された幹細胞の、増殖、分化、および機能性を促進する任意の剤である。適切な増殖因子の非限定的例は、これらに限定されるわけではないが、白血病抑制因子（ＬＩＦ）、上皮増殖因子（ＥＧＦ）、線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ）、インスリン様増殖因子（ＩＧＦ）、血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）、ヒト成長ホルモン（ｈＧＦ）、肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）、血小板由来増殖因子（ＰＤＧＦ）、インターロイキン、サイトカイン、および／または、これらの組み合わせを含み得る。生物活性剤は、血小板ライセートなどの増殖因子の混合物を含有する血液由来サプリメントであり得る。

実施形態では、生物活性剤は免疫抑制剤を含み得る。免疫抑制剤は、望ましくない免疫応答、例えば、移植された、細胞、組織、または器官の拒絶、または、移植片対宿主疾患を、予防する、これらの発症を遅らせる、または、これらの強さを減少させる、任意の剤である。好ましいものは、免疫系により非自己と同定される細胞に対しての細胞性免疫応答を抑制する免疫抑制剤である。免疫抑制剤の例は、これらに限定されるわけではないが、シクロスポリン、シクロホスファミド、プレドニゾン、デキサメタゾン、メトトレキサート、アザチオプリン、ミコフェノレート、サリドマイド、ＦＫ－５０６、全身性ステロイド剤、ならびに、広範な、抗体、受容体アゴニスト、受容体アンタゴニスト、および、当業者に周知の他のこうした剤を含む。別の実施形態では、生物活性剤は、これらに限定されるわけではないが、ニンテダニブ、ＩＮＴ－７６７、エムリカサン、ＶＢＹ－３７６、ＰＦ－０４６３４８１７、ＥＸＣ００１、ＧＭ－ＣＴ－０１、ＧＣＳ－１００、レファナリン、ＳＡＲ１５６５９７、トラロキヌマブ、ポマリドミド、ＳＴＸ－１００、ＣＣ－９３０、シムツズマブ、抗ｍｉＲ－２１、ＰＲＭ－１５１、ＢＯＴ１９１、パロミド５２９、ＩＭＤ１０４１、セレラキシン、ＰＥＧ－リラキシン、ＡＮＧ－４０１１、ＦＴ０１１、ピルフェニドン、Ｆ３５１（パーフェニドン（ｐｅｒｆｅｎｉｄｏｎｅ）誘導体）、ＴＨＲ－１８４、ＣＣＸ－１４０、ＦＧ－３０１９、アボセンタン、ＧＫＴ１３７８３１、ＰＦ－００４８９７９１、ペントキシフィリン、フレソリムマブ、および、ＬＹ２３８２７７０を含む抗繊維化剤を含み得る。

開示の治療方法は、凍結して解凍されたＭＳＣを含み得、たとえば、細胞は活性化の前にまたは活性化に続いて凍結され、その後に、以降の使用のために解凍され得る。

（実施例）
以下の非限定的例は、代表的な実施形態のより完全な理解を促進することのみの例示を目的として提供される。これらの例は本明細書に記載のいかなる実施形態を限定するものと解されるべきではない。

（実施例１）
Ｆａｈ－／－、Ｒａｇ２－／－、Ｉｌ２ｒｇｃ－／－（ＦＲＧ）のＫＯ肝臓ヒト化マウスが、Ｆａｈ－／－マウス（ＲＩＫＥＮ）およびＲａｇ２－／－、Ｉｌ２ｒｇｃ－／－の交雑により作られる。

マウスは、２ｍｍのフィルターを用いて、２５０ｋＶ、１６ｍＡ、５０ｃｍ ＦＳＤで、照射を受けた。照射線量率（ｃＧｙ）は１０ｃｍ×１０ｃｍの領域で１５０ｃＧｙであった。

ヒト造血幹細胞（ＨＳＣ）は胎児肝ドナー細胞から収集された後に無菌培地で調製され（照射１日後に）５×１０^５細胞／マウスの用量で照射済みレシピエントに肝内注射された。

動物はオートクレーブ／照射済みの食料を与えられ、また、離乳後の動物の一生の期間にわたって週交代でＳＭＺ有りまたは無しの（飲水２５０ｍｌ毎にＳＭＺを７．８ｍｌ）酸性化オートクレーブ水を与えられた。

血液が顔面静脈から収集されヒト幹細胞異種移植マウスが検出された。

マウス毎に１００μｌの血液が２０ｍＭのＰＢＳ－ＥＤＴＡの１００μｌを含有する１．５ｍＬの無菌マイクロ遠心チューブに収集され、氷上に置かれた。ＰＢＭＣが赤血球細胞リシスバッファー（１×ＡＣＫリシスバッファー）に再懸濁され、室温（２５℃）で５分間インキュベートされた。

細胞は４６９×ｇで２回遠心され、ヒトＣＤ４５、マウスＣＤ４５抗体、および７－ＡＡＤ混合物を含有する２％（体積／体積）ＦＢＳ／ＰＢＳに再懸濁された。ヒト免疫再構成物（％ヒトＣＤ４５^＋細胞／全ＣＤ４５^＋細胞）がフローサイトメトリー分析を用いて調べられた。

ヒト臍帯間葉系幹細胞（ｈＵＣ－ＭＳＣ）がヒト臍帯の血管周囲性ホウォートンゼリー領域から単離され、当該細胞はフローサイトメトリーによる表面マーカーの発現、３血球系中胚葉分化能（脂肪細胞、骨細胞、および軟骨細胞）、インドールアミン－２，３－ジオキシゲナーゼ（ＩＤＯ）活性、無菌性、エンドトキシン、およびマイコプラズマ試験について特性評価された。ｈＵＣ－ＭＳＣは、ＲＢ製造ブロトコルにしたがって培養および採取された。１５０万から２００万個のｈＵＣ－ＭＳＣが、２５ｍｌのＲＢ完全培地でＴ２２５通気フラスコに入れられ、３７℃、５％ＣＯ_２で、４８時間培養された。

ｈＵＣ－ＭＳＣの初期培養後、たとえば、ｈＵＣ－ＭＳＣの初期培養後２０から５０時間の間または３６から３８時間の間に、ヒトＴＮＦ－α、ヒトＩＦＮγ、およびヒトＩＬ－１７からなる活性化がｈＵＣ－ＭＳＣを含む各Ｔ２２５フラスコに各サイトカインについて２ｎｇ／ｍＬの終濃度で添加された。フラスコは、添加された活性化培地で、追加の、たとえば、２から２０時間の間（１０から１２時間の間等）の時間にわたり、３７℃、５％ＣＯ_２で培養され得る。

その後、細胞が採取された。Ｒｏｏｓｔｅｒ培養培地が除去され、細胞が１０ｍＬのＤ－ＰＢＳ^－／－で洗われ、その後、培地が除去された。１０ｍＬのＣＴＳ－ＴｒｙｐＬＥがフラスコに添加され、３７℃で５～６分間インキュベートされた。その後、１０ｍＬの培地がトリプシン活性を消すために添加された。細胞懸濁液が除去され、フラスコが２５ｍＬのＤ－ＰＢＳ^－／－で追加的に洗われた。細胞懸濁混合液は、２８０×ｇ、４℃で、１０分間、遠心分離された。

ペレット状のｈＵＣ－ＭＳＣが、１，０００，０００個のｈＵＣ－ＭＳＣが注射されることを保証するよう２００ｕＬのＤ－ＰＢＳ^－／－中に１，３００，０００細胞の濃度で、Ｄ－ＰＢＳ^－／－に再懸濁された。ｈＵＣ－ＭＳＣ／Ｄ－ＰＢＳ溶液（２００ｕＬ）が、尾静脈注射のために、ひとつのＵ－１００ ＢＤ Ｕｌｔｒａ－Ｆｉｎｅ Ｓｈｏｒｔ Ｉｎｓｕｌｉｎ Ｓｙｒｉｎｇｅｓに充填された。各マウスは３週間内に１，０００，０００細胞／注射で５回の投与で注射されたが、最初の週は０日目、２日目、および５日目に１回注射され、その後、追加の２週間にわたり毎週１回注射された。

（コホート１）
５０匹のマウスが４週間（７５日齢から１０３日齢）にわたりアルコール（３．５％ｗ／ｖ）および高脂肪のまたは等カロリーのデキストリンとともに改変高脂肪Ｌｉｅｂｅｒ－ＤｅＣａｒｌｉ（Ｌ－Ｄ）液体飼料を与えられた。ＨＦＣＤの給餌中に、マウスは５３％のエタノール水溶液を週２回だけ強制経口投与により合計８回について４ｇ／ｋｇのエタノールの投与量で与えられた。マルトース対照群については、１ヶ月ＨＦＣＤ給餌マウスが同時に等カロリーのデキストリン－マルトースを週２回だけ強制経口投与により合計８回にわたり与えられた。３１匹のマウスが、治療およびその後のＣＴ＋／－超音波エラストグラフィーで画像を得る試みの前に、死亡した。アルコールによる前処理および鎮静をともなうコンピュータ断層撮影画像を得る試みの後に、コホート１研究を無作為化し完了するために１０４日齢の１９匹のヒト化マウスが生存していた（雄１０匹、雌９匹）。

マウスはプラセボ（ＰＢＳ）（ｎ＝５）または非活性化ＭＳＣ（ｎ＝１４）に無作為に割り振られ、ＰＢＳまたはＭＳＣがプロトコルにしたがって投与された。１４匹の処理マウスのうち、８匹がＭＳＣをＩＶおよびＩＰで受け、６匹がＩＰのみで受けた。

群１：５匹のマウスがビークル（ＰＢＳ）をＩＰおよびＩＶで投与された。

群２：８匹のマウスが１，０００，０００個の非活性化間葉系幹細胞治療剤を静脈内（ＩＶ）および腹腔内（ＩＰ）に投与された。

群３：６匹のマウスが１，０００，０００個の非活性化間葉系幹細胞治療剤を腹腔内（ＩＰ）に投与された。

過剰量のアルコールが３週間にわたり隔週で投与された。ＭＳＣまたはＰＢＳが、最初の週に３回、および、次の２週にわたり各週２回（３週で８回）、マウスに投与された。

（コホート２）
初期データの解析後、過剰飲酒時期は短縮され、コンピュータ断層撮影スキャンを得るための試みはなされなかった。３週間にわたり過剰アルコール前処理を受けた追加の３３匹のヒト化マウスが５群に分けられた。

群１：５匹のマウスが１，０００，０００個の非活性化間葉系細胞をＩＶおよびＩＰで受けた。

群２：７匹のマウスがビークル（ＰＢＳ）をＩＶおよびＩＰで受けた。

群３：７匹のマウスが１，０００，０００個の活性化間葉系細胞をＩＰで受けた。

群４：７匹のマウスが１，０００，０００個の活性化間葉系細胞をＩＶで受けた。

群５：７匹のマウスが１，０００，０００個の活性化間葉系細胞をＩＶおよびＩＰで受けた。

細胞／ＰＢＳは、最初の週の間に３回、追加の２週間にわたり週１回、投与された（図２５Ａ）。

両コホートについて、処理の最初の日と死亡日または安楽死日とに血液サンプルが取られた。サンプルはＡＬＴおよびＡＳＴレベルの測定に送られた。

コホート１について、ＭＳＣまたはＰＢＳの処理の開始後９３日までマウスは生存が観察された。生存マウスはこの実験の終了時に心臓穿刺術および頚椎脱臼により安楽死させられた。肝組織はヘマトキシリンエオシン染色および腫瘍の組織学的評価のために１０％中性緩衝ホルマリンで固定された。

コホート２について、ＭＳＣまたはＰＢＳの処理の開始後２５日までマウスは生存が確認された。生存マウスは最後のＭＳＣ処理後２日目に同様のやり方で安楽死させられた。エンドポイント前に死亡したマウスについて検死が行われた。

ＦＲＧ－ｈｕＨＳＣ／Ｈｅｐマウスから収集された血液が、感染後４週での、および、安楽死エンドポイント、ＭＳＣ処理の開始後６０日（１６７日目）でのヒト白血球再構成を定量するために用いられた。血液は胎児肝細胞のヒト移植有効性を測定するために収集された。

安楽死後、肝組織の代表的断面が、１０％中性緩衝ホルマリンで固定され、組織学的評価のために処理された。脂肪症、壊死、ならびに、線維症の、程度は、代表的なヘマトキシリンエオシン染色切片検査による盲検標本分析により、定量された。

脂肪症は、０を＜５％の脂肪症、１を５～３３％、２を３４～６６％、３を＞６６％とする、４段階のスコア（０～３）で、段階分けされた。壊死も、０を＜５％の壊死、１を５～１０％、２を≦２０％、３を＞２１％とする、４段階のスコア（０～３）で、段階分けされた。

ログランク（マンテル・コックス）検定、ゲーハン・ブレスロウ・ウィルコクソン検定、および、カイ二乗検定が、マウス生存研究についての統計値を計算するために用いられた。マウス組織学的研究のために、ＡＮＯＶＡ検定またはステューデントのＴ検定が用いられた。

表１は、無作為化され研究を完了した全５２匹のマウスについての、投与、生存、病理学、ならびに、ＡＳＴおよびＡＬＴレベルの詳細を含む。

表２は、性別、処理、生存、ＡＳＴおよびＡＬＴレベル、ならびに、組織学に関する、マウスの詳細を提供する。

表３は、ｑＰＣＲに用いられたプライマーセットを示す。プライマーセットはＩｎｔｅｇｒａｔｅｄ ＤＮＡ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ （ＩＤＴ）に注文された。

（コホート１）
（５匹のうち）４匹の対照マウスが、無作為化および最初の処理の後の３、５、９、および１３日目に、死亡した。非活性化ＭＳＣで処理された１４匹のマウスは実験中には死亡しなかった。全ての生存動物は無作為化後９３日目に屠殺された。

４週間の間葉系幹細胞治療（ＰｒｉｍｅＧｅｎ）の後、ＭＳＣ注射群（ｎ＝１４）はＰＢＳ対照群（ｎ＝５）に比べて高い生存率を示した（図１）。マンテル・コックス検定およびゲーハン・ブレスロウ・ウィルコクソン検定によりｐ＜０．０００１で統計的有意性が示された。

病理は混合型であり、脂肪症の程度はばらついており、６匹の動物のみが５から１０％の間のどこかの壊死率を示した。ヘマトキシリンエオシン染色切片では線維症は認められなかった。表１では、全ての対照マウス（ｎ＝５）はある程度の脂肪症を呈し、３匹はある程度の小葉内炎症を呈した。ＭＳＣで処理した１４匹のマウスのうち、１１匹は脂肪症やその他の顕著な所見を呈さず、３匹は脂肪症を呈さず最小限の炎症のみを呈した。注目すべきは、処理マウスは、全て生存していたが、最後の注射から２ヶ月超後に安楽死させられており、これは生存マウスがその時点で治癒したはずなので損傷をみるには遅すぎたかもしれない。これは次のセットの実験で考慮された。

全ての動物は無作為化時に上昇したＡＳＴおよびＡＬＴを呈したが、これは肝損傷の存在を示した。これらのレベルは屠殺までにＭＳＣ処理動物において顕著に減少した。しかし、単独生存動物を含むＰＢＳ処理動物においては、これらのレベルは高いままであった（表１、図２）。

（コホート２）
生存マウスは最初の処理後２５日目に安楽死させられた。５匹の非活性化ＭＳＣ処理マウスのうち、６０％が生存した。７匹のＰＢＳ（非処理マウス）のうち、７分の１または１４％のみが生存した。活性化ＭＳＣで処理された２１匹のマウスの１００％が生存した。

７匹のＰＢＳ処理マウスのうち６匹（８６％）が無作為化および最初の処理の後の５～１９日目に死亡した。５匹の非活性化ＭＳＣ処理マウスのうち２匹が無作為化および最初の処理の後の４日目に死亡した（図３）。全ての生存マウスは最後の処理後２日目に安楽死させられた。

肝臓の代表的切片が１０％中性緩衝ホルマリンで固定され、処理され、ヘマトキシリンエオシン染色切片が得られ、脂肪症、炎症、壊死、および線維症を評価するために検討された。７匹のプラセボマウスのうち、３匹は顕著な病理学的変化を呈さず、３匹は脂肪症を示し、２匹は５～１０％の壊死を示した。

活性化間葉系幹細胞をＩＰおよびＩＶの両方で受けた７匹のマウスのうち、５匹は１の脂肪症を呈し、２匹は顕著な所見を呈さなかった。いずれのマウスでも壊死や顕著な炎症はみられなかった。

活性化間葉系幹細胞をＩＰで有した７匹のマウスのうち、６匹は脂肪症を呈し、１匹は顕著な所見を呈さなかった。いずれのマウスでも壊死や顕著な炎症はみられなかった。

活性化間葉系細胞をＩＶで有した７匹のマウスのうち、５匹は脂肪症を呈し、２匹は顕著な所見を呈さず、１匹は壊死を呈した。

非活性化幹細胞で処理された５匹のマウスのうち、２匹は脂肪症を呈し、３匹は顕著な所見を呈さず、１匹は壊死を呈した。

ヘマトキシリンエオシン染色ではいずれの群でも線維症は認められなかった。

図４は、死亡時または安楽死時の病理所見のいくつかを示す。

３種類の活性化ＭＳＣ注射経路の全てがアルコール性肝炎の死亡率を改善したが、これはＩＰおよび／またはＩＶがＭＳＣ治療に利用できることを示している。病理学的検査は全ての群で顕著な差を示さなかったが、これはＭＳＣ治療がアルコール性肝炎の全身性の改善に影響を与え得ることを示す。

ＡＳＴおよびＡＬＴは処理の開始時および安楽死させられたものを含む死亡時に出された。全てのマウスは無作為化の時点で上昇した酵素を呈したが、これは肝損傷を示す。１匹の生存マウスを含む全てのＰＢＳ処理マウスは死亡時に上昇した酵素を呈した。死亡したもの（非活性化細胞で２匹）を含む非活性化または活性化細胞を受けた全てのマウスが死亡時点で酵素の顕著な減少を示した。最も明白な減少はＩＰおよびＩＶの両方で活性化細胞を受けたマウスでみられた（図５）。

ＭＳＣ群はＰＢＳ群よりも良好な生存率を呈し、活性化ＭＳＣ群は非活性化群よりも良好な生存率を呈したが、これはこの動物モデルでの生存におけるＭＳＣの役割をさらに実証し、また、活性化ＭＳＣがより良好な転帰を呈することを示す。

ＡＳＴおよびＡＬＴは治療の開始時および屠殺されたものを含む死亡時に調べられた。全てのマウスは無作為化の時点で上昇した酵素を呈したが、これは肝損傷を示す。１匹の生存マウスを含むＰＢＳ処理マウスの１００％が死亡時に上昇した酵素を呈した。死亡したもの（非活性化細胞で２匹）を含む非活性化または活性化細胞を受けた全てのマウスが死亡時点で酵素の顕著な減少を示した。最も明白な減少はＭＳＣを受けたマウスでみられた（ｐ＜０．０００１）（図４Ａ、Ｂ）。上昇したＡＳＴおよびＡＬＴの重要性を決定するために、マウスの対照群は等カロリーのデキストリン－マルトースを４週間にわたり週２回だけ強制経口投与によりアルコール過剰摂取なしで給餌された。これらのマウスは、アルコール過剰摂取を受けたマウスと同じ時点で、ＡＳＴおよびＡＬＴについて血液採取を受けた。試験マウスについての上昇した検査値と比べ、ＡＬＴおよびＡＳＴレベルは７Ｕ／Ｌから１６Ｕ／Ｌの間の範囲であった。

（ＭＳＣ系統マーカービメンチンの存在が肝臓でのヒトＭＳＣを実証する）
ヒトＭＳＣの位置を調べるために、我々は、ＰＢＳ群、非活性化ＭＳＣ群、および活性化ＭＳＣ群を、ヒト特異的ＭＳＣ系統マーカーであるビメンチンで、染色した。免疫組織化学では、活性化ＭＳＣ処理マウスでのみビメンチン発現が明らかになった（図５Ａ）。ビメンチン発現をさらに分析するために、我々は全３群のマウス群からＲＮＡを単離し、定量的ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）を行った。定量ＰＣＲでは、ＰＢＳ対照群（ｎ＝３）に比べて活性化ＭＳＣ処理群（ｎ＝３）で統計的に有意なビメンチン発現の増加が明らかになった（図５Ｂ）。これらの結果は、活性化ＭＳＣ群の肝臓でみられるＭＳＣが実際にヒトのものであることを実証する。

（ＫＩ６７およびミエロペルオキシダーゼ相補ＤＮＡレベルが活性化ＭＳＣの重要性を示す）
肝臓再生マーカーであるＫｉ－６７は、これまで、アルコール肝を患う患者で上昇すること示されてきた。好中球マーカーであるミエロペルオキシダーゼ（ＭＰＯ）も、アルコール処理マウスで上昇することが示されてきた。

ＭＳＣの有効性を調べるために、我々は全３群のマウス群からＲＮＡを単離し、定量ＰＣＲを行った（表Ｓ２）。Ｋｉ－６７発現はＰＢＳ対照群に比べて活性化ＭＳＣ群で顕著に上昇した（図５Ｃ）。反対に、ＭＰＯレベルはＭＳＣ処理マウスで顕著に減少した（図５Ｄ）。まとめると、これらのデータセットはこれらのマウスでのアルコール誘導性肝損傷の緩和における活性化ＭＳＣの重要性を示す。

（活性化ＭＳＣ処理マウスは処理後にヒト血清アルブミンレベルを保持した）
処理後の肝臓での機能的肝細胞の量を調べるために、我々は全３群のマウス群からＲＮＡを単離し、マウスに対するヒトアルブミンレベルを測定した。アルコール肝損傷前に、我々は我々のヒト化ＦＲＧマウスのヒトミトコンドリアＤＮＡレベルが６０％から７０％の間であることを示した（図Ｓ２）。定量ＰＣＲ分析では活性化ＭＳＣ処理マウスにおけるマウスに対して顕著に高いヒトアルブミンレベルが明らかになった（図５Ｅ）。これらのデータは我々のヒト化マウスモデルでの肝損傷の緩和における活性化ＭＳＣの重要性を示す。

（受容体相互作用タンパク質キナーゼ３（ＲＩＰＫ３）免疫蛍光はＭＳＣのネクロトーシス経路阻害能を示す）
受容体相互作用タンパク質キナーゼ３（ＲＩＰＫ３）は、これまで、ネクロトーシスを制御する重要分子であることが示されてきた［２６］。我々のＭＳＣ処理マウスがＲＩＰＫ３を発現するか否かを決定するために、我々は、パラフィン包埋された、ＰＢＳ群、非活性化ＭＳＣ群、および活性化ＭＳＣ群の肝組織を染色した。共焦点顕微鏡では、ＭＳＣ処理群と比べてＰＢＳ処理マウスでＲＩＰＫ３の上昇したレベルが明らかになった（図６Ａ）。共焦点画像の免疫反応性スコアは、ＰＢＳ対照群と比べて活性化ＭＳＣ群で顕著に低いＲＩＰＫ３レベルを示した（図６Ｂ）。タンパク質レベルでのＲＩＰＫ３の発現を確認するために、我々は活性化およびＰＢＳ処理群の肝臓からのタンパク質ライセートを用いてウェスタンブロット分析を行った。我々の結果では、ＰＢＳ対照群に比べ活性化ＭＳＣ群でＲＩＰＫ３レベルが減少することが明らかになった（図６Ｃ）。したがって、我々のＲＩＰＫ３研究は活性化ＭＳＣがこのマウス群でのネクロトーシスを阻害したことを示す。

（Ｂ細胞リンパ腫２（ＢＣＬ２）が活性化ＭＳＣ処理マウスで発現している）
Ｂ細胞リンパ腫２（ＢＣＬ２）はネクロトーシスおよびピロトーシス経路に関与する抗アポトーシス分子としてよく研究されてきた。ＢＣＬ－２が我々のアルコール過剰摂取ＦＲＧマウスで発現しているか否かを決定するために、我々はタンパク質ライセートを単離し、ウェスタンブロット分析を行った。我々の結果は活性化ＭＳＣ処理マウスでのＢＣＬ－２発現を明らかにした（図６Ｄ）。ＢＣＬ－２は非活性化ＭＳＣ処理群では僅かに存在するものの、ＰＢＳ処理マウスでは発現していなかった。これらの結果は肝損傷の緩和における活性化ＭＳＣ処理の重要性を示す。

（ＢＣＬ－２プロモーターがＭＳＣ条件培地の添加後に誘導される）
ＢＣＬ－２がネクロトーシスおよびピロトーシスを阻害することが示されてきていたので、我々は次にＢＣＬ－２プロモーターにおけるシグナル伝達兼転写活性化因子３（ＳＴＡＴ３）およびサイクリックアデノシン一リン酸応答要素結合タンパク質（ＣＲＥＢ１）を標的としたルシフェラーゼレポーターアッセイを行った。具体的には、Ｈｕｈ７細胞が種々のＢＣＬ－２プロモーターコンストラクトを遺伝子導入され、プラズマライトまたはＭＳＣ条件培地のいずれかで刺激された。我々の結果は、ＭＳＣ条件培地がＳＴＡＴ３およびＣＲＥＢ１欠失ＢＣＬ－２コンストラクトでＢＣＬ－２発現を活性化することを示した（図６Ｅ）。興味深いことに、他のＢＣＬ－２プロモーターコンストラクトは両群で最小の相対ルシフェラーゼ活性を示した。これはこれまでにＢＣＬ－２発現のリプレッサーであることが示されてきたＡＭＬ－１（急性骨髄性白血病－１）結合部位（ＴＳＳの上流－１４７３）が理由かもしれない。

（切断ガスダーミンＤレベルは肝損傷の緩和における活性化ＭＳＣの重要性を強調する）
我々は、次に、ＰＢＳ処理群、非活性化ＭＳＣ処理群、および活性化ＭＳＣ処理群での、ガスダーミンＤ（ＧＳＤＭＤ）レベルを調べた。ＧＳＤＭＤは重要な炎症反応分子であることが示されてきた。ウェスタンブロットは非活性化ＭＳＣ群およびＰＢＳ対照群の両方に比べて活性化ＭＳＣ処理群で切断ＧＳＤＭＤの減少した発現を示した（図６Ｆ）。この結果は我々の処理マウスでの肝損傷の緩和における活性化ＭＳＣの重要性を示す。

（ｓｈ－ＣＤ４４の形質導入はＭＳＣが肝臓に移動する能力を減少させる）
ＣＤ４４はこれまでそのリガンドであるヒアルロン酸への結合による細胞輸送に関与していることが示されてきた。アルコール誘導性肝損傷後にＭＳＣが行く位置を追跡するために、我々は活性化ＭＳＣにｓｈ－ＣＤ４４レンチウイルスを形質導入した。生物発光画像はｓｈ－スクランブル注射マウスの肝臓に存在する細胞の数がより多いことを明らかにした。対照的に、ｓｈ－ＣＤ４４注射マウスはより低い量のルシフェラーゼ発現を呈した（図７Ａ、Ｂ）。これらの画像はＣＤ４４がアルコール誘導性肝損傷後の肝臓へのＭＳＣの移動に影響を与えることを示す。

ＭＳＣは、さまざまな種類の細胞に分化し、損傷部位に遊走し、抗炎症特性を示す能力を有する。体内で組織の損傷または傷害が生じた場合、ＭＳＣは損傷部位に遊走する。一旦ＭＳＣがこの損傷部位に到着すると、それらはさまざまな炎症性細胞および異なる種類の間質細胞と相互作用して、再生プロセスを開始し損傷域を修復する。これまでの研究は、損傷組織域に影響し、ひいては、組織修復プロセスへの正のパラクライン効果を維持する、異なる種類の増殖因子、サイトカイン、および接着分子をＭＳＣが分泌することを示してきた。他の研究は、ＭＳＣが、血管内皮増殖因子、肝細胞増殖因子、上皮増殖因子、線維芽細胞増殖因子、血小板由来増殖因子、インスリン様増殖因子１、およびＩＬ－６などの、多くの異なる増殖因子を産生し得ることを示してきた。これらのサイトカイン因子の大多数は、ＴＮＦ－α、ＩＦＮ－γ、ＩＬ－１β、リポ多糖、および低酸素症などの炎症誘発性刺激の暴露に由来するＮＦ－κＢの活性化により上方制御される。いくつかの研究は、ＭＳＣが自然に免疫抑制性であるわけではなく、それらの免疫調節特性の上方制御について活性化を要することを提案する。最も重要なＭＳＣの活性化またはプライミング因子は、ＩＦＮ－γ、ＴＮＦ－α、ＩＬ－１７、およびＩＬ－１βである。これら３つの炎症促進性サイトカインに由来するＭＳＣ活性化の後、これらの増殖サイトカイン因子は上方制御されて、損傷組織域における組織前駆細胞、線維芽細胞、および内皮細胞の動員または刺激により、または、抗炎症性サイトカインの産生により、組織再生および修復を促進する。これらの活性化ＭＳＣはさまざまな経路を介してＴヘルパー細胞および細胞傷害性Ｔ細胞の増殖を阻害する機能を果たし得る。抗炎症反応の開始は制御性Ｔ細胞分化およびＴヘルパー２型細胞の活性化により誘発される。ＩＬ－６は、共刺激分子であるＣＤ４０、ＣＤ８０、およびＣＤ８６の発現の減少により、炎症誘発性サイトカインの抑制により、および、ＩＬ－１０のような抗炎症性サイトカインの上方制御により、Ｔ細胞活性化の阻害および未成熟樹状細胞の成熟を阻害し得る。我々独自の方法を用いたこれまでの研究では、我々の活性化ＭＳＣはインビトロでＩＬ－６を高度に発現する能力を有していた。我々の活性化ＭＳＣでのＩＬ－６の増加した産生が、生存率を増加させ、アポトーシスおよびパイロリシスを防ぐ、急性アルコール肝損傷モデルでの炎症状態の調節の原因であるかもしれないことを我々は提唱する。将来の研究では、潜在的な炎症促進性、抗アポトーシス経路と、なぜ我々の活性化ＭＳＣが我々のモデルでの生存率を増加させたかを説明するための機序とを、より良く理解し提案するために、我々は潜在的な炎症促進性および抗炎症性の我々の処理群の全てを分析したいと考えている。急性アルコール性肝炎は慢性肝疾患とは多くの点で異なり、最も重要な点は可逆可能性である。したがって、生存率を増加させ肝損傷の経路に影響する可能性についてアルコール過剰摂取により損傷されたヒト化マウス肝臓は非活性化臍帯細胞および活性化臍帯細胞の両方を試験するための理想的なモデルを提示した。我々の最初のアルコール性肝炎コホートは２つの群（ＰＢＳ対照群および非活性化ＭＳＣ処理群）を含んでいた。非活性化ＭＳＣ処理マウスは全て生存したが、一方、ＰＢＳ処理対照群は２０％の生存率を呈した。統計的有意性はｐ＜０．０００１を示した。第２のコホートでは、活性化ＭＳＣ処理マウスは１００％の生存率を呈し、非活性化ＭＳＣ処理マウスは６０％の生存率を呈したが、コホート１と同様に、ＰＢＳ対照群は１４％の生存率を呈した。

ＰＢＳまたは細胞による処理の前後の肝臓の化学的成分の分析では、ＰＢＳを受けた動物と比べてＭＳＣを受けた動物で顕著な改善が明らかになった。さらに、活性化細胞を受けたものは非活性化細胞に比べてより著しい改善を示した。コホート１では、ＰＢＳ処理マウスではさまざまな程度の脂肪症が存在したが、一方、ＭＳＣで処理された１４匹の生存マウスでは顕著な所見はなかった。生存マウスでの所見の欠如は長い観察時間のせいで肝臓の治癒が許された可能性があり、これは肝臓の化学的成分における著しい減少により実証されていると我々は仮説を立てた。コホート２では、動物は最後の処理後２日目に屠殺され、大多数のマウスはさまざまな程度の脂肪症ならびに他の損傷の徴候を示した。さらに、肝臓病理学が生存率の差を説明できなかったことから、アルコールがより全身性の作用を奏したのではないかと我々は仮説を立てた。公的に利用可能なＲＮＡ配列データセットは、ピロトーシスおよびネクロトーシス経路でのＢＣＬ－２およびＣＤ４４の重要性を示してきた。ＲＩＰＫ３、ＢＣＬ－２、ＣＤ４４、およびＧＳＤＭＤによる我々の発見は、活性化ＭＳＣが肝損傷を緩和しネクロトーシスおよびピロトーシスを阻害したか否かについて手掛かりを提供する（図６Ｇ）。将来的には、我々はＣＲＥＢ１およびＳＴＡＴ３が実際にＢＣＬ－２プロモーターを活性化するか否かをみるためにクロマチン免疫沈降／定量ＰＣＲおよび部位特異的変異誘発を行いたいと考えている。我々の２つのコホート実験での結果は、アルコール性肝炎と闘うための治療として有望な結果を示す。我々のマウス研究は数が限られてはいたものの、我々はより多数のＦＲＧマウスコホートと最終的により大規模な動物研究とを待ち望んでいる。長期高脂肪／コレステロール＋アルコール過剰摂取給餌が活性化ＭＳＣ治療とどのようにやっていくかをみることは興味深いことである。要約すると、活性化ＭＳＣ治療はアルコール性肝炎を患う患者の高い死亡率を改善するための戦略的に重要な戦略である。

（実施例２：凍結／解凍ＭＳＣの使用）
急性損傷の後に、肝臓は、再生し回復するか、末期肝不全を発症するかのいずれかになり得る。回復と不全の間の均衡は、損傷の程度および基礎肝疾患を非排他的に含むいくつかの因子に影響され得る。これまでに報告された研究では、本群はアルコールに続発する肝損傷を発症したヒト化肝臓を持つマウスに投与された活性化臍帯間葉系幹細胞（ＭＳＣ）が顕著に生存率に影響し得ることを示した。

本研究の主要目的はヒト化マウス肝臓での急性アルコール誘導性肝損傷の治療におけるプラセボと比べたときのさまざまな用量の凍結解凍された活性化ＭＳＣの安全性および有効性を評価することであった。副次目的は、さまざまな用量でのｍ、肝臓の化学的成分、バイオマーカー、および病理学の評価を含む。

２４日間にわたり高脂肪飼料およびアルコール過剰飲酒を給餌された６２匹のヒト化マウスが無作為化されて、最初の週は３回、追加の２週間は週１回、尾静脈を介して、１００万、５００，０００、２５０，０００、１００，０００、２８，０００個の活性化臍帯細胞の注射またはビークル（プラズマライト）のみの注射を受けた。ＡＳＴおよびＡＬＴは、ベースライン、１週目、２週目、３週目、および／または、死亡時に、取得された。マウスは、生存率について経過観察され、４週目に生存マウスは安楽死させられた。肝臓病理は死亡時に全ての動物について評価された。事象までの時間（Ｔｉｍｅ－ｔｏ－ｅｖｅｎｔ）のデータが、カプラン・マイヤー曲線およびログランク検定またはウィルコクソンランク検定を用いて、必要に応じて多重比較調整のためにシダック法を用いて、分析された。全てのマウス肝臓についての組織学は死亡時に報告された。

最高投与用量である１００万の幹細胞では、プラセボ群に比べて統計的に有意な生存率であった（ｐ＝０．０３）。組織学的所見は生存率と相関しており、２７匹の生存動物は壊死をともなわず１から２＋の脂肪症を示し、死亡した３５匹の動物のうち２３匹は壊死を示し、残りのマウスのうち３匹を除く全てはさまざまな程度の脂肪症を示した。

高用量凍結解凍活性化臍帯ＭＳＣの処理はヒト化肝臓を持ちアルコール誘導性肝損傷をわずらうマウスにおいて改善された生存率および組織学をもたらし得る。

肝臓はアルコール代謝の主要部位であり、アルコール誘導性損傷の主要標的として記述されてきた。肝疾患の範囲は、脂肪症、脂肪性肝炎、線維症、急性アルコール性肝炎、および、肝硬変を含む進行した肝疾患の発症までさまざまである。急性アルコール性肝炎は最近の重度の過剰飲酒に関連する肝臓の炎症性疾患であり、脂肪症、風船状肝細胞、マロリー・デンク体、および好中球の顕著な成分を含む小葉内炎症により特徴付けられる。転帰は可変性であり、判別関数により定義される重症例についての高い３０日死亡率は３０～５０％と報告されている。治療は初期支援であり、異なる治療技術による有効性の異なる不定の報告がなされている。移植のための基準はセンター間で変わり得るものであり、器官の供給が限られているため、効率的な治療の需要は急務である。

肝臓の顕著な再生特性は回復と不全との間の均衡を変化させ得る多くの因子に影響される。肝損傷への炎症反応を減少させながら再生を促進するＭＳＣの可能性は、活性化幹細胞が再生の促進および急性肝不全における転帰の改善にいくらかの優位性を与えるかもしれないことを示唆している。これまでに公表された論文で、我々のグループは１００万個のＭＳＣの反復注射を用いた過剰アルコール飲酒による肝損傷を受けたヒト化肝臓を持つマウスでの生存率の改善を示した（表）。さらに、生存率は非活性化細胞に比べて活性化臍帯ＭＳＣを用いた場合に顕著に改善され、いずれの細胞もプラセボより顕著に良好であった。

最適用量をより良好に決定し、さまざまな用量レベルでの毒性を評価し、肝臓の化学的成分および組織学的所見を経過観察するために、さまざまな用量を比較し、これらの用量をプラセボと比較し、追加の組織学的および生化学的データを取得するように、新しいセットの実験が計画された。

我々自身の先行研究に加えて、いくつかの動物モデルにより肝損傷後の器官不全を改善するＭＳＣの能力が示された。改善された生存率、組織学、肝臓の化学的成分および炎症マーカーの例示が存在している（表６）。

（材料と方法）
（ヒト化マウスの調製）
ＩＡＣＵＣの同意の取得後に、我々はＦＲＧ ＫＯ肝臓ヒト化マウスを利用した。この過程はマチダケイゴ博士の研究室でルーチンどおり行われた。

（ＦＲＧマウスの繁殖）
我々の研究室は、Ｆａｈ－／－マウス（ＲＩＫＥＮ）およびＲａｇ２－／－、Ｉｌ２ｒｇｃ－／－（Ｊａｃｋｓｏｎ Ｌａｂ）の交雑により、Ｆａｈ－／－、Ｒａｇ２－／－、Ｉｌ２ｒｇｃ－／－（ＦＲＧ）を作成した。これらのＦＲＧマウスは商業的に利用可能な系統とは異なっている。ジェノタイピングはＵＳＣのジェノタイピングガイドラインに従い行われた。

（ＦＲＧ新生仔の照射）
照射は、２ｍｍのフィルターを用いて、２５０ｋＶ、１６ｍＡ、５０ｃｍ ＦＳＤで、行われた。照射線量率（ｃＧｙ）：１０ｃｍ×１０ｃｍの領域サイズで１５０ｃＧｙ。マウスは、マイクロアイソレーターケージを有する無病原体施設に収容され、急性の病気がないことを保証するために監視された。

（移植手順）
ヒト造血幹細胞（ＨＳＣ）は胎児肝（ドナー細胞）から収集された。ヒトＨＳＣは無菌培地で調製され照射済みレシピエントに肝内注射された。我々は、５×１０^５細胞／マウスを用い、これは照射手順の１日後に注射された。

（無菌水給餌）
我々は動物にオートクレーブ／照射済みの食料を与え、動物が３週齢で離乳された後の動物の一生の期間にわたって週交代でＳＭＺ有りまたは無しの（飲水２５０ｍｌ毎にＳＭＺを７．８ｍｌ）酸性化オートクレーブ水のもと動物を維持した。動物は照射およびＨＳＣ移植の後に研究者により合併症の潜在的徴候（貧弱な身体の状態／体重減少、荒れた外皮、不活動、体を丸めた姿勢、病気の前兆をともなわない死）について毎日監視された。体重が測定された。

（ＦＲＧマウスでのヒト化免疫細胞のインビボ血液研究）
ヒト化免疫細胞がＦＲＧマウス血流内に十分なレベルで保持されているかを決定するために、血液が顔面静脈から収集されヒト幹細胞異種移植マウスが検出された。

（ヒトＨＳＣで再構成されたＦＲＧマウス由来の末梢血細胞を用いたＦＡＣＳ分析）
２０ｍＭのＰＢＳ－ＥＤＴＡの１００μｌを含有する１．５ｍＬの無菌マイクロ遠心チューブにマウス毎におよそ１００μｌの血液が収集され、氷上に置かれた。ＰＢＭＣ、下部（ＰＢＭＣ）が赤血球細胞リシスバッファー（１×ＡＣＫリシスバッファー）に再懸濁され、室温（２５℃）で５分間インキュベートされた。細胞は４６９ｇで２回遠心され、ヒトＣＤ４５、マウスＣＤ４５抗体、および７－ＡＡＤ混合物を含有する２％（体積／体積）ＦＢＳ／ＰＢＳに再懸濁された。我々はヒト免疫再構成物（％ヒトＣＤ４５^＋細胞／全ＣＤ４５^＋細胞）を測定たが、これはフローサイトメトリー分析を用いて調べられた。

（臍帯間葉系細胞および活性化細胞の調製）
（ヒト臍帯ＭＳＣ培養）
インフォームドコンセントのもとヒト臍帯間葉系間質細胞（ｈＵＣ－ＭＳＣ）がヒト臍帯の血管周囲性ホウォートンゼリー領域から単離され、これはＲｏｏｓｔｅｒＢｉｏ社により提供された（メリーランド州フレデリック、ＲｏｏｓｔｅｒＢｉｏ社により製造販売され、Ｔｉｓｓｕｅ Ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ（ＴＲＴ）社の核心技術および以下の特許ファミリーからの実施許諾済み技術により支持されるＲｏｏｓｔｅｒＶｉａｌ－ｈＵＣ－ＸＦ；米国特許出願第８，７９０，９２３号、米国特許出願第８，２７８，１０２号、米国特許出願第７，５４７，５４６号、米国特許出願第９，６１１，４５６号、米国特許出願第９，６１１，４５６号、米国特許出願第８，４８１，３１１号、米国特許出願第９，６１１，４５６号）。購入されたｈＵＣ－ＭＳＣバイアルは追加的にＩｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｆｏｒ Ｃｅｌｌ ａｎｄ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ（ＩＳＣＴ）の最小基準（２４）にしたがって完全に特性評価され、これはＲＢにより行われた。さらにＲｏｏｓｔｅｒＢｉｏはフローサイトメトリーによる表面マーカーの発現、３血球系中胚葉分化能（脂肪細胞、骨細胞、および軟骨細胞）、インドールアミン－２，３－ジオキシゲナーゼ（ＩＤＯ）活性、無菌性、エンドトキシン、およびマイコプラズマ試験についてのｈＵＣ－ＭＳＣの特性評価のための追加試験を行った（データは示さず）。ｈＵＣ－ＭＳＣは、ＲＢ製造プロトコルにしたがって培養および採取された。１５０万から２００万個のｈＵＣ－ＭＳＣが、２５ｍｌのＲＢ完全培地ＲｏｏｓｔｅｒＮｏｕｒｉｓｈ－ＭＳＣ－ＸＦ（ＲｏｏｓｔｅｒＢｉｏ社）でＴ２２５通気フラスコ（ＣｏｒｎｉｎｇまたはＴｈｅｒｍｏＦＩｓｈｅｒ）に入れられ、４８時間培養され、３７℃、５％ＣＯ_２でインキュベートされた。

（ｈＵＣ－ＭＳＣの活性化）
ｈＵＣ－ＭＳＣの初期培養後３６～３８時間に、ヒトＴＮＦ－α（ＰｅｐｒｏＴｅｃｈ社）、ヒトＩＦＮγ（ＰｅｐｒｏＴｅｃｈ社）、およびヒトＩＬ－１７（ＰｅｐｒｏＴｅｃｈ社）からなる三重活性化がｈＵＣ－ＭＳＣを含む各Ｔ２２５フラスコに各サイトカインについて２ｎｇ／ｍＬの終濃度で添加された（２５）。各ｈＵＣ－ＭＳＣフラスコは５％ＣＯ_２インキュベーターで追加の１０～１２時間にわたり３７℃で添加活性化培地で培養するに任された。

（ｈＵＣ－ＭＳＣの収集）
Ｔ２２５フラスコからの細胞採取は以下のように行われた。Ｒｏｏｓｔｅｒ培養液が除去され、１０ｍＬのＤ－ＰＢＳ^－／－（Ｇｉｂｃｏ）で洗われ、除去され、その後、１０ｍＬのＣＴＳ－ＴｒｙｐＬＥ（Ｇｉｂｃｏ）が添加され、３７℃で５～６分間インキュベートされた。その後、１０ｍＬのＲｏｏｓｔｅｒ培地が、トリプシン活性を消すために添加された。その後、細胞懸濁液が除去され、Ｔ２２５フラスコが２５ｍＬのＤ－ＰＢＳ^－／－で追加的に洗われ、遠心チューブに入れられた。全ての細胞懸濁混合液は、２８０×ｇ、４℃で、１０分間、遠心分離され、上清が除去された。

（活性化ｈＵＣ－ＭＳＣの凍結）
ペレット状の活性化ｈＵＣ－ＭＳＣが５，０００，０００または１０，０００，０００細胞／ｍＬの濃度で１ｍｌのＣＳ１０凍結培地（ＢｉｏＬｉｆｅ）に再懸濁され、１．８ｍｌの凍結バイアル（Ｎｕｎｃ）に分量された。その後、分量された細胞バイアルはＰｌａｎｅｒ Ｋｒｙｏ－５５０－１６ Ｃｏｎｔｒｏｌ Ｒａｔｅ Ｆｒｅｅｚｅｒ（Ｐｌａｎｅｒ Ｌｉｍｉｔｅｄ）を用いて凍結された。その後、使用まで保存のためにＶａｐｏｒ ｐｈａｓｅ ＬＮ２ ｔａｎｋに移された。

（ｈＵＣ－ＭＳＣの細胞およびシリンジ製剤の出荷）
活性化ｈＵＣ－ＭＳＣの凍結バイアル１つがＴｈａｗＳｔａｒ Ａｕｔｏｍａｔｅｄ Ｃｅｌｌ Ｔｈａｗｉｎｇ Ｓｙｓｔｅｍ（ＢｉｏＬｉｆｅ Ｓｏｌｕｔｉｏｎｓ）を用いて解凍された。解凍済み凍結細胞を７ｍｌのＲｏｏｓｔｅｒ完全栄養培地でゆっくりと再懸濁する。凍結解凍細胞懸濁液チューブは、２８０×ｇ、４℃で、１０分間、遠心分離された。上清を除去し、ペレット状の活性化ｈＵＣ－ＭＳＣが１０ｍＬのＲｏｏｓｔｅｒ完全栄養培地で再懸濁された。ＮｕｃｅｌｏＣｏｕｎｔｅｒ ＮＣ－２００ Ｃｅｌｌ Ｃｏｕｎｔｅｒ（Ｃｈｅｍｏｍｅｔｅｃ）を用いて細胞数を計数した。細胞はＲｏｏｓｔｅｒ完全栄養培地で約１，３００，０００細胞／ｍＬの濃度で各投与について１．８ｍＬバイアルに分量された（これは１，０００，０００個のｈＵＣ－ＭＳＣが各対象に注射されることを保証するだろう）。その後、個々の活性化ｈＵＣ－ＭＳＣ投与バイアルはＰｒｉｍｅＧｅｎ独自の検証済み４℃出荷輸送箱に入れられこれを用いて輸送された。処理群についての使用の準備が整ったときに、活性化ｈＵＣ－ＭＳＣ懸濁液を含む各バイアルは２８０×ｇ、４℃で、１０分間、遠心分離された。上清を除去し、ペレット状の活性化ｈＵＣ－ＭＳＣが２００ｕＬのプラズマライト中に１，３００，０００細胞の濃度で再懸濁された。ｈＵＣ－ＭＳＣ／プラズマライト溶液（２００ｕＬ）はマウスでの尾静脈注射のためにひとつのＵ－１００ ＢＤ Ｕｌｔｒａ－Ｆｉｎｅ Ｓｈｏｒｔ Ｉｎｓｕｌｉｎ Ｓｙｒｉｎｇｅｓ（Ｂｅｃｋｔｏｎ，Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ，ａｎｄ Ｃｏｍｐａｎｙ）に即座に充填された。

（過剰飲酒）
過剰飲酒レジメンを始めさせられた６４匹のマウスのうち、６２匹が生存し、以下の処理群に無作為化された。

（処理群）
生存した６２匹のマウスは性別毎に以下の６群のうち１つに無作為化された。

群１：１００万個の活性化ＭＳＣを注射される。

群２：５００，０００百万個の活性化ＭＳＣを注射される。

群３：２５０，０００百万個の活性化ＭＳＣを注射される。

群４：１００，０００百万個の活性化ＭＳＣを注射される。

群５：２８，０００百万個の活性化ＭＳＣを注射される。

群６：ビークルであるプラズマライトのみを注射される。

マウスは、最初の週は週３回注射され、その後、残りの３週は週１回注射された。マウスは尾静脈を介して注射された。各群には５匹の雄および５匹の雌のマウスが割り当てられたが、例外として、対照群には４匹の雌および６匹の雄が割り当てられた。追加の２匹の雌のマウスが群１および群４にそれぞれ１匹ずつで割り当てられた。

マウスの半分は過剰飲酒後０日目に最初の注射を始め、半分は過剰飲酒後１日目に最初の注射を始めた。開始の注射を二日に分けた理由は、採血と、動物への注射と、適切な文書の管理に必要とする時間のためである。最初の注射後、各群は続けて最初の注射後３、７、１４、および２１日目に注射を受け、最初の注射の開始後２８日目まで経過観察された。

マウスは、経過観察期間中に、姿勢、毛繕い、呼吸数、体重、および食料消費について、調べられた。

各注射の前および死亡時点でＡＳＴおよびＡＬＴのために採血が行われた。

エンドポイント前に死亡したマウスについて検死が行われた。身体的症状をともなうマウスは監視され、一旦それらの身体的状態が安楽死エンドポイントの閾値まで悪化すると、マウスはＵＳＣ ＩＡＣＵＣガイドラインに基づき安楽死させられた。

（ヒト化ＦＲＧマウスの肝臓および血液の病理学的分析および評価）
感染後４週での、および、安楽死エンドポイント、ＭＳＣ処理の開始後６０日（１６７日目）でのヒト白血球再構成を測定するために、我々はＦＲＧ－ｈｕＨＳＣ／Ｈｅｐマウスから血液を採取した。この血液は胎児肝細胞のヒト移植有効性を測定するために収集された。ＡＳＴおよびＡＬＴを測定するために血液はベースラインおよび死亡時に収集された。

安楽死後、肝組織の代表的切片を１０％中性緩衝ホルマリンで固定され、組織学的評価のために処理された。

（統計的設計）
事象までの時間（Ｔｉｍｅ－ｔｏ－ｅｖｅｎｔ）のデータが、カプラン・マイヤー曲線およびログランク検定またはウィルコクソンランク検定を用いて、必要に応じて多重比較調整のためにシダック法を用いて、分析された。

カプラン・マイヤー曲線およびウィルコクソンランク検定が群間のデータ分析のために用いられた。各処理群および対照群の事後比較のためにシダック調整ｐ値が多重比較調整を用いて報告された。

（結果）
（群比較）
表４Ａおよび４Ｂは、全６つのコホートについての、齢、性別、注射の開始日、ならびに、ベースラインのＡＳＴおよびＡＬＴを示す。

（実施例３：肝疾患の治療）
５０歳の男性は肝疾患をわずらっている。彼は注射による１．５×１０^６個の活性化ＭＳＣにより治療される。活性化処理は、インターフェロンガンマ（ＩＦＮγ）、腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦα）、およびインターロイキン－１２（ＩＬ－１２）へのＭＳＣの１２時間の暴露を含んだ。

患者の症状は治療後に減少する。

（実施例４：肝疾患の治療）
４０歳の女性は肝疾患をわずらっている。彼女は注射による１．２×１０^７個の活性化ＭＳＣにより治療される。活性化処理は、インターフェロンガンマ（ＩＦＮγ）、腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦα）、およびインターロイキン－１７（ＩＬ－１７）へのＭＳＣの１０時間の暴露を含んだ。

患者の症状は治療後に減少する。

（実施例５：肝疾患の治療）
７０歳の女性は肝疾患をわずらっている。彼女は注射による１．８×１０^６個の活性化ＭＳＣにより治療される。活性化処理は、インターフェロンガンマ（ＩＦＮγ）、腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦα）、およびインターロイキン－１７（ＩＬ－１７）へのＭＳＣの６時間の暴露を含んだ。

患者の症状は治療後に減少する。

（実施例６：肝疾患の治療）
５５歳の男性は肝疾患をわずらっている。彼は注射による２×１０^６個の活性化ＭＳＣにより治療される。活性化処理は、インターフェロンガンマ（ＩＦＮγ）、腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦα）、およびインターロイキン－１７（ＩＬ－１７）へのＭＳＣの１０時間の暴露を含んだ。

患者の症状は治療後に減少する。

（実施例７：ＭＳＣの凍結／解凍）
Ｐ５細胞が１．８６×１０^６細胞／フラスコで蒔かれる２回の注射により調製された。活性化フラスコからの余分な細胞と培地は凍結して保存された。事前の実験から既に活性化され凍結されていた残余の細胞（Ｐ５細胞の終期）が解凍され２つのフラスコで培養された（１．８６×１０^６細胞／フラスコで蒔かれたＰ６細胞）。一方のフラスコは４８時間生育させるために残され、他方は３８時間後に再活性化され追加で１０時間培養された。

４８時間が経過したときに、両方のフラスコから採取し、Ｑｉａｇｅｎ Ｍｕｌｔｉ－ Ａｎａｌｙｔｅ ＥＬＩＳＡ Ｋｉｔについて各条件からの培地を用いた。

これは、１回活性化される場合（Ｐ５細胞）、活性化Ｐ５細胞が凍結／解凍されて追加の４８時間にわたり培養される場合（Ｐ６細胞）、および、活性化Ｐ５細胞が凍結／解凍され、２度目の再活性化をされ、合計で４８時間にわたり培養される場合についての、活性化細胞の生育と生存率のデータを示す。

特記のない限り、本明細書および請求項で用いられる、成分、性質（分子量など）、反応条件などの、量を表現する全ての数字は、全ての場合において、『約』という用語で修飾されていると解されるべきである。従って、矛盾した記載がない限り、本明細書および添付の請求項に規定される数値パラメータは、本発明で得ようとする所望の性質に依存して変わり得る近似値である。均等論の適用を請求項の範囲に限定することを図るわけではないが、少なくとも、各数値パラメータは、報告された有効数字の数を考慮して、通常の丸め手法を適用することによって、少なくとも解釈されるべきである。本発明の広範な範囲を規定する数値範囲およびパラメータが近似値ではあるが、特定の実施例に規定される数値は可能な限り正確に報告される。また、いかなる数値もそれらが関連する試験測定でみられる標準偏差から必然的に生ずるある種の誤差を本質的に含む。

本発明を記載する文脈において（特に、添付の請求項の文脈において）用いられる単数の表記は、特記がなく且つ文脈に明白に反しない限り、単数及び複数の両方を包括するものと解釈されるべきである。本明細書において数値範囲の記載は、当該範囲に含まれる個々の数値のそれぞれを個別に参照する簡便な方法としての役割を果たすに過ぎない。本明細書に特記のない限り、これらの個々の数値のそれぞれはそれらが本明細書に個別に記載されているものとして本明細書に組み込まれる。本明細書に記載の方法の全ては、本明細書に特記がなく且つ文脈に明白に反しない限り、任意の適切な順番で実行できる。本明細書に記載の、いかなる実施例及び例示的表現（例えば、「～など」）の使用も、本発明をより明瞭に理解できるようにすることを意図するに過ぎず、これらの実施例及び例示的表現とは異なったやり方で請求項に記載された発明の範囲になんら限定を加えるものではない。本発明に記載のいかなる表現も本発明の実施に必須であるが請求項には記載されていない要素を示すものと解釈してはならない。

本明細書に記載の発明の選択的な要素又は実施形態の集合は限定と解釈すべきではない。各集合要素は、個別に参照されたり請求項に記載されたりしてもよいし、本明細書にみられる他の集合要素又は他の要素と組み合わせて参照されたり請求項に記載されたりしてもよい。ある集合の１種類以上の要素が、便宜的理由及び／又は特許的理由で、集合に加入されたり、又は、集合から削除されたりしてもよい。こうした加入や削除が生じた場合も、本明細書は修正後の集合を含むものとみなされ、特許請求の範囲に記載の請求項で用いられるマーカーッシュグループの全てについて記載要件を満たす。

本明細書の特定の実施形態は、本発明の実施にあたり発明者が知る中で最善の態様を含んで、本明細書に記載されている。当然ながら、前述の記載に触れた当業者にとってこれら記載の実施形態の変形は明らかであろう。発明者は、当業者であればこうした変形を適切に採用するものと想定し、そして、本発明が本明細書に具体的に記載したのとは異なったやり方で実施されることを意図するものである。従って、本発明は、適用法令により許容されるように、特許請求の範囲に記載の請求項に記載の主題の修正例及び均等物の全てを包含する。さらに、全ての可能な変形形態の上述の要素の組み合わせのいずれも、本明細書に特記がなく且つ文脈に明白に反しない限り、本発明に包含される。

本明細書に記載の特定の実施形態は、請求項において、「からなる」又は「から実質的になる」といった表現を用いてさらに限定されてもよい。出願時又は補正時に請求項で用いられる場合、「からなる」という移行句は、請求項で特定されていない、要素、工程、又は成分のいずれをも排除する。「から実質的になる」という移行句は、請求項の範囲を、特定された材料又は工程に加えて、基礎的で新規な性質に本質的な影響を与えないものを含むものに限定する。このように請求項に記載された発明の実施形態は、本明細書に内在的に又は明示的に記載されており、実施可能である。

さらに、本明細書を通して特許及び刊行物への数々の参照がなされている。上述の参照及び刊行物のそれぞれはその全体を参照により本明細書で援用する。

最後に、本明細書に記載の発明の実施形態は本発明の原理の例示であると理解されたい。採用可能な他の修正例も本発明の範囲に含まれる。そのため、制限ではなく、あくまで一例だが、本発明の代替的な構成を本明細書の教示に従い用いてもよい。従って、本発明は図示及び記載されるまさにそのものに限定されるわけではない。

［付記］
［付記１］
肝疾患の治療を必要とする患者にＭＳＣを投与することを含む肝疾患を治療するための方法。

［付記２］
前記ＭＳＣは活性化ＭＳＣを含む、付記１に記載の方法。

［付記３］
前記活性化ＭＳＣは、インターフェロンガンマ（ＩＦＮγ）、腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦα）、およびインターロイキン－１７（ＩＬ－１７）のうち少なくとも１つにより活性化されたＭＳＣを含む、付記２に記載の方法。

［付記４］
前記活性化ＭＳＣは、インターフェロンガンマ（ＩＦＮγ）、腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦα）、およびインターロイキン－１７（ＩＬ－１７）のうち少なくとも２つにより活性化されたＭＳＣを含む、付記２に記載の方法。

［付記５］
前記活性化ＭＳＣは、インターフェロンガンマ（ＩＦＮγ）、腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦα）、およびインターロイキン－１７（ＩＬ－１７）により活性化されたＭＳＣを含む、付記２に記載の方法。

［付記６］
前記患者は哺乳類である、付記３に記載の方法。

［付記７］
前記哺乳類はヒトである、付記４に記載の方法。

［付記８］
前記投与は、皮下、関節内、病巣内、静脈内、腹腔内、または筋肉内の投与のうち少なくとも１つを含む、付記１に記載の方法。

［付記９］
前記ＭＳＣは自己由来である、付記９に記載の方法。

［付記１０］
前記ＭＳＣは同種異系である、付記８に記載の方法。

［付記１１］
前記ＭＳＣは１×１０^３細胞から１×１０^１２細胞の間の用量で投与される、付記９または１０に記載の方法。

［付記１２］
前記用量は少なくとも２回の投与を含む、付記１１に記載の方法。

［付記１３］
前記用量は少なくとも３回の投与を含む、付記１２に記載の方法。

［付記１４］
前記用量は少なくとも４回の投与を含む、付記１３に記載の方法。

［付記１５］
前記用量は少なくとも５回の投与を含む、付記１４に記載の方法。

［付記１６］
インターフェロンガンマ（ＩＦＮγ）、腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦα）、およびインターロイキン－１７（ＩＬ－１７）のうち少なくとも１つによりＭＳＣを刺激することを含む、サイトカイン産生ＭＳＣを活性化するための方法。

［付記１７］
インターフェロンガンマ（ＩＦＮγ）、腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦα）、およびインターロイキン－１７（ＩＬ－１７）のうち少なくとも２つによりＭＳＣを刺激することを含む、サイトカイン産生ＭＳＣを活性化するための方法。

［付記１８］
インターフェロンガンマ（ＩＦＮγ）、腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦα）、およびインターロイキン－１７（ＩＬ－１７）によりＭＳＣを刺激することを含む、サイトカイン産生ＭＳＣを活性化するための方法。

［付記１９］
前記サイトカインが、ＩＬ－６、ＩＬ－１７Ａ、ＩＦＮγ、ＴＮＦα、ＴＧＦβ、ＭＣＰ１、ＨＧＦ、ＩＬ－８、ＴＩＭＰ－１、ＴＩＭＰ－２、ＶＥＧＦ、ＩＤＯ、ＭＩＰ－１ｂ、およびＩＬ－１０のうち少なくとも１つを含む、付記１６から１８のいずれか１つに記載の方法。

Claims (19)

1. 肝疾患の治療を必要とする患者にＭＳＣを投与することを含む肝疾患を治療するための方法。
2. 前記ＭＳＣは活性化ＭＳＣを含む、請求項１に記載の方法。
3. 前記活性化ＭＳＣは、インターフェロンガンマ（ＩＦＮγ）、腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦα）、およびインターロイキン－１７（ＩＬ－１７）のうち少なくとも１つにより活性化されたＭＳＣを含む、請求項２に記載の方法。
4. 前記活性化ＭＳＣは、インターフェロンガンマ（ＩＦＮγ）、腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦα）、およびインターロイキン－１７（ＩＬ－１７）のうち少なくとも２つにより活性化されたＭＳＣを含む、請求項２に記載の方法。
5. 前記活性化ＭＳＣは、インターフェロンガンマ（ＩＦＮγ）、腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦα）、およびインターロイキン－１７（ＩＬ－１７）により活性化されたＭＳＣを含む、請求項２に記載の方法。
6. 前記患者は哺乳類である、請求項３に記載の方法。
7. 前記哺乳類はヒトである、請求項４に記載の方法。
8. 前記投与は、皮下、関節内、病巣内、静脈内、腹腔内、または筋肉内の投与のうち少なくとも１つを含む、請求項１に記載の方法。
9. 前記ＭＳＣは自己由来である、請求項９に記載の方法。
10. 前記ＭＳＣは同種異系である、請求項８に記載の方法。
11. 前記ＭＳＣは１×１０^３細胞から１×１０^１２細胞の間の用量で投与される、請求項９または１０に記載の方法。
12. 前記用量は少なくとも２回の投与を含む、請求項１１に記載の方法。
13. 前記用量は少なくとも３回の投与を含む、請求項１２に記載の方法。
14. 前記用量は少なくとも４回の投与を含む、請求項１３に記載の方法。
15. 前記用量は少なくとも５回の投与を含む、請求項１４に記載の方法。
16. インターフェロンガンマ（ＩＦＮγ）、腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦα）、およびインターロイキン－１７（ＩＬ－１７）のうち少なくとも１つによりＭＳＣを刺激することを含む、サイトカイン産生ＭＳＣを活性化するための方法。
17. インターフェロンガンマ（ＩＦＮγ）、腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦα）、およびインターロイキン－１７（ＩＬ－１７）のうち少なくとも２つによりＭＳＣを刺激することを含む、サイトカイン産生ＭＳＣを活性化するための方法。
18. インターフェロンガンマ（ＩＦＮγ）、腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦα）、およびインターロイキン－１７（ＩＬ－１７）によりＭＳＣを刺激することを含む、サイトカイン産生ＭＳＣを活性化するための方法。
19. 前記サイトカインが、ＩＬ－６、ＩＬ－１７Ａ、ＩＦＮγ、ＴＮＦα、ＴＧＦβ、ＭＣＰ１、ＨＧＦ、ＩＬ－８、ＴＩＭＰ－１、ＴＩＭＰ－２、ＶＥＧＦ、ＩＤＯ、ＭＩＰ－１ｂ、およびＩＬ－１０のうち少なくとも１つを含む、請求項１６から１８のいずれか１項に記載の方法。