JP2023524963A - 非定型抗精神病薬による副作用の治療 - Google Patents

非定型抗精神病薬による副作用の治療 Download PDF

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Abstract

【要約】リガンド結合金クラスターおよび前記リガンド結合金クラスターを含む組成物は、非定型抗精神病薬による副作用を治療するため、および非定型抗精神病薬による副作用の治療のための医薬を製造するために使用される。非定型抗精神病薬による副作用を治療する方法を提供する。

Description

本発明は、抗精神病薬の技術分野に関し、特にリガンド結合金クラスター（ＡｕＣｓ）、リガンド結合ＡｕＣｓを含む組成物、およびリガンド結合ＡｕＣｓおよび組成物を採用して非定型抗精神病薬による副作用を予防、抑制、軽減および／または逆転する方法に関する。
非定型抗精神病薬は、統合失調症、双極性障害、うつ病、および自閉症を含む様々な精神状態を治療するために現在使用されている第２世代の抗精神病薬である。抗精神病薬は、それらの高治療効果および低い錐体外路症状のリスクが文献に記載されているが、一般的には、過剰な体重増加、脂質代謝障害、およびグルコース代謝障害を特徴とする肥満を含む様々な副作用につながることがある。例えば、オランザピンまたはクロザピンを摂取した対象は、体重増加を経験する危険性が最も高い。体重増加の急速な進行は、非定型抗精神病誘発の代謝症候群の背後にある独特の病因を示唆している。
残念ながら、第２世代の非定型抗精神病による体重増加や代謝異常などの様々な副作用のメカニズムは、これまで広範な研究が行われてきたが、ほとんど知られていない。
オランザピンは、ドーパミンＤ２、セロトニン５－ＨＴ２Ａおよび５－ＨＴ２Ｃ、ヒスタミンＨ１受容体、ならびにムスカリンＭ１とＭ３受容体を含む複数の神経伝達受容体との高い結合親和性を有する。オランザピン誘発体重増加を打ち消すために、多くの薬理学的補助的治療が試みられてきた。例えば、オランザピンとベタヒスチン（Ｈ１ＲアゴニストおよびＨ３Ｒアンタゴニスト）の共治療は、オランザピンによって誘導される体重増加を有意に減少させる（Lian et al. Preventing Olanzapine-induced weight gain using betahistine: a study in a rat model with chronic olanzapine treatment. PLoS One. 2014, 9（8）: e104160）。別の例として、オランザピン誘発体重増加の治療のためのムスカリン性アセチルコリン受容体Ｍ１サブタイプアンタゴニストであるテレンゼピン（ＷＯ２０１１/０１１２３８Ａ１）、クロザピン、オランザピン、クエチアピンおよびリスペリドン（ＷＯ ２００９/０５９４１８Ａ １）を含む非定型抗精神病薬を受ける対象における体重増加および関連するメタボリックシンドロームの予防または軽減のためのドーパミンアゴニストであるプラミペキソール、ならびにニザチジン、ファモチジン、シミチジン、レニチジンからなる群より選ばれるヒスタミンＨ２受容体アンタゴニストが含まれる。しかしながら、これらのアゴニストまたはアンタゴニストによる結果は、不確定的または矛盾している。
オランザピンおよびクロザピンのような第２世代抗精神病薬による副作用を打ち消すためのより良い策が必要とされている。
本発明は、対象において非定型抗精神病薬による副作用を治療するためのリガンド結合金クラスターの使用、リガンド結合金クラスターで対象において非定型抗精神病薬による副作用を治療する方法、および対象において非定型抗精神病薬による副作用を治療するための医薬の製造におけるリガンド結合金クラスターの使用を提供する。
本発明の特定の実施形態は、対象において非定型抗精神病薬による副作用を治療するためのリガンド結合金クラスターであって、前記リガンド結合金クラスターは、金コアと、前記金コアに結合したリガンドを含む、使用に関する。特定の実施形態では、前記非定型抗精神病薬は、オランザピン、クロザピン、リスペリドン、およびクエチアピンからなる群より選ばれる一つである。
前記治療使用の特定の実施形態では、前記金コアの直径は、０．５～３ｎｍにある。特定の実施形態では、前記金コアの直径は、０．５～２．６ｎｍにある。
前記治療使用の特定の実施形態では、前記リガンドは、Ｌ－システインとその誘導体、Ｄ－システインとその誘導体、システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体、およびその他のチオール含有化合物からなる群より選ばれる一つである。
前記治療使用の特定の実施形態では、前記Ｌ－システインとその誘導体は、Ｌ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＩＢＣ）、およびＮ－アセチル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＡＣ）からなる群より選ばれ、そして前記Ｄ－システインとその誘導体は、Ｄ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＩＢＣ）、およびＮ－アセチル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＡＣ）からなる群より選ばれる。
前記治療使用の特定の実施形態では、前記システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体は、システイン含有ジペプチド、システイン含有トリペプチドまたはシステイン含有テトラペプチドである。
前記治療使用の特定の実施形態では、前記システイン含有ジペプチドは、Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンジペプチド（ＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－アルギニン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＲＣ）、Ｌ（Ｄ）－ヒスチジン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＨＣ）、およびＬ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－ヒスチジンジペプチド（ＣＨ）かなる群より選ばれる。
前記治療使用の特定の実施形態では、前記システイン含有トリペプチドは、グリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＧＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－プロリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＰＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－リシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－プロリントリペプチド（ＫＣＰ）、およびＬ（Ｄ）－グルタチオン（ＧＳＨ）からなる群より選ばれる。
前記治療使用の特定の実施形態では、前記システイン含有テトラペプチドは、グリシン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＳＣＲ）、およびグリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＣＳＲ）からなる群より選ばれる。
前記治療使用の特定の実施形態では、前記その他のチオール含有化合物は、１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ（Ｄ）－プロリン、チオグリコール酸、メルカプトエタノール、チオフェノール、Ｄ－ペニシラミン、Ｎ－（２－メルカプトプロピオニル）－グリシン、ドデシルメルカプタン、２－アミノエタンチオール（ＣＳＨ）、３－メルカプトプロピオン酸（ＭＰＡ）、および４－メルカプト安息香酸（ｐ－ＭＢＡ）からなる群より選ばれる。
本発明の特定の実施形態は、対象において非定型抗精神病薬による副作用を治療するための医薬の製造におけるリガンド結合金クラスターの使用であって、前記リガンド結合金クラスターは、金コアと、前記金コアに結合したリガンドとを含む、使用に関する。特定の実施形態では、前記非定型抗精神病薬は、オランザピン、クロザピン、リスペリドン、およびクエチアピンからなる群より選ばれる一つである。
前記製造使用の特定の実施形態では、前記金コアの直径は、０．５～３ｎｍにある。特定の実施形態では、前記金コアの直径が、０．５～２．６ｎｍにある。
前記製造使用の特定の実施形態では、前記リガンドは、Ｌ－システインとその誘導体、Ｄ－システインとその誘導体、システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体、およびその他のチオール含有化合物からなる群より選ばれる一つである。
前記製造使用の特定の実施形態では、前記Ｌ－システインとその誘導体は、Ｌ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＩＢＣ）、およびＮ－アセチル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＡＣ）からなる群より選ばれ、そして前記Ｄ－システインとその誘導体は、Ｄ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＩＢＣ）、およびＮ－アセチル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＡＣ）からなる群より選ばれる。
前記製造使用の特定の実施形態では、前記システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体は、システイン含有ジペプチド、システイン含有トリペプチドまたはシステイン含有テトラペプチドである。
前記製造使用の特定の実施形態では、前記システイン含有ジペプチドは、Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンジペプチド（ＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－アルギニン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＲＣ）、Ｌ（Ｄ）－ヒスチジン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＨＣ）、およびＬ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－ヒスチジンジペプチド（ＣＨ）からなる群より選ばれる。
前記製造使用の特定の実施形態では、前記システイン含有トリペプチドは、グリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＧＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－プロリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＰＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－リシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－プロリントリペプチド（ＫＣＰ）、およびＬ（Ｄ）－グルタチオン（ＧＳＨ）からなる群より選ばれる。
前記製造使用の特定の実施形態では、前記システイン含有テトラペプチドは、グリシン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＳＣＲ）、およびグリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＣＳＲ）からなる群より選ばれる。
前記製造使用の特定の実施形態では、前記その他のチオール含有化合物は、１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ（Ｄ）－プロリン、チオグリコール酸、メルカプトエタノール、チオフェノール、Ｄ－ペニシラミン、Ｎ－（２－メルカプトプロピオニル）－グリシン、ドデシルメルカプタン、２－アミノエタンチオール（ＣＳＨ）、３－メルカプトプロピオン酸（ＭＰＡ）、および４－メルカプト安息香酸（ｐ－ＭＢＡ）からなる群より選ばれる。
本発明の目的および利点は、添付の図面と関連してその好ましい実施形態の以下の詳細な説明から明らかになる。
以下、本発明に係る好適な実施形態について、図面を参照しながら説明する。
様々な粒子サイズのリガンドＬ－ＮＩＢＣで修飾された金ナノ粒子（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓ）の紫外線可視（ＵＶ）スペクトル、透過型電子顕微鏡（ＴＥＭ）画像および粒子サイズ分布図を示す。
様々な粒子サイズのリガンドＬ－ＮＩＢＣ結合金クラスター（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ）の紫外線可視（ＵＶ）スペクトル、ＴＥＭ画像および粒子サイズ分布図を示す。
様々な粒子サイズのＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓの赤外線スペクトルを示す。
リガンドＣＲ結合金クラスター（ＣＲ－ＡｕＣｓ）のＵＶスペクトル、赤外線、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
リガンドＲＣ結合金クラスター（ＲＣ－ＡｕＣｓ）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
リガンド１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ－プロリン（即ち、Ｃａｐ）結合金クラスター（Ｃａｐ－ＡｕＣｓ）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
リガンドＧＳＨ結合金クラスター（ＧＳＨ－ＡｕＣｓ）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
リガンドＤ－ＮＩＢＣ結合金クラスター（Ｄ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
リガンドＬ－システイン結合金クラスター（Ｌ－Ｃｙｓ－ＡｕＣ）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
リガンド２－アミノエタンチオール結合金クラスター（ＣＳＨ－ＡｕＣs）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
リガンド３－メルカプトプロピオン酸結合金クラスター（ＭＰＡ－ＡｕＣs）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
リガンド４－メルカプト安息香酸結合金クラスター（ｐ－ＭＢＡ－ＡｕＣs）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
それぞれの群のラットにおける（Ａ）血糖代謝曲線および（Ｂ）血糖曲線下の面積（ＡＵＧ）を示す。ＣＯＮ：陰性対照群；ＯＬＺ：オランザピンモデル対照群；ＯＬＺ＋Ａ１Ｈ：ＯＬＺ＋Ａ１高用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ１Ｌ：ＯＬＺ＋Ａ１低用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ２Ｈ：ＯＬＺ＋Ａ２高用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ２Ｌ ：ＯＬＺ＋Ａ２低用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ３Ｈ：ＯＬＺ＋Ａ３高用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ３Ｌ ：ＯＬＺ＋Ａ３低用量投与群；ＯＬＺ＋Ｂ：ＯＬＡ＋Ｂ高用量投与群；*：Ｐ＜０．０５；**：Ｐ＜０．０１。
本発明は、以下の本発明の特定の実施形態に対する詳細な説明を参照することによって、より容易に理解することができる。
本出願全体において、刊行物が参照される。これらの刊行物の開示は、本発明が適用する技術の現状をより十分に説明するために、参照によりその全体が本出願に組み込まれる。
本明細書で使用されるように、「投与」とは、経口（「ｐｏ」）投与、坐剤としての投与、局所的接触、静脈内（「ｉｖ」）、腹腔内（「ｉｐ」）、筋肉内（「ｉｍ」）、内腔、鼻腔内または皮下（「ｓｃ」）投与、または対象への徐放デバイス（例えば、ミニ浸透圧ポンプまたは浸食性インプラント）の移植を投与することを意味する。投与は、非経口および経粘膜（例えば、経口、鼻、膣、直腸、または経皮）を含む任意の経路によるものである。非経口投与は、例えば、静脈内、筋肉内、動脈内、皮内、皮下、腹腔内、心室内、および頭蓋内を含む。送達の他の態様は、リポソーム製剤、静脈内注入、経皮パッチなどの使用を含むが、これらに限定されない。
用語「全身投与」および「全身的に投与される」とは、化合物または組成物が、循環器システムを介して、医薬作用の標的部位を含む身体内の部位に送達されるように、前記化合物または組成物を哺乳動物に投与する方法を指す。全身投与は、経口、鼻腔内、直腸および非経口（すなわち、筋肉内、静脈内、動脈内、経皮および皮下などの消化管以外の投与）を含むが、これらに限定されず、ただし、全身投与は、髄腔内注射および頭蓋内投与などの循環器系以外の手段による脳領域への直接投与を含まない。
本明細書で使用されるように、用語「治療する」および「治療」は、用語が適用される疾患または状態の発症を遅延させること、その過程を遅延させるまたは反転させること、またはそのような疾患または状態の１つまたは複数の症状を軽減または予防することを指す。例示的な指標は、本明細書における体重増加率である。患者に応じて、治療は、抗精神病薬を同じまたは類似の時間に亘って受けながら治療することない、同じまたは異なる患者に経験された体重増加または患者の集団の平均体重増加と比較して、５％、１０％、１５％、２０％、２５％またはそれ以上、例えば、体重増加を減少させることができる。いくつかの患者では、前記治療は、抗精神病誘発体重増加の逆転、すなわち体重減少をもたらすことができる。例えば、治療を受けるいくつかの患者は、例えば、５％、１０％、１５％、２０％、２５％、５０％、７５％、または１００％の抗精神病性体重増加を失うことができ、例えば、治療を受けないままの抗精神病薬を投与する前に維持された重量に戻ることができる。
用語「患者」、「対象」または「個体」とは、哺乳動物、例えば、ヒトまたは非ヒト哺乳動物を意味し、霊長類（例えば、マカク、パン・トログロダイト、ポンゴ）、家畜化された哺乳類（例えば、ネコ科、イヌ科）、農業哺乳類（例えば、ウシ科、ヒツジ科、ブタ科、ウマ科）、および実験室哺乳動物またはげっ歯類（例えば、ラット、マウス、ウサギ、ハムスター、モルモット）を含む。
用語「非定型抗精神病薬による副作用」とは、肥満の体重増加、脂質代謝障害、および糖代謝障害を特徴とする肥満を含む既知の副作用のいずれかを指す。用語「抗精神病薬誘発体重増加」とは、患者が非定型抗精神病薬の治療薬を受け取ることによって経験される体重増加の副作用を指す。非定型抗精神病薬は、オランザピン、クロザピン、リスペリドン、およびクエチアピンを含む。
オランザピンおよびクロザピンは、いずれも非選択的アセチルコリンムスカリン受容体（Ａｃｈ－Ｍ）アンタゴニストとして特徴付けられる
オランザピンの化学的名称は、２－メチル－４－（４－メチル－１－ピペラジニル）－１０Ｈ－チエノ［２，３－ｂ］［１，５］ベンゾジアゼピンである。分子式は、Ｃ１７Ｈ２０Ｎ４Ｓであり、３１２．４４の分子量に相当する。オランザピンは、チエノベンゾジアゼピンとして分類される。化学構造は、以下の通りである。
Figure 2023524963000002
クロザピンの化学的名称は、８－クロロ－１１－（４－メチル－１－ピペラジニル）－５Ｈ－ジベンゾ（ｂ，ｅ）（１，４）アゼピンである。分子式は、Ｃ１８Ｈ１９ＣｌＮ４、３２６．８の分子量に相当する。化学構造は、以下の通りである。
Figure 2023524963000003
金クラスター（ＡｕＣｓ）は、金原子と金ナノ粒子の間に存在する特殊な形態の金である。ＡｕＣｓは、サイズが３ｎｍ未満であり、数個から数百個の金原子で構成されているため、金ナノ粒子の面心立方積層構造が崩壊する。その結果、ＡｕＣｓは、金ナノ粒子の連続又は準連続エネルギーレベルとは異なり、違うＨＯＭＯ－ＬＵＭＯギャップを持つ分子のような離散化した電子構造を示す。これにより、表面プラズモン共鳴効果と、従来の金ナノ粒子が持つｕｖ－ｖｉｓスペクトルでの対応するプラズモン共鳴吸収帯（５２０±２０ｎｍ）が消失する。
本発明は、リガンド結合ＡｕＣを提供する。
特定の実施形態では、前記リガンド結合ＡｕＣは、リガンドと、金コアとを含み、前記リガンドが前記金コアに結合している。リガンドを金コアに結合させることは、リガンドが共有結合、水素結合、静電気力、疎水性力（hydrophobic force）、ファンデルワールス力等を介して金コアと溶液中で安定している複合体を形成することを意味する。特定の実施形態では、前記金コアの直径が、０．５～３ｎｍの範囲にある。特定の実施形態では、前記金コアの直径が０．５～２．６ｎｍの範囲にある。
特定の実施形態では、前記リガンド結合ＡｕＣの前記リガンドが、チオール含有化合物またはオリゴペプチドである。特定の実施形態では、前記リガンドが、Ａｕ－Ｓ結合を介して金コアに結合してリガンド結合ＡｕＣを形成する。
特定の実施形態では、前記リガンドが、Ｌ－システイン、Ｄ－システイン、またはシステイン誘導体であるが、これらに限定されない。特定の実施形態では、前記システイン誘導体が、Ｎ－イソブチリル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＩＢＣ）、Ｎ－イソブチリル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＩＢＣ）、Ｎ－アセチル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＡＣ）、またはＮ－アセチル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＡＣ）である。
特定の実施形態では、前記リガンドが、システイン含有オリゴペプチドとその誘導体であるが、これらに限定されない。特定の実施形態では、前記システイン含有オリゴペプチドが、システイン含有ジペプチドである。特定の実施形態では、前記システイン含有ジペプチドが、Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンジペプチド（ＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－アルギニン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＲＣ）、またはＬ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－ヒスチジンジペプチド（ＣＨ）である。特定の実施形態では、前記システイン含有オリゴペプチドが、システイン含有トリペプチドである。特定の実施形態では、前記システイン含有トリペプチドが、グリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＧＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－プロリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＰＣＲ）、またはＬ－グルタチオン（ＧＳＨ）である。特定の実施形態では、前記システイン含有オリゴペプチドが、システイン含有テトラペプチドである。特定の実施形態では、前記システイン含有テトラペプチドが、グリシン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＳＣＲ）またはグリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＣＳＲ）である。
特定の実施形態では、前記リガンドは、チオール含有化合物である。特定の実施形態では、チオール含有化合物は、１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ（Ｄ）－プロリン、チオグリコール酸、メルカプトエタノール、チオフェノール、Ｄ－ペニシラミン、ドデシルメルカプタン、２－アミノエタンチオール（ＣＳＨ）、３－メルカプトプロピオン酸（ＭＰＡ）、または４－メルカプト安息香酸（ｐ－ＭＢＡ）である。
本発明は、オランザピン、クロザピン、リスペリドン、およびクエチアピンを含む非定型抗精神病薬による副作用を患う対象の治療のための医薬組成物を提供する。特定の実施形態では、前記対象が、人である。特定の実施形態では、前記対象が、犬のようなペット動物である。
特定の実施形態では、前記医薬組成物が、上文で開示されたリガンド結合ＡｕＣと、薬理学的に許容される賦形剤とを含む。特定の実施形態では、前記賦形剤が、リン酸緩衝液、または生理食塩水である。
本発明は、オランザピン、クロザピン、リスペリドン、およびクエチアピンを含む非定型抗精神病薬による副作用を患う対象の治療のための医薬の製造における上文で開示されたリガンド結合ＡｕＣｓの使用を提供する。
本発明は、オランザピン、クロザピン、リスペリドン、およびクエチアピンを含む非定型抗精神病薬による副作用を患う対象の治療のための上文で開示されたリガンド結合ＡｕＣｓの使用、または上文で開示されたリガンド結合ＡｕＣｓを使用してオランザピン、クロザピン、リスペリドン、およびクエチアピンを含む非定型抗精神病薬による副作用を患う対象を治療する方法を提供する。特定の実施形態では、前記治療方法は、前記対象に薬学的に有効量のリガンド結合ＡｕＣｓを投与することを含む。前記薬学的に有効な量は、通常の体内研究によって確認することができる。
特定の実施形態では、前記非定型抗精神病薬と、前記リガンド結合ＡｕＣｓとは、共投与されることができる。特定の実施形態では、前記非定型抗精神病薬と、前記リガンド結合ＡｕＣとは、同じ又は異なる経路により分別に投与されることができる。
以下の実施例は、本発明の原理を説明することのみを目的として提供されている。それらは、決して本発明の範囲を制限することを意図するものではない。
実施例
１． リガンド結合ＡｕＣｓの製造
１．１ ＨＡｕＣｌ４をメタノール、水、エタノール、ｎ－プロパノール、又は酢酸エチルに溶解して、ＨＡｕＣｌ４濃度０．０１～０．０３Ｍの溶液Ａが得られた。
１．２ リガンドを溶媒に溶解して、リガンド濃度０．０１～０．１８Ｍの溶液Ｂが得られた。前記リガンドは、Ｌ－システイン、Ｄ－システイン、及び、Ｎ－イソブチリル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＩＢＣ）、Ｎ－イソブチリル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＩＢＣ）、Ｎ－アセチル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＡＣ）、及びＮ－アセチル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＡＣ）等のその他のシステイン誘導体、システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体（Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンジペプチド（ＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－アルギニン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＲＣ）、Ｌ（Ｄ）－システイン Ｌ（Ｄ）－ヒスチジン（ＣＨ）、グリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＧＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－プロリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＰＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－グルタチオン（ＧＳＨ）、グリシン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＳＣＲ）及びグリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＣＳＲ）等の、ジペプチド、トリペプチド、テトラペプチド及びその他のシステイン含有ペプチドを含むが、これらに限定されない）、及び１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ（Ｄ）－プロリン、チオグリコール酸、メルカプトエタノール、チオフェノール、Ｄ－ペニシラミン、ドデシルメルカプタン、２－アミノエタンチオール（ＣＳＨ）、３－メルカプトプロピオン酸（ＭＰＡ）、および４－メルカプト安息香酸（ｐ－ＭＢＡ）の一つ又は複数等のその他のチオール含有化合物を含むが、これらに限定されない。前記溶媒は、メタノール、酢酸エチル、水、エタノール、ｎ－プロパノール、ペンタン、ギ酸、酢酸、ジエチルエーテル、アセトン、アニソール、１－プロパノール、２－プロパノール、１－ブタノール、２－ブタノール、ペンタノール、酢酸ブチル、ｔ－ブチルメチルエーテル、酢酸イソプロピル、ジメチルスルホキシド、ギ酸エチル、酢酸イソブチル、酢酸メチル、２－メチル－１－プロパノール及び酢酸プロピルの一つ又は複数であった。
１．３ ＨＡｕＣｌ４とリガンドとのモル比が１：（０．０１～１００）となるように、溶液Ａと溶液Ｂを混合して、氷浴において０．１～４８時間撹拌し、０．０２５～０．８Ｍ ＮａＢＨ４の水、エタノール又はメタノール溶液を加えて、氷水浴において引き続き撹拌し、そして０．１～１２時間反応させた。ＮａＢＨ４とリガンドとのモル比は、１：（０．０１～１００）であった。
１．４ 反応終了した後、ＭＷＣＯが３Ｋ～３０Ｋの限外ろ過チューブを使用して、８０００～１７５００ｒ／ｍｉｎの勾配で反応溶液を１０～１００分間遠心することにより、異なる平均粒子サイズを有するリガンド結合ＡｕＣｓ沈殿を得た。異なるＭＷＣＯの限外ろ過チューブのろ過メンブレンの開きは、直接的に、前記メンブレンを通過できるリガンド結合ＡｕＣｓのサイズを決定した。当該ステップは、任意に省略されてもよい。
１．５ ステップ（１．４）で得られた異なる平均粒子サイズを有するリガンド結合ＡｕＣｓ沈殿を水に溶解し、透析バッグに投入し、そして水において室温で１～７日間透析した。
１．６ 透析後、リガンド結合ＡｕＣｓを１２～２４時間凍結乾燥して、粉末状又は凝集状物質であるリガンド結合ＡｕＣｓを得た。
測定からわかるように、前記方法により得られた粉末状又は凝集状物質の粒子サイズは、３ｎｍ未満であった（全体的に、０．５～２．６ｎｍにわたって分布した）。５２０ｎｍで明らかな吸収ピークがなかった。得られた粉末又は凝集体がリガンド結合ＡｕＣsであったことが特定された。
２． 異なるリガンドが結合されたＡｕＣｓの製造及び同定
２．１ Ｌ－ＮＩＢＣ結合ＡｕＣｓ、即ち、Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓの製造
リガンドであるＬ－ＮＩＢＣを例とし、Ｌ－ＮＩＢＣが結合したＡｕＣｓの製造及び確認について以下で詳細に説明する。
２．１．１ １．００ｇのＨＡｕＣｌ４を量り、そして１００ｍＬのメタノールに溶解して、０．０３Ｍの溶液Ａを得た。
２．１．２ ０．５７ｇのＬ－ＮＩＢＣを量り、そして１００ｍＬの氷酢酸（酢酸）に溶解して、０．０３Ｍの溶液Ｂを得た。
２．１．３ １ｍＬの溶液Ａを量り、０．５ｍＬ、１ｍＬ、２ｍＬ、３ｍＬ、４ｍＬ、又は５ｍＬの溶液Ｂとそれぞれ混合し（すなわち、ＨＡｕＣｌ４とＬ－ＮＩＢＣとのモル比が、それぞれ、１：０．５、１：１、１：２、１：３、１：４、１：５であった。）、氷浴において撹拌しながら２時間反応させ、溶液が明るい黄色から無色になると、速やかに１ｍＬの新たに製造された０．０３Ｍ（１１．３ｍｇのＮａＢＨ４を量り、そして１０ｍＬのエタノールに溶解することにより製造された。）のＮａＢＨ４エタノール溶液を加えて、溶液が濃褐色になった後、引き続き３０分間反応し、そして１０ｍＬのアセトンを加えて反応を停止した。
２．１．４ 反応後、反応溶液に対して勾配遠心に供して、異なる粒子サイズを有するＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ粉末を得た。具体的な方法は以下のとおりである。即ち、反応完了後、反応溶液を３０ＫのＭＷＣＯ及び５０ｍＬの体積を有する限外ろ過チューブに転移し、そして１００００ｒ／ｍｉｎで２０分間を遠心し、そして内チューブ中の保持液（retentate）を超純水に溶解して、約２．６ｎｍの粒子サイズを有する粉末を得た。その後、外チューブ中の混合液を５０ｍＬの体積及び１０ＫのＭＷＣＯを有する限外ろ過チューブに転移し、そして１３，０００ｒ／ｍｉｎで３０分間を遠心した。内チューブ中の保持液を超純水に溶解して、約１．８ｎｍの粒子サイズを有する粉末を得た。その後、外チューブ中の混合液を５０ｍＬの体積及び３ＫのＭＷＣＯを有する限外ろ過チューブに転移し、そして１７，５００ｒ／ｍｉｎで４０分間を遠心した。内チューブ中の保持液を超純水に溶解して、約１．１ｎｍの粒子サイズを有する粉末を得た。
２．１．５ 勾配遠心により得られた３つの異なる粒子サイズでの粉末を沈殿させ、それぞれ溶媒を除去し、粗生成物をＮ２でブロー乾燥させ、５ｍＬの超純水に溶解し、透析バッグ（ＭＷＣＯが３ＫＤａ）に置き、透析バッグを２Ｌの超純水に置き、一日おきに水を交換し、７日間透析し、凍結乾燥し、そして将来の使用のために保持した。
２．２ Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓの同定
上記で得られた粉末（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣ）に対して同定実験は行われた。同時に、リガンドであるＬ－ＮＩＢＣにより修飾した金ナノ粒子（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰs）は、対照として使用された。前記リガンドがＬ－ＮＩＢＣである金ナノ粒子の製造方法は、参考文献（Ｗ．Ｙａｎ、Ｌ．Ｘｕ、Ｃ．Ｘｕ、Ｗ．Ｍａ、Ｈ．Ｋｕａｎｇ、Ｌ．Ｗａｎｇ及びＮ．Ａ．Ｋｏｔｏｖ、Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ ２０１２、１３４、１５１１４；Ｘ．Ｙｕａｎ、Ｂ．Ｚｈａｎｇ、Ｚ．Ｌｕｏ、Ｑ．Ｙａｏ、Ｄ．Ｔ．Ｌｅｏｎｇ、Ｎ．Ｙａｎ及びＪ．Ｘｉｅ、Ａｎｇｅｗａｎｄｔｅ Ｃｈｅｍｉｅ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｅｄｉｔｉｏｎ ２０１４、５３、４６２３）に参照する。
２．２．１ 透過型電子顕微鏡（ＴＥＭ）によるモーフォロジーの観察
試験粉末（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓサンプル及びＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰsサンプル）を超純水に２ｍｇ／Ｌになるまで溶解してサンプルとし、そして懸滴法により試験サンプルを製造した。より具体的に、５μＬのサンプルを超薄型カーボンフィルムに滴下し、水滴がなくなるまで自然蒸発させ、そしてＪＥＭ－２１００Ｆ ＳＴＥＭ／ＥＤＳ電界放出形高分解能ＴＥＭによりサンプルのモーフォロジーを観察した。
Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰs の４つのＴＥＭ画像は、図１のパネルＢ、Ｅ、Ｈ、及びＫに示され；Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣsの３つのＴＥＭ画像は、図２のパネルＢ、Ｅ、及びＨに示される。
図２中の画像で示されるように、各々のＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓサンプルは、均一な粒子サイズ及び良好な分散性を有し、かつ、Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓの平均直径（金コアの直径と指す）がそれぞれ１．１ｎｍ、１．８ｎｍ及び２．６ｎｍであり、図２のパネルＣ、Ｆ及びＩ中の結果とよく一致した。これに対して、Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓサンプルは、より大きい粒子サイズを有した。これらの平均直径（金コアの直径と指す）がそれぞれ３．６ｎｍ、６．０ｎｍ、１０．１ｎｍ及び１８．２ｎｍであり、図１のパネルＣ、Ｆ、Ｉ及びＬ中の結果とよく一致した。
２．２．２ 紫外線（ＵＶ）－可視光（ｖｉｓ）吸収スペクトル
試験粉末（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓサンプル及びＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓサンプル）を超純水に濃度が１０ｍｇ・Ｌ－１になるまで溶解し、室温でＵＶ－ｖｉｓ吸収スペクトルが測定された。走査範囲が１９０～１１００ｎｍであり、サンプルセルが光路長１ｃｍの標準石英キュベットであり、参照セルが超純水により充填された。
異なるサイズを有する４つのＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓサンプルのＵＶ－ｖｉｓ吸収スペクトルは、図１のパネルＡ、Ｄ、Ｇ及びＪに示され、及び粒子サイズの統計学的分布は、図１のパネルＣ、Ｆ、Ｉ及びＬに示され、異なるサイズを有する３つのＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓサンプルのＵＶ－ｖｉｓ吸収スペクトルは、図２のパネルＡ、Ｄ及びＧに示され、及び粒子サイズの統計学的分布は、図２のパネルＣ、Ｆ及びＩに示される。
図１で示されるように、表面プラズモン作用により、Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓは、約５２０ｎｍで吸収ピークを有した。吸収ピークの位置は、粒子サイズに関連した。粒子サイズが３．６ｎｍである場合、ＵＶ吸収ピークが５１６ｎｍで現れ、粒子サイズが６．０ｎｍである場合、ＵＶ吸収ピークが５１７ｎｍで現れ、粒子サイズが１０．１ｎｍである場合、ＵＶ吸収ピークが５２０ｎｍで現れ、及び粒子サイズが１８．２ｎｍである場合、吸収ピークが５２３ｎｍで現れた。４つのサンプルは、いずれも５６０ｎｍ以上で吸収ピークを有しなかった。
図２で示されるように、異なる粒子サイズを有するＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓサンプルのＵＶ吸収スペクトルでは、５２０ｎｍでの表面プラズモン作用による吸収ピークがなくなり、５６０ｎｍ以上で２つの明らかな吸収ピークが現れ、吸収ピークの位置がＡｕＣｓの粒子径により僅かな相違があった。これは、ＡｕＣｓが面心立方構造の崩壊により分子のような特性を示し、ＡｕＣｓの状態密度の不連続性、エネルギー準位の分裂、プラズモン共鳴効果の消失、及び長波方向の新しい吸収ピークに繋がったためである。上記で得られた異なる粒子サイズでの３つの粉末サンプルは、いずれもリガンド結合ＡｕＣｓであったと結論付けることができる。
２．２．３ フーリエ変換赤外線分光法
赤外線スペクトルは、Ｂｒｕｋｅｒ製のＶＥＲＴＥＸ８０Ｖフーリエ変換赤外線分光計で固体粉末高真空全反射モードで測定された。走査範囲は、４０００～４００ ｃｍ－１であり、走査数が６４であった。Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓサンプルを例とし、試験サンプルは、異なる３つの粒子サイズを有するＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ乾燥粉末であり、対照サンプルは、純粋なＬ－ＮＩＢＣ粉末であった。結果は、図３に示した。
図３は、異なる粒子サイズを有するＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓの赤外線スペクトルを示す。純粋なＬ－ＮＩＢＣ（下部の曲線）と比較すると、異なる粒子サイズを有するＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓのＳＨ伸縮振動は、全て、２５００～２６００ｃｍ－１で完全に消失したが、Ｌ－ＮＩＢＣの他の特徴的なピークは、依然として残っていて、Ｌ－ＮＩＢＣ分子がＡｕ－Ｓ結合を介してＡｕＣｓの表面に成功に固定されていたことが証明された。この図は、リガンド結合ＡｕＣｓの赤外スペクトルがそのサイズとは無関係であることも示した。
溶液Ｂの溶媒、ＨＡｕＣｌ４とリガンドとの仕込み比、反応時間及び添加されたＮａＢＨ４の量をわずかに調整した以外、上記方法と同様な方法で、その他のリガンドが結合したＡｕＣsを製造した。例えば、Ｌ－システイン、Ｄ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＩＢＣ）又はＮ－イソブチリル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＩＢＣ）がリガンドとして使用された場合、溶媒として酢酸が選択され、ジペプチドＣＲ、ジペプチドＲＣ又は１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ－プロリンがリガンドとして使用された場合、溶媒として水が選択されることなど、その他のステップについても同じようにするため、更なる詳細はここで省略する。
本発明は、前述の方法により、一連のリガンド結合ＡｕＣｓを製造した。リガンドと製造プロセスのパラメーターを表１に示す。
表１．本発明において異なるリガンドが結合したＡｕＣｓの製造パラメーター
Figure 2023524963000004
表１に挙げられたサンプルは、前記方法により確認された。９つの異なるリガンド結合ＡｕＣｓの特性を図４（ＣＲ－ＡｕＣｓ）、図５（ＲＣ－ＡｕＣｓ）、図６（Ｃａｐ－ＡｕＣｓ）（Ｃａｐは１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ－プロリンである）、図７（ＧＳＨ－ＡｕＣｓ）、図８（Ｄ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ）、図９（Ｌ－Ｃｙｓ－ＡｕＣｓ）、図１０（ＣＳＨ－ＡｕＣｓ）、図１１（ＭＰＡ－ＡｕＣｓ）、および図１２（ｐ－ＭＢＡ－ＡｕＣｓ）に示す。図４～図１２は、ＵＶスペクトル（パネルＡ）、赤外線スペクトル（パネルＢ）、ＴＥＭ画像（パネルＣ）、及び粒子サイズ分布（パネルＤ）を示す。
その結果、表１から得られた異なるリガンドが結合したＡｕＣｓの直径は、いずれも、３ｎｍ未満であることを示した。紫外線スペクトルは、５２０±２０ｎｍでのピークの消失、及び他の位置での吸収ピークの出現も示した。この吸収ピークの位置は、リガンド、粒子サイズ、及び構造によって異なった。特定の状況で、特殊な吸収ピークが形成されないが、主な原因は、粒子径や構造の異なるＡｕＣｓの混合物が形成されたこと、または、ある特殊なＡｕＣｓにより吸収ピークの位置が紫外線可視スペクトルの範囲外に移動されたことである。一方、フーリエ変換赤外スペクトルでは、リガンドのチオールの赤外線吸収ピーク（図４～８のパネルＢの点線の間）が消失したが、他の赤外特性ピークはいずれも保持されていることから、全てのリガンド分子がＡｕＣｓの表面に成功に固定されており、本発明は、表１に記載されたリガンドの結合したＡｕＣｓを取得することに成功したことを示した。
３． 動物試験
３．１ 試験サンプル
Ａ１：リガンドＬ－ＮＩＢＣ結合金クラスター（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ）、サイズ分布が０．５～３ｎｍにある。
Ａ２：リガンドＮ－アセチル－Ｌ－システイン結合金クラスター（Ｌ－ＮＡＣ－ＡｕＣｓ）、サイズ分布が ０．５～３ｎｍにある。
Ａ３：リガンドＬ－システイン結合金クラスター（Ｌ－Ｃｙｓ－ＡｕＣｓ）、サイズ分布が ０．５～３ｎｍにある。
Ａ４：リガンド２－アミノエタンチオール結合金クラスター（ＣＳＨ－ＡｕＣｓ）、サイズ分布が ０．５～３ｎｍにある。
Ａ５：リガンド３－メルカプトプロピオン酸結合金クラスター（ＭＰＡ－ＡｕＣｓ）、サイズ分布が ０．５～３ｎｍにある。
Ａ６：リガンド４－メルカプト安息香酸結合金クラスター（ｐ－ＭＢＡ－ＡｕＣｓ）、サイズ分布が０．５～３ｎｍにある。
Ｂ：Ｌ－ＮＩＢＣ結合金ナノ粒子（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓ）、サイズ分布が５～９ｎｍにある。
全ての試験サンプルは、上記の方法に従って調製されたがわずかな変更を加えた。それらの品質は上記の方法を使用して特徴づけられた。
３．２ オランザピン誘発副作用モデルの確立と、オランザピン誘発体重増加に対する異なるリガンド結合ＡｕＣｓの抑制効果と用量効果の検討
１４４匹のＳＰＦメスＳｐｒａｇｕｅ Ｄａｗｌｅｙラット（８～１０週齢）を、ＳｉＰｅｉｆｕ（Ｂｅｉｊｉｎｇ） Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｃｏ．，Ｌｔｄ．の実験動物センターから購入した。全てのラットは隔離環境で飼育し、温度は２２±２℃に制御し、昼夜の間隔は１２時間とし、７：００～１９：００を昼、１９：００～７：００を夜とした。適応給餌の１週間後、ラットを無作為に１２の群に分けた（ｎ＝１２／群、ラットの各群の平均体重と食物摂取量がほぼ同じであることを確認した。）：陰性対照群（ＣＯＮ、群１）、オランザピンモデル対照群（ＯＬＺ、群２）、オランザピン＋Ａ１高用量群（ＯＬＺ＋Ａ１Ｈ、群３）、オランザピン＋Ａ１低用量群（ＯＬＺ＋Ａ１Ｌ、群４）、オランザピン＋Ａ２高用量群（ＯＬＺ＋Ａ２Ｈ、群５）、オランザピン＋Ａ２低用量群（ＯＬＺ＋Ａ２Ｌ、群６）、オランザピン＋Ａ３高用量群（ＯＬＺ＋Ａ３Ｈ、群７），オランザピン＋Ａ３低用量群（ＯＬＺ＋Ａ３Ｌ、群８）、オランザピン＋Ａ４高用量群（ＯＬＺ＋Ａ４Ｈ、群９）、オランザピン＋Ａ５高用量群（ＯＬＺ＋Ａ５Ｈ、群１０）、オランザピン＋Ａ６高用量群（ＯＬＺ＋Ａ６Ｈ、群１１）、およびオランザピン＋Ｂ高用量群（ＯＬＺ＋Ｂ、群１２）。群２－１２のラットに経口でオランザピン（１ｍｇ/ｋｇ、ｔｉｄ（一日三回）、投与時点：７:００、１５:００、および２３:００）を投与し、陰性対照群（群１）に等量のプラセボを対照として投与し、ここで０．３ｇの餌（２４．３％カゼイン、３４．３％コーンスターチ、３４．３６％スクロース、および６．９８％ゼラチンと混合したもの）で作られたペレットでオランザピンをラットに経口投与した。プラセボは、同量のオランザピンを含まない食品ピルであった。オランザピン（またはプラセボ）投与の初日から、オランザピン＋薬物高用量群に薬物Ａ１、Ａ２、Ａ３、Ａ４、Ａ５、Ａ６またはＢ（２０ｍｇ/ｋｇ、１日１回）を腹腔内注射し、オランザピン＋薬物低用量群には、薬物Ａ１、Ａ２またはＡ３（１０ｍｇ／ｋｇ、１日１回）を腹腔内注射した。陰性対照群およびオランザピンモデル対照群には対照として同量の生理食塩水を腹腔内注射した。同じ投与方法を２１日間連続して行った。動物の摂食を２４時間ごとに測定し、動物の体重を４８時間ごとに測定して、オランザピン誘発体重増加に対するさまざまな用量のＡｕＣｓの抑制効果を観察した。
３．３ 耐糖能試験
投与２１日目に、すべてのラットを１６時間絶食させた。血液サンプルはラットの尾静脈から採取し、ラットの空腹時血糖値（０ｈ）を血糖測定器（Ｊｏｈｎｓｏｎ ＆ Ｊｏｈｎｓｏｎ Ｏｎｅ Ｔｏｕｃｈ Ｕｌｔｒａ、Ｊｏｈｎｓｏｎ ＆ Ｊｏｈｎｓｏｎ（Ｃｈｉｎａ） Ｍｅｄｉｃａｌ Ｅｑｕｉｐｍｅｎｔ Ｃｏ．， Ｌｔｄ）で、対応する用量のブドウ糖溶液を腹腔内に注射し（１ｇ／ｋｇ）、血糖値をブドウ糖溶液の投与後３０分、６０分、９０分、および１２０分で測定し、各マウスの曲線下の曲線（ＡＵＣ）を計算した。
３．４ ラットの安楽死と組織採取
最後の投与後、ラットを７％水和クロラールで麻酔した。心臓から血液サンプルを採取した後、肝臓、腸間膜、腎周囲、および卵巣周囲組織を採取し、重量を測定し、－８０℃で保存した。
３．５ データの統計と分析
ＳＰＳＳ ２２．０統計ソフトウェアを使用して、すべてのデータに対して統計分析を実行した。すべてのデータは平均±ＳＥＭとして表され、統計的差異はＰ＜０．０５として定義される。
３．６ 実験結果
３．６．１ 金クラスター薬物の投与により、オランザピンによるラットの体重増加と摂餌量が有意に減少された。
表２は、陰性対照群、オランザピンモデル対照群、３つのＡｕＣs（Ａ１、Ａ２、およびＡ３）の高用量および低用量群、ならびにＡｕＮＰ高用量群におけるラットの体重変化を示す。表２に示すように、ラットのすべての群の初期体重（ＩＢＷ）はほぼ同じであった（２４５．４８ｇ～２４７．８６ｇ）。薬物投与の２１日後、オランザピンモデル対照群の最終体重（ＦＢＷ）は、陰性対照群のそれよりも有意に高く（Ｐ＜０．０１）、モデルが正常に確立されたことを示す。オランザピンモデル対照群と比較して、高用量の金クラスター薬物群（ＯＬＺ＋Ａ１Ｈ、ＯＬＺ＋Ａ２Ｈ、およびＯＬＺ＋Ａ３Ｈ）は有意に低く（両方ともＰ＜０．０５）、低用量の金クラスター薬物群（ＯＬＺ＋Ａ１Ｌ、ＯＬＺ＋Ａ２Ｌ、およびＯＬＺ＋Ａ３Ｌ）の重量は明らかに低かった。同時に、陰性対照群と比較して、オランザピンモデル対照群の最終体重増加（ＢＷＧ、すなわち最終体重と初期体重の差）は非常に有意に増加した（Ｐ＜０．０１）。オランザピンモデル対照群と比較して、高用量の金クラスター薬物群（ＯＬＺ＋Ａ１Ｈ、ＯＬＺ＋Ａ２ＨおよびＯＬＺ＋Ａ３Ｈ）の最終体重増加（ＢＧＷ）は、非常に有意に減少した（両方ともＰ＜０．０１）。低用量の金クラスター薬物群（ＯＬＺ＋Ａ１Ｌ、ＯＬＺ＋Ａ２Ｌ、およびＯＬＺ＋Ａ３Ｌ）の最終体重増加（ＢＧＷ）も有意に減少した（両方ともＰ＜０．０５）。他の３つの高用量の金クラスター薬物群（ＯＬＺ＋Ａ４Ｈ、ＯＬＺ＋Ａ５Ｈ、およびＯＬＺ＋Ａ６Ｈ）も同様の結果を示した。ただし、オランザピンモデル対照群と比較して、高用量金ナノ粒子薬物群（ＯＬＺ＋Ｂ）の最終体重（ＦＢＷ）と最終体重増加（ＢＧＷ）は有意に減少しなかった（Ｐ＞０．０５）。
表２：オランザピンによるラットの体重増加に対するさまざまな薬物投与の影響
Figure 2023524963000005
表２では、ＩＢＷ：初期体重；ＦＢＷ：最終体重；ＢＷＧ：体重増加；ＣＯＮ：陰性対照群；ＯＬＺ：オランザピンモデル対照群；ＯＬＺ＋Ａ１Ｈ：ＯＬＺ＋Ａ１高用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ１Ｌ：ＯＬＺ＋Ａ１低用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ２Ｈ：ＯＬＺ＋Ａ２高用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ２Ｌ：ＯＬＺ＋Ａ２低用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ３Ｈ：ＯＬＺ＋Ａ３高用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ３Ｌ：ＯＬＺ＋Ａ３低用量投与群；ＯＬＺ＋Ｂ：ＯＬＺ＋Ｂ高用量投与群；*：Ｐ＜０．０５、ＯＬＺ対ＣＯＮ；**：Ｐ＜０．０１、ＯＬＺ対ＣＯＮ；＃：Ｐ＜０．０５、各投与群対ＯＬＺ；##：Ｐ＜０．０１、各投与群対ＯＬＺを意味する。
３．６．２ 金クラスター薬物の投与により、オランザピンによる腸間膜脂肪の増加が有意に減少した。
オランザピン誘発体重増加は、脂肪肝につながる可能性がある。表３は、陰性対照群、オランザピンモデル対照群、３つのＡｕＣs（Ａ１、Ａ２、およびＡ３）の高用量および低用量群、ならびにＡｕＮＰ高用量群におけるラットの肝臓重量および腸間膜脂肪の変化を示す。表３に示すように、陰性対照群と比較して、オランザピンモデル対照群では肝臓重量が増加したが、有意差はなかった（Ｐ＞０．０５）。オランザピンモデル対照群と比較して、３つの異なる用量群の金クラスター薬は肝臓の重量を減らすことができ、Ａ１の低用量群とＡ３の高用量群は有意差を示した（Ｐ＜０．０５）。末梢脂肪の中で、陰性対照群と比較して、オランザピンモデル対照群は腸脂肪の蓄積を有意に増加させた（Ｐ＜０．０５）。オランザピンモデル対照群と比較して、Ａ１、Ａ２、およびＡ３の高用量と低用量の両方で、オランザピンによって誘発される腸周囲脂肪の増加が用量依存的に減少した（最大の減量率は３２％と高かった）。他の３つの高用量の金クラスター薬物群（ＯＬＺ+Ａ４Ｈ、ＯＬＺ+Ａ５Ｈ、およびＯＬＺ+Ａ６Ｈ）も同様の結果を示した。まとめると、金クラスター薬物は、明らかにオランザピンによる脂肪の増加を減少させることができ、一定の用量依存性を示す。しかし、金ナノ粒子の高用量群は有意な変化を示さず、金ナノ粒子が無効であることを示す。
表３：ラット肝臓および腸周囲脂肪重量に対する薬物の効果
Figure 2023524963000006
表３では、ＣＯＮ：陰性対照群；ＯＬＺ：オランザピンモデル対照群；ＯＬＺ＋Ａ１Ｈ：ＯＬＺ＋Ａ１高用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ１Ｌ：ＯＬＺ＋Ａ１低用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ２Ｈ：ＯＬＺ＋Ａ２高用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ２Ｌ ：ＯＬＺ＋Ａ２低用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ３Ｈ：ＯＬＺ＋Ａ３高用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ３Ｌ ：ＯＬＺ＋Ａ３低用量投与群；ＯＬＺ＋Ｂ：ＯＬＺ＋Ｂ高用量投与群；*：Ｐ＜０．０５、ＯＬＺ対ＣＯＮ；＃：Ｐ＜０．０５、各投与群対ＯＬＺ；♯♯：Ｐ＜０．０１ 、各投与群対ＯＬＺを意味する。
３．６．３ 金クラスター薬物の投与により、オランザピンによる血糖上昇が有意に抑制された。
臨床的に、オランザピンの投与は血糖値の上昇および糖尿病を引き起こす可能性がある。図１３は、陰性対照群、オランザピンモデル対照群、３つのＡｕＣｓ（Ａ１、Ａ２、およびＡ３）の高用量および低用量群、ならびにＡｕＮＰ高用量群におけるラットの血糖代謝曲線および血糖曲線下の面積（ＡＵＧ）を示す。
この研究では、オランザピンモデルの対照群と様々な投与群が空腹時血糖に有意な影響を与えないことがわかった（Ｐ＞０．０５）。しかし、陰性対照群と比較して、ブドウ糖注射後、オランザピンモデル対照群ラットの血糖値は、腹腔内ブドウ糖注射後３０分（Ｐ＜０．０１）および１２０分（Ｐ＜０．０５）で有意に増加し、７．５４±０．２６ｍｍｏｌ／Ｌおよび６．１１±０．１２ｍｍｏｌ／Ｌから、それぞれ９．１６±０．４８ｍｍｏｌ／Ｌおよび６．７９±０．３２ｍｍｏｌ／Ｌに増加した（図１３Ａ）。血糖曲線下面積（ＡＵＧ）は、７６６．８３±１５．０５ｍｍｏｌ／ｍｉｎから８４５．０７±３７．８８ｍｍｏｌ／ｍｉｎに有意に増加した（Ｐ＜０．０５、図１３Ｂ）。上記の結果は、動物の糖代謝障害に対するオランザピン投与の有意な効果を示す。
オランザピンモデル対照群と比較して、３つの金クラスター薬物（Ａ１、Ａ２、およびＡ３）の群の血糖値は、特に高用量群で大幅に低下した。３つのラットの血糖値高用量群は、ブドウ糖注射後３０分（両方Ｐ＜０．０１）、６０分（両方Ｐ＜０．０１）、１２０分（両方Ｐ＜０．０１）で有意に減少し、血糖値は陰性対照群のそれに近かった（図１３Ａ）。Ａ１を例にとると、これら３つの時点での血糖値は、オランザピンモデル対照群の９．１６±０．４８ｍｍｏｌ／Ｌ、６．７９±０．３２ｍｍｏｌ／Ｌ、および６．３０±０．３３ｍｍｏｌ/Ｌから、それぞれ７．７±０．１５、ｍｍｏｌ／Ｌ、５．７４±０．１８ｍｍｏｌ／Ｌおよび５．５３±０．１４ｍｍｏｌ／Ｌに減少した（図１３Ａ）。さらに、３つの高用量金クラスター薬剤の血糖曲線下面積（ＡＵＧ）もまた、オランザピンモデル対照群のものより有意に低かった（両方ともＰ＜０．０１、図１３Ｂ）。Ａ１（ＯＬＺ+Ａ１Ｈ）を例にとると、ＡＵＧ値はオランザピンモデル対照群（ＯＬＺ）の８４５．０７±３７．８８ｍｍｏｌ/ｍｉｎから７４３．５０±１３．０４ｍｍｏｌ／ｍｉｎに減少した。３つのラットの血糖値低用量の金クラスター薬物も異なる時点で明らかに減少したが、どちらも３０分でのみ有意差を示した（Ｐ＜０．０５）。他の３つの高用量の金クラスター薬物群（ＯＬＺ＋Ａ４Ｈ、ＯＬＺ＋Ａ５Ｈ、およびＯＬＺ＋Ａ６Ｈ）も同様の結果を示した。これは、金クラスター薬物は、オランザピンによる血糖代謝障害を用量依存的に改善することができることを示す。
しかしながら、金ナノ粒子（Ｂ）の投与は、血糖濃度（図１３Ａ）または血糖曲線下面積（ＡＵＧ）（図１３Ｂ）を異なる期間で有意に減少させなかった。したがって、オランザピンによる血糖代謝障害に対する改善効果はなかった。
まとめると、金クラスターの長期投与は、オランザピンによって引き起こされる体重増加と脂肪の増加を大幅に減少させ、オランザピンによって引き起こされる脂質と糖の代謝障害を大幅に改善することができ、第２世代の抗精神病薬による副作用を軽減するための医薬として金クラスターの次の研究開発の基礎を提供する。しかし、金ナノ粒子にはそのような効果はなく、オランザピンによる肥満の治療薬として使用することはできない。
その他のサイズのＬ－Ｃｙｓ－ＡｕＣｓ，Ｌ－ＮＡＣ－ＡｕＣｓ、Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣs、ＣＳＨ－ＡｕＣｓ、ＭＰＡ－ＡｕＣｓ、およびｐ－ＭＢＡ－ＡｕＣｓ、および異なるサイズの他のリガンド結合ＡｕＣｓも、ＥＡＥの抑制に影響を及ぼし、その影響はある程度異なります。ここでは詳しく説明しない。
本発明を特定の実施形態を参照して説明してきたが、これらの実施形態は例示的なものであり、発明の範囲はそのように限定されないことが理解される。本発明の代替実施形態は、本発明が関係する当業者には明らかとなる。そのような代替実施形態は、本発明の範囲内に包含されると考えられる。したがって、本発明の範囲は、添付の特許請求の範囲によって定義され、前述の説明によってサポートされる。
本発明は、抗精神病薬の技術分野に関し、特にリガンド結合金クラスター（ＡｕＣｓ）、リガンド結合ＡｕＣｓを含む組成物、およびリガンド結合ＡｕＣｓおよび組成物を採用して非定型抗精神病薬による副作用を予防、抑制、軽減および／または逆転する方法に関する。
非定型抗精神病薬は、統合失調症、双極性障害、うつ病、および自閉症を含む様々な精神状態を治療するために現在使用されている第２世代の抗精神病薬である。抗精神病薬は、それらの高治療効果および低い錐体外路症状のリスクが文献に記載されているが、一般的には、過剰な体重増加、脂質代謝障害、およびグルコース代謝障害を特徴とする肥満を含む様々な副作用につながることがある。例えば、オランザピンまたはクロザピンを摂取した対象は、体重増加を経験する危険性が最も高い。体重増加の急速な進行は、非定型抗精神病誘発の代謝症候群の背後にある独特の病因を示唆している。
残念ながら、第２世代の非定型抗精神病による体重増加や代謝異常などの様々な副作用のメカニズムは、これまで広範な研究が行われてきたが、ほとんど知られていない。
オランザピンは、ドーパミンＤ２、セロトニン５－ＨＴ２Ａおよび５－ＨＴ２Ｃ、ヒスタミンＨ１受容体、ならびにムスカリンＭ１とＭ３受容体を含む複数の神経伝達受容体との高い結合親和性を有する。オランザピン誘発体重増加を打ち消すために、多くの薬理学的補助的治療が試みられてきた。例えば、オランザピンとベタヒスチン（Ｈ１ＲアゴニストおよびＨ３Ｒアンタゴニスト）の共治療は、オランザピンによって誘導される体重増加を有意に減少させる（Lian et al. Preventing Olanzapine-induced weight gain using betahistine: a study in a rat model with chronic olanzapine treatment. PLoS One. 2014, 9（8）: e104160）。別の例として、オランザピン誘発体重増加の治療のためのムスカリン性アセチルコリン受容体Ｍ１サブタイプアンタゴニストであるテレンゼピン（ＷＯ２０１１/０１１２３８Ａ１）、クロザピン、オランザピン、クエチアピンおよびリスペリドン（ＷＯ ２００９/０５９４１８Ａ １）を含む非定型抗精神病薬を受ける対象における体重増加および関連するメタボリックシンドロームの予防または軽減のためのドーパミンアゴニストであるプラミペキソール、ならびにニザチジン、ファモチジン、シミチジン、レニチジンからなる群より選ばれるヒスタミンＨ２受容体アンタゴニストが含まれる。しかしながら、これらのアゴニストまたはアンタゴニストによる結果は、不確定的または矛盾している。
オランザピンおよびクロザピンのような第２世代抗精神病薬による副作用を打ち消すためのより良い策が必要とされている。
本発明は、リガンド結合金クラスターを含む、非定型抗精神病薬による副作用を治療するための医薬組成物を提供する。
本発明の特定の実施形態は、非定型抗精神病薬による副作用を治療するための医薬組成物であって、前記医薬組成物は、リガンド結合金クラスターを含み、前記リガンド結合金クラスターは、金コアと、前記金コアに結合したリガンドを含む、医薬組成物を提供する。特定の実施形態では、前記非定型抗精神病薬は、オランザピン、クロザピン、リスペリドン、およびクエチアピンからなる群より選ばれる一つである。
前記医薬組成物の特定の実施形態では、前記金コアの直径は、０．５～３ｎｍにある。特定の実施形態では、前記金コアの直径は、０．５～２．６ｎｍにある。
前記医薬組成物の特定の実施形態では、前記リガンドは、Ｌ－システインとその誘導体、Ｄ－システインとその誘導体、システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体、およびその他のチオール含有化合物からなる群より選ばれる一つである。
前記医薬組成物の特定の実施形態では、前記Ｌ－システインとその誘導体は、Ｌ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＩＢＣ）、およびＮ－アセチル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＡＣ）からなる群より選ばれ、そして前記Ｄ－システインとその誘導体は、Ｄ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＩＢＣ）、およびＮ－アセチル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＡＣ）からなる群より選ばれる。
前記医薬組成物の特定の実施形態では、前記システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体は、システイン含有ジペプチド、システイン含有トリペプチドまたはシステイン含有テトラペプチドである。
前記医薬組成物の特定の実施形態では、前記システイン含有ジペプチドは、Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンジペプチド（ＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－アルギニン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＲＣ）、Ｌ（Ｄ）－ヒスチジン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＨＣ）、およびＬ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－ヒスチジンジペプチド（ＣＨ）かなる群より選ばれる。
前記医薬組成物の特定の実施形態では、前記システイン含有トリペプチドは、グリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＧＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－プロリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＰＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－リシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－プロリントリペプチド（ＫＣＰ）、およびＬ（Ｄ）－グルタチオン（ＧＳＨ）からなる群より選ばれる。
前記医薬組成物の特定の実施形態では、前記システイン含有テトラペプチドは、グリシン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＳＣＲ）、およびグリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＣＳＲ）からなる群より選ばれる。
前記医薬組成物の特定の実施形態では、前記その他のチオール含有化合物は、１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ（Ｄ）－プロリン、チオグリコール酸、メルカプトエタノール、チオフェノール、Ｄ－ペニシラミン、Ｎ－（２－メルカプトプロピオニル）－グリシン、ドデシルメルカプタン、２－アミノエタンチオール（ＣＳＨ）、３－メルカプトプロピオン酸（ＭＰＡ）、および４－メルカプト安息香酸（ｐ－ＭＢＡ）からなる群より選ばれる。
本発明の目的および利点は、添付の図面と関連してその好ましい実施形態の以下の詳細な説明から明らかになる。
以下、本発明に係る好適な実施形態について、図面を参照しながら説明する。
様々な粒子サイズのリガンドＬ－ＮＩＢＣで修飾された金ナノ粒子（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓ）の紫外線可視（ＵＶ）スペクトル、透過型電子顕微鏡（ＴＥＭ）画像および粒子サイズ分布図を示す。
様々な粒子サイズのリガンドＬ－ＮＩＢＣ結合金クラスター（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ）の紫外線可視（ＵＶ）スペクトル、ＴＥＭ画像および粒子サイズ分布図を示す。
様々な粒子サイズのＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓの赤外線スペクトルを示す。
リガンドＣＲ結合金クラスター（ＣＲ－ＡｕＣｓ）のＵＶスペクトル、赤外線、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
リガンドＲＣ結合金クラスター（ＲＣ－ＡｕＣｓ）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
リガンド１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ－プロリン（即ち、Ｃａｐ）結合金クラスター（Ｃａｐ－ＡｕＣｓ）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
リガンドＧＳＨ結合金クラスター（ＧＳＨ－ＡｕＣｓ）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
リガンドＤ－ＮＩＢＣ結合金クラスター（Ｄ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
リガンドＬ－システイン結合金クラスター（Ｌ－Ｃｙｓ－ＡｕＣ）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
リガンド２－アミノエタンチオール結合金クラスター（ＣＳＨ－ＡｕＣs）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
リガンド３－メルカプトプロピオン酸結合金クラスター（ＭＰＡ－ＡｕＣs）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
リガンド４－メルカプト安息香酸結合金クラスター（ｐ－ＭＢＡ－ＡｕＣs）のＵＶスペクトル、赤外線スペクトル、ＴＥＭ画像、および粒子サイズ分布図を示す。
それぞれの群のラットにおける（Ａ）血糖代謝曲線および（Ｂ）血糖曲線下の面積（ＡＵＧ）を示す。ＣＯＮ：陰性対照群；ＯＬＺ：オランザピンモデル対照群；ＯＬＺ＋Ａ１Ｈ：ＯＬＺ＋Ａ１高用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ１Ｌ：ＯＬＺ＋Ａ１低用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ２Ｈ：ＯＬＺ＋Ａ２高用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ２Ｌ ：ＯＬＺ＋Ａ２低用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ３Ｈ：ＯＬＺ＋Ａ３高用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ３Ｌ ：ＯＬＺ＋Ａ３低用量投与群；ＯＬＺ＋Ｂ：ＯＬＡ＋Ｂ高用量投与群；*：Ｐ＜０．０５；**：Ｐ＜０．０１。
本発明は、以下の本発明の特定の実施形態に対する詳細な説明を参照することによって、より容易に理解することができる。
本出願全体において、刊行物が参照される。これらの刊行物の開示は、本発明が適用する技術の現状をより十分に説明するために、参照によりその全体が本出願に組み込まれる。
本明細書で使用されるように、「投与」とは、経口（「ｐｏ」）投与、坐剤としての投与、局所的接触、静脈内（「ｉｖ」）、腹腔内（「ｉｐ」）、筋肉内（「ｉｍ」）、内腔、鼻腔内または皮下（「ｓｃ」）投与、または対象への徐放デバイス（例えば、ミニ浸透圧ポンプまたは浸食性インプラント）の移植を投与することを意味する。投与は、非経口および経粘膜（例えば、経口、鼻、膣、直腸、または経皮）を含む任意の経路によるものである。非経口投与は、例えば、静脈内、筋肉内、動脈内、皮内、皮下、腹腔内、心室内、および頭蓋内を含む。送達の他の態様は、リポソーム製剤、静脈内注入、経皮パッチなどの使用を含むが、これらに限定されない。
用語「全身投与」および「全身的に投与される」とは、化合物または組成物が、循環器システムを介して、医薬作用の標的部位を含む身体内の部位に送達されるように、前記化合物または組成物を哺乳動物に投与する方法を指す。全身投与は、経口、鼻腔内、直腸および非経口（すなわち、筋肉内、静脈内、動脈内、経皮および皮下などの消化管以外の投与）を含むが、これらに限定されず、ただし、全身投与は、髄腔内注射および頭蓋内投与などの循環器系以外の手段による脳領域への直接投与を含まない。
本明細書で使用されるように、用語「治療する」および「治療」は、用語が適用される疾患または状態の発症を遅延させること、その過程を遅延させるまたは反転させること、またはそのような疾患または状態の１つまたは複数の症状を軽減または予防することを指す。例示的な指標は、本明細書における体重増加率である。患者に応じて、治療は、抗精神病薬を同じまたは類似の時間に亘って受けながら治療することない、同じまたは異なる患者に経験された体重増加または患者の集団の平均体重増加と比較して、５％、１０％、１５％、２０％、２５％またはそれ以上、例えば、体重増加を減少させることができる。いくつかの患者では、前記治療は、抗精神病誘発体重増加の逆転、すなわち体重減少をもたらすことができる。例えば、治療を受けるいくつかの患者は、例えば、５％、１０％、１５％、２０％、２５％、５０％、７５％、または１００％の抗精神病性体重増加を失うことができ、例えば、治療を受けないままの抗精神病薬を投与する前に維持された重量に戻ることができる。
用語「患者」、「対象」または「個体」とは、哺乳動物、例えば、ヒトまたは非ヒト哺乳動物を意味し、霊長類（例えば、マカク、パン・トログロダイト、ポンゴ）、家畜化された哺乳類（例えば、ネコ科、イヌ科）、農業哺乳類（例えば、ウシ科、ヒツジ科、ブタ科、ウマ科）、および実験室哺乳動物またはげっ歯類（例えば、ラット、マウス、ウサギ、ハムスター、モルモット）を含む。
用語「非定型抗精神病薬による副作用」とは、肥満の体重増加、脂質代謝障害、および糖代謝障害を特徴とする肥満を含む既知の副作用のいずれかを指す。用語「抗精神病薬誘発体重増加」とは、患者が非定型抗精神病薬の治療薬を受け取ることによって経験される体重増加の副作用を指す。非定型抗精神病薬は、オランザピン、クロザピン、リスペリドン、およびクエチアピンを含む。
オランザピンおよびクロザピンは、いずれも非選択的アセチルコリンムスカリン受容体（Ａｃｈ－Ｍ）アンタゴニストとして特徴付けられる
オランザピンの化学的名称は、２－メチル－４－（４－メチル－１－ピペラジニル）－１０Ｈ－チエノ［２，３－ｂ］［１，５］ベンゾジアゼピンである。分子式は、Ｃ１７Ｈ２０Ｎ４Ｓであり、３１２．４４の分子量に相当する。オランザピンは、チエノベンゾジアゼピンとして分類される。化学構造は、以下の通りである。
Figure 2023524963000020
クロザピンの化学的名称は、８－クロロ－１１－（４－メチル－１－ピペラジニル）－５Ｈ－ジベンゾ（ｂ，ｅ）（１，４）アゼピンである。分子式は、Ｃ１８Ｈ１９ＣｌＮ４、３２６．８の分子量に相当する。化学構造は、以下の通りである。
Figure 2023524963000021
金クラスター（ＡｕＣｓ）は、金原子と金ナノ粒子の間に存在する特殊な形態の金である。ＡｕＣｓは、サイズが３ｎｍ未満であり、数個から数百個の金原子で構成されているため、金ナノ粒子の面心立方積層構造が崩壊する。その結果、ＡｕＣｓは、金ナノ粒子の連続又は準連続エネルギーレベルとは異なり、違うＨＯＭＯ－ＬＵＭＯギャップを持つ分子のような離散化した電子構造を示す。これにより、表面プラズモン共鳴効果と、従来の金ナノ粒子が持つｕｖ－ｖｉｓスペクトルでの対応するプラズモン共鳴吸収帯（５２０±２０ｎｍ）が消失する。
本発明は、リガンド結合ＡｕＣを提供する。
特定の実施形態では、前記リガンド結合ＡｕＣは、リガンドと、金コアとを含み、前記リガンドが前記金コアに結合している。リガンドを金コアに結合させることは、リガンドが共有結合、水素結合、静電気力、疎水性力（hydrophobic force）、ファンデルワールス力等を介して金コアと溶液中で安定している複合体を形成することを意味する。特定の実施形態では、前記金コアの直径が、０．５～３ｎｍの範囲にある。特定の実施形態では、前記金コアの直径が０．５～２．６ｎｍの範囲にある。
特定の実施形態では、前記リガンド結合ＡｕＣの前記リガンドが、チオール含有化合物またはオリゴペプチドである。特定の実施形態では、前記リガンドが、Ａｕ－Ｓ結合を介して金コアに結合してリガンド結合ＡｕＣを形成する。
特定の実施形態では、前記リガンドが、Ｌ－システイン、Ｄ－システイン、またはシステイン誘導体であるが、これらに限定されない。特定の実施形態では、前記システイン誘導体が、Ｎ－イソブチリル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＩＢＣ）、Ｎ－イソブチリル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＩＢＣ）、Ｎ－アセチル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＡＣ）、またはＮ－アセチル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＡＣ）である。
特定の実施形態では、前記リガンドが、システイン含有オリゴペプチドとその誘導体であるが、これらに限定されない。特定の実施形態では、前記システイン含有オリゴペプチドが、システイン含有ジペプチドである。特定の実施形態では、前記システイン含有ジペプチドが、Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンジペプチド（ＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－アルギニン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＲＣ）、またはＬ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－ヒスチジンジペプチド（ＣＨ）である。特定の実施形態では、前記システイン含有オリゴペプチドが、システイン含有トリペプチドである。特定の実施形態では、前記システイン含有トリペプチドが、グリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＧＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－プロリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＰＣＲ）、またはＬ－グルタチオン（ＧＳＨ）である。特定の実施形態では、前記システイン含有オリゴペプチドが、システイン含有テトラペプチドである。特定の実施形態では、前記システイン含有テトラペプチドが、グリシン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＳＣＲ）またはグリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＣＳＲ）である。
特定の実施形態では、前記リガンドは、チオール含有化合物である。特定の実施形態では、チオール含有化合物は、１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ（Ｄ）－プロリン、チオグリコール酸、メルカプトエタノール、チオフェノール、Ｄ－ペニシラミン、ドデシルメルカプタン、２－アミノエタンチオール（ＣＳＨ）、３－メルカプトプロピオン酸（ＭＰＡ）、または４－メルカプト安息香酸（ｐ－ＭＢＡ）である。
本発明は、オランザピン、クロザピン、リスペリドン、およびクエチアピンを含む非定型抗精神病薬による副作用を患う対象の治療のための医薬組成物を提供する。特定の実施形態では、前記対象が、人である。特定の実施形態では、前記対象が、犬のようなペット動物である。
特定の実施形態では、前記医薬組成物が、上文で開示されたリガンド結合ＡｕＣと、薬理学的に許容される賦形剤とを含む。特定の実施形態では、前記賦形剤が、リン酸緩衝液、または生理食塩水である。
本発明は、オランザピン、クロザピン、リスペリドン、およびクエチアピンを含む非定型抗精神病薬による副作用を患う対象の治療のための医薬の製造における上文で開示されたリガンド結合ＡｕＣｓの使用を提供する。
本発明は、オランザピン、クロザピン、リスペリドン、およびクエチアピンを含む非定型抗精神病薬による副作用を患う対象の治療のための上文で開示されたリガンド結合ＡｕＣｓの使用、または上文で開示されたリガンド結合ＡｕＣｓを使用してオランザピン、クロザピン、リスペリドン、およびクエチアピンを含む非定型抗精神病薬による副作用を患う対象を治療する方法を提供する。特定の実施形態では、前記治療方法は、前記対象に薬学的に有効量のリガンド結合ＡｕＣｓを投与することを含む。前記薬学的に有効な量は、通常の体内研究によって確認することができる。
特定の実施形態では、前記非定型抗精神病薬と、前記リガンド結合ＡｕＣｓとは、共投与されることができる。特定の実施形態では、前記非定型抗精神病薬と、前記リガンド結合ＡｕＣとは、同じ又は異なる経路により分別に投与されることができる。
以下の実施例は、本発明の原理を説明することのみを目的として提供されている。それらは、決して本発明の範囲を制限することを意図するものではない。
実施例
１． リガンド結合ＡｕＣｓの製造
１．１ ＨＡｕＣｌ４をメタノール、水、エタノール、ｎ－プロパノール、又は酢酸エチルに溶解して、ＨＡｕＣｌ４濃度０．０１～０．０３Ｍの溶液Ａが得られた。
１．２ リガンドを溶媒に溶解して、リガンド濃度０．０１～０．１８Ｍの溶液Ｂが得られた。前記リガンドは、Ｌ－システイン、Ｄ－システイン、及び、Ｎ－イソブチリル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＩＢＣ）、Ｎ－イソブチリル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＩＢＣ）、Ｎ－アセチル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＡＣ）、及びＮ－アセチル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＡＣ）等のその他のシステイン誘導体、システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体（Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンジペプチド（ＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－アルギニン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＲＣ）、Ｌ（Ｄ）－システイン Ｌ（Ｄ）－ヒスチジン（ＣＨ）、グリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＧＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－プロリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＰＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－グルタチオン（ＧＳＨ）、グリシン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＳＣＲ）及びグリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＣＳＲ）等の、ジペプチド、トリペプチド、テトラペプチド及びその他のシステイン含有ペプチドを含むが、これらに限定されない）、及び１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ（Ｄ）－プロリン、チオグリコール酸、メルカプトエタノール、チオフェノール、Ｄ－ペニシラミン、ドデシルメルカプタン、２－アミノエタンチオール（ＣＳＨ）、３－メルカプトプロピオン酸（ＭＰＡ）、および４－メルカプト安息香酸（ｐ－ＭＢＡ）の一つ又は複数等のその他のチオール含有化合物を含むが、これらに限定されない。前記溶媒は、メタノール、酢酸エチル、水、エタノール、ｎ－プロパノール、ペンタン、ギ酸、酢酸、ジエチルエーテル、アセトン、アニソール、１－プロパノール、２－プロパノール、１－ブタノール、２－ブタノール、ペンタノール、酢酸ブチル、ｔ－ブチルメチルエーテル、酢酸イソプロピル、ジメチルスルホキシド、ギ酸エチル、酢酸イソブチル、酢酸メチル、２－メチル－１－プロパノール及び酢酸プロピルの一つ又は複数であった。
１．３ ＨＡｕＣｌ４とリガンドとのモル比が１：（０．０１～１００）となるように、溶液Ａと溶液Ｂを混合して、氷浴において０．１～４８時間撹拌し、０．０２５～０．８Ｍ ＮａＢＨ４の水、エタノール又はメタノール溶液を加えて、氷水浴において引き続き撹拌し、そして０．１～１２時間反応させた。ＮａＢＨ４とリガンドとのモル比は、１：（０．０１～１００）であった。
１．４ 反応終了した後、ＭＷＣＯが３Ｋ～３０Ｋの限外ろ過チューブを使用して、８０００～１７５００ｒ／ｍｉｎの勾配で反応溶液を１０～１００分間遠心することにより、異なる平均粒子サイズを有するリガンド結合ＡｕＣｓ沈殿を得た。異なるＭＷＣＯの限外ろ過チューブのろ過メンブレンの開きは、直接的に、前記メンブレンを通過できるリガンド結合ＡｕＣｓのサイズを決定した。当該ステップは、任意に省略されてもよい。
１．５ ステップ（１．４）で得られた異なる平均粒子サイズを有するリガンド結合ＡｕＣｓ沈殿を水に溶解し、透析バッグに投入し、そして水において室温で１～７日間透析した。
１．６ 透析後、リガンド結合ＡｕＣｓを１２～２４時間凍結乾燥して、粉末状又は凝集状物質であるリガンド結合ＡｕＣｓを得た。
測定からわかるように、前記方法により得られた粉末状又は凝集状物質の粒子サイズは、３ｎｍ未満であった（全体的に、０．５～２．６ｎｍにわたって分布した）。５２０ｎｍで明らかな吸収ピークがなかった。得られた粉末又は凝集体がリガンド結合ＡｕＣsであったことが特定された。
２． 異なるリガンドが結合されたＡｕＣｓの製造及び同定
２．１ Ｌ－ＮＩＢＣ結合ＡｕＣｓ、即ち、Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓの製造
リガンドであるＬ－ＮＩＢＣを例とし、Ｌ－ＮＩＢＣが結合したＡｕＣｓの製造及び確認について以下で詳細に説明する。
２．１．１ １．００ｇのＨＡｕＣｌ４を量り、そして１００ｍＬのメタノールに溶解して、０．０３Ｍの溶液Ａを得た。
２．１．２ ０．５７ｇのＬ－ＮＩＢＣを量り、そして１００ｍＬの氷酢酸（酢酸）に溶解して、０．０３Ｍの溶液Ｂを得た。
２．１．３ １ｍＬの溶液Ａを量り、０．５ｍＬ、１ｍＬ、２ｍＬ、３ｍＬ、４ｍＬ、又は５ｍＬの溶液Ｂとそれぞれ混合し（すなわち、ＨＡｕＣｌ４とＬ－ＮＩＢＣとのモル比が、それぞれ、１：０．５、１：１、１：２、１：３、１：４、１：５であった。）、氷浴において撹拌しながら２時間反応させ、溶液が明るい黄色から無色になると、速やかに１ｍＬの新たに製造された０．０３Ｍ（１１．３ｍｇのＮａＢＨ４を量り、そして１０ｍＬのエタノールに溶解することにより製造された。）のＮａＢＨ４エタノール溶液を加えて、溶液が濃褐色になった後、引き続き３０分間反応し、そして１０ｍＬのアセトンを加えて反応を停止した。
２．１．４ 反応後、反応溶液に対して勾配遠心に供して、異なる粒子サイズを有するＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ粉末を得た。具体的な方法は以下のとおりである。即ち、反応完了後、反応溶液を３０ＫのＭＷＣＯ及び５０ｍＬの体積を有する限外ろ過チューブに転移し、そして１００００ｒ／ｍｉｎで２０分間を遠心し、そして内チューブ中の保持液（retentate）を超純水に溶解して、約２．６ｎｍの粒子サイズを有する粉末を得た。その後、外チューブ中の混合液を５０ｍＬの体積及び１０ＫのＭＷＣＯを有する限外ろ過チューブに転移し、そして１３，０００ｒ／ｍｉｎで３０分間を遠心した。内チューブ中の保持液を超純水に溶解して、約１．８ｎｍの粒子サイズを有する粉末を得た。その後、外チューブ中の混合液を５０ｍＬの体積及び３ＫのＭＷＣＯを有する限外ろ過チューブに転移し、そして１７，５００ｒ／ｍｉｎで４０分間を遠心した。内チューブ中の保持液を超純水に溶解して、約１．１ｎｍの粒子サイズを有する粉末を得た。
２．１．５ 勾配遠心により得られた３つの異なる粒子サイズでの粉末を沈殿させ、それぞれ溶媒を除去し、粗生成物をＮ２でブロー乾燥させ、５ｍＬの超純水に溶解し、透析バッグ（ＭＷＣＯが３ＫＤａ）に置き、透析バッグを２Ｌの超純水に置き、一日おきに水を交換し、７日間透析し、凍結乾燥し、そして将来の使用のために保持した。
２．２ Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓの同定
上記で得られた粉末（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣ）に対して同定実験は行われた。同時に、リガンドであるＬ－ＮＩＢＣにより修飾した金ナノ粒子（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰs）は、対照として使用された。前記リガンドがＬ－ＮＩＢＣである金ナノ粒子の製造方法は、参考文献（Ｗ．Ｙａｎ、Ｌ．Ｘｕ、Ｃ．Ｘｕ、Ｗ．Ｍａ、Ｈ．Ｋｕａｎｇ、Ｌ．Ｗａｎｇ及びＮ．Ａ．Ｋｏｔｏｖ、Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ ２０１２、１３４、１５１１４；Ｘ．Ｙｕａｎ、Ｂ．Ｚｈａｎｇ、Ｚ．Ｌｕｏ、Ｑ．Ｙａｏ、Ｄ．Ｔ．Ｌｅｏｎｇ、Ｎ．Ｙａｎ及びＪ．Ｘｉｅ、Ａｎｇｅｗａｎｄｔｅ Ｃｈｅｍｉｅ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｅｄｉｔｉｏｎ ２０１４、５３、４６２３）に参照する。
２．２．１ 透過型電子顕微鏡（ＴＥＭ）によるモーフォロジーの観察
試験粉末（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓサンプル及びＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰsサンプル）を超純水に２ｍｇ／Ｌになるまで溶解してサンプルとし、そして懸滴法により試験サンプルを製造した。より具体的に、５μＬのサンプルを超薄型カーボンフィルムに滴下し、水滴がなくなるまで自然蒸発させ、そしてＪＥＭ－２１００Ｆ ＳＴＥＭ／ＥＤＳ電界放出形高分解能ＴＥＭによりサンプルのモーフォロジーを観察した。
Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰs の４つのＴＥＭ画像は、図１のパネルＢ、Ｅ、Ｈ、及びＫに示され、Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣsの３つのＴＥＭ画像は、図２のパネルＢ、Ｅ、及びＨに示される。
図２中の画像で示されるように、各々のＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓサンプルは、均一な粒子サイズ及び良好な分散性を有し、かつ、Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓの平均直径（金コアの直径と指す）がそれぞれ１．１ｎｍ、１．８ｎｍ及び２．６ｎｍであり、図２のパネルＣ、Ｆ及びＩ中の結果とよく一致した。これに対して、Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓサンプルは、より大きい粒子サイズを有した。これらの平均直径（金コアの直径と指す）がそれぞれ３．６ｎｍ、６．０ｎｍ、１０．１ｎｍ及び１８．２ｎｍであり、図１のパネルＣ、Ｆ、Ｉ及びＬ中の結果とよく一致した。
２．２．２ 紫外線（ＵＶ）－可視光（ｖｉｓ）吸収スペクトル
試験粉末（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓサンプル及びＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓサンプル）を超純水に濃度が１０ｍｇ・Ｌ－１になるまで溶解し、室温でＵＶ－ｖｉｓ吸収スペクトルが測定された。走査範囲が１９０～１１００ｎｍであり、サンプルセルが光路長１ｃｍの標準石英キュベットであり、参照セルが超純水により充填された。
異なるサイズを有する４つのＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓサンプルのＵＶ－ｖｉｓ吸収スペクトルは、図１のパネルＡ、Ｄ、Ｇ及びＪに示され、及び粒子サイズの統計学的分布は、図１のパネルＣ、Ｆ、Ｉ及びＬに示され、異なるサイズを有する３つのＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓサンプルのＵＶ－ｖｉｓ吸収スペクトルは、図２のパネルＡ、Ｄ及びＧに示され、及び粒子サイズの統計学的分布は、図２のパネルＣ、Ｆ及びＩに示される。
図１で示されるように、表面プラズモン作用により、Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓは、約５２０ｎｍで吸収ピークを有した。吸収ピークの位置は、粒子サイズに関連した。粒子サイズが３．６ｎｍである場合、ＵＶ吸収ピークが５１６ｎｍで現れ、粒子サイズが６．０ｎｍである場合、ＵＶ吸収ピークが５１７ｎｍで現れ、粒子サイズが１０．１ｎｍである場合、ＵＶ吸収ピークが５２０ｎｍで現れ、及び粒子サイズが１８．２ｎｍである場合、吸収ピークが５２３ｎｍで現れた。４つのサンプルは、いずれも５６０ｎｍ以上で吸収ピークを有しなかった。
図２で示されるように、異なる粒子サイズを有するＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓサンプルのＵＶ吸収スペクトルでは、５２０ｎｍでの表面プラズモン作用による吸収ピークがなくなり、５６０ｎｍ以上で２つの明らかな吸収ピークが現れ、吸収ピークの位置がＡｕＣｓの粒子径により僅かな相違があった。これは、ＡｕＣｓが面心立方構造の崩壊により分子のような特性を示し、ＡｕＣｓの状態密度の不連続性、エネルギー準位の分裂、プラズモン共鳴効果の消失、及び長波方向の新しい吸収ピークに繋がったためである。上記で得られた異なる粒子サイズでの３つの粉末サンプルは、いずれもリガンド結合ＡｕＣｓであったと結論付けることができる。
２．２．３ フーリエ変換赤外線分光法
赤外線スペクトルは、Ｂｒｕｋｅｒ製のＶＥＲＴＥＸ８０Ｖフーリエ変換赤外線分光計で固体粉末高真空全反射モードで測定された。走査範囲は、４０００～４００ ｃｍ－１であり、走査数が６４であった。Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓサンプルを例とし、試験サンプルは、異なる３つの粒子サイズを有するＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ乾燥粉末であり、対照サンプルは、純粋なＬ－ＮＩＢＣ粉末であった。結果は、図３に示した。
図３は、異なる粒子サイズを有するＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓの赤外線スペクトルを示す。純粋なＬ－ＮＩＢＣ（下部の曲線）と比較すると、異なる粒子サイズを有するＬ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓのＳＨ伸縮振動は、全て、２５００～２６００ｃｍ－１で完全に消失したが、Ｌ－ＮＩＢＣの他の特徴的なピークは、依然として残っていて、Ｌ－ＮＩＢＣ分子がＡｕ－Ｓ結合を介してＡｕＣｓの表面に成功に固定されていたことが証明された。この図は、リガンド結合ＡｕＣｓの赤外スペクトルがそのサイズとは無関係であることも示した。
溶液Ｂの溶媒、ＨＡｕＣｌ４とリガンドとの仕込み比、反応時間及び添加されたＮａＢＨ４の量をわずかに調整した以外、上記方法と同様な方法で、その他のリガンドが結合したＡｕＣsを製造した。例えば、Ｌ－システイン、Ｄ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＩＢＣ）又はＮ－イソブチリル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＩＢＣ）がリガンドとして使用された場合、溶媒として酢酸が選択され、ジペプチドＣＲ、ジペプチドＲＣ又は１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ－プロリンがリガンドとして使用された場合、溶媒として水が選択されることなど、その他のステップについても同じようにするため、更なる詳細はここで省略する。
本発明は、前述の方法により、一連のリガンド結合ＡｕＣｓを製造した。リガンドと製造プロセスのパラメーターを表１に示す。
表１．本発明において異なるリガンドが結合したＡｕＣｓの製造パラメーター
Figure 2023524963000022
表１に挙げられたサンプルは、前記方法により確認された。９つの異なるリガンド結合ＡｕＣｓの特性を図４（ＣＲ－ＡｕＣｓ）、図５（ＲＣ－ＡｕＣｓ）、図６（Ｃａｐ－ＡｕＣｓ）（Ｃａｐは１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ－プロリンである）、図７（ＧＳＨ－ＡｕＣｓ）、図８（Ｄ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ）、図９（Ｌ－Ｃｙｓ－ＡｕＣｓ）、図１０（ＣＳＨ－ＡｕＣｓ）、図１１（ＭＰＡ－ＡｕＣｓ）、および図１２（ｐ－ＭＢＡ－ＡｕＣｓ）に示す。図４～図１２は、ＵＶスペクトル（パネルＡ）、赤外線スペクトル（パネルＢ）、ＴＥＭ画像（パネルＣ）、及び粒子サイズ分布（パネルＤ）を示す。
その結果、表１から得られた異なるリガンドが結合したＡｕＣｓの直径は、いずれも、３ｎｍ未満であることを示した。紫外線スペクトルは、５２０±２０ｎｍでのピークの消失、及び他の位置での吸収ピークの出現も示した。この吸収ピークの位置は、リガンド、粒子サイズ、及び構造によって異なった。特定の状況で、特殊な吸収ピークが形成されないが、主な原因は、粒子径や構造の異なるＡｕＣｓの混合物が形成されたこと、または、ある特殊なＡｕＣｓにより吸収ピークの位置が紫外線可視スペクトルの範囲外に移動されたことである。一方、フーリエ変換赤外スペクトルでは、リガンドのチオールの赤外線吸収ピーク（図４～８のパネルＢの点線の間）が消失したが、他の赤外特性ピークはいずれも保持されていることから、全てのリガンド分子がＡｕＣｓの表面に成功に固定されており、本発明は、表１に記載されたリガンドの結合したＡｕＣｓを取得することに成功したことを示した。
３． 動物試験
３．１ 試験サンプル
Ａ１：リガンドＬ－ＮＩＢＣ結合金クラスター（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣｓ）、サイズ分布が０．５～３ｎｍにある。
Ａ２：リガンドＮ－アセチル－Ｌ－システイン結合金クラスター（Ｌ－ＮＡＣ－ＡｕＣｓ）、サイズ分布が ０．５～３ｎｍにある。
Ａ３：リガンドＬ－システイン結合金クラスター（Ｌ－Ｃｙｓ－ＡｕＣｓ）、サイズ分布が ０．５～３ｎｍにある。
Ａ４：リガンド２－アミノエタンチオール結合金クラスター（ＣＳＨ－ＡｕＣｓ）、サイズ分布が ０．５～３ｎｍにある。
Ａ５：リガンド３－メルカプトプロピオン酸結合金クラスター（ＭＰＡ－ＡｕＣｓ）、サイズ分布が ０．５～３ｎｍにある。
Ａ６：リガンド４－メルカプト安息香酸結合金クラスター（ｐ－ＭＢＡ－ＡｕＣｓ）、サイズ分布が０．５～３ｎｍにある。
Ｂ：Ｌ－ＮＩＢＣ結合金ナノ粒子（Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＮＰｓ）、サイズ分布が５～９ｎｍにある。
全ての試験サンプルは、上記の方法に従って調製されたがわずかな変更を加えた。それらの品質は上記の方法を使用して特徴づけられた。
３．２ オランザピン誘発副作用モデルの確立と、オランザピン誘発体重増加に対する異なるリガンド結合ＡｕＣｓの抑制効果と用量効果の検討
１４４匹のＳＰＦメスＳｐｒａｇｕｅ Ｄａｗｌｅｙラット（８～１０週齢）を、ＳｉＰｅｉｆｕ（Ｂｅｉｊｉｎｇ） Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｃｏ．，Ｌｔｄ．の実験動物センターから購入した。全てのラットは隔離環境で飼育し、温度は２２±２℃に制御し、昼夜の間隔は１２時間とし、７：００～１９：００を昼、１９：００～７：００を夜とした。適応給餌の１週間後、ラットを無作為に１２の群に分けた（ｎ＝１２／群、ラットの各群の平均体重と食物摂取量がほぼ同じであることを確認した。）：陰性対照群（ＣＯＮ、群１）、オランザピンモデル対照群（ＯＬＺ、群２）、オランザピン＋Ａ１高用量群（ＯＬＺ＋Ａ１Ｈ、群３）、オランザピン＋Ａ１低用量群（ＯＬＺ＋Ａ１Ｌ、群４）、オランザピン＋Ａ２高用量群（ＯＬＺ＋Ａ２Ｈ、群５）、オランザピン＋Ａ２低用量群（ＯＬＺ＋Ａ２Ｌ、群６）、オランザピン＋Ａ３高用量群（ＯＬＺ＋Ａ３Ｈ、群７），オランザピン＋Ａ３低用量群（ＯＬＺ＋Ａ３Ｌ、群８）、オランザピン＋Ａ４高用量群（ＯＬＺ＋Ａ４Ｈ、群９）、オランザピン＋Ａ５高用量群（ＯＬＺ＋Ａ５Ｈ、群１０）、オランザピン＋Ａ６高用量群（ＯＬＺ＋Ａ６Ｈ、群１１）、およびオランザピン＋Ｂ高用量群（ＯＬＺ＋Ｂ、群１２）。群２－１２のラットに経口でオランザピン（１ｍｇ/ｋｇ、ｔｉｄ（一日三回）、投与時点：７:００、１５:００、および２３:００）を投与し、陰性対照群（群１）に等量のプラセボを対照として投与し、ここで０．３ｇの餌（２４．３％カゼイン、３４．３％コーンスターチ、３４．３６％スクロース、および６．９８％ゼラチンと混合したもの）で作られたペレットでオランザピンをラットに経口投与した。プラセボは、同量のオランザピンを含まない食品ピルであった。オランザピン（またはプラセボ）投与の初日から、オランザピン＋薬物高用量群に薬物Ａ１、Ａ２、Ａ３、Ａ４、Ａ５、Ａ６またはＢ（２０ｍｇ/ｋｇ、１日１回）を腹腔内注射し、オランザピン＋薬物低用量群には、薬物Ａ１、Ａ２またはＡ３（１０ｍｇ／ｋｇ、１日１回）を腹腔内注射した。陰性対照群およびオランザピンモデル対照群には対照として同量の生理食塩水を腹腔内注射した。同じ投与方法を２１日間連続して行った。動物の摂食を２４時間ごとに測定し、動物の体重を４８時間ごとに測定して、オランザピン誘発体重増加に対するさまざまな用量のＡｕＣｓの抑制効果を観察した。
３．３ 耐糖能試験
投与２１日目に、すべてのラットを１６時間絶食させた。血液サンプルはラットの尾静脈から採取し、ラットの空腹時血糖値（０ｈ）を血糖測定器（Ｊｏｈｎｓｏｎ ＆ Ｊｏｈｎｓｏｎ Ｏｎｅ Ｔｏｕｃｈ Ｕｌｔｒａ、Ｊｏｈｎｓｏｎ ＆ Ｊｏｈｎｓｏｎ（Ｃｈｉｎａ） Ｍｅｄｉｃａｌ Ｅｑｕｉｐｍｅｎｔ Ｃｏ．， Ｌｔｄ）で、対応する用量のブドウ糖溶液を腹腔内に注射し（１ｇ／ｋｇ）、血糖値をブドウ糖溶液の投与後３０分、６０分、９０分、および１２０分で測定し、各マウスの曲線下の曲線（ＡＵＣ）を計算した。
３．４ ラットの安楽死と組織採取
最後の投与後、ラットを７％水和クロラールで麻酔した。心臓から血液サンプルを採取した後、肝臓、腸間膜、腎周囲、および卵巣周囲組織を採取し、重量を測定し、－８０℃で保存した。
３．５ データの統計と分析
ＳＰＳＳ ２２．０統計ソフトウェアを使用して、すべてのデータに対して統計分析を実行した。すべてのデータは平均±ＳＥＭとして表され、統計的差異はＰ＜０．０５として定義される。
３．６ 実験結果
３．６．１ 金クラスター薬物の投与により、オランザピンによるラットの体重増加と摂餌量が有意に減少された。
表２は、陰性対照群、オランザピンモデル対照群、３つのＡｕＣs（Ａ１、Ａ２、およびＡ３）の高用量および低用量群、ならびにＡｕＮＰ高用量群におけるラットの体重変化を示す。表２に示すように、ラットのすべての群の初期体重（ＩＢＷ）はほぼ同じであった（２４５．４８ｇ～２４７．８６ｇ）。薬物投与の２１日後、オランザピンモデル対照群の最終体重（ＦＢＷ）は、陰性対照群のそれよりも有意に高く（Ｐ＜０．０１）、モデルが正常に確立されたことを示す。オランザピンモデル対照群と比較して、高用量の金クラスター薬物群（ＯＬＺ＋Ａ１Ｈ、ＯＬＺ＋Ａ２Ｈ、およびＯＬＺ＋Ａ３Ｈ）は有意に低く（両方ともＰ＜０．０５）、低用量の金クラスター薬物群（ＯＬＺ＋Ａ１Ｌ、ＯＬＺ＋Ａ２Ｌ、およびＯＬＺ＋Ａ３Ｌ）の重量は明らかに低かった。同時に、陰性対照群と比較して、オランザピンモデル対照群の最終体重増加（ＢＷＧ、すなわち最終体重と初期体重の差）は非常に有意に増加した（Ｐ＜０．０１）。オランザピンモデル対照群と比較して、高用量の金クラスター薬物群（ＯＬＺ＋Ａ１Ｈ、ＯＬＺ＋Ａ２ＨおよびＯＬＺ＋Ａ３Ｈ）の最終体重増加（ＢＧＷ）は、非常に有意に減少した（両方ともＰ＜０．０１）。低用量の金クラスター薬物群（ＯＬＺ＋Ａ１Ｌ、ＯＬＺ＋Ａ２Ｌ、およびＯＬＺ＋Ａ３Ｌ）の最終体重増加（ＢＧＷ）も有意に減少した（両方ともＰ＜０．０５）。他の３つの高用量の金クラスター薬物群（ＯＬＺ＋Ａ４Ｈ、ＯＬＺ＋Ａ５Ｈ、およびＯＬＺ＋Ａ６Ｈ）も同様の結果を示した。ただし、オランザピンモデル対照群と比較して、高用量金ナノ粒子薬物群（ＯＬＺ＋Ｂ）の最終体重（ＦＢＷ）と最終体重増加（ＢＧＷ）は有意に減少しなかった（Ｐ＞０．０５）。
表２：オランザピンによるラットの体重増加に対するさまざまな薬物投与の影響
Figure 2023524963000023
表２では、ＩＢＷ：初期体重；ＦＢＷ：最終体重；ＢＷＧ：体重増加；ＣＯＮ：陰性対照群；ＯＬＺ：オランザピンモデル対照群；ＯＬＺ＋Ａ１Ｈ：ＯＬＺ＋Ａ１高用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ１Ｌ：ＯＬＺ＋Ａ１低用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ２Ｈ：ＯＬＺ＋Ａ２高用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ２Ｌ：ＯＬＺ＋Ａ２低用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ３Ｈ：ＯＬＺ＋Ａ３高用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ３Ｌ：ＯＬＺ＋Ａ３低用量投与群；ＯＬＺ＋Ｂ：ＯＬＺ＋Ｂ高用量投与群；*：Ｐ＜０．０５、ＯＬＺ対ＣＯＮ；**：Ｐ＜０．０１、ＯＬＺ対ＣＯＮ；＃：Ｐ＜０．０５、各投与群対ＯＬＺ；##：Ｐ＜０．０１、各投与群対ＯＬＺを意味する。
３．６．２ 金クラスター薬物の投与により、オランザピンによる腸間膜脂肪の増加が有意に減少した。
オランザピン誘発体重増加は、脂肪肝につながる可能性がある。表３は、陰性対照群、オランザピンモデル対照群、３つのＡｕＣs（Ａ１、Ａ２、およびＡ３）の高用量および低用量群、ならびにＡｕＮＰ高用量群におけるラットの肝臓重量および腸間膜脂肪の変化を示す。表３に示すように、陰性対照群と比較して、オランザピンモデル対照群では肝臓重量が増加したが、有意差はなかった（Ｐ＞０．０５）。オランザピンモデル対照群と比較して、３つの異なる用量群の金クラスター薬は肝臓の重量を減らすことができ、Ａ１の低用量群とＡ３の高用量群は有意差を示した（Ｐ＜０．０５）。末梢脂肪の中で、陰性対照群と比較して、オランザピンモデル対照群は腸脂肪の蓄積を有意に増加させた（Ｐ＜０．０５）。オランザピンモデル対照群と比較して、Ａ１、Ａ２、およびＡ３の高用量と低用量の両方で、オランザピンによって誘発される腸周囲脂肪の増加が用量依存的に減少した（最大の減量率は３２％と高かった）。他の３つの高用量の金クラスター薬物群（ＯＬＺ+Ａ４Ｈ、ＯＬＺ+Ａ５Ｈ、およびＯＬＺ+Ａ６Ｈ）も同様の結果を示した。まとめると、金クラスター薬物は、明らかにオランザピンによる脂肪の増加を減少させることができ、一定の用量依存性を示す。しかし、金ナノ粒子の高用量群は有意な変化を示さず、金ナノ粒子が無効であることを示す。
表３：ラット肝臓および腸周囲脂肪重量に対する薬物の効果
Figure 2023524963000024
表３では、ＣＯＮ：陰性対照群；ＯＬＺ：オランザピンモデル対照群；ＯＬＺ＋Ａ１Ｈ：ＯＬＺ＋Ａ１高用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ１Ｌ：ＯＬＺ＋Ａ１低用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ２Ｈ：ＯＬＺ＋Ａ２高用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ２Ｌ ：ＯＬＺ＋Ａ２低用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ３Ｈ：ＯＬＺ＋Ａ３高用量投与群；ＯＬＺ＋Ａ３Ｌ ：ＯＬＺ＋Ａ３低用量投与群；ＯＬＺ＋Ｂ：ＯＬＺ＋Ｂ高用量投与群；*：Ｐ＜０．０５、ＯＬＺ対ＣＯＮ；＃：Ｐ＜０．０５、各投与群対ＯＬＺ；♯♯：Ｐ＜０．０１ 、各投与群対ＯＬＺを意味する。
３．６．３ 金クラスター薬物の投与により、オランザピンによる血糖上昇が有意に抑制された。
臨床的に、オランザピンの投与は血糖値の上昇および糖尿病を引き起こす可能性がある。図１３は、陰性対照群、オランザピンモデル対照群、３つのＡｕＣｓ（Ａ１、Ａ２、およびＡ３）の高用量および低用量群、ならびにＡｕＮＰ高用量群におけるラットの血糖代謝曲線および血糖曲線下の面積（ＡＵＧ）を示す。
この研究では、オランザピンモデルの対照群と様々な投与群が空腹時血糖に有意な影響を与えないことがわかった（Ｐ＞０．０５）。しかし、陰性対照群と比較して、ブドウ糖注射後、オランザピンモデル対照群ラットの血糖値は、腹腔内ブドウ糖注射後３０分（Ｐ＜０．０１）および１２０分（Ｐ＜０．０５）で有意に増加し、７．５４±０．２６ｍｍｏｌ／Ｌおよび６．１１±０．１２ｍｍｏｌ／Ｌから、それぞれ９．１６±０．４８ｍｍｏｌ／Ｌおよび６．７９±０．３２ｍｍｏｌ／Ｌに増加した（図１３Ａ）。血糖曲線下面積（ＡＵＧ）は、７６６．８３±１５．０５ｍｍｏｌ／ｍｉｎから８４５．０７±３７．８８ｍｍｏｌ／ｍｉｎに有意に増加した（Ｐ＜０．０５、図１３Ｂ）。上記の結果は、動物の糖代謝障害に対するオランザピン投与の有意な効果を示す。
オランザピンモデル対照群と比較して、３つの金クラスター薬物（Ａ１、Ａ２、およびＡ３）の群の血糖値は、特に高用量群で大幅に低下した。３つのラットの血糖値高用量群は、ブドウ糖注射後３０分（両方Ｐ＜０．０１）、６０分（両方Ｐ＜０．０１）、１２０分（両方Ｐ＜０．０１）で有意に減少し、血糖値は陰性対照群のそれに近かった（図１３Ａ）。Ａ１を例にとると、これら３つの時点での血糖値は、オランザピンモデル対照群の９．１６±０．４８ｍｍｏｌ／Ｌ、６．７９±０．３２ｍｍｏｌ／Ｌ、および６．３０±０．３３ｍｍｏｌ/Ｌから、それぞれ７．７±０．１５、ｍｍｏｌ／Ｌ、５．７４±０．１８ｍｍｏｌ／Ｌおよび５．５３±０．１４ｍｍｏｌ／Ｌに減少した（図１３Ａ）。さらに、３つの高用量金クラスター薬剤の血糖曲線下面積（ＡＵＧ）もまた、オランザピンモデル対照群のものより有意に低かった（両方ともＰ＜０．０１、図１３Ｂ）。Ａ１（ＯＬＺ+Ａ１Ｈ）を例にとると、ＡＵＧ値はオランザピンモデル対照群（ＯＬＺ）の８４５．０７±３７．８８ｍｍｏｌ/ｍｉｎから７４３．５０±１３．０４ｍｍｏｌ／ｍｉｎに減少した。３つのラットの血糖値低用量の金クラスター薬物も異なる時点で明らかに減少したが、どちらも３０分でのみ有意差を示した（Ｐ＜０．０５）。他の３つの高用量の金クラスター薬物群（ＯＬＺ＋Ａ４Ｈ、ＯＬＺ＋Ａ５Ｈ、およびＯＬＺ＋Ａ６Ｈ）も同様の結果を示した。これは、金クラスター薬物は、オランザピンによる血糖代謝障害を用量依存的に改善することができることを示す。
しかしながら、金ナノ粒子（Ｂ）の投与は、血糖濃度（図１３Ａ）または血糖曲線下面積（ＡＵＧ）（図１３Ｂ）を異なる期間で有意に減少させなかった。したがって、オランザピンによる血糖代謝障害に対する改善効果はなかった。
まとめると、金クラスターの長期投与は、オランザピンによって引き起こされる体重増加と脂肪の増加を大幅に減少させ、オランザピンによって引き起こされる脂質と糖の代謝障害を大幅に改善することができ、第２世代の抗精神病薬による副作用を軽減するための医薬として金クラスターの次の研究開発の基礎を提供する。しかし、金ナノ粒子にはそのような効果はなく、オランザピンによる肥満の治療薬として使用することはできない。
その他のサイズのＬ－Ｃｙｓ－ＡｕＣｓ，Ｌ－ＮＡＣ－ＡｕＣｓ、Ｌ－ＮＩＢＣ－ＡｕＣs、ＣＳＨ－ＡｕＣｓ、ＭＰＡ－ＡｕＣｓ、およびｐ－ＭＢＡ－ＡｕＣｓ、および異なるサイズの他のリガンド結合ＡｕＣｓも、ＥＡＥの抑制に影響を及ぼし、その影響はある程度異なります。ここでは詳しく説明しない。
本発明を特定の実施形態を参照して説明してきたが、これらの実施形態は例示的なものであり、発明の範囲はそのように限定されないことが理解される。本発明の代替実施形態は、本発明が関係する当業者には明らかとなる。そのような代替実施形態は、本発明の範囲内に包含されると考えられる。したがって、本発明の範囲は、添付の特許請求の範囲によって定義され、前述の説明によってサポートされる。

Claims (22)

  1. 対象において非定型抗精神病薬による副作用を治療するためのリガンド結合金クラスターの使用であって、前記リガンド結合金クラスターは、
    金コアと、
    前記金コアに結合したリガンドと、
    を含む、使用。
  2. 前記金コアの直径が、０．５～３ｎｍにある、請求項１の使用。
  3. 前記金コアの直径が、０．５～２．６ｎｍにある、請求項１の使用。
  4. 前記リガンドは、Ｌ－システインとその誘導体、Ｄ－システインとその誘導体、システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体、およびその他のチオール含有化合物からなる群より選ばれる一つである、請求項１の使用。
  5. 前記Ｌ－システインとその誘導体は、Ｌ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＩＢＣ）、およびＮ－アセチル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＡＣ）からなる群より選ばれ、前記Ｄ－システインとその誘導体は、Ｄ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＩＢＣ）、およびＮ－アセチル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＡＣ）からなる群より選ばれる、請求項４の使用。
  6. 前記システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体は、システイン含有ジペプチド、システイン含有トリペプチドまたはシステイン含有テトラペプチドである、請求項４の使用。
  7. 前記システイン含有ジペプチドは、Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンジペプチド（ＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－アルギニン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＲＣ）、Ｌ（Ｄ）－ヒスチジン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＨＣ）、およびＬ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－ヒスチジンジペプチド（ＣＨ）からなる群より選ばれる、請求項６の使用。
  8. 前記システイン含有トリペプチドは、グリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＧＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－プロリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＰＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－リシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－プロリントリペプチド（ＫＣＰ）、およびＬ（Ｄ）－グルタチオン（ＧＳＨ）からなる群より選ばれる、請求項６の使用。
  9. 前記システイン含有テトラペプチドは、グリシン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＳＣＲ）、およびグリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＣＳＲ）からなる群より選ばれる、請求項６の使用。
  10. 前記その他のチオール含有化合物は、１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ（Ｄ）－プロリン、チオグリコール酸、メルカプトエタノール、チオフェノール、Ｄ－ペニシラミン、Ｎ－（２－メルカプトプロピオニル）－グリシン、ドデシルメルカプタン、２－アミノエタンチオール（ＣＳＨ）、３－メルカプトプロピオン酸（ＭＰＡ）、および４－メルカプト安息香酸（ｐ－ＭＢＡ）からなる群より選ばれる、請求項４の使用。
  11. 前記非定型抗精神病薬は、オランザピン、クロザピン、リスペリドン、およびクエチアピンからなる群より選ばれる一つである、請求項１の使用。
  12. 対象において非定型抗精神病薬による副作用を治療するための医薬の製造におけるリガンド結合金クラスター（ＡｕＣ）の使用であって、前記リガンド結合金クラスターは、
    金コアと、
    前記金コアに結合したリガンドと、
    を含む、使用。
  13. 前記金コアの直径が、０．５～３ｎｍにある、請求項１２の使用。
  14. 前記金コアの直径が、０．５～２．６ｎｍにある、請求項１２の使用。
  15. 前記リガンドは、Ｌ－システインとその誘導体、Ｄ－システインとその誘導体、システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体、およびその他のチオール含有化合物からなる群より選ばれる一つである、請求項１２の使用。
  16. 前記Ｌ－システインとその誘導体は、Ｌ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＩＢＣ）、およびＮ－アセチル－Ｌ－システイン（Ｌ－ＮＡＣ）からなる群より選ばれ、前記Ｄ－システインとその誘導体は、Ｄ－システイン、Ｎ－イソブチリル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＩＢＣ）、およびＮ－アセチル－Ｄ－システイン（Ｄ－ＮＡＣ）からなる群より選ばれる、請求項１５の使用。
  17. 前記システイン含有オリゴペプチドとそれらの誘導体は、システイン含有ジペプチド、システイン含有トリペプチドまたはシステイン含有テトラペプチドである、請求項１５の使用。
  18. 前記システイン含有ジペプチドは、Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンジペプチド（ＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－アルギニン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＲＣ）、Ｌ（Ｄ）－ヒスチジン－Ｌ（Ｄ）－システインジペプチド（ＨＣ）、およびＬ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－ヒスチジンジペプチド（ＣＨ）からなる群より選ばれる、請求項１７の使用。
  19. 前記システイン含有トリペプチドは、グリシン－（Ｄ）Ｌ－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＧＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－プロリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニントリペプチド（ＰＣＲ）、Ｌ（Ｄ）－リシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－プロリントリペプチド（ＫＣＰ）、およびＬ（Ｄ）－グルタチオン（ＧＳＨ）からなる群より選ばれる、請求項１７の使用。
  20. 前記システイン含有テトラペプチドは、グリシン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＳＣＲ）、およびグリシン－Ｌ（Ｄ）－システイン－Ｌ（Ｄ）－セリン－Ｌ（Ｄ）－アルギニンテトラペプチド（ＧＣＳＲ）からなる群より選ばれる、請求項１７の使用。
  21. 前記その他のチオール含有化合物は、１－［（２Ｓ）－２－メチル－３－チオール－１－オキソプロピル］－Ｌ（Ｄ）－プロリン、チオグリコール酸、メルカプトエタノール、チオフェノール、Ｄ－ペニシラミン、Ｎ－（２－メルカプトプロピオニル）－グリシン、ドデシルメルカプタン、２－アミノエタンチオール（ＣＳＨ）、３－メルカプトプロピオン酸（ＭＰＡ）、および４－メルカプト安息香酸（ｐ－ＭＢＡ）からなる群より選ばれる、請求項１５の使用。
  22. 前記非定型抗精神病薬は、オランザピン、クロザピン、リスペリドン、およびクエチアピンからなる群より選ばれる一つである、請求項１２の使用。
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