JP2024028231A - 化学修飾されたオリゴヌクレオチド - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2017年8月7日に出願された「IMMUNOTHERAPY OF CANCER UTILIZING CHEMICALLY MODIFIED OLIGONUCLEOTIDES」と題する米国仮出願第62/542,043号、および2017年9月13日に出願された「CONTROL OF DIFFERENTIATION UTILIZING CHEMICALLY MODIFIED OLIGONUCLEOTIDES IN IMMUNOTHERAPY」と題する米国仮出願第62/558,183号の出願日の利益を、35 U.S.C.§119(e)の下に主張し、そのそれぞれの全開示は参照によりその全体において本明細書に組み込まれる。
いくつかの側面において、本開示は、免疫原性組成物、および、治療的免疫細胞の集団またはサブセットを改善するための、細胞分化および代謝に関与する遺伝子標的を調節するためのオリゴヌクレオチドの使用を含む免疫原性組成物を作製する方法に関する。本開示は、さらには、例えば、がんおよび自己免疫障害を含む細胞増殖性障害または感染性疾患の処置のための免疫原性組成物を用いる方法に関する。
免疫系の生理学的な機能は、新生物細胞を認識および排除することである。したがって、腫瘍進行の側面は、免疫抵抗性メカニズムの発達である。これらの耐性メカニズムは、一度発達すると、自然免疫系が腫瘍成長に影響することを防ぐのみならず、がんに対する免疫治療的アプローチの有効性を制限する。免疫抵抗性メカニズムには、しばしば免疫チェックポイントと称される免疫阻害経路が含まれる。免疫阻害経路は、腫瘍細胞とCD8+細胞傷害性Tリンパ球との間の相互作用において特に重要な役割を果たし、養子細胞移植(ACT)治療剤を含む。
いくつかの側面において、本開示は、治療的T細胞(例として、TSCMおよびTCM)の所望されるサブタイプのレベルを増強するための、免疫原性組成物の産生の間、T細胞の分化プロセスをコントロールするための、組成物および方法に関する。本開示は、部分的には、シグナル伝達/転写因子、エピジェネティックな、代謝性および共阻害性/ネガティブ制御性標的に関連する遺伝子を標的とするオリゴヌクレオチド分子を含む宿主細胞を含む免疫調節(例として、免疫原性)組成物、ならびに、かかる組成物を生産する方法に基づく。いくつかの側面において、本開示は、免疫原性組成物を生産する方法に用いられる化学修飾されたオリゴヌクレオチド分子を提供する。いくつかの態様において、本開示により記載される方法および組成物は、免疫原性組成物の製造のために、および増殖性または感染性疾患を有する対象を処置するために有用である。
いくつかの態様において、sd-rxRNAは、疎水的に修飾されている。いくつかの態様において、sd-rxRNAは、1以上の疎水性抱合体に連結している。いくつかの態様において、疎水性抱合体は、コレステロールである。
いくつかの側面において、本開示は、IgとITIMドメインとを有するT細胞免疫受容体(TIGIT)またはプログラム細胞死タンパク質1(PD1)を標的とする化学修飾された二本鎖核酸分子を提供する。
いくつかの側面において、本開示は、(例として、表3~13のいずれか1つの記載の配列を標的とする)本開示により記載される化学修飾された二本鎖核酸分子、または(例として、表3~13に記載の)本開示により記載されるsd-rxRNA、および薬学的に許容し得る賦形剤を含む組成物(例として、免疫原性組成物)を提供する。いくつかの態様において、化学修飾された核酸分子は、PD 21~PD 37(配列番号102~135)、TIGIT 1(配列番号60)、TIGIT 6(配列番号65)およびTIGIT 21(配列番号100~101)から選択される配列を含む。
いくつかの側面において、本開示は、表5内の配列から選択される配列の少なくとも12個の連続したヌクレオチドを含むTIGIT配列に対して向けられている化学修飾された二本鎖核酸分子を含む宿主細胞を含む免疫原性組成物を提供する。
いくつかの側面において、本開示は、Cb1-bをコードする遺伝子に対して向けられているsd-rxRNAを含む宿主細胞を含む免疫原性組成物を提供し、ここで、sd-rxRNAは、表4内の配列から選択される配列の少なくとも12個の連続したヌクレオチドを含む。いくつかの態様において、sd-rxRNAは、表8に記載の配列を含む。
いくつかの態様において、宿主細胞は、健康なドナー(例として、がんなどの増殖性疾患、または感染性疾患を有していない、または有している疑いのないドナー)に由来する。
いくつかの側面において、本開示は、免疫原性組成物を生産するための方法であって、本明細書に記載の1以上の化学修飾された二本鎖核酸分子またはsd-rxRNAを細胞に導入することを含む、前記方法を提供する。いくつかの態様において、化学修飾された二本鎖核酸分子またはsd-rxRNAは、ex vivoで細胞に導入される。
いくつかの態様において、T細胞は、CD8+T細胞である。いくつかの態様において、T細胞は、化学修飾された二本鎖核酸分子またはsd-rxRNAの導入後、TSCMまたはTCMT細胞などの特定のT細胞サブタイプに分化する。いくつかの態様において、T細胞は、高親和性T細胞受容体(TCR)および/またはキメラ抗原受容体(CAR)を発現する1以上の導入遺伝子を含む。いくつかの態様において、細胞は、健康なドナーに由来する。
添付の図面は一定の縮尺で描かれることを意図していない。図面において、多様な図に例示されている同一またはほぼ同一の構成要素は、同様な番号で表されている。明確性の目的のために、すべての図面にすべての構成要素は標識され得ない。
いくつかの側面において、本開示は、免疫治療のための組成物および方法に関する。本開示は、部分的には、AKT、PD1、TIGIT、p53、Cbl-b、Tet2、Blimp-1、T-Box 21、またはHK2、DNMT3A、PTPN6などの、T細胞の分化プロセスのコントロール、および/またはT細胞発現または活性を調節に関連する遺伝子を標的とする化学修飾された二本鎖核酸分子(例として、sd-rxRNA)に基づく。sd-rxRNA技術は、具体的には、T細胞を含む細胞の分化プロセスのコントロール、および所望されるサブタイプ(TSCM/TCM)に富んだ治療細胞の産生に好適である。sd-rxRNAのいくつかの利点は以下を含む:(i)sd-rxRNAは、短期間で開発され、「非ドラッガブルな(non-druggable)」標的、例として小分子による阻害が難しいもの、例として転写因子などを含む、実質的にはあらゆる標的をサイレンシングすることができる;(ii)代替のex vivo siRNAトランスフェクション技法(例として、脂質を媒介したトランスフェクションまたはエレクトロポレーション)と比較して、sd-rxRNAは、高い細胞生存率を保持しながら、高トランスフェクション効率で、T細胞を含む様々な細胞型をトランスフェクションすることができる;(iii)初期拡大段階において細胞培養培地に添加される場合、sd-rxRNA化合物は、患者へのそれらの再注入の時間による細胞の最終集団において消失するサイレンシング効果を可能にする、8~10分裂サイクルの間に、目的の標的の一過的なサイレンシングを提供する;(iv)sd-rxRNAを組み合わせて使用して、複数の標的を同時にサイレンシングできるため、したがって、様々な種類の細胞処置プロトコルでの使用にかなりの柔軟性を提供する。
本発明の側面は、DNMT3A、PTPN6、PDCD1、TIGIT、AKT、p53、Cbl-b、Tet2、T-Box 21、Blimp-1およびHK2などの、T細胞の分化プロセスをコントロールすること、および/または、T細胞発現または活性を調節することに関連する遺伝子を標的とする、sd-rxRNA分子に関する。いくつかの態様において、本開示は、PDCD1、AKT、p53、Cbl-b、Tet2、T-Box 21、Blimp-1、DNMT3A、PTPN6、およびHK2から選択される遺伝子を標的とするsd-rxRNAを提供する。いくつかの態様において、本明細書に記載のsd-rxRNAは、表3~13に記載の配列またはそれらのフラグメントを含むか、またはそれらからなる、またはそれらを標的とするか、またはそれらに対して向けられている。
本発明の核酸分子は、本明細書において、本発明の単離された二本鎖またはデュプレックス核酸、オリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチド、ナノ分子、ナノRNA、sd-rxRNAナノ、sd-rxRNAまたはRNA分子と呼ばれる。
一本鎖ポリヌクレオチドとは対照的に、デュプレックスポリヌクレオチドは伝統的に細胞への送達が困難であったが、それは、これらが強固な構造および多数の負の電荷を有するために、その膜輸送が困難になっているからである。しかしながら、sd-rxRNAは、部分的に二本鎖であるにも拘わらず、in vivoで一本鎖として認識され、したがって、細胞膜を超えて効率的に送達されることが可能である。その結果、本発明のポリヌクレオチドは、多くの例において自己送達が可能である。よって、本発明のポリヌクレオチドは、従来のRNAi剤と同様の様式において製剤化されても、あるいは、細胞または対象へ単独で(または非送達型キャリアとともに)送達されてもよく、自己送達を可能にする。本発明の一態様において、分子の一部分が従来のRNAデュプレックスに類似し、分子の第2の部分が一本鎖である、自己送達型非対称二本鎖RNA分子が提供される。
安定性を提供し、かつ、RISC侵入に適合する、化学修飾されたパターンは、センス鎖またはパッセンジャー鎖ならびにアンチセンス鎖またはガイド鎖への修飾を含む。例として、パッセンジャー鎖は、安定性を確実にし、かつ、活性に干渉しない、いずれの化学的実体によっても、修飾され得る。かかる修飾は、2’リボ修飾(O-メチル、2’F、2デオキシ等)およびホスホロチオアート修飾のような骨格修飾を含む。パッセンジャー鎖における好ましい化学修飾パターンは、パッセンジャー鎖内のCおよびUヌクレオチドのOメチル修飾を含む。代わりに、パッセンジャー鎖は完全にOメチル修飾されてもよい。
いくつかの側面において、本開示は、免疫チェックポイントタンパク質をコードする遺伝子を標的とする化学修飾された二本鎖核酸分子に関する。一般に、免疫チェックポイントタンパク質は、(例として、T細胞機能を刺激または抑制することにより)宿主免疫応答を調節するタンパク質である。刺激性免疫チェックポイントタンパク質の例は、これらに限定されないが、CD27、CD28、CD40、CD122、CD137、OX40、グルココルチコイド誘導性TNFRファミリー関連遺伝子(GITR)、および誘導性T細胞共刺激因子(ICOS)を含む。阻害性免疫チェックポイントタンパク質の例は、これらに限定されないが、アデノシンA2A受容体(A2AR)、B7-H3、B7-H4、BおよびTリンパ球アテニュエーター(BTLA)、細胞傷害性Tリンパ球関連タンパク質4(CTLA-4)、インドールアミン2,3-ジオキシゲナーゼ(IDO)、キラー細胞免疫グロブリン様受容体(KIR)、リンパ球活性化遺伝子3(LAG3)、プログラム細胞死タンパク質1(PD1)、T細胞免疫グロブリンおよびムチンドメイン3(TIM3)、IgとITIMドメインとを有するT細胞免疫受容体(TIGIT)、およびT細胞活性化のVドメインIgサプレッサー(VISTA)を含む。いくつかの態様において、化学修飾された二本鎖核酸は、PDCD1またはTIGITをコードする遺伝子を標的とする。
本明細書に使用されるとき、「Tet2」は、5-ヒドロキシメチルシトシン(5hmC)の細胞内レベルを増加させる一連のメチルシトシンジオキシゲナーゼ遺伝子であるTetファミリーのメンバーである、Tetメチルシトシンジオキシゲナーゼ2を指す。いくつかの態様において、Tet2は、NCBI参照配列番号NM_001127208により表される核酸配列によりコードされる。
本明細書に使用されるとき、「HK2」は、グルコースのリン酸化に関与して、グルコース-6-リン酸を産生する酵素である、ヘキソキナーゼ2を指す。いくつかの態様において、HK2は、NCBI参照配列番号NM_000189により表される核酸配列によりコードされる。
本開示の化学修飾された二本鎖核酸分子により標的とされてもよいPDCD1およびCbl-b配列の非限定例は、表3~4に列挙される。
いくつかの態様において、rxRNAori分子は、標的遺伝子の発現を阻害するための長さ12~35ヌクレオチドの二本鎖RNA(dsRNA)コンストラクトを含み、これは、5’末端および3’末端を有するセンス鎖、ここで、センス鎖は、2’修飾リボース糖で高度に修飾され、およびここで、センス鎖の中央部における3~6ヌクレオチドは、2’修飾リボース糖で修飾されない、ならびに、5’末端および3’末端を有するアンチセンス鎖、これはセンス鎖および標的遺伝子のmRNAとハイブリダイズする、を含み、ここで、dsRNAは、配列依存的な様式において、標的遺伝子の発現を阻害する。
本明細書に記載の二本鎖核酸分子のいくつかの態様において、パッセンジャー鎖の長さは、8~15ヌクレオチド長の範囲である。ある態様において、パッセンジャー鎖は、8、9、10、11、12、13、14または15ヌクレオチド長である。パッセンジャー鎖は、ガイド鎖に対して相補性を有する。パッセンジャー鎖とガイド鎖との間の相補性は、パッセンジャーまたはガイド鎖のいずれの部位にわたっても存在してもよい。いくつかの態様において、ガイド鎖とパッセンジャー鎖との間には、分子の二本鎖領域内に100%の相補性が存在する。
ガイド鎖とパッセンジャー鎖との間に100%の相補性が存在してもよく、または、ガイド鎖とパッセンジャー鎖との間に1以上のミスマッチが存在してもよい。いくつかの態様において、二本鎖分子の一方の末端において、分子は、平滑末端であるかまたは1ヌクレオチドの突出を有する。分子の一本鎖領域は、いくつかの態様において、4~12ヌクレオチド長である。例えば、一本鎖領域は、4、5、6、7、8、9、10、11または12ヌクレオチド長であってよい。しかしながら、ある態様において、一本鎖領域はまた、4ヌクレオチド長未満であっても、または、12ヌクレオチド長より長くてもよい。ある態様において、一本鎖領域は少なくとも6または少なくとも7ヌクレオチド長である。いくつかの態様において、一本鎖領域は2または3ヌクレオチド長を含む、2~9ヌクレオチド長である。
ある態様において、ポリヌクレオチドは、未修飾である。他の態様において、少なくとも1つのヌクレオチドが修飾されている。さらなる態様において、修飾は、ガイド配列の5’末端から2つ目のヌクレオチドにおいて、2’-Hまたは2’-修飾されたリボース糖を含む。「2つ目のヌクレオチド」は、ポリヌクレオチドの5’末端から2つ目のヌクレオチドとして定義される。
ある態様において、2’修飾されているヌクレオチドは、ピリミジンヌクレオチド(例えばC/U)である。2’-O-アルキルヌクレオチドの例は、2’-O-メチルヌクレオチドまたは2’-O-アリルヌクレオチドを含む。
本明細書に使用される「オフ・ターゲット」遺伝子サイレンシングは、例えばアンチセンス(ガイド)配列と、意図しない標的mRNA配列との間の偽の配列相同性に起因する、意図しない遺伝子サイレンシングを指す。
ある修飾の組み合わせは、標的遺伝子の発現を阻害する能力の増強、血清安定性の増強、および/または、標的特異性の増大などにより部分的に表わされる、さらなる予想外の利点をもたらしてもよい。
ある態様において、ガイド鎖は、ガイド鎖の5’末端における2番目のヌクレオチドにて、2’-O-メチル修飾ヌクレオチドを含み、かつ、他の修飾ヌクレオチドを含まない。
マイクロRNAは、マウス、線虫および哺乳動物において、発生またはがんなどの重要な経路において標的遺伝子を下方制御することに関与する。マイクロRNA機構を通した遺伝子サイレンシングは、miRNAとその標的メッセンジャーRNA(mRNA)との特異的であるがなお不完全な塩基対形成により、達成される。標的mRNA発現のマイクロRNA媒介性の下方制御において、多様な機構が使用されてもよい。
低分子RNAを配列特異的レギュレーターとして使用する別の経路は、RNA干渉(RNAi)経路であり、これは、細胞における二本鎖RNA(dsRNA)の存在に対する、進化的に保存された応答である。dsRNAは、ダイサーにより、~20塩基対(bp)デュプレックスの低分子干渉RNA(siRNA)へと切断される。これらの低分子RNAは、RNA誘導サイレンシング複合体(RISC)と称される多タンパク質エフェクター複合体へと集合させられる。siRNAは次いで、完璧な相補性を持つ標的mRNAの切断をガイドする。
ある態様において、修飾RNAiコンストラクトは、同じ配列を有する未修飾RNAiコンストラクトと比較して、改善された血清および/または脳脊髄液中の安定性を有してもよい。
ある態様において、RNAiコンストラクトの構造は、ヒト、マウスおよび他のげっ歯類ならびに他の非ヒト哺乳動物からの初代細胞を含む哺乳動物の初代細胞などの初代細胞において、インターフェロン応答を誘導しない。ある態様において、RNAiコンストラクトはまた、無脊椎生物において標的遺伝子の発現を阻害するためにも使用されてもよい。
本発明のRNAiコンストラクトは、標的遺伝子(単数または複数)によりコードされるあらゆる標的タンパク質の合成を阻害することができる。本発明は、細胞において、in vitroまたはin vivoのいずれかで、標的遺伝子の発現を阻害する方法を含む。したがって、本発明のRNAiコンストラクトは、標的遺伝子の過剰発現により特徴づけられる疾患を持つ患者を処置するのに有用である。
本発明はまた、本発明の核酸を発現するベクター、および、かかるベクターまたは核酸を含む細胞にも関する。細胞は、in vivoのまたは培養中の、ヒト細胞などの哺乳動物細胞であり得る。
方法は、in vitroで、ex vivoで、または、in vivoで、例えば、培養中のヒト細胞などの培養中の哺乳動物細胞において行ってもよい。
標的細胞(例えば哺乳動物細胞)は、脂質(例えばカチオン性脂質)またはリポソームなどの送達試薬の存在下において、接触させられてもよい。
本発明の別の側面は、哺乳動物細胞を、対象となるRNAiコンストラクトを発現するベクターと接触させることを含む、哺乳動物細胞において標的遺伝子の発現を阻害するための方法を提供する。
別の態様において、化学修飾は、デュプレックスの多様な領域にわたって同一ではない。特定の態様において、第1のポリヌクレオチド(パッセンジャー鎖)は、多数の多様な化学修飾を、多様な部位において有する。このポリヌクレオチドについて、ヌクレオチドの90%までが化学修飾されていてもよく、および/または、導入されたミスマッチを有していてもよい。
分子の他方の部分は、一本鎖領域である。一本鎖領域は、7から40までのヌクレオチドの範囲であると予測される。
ガイド鎖(第1のポリヌクレオチド)のRISC複合体中へのローディングの効率は、重度に修飾されたポリヌクレオチドについて変わる場合があるので、一態様においては、効率的なガイド鎖のローディングを促進するために、デュプレックスポリヌクレオチドは、ガイド鎖(第1のポリヌクレオチド)上のヌクレオチド9、11、12、13または14と、センス鎖(第2のポリヌクレオチド)上の反対のヌクレオチドとの間のミスマッチを含む。
より詳細な本発明の側面は、以下のセクションにおいて記載される。
本発明の二本鎖オリゴヌクレオチドは、2つの別々の相補的な核酸鎖により形成されてもよい。デュプレックス形成は、標的遺伝子を含有する細胞の内側または外側のいずれかで生じ得る。
本明細書に使用される用語「デュプレックス(duplex)」は、相補的な配列に水素結合している二本鎖(double-stranded)核酸分子(単数または複数)の領域を含む。本発明の二本鎖オリゴヌクレオチドは、標的遺伝子に対してセンスであるヌクレオチド配列、および、標的遺伝子に対してアンチセンスである相補配列を含んでもよい。センスおよびアンチセンスヌクレオチド配列は、標的遺伝子配列に対応し、例えば、標的遺伝子配列と同一であるかまたは標的遺伝子の阻害をもたらすために十分に同一(例えば、ほぼ少なくとも約98%同一、96%同一、94%、90%同一、85%同一または80%同一)である。
一態様において、本発明の二本鎖オリゴヌクレオチドは、ミスマッチおよび/またはループまたはバルジを含有するが、オリゴヌクレオチドの長さの少なくとも約70%にわたって二本鎖である。別の態様において、本発明の二本鎖オリゴヌクレオチドは、オリゴヌクレオチドの長さの少なくとも約80%にわたって二本鎖である。別の態様において、本発明の二本鎖オリゴヌクレオチドは、オリゴヌクレオチドの長さの少なくとも約90%~95%にわたって二本鎖である。別の態様において、本発明の二本鎖オリゴヌクレオチドは、オリゴヌクレオチドの長さの少なくとも約96%~98%にわたって二本鎖である。ある態様において、本発明の二本鎖オリゴヌクレオチドは、少なくともまたは最大1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14または15個までのミスマッチを含有する。
本発明のヌクレオチドは、糖部分、ホスホジエステル連結部および/または塩基を含む、多様な位置において修飾されてもよい。
いくつかの態様において、ヌクレオシドの塩基部分は修飾されてもよい。例えば、ピリミジン塩基はピリミジン環の2、3、4、5、および/または6位において修飾されてもよい。いくつかの態様において、シトシンの環外アミンが修飾されてもよい。プリン塩基もまた修飾されてもよい。例えば、プリン塩基は、1、2、3、6、7または8位において修飾されてもよい。いくつかの態様において、アデニンの環外アミンが修飾されてもよい。いくつかのケースにおいて、塩基部分の環の窒素原子は、例えば炭素などの別の原子で置換されてもよい。塩基部分への修飾は、いずれの好適な修飾でもあってもよい。修飾の例は当業者に知られている。いくつかの態様において、塩基の修飾は、アルキル化プリンまたはピリミジン、アシル化プリンまたはピリミジン、または、その他のヘテロ環を含む。
他の例において、プリンのN7位および/またはN2および/またはN3位は、アルキル基またはその置換誘導体により修飾されてもよい。さらなる例において、第3環はプリン二環系に縮合されてもよく、および/または、プリン環系内の窒素原子は炭素原子で置換されてもよい。他の修飾も可能であることが理解されるべきである。
修飾ヌクレオモノマーの特に有用な一群は、2’-O-メチルヌクレオチドである。かかる2’-O-メチルヌクレオチドは、「メチル化されている」として言及されてもよく、対応するヌクレオチドは、非メチル化ヌクレオチドからアルキル化により、または直接的にメチル化ヌクレオチド試薬から、作られる。修飾ヌクレオモノマーは、未修飾ヌクレオモノマーと組み合わせて使用されてもよい。例えば、本発明のオリゴヌクレオチドは、メチル化および非メチル化ヌクレオモノマーの両方を含有してもよい。
アンチセンス(ガイド)鎖は、標的遺伝子(単数または複数)の少なくとも一部に対して実質的に同一であってもよいが、少なくとも塩基対形成特性に関連して、配列は、有用であるため、例えば標的遺伝子の表現型の発現を阻害するために、完全に同一である必要はない。一般により高い相同性は、より短いアンチセンス遺伝子の使用を埋め合わせるために使用され得る。いくつかのケースにおいて、アンチセンス鎖は、一般に、標的遺伝子に対して(アンチセンス方向において)実質的に同一であろう。
2’-O-メチル修飾RNAの使用はまた、細胞ストレス応答を最少化することが望ましい状況においても有益であり得る。2’-O-メチルヌクレオモノマーを有するRNAは、未修飾RNAを認識すると考えられる細胞機構によって認識され得ない。2’-O-メチル化されたかまたは部分的に2’-O-メチル化されたRNAは、標的RNA阻害を維持しつつ、二本鎖核酸に対するインターフェロン応答を回避し得る。これは、例えば、インターフェロンまたは他の細胞ストレス応答を回避するために、インターフェロン応答を誘導する短いRNAi(例えばsiRNA)配列、および、インターフェロン応答を誘導し得るより長いRNAi配列の両方において、有用であり得る。
具体的な官能基の定義および化学用語は、以下にさらに詳細に記載される。本発明の目的のために、化学元素はCAS versionのHandbook of Chemistry and Physics, 75th Ed.の内表紙の元素周期表に従って同定され、具体的な官能基はこれに記載のようにして一般的に定義される。さらに、有機化学の一般原理ならびに具体的な官能部分および反応性は、Organic Chemistry, Thomas Sorrell, University Science Books, Sausalito: 1999に記載され、この内容の全体は参照により本明細書に組み込まれる。
種々の異性体比のいずれかを含有する異性体混合物は、本発明に従って利用されてもよい。例えば、2種の異性体のみが組み合わせられるとき、50:50、60:40、70:30、80:20、90:10、95:5、96:4、97:3、98:2、99:1または100:0の異性体比を含有する混合物は全て、本発明に企図される。当業者は容易に、さらに複雑な異性体混合物について類似の比率が企図されることを理解するであろう。
ある態様において、本発明のオリゴヌクレオチドは、3’および5’終端(termini)を含む(環状オリゴヌクレオチドを除く)。一態様において、オリゴヌクレオチドの3’および5’終端は、例えば3’または5’結合を修飾することにより、ヌクレアーゼから実質的に保護され得る(例えば米国特許第5,849,902号およびWO98/13526)。例えば、オリゴヌクレオチドは「ブロック基(blocking group)」を含めることにより抵抗性になされ得る。本明細書に使用される用語「ブロック基」は、合成のための保護基または結合基のどちらかとしてオリゴヌクレオチドまたはヌクレオモノマーに付着され得る、置換基(例えばOH基以外のもの)を指す(例えば、FITC、プロピル(CH2-CH2-CH3)、グリコール(-O-CH2-CH2-O-)ホスファート(PO3 2-)、ホスホン酸水素またはホスホロアミダイト)。「ブロック基」はまた、「末端ブロック基」または「エキソヌクレアーゼブロック基」をも含み、これらは、修飾ヌクレオチドおよび非ヌクレオチドエキソヌクレアーゼ抵抗性構造を含む、オリゴヌクレオチドの、3’および5’終端を保護する。
本明細書に使用される用語「ハロ」および「ハロゲン」は、フッ素、塩素、臭素およびヨウ素から選択される原子を指す。
その上、他に特定されない限りにおいて、用語アルキニルは、「非置換のアルキニル」および「置換アルキニル」の両方を含み、その後者は、炭化水素骨格の1以上の炭素上の水素を置き換える独立して選択される置換基を有するアルキニル部分を指す。かかる置換基は、例えば、アルキル基、アルキニル基、ハロゲン、ヒドロキシル、アルキルカルボニルオキシ、アリールカルボニルオキシ、アルコキシカルボニルオキシ、アリールオキシカルボニルオキシ、カルボキシラート、アルキルカルボニル、アリールカルボニル、アルコキシカルボニル、アミノカルボニル、アルキルアミノカルボニル、ジアルキルアミノカルボニル、アルキルチオカルボニル、アルコキシル、ホスファート、ホスホナート、ホスフィナート、シアノ、アミノ(アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、アリールアミノ、ジアリールアミノおよびアルキルアリールアミノを含む)、アシルアミノ(アルキルカルボニルアミノ、アリールカルボニルアミノ、カルバモイルおよびウレイドを含む)、アミジノ、イミノ、スルフヒドリル、アルキルチオ、アリールチオ、チオカルボキシラート、スルファート類、アルキルスルフィニル、スルホナート、スルファモイル、スルホンアミド、ニトロ、トリフルオロメチル、シアノ、アジド、ヘテロシクリル、アルキルアリールまたは芳香族もしくはヘテロ芳香族部分を含む。
用語「アルコキシ」は、酸素原子に共有結合している置換および非置換のアルキル、アルケニルおよびアルキニル基を含む。アルコキシ基の例は、メトキシ、エトキシ、イソプロピルオキシ、プロポキシ、ブトキシおよびペントキシ基を含む。置換アルコキシ基の例は、ハロゲン化アルコキシ基を含む。アルコキシ基は、アルケニル、アルキニル、ハロゲン、ヒドロキシル、アルキルカルボニルオキシ、アリールカルボニルオキシ、アルコキシカルボニルオキシ、アリールオキシカルボニルオキシ、カルボキシラート、アルキルカルボニル、アリールカルボニル、アルコキシカルボニル、アミノカルボニル、アルキルアミノカルボニル、ジアルキルアミノカルボニル、アルキルチオカルボニル、アルコキシル、ホスファート、ホスホナート、ホスフィナート、シアノ、アミノ(アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、アリールアミノ、ジアリールアミノおよびアルキルアリールアミノを含む)、アシルアミノ(アルキルカルボニルアミノ、アリールカルボニルアミノ、カルバモイルおよびウレイドを含む)、アミジノ、イミノ、スルフフィドリル(sulffydryl)、アルキルチオ、アリールチオ、チオカルボキシラート、スルファート類、アルキルスルフミル(slkylsulfmyl)、スルホナート、スルファモイル、スルホンアミド、ニトロ、トリフルオロメチル、シアノ、アジド、ヘテロシクリル、アルキルアリールまたは芳香族もしくはヘテロ芳香族部分などの、独立して選択される基により置換されていてもよい。ハロゲン置換アルコキシ基の例は、これらに限定されないが、フルオロメトキシ、ジフルオロメトキシ、トリフルオロメトキシ、クロロメトキシ、ジクロロメトキシ、トリクロロメトキシなどを含む。
用語「ヒドロキシ」または「ヒドロキシル」は、(適切なカウンターイオンとともに)-OHまたは-O-を持つ基を含む。
用語「ハロゲン」は、フッ素、臭素、塩素、ヨウ素などを含む。用語「過ハロゲン化」は一般に、全ての水素がハロゲン原子により置き換えられている部分を指す。
用語「置換される」は、当該部分に配置され得、当該分子がその意図する機能を行うことを可能にする、独立して選択される置換基を含む。置換基の例は、アルキル、アルケニル、アルキニル、アリール、(CR’R’’)0~3NR’R’’、(CR’R’’)0~3CN、NO2、ハロゲン、(CR’R’’)0~3C(ハロゲン)3、(CR’R’’)0~3CH(ハロゲン)2、(CR’R’’)0~3CH2(ハロゲン)、(CR’R’’)0~3CONR’R’’、(CR’R’’)0~3S(O)1~2NR’R’’、(CR’R’’)0~3CHO、(CR’R’’)0~3O(CR’R’’)0~3H、(CR’R’’)0~3S(O)0~2R’、(CR’R’’)0~3O(CR’R’’)0~3H、(CR’R’’)0~3COR’、(CR’R’’)0~3CO2R’、または(CR’R’’)0~3OR’基;ここで各R’およびR’’は、各々独立して、水素、C1~C5アルキル、C2~C5アルケニル、C2~C5アルキニルもしくはアリール基であるか、または、R’およびR’’は、一緒になって、ベンジリデン基もしくは-(CH2)2O(CH2)2-基である、を含む。
用語「エーテル」は、2個の異なる炭素原子またはヘテロ原子に結合した酸素を含有する化合物または部分を含む。例えば、この用語は、「アルコキシアルキル」を含み、これは、別のアルキル基に共有結合した酸素原子に共有結合しているアルキル、アルケニルまたはアルキニル基を指す。
用語「ヌクレオシド」は、糖部分、好ましくはリボースまたはデオキシリボースに共有結合した塩基を含む。好ましいヌクレオシドの例は、リボヌクレオシドおよびデオキシリボヌクレオシドを含む。ヌクレオシドはまた、遊離カルボキシル基、遊離アミノ基または保護基を含んでもよいアミノ酸またはアミノ酸アナログに連結した塩基をも含む。好適な保護基は当該技術分野において周知である(P. G. M. WutsおよびT. W. Greene、「Protective Groups in Organic Synthesis」、第2版、Wiley-Interscience、New York、1999年を参照)。
用語「ヌクレオチド」は、ホスファート基またはホスファートアナログをさらに含むヌクレオシドを含む。
Xは、NまたはCHであり;
Aは、結合;置換または非置換、環式または非環式、分枝または非分枝の脂肪族;または、置換または非置換、環式または非環式、分枝または非分枝のヘテロ脂肪族であり;
R1は、疎水性部分であり;
R2は、水素;酸素保護基;環式または非環式、置換または非置換、分枝または非分枝の脂肪族;環式または非環式、置換または非置換、分枝または非分枝のヘテロ脂肪族;置換または非置換、分枝または非分枝のアシル;置換または非置換、分枝または非分枝のアリール;置換または非置換、分枝または非分枝のヘテロアリールであり;および
R3は、核酸である、
で表される。
ある態様において、Aは結合である。ある態様において、Aは、置換または非置換、環式または非環式、分枝または非分枝の脂肪族である。ある態様において、Aは、非環式、置換または非置換、分枝または非分枝の脂肪族である。ある態様において、Aは、非環式、置換、分枝または非分枝の脂肪族である。ある態様において、Aは、非環式、置換、非分枝の脂肪族である。ある態様において、Aは、非環式、置換、非分枝のアルキルである。ある態様において、Aは、非環式、置換、非分枝のC1~20アルキルである。ある態様において、Aは、非環式、置換、非分枝のC1~12アルキルである。ある態様において、Aは、非環式、置換、非分枝のC1~10アルキルである。ある態様において、Aは、非環式、置換、非分枝のC1~8アルキルである。ある態様において、Aは、非環式、置換、非分枝のC1~6アルキルである。ある態様において、Aは、置換または非置換、環式または非環式、分枝または非分枝のヘテロ脂肪族である。ある態様において、Aは、非環式、置換または非置換、分枝または非分枝のヘテロ脂肪族である。ある態様において、Aは、非環式、置換、分枝または非分枝のヘテロ脂肪族である。ある態様において、Aは、非環式、置換、非分枝のヘテロ脂肪族である。
Rの出現の各々は、独立して、天然または非天然のアミノ酸の側鎖であり;および
nは、1から20までの整数である(境界を含む)、
で表される。
で表される。ある態様において、Aは、式:
で表される。
A’は、置換または非置換、環式または非環式、分枝または非分枝の脂肪族であるか;または、置換または非置換、環式または非環式、分枝または非分枝のヘテロ脂肪族である、
で表される。
で表される。
で表される。
Xは、NまたはCHであり;
Aは、結合;置換または非置換の、環式または非環式の、分枝または非分枝の脂肪族;または、置換または非置換の、環式または非環式の、分枝または非分枝のヘテロ脂肪族であり;
R1は、疎水性部分であり;
R2は、水素;酸素保護基;環式または非環式の、置換または非置換の、分枝または非分枝の脂肪族;環式または非環式の、置換または非置換の、分枝または非分枝のヘテロ脂肪族;置換または非置換の、分枝または非分枝のアシル;置換または非置換の、分枝もしくは非分枝のアリール;置換または非置換の、分枝または非分枝のヘテロアリールであり;および
R3は、核酸である、
で表される。
Xは、NまたはCHであり;
Aは、結合;置換または非置換、環式または非環式、分枝または非分枝の脂肪族;または、置換または非置換、環式または非環式、分枝または非分枝のヘテロ脂肪族であり;
R1は、疎水性部分であり;
R2は、水素;酸素保護基;環式または非環式、置換または非置換、分枝または非分枝の脂肪族;環式または非環式、置換または非置換、分枝または非分枝のヘテロ脂肪族;置換または非置換、分枝または非分枝のアシル;置換または非置換、分枝または非分枝のアリール;置換または非置換、分枝または非分枝のヘテロアリールであり;および
R3は、核酸である、
で表される。
Xは、NまたはCHであり;
Aは、結合;置換または非置換、環式または非環式、分枝または非分枝の脂肪族;または、置換または非置換、環式または非環式、分枝または非分枝のヘテロ脂肪族であり;
R1は、疎水性部分であり;
R2は、水素;酸素保護基;環式または非環式、置換または非置換、分枝または非分枝の脂肪族;環式または非環式、置換または非置換、分枝または非分枝のヘテロ脂肪族;置換または非置換、分枝または非分枝のアシル;置換または非置換、分枝または非分枝のアリール;置換または非置換、分枝または非分枝のヘテロアリールであり;および
R3は、核酸である、
で表される。
で表される。
nは、1から20までの整数(境界を含む)である。
で表される。
末端(3’または5’末端)、ループ領域または化学修飾された二本鎖核酸分子の他のいずれ部分にも付着し得る他の型の抱合体は、ステロール、ステロール型分子、ペプチド、低分子、タンパク質などを含む。いくつかの態様において、化学修飾された二本鎖核酸分子は、1つより多い抱合体(同じまたは異なる化学的性質のもの)を含んでもよい。いくつかの態様において、抱合体は、コレステロールである。
語「RNase H活性化領域」は、オリゴヌクレオチド、例えばキメラオリゴヌクレオチドの、当該オリゴヌクレオチドが結合する標的RNA鎖を切断するRNase Hを動員することができる領域を含む。典型的には、RNase H活性化領域は、DNAまたはDNA様ヌクレオモノマーの(少なくとも約3~5、典型的には約3~12、より典型的には約5~12、より好ましくは約5~10の、連続したヌクレオモノマーの)最小コアを含む(例えば米国特許第5,849,902号を参照)。好ましくは、RNase H活性化領域は、約9個の連続したデオキシリボース含有ヌクレオモノマーを含む。
一態様において、連続したポリヌクレオチドの少なくとも一部は、置換連結部、例えばホスホロチオアート連結部により連結されている。
ある態様において、ガイド配列を超えるヌクレオチドの殆どまたは全ては(2’修飾されていようがいまいが)ホスホロチオアート連結部により連結されている。かかるコンストラクトは、その血清タンパク質に対するより高いアフィニティーに起因して、薬物動態が改善されている傾向がある。ポリヌクレオチドの非ガイド配列部分におけるホスホロチオアート連結部は一般に、一旦ガイド鎖がRISCにロードされた後は、ガイド鎖の活性に干渉しない。いくつかの態様において、高レベルのホスホロチオアート修飾が送達の改善をもたらし得る。いくつかの態様において、ガイドおよび/パッセンジャー鎖は、完全にホスホロチオアート化されている。
本発明は、(a)一本鎖ポリヌクレオチドの安定性を著しく増大し、(b)ポリヌクレオチドのRISC複合体への効率的なローディングを促進し、および(c)一本鎖ヌクレオチドの細胞による取り込みを改善する、化学修飾パターンの説明を提供する。化学修飾パターンは、リボース修飾、骨格修飾、疎水性ヌクレオシド修飾と、抱合体型修飾との組み合わせを含んでもよい。加えて、態様のいくつかにおいて、単一のポリヌクレオチドの5’末端は、化学的にリン酸化されていてもよい。
本発明により提供される修飾は、全てのポリヌクレオチドに対して適用可能である。これは、一本鎖RISC侵入性ポリヌクレオチド、一本鎖RISC阻害性ポリヌクレオチド、多様な長さ(15~40bp)の従来のデュプレックス化ポリヌクレオチド、非対称性デュプレックス化ポリヌクレオチドなどを含む。ポリヌクレオチドは、5’末端修飾、リボース修飾、骨格修飾および疎水性ヌクレオシド修飾を含む、多様な化学修飾パターンにより修飾されていてもよい。
本発明のオリゴヌクレオチドは、当該技術分野において知られているいずれの方法によっても、例えば酵素による合成および/または化学合成を使用して、合成され得る。オリゴヌクレオチドは、in vitroで(例えば酵素による合成および化学合成を使用して)、またはin vivoで(当該技術分野において周知の組み換えDNA技術を使用して)合成され得る。
好ましい態様において、化学合成は、修飾ポリヌクレオチドのために使用される。直鎖オリゴヌクレオチドの化学合成は、当該技術分野において周知であり、溶液または固相の技術により達成され得る。好ましくは、合成は、固相方法によるものである。オリゴヌクレオチドは、ホスホロアミダイト、亜リン酸トリエステル、H-ホスホナートおよびホスホトリエステル方法を含む、いくつかの異なる合成手順のいずれかにより、典型的には自動合成方法により、作られてもよい。
他の例示的な合成技術は、当該技術分野において周知である(例えばSambrook et al., Molecular Cloning: a Laboratory Manual, Second Edition (1989);DNA Cloning, Volumes I and II (DN Glover Ed. 1985);Oligonucleotide Synthesis(M J Gait Ed, 1984;Nucleic Acid Hybridisation(B D Hames and S J Higgins eds. 1984);A Practical Guide to Molecular Cloning (1984);またはシリーズであるMethods in Enzymology(Academic Press, Inc.)を参照)。
ある態様において、対象とするRNAiコンストラクトまたは少なくともその一部は、対象とするコンストラクトをコードする発現ベクターから転写される。この目的のために、当該技術分野において認識されるいずれのベクターも使用されてもよい。転写されたRNAiコンストラクトは、所望の修飾(未修飾センス鎖を修飾されたものにより置き換えることなど)が行われる前に、単離、精製されてもよい。
いかなる特定の理論によっても拘束されることを望まないが、発明者は、本明細書に記載の二本鎖核酸分子(例えば、sd-rxRNA)のパッセンジャー鎖およびガイド鎖上の修飾の特定のパターンが、ガイド鎖の核への侵入を容易にし、ガイド鎖が遺伝子サイレンシング(例えば、AKT、p53、PDCD1、TIGIT、Cbl-b、Tet2、Blimp-1、T-Box21、DNMT3A、PTPN6、およびHK2などの標的遺伝子のサイレンシング)を媒介すると考える。
オリゴヌクレオチドおよびオリゴヌクレオチド組成物は、1以上の細胞または細胞ライセートと接触させられて(すなわち、接触させられるか、または、本明細書においては投与または送達されるとして言及される)、これに取り込まれる。用語「細胞」は、原核および真核細胞、好ましくは脊椎動物細胞、より好ましくは哺乳動物細胞を含む。いくつかの態様において、本発明のオリゴヌクレオチド組成物は細菌細胞と接触させられる。いくつかの態様において、本発明のオリゴヌクレオチド組成物は真核細胞(例えば、植物細胞、哺乳動物細胞、昆虫細胞などの節足動物細胞)と接触させられる。いくつかの態様において、本発明のオリゴヌクレオチド組成物は幹細胞と接触させられる。いくつかの態様において、本発明のオリゴヌクレオチド組成物は、T細胞(例として、CD8+T細胞)などの免疫細胞と接触させられる。いくつかの態様において、T細胞は、TSCMまたはTCM細胞である。好ましい態様において、本発明のオリゴヌクレオチド組成物は、ヒト細胞と接触させられる。
酵母細胞壁粒子などのグルカン粒子は、天然の脂質含量を有し得る。例えば、粒子は1%、2%、3%、4%、5%、6%、7%、8%、9%、10%、11%、12%、13%、14%、15%、16%、17%、18%、19%、20%または20%w/wを超える脂質を含有し得る。いくつかの態様において、天然脂質の存在はRNA分子の複合体化または捕捉を支援し得る。
送達するRNA分子(単数または複数)は、グルカン粒子に複合体化されるか、そのシェル内に「捕捉」される。粒子のシェルまたはRNA構成要素は、Soto and Ostroff (2008) Bioconjug Chem 19:840に記載され、参照により組み込まれているように、視覚化のために標識され得る。GeRPをロードする方法は以下にさらに議論される。
オリゴヌクレオチドの取り込みのための最適なプロトコルは、多数の因子に依存するであろうが、最も重要なのは、使用される細胞の型である。取り込みにおいて重要な他の因子は、これらに限定されないが、オリゴヌクレオチドの性質および濃度、細胞のコンフルエンス、細胞を入れる培養の種類(例えば懸濁培養であるかまたはプレート培養であるか)および細胞を培養する培地の種類を含む。
いくつかの態様において、本明細書に記載の化学修飾された二本鎖核酸分子(例として、sd-rxRNA)は、免疫原性組成物のための特定の細胞サブタイプまたはT細胞サブタイプの生産に有用である。本明細書に使用されるとき、「免疫原性組成物」は、本明細書に記載の化学修飾された核酸分子および任意に1以上の薬学的に許容し得る賦形剤または担体を含む宿主細胞を含む組成物である。いずれの具体的な理論によっても拘束されることは望まないが、本開示に記載される免疫原性組成物は、特定の細胞サブタイプ(例として、TSCMまたはTCMT細胞などのT細胞サブタイプ)の富化された集団、および/または1以上の免疫チェックポイントタンパク質(例として、PDCD1、TIGIT等々)の減少した(例として、阻害された)発現または活性を有するように操作されている、免疫細胞(例として、T細胞、NK細胞、抗原提示細胞(APC)、樹状細胞(DC)、幹細胞(SC)、誘導多能性幹細胞(iPSC)等々)の集団により特徴づけられ、したがって、いくつかの態様において、対象の免疫応答を調節する(例として、刺激するまたは阻害する)ために有用である。
いくつかの態様において、細胞(例として、宿主細胞)は、キラーT細胞、ヘルパーT細胞、または制御性T細胞などのT細胞である。いくつかの態様においてT細胞は、キラーT細胞(例として、CD8+T細胞)である。いくつかの態様において、T細胞は、ヘルパーT細胞(例として、CD4+T細胞)である。いくつかの態様において、T細胞は、活性化T細胞(例として、抗原提示細胞上のMHCクラスII分子によりペプチド抗原が提示されているT細胞)である。
いくつかの態様において、T細胞は、高親和性T細胞受容体(TCR)および/またはキメラの抗体受容体(CAR)を発現する1以上の導入遺伝子を含む。
1以上のシグナル伝達/転写因子、エピジェネティックな、代謝性および/または共阻害性/ネガティブ制御性タンパク質(例として、AKT、p53、PDCD1、TIGIT、Cbl-b、Tet2、Blimp-1、T-Box21、HK2、DNMT3A、PTPN6等々)発現または活性の有意な減少により特徴づけられるという発見に関する。いくつかの態様において、宿主細胞は、化学修飾された二本鎖核酸分子を含まない細胞(例として、同じ細胞型の免疫細胞)と比べて、約5%~約50%減少した免疫チェックポイントタンパク質の発現により特徴づけられる。いくつかの態様において、宿主細胞は、化学修飾された二本鎖核酸分子を含まない細胞(例として、同じ細胞型の免疫細胞)(例として、増殖性疾患または感染性疾患を有している、または有している疑いのある対象の免疫細胞)と比べて50%超(例として、51%、52%、53%、54%、55%、60%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、99%、100%、または51%~100%の間の任意のパーセンテージ、その間におけるすべての値を含む)減少した分子関連標的(例として、シグナル伝達分子、キナーゼ/ホスファターゼ、転写因子、エピジェネティックなモジュレーター、代謝性および制御性標的)の発現により特徴づけられる。
p53およびPD1
p53およびAKT
PD1およびAKT
PD1およびAKTおよびp53
Cbl-bおよびPD1
Clb-bおよびAKT
Clb-bおよびPD1およびAKT
またはこれらの任意の組み合わせ。
CTLA4およびPD1
STAT3およびp38
PD1およびBaxPD1、CTLA4、Lag-1、ILM-3、およびTP53
PD1およびCasp8
PD1およびIL10R
PD1およびTIGIT。
本開示は、さらには、本明細書に記載のRNAiコンストラクトおよび薬学的に許容し得る担体または希釈剤を含む組成物に関する。いくつかの側面において、本開示は、本明細書に記載のRNAiコンストラクトおよび薬学的に許容し得る担体を含む免疫原性組成物に関する。
いくつかの側面において、本発明に関連する製剤は、天然に存在するかまたは化学的に合成されたかまたは修飾された、飽和および不飽和の脂肪酸残基のクラスについて選択されてもよい。脂肪酸は、トリグリセリド類、ジグリセリド類または個々の脂肪酸の形態で存在してもよい。別の態様において、非経口栄養のために薬理学において現在使用されている脂肪酸および/または脂質のエマルジョンの、よく検証された混合物の使用が利用されてもよい。
いくつかの態様において、中性ナノトランスポーター組成物は、疎水性修飾ポリヌクレオチド、中性脂質混合物および任意にカーゴ分子を含む。本明細書に使用される「疎水性修飾ポリヌクレオチド」は、ポリヌクレオチドを、ポリヌクレオチドの修飾の前よりも疎水性にする少なくとも1つの修飾を有する、本発明のポリヌクレオチド(例として、sd-rxRNA)である。修飾は、疎水性分子をポリヌクレオチドに付着(共有結合的または非共有結合的に)することにより達成されてもよい。いくつかの例において、疎水性分子は、親油性基であるかまたは親油性基を含む。
典型的な抱合プロトコルは、配列の1以上の位置においてアミノリンカーを保有するポリヌクレオチドの合成を含むが、しかしながらリンカーは必要ではない。アミノ基は、次いで、適切なカップリングまたは活性化試薬を使用して、抱合される分子と反応させられる。抱合反応は、まだ固体支持体に結合しているポリヌクレオチドを用いて、または、溶液相中でのポリヌクレオチドの切断に続いて、実施されてもよい。HPLCによる修飾ポリヌクレオチドの精製は、典型的には、結果として純粋な材料を生じる。
本発明の目的のために、用語「ステロール」またはステロイドアルコール類は、A環の3位においてヒドロキシル基を持つステロイドのサブグループを指す。これらは、アセチル-コエンザイムAからHMG-CoAレダクターゼ経路を介して合成される両親媒性脂質である。全体的な分子は、極めて扁平である。A環上のヒドロキシル基は、極性である。脂肪族鎖の残りは、非極性である。通常、ステロールは、17位において8炭素鎖を有すると考えられる。
本発明の目的のために、用語「ステロール型分子」は、ステロイドアルコール類を指し、これは、ステロールと構造が類似する。主要な差異は、環の構造および21位に結合する側鎖の炭素の数である。
本発明の目的のために、用語「ステロールの側鎖」は、ステロール型分子の17位にて付着する側鎖の化学組成を指す。標準的な定義において、ステロールは、8炭素鎖を17位に保有する4環構造に限定される。本発明において、従来のものよりも長いおよび短い側鎖を持つステロール型分子が記載される。側鎖は、分枝であってもよいし、二重の骨格を含有していてもよい。
よって、本発明に有用なステロールは、例えば、コレステロール、ならびに、17位に2~7個または9個の炭素より長い側鎖が結合しているユニークなステロールを含む。特定の態様において、ポリ炭素テイルの長さは、5~9個の炭素の間で変動する。かかる抱合体は、特に肝臓への送達において、有意により良好なin vivo効力を有してもよい。これらの型の分子は、従来のコレステロールに抱合されたオリゴヌクレオチドよりも5~9倍低い濃度にて働くことが期待される。
別の態様において、疎水性分子抱合体は、疎水性修飾、ホスホロチオアート修飾および2’リボ修飾を含むがこれらに限定されないポリヌクレオチドの最適な化学修飾パターンと組み合わされたとき(本明細書に詳細に記載されるとおり)、さらに高い効力を実証し得る。
中性脂質は、強力であるが共有結合ではない引力(例えば静電気、ファンデルワールス、パイ・スタッキング(pi-stacking)などの相互作用)により、本発明のオリゴヌクレオチドに結合する。
中性脂肪酸混合物は、好ましくは、コリンをベースとする脂肪酸およびステロールの混合物である。コリンをベースとする脂肪酸は、例として、DDPC、DLPC、DMPC、DPPC、DSPC、DOPC、POPCおよびDEPCなどの合成のホスホコリン誘導体を含む。DOPC(化合物登録番号4235-95-4)は、ジオレオイルホスファチジルコリンである(ジエライドイルホスファチジルコリン、ジオレオイル-PC、ジオレオイルホスホコリン、ジオレオイル-sn-グリセロ-3-ホスホコリン、ジオレイルホスファチジルコリンとしても知られる)。DSPC(化合物登録番号816-94-4は、ジステアロイルホスファチジルコリンである(1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスホコリンとしても知られる)。
本発明の目的のために、用語「脂肪酸」は、脂肪酸の従来の説明に関する。これらは、個別の実体またはジグリセリドおよびトリグリセリドの形態において存在し得る。本発明の目的のために、用語「脂質エマルジョン」は、食事から十分な脂質を得ることができない対象へ静脈内に与えられる安全な脂質製剤を指す。これは、大豆油(または他の天然に存在するオイル)と卵のリン脂質とのエマルジョンである。脂質エマルジョンは、いくつかの不溶性麻酔剤の製剤のために使用されている。本開示において、脂質エマルジョンは、イントラリピッド(Intralipid)、リポシン(Liposyn)、ニュートリピッド(Nutrilipid)などの市販の製剤の一部、特定の脂肪酸が濃縮されている改変された市販の製剤、または、全く新たに処方された脂肪酸とリン脂質との組合せであってもよい。
イントラリピッド(Intralipid)は、以下の組成から構成され得る:1000mLが以下を含有する:精製大豆油90g、精製卵リン脂質12g、無水グリセロール22g、注射用水(1000mLへの十分量)。pHは、水酸化ナトリウムで、約pH8に調整される。エネルギー含量/L:4.6MJ(190kcal)。浸透圧(およそ):300mOsm/水1kg。別の態様において、脂質エマルジョンは、5%のベニバナ油、5%の大豆油、乳化剤として添加される最大1.2%までの卵リン脂質および注射用水中の2.5%のグリセリンを含有する、リポシン(Liposyn)である。これはまた、pH調整のために水酸化ナトリウムを含有してもよい。pH8.0(6.0~9.0)。リポシンは、276mOsmol/リットル(実測値)の浸透圧を有する。
別の態様において、脂質エマルジョンは、脂質の混合物に基づく。かかる脂質は、天然の化合物、化学合成された化合物、精製脂肪酸または他のいずれの脂質をも含んでもよい。さらに別の態様において、脂質エマルジョンの組成は、完全に人工的なものである。特定の態様において、脂質エマルジョンは、70%を超えて、リノール酸である。さらに別の特定の態様において、脂質エマルジョンは、少なくとも1%のカルジオリピンである。リノール酸(LA)は、不飽和オメガ-6脂肪酸である。これは、18-炭素鎖および2個のシス二重結合を有するカルボン酸からなる無色の液体である。
別の態様において、カーゴ分子の脂質エマルジョンは、70%を超えるリノール酸(C18H32O2)および/またはカルジオリピンを含む。
イントラリピッド(intralipid)などの脂質エマルジョンは、いくつかの非水溶性薬物(プロポフォール(Propofol)(Diprivanとして再処方されている)など)のための送達用製剤として、前から使用されてきた。本発明のユニークな特徴は、(a)修飾ポリヌクレオチドを1以上の疎水性化合物と組み合わせ、それによりこれが脂質ミセル中に組み込まれ得るというコンセプト、および(b)可逆性キャリアを提供するためにこれを脂質エマルジョンと混合すること、を含む。血流中への注射の後で、ミセルは通常、アルブミン、HDL、LDLおよびその他の血清タンパク質と結合する。この結合は可逆性であり、最終的に脂質は細胞により吸収される。ミセルの一部として組み込まれるポリヌクレオチドは、次いで、細胞の表面近くに送達されるであろう。その後、ステロール型送達を含むがこれらに限定されない多様な機構を通して、細胞による取り込みが起こり得る。
正に荷電したアミノ酸を、高活性カチオン性脂質を作製するために使用され得ることは、当該技術分野において知られている(Lewis et al. 1996. Proc. Natl. Acad. Sci. US.A. 93:3176)。一態様において、本発明のオリゴヌクレオチドを送達するための組成物は、親油性部分に結合した多数のアルギニン、リジン、ヒスチジンまたはオルニチン残基を含む(例えば米国特許第5,777,153号を参照)。
一態様において、細胞の、脂質およびオリゴヌクレオチド組成物を含む混合物とのインキュベーションは、細胞のバイアビリティを低下させない。好ましくは、トランスフェクション期間の後で、細胞は実質的に生存している。一態様において、トランスフェクションの後で、細胞は、少なくとも約70%~少なくとも約100%生存している。別の態様において、細胞は、少なくとも約80%~少なくとも約95%生存している。さらに別の態様において、細胞は、少なくとも約85%~少なくとも約90%生存している。
語「輸送ペプチド」は、オリゴヌクレオチドの細胞中への輸送を容易にさせるアミノ酸配列を含む。それが連結されている部分の細胞中への輸送を容易にさせる例示的なペプチドは、当該技術分野において知られており、例えばHIV TAT転写因子、ラクトフェリン、ヘルペスVP22タンパク質および線維芽細胞増殖因子2を含む(Pooga et al. 1998. Nature Biotechnology. 16:857;およびDerossi et al. 1998. Trends in Cell Biology. 8:84; Elliott and O'Hare. 1997. Cell 88:223)。
一態様において、本発明のオリゴヌクレオチドは、受容体により媒介されるエンドサイトーシス機構を遺伝子の細胞中への送達のために利用する、分子抱合体として合成される(例えばBunnell et al. 1992. Somatic Cell and Molecular Genetics. 18:559およびこれにおいて引用される参考文献を参照)。
いくつかの側面において、本開示は、本開示に記載される免疫原性組成物(例として、特定の細胞サブタイプまたはT細胞サブタイプの1以上の宿主細胞を含む免疫原性組成物)を対象(例として、増殖性疾患または感染性疾患を有している、または有している疑いのある対象)に投与することにより増殖性疾患または感染性疾患を処置する方法を提供する。いくつかの態様において、本明細書に記載の免疫原性組成物は、T細胞の分化プロセスのコントロールに関する1以上の遺伝子(例として、AKT、p53、PD1、TIGIT、Cbl-b、Tet2、Blimp-1、T-Box21、HK2、DNMT3A、PTPN6等々)の減少した(例として、阻害された)発現または活性を有する免疫細胞(例として、T細胞、NK細胞、抗原提示細胞(APC)、樹状細胞(DC)、幹細胞(SC)、誘導多能性幹細胞(iPSC)等々)の集団として特徴づけられる。いずれの具体的な理論によっても拘束されることは望まないが、本明細書に記載の免疫原性組成物は、いくつかの態様において、免疫チェックポイントタンパク質の減少した発現により特徴づけられ、よって免疫チェックポイントタンパク質の増加した発現により特徴付けられる、ある増殖性疾患または感染性疾患を有する対象の免疫系を刺激するのに有用である。
いくつかの態様において、本開示に記載される免疫原性組成物は、養子細胞移植(ACT)治療方法により対象に投与される。ACTモダリティーの例は、これらに限定されないが、自家細胞治療(例として、対象自身の細胞が取り出され、遺伝子的に操作され、対象に戻される)および他家細胞治療(例として、細胞はドナーから取り出され、遺伝子的に操作され、レシピエントに置かれる)を含む。いくつかの態様において、ACT治療方法に利用される細胞は、選択的された抗体部分に基づく標的抗原に対して特異性をディスプレイする操作されたT細胞受容体である、キメラ抗原受容体(CAR)を発現するように遺伝子的に操作されていてもよい。結果的に、いくつかの態様において、CAR T細胞(例としてCART)は、ACT治療の目的のために、本明細書に記載の方法を用いて、化学修飾された二本鎖核酸でトランスフェクトされてもよい。
投薬レジメンは、最適な治療応答を提供するために調整されてもよい。例えば、免疫原性組成物は、繰り返して投与されてもよく、例えば数回の用量が毎日投与してもよく、または、その用量が、治療状況の要件に従って比例的に低減させてもよい。化学修飾された二本鎖核酸分子または免疫原性組成物が細胞へ投与されるかまたは対象へ投与されるかに関わらず、当業者は、対象とするそれらの適切な用量および投与のスケジュールを容易に決定することができるであろう。
皮内注射または皮下送達などを通じた免疫原性組成物の投与は、投薬レジメンの試験を通じて最適化され得る。いくつかの態様において、単一の投与は十分である。投与された免疫原性組成物の効果をさらに延長するために、当業者によく知られているように、組成物は、徐放性製剤またはデバイスで投与され得る。
本発明の側面は、免疫原性組成物を対象へ投与することに関する。いくつかの例において、対象は患者であり、免疫原性組成物の投与には、sd-rxRNA分子を医院で投与することが関与する。
いくつかの態様において、1種より多くの免疫原性組成物が同時に投与される。例えば、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10種または10種より多くの異なる組成物を含む組成物が投与されてもよい。ある態様において、組成物は2または3種の異なる免疫原性組成物を含む。
その全内容が参照により本明細書に組み込まれる、米国特許公開番号US 2016/0304873に記載されているように、免疫治療剤は、免疫抑制メカニズムに関与する特定の遺伝子を標的化およびノックダウンするように設計された特定のsd-rxRNA剤で細胞を処置することにより生産された。とりわけ、表1に示す以下の細胞および細胞株は、d-rxRNAで首尾よく処理され、特定のヒト細胞における標的とされた遺伝子発現の少なくとも70%をノックダウンすることが示された。
これらの研究は、通常トランスフェクションに極めて耐性のある細胞における標的遺伝子の発現を抑制するこれらの免疫原性剤の有用性を実証し、この剤があらゆる細胞型の標的細胞の発現を減少させることができることを示唆した。
本明細書に記載の組成物および方法は、以下の例によってさらに例証されるが、これらは決して、さらに限定するものとして解釈されるべきではない。本出願を通して引用された全ての参考資料(参考文献、交付済み特許、公開された特許出願および同時係属の特許出願を含む)のすべての全体の内容は、参照によりここに明示的に組み込まれる。
例1:sd-rxRNAの操作および試験
表1に列挙される遺伝子を、好ましいsd-rxRNA標的配列および標的領域を同定するために、独自に開発されたアルゴリズムを用いて分析した。PDCD1およびCbl-b標的化配列および/またはsd-rxRNA配列の非限定例を、表3、表4、表6および表8に示す。AKT、Tet2、Blimp-1、T-Box21、PTPN6、およびHK2をコードする遺伝子の分析のための代表的な配列を、表7および9~13に示す。
TIGIT(NCBI GenBankアクセッション番号NM_173799)をコードする遺伝子を、抗原提示細胞およびT細胞の免疫抑制を予防するための、好ましいsd-rxRNA標的配列および標的領域を同定するために、独自に開発されたアルゴリズムを用いて分析した。TIGITについての結果を、表5に示す。
一次ヒトT細胞をAllCells(CA)から得て、10%ウシ胎仔血清(Gibco)および1000IU/ml IL2を含有するRPMI完全培地中で培養した。細胞を、トランスフェクションの前に、少なくとも4日間、製造業者の指示に従って、抗CD3/CD28 Dynabeads(Gibco, 11131)で活性化させた。PDCD1を標的とする化学的に最適化されたsd-rxRNAを試料(ウェル)あたり血清フリーRPMI中0.2~2μMまで、sd-rxRNAを個別に希釈することにより調製し、96ウェルプレートの100μl/ウェルに分割した。細胞を4%FBSおよびIL2 2000U/mlを含有するRPMI培地中で、1,000,000細胞/mlに調製し、事前に希釈したsd-rxRNAを含む96ウェルプレートに100μl/ウェルで播種した。PDCD1を標的とするsd-rxRNAの例を、表6に提供する。
図1に示す結果は、T細胞へ送達されたPDCD1標的化sd-rxRNA剤の有意なサイレンシングを実証し、2μM sd-rxRNAによる遺伝子発現の60~70%超の阻害を得た。
一次ヒトT細胞をAllCells(CA)から得て、10%ウシ胎仔血清(Gibco)および1000IU/mL IL2を含有するRPMI完全培地中で培養した。細胞を、トランスフェクションの前に、少なくとも4日間、製造業者の指示に従って、抗CD3/CD28 Dynabeads(Gibco, 11131)で活性化させた。PDCD1を標的とする化学的に最適化されたsd-rxRNAを試料(ウェル)あたり血清フリーRPMI中0.06~2μMまで、sd-rxRNAを個別に希釈することにより調製し、96ウェルプレートの100μl/ウェルに分割した。細胞を4%FBSおよびIL2 2000U/mlを含有するRPMI培地中で、1,000,000細胞/mlに調製し、事前に希釈したsd-rxRNAを含む96ウェルプレートに100μl/ウェルで播種した。
一次ヒトT細胞をAllCells(CA)から得て、1000IU/ml IL2を含有するRPMI完全培地中で培養した。細胞を、トランスフェクションの前に、少なくとも4日間、製造業者の指示に従って、抗CD3/CD28 Dynabeads(Gibco, 11131)で活性化させた。細胞からビーズを取り除くために短時間ボルテックスし、かつ指定されたマグネットを用いてそれらを分離することにより、細胞を回収した。TIGITを標的とする化学的に最適化されたsd-rxRNAを、試料(ウェル)あたり血清フリーRPMI中0.04~2μMまで、sd-rxRNAを個別に希釈することにより調製し、96ウェルプレートの100μl/ウェルに分割した。細胞を4%FBSおよびIL2 2000U/mlを含有するRPMI培地中で、1,000,000細胞/mlに調製し、事前に希釈したsd-rxRNAを含む96ウェルプレートに100μl/ウェルで播種した。TIGITを標的とするsd-rxRNAの例を、表4に提供する。
図3に示す結果は、T細胞へ送達されたTIGIT標的化sd-rxRNA剤TIGIT 6およびTIGIT 1の有意なサイレンシングを実証し、2μM sd-rxRNAによる遺伝子発現の60~70%超の阻害を得た。
この例は、T細胞の抗腫瘍有効性と自己リニューアル特性との間のバランスを達成するための、sd-rxRNAによるT細胞の調節を記載する。図4は、T細胞の分化状態の進行に対するsd-rxRNA処置の効果の概略図を示す。簡単に言えば、sd-rxRNAによるT細胞の処置は、細胞ベースの治療薬の製造(例として、ACTの産生)の間の細胞分化に影響を与える。加えて、異なる遺伝子を標的とする複数のsd-rxRNAによる処置は、シグナル伝達経路、転写因子、代謝標的およびエピジェネティックな制御などの複数の分化メカニズムの刺激調節を可能にする。sd-rxRNAによるT細胞の処置は、「非ドラッガブルな」メカニズムの標的化を可能にする。
HepG2細胞をATCC(VA)から得て、10%ウシ胎仔血清(Gibco)を含有するEMEM完全培地中で培養した。トランスフェクションの24時間前に、96ウェルプレートに、ウェル当たり10,000細胞で細胞を播種した。HK2を標的とするsd-rxRNA化合物(例として、表5に記載される)を試料(ウェル)あたりAccell培地(Dharmacon, CO)中0.25~1μMまで、sd-rxRNAを個別に希釈することにより調製し、事前に播種した96ウェルプレートの100μl/ウェルに分割した。投与の48時間後、トランスフェクトされた細胞を溶解し、遺伝子特異的プローブ(Affymetrix)を用いて、製造業者のプロトコルに従って、Quantigene 分岐鎖DNAアッセイによりmRNAレベルを決定した。図6は、HK2標的化sd-rxRNAが、HepG2細胞において、標的遺伝子mRNAレベルをin vitroで減少させることを実証する。データを、ハウスキーピング遺伝子(PPIB)に対して正規化し、非標的化対照に関してグラフ化した。エラーバーは、生物学的三重(biological triplicates)の平均からの標準偏差を表す。
一次ヒトT細胞をAllCells(CA)から得て、10%ウシ胎仔血清(Gibco)および1000IU/ml IL2を含有するRPMI完全培地中で培養した。細胞を、トランスフェクションの前に、少なくとも4日間、製造業者の指示に従って、抗CD3/CD28 Dynabeads(Gibco, 11131)で活性化させた。HK2を標的とするsd-rxRNA化合物および非標的化対照sd-rxRNA(#28599)を、試料(ウェル)あたり血清フリーRPMI中0.04~2μMまで、sd-rxRNAを個別に希釈することにより調製し、96ウェルプレートの100μl/ウェルに分割した。細胞を4%FBSおよびIL2 2000U/mlを含有するRPMI培地中で、1,000,000細胞/mlに調製し、事前に希釈したsd-rxRNAを含む96ウェルプレートに100μl/ウェルで播種した。HK2配列を標的とするsd-rxRNAの例を、表7に提供する。投与の72時間後、細胞を溶解し、遺伝子特異的プローブ(Affymetrix)を用いて、製造業者のプロトコルに従って、Quantigene 分岐鎖DNAアッセイによりmRNAレベルを決定した。図7は、HK2標的化sd-rxRNAが、ヒトPanT細胞において標的遺伝子mRNAレベルをin vitroで減少させることを実証する。データを、ハウスキーピング遺伝子(PPIB)に対して正規化し、非標的化対照に関してグラフ化した。エラーバーは、生物学的三重の平均からの標準偏差を表す。
T細胞を10%ウシ胎仔血清(Gibco)および1000IU/ml IL2を含有するRPMI完全培地中で培養した。細胞を、トランスフェクションの前に、少なくとも4日間、製造業者の指示に従って、抗CD3/CD28 Dynabeads(Gibco, 11131)で活性化させた。Cbl-bを標的とするsd-rxRNA化合物および非標的化対照(NTC)sd-rxRNAを、試料(ウェル)あたり血清フリーRPMI中2uMまたは0.04~2μMまで、sd-rxRNAを個別に希釈することにより調製し、96ウェルプレートの100μl/ウェルに分割した。細胞を4%FBSおよびIL2 2000U/mlを含有するRPMI培地中で、1,000,000細胞/mlに調製し、事前に希釈したsd-rxRNAを含む96ウェルプレートに100μl/ウェルで播種した。Cbl-b配列を標的とするsd-rxRNAの例を、表8に提供する。トランスフェクションインキュベーション期間の終了後、プレーティングされたトランスフェクトされた細胞を、100μl/ウェルPBSで一度洗浄し、製造業者の指示に従ってFastLane Cell Multiplex Kit試薬で処理した。Taqman 遺伝子発現アッセイを以下の組み合わせにおいて用いた:ヒトCbl-b-FAM/GAPDH-VIC。各反応ミックスの18μl/ウェルの容量を、これまでに調製された溶解物からウェル当たり2μlの溶解物と組み合わせた。試料を、製造業者の指示に従って増幅した。
図8における結果は、T細胞にトランスフェクトされたsd-rxRNA化合物により両者のCbl-bの有意なサイレンシングを実証し、1~2μM sd-rxRNAにより遺伝子発現の70~80%の阻害に達した。
末梢血leukopakをStemCell Technologiesから得た。一次NK細胞を、ネガティブセレクションキット(Miltenyi)を用いて単離し、細胞を、X-Vivo 10(Lonza)+1ng/ml IL-15中で培養した。細胞を、トランスフェクションのために回収し、細胞濃度を、IL-15を含有するX-vivo培地中約1x106細胞/mLに調整した。細胞を、0.125μM~2μMの最終濃度の範囲でsd-rxRNAを含有する24ウェルプレートに直接播種した。72時間のインキュベーション後、トランスフェクトされた細胞を回収し、製造業者のプロトコルに従って、RNEasy RNA単離キット(Qiagen)を用いてRNAを単離した。Taqman遺伝子発現アッセイを、以下の組み合わせで用いた:ヒトCblb-FAM(Taqman, Hs00180288_m1)/ヒトTBP-FAM(Taqman, Hs00427620_m1)。各反応ミックスの15μl/ウェルの容量を、これまでに単離したRNAからウェル当たり5μlRNAと組み合わせた。試料を、RNAto Ct 1-stepプロトコル(ThermoFisher)に従って増幅した。
図9に示す結果は、ヒト一次NK細胞へ送達されるCblb標的化sd-rxRNA剤27457のサイレンシングを実証し、2μM sd-rxRNAにより遺伝子発現の80%超の阻害を得た。
HepG2細胞をATCC(VA)から得て、10%ウシ胎仔血清(Gibco)を含有するEMEM完全培地中で培養した。トランスフェクションの24時間前に、96ウェルプレートに、ウェル当たり10,000細胞で細胞を播種した。DMNT3Aを標的とするsd-rxRNA化合物を試料(ウェル)あたりAccell培地(Dharmacon, CO)中0.25~1μMまで、sd-rxRNAを個別に希釈することにより調製し、事前に播種された96ウェルプレートの100μl/ウェルに分割した。投与の48時間後、トランスフェクトされた細胞を溶解し、遺伝子特異的プローブ(Affymetrix)を用いて、製造業者のプロトコルに従ってQuantigene 分枝鎖DNAアッセイによりmRNAレベルを決定した。図10は、DMNT3A標的化sd-rxRNAが、HepG2細胞において標的遺伝子mRNAレベルをin vitroで減少させることを実証する。データを、ハウスキーピング遺伝子(PPIB)に対して正規化し、非標的化対照に関してグラフ化した。エラーバーは、生物学的三重の平均からの標準偏差を表す。
一次ヒトT細胞をAllCells(CA)から得て、1000IU/ml IL2を含有するImmunoCult-XF T細胞拡大完全培地(Stem Cell Technologies, Vancouver, BC)中で培養した。細胞を、トランスフェクションの前に、少なくとも4日間、製造業者の指示に従って、抗CD3/CD28 Dynabeads(Gibco, 11131)で活性化させた。DMNT3Aを標的とするsd-rxRNA化合物および非標的化対照sd-rxRNA(#28599)を試料(ウェル)あたり完全Immunocult中0.04~2μMまで、sd-rxRNAを個別に希釈することにより調製し、96ウェルプレートの100μl/ウェルに分割した。細胞をImmunocult完全培地中で調製し、事前に希釈したsd-rxRNAを含む96ウェルプレートに100μl/ウェルで播種した。DMNT3Aを標的とするsd-rxRNA配列の例を表9に提供する。投与の72時間後、細胞を溶解し、遺伝子特異的プローブ(Affymetrix)を用いて、製造業者のプロトコルに従ってQuantigene 分枝鎖DNAアッセイによりmRNAレベルを決定した。図11は、DMNT3A標的化sd-rxRNAが、ヒトPanT細胞において標的遺伝子mRNAレベルをin vitroで減少させることを実証する。データを、ハウスキーピング遺伝子(PPIB)に対して正規化し、非標的化対照に関してグラフ化した。エラーバーは、生物学的三重の平均からの標準偏差を表す。
A549細胞をATCC(VA)から得て、10%ウシ胎仔血清(Gibco)を含有するATCC処方F-12K完全培地中で培養した。トランスフェクションの24時間前に、96ウェルプレートに、ウェル当たり10,000細胞で細胞を播種した。PRDM1を標的とするsd-rxRNA化合物を試料(ウェル)あたりAccell培地(Dharmacon)中0.2~2μMまで、sd-rxRNAを個別に希釈することにより調製し、事前に播種された96ウェルプレートの100μl/ウェルに分割した。インキュベーションの72時間後、トランスフェクトされた細胞を溶解し、遺伝子特異的プローブ(Affymetrix)を用いて、製造業者のプロトコルに従ってQuantigene 分枝鎖DNAアッセイによりmRNAレベルを決定した。
図12に示す結果は、A549細胞へ送達されるPRDM1標的化sd-rxRNA剤のサイレンシングを実証し、2μM sd-rxRNAにより遺伝子発現の40%超の阻害を得た。データを、ハウスキーピング遺伝子(HPRT)に対して正規化し、非標的化対照に関してグラフ化した。エラーバーは、生物学的三重の平均からの標準偏差を表す。
A549細胞をATCC(VA)から得て、10%ウシ胎仔血清(Gibco)を含有するATCC処方F-12K完全培地中で培養した。トランスフェクションの24時間前に、96ウェルプレートに、ウェル当たり10,000細胞で細胞を播種した。PRDM1を標的とするsd-rxRNA化合物を試料(ウェル)あたりAccell培地(Dharmacon)中0.2~2μMまで、sd-rxRNAを個別に希釈することにより調製し、事前に播種した96ウェルプレートの100μl/ウェルに分割した。PRDM1を標的とするsd-rxRNA配列の例を、表10に提供する。インキュベーションの72時間後、トランスフェクトされた細胞を溶解し、遺伝子特異的プローブ(Affymetrix)を用いて、製造業者のプロトコルに従ってQuantigene 分岐鎖DNAアッセイによりmRNAレベルを決定した。
図13に示す結果は、A549細胞へ送達されるPRDM1標的化sd-rxRNA剤のサイレンシングを実証し、2μM sd-rxRNAにより遺伝子発現の80%超の阻害を得た。データを、ハウスキーピング遺伝子(HPRT)に対して正規化し、非標的化対照に関してグラフ化した。エラーバーは、生物学的三重の平均からの標準偏差を表す。
A549細胞をATCC(VA)から得て、10%ウシ胎仔血清(Gibco)を含有するATCC処方F-12K完全培地中で培養した。トランスフェクションの24時間前に、96ウェルプレートに、ウェル当たり10,000細胞で細胞を播種した。PTPN6を標的とするsd-rxRNA化合物を試料(ウェル)あたりAccell培地(Dharmacon)中0.2~2μMまで、sd-rxRNAを個別に希釈することにより調製し、事前に播種した96ウェルプレートの100μl/ウェルに分割した。インキュベーションの72時間後、トランスフェクトされた細胞を溶解し、遺伝子特異的プローブ(Affymetrix)を用いて、製造業者のプロトコルに従ってQuantigene 分岐鎖DNAアッセイによりmRNAレベルを決定した。
図14に示す結果は、A549細胞へ送達されるPTPN6標的化sd-rxRNA剤のサイレンシングを実証し、2μM sd-rxRNAにより遺伝子発現の40%超の阻害を得た。データを、ハウスキーピング遺伝子(TFRC)に対して正規化し、非標的化対照に関してグラフ化した。エラーバーは、生物学的三重の平均からの標準偏差を表す。
A549細胞をATCC(VA)から得て、10%ウシ胎仔血清(Gibco)を含有するATCC処方F-12K完全培地中で培養した。トランスフェクションの24時間前に、96ウェルプレートに、ウェル当たり10,000細胞で細胞を播種した。PTPN6を標的とするsd-rxRNA化合物を試料(ウェル)あたりAccell培地(Dharmacon)中0.2~2μMまで、sd-rxRNAを個別に希釈することにより調製し、事前に播種した96ウェルプレートの100μl/ウェルに分割した。PTPN6を標的とするsd-rxRNA配列の例を、表11に提供する。インキュベーションの72時間後、トランスフェクトされた細胞を溶解し、遺伝子特異的プローブ(Affymetrix)を用いて、製造業者のプロトコルに従ってQuantigene 分枝鎖DNAアッセイによりmRNAレベルを決定した。
図15に示す結果は、A549細胞へ送達されるPTPN6標的化sd-rxRNA剤である28613、28614、28617、28623、28627、28628、および28629のサイレンシングを実証し、2μM sd-rxRNAにより遺伝子発現の80%超の阻害を得た。データを、ハウスキーピング遺伝子(TFRC)に対して正規化し、非標的化対照に関してグラフ化した。エラーバーは、生物学的三重の平均からの標準偏差を表す。
U2OSをATCC(VA)から得て、10%ウシ胎仔血清(Gibco)を含有するATCC処方マッコイ5a完全培地中で培養した。トランスフェクションの24時間前に、96ウェルプレートに、ウェル当たり10,000細胞で細胞を播種した。TET2を標的とするsd-rxRNA化合物を試料(ウェル)あたりAccell培地(Dharmacon)中0.2~2μMまで、sd-rxRNAを個別に希釈することにより調製し、事前に播種した96ウェルプレートの100μl/ウェルに分割した。インキュベーションの72時間後、トランスフェクトされた細胞を溶解し、遺伝子特異的プローブ(Affymetrix)を用いて、製造業者のプロトコルに従ってQuantigene 分岐鎖DNAアッセイによりmRNAレベルを決定した。
図16に示す結果は、A549細胞へ送達されるTET2-標的化sd-rxRNA剤のサイレンシングを実証し、2μM sd-rxRNAにより遺伝子発現の80%超の阻害を得た。データを、ハウスキーピング遺伝子(PPIB)に対して正規化し、非標的化対照に関してグラフ化した。エラーバーは、生物学的三重の平均からの標準偏差を表す。
U2OSをATCC(VA)から得て、10%ウシ胎仔血清(Gibco)を含有するATCC処方F-12K完全培地中で培養した。トランスフェクションの24時間前に、96ウェルプレートに、ウェル当たり10,000細胞で細胞を播種した。TET2を標的とするsd-rxRNA化合物を試料(ウェル)あたりAccell培地(Dharmacon)中0.2~2μMまで、sd-rxRNAを個別に希釈することにより調製し、事前に播種した96ウェルプレートの100μl/ウェルに分割した。TET2を標的とするsd-rxRNA配列の例を、表12に提供する。インキュベーションの72時間後、トランスフェクトされた細胞を溶解し、遺伝子特異的プローブ(Affymetrix)を用いて、製造業者のプロトコルに従ってQuantigene 分岐鎖DNAアッセイによりmRNAレベルを決定した。
図17に示す結果は、U2OS細胞へ送達されるTET2-標的化sd-rxRNA剤のサイレンシングを実証し、2μM sd-rxRNAにより遺伝子発現の60%超の阻害を得た。データを、ハウスキーピング遺伝子(PPIB)に対して正規化し、非標的化対照に関してグラフ化した。エラーバーは、生物学的三重の平均からの標準偏差を表す。
一次ヒトT細胞をAllCells(CA)から得て、10%ウシ胎仔血清(Gibco)および1000IU/ml IL2を含有するRPMI完全培地中で培養した。細胞を、トランスフェクションの前に、少なくとも4日間、製造業者の指示に従って、抗CD3/CD28 Dynabeads(Gibco, 11131)で活性化した。TBX21を標的とするsd-rxRNAを試料(ウェル)あたり血清フリーRPMI中0.2および1μMに、sd-rxRNAを個別に希釈することにより調製し、96ウェルプレートの100μl/ウェルに分割した。細胞を4%FBSおよびIL2 2000U/mlを含有するRPMI培地中で、1,000,000細胞/mlに調製し、事前に希釈したsd-rxRNAを含む96ウェルプレートに100μl/ウェルで播種した。TET2を標的とするsd-rxRNAの例を、表13に提供する。投与の72時間後、トランスフェクトされた細胞を溶解し、遺伝子特異的プローブ(Affymetrix)を用いて、製造業者のプロトコルに従ってQuantigene 分岐鎖DNAアッセイによりmRNAレベルを決定した。
図18に示す結果は、TBX21標的化sd-rxRNAが、PanT細胞において標的遺伝子mRNAレベルをin vitroで減少させることを実証する。データを、ハウスキーピング遺伝子(PPIB)に対して正規化し、非標的化対照に関してグラフ化した。エラーバーは、生物学的三重の平均からの標準偏差を表す。
末梢血leukopakをStemCell Technologiesから得た。一次NK細胞を、ネガティブセレクションキット(Miltenyi)を用いて単離し、細胞を、10%FBS(Gibco)および100IU/ml IL-2を含有するRPMI中で培養した。
細胞を、トランスフェクションのために回収し、細胞濃度を、5%FBS(Gibco)および100IU/ml IL-2を含有するRPMI中約1x106細胞/mLに調整した。細胞を、0.5μM~2μMの最終濃度の範囲でsd-rxRNAを含有する24ウェルプレートに直接播種した。TIGITを標的とするsd-rxRNA配列の例を、表5に提供する。72時間のインキュベーション後、トランスフェクトされた細胞を回収し、製造業者のプロトコルに従って、RNEasy RNA単離キット(Qiagen)を用いてRNAを単離した。Taqman遺伝子発現アッセイを、以下の組み合わせで用いた:ヒトTIGIT-FAM(Taqman, Hs00545087_m1)/ヒトTBP-FAM(Taqman, Hs00427620_m1)。各反応ミックスの15μl/ウェルの容量を、これまでに単離されたRNAからウェル当たり5μlRNAと組み合わせた。試料を、RNA to Ct 1-stepプロトコル(ThermoFisher)に従って増幅した。
図19に示す結果は、ヒト一次NK細胞へ送達されるTIGIT標的化sd-rxRNA剤27459のサイレンシングを実証し、2μM sd-rxRNAにより遺伝子発現の80%超の阻害を得た。
一次ヒトT細胞をAllCells(CA)から得て、10%ウシ胎仔血清(Gibco)および1000IU/ml IL2を含有するRPMI完全培地中で培養した。細胞を、トランスフェクションの前に、少なくとも4日間、製造業者の指示に従って、抗CD3/CD28 Dynabeads(Gibco, 11131)で活性化させた。AKT1を標的とするsd-rxRNAを試料(ウェル)あたり血清フリーRPMI中0.06~2μMまで、sd-rxRNAを個別に希釈することにより調製し、96ウェルプレートの100μl/ウェルに分割した。細胞を4%FBSおよびIL2 2000U/mlを含有するRPMI培地中で、1,000,000細胞/mlに調製し、事前に希釈したsd-rxRNAを含む96ウェルプレートに100μl/ウェルで播種した。AKT1を標的とするsd-rxRNAの例を、表11に提供する。72時間後、トランスフェクトされた細胞を、300xgで10分間、スピンダウンした。培地を取り除き、細胞を40μLのリン酸緩衝生理食塩水(Gibco)で再懸濁した。次いで、細胞をInvitrogen mRNAキャッチャープレートに移し、製造業者の指示に従ってRNAを単離した。Taqman遺伝子発現アッセイを以下の組み合わせにおいて用いた:ヒトAKT1-FAM(Taqman, Hs0178289_m1)/ヒトPPIB-FAM(Taqman, Hs00168719_m1)。各反応ミックスの45μl/ウェルの容量を、これまでに単離されたRNAからウェル当たり15μlRNAと組み合わせた。試料を、製造者の指示に従って増幅した。
図20に示す結果は、T細胞へ送達されるAKT1標的化sd-rxRNA剤28115のサイレンシングを実証し、2μM sd-rxRNAにより遺伝子発現の40%超の阻害を得た。
表1は、sd-rxRNAを用いて首尾よくサイレンシングされる遺伝子の例を示す。
表2は、sd-rxRNAを用いたサイレンシングのための候補遺伝子の例を示す。
表3は、PD1標的配列の例を示す。
表4は、Cb1-b標的配列の例を示す。
表5は、TIGIT標的配列およびsd-rxRNAの例を示す。
表6は、PD1 sd-rxRNAの例を示す。
表7は、HK2標的配列およびsd-rxRNAの例を示す。
表8は、Cb1-b sd-rxRNAの例を示す。
表9は、DNMT3A標的配列およびsd-rxRNAの例を示す。
表10は、PRDM1標的配列およびsd-rxRNAの例を示す。
表11は、PTPN6標的配列およびsd-rxRNAの例を示す。
表12は、TET2標的配列およびsd-rxRNAの例を示す。
表13は、Tbox21標的配列およびsd-rxRNAの例を示す。
Claims (44)
- TIGIT、PDCD1、AKT、p53、Cbl-b、Tet2、Blimp-1、T-Box21、DNMT3A、PTPN6、またはHK2をコードする遺伝子に対して向けられている化学修飾された二本鎖核酸分子であって、ここで任意に、化学修飾された二本鎖核酸分子は、表3~13内の配列から選択される配列の少なくとも12個の連続したヌクレオチドを含む配列に対して向けられている、前記化学修飾された二本鎖核酸分子。
- sd-rxRNAである、請求項1に記載の化学修飾された二本鎖核酸分子。
- 少なくとも1つの2’-O-メチル修飾および/または少なくとも1つの2’-フルオロ修飾、および少なくとも1つのホスホロチオアート修飾を含む、請求項1または2に記載の化学修飾された二本鎖核酸分子。
- TIGIT、PDCD1、AKT、P53、Cbl-b、Tet2、Blimp-1、T-Box21、DNMT3A、PTPN6、またはHK2をコードする遺伝子に対して向けられているsd-rxRNAであって、ここでsd-rxRNAは、表3~13内の配列から選択される配列の少なくとも12個の連続したヌクレオチドを含む、前記sd-rxRNA。
- 疎水的に修飾されている、請求項4に記載のsd-rxRNA。
- 1以上の疎水性抱合体に連結しており、ここで任意に、疎水性抱合体が、コレステロールである、請求項4または5に記載のsd-rxRNA。
- 請求項1~3のいずれか一項に記載の化学修飾された二本鎖核酸分子および薬学的に許容し得る賦形剤を含む、組成物。
- 化学修飾された二本鎖核酸分子が、表3、4、5、6、または8から選択される配列の少なくとも12個の連続したヌクレオチドを含むか、またはそれからなり、ここで任意に、化学修飾された二本鎖核酸分子は、TIGIT 1(配列番号60)、TIGIT 6(配列番号65)、TIGIT 21(配列番号100および101)、PD 26(配列番号112および113)、CB 23(配列番号236および237)、またはCB 29(配列番号248および249)に記載の配列を含む、請求項7に記載の組成物。
- 請求項4~6のいずれか一項に記載のsd-rxRNAおよび薬学的に許容し得る賦形剤を含む、組成物。
- sd-rxRNAが、CB 23(配列番号236または237)またはCB 29(配列番号248または249)に記載の配列を含むか、またはそれからなる、請求項9に記載の組成物。
- 化学修飾された二本鎖核酸分子が、PD 26センス鎖(配列番号112)に記載の配列を有するセンス鎖および/またはPD 26アンチセンス鎖(配列番号113)に記載の配列を有するアンチセンス鎖を含む、請求項9に記載の組成物。
- 化学修飾された二本鎖核酸分子またはsd-rxRNAが、PD 26センス鎖(配列番号112)に記載の配列を有するセンス鎖およびPD 26アンチセンス鎖(配列番号113)に記載の配列を有するアンチセンス鎖を含むか、またはそれらからなる、請求項11に記載の組成物。
- 化学修飾された二本鎖核酸分子またはsd-rxRNAが、CB 23センス鎖(配列番号236)に記載の配列を有するセンス鎖および/またはCB 23アンチセンス鎖(配列番号237)に記載の配列を有するアンチセンス鎖を含む、請求項7~9のいずれか一項に記載の組成物。
- 化学修飾された二本鎖核酸分子またはsd-rxRNAが、CB 23センス鎖(配列番号236)に記載の配列を有するセンス鎖およびCB 23アンチセンス鎖(配列番号237)に記載の配列を有するアンチセンス鎖からなる、請求項13に記載の組成物。
- 化学修飾された二本鎖核酸分子またはsd-rxRNAが、CB 29センス鎖(配列番号248)に記載の配列を有するセンス鎖および/またはCB 29アンチセンス鎖(配列番号249)に記載の配列を有するアンチセンス鎖を含む、請求項7~9のいずれか一項に記載の組成物。
- 化学修飾された二本鎖核酸分子またはsd-rxRNAが、CB 29センス鎖(配列番号248)に記載の配列を有するセンス鎖およびCB 29アンチセンス鎖(配列番号249)に記載の配列を有するアンチセンス鎖からなる、請求項15に記載の組成物。
- 化学修飾された二本鎖核酸分子が、TIGIT 21センス鎖(配列番号100)に記載の配列を有するセンス鎖および/またはTIGIT 21アンチセンス鎖(配列番号101)に記載の配列を有するアンチセンス鎖を含む、請求項7~9のいずれか一項に記載の組成物。
- 化学修飾された二本鎖核酸分子が、TIGIT 21センス鎖(配列番号100)に記載の配列を有するセンス鎖およびTIGIT 21アンチセンス鎖(配列番号101)に記載の配列を有するアンチセンス鎖を含む、請求項17に記載の組成物。
- 宿主細胞を含む免疫原性組成物であって、前記宿主細胞の分化のレベルをコントロールし、および/または減少させて、ヒトにおける投与のための特定の免疫細胞集団の産生を可能にするように、前記宿主細胞が化学修飾された二本鎖核酸分子でex vivo処置された、前記免疫原性組成物。
- 宿主細胞が、PDCD1、AKT、p53、Cbl-b、Tet2、Blimp-1、T-Box21、DNMT3A、PTPN6、またはHK2をコードする遺伝子に対して向けられている化学修飾された二本鎖核酸分子を含み、ここで任意に、化学修飾された二本鎖核酸分子は、表3~13内の配列から選択される配列の少なくとも12個の連続したヌクレオチドを含む配列に対して向けられており、さらにここで任意に、化学修飾された二本鎖核酸分子は、PDCD1に対して向けられていおり、かつ表3または6から選択される配列の少なくとも12個の連続したヌクレオチドを含む、請求項19に記載の免疫原性組成物。
- 化学修飾された二本鎖核酸分子が、少なくとも1つの2’-O-メチル修飾および/または少なくとも1つの2’-フルオロ修飾、および少なくとも1つのホスホロチオアート修飾を含む、請求項19または20に記載の免疫原性組成物。
- 化学修飾された二本鎖核酸分子が、疎水的に修飾されている、請求項21に記載の免疫原性組成物。
- 化学修飾された二本鎖核酸分子が、1以上の疎水性抱合体に連結しており、ここで任意に、疎水性抱合体が、コレステロールである、請求項22に記載の免疫原性組成物。
- 宿主細胞が、T細胞、NK細胞、抗原提示細胞(APC)、樹状細胞(DC)、幹細胞(SC)、誘導多能性幹細胞(iPSC),幹細胞メモリーT細胞、およびサイトカイン誘導性キラー細胞(CIK)の群から選択される、請求項19~23のいずれか一項に記載の免疫原性組成物。
- 宿主細胞が、T細胞である、請求項24に記載の免疫原性組成物。
- T細胞が、CD8+T細胞であり、ここで任意に、T細胞が、化学修飾された二本鎖核酸分子またはsd-rxRNAの導入後、TSCMまたはTCMに分化し、さらにここで任意に、免疫原性組成物が、TSCMまたはTCM細胞を少なくとも50%、少なくとも60%、少なくとも70%、少なくとも80%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも99%または100%含む、請求項24または25に記載の免疫原性組成物。
- T細胞が、高親和性T細胞受容体(TCR)および/またはキメラ抗原受容体(CAR)を発現する1以上の導入遺伝子を含む、請求項24~26のいずれか一項に記載の免疫原性組成物。
- 宿主細胞が、健康なドナーに由来する、請求項19~27のいずれか一項に記載の免疫原性組成物。
- 免疫原性組成物を生産するための方法であって、1以上の化学修飾された二本鎖核酸分子を細胞に導入することを含み、ここで1以上の化学修飾された二本鎖核酸分子は、PDCD1、AKT、p53、Cbl-b、Tet2、Blimp-1、T-Box21、DNMT3A、PTPN6、および/またはHK2を標的とし、それにより宿主細胞を生産する、前記方法。
- 免疫原性組成物を生産するための方法であって、請求項1~6のいずれか一項に記載の化学修飾された二本鎖核酸分子またはsd-rxRNAを細胞に導入することを含む、前記方法。
- 細胞が、T細胞、NK細胞、抗原提示細胞(APC)、樹状細胞(DC)、幹細胞(SC)、誘導多能性幹細胞(iPSC)、幹細胞メモリーT細胞、およびサイトカイン誘導性キラー細胞(CIK)である、請求項29または30に記載の方法。
- T細胞が、CD8+T細胞であり、ここで任意に、T細胞が、化学修飾された二本鎖核酸分子またはsd-rxRNAの導入後、TSCMまたはTCMに分化し、さらにここで任意に、免疫原性組成物が、TSCMまたはTCM細胞を少なくとも50%、少なくとも60%、少なくとも70%、少なくとも80%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも99%または100%含む、請求項30に記載の方法。
- T細胞が、高親和性T細胞受容体(TCR)および/またはキメラ抗原受容体(CAR)を発現する1以上の導入遺伝子を含む、請求項31または32に記載の方法。
- 細胞が、健康なドナーに由来する、請求項29~33のいずれか一項に記載の方法。
- 増殖性疾患または感染性疾患を患う対象を処置するための方法であって、請求項19~28のいずれか一項に記載の免疫原性組成物を対象へ投与すること含む、前記方法。
- 増殖性疾患が、がんである、請求項35に記載の方法。
- 感染性疾患が、病原体感染である、請求項35に記載の方法。
- 病原体感染が、細菌感染、ウイルス感染、または寄生生物感染である、請求項37に記載の方法。
- 表5内の配列から選択される配列の少なくとも12個の連続したヌクレオチドを含むTIGIT配列に対して向けられている化学修飾された二本鎖核酸分子を含む宿主細胞を含む、免疫原性組成物。
- 表3または6内の配列から選択される配列の少なくとも12個の連続したヌクレオチドを含むPDCD1配列に対して向けられている化学修飾された二本鎖核酸分子を含む宿主細胞を含む、免疫原性組成物。
- 化学修飾された二本鎖核酸分子が、sd-rxRNAである、請求項40または41に記載の免疫原性組成物。
- 宿主細胞が、PDCD1を標的とする第1の化学修飾された二本鎖核酸分子またはsd-rxRNAおよびTIGITを標的とする第2の化学修飾された二本鎖核酸分子またはsd-rxRNAを含む、請求項40~42のいずれか一項に記載の免疫原性組成物。
- 化学修飾された二本鎖核酸分子またはsd-rxRNAが、宿主細胞においてPDCD1またはTIGITの少なくとも50%の阻害を誘導する、請求項40~43のいずれか一項に記載の免疫原性組成物。
- 増殖性疾患または感染性疾患を患う対象を処置するための方法であって、請求項40~44のいずれか一項に記載の免疫原性組成物を対象へ投与することを含む、前記方法。
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