JP2023502576A - イオン化可能な脂質およびそれらのナノ粒子組成物 - Google Patents
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Abstract
Description
この出願は、2019年11月22日に出願された米国仮出願第62/939,326号および2020年5月18日に出願された米国仮出願第63/026,493号の優先権の利益を主張し、それぞれの内容全体が、参照により本明細書に組み込まれる。
R1およびR1’は、それぞれ独立して、任意に置換された直鎖または分枝鎖C1~3アルキレンであり、
R2およびR2’は、それぞれ独立して、任意に置換された直鎖または分枝鎖C1~6アルキレンであり、
R3およびR3’は、それぞれ独立して、任意に置換された直鎖または分枝鎖C1~6アルキルであるか、
あるいは、R2が任意に置換された分枝鎖C1~6アルキレンである場合、R2およびR3は、それらの介在するN原子と一緒になって、4員~8員のヘテロシクリルを形成するか、
あるいは、R2’が任意に置換された分枝鎖C1~6アルキレンである場合、R2’およびR3’は、それらの介在するN原子と一緒になって、4員~8員のヘテロシクリルを形成し、
R4およびR4’は、それぞれ独立して、-CRa、-C(Ra)2CRa、または-[C(Ra)2]2CRaであり、
Raは、各出現に対して、独立してHまたはC1~3アルキルであるか、
あるいは、R4が-C(Ra)2CRa、または-[C(Ra)2]2CRaである場合、かつRaがC1~3アルキルである場合、R3およびR4は、それらの介在するN原子と一緒になって、4員~8員のヘテロシクリルを形成するか、
あるいは、R4’が-C(Ra)2CRa、または-[C(Ra)2]2CRaである場合、かつRaがC1~3アルキルである場合、R3’およびR4’は、それらの介在するN原子と一緒になって、4員~8員のヘテロシクリルを形成し、
R5およびR5’は、それぞれ独立して、C1~20アルキレンまたはC2~20アルケニレンであり、
R6およびR6’は、各出現に対して、独立してC1~20アルキレン、C3~20シクロアルキレン、またはC2~20アルケニレンであり、
mおよびnは、それぞれ独立して、1、2、3、4、および5から選択される整数である。
本明細書で使用される場合、「アルキル」という用語は、1~20個の炭素原子の飽和一価炭化水素ラジカル(すなわち、C1~20アルキル)を指す。「一価」とは、アルキルが分子の残りの部分に1つの結合点を有していることを意味する。一実施形態では、アルキルは、1~12個の炭素原子(すなわち、C1~12アルキル)、または1~10個の炭素原子(すなわち、C1~10アルキル)を有する。一実施形態では、アルキルは、1~8個の炭素原子(すなわち、C1~8アルキル)、1~7個の炭素原子(すなわち、C1~7アルキル)、1~6個の炭素原子(すなわち、C1~6アルキル)、1~4個の炭素原子(すなわち、C1~4アルキル)、または1~3個の炭素原子(すなわち、C1~3アルキル)を有する。例としては、メチル、エチル、1-プロピル、2-プロピル、1-ブチル、2-メチル-1-プロピル、2-ブチル、2-メチル-2-プロピル、1-ペンチル、2-ペンチル、3-ペンチル、2-メチル-2-ブチル、3-メチル-2-ブチル、3-メチル-1-ブチル、2-メチル-1-ブチル、1-ヘキシル、2-ヘキシル、3-ヘキシル、2-メチル-2-ペンチル、3-メチル-2-ペンチル、4-メチル-2-ペンチル、3-メチル-3-ペンチル、2-メチル-3-ペンチル、2,3-ジメチル-2-ブチル、3,3-ジメチル-2-ブチル、1-ヘプチル、1-オクチルなどが挙げられるが、これらに限定されない。「直鎖または分枝鎖C1~6アルキル」、「直鎖または分枝鎖C1~4アルキル」、もしくは「直鎖または分枝鎖C1~3アルキル」などの直鎖または分枝鎖アルキルは、飽和一価炭化水素ラジカルが直鎖または分枝鎖であることを意味する。
本明細書で提供されるのは、式(I):
R1およびR1’は、それぞれ独立して、C1~3アルキレンであり、
R2およびR2’は、それぞれ独立して、直鎖または分枝鎖C1~6アルキレン、またはC3~6シクロアルキレンであり、
R3およびR3’は、それぞれ独立して、任意に置換されたC1~6アルキル、または任意に置換されたC3~6シクロアルキルであるか、
あるいは、R2が分枝鎖C1~6アルキレンである場合、かつR3がC1~6アルキルである場合、R2およびR3は、それらの介在するN原子と一緒になって、4員~8員のヘテロシクリルを形成するか、
あるいは、R2’が分枝鎖C1~6アルキレンである場合、かつR3’がC1~6アルキルである場合、R2’およびR3’は、それらの介在するN原子と一緒になって、4員~8員のヘテロシクリルを形成し、
R4およびR4’は、それぞれ独立して、-CH、-CH2CH、または-(CH2)2CHであり、
R5およびR5’は、それぞれ独立して、C1~20アルキレンまたはC2~20アルケニレンであり、
R6およびR6’は、各出現に対して、独立してC1~20アルキレン、C3~20シクロアルキレン、またはC2~20アルケニレンであり、
mおよびnは、それぞれ独立して、1、2、3、4、および5から選択される整数である。
本開示は、治療用核酸(TNA)を送達するための脂質ベースのプラットフォームを提供する。本明細書で使用される場合、「核酸治療」、「治療用核酸」および「TNA」という語句は、交換可能に使用され、疾患または障害を治療するための治療剤の活性成分として核酸を使用する治療の任意のモダリティを指す。TNAは、RNAベースの治療薬およびDNAベースの治療薬を指す。RNAベースの治療薬の非限定的な例は、mRNA、アンチセンスRNAおよびオリゴヌクレオチド、リボザイム、アプタマー、干渉RNA(RNAi)、ダイサー基質dsRNA、低分子ヘアピンRNA(shRNA)、非対称干渉RNA(aiRNA)、マイクロRNA(miRNA)を含む。DNAベースの治療薬の非限定的な例としては、ミニサークルDNA、ミニ遺伝子、ウイルスDNA(例えば、レンチウイルスまたはAAVゲノム)または非ウイルスDNAベクター、閉端直鎖状二重鎖DNA(ceDNA/CELiD)、プラスミド、バクミド、doggybone(商標)DNAベクター、最小限の免疫学的に定義された遺伝子発現(MIDGE)-ベクター、非ウイルスミニストリングDNAベクター(直鎖状の共有結合的に閉じたDNAベクター)、またはダンベル型DNA最小ベクター(「ダンベルDNA」)が挙げられる。したがって、本開示の態様は、一般に、TNAを含むイオン化可能な脂質粒子(例えば、脂質ナノ粒子)を提供する。
本開示の例示的な治療用核酸としては、ミニ遺伝子、プラスミド、ミニサークル、低分子干渉RNA(siRNA)、マイクロRNA(miRNA)、アンチセンスオリゴヌクレオチド(ASO)、リボザイム、閉端二本鎖DNA(例えば、ceDNA、CELiD、直鎖状の共有結合的に閉じたDNA(「ミニストリング」)、doggybone(商標)、プロテロメア閉端DNA、またはダンベル直鎖状DNA)、ダイサー基質dsRNA、低分子ヘアピンRNA(shRNA)、非対称干渉RNA(aiRNA)、マイクロRNA(miRNA)、mRNA、tRNA、rRNA、およびDNAウイルスベクター、ウイルスRNAベクター、ならびにそれらの任意の組み合わせを挙げることができるが、これらに限定されない。
本明細書に記載されるように、ceDNAベクターは、共有結合性末端(直鎖状で連続的な非カプシド構造)を有する相補的DNAの連続鎖から形成されたカプシド不含直鎖状二重鎖DNA分子であり、異なるか、または互いに対して非対称である5’逆位末端反復(ITR)配列および3’ITR配列を含む。ITRのうち少なくとも1つは、機能的末端分解部位および複製タンパク質結合部位(RPS)(複製タンパク質結合部位と呼ばれることもある)、例えば、Rep結合部位を含む。一般に、ceDNAベクターは、少なくとも1つの修飾型AAV逆位末端反復配列(ITR)、すなわち、他のITRに対する欠失、挿入、および/または置換、ならびに発現可能な導入遺伝子を含有する。
上記のものを含む好適なプロモーターは、ウイルスに由来し得るため、ウイルスプロモーターと称され得るか、またはそれらは、原核生物または真核生物を含む任意の生物に由来し得る。好適なプロモーターを使用して、任意のRNAポリメラーゼ(例えば、pol I、pol II、pol III)によって発現を駆動することができる。例示的なプロモーターとしては、SV40初期プロモーター、マウス乳腺腫瘍ウイルスの長い末端反復(LTR)プロモーター、アデノウイルス主要後期プロモーター(Ad MLP)、単純ヘルペスウイルス(HSV)プロモーター、CMV最初期プロモーター領域(CMVTE)などのサイトメガロウイルス(CMV)プロモーター、ラウス肉腫ウイルス(RSV)プロモーター、ヒトU6小核プロモーター(U6、例えば、(Miyagishi el al.,Nature Biotechnology 20,497-500(2002))、強化U6プロモーター(例えば、Xia et al.,Nucleic Acids Res.2003 Sep.1;31(17))、ヒトH1プロモーター(H1)、CAGプロモーター、ヒトα1-抗トリプシン(HAAT)プロモーター(例えば、など)が挙げられるが、これらに限定されない。一実施形態では、これらのプロモーターは、それらの下流イントロン含有端で変更されて、1つ以上のヌクレアーゼ切断部位を含む。一実施形態では、ヌクレアーゼ切断部位を含有するDNAは、プロモーターDNAに対して外来である。
ポリアデニル化配列をコードする配列は、ceDNAベクターから発現されたmRNAを安定化するため、および核輸送および翻訳を助けるために、ceDNAベクター中に含まれ得る。一実施形態では、ceDNAベクターは、ポリアデニル化配列を含まない。他の実施形態では、ベクターは、少なくとも1、少なくとも2、少なくとも3、少なくとも4、少なくとも5、少なくとも10、少なくとも15、少なくとも20、少なくとも25、少なくとも30、少なくとも40、少なくとも45、少なくとも50以上のアデニンジヌクレオチドを含む。いくつかの実施形態では、ポリアデニル化配列は、約43ヌクレオチド、約40~50ヌクレオチド、約40~55ヌクレオチド、約45~50ヌクレオチド、約35~50ヌクレオチド、またはその間の任意の範囲を含む。
本明細書で定義される非対称ITR対または対称ITR対を含む本明細書に記載のceDNAベクターの産生のための方法は、2018年9月7日に出願されたPCT/US18/49996のセクションIVに記載されており、これは参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。本明細書に記載されるように、ceDNAベクターは、例えば、a)ポリヌクレオチド発現構築物テンプレート(例えば、ceDNA-プラスミド、ceDNA-バクミド、および/またはceDNA-バキュロウイルス)を内包する宿主細胞(例えば、昆虫細胞)の集団をインキュベートするステップであって、Repタンパク質の存在下では、宿主細胞内のceDNAベクターの産生を誘導するために効果的な条件下、かつそのために十分な時間にわたってウイルスカプシドコード配列を欠いており、宿主細胞が、ウイルスカプシドコード配列を含まない、インキュベートするステップと、b)ceDNAベクターを宿主細胞から採取し、単離するステップと、を含むプロセスによって取得され得る。Repタンパク質の存在は、修飾型ITRを有するベクターポリヌクレオチドの複製を誘導して、宿主細胞中でceDNAベクターを産生する。
脂質粒子(例えば、脂質ナノ粒子)は、TNA(例えば、ceDNA)および脂質の混合時に自発的に形成することができる。所望の粒子サイズ分布に応じて、得られたナノ粒子混合物は、例えば、Lipex Extruder(Northern Lipids,Inc)などのサーモバレル押出機を使用して、膜(例えば、100nmカットオフ)を通して押し出すことができる。場合によっては、押し出しステップは省略することができる。エタノール除去および同時緩衝液交換は、例えば、透析またはタンジェンシャル・フロー・フィルトレーションによって達成され得る。
本明細書では、TNA脂質粒子および薬学的に許容される担体または賦形剤を含む薬学的組成物もまた提供される。
一実施形態では、薬学的組成物は、単位剤形で提示され得る。単位剤形は、典型的に、薬学的組成物の1つ以上の投与経路に適合されるであろう。いくつかの実施形態では、単位剤形は、吸入による投与のために適合される。いくつかの実施形態では、単位剤形は、吸入器による投与のために適合される。いくつかの実施形態では、単位剤形は、噴霧器による投与のために適合される。いくつかの実施形態では、単位剤形は、エアロゾル化器による投与のために適合される。いくつかの実施形態では、単位剤形は、経口投与のため、頬側投与のため、または舌下投与のために適合される。いくつかの実施形態では、単位剤形は、静脈内、筋肉内、または皮下投与のために適合される。いくつかの実施形態では、単位剤形は、髄腔内または脳室内投与のために適合される。いくつかの実施形態では、薬学的組成物は、局所投与のために製剤化される。単一剤形を産生するために担体材料と組み合わされ得る活性成分の量は、一般に、治療効果をもたらす化合物の量となるであろう。
本明細書に記載されるイオン化可能な脂質組成物および方法(例えば、本明細書に記載のTNA脂質粒子(例えば、脂質ナノ粒子))を使用して、宿主細胞に核酸配列(例えば、治療用核酸配列)を導入することができる。一実施形態では、TNA LNP(例えば、本明細書に記載されるceDNAベクター脂質粒子(例えば、脂質ナノ粒子))を使用する宿主細胞への核酸配列の導入を、治療された患者からの適切なバイオマーカーでモニタリングして、遺伝子発現を評価することができる。
一実施形態では、TNA LNP(例えば、本明細書に記載のceDNAベクター脂質粒子)は、インビボでの細胞の形質導入のために生物に投与することができる。一実施形態では、TNA LNP(例えば、本明細書に記載のceDNAベクター脂質粒子(例えば、脂質ナノ粒子))は、エクスビボでの細胞の形質導入のために生物に投与することができる。
一般的な合成(例えば、R4=-C)
本明細書に記載のイオン化可能な脂質の合成は、脂質酸(a)から開始することができる。N,O-ジメチルヒドロキシルアミンにカップリングすると、ワインレブアミド(b)が得られる。グリニャール付加によりケトン(c)が生成される。チタンを介した還元的アミノ化により、タイプ(d)の生成物が得られ、これは、一般構造(e)のジスルフィドと反応し、両方の末端アルコールが脱離基、すなわちメタンスルホニル基を有し、一般構造(f)の最終生成物を生成する。
CH2Cl2(150ml)中のオレイン酸(5.0g、17.7mmol)の撹拌溶液に、DMAP(2.16g、17.7mmol)、続いてEDCI(4.75g、24.7mmol)を添加した。次に、メチルアミン(13.28mL、26.5mmol)を添加し、得られた混合物を室温で一晩撹拌した。続いて、反応混合物を300mLのCH2Cl2で希釈し、有機層を水およびブラインで洗浄した。有機層を無水Na2SO4で乾燥させ、蒸発乾固させ、溶離液としてヘキサン中の5~50%EtOAcを使用するISCOクロマトグラフィーによって精製した。所望の化合物を含む画分をプールし、蒸発させて、1(4.2g、80.3%)を得た。
化合物1(4.2g、14.21mmol)をTHF(100mL)に溶解し、0℃に冷却した。次いで、LiAlH4(1.62g、42.64mmol)を数回に分けて添加した。添加後、反応混合物を室温に到達させ、50℃で一晩加熱した。続いて、反応物を0℃に冷却し、LiAlH4がクエンチされるまで水を滴加した。次に、反応混合物をセライトで濾過し、蒸発させて、所望の生成物2(3.92g、98%)を得た。
市販の2,2’-ジスルファンジイルビス(エタン-1-オール)1’(15g、97.2mmol)をアセトニトリル(143ml)に溶解し、続いてNEt3(33.3g、328mmol)を添加した。反応混合物にMsCl(34.5g、300mmol)を0℃で滴加した。得られた反応混合物を、室温で3時間撹拌した。反応混合物にEtOH(39ml)を添加して反応をクエンチし、不溶性物質を濾過により除去した。濾液をジクロロメタン(150ml)と10%重炭酸ナトリウム水(150ml)との間で分配した。有機層を100mlの水で4回洗浄し、MgSO4で乾燥させ、蒸発させて、2’を褐色油状物として得(25g、81%)、これは静置すると固化した。
化合物2(0.2g、0.64mmol)をCH3CN(3mL)に溶解し、Cs2CO3(0.32g、1.28mmol)を添加した。次いで、CH3CN中の化合物2’(0.725g、2.56mmol)の溶液を反応混合物に滴加し、室温で一晩撹拌した。続いて、溶媒を蒸発させ、化合物をISCOクロマトグラフィー(CH2Cl2中の0~10%MeOH(3%NH))によって精製して、生成物脂質31(0.13g、31%)を回収した。1H NMR(300MHz、d-クロロホルム) δ 5.34(t、J=4.8Hz、4H)、2.80(dd、J=9.0、5.4Hz、4H)、2.67(dd、J=9.1、5.5Hz、4H)、2.44-2.30(m、4H)、2.24(s、4H)、2.06-1.93(m、8H)、1.44(d、J=6.1Hz、4H)、1.27(d、J=4.9Hz、46H)、0.87(t、J=6.5Hz、6H)。[C42H84N2S2]についてのMS実測値681.6[M+H]+、計算値680.61。
オレイルメタンスルホネート(5.0g、14.4mmol)を密閉チューブに量り取り、50mLのメチルアミン(THF中2M)を添加した。反応混合物を、室温で16時間撹拌した。次いで、溶媒を蒸発させ、次のステップで直接使用した。
化合物2a-2を密閉チューブ内でトルエンに溶解し、N2で5分間パージした。次いで、硫化エチレン(1.28mL、21.6mmol)を添加し、混合物を50℃で24時間加熱した。次いで、反応混合物を真空中で濃縮し、直ちに次のステップで使用した。
化合物2a-2を50mLのCHCl3に溶解し、2,2’-ジピリジルジスルフィド(4.0g、18.2mmol)を添加し、室温で16時間撹拌した。次いで、反応混合物を真空中で濃縮し、ISCOクロマトグラフィー(ヘキサン:EtOAc 0~15%)によって精製した。
ジクロロメタン(50mL)中のオレイン酸(5.0g、17.7mmol)の溶液に、DIPEA(9.2mL、53.1mmol)、およびHATU(10.1g、26.5mmol)を添加し、混合物を室温で15分間撹拌した。次いで、N,O-ジメチルヒドロキシルアミン塩酸塩(4.89g、53.1mmol)を添加し、室温で一晩撹拌した。続いて、反応混合物をEtOAcで希釈し、水、ブラインで洗浄し、無水Na2SO4で乾燥させた。溶媒を真空下で蒸発させ、残留物をISCOクロマトグラフィー(ヘキサン:EtOAc 0~30%)によって精製した。所望の化合物を含有する画分を蒸発させて、1a-1(4.2g、73%)を得た。
ジクロロメタン(100mL)に溶解したジエチル亜鉛の溶液(54mmol、1M溶液54mL)を0℃に冷却した。次いで、溶液をTFA(4.12mL、54mmol)を滴加して処理した。30分後、ジヨードメタン(4.34mL、54.mmol)を添加し、これを氷浴中で30分間エージングさせた。この溶液にワインレブアミド(1a-1)(5.8g、17.8mmol)を添加した。反応物を周囲温度に温め、1時間撹拌した。反応物を塩化アンモニウム溶液でクエンチし、有機層を分別し、10%チオ硫酸ナトリウムで洗浄し、無水Na2SO4で乾燥させた。次いで、溶媒を真空下で蒸発させ、残渣をISCOクロマトグラフィー(ヘキサン:EtOAc 0~20%)によって精製した。所望の化合物を含有する画分を蒸発させて、1a-2(5.8g、78%)を得た。
化合物1a-2(1.0g、2.95mmol)をTHF(6mL)に溶解し、次いで臭化ノニルマグネシウム(5.9mL、5.9mmol、Et2O中1M)を窒素雰囲気下、室温で滴加した。1時間撹拌した後、NH4Cl溶液を添加することにより反応物をクエンチした。生成物をヘキサンで抽出し、有機層を水で洗浄し、有機層を無水Na2SO4で乾燥させた。次いで、溶媒を真空下で蒸発させ、残渣をISCOクロマトグラフィー(ヘキサン:EtOAc 0~5%)によって精製した。所望の化合物を含有する画分を蒸発させて、1a-3(0.85g、72%)を得た。
化合物1a-3(0.85g、2.1mmol)を密閉チューブ内で10mLのTHFに溶解し、0℃に冷却し、メチルアミン(2.6mL、5.22mmol)を添加した。密閉した反応混合物を、室温で16時間撹拌した。次いで、反応混合物を0℃に冷却し、NaBH4(0.214g、5.67mmol)を添加し、一晩撹拌した。続いて、反応物を水でクエンチし、生成物をEtOAcで抽出し、有機層を無水Na2SO4で乾燥させた。次いで、溶媒を真空下で蒸発させ、残渣をISCOクロマトグラフィー(CH2Cl2:MeOH 0~10%)によって精製した。
化合物1a-4(0.4g、0.94mmol)を密閉チューブ内のトルエン(5mL)に溶解し、N2で5分間パージした。次いで、硫化エチレン(0.09mL、1.41mmol)を添加し、混合物を50℃で24時間加熱した。次いで、反応混合物を真空中で濃縮し、精製することなく次のステップで使用した。
化合物1a-5および2a-4を10mLのCHCl3に溶解し、室温で撹拌した。完了後、溶媒を真空で蒸発させ、ISCOクロマトグラフィー(CH2Cl2:10%MeOH 0~50%)によって精製した。1H NMR(300MHz、d-クロロホルム) δ 5.35(t、J=4.9Hz、2H)、2.85-2.75(m、4H)、2.74-2.59(m、4H)、2.41-2.29(m、4H)、2.23(d、J=13.3Hz、6H)、2.01(d、J=5.5Hz、4H)、1.31(d、J=25.3Hz、69H)、0.97-0.81(m、9H)、0.64(s、2H)、0.57(dd、J=7.1、3.9Hz、1H)、-0.28--0.42(m、1H)。[C52H104N2S2]についてのMS実測値821.7[M+H]+、計算値820.76。
60mlの無水THF中のNaH(1.6g、40.3mmol)の懸濁液に、エチル2-(ジエトキシホスホリル)アセテート(9.2ml、46mmol)を0℃で滴加した。得られた混合物を0℃で30分間撹拌して、透明な溶液を得た。この溶液に1a-3(2.25g、5.75mmol)を添加した後、還流下で2日間撹拌した。反応混合物を室温に冷却し、水でクエンチし、エーテルで抽出した。合わせた有機層を、ヘキサン中の1%酢酸エチルを使用するカラムクロマトグラフィーによって精製して、1b-1(2.4g、91%)を無色油状物として得た。1H-NMR(300MHz、d-クロロホルム):δ 5.6(s、1H)、5.30-5.40(m、2H)、4.15(q、2H)、2.58(t、3H)、2.12(m、3H)、1.26-1.50(m、40H)、0.89(m、6H)。
THF中の1b-1(2.0g、4mmol)の溶液に、ラネー-Ni(2.0g)を添加した。得られた混合物を、大気圧で一晩水素化した。触媒を濾過により除去し、濾液を蒸発させて、1b-2(2.1g、100%)を無色油状物として得た。1H-NMR(300MHz、d-クロロホルム):δ 4.13(q、2H)、2.20(m、3H)、1.26-1.50(m、44H)、0.89(m、6H)、0.50-0.70(m、3H)、-0.35(m、1H)。
20mlのTHF中の1b-2(1.9g、4mmol)の溶液に、1NのNaOH 20mlを添加した。得られた混合物を還流下で3日間撹拌した後、室温に冷却し、1NのHClで中和した。反応混合物を、ジクロロメタンで抽出した。合わせた有機層を蒸発させ、溶離液としてヘキサン中の0~20%酢酸エチルを使用するカラムクロマトグラフィーによって精製して、1b-3(1.0g、83%)を得た。1H-NMR(300MHz、d-クロロホルム):δ 2.28(m、3H)、1.26-1.50(m、44H)、0.89(m、6H)、0.50-0.70(m、3H)、-0.35(m、1H)。
30mlのジクロロメタンの溶液に、1b-3(1.5g、3.3mmol)、THF中の2Mメチルアミン(3.5ml、7mmol)、HATU(1.33g、3.4mmol)およびDIPEA(0.85g、6.6mmol)を添加した。得られた混合物を室温で一晩撹拌し、1NのHCl、飽和NaHCO3および水で洗浄した。有機層を、溶離液としてヘキサン中の5~25%酢酸エチルを使用するカラムクロマトグラフィーによって精製して、1b-4(1.45g、94%)を得た。1H-NMR(300MHz、d-クロロホルム):δ 5.2(br、1H)、2.80(s、3H)、2.28(m、3H)、1.26-1.50(m、44H)、0.89(m、6H)、0.50-0.70(m、3H)、-0.35(m、1H)。
15mlの無水THF中の1b-4(750mg、1.6mmol)の溶液に、2MのLiAlH4(1.5ml、3mmol)を添加した。得られた混合物を還流下で2時間撹拌し、Na2SO4.10H2Oでクエンチし、濾過した。濾液を蒸発させて、1b-5(577mg、70%)を無色油状物として得た。1H-NMR(300MHz、d-クロロホルム):δ 2.54(m、3H)、1.0-1.6(m、44H)、0.87(m、6H)、0.50-0.70(m、3H)、-0.35(m、1H)。
化合物1a-5(0.5g、1.14mmol)を密閉チューブ内のトルエン(5mL)に溶解し、N2で5分間パージした。次いで、硫化エチレン(0.08mL、1.26mmol)を添加し、混合物を50℃で24時間加熱した。次いで、反応混合物を真空中で濃縮し、精製することなく次のステップで使用した。
化合物1b-6(0.3g、0.39mmol)および2a-4(0.2g、0.43mmol)を10mLのCHCl3に溶解し、室温で撹拌した。完了後、溶媒を真空で蒸発させ、ISCOクロマトグラフィー(CH2Cl2:10%MeOH 0~50%)によって精製した。1H NMR(300MHz、d-クロロホルム) δ 5.34(t、J=4.9Hz、2H)、2.81(t、J=5.1Hz、4H)、2.67(dd、J=9.0、5.5Hz、4H)、2.41-2.31(m、4H)、2.24(s、6H)、2.06-1.94(m、4H)、1.25(s、71H)、0.87(t、J=6.6Hz、9H)、0.64(d、J=5.2Hz、2H)、0.59-0.50(m、1H)、-0.34(q、J=5.0Hz、1H)。)。[C54H108N2S2]についてのMS実測値849.7[M+H]+、計算値848.80。
15mlの無水エーテルに、1a-1(1.53g、4.7mmol)を溶解した。この溶液に、1Mの臭化ノニルマグネシウム溶液(9.4ml、12mmol)を0℃で滴加した。得られた混合物を室温で2時間撹拌し、飽和塩化アンモニウム溶液中でクエンチし、ヘキサンで抽出した。有機層をMgSO4で乾燥させた後、溶離液としてヘキサン中の0~20%酢酸エチルを使用するカラムクロマトグラフィーによって精製して、1c-1(1.14g、62%)を白色固体として得た。1H-NMR(300MHz、d-クロロホルム):δ 5.32-5.36(m、2H)、2.35-2.40(t、4H)、1.99-2.12(m、4H)、1.53-1.54(m、4H)、1.10-1.40(m、32H)、0.83-0.89(t、6H)。
化合物1c-1(2.5g、6.4mmol)を密閉チューブ内の10mLのEtOHに溶解し、10mLのEtOH中の30%メチルアミン(2.6mL、5.22mmol)を室温で添加した。密閉した反応混合物を、室温で6時間撹拌した。次いで、反応混合物を0℃に冷却し、NaBH4(0.73g、19.2mmol)を添加し、一晩撹拌した。続いて、反応物を水でクエンチし、生成物をEtOAcで抽出し、有機層を無水Na2SO4で乾燥させた。次いで、溶媒を真空下で蒸発させ、残渣をISCOクロマトグラフィー(CH2Cl2:MeOH 0~10%)によって精製した。
化合物1c-2(0.5g、1.22mmol)を密閉チューブ内のトルエン(5mL)に溶解し、N2で5分間パージした。次いで、硫化エチレン(0.11mL、1.83mmol)を添加し、混合物を50℃で24時間加熱した。次いで、反応混合物を真空中で濃縮し、精製することなく次のステップで使用した。
化合物1b-4(0.4g、0.85mmol)および2a-4(0.43g、0.93mmol)を10mLのCHCl3に溶解し、室温で撹拌した。完了後、溶媒を真空で蒸発させ、ISCOクロマトグラフィー(CH2Cl2:10%MeOH 0~50%)によって精製した。1H NMR(301MHz、d-クロロホルム) δ 5.34(t、J=4.9Hz、4H)、2.84-2.74(m、4H)、2.74-2.59(m、4H)、2.43-2.31(m、3H)、2.23(d、J=13.7Hz、6H)、2.09-1.91(m、8H)、1.26(s、64H)、0.88(t、J=6.5Hz、9H)。[C51H102N2S2]についてのMS実測値807.7[M+H]+、計算値806.75。
60mlの無水THF中のNaH(1.6g、40.3mmol)の懸濁液に、8(9.2ml、46mmol)を0℃で滴加した。得られた混合物を0℃で30分間撹拌して、透明な溶液を得た。この溶液に4(2.25g、5.75mmol)を添加した後、還流下で2日間撹拌した。反応混合物を室温に冷却し、水でクエンチし、エーテルで抽出した。合わせた有機層を、ヘキサン中の1%酢酸エチルを使用するカラムクロマトグラフィーによって精製して、1d-1(2.3g、88%)を無色油状物として得た。1H-NMR(300MHz、d-クロロホルム):δ 5.6(s、1H)、4.15(q、2H)、2.58(t、3H)、2.12(m、3H)、1.26-1.50(m、40H)、0.89(m、6H)、0.50-0.70(m、3H)、-0.35(m、1H)。
THF中の1d-1(2.0g、4mmol)の溶液に、ラネー-Ni(2.0g)を添加した。得られた混合物を、大気圧で一晩水素化した。触媒を濾過により除去し、濾液を蒸発させて、1d-2(2.1g、100%)を無色油状物として得た。1H-NMR(300MHz、d-クロロホルム):δ 4.13(q、2H)、2.20(m、3H)、1.26-1.50(m、44H)、0.89(m、6H)、0.50-0.70(m、3H)、-0.35(m、1H)。
水(100mL)およびTHF(30ml)中の1d-2(3.0g、6.45mmol)の溶液に、10当量のNaOH溶液を添加し、72時間還流した。次いで、反応混合物を1NのHCl溶液を添加することにより中和した。生成物をEtOAcで2回抽出し、ブラインで洗浄し、無水Ns2SO4で乾燥させた。合わせた有機層をISCOクロマトグラフィー(ヘキサン:EtOAc 40~100%)によって精製して、2.1gの1d-3(75%)を得た。
CH2Cl2(50ml)中の1d-3(2.1g、4.8mmol)の撹拌溶液に、DMAP(0.58g、4.8mmol)、続いてEDCI(1.29g、6.72mmol)を添加した。次いで、メチルアミン(3.7mL、7.2mmol)を添加し、得られた混合物を室温で一晩撹拌した。続いて、反応混合物を300mLのCH2Cl2で希釈し、有機層を水およびブラインで洗浄した。有機層を無水Na2SO4で乾燥させ、蒸発乾固させ、溶離液としてヘキサン中の5~50%EtOAcを使用するISCOクロマトグラフィーによって精製した。所望の化合物を含有する画分をプールし、蒸発させて、1d-4(1.5g、80.3%)を得た。
化合物1d-4(1.5g、3.44mmol)をTHF(100mL)に溶解し、0℃に冷却した。次いで、LiAlH4(0.4g、10.32mmol)を数回に分けて添加した。添加後、反応混合物を室温に到達させ、50℃で一晩加熱した。続いて、反応物を0℃に冷却し、LiAlH4がクエンチされるまで水を滴加した。次いで、反応混合物をセライトで濾過し、溶媒を蒸発乾固させ、ISCOクロマトグラフィー(CH2Cl2:MeOH(2%NH3)0~100%)によって精製して、所望の生成物1d-5(0.93g、62%)を得た。
化合物1d-6(0.5g、1.14mmol)を密閉チューブ内のトルエン(5mL)に溶解し、N2で5分間パージした。次いで、硫化エチレン(0.11mL、1.2mmol)を添加し、混合物を50℃で24時間加熱した。次いで、反応混合物を真空中で濃縮し、精製することなく次のステップで使用した。
化合物1d-6(0.2g、0.40mmol)および2a-4(0.28g、0.6mmol)を10mLのCHCl3に溶解し、室温で撹拌した。完了後、溶媒を真空で蒸発させ、ISCOクロマトグラフィー(CH2Cl2:10%MeOH 0~50%)によって精製した。1H NMR(300MHz、d-クロロホルム) δ 5.34(t、J=4.8Hz、4H)、2.84-2.72(m、4H)、2.72-2.59(m、4H)、2.40-2.29(m、4H)、2.23(d、J=7.6Hz、6H)、2.04-1.91(m、8H)、1.26(s、69H)、0.87(t、J=6.6Hz、9H)。[C53H106N2S2]についてのMS実測値835.8[M+H]+、計算値834.78。
60mlの無水エーテルに、1a-1(5g、14.7mmol)を溶解した。この溶液に、1Mの臭化ヘプチルマグネシウム溶液(30ml、30mmol)を0℃で滴加した。得られた混合物を室温で2時間撹拌し、飽和塩化アンモニウム溶液中でクエンチし、ヘキサンで抽出した。有機層をMgSO4で乾燥させた後、溶離液としてヘキサン中の0~20%酢酸エチルを使用するカラムクロマトグラフィーによって精製して、1e-1(4g、75%)を白色固体として得た。1H-NMR(300MHz、d-クロロホルム):δ 5.32-5.36(m、2H)、2.40(t、4H)、1.99-2.02(m、4H)、1.53-1.58(m、4H)、1.10-1.40(m、28H)、0.83-0.89(t、6H)。
エタノール(4.5ml)中の33%メチルアミンの溶液に、5mlエタノール中の1e-1(1g、2.7mmol)の溶液を添加した。得られた混合物を、室温で8時間撹拌した。上記の溶液に、NaBH4(300mg、7.5mmol)を0℃で添加した。得られた混合物を、室温で一晩撹拌した後、水でクエンチした。反応溶媒を蒸発させ、残渣を、溶離液として酢酸エチル中のメチルアミンを使用するカラムクロマトグラフィーによって精製して、1e-2(510mg、49%)を淡黄色油状物として得た。1H-NMR(300MHz、d-クロロホルム):δ 5.33-5.34(m、2H)、2.39(m、4H)、1.97-2.01(m、4H)、1.10-1.50(m、42H)、0.85-0.87(t、6H)。
化合物1e-2(0.5g、1.30mmol)を密閉チューブ内のトルエン(5mL)に溶解し、N2で5分間パージした。次いで、硫化エチレン(0.08mL、1.36mmol)を添加し、混合物を50℃で24時間加熱した。次いで、反応混合物を真空中で濃縮し、精製することなく次のステップで使用した。
化合物1e-3(0.27g、0.61mmol)および2a-4(0.30g、0.64mmol)を5mLのCHCl3に溶解し、室温で撹拌した。完了後、溶媒を真空で蒸発させ、ISCOクロマトグラフィー(CH2Cl2:10%MeOH 0~50%)によって精製した。1H NMR(300MHz、d-クロロホルム) δ 5.35(t、J=4.8Hz、4H)、2.78(dd、J=7.9、4.0Hz、4H)、2.75-2.62(m、4H)、2.42-2.31(m、3H)、2.23(d、J=13.6Hz、6H)、2.07-1.94(m、8H)、1.27(d、J=4.1Hz、61H)、0.88(t、J=6.6Hz、9H)。[C49H98N2S2]についてのMS実測値779.7[M+H]+、計算値778.72。
N-メチルオクタデシルアミン(1.5g、5.30mmol)を密閉チューブ内のトルエン(10mL)に溶解し、N2で5分間パージした。次いで、硫化エチレン(0.32mL、5.83mmol)を添加し、混合物を50℃で24時間加熱した。次いで、反応混合物を真空中で濃縮し、精製することなく次のステップで使用した。
化合物2b-1を50mLのCHCl3に溶解し、2,2’-ジピリジルジスルフィド(1.4g、6.36mmol)を添加し、室温で16時間撹拌した。次いで、反応混合物を真空中で濃縮し、ISCOクロマトグラフィー(ヘキサン:EtOAc 0~15%)によって精製した。
化合物1a-5および2b-2を、5mLのCHCl3に溶解し、室温で撹拌した。完了後、溶媒を真空で蒸発させ、ISCOクロマトグラフィー(CH2Cl2:10%MeOH 0~50%)によって精製した。1H NMR(300MHz、d-クロロホルム) δ 2.93-2.75(m、4H)、2.68(dd、J=9.1、5.9Hz、4H)、2.42-2.31(m、4H)、2.25(d、J=2.2Hz、6H)、1.26(s、80H)、0.88(dd、J=6.7、4.7Hz、9H)、0.65(s、2H)、0.58(dd、J=7.0、4.3Hz、1H)、-0.32(t、J=4.4Hz、1H)。[C54H110N2S2]についてのMS実測値851.8[M+H]+、計算値850.81。
リノレイルメタンスルホネート(5.0g、14.5mmol)を密閉チューブに量り取り、58mLのメチルアミン(THF中2M)を添加した。反応混合物を、室温で16時間撹拌した。次に、反応混合物を真空中で濃縮し、ISCOクロマトグラフィー(CH2Cl2:MeOH 0~10%)によって精製した。所望の化合物を含有する画分を蒸発させて、2c-1(2.5g、62%)を得た。
化合物2c-1(2.5g、8.90mmol)を密閉チューブ内のトルエン(10mL)に溶解し、N2で5分間パージした。次いで、硫化エチレン(0.54mL、9mmol)を添加し、混合物を50℃で24時間加熱した。次いで、反応混合物を真空中で濃縮し、精製することなく次のステップで使用した。
化合物2c-2を50mLのCHCl3に溶解し、2,2’-ジピリジルジスルフィド(5.5g、25mmol)を添加し、室温で16時間撹拌した。次いで、反応混合物を真空中で濃縮し、ISCOクロマトグラフィー(ヘキサン:EtOAc 0~30%)によって精製して、生成物2c-3(2.3g、58%)を回収した。
化合物1a-5および2c-2を、5mLのCHCl3に溶解し、室温で撹拌した。完了後、溶媒を真空で蒸発させ、ISCOクロマトグラフィー(CH2Cl2:10%MeOH 0~50%)によって精製した。1H NMR(300MHz、d-クロロホルム) δ 5.42-5.26(m、4H)、2.79(dt、J=10.4、5.8Hz、4H)、2.67(dd、J=8.9、5.4Hz、4H)、2.40-2.31(m、4H)、2.25(d、J=3.7Hz、6H)、2.04(q、J=6.5Hz、4H)、1.35-1.18(m、65H)、0.88(td、J=6.7、2.6Hz、9H)、0.69-0.61(m、2H)、0.56(dd、J=7.2、3.9Hz、1H)、-0.33(t、J=4.4Hz、1H)。[C54H110N2S2]についてのMS実測値847.8[M+H]+、計算値846.78。
ラットへの網膜下注射後の脂質39を含むLNPで製剤化した治療用核酸の安全性および導入遺伝子発現の評価
イオン化可能な脂質として脂質39(「LNP39」)を含む脂質ナノ粒子(LNP)に製剤化された治療用核酸(例えば、ceDNAベクター)の導入遺伝子発現を評価するために、ルシフェラーゼ遺伝子に操作可能に連結されたCAGプロモーターを含むceDNA(「CAG-Luc ceDNA」)をLNP中に封入し(脂質39:DOPC:コレステロール:DMG-PEG2000:DSPE-PEG2000、50.8:7.2:38.6:2.9:0.48のモル比)、Sprague Dawleyラット(雄)に注射した。LNPの平均直径は72.4nmで、封入効率はおよそ40%であった。上記のように、すべての試験品は、LNP製剤化ceDNA:イオン化可能な脂質として脂質39を含有する「CAG-ルシフェラーゼceDNA」であった。上述したように、脂質39は、(Z)-N-メチル-N-(2-((2-(メチル((Z)-オクタデカ-9-エン-1-イル)アミノ)エチル)ジスルファネイル)エチル)ペンタコサ-16-エン-8-アミンという名称のイオン化可能な脂質である。
動物は、麻酔前に最低3日間、試験環境に順応させた。順応期間の終了時に、各動物を身体検査して、試験参加への適合性を決定した。検査には、皮膚ならびに外耳、目、腹部、神経学的、行動、および全身の状態が含まれていた。健康であると決定された動物は、試験用に解放された。
外科的処置の日に、ラットにブプレノルフィン0.01~0.05mg/kgをSQ投与した。動物はまた、トロピカミド(1.0%)およびフェニレフリン(2.5%)のカクテルを局所的に与えられ、眼を拡張して眼球突出させた。次いで、ケタミン/キシラジンカクテルを用いて外科的処置のために動物を静置し、0.5%プロパラカインHCLを1滴両眼に適用した。無菌外科的処置のために眼を調製した。あるいは、ラットを吸入イソフルランで鎮静化した。角膜は局所洗眼器を使用して湿らせたままにし、体温は必要に応じてホットパッドを使用して維持した。
細隙灯生体顕微鏡を使用して眼の検査を行い、上記表に示す時点で眼の表面形態を評価した。以下のスコア表は、前眼部の炎症を評価するために使用した。
14日目に、すべての動物は、ルシフェラーゼ発現を定量化および決定するために、眼のIVISイメージング処置を受けた。基質ルシフェリンを腹腔内注射し(0.15mg/g)、注射後およそ5~10分でラットの画像を撮影した。各眼の周りの楕円体ROIから、全光束(光子/秒)、および平均放射輝度(光子/秒/cm/sr)の測定値が取得された。
すべての動物は、網膜下注射の成功および経時変化を決定するために、眼の後部のOCTイメージング処置を受けた。検査の15分前にOCTのために、トロピカミドHCL1%および塩酸フェニレフリン2.5%のカクテルを使用して眼を拡張した。外顆粒層(ONL)の厚さは、2回のOCTスキャンから3つの位置(左、右、および中央)で測定された。
図5に示されるように、脂質39:DOPC:コレステロール:DMG-PEG2000:DSPE―PEG2000、50.8:7.2:38.6:2.9:0.48のモルパーセンテージ比を有し、「CAG-Luc ceDNA」を封入するLNPを含有する2.5μLのLNP製剤(0.04μg/μL)(「LNP39」)を網膜下(SR)注射されたSprague Dawleyラットは、14日目にルシフェラーゼの顕著な発現を示した。ビヒクルで処置された動物および処置されなかった動物は、バックグラウンドレベルのみを示した。LNP39で処置されたすべての動物は、顕著な体重減少なしに用量に良好な耐容性を示した。
特許および特許出願を含むがこれらに限定されない、本明細書および本明細書の実施例で引用されるすべての刊行物および参考文献は、あたかも個々の刊行物または参考文献が、完全に記載されるように参照により本明細書に組み込まれることが具体的かつ個別に示されるかのように、それらの全体が参照により組み込まれる。この出願が優先権を主張する任意の特許出願もまた、刊行物および参考文献について上述した方法で、参照により本明細書に組み込まれる。
Claims (101)
- 式(I):
R1およびR1’が、それぞれ独立して、任意に置換された直鎖または分枝鎖C1~3アルキレンであり、
R2およびR2’が、それぞれ独立して、任意に置換された直鎖または分枝鎖C1~6アルキレンであり、
R3およびR3’が、それぞれ独立して、任意に置換された直鎖または分枝鎖C1~6アルキルであるか、
あるいは、R2が任意に置換された分枝鎖C1~6アルキレンである場合、R2およびR3が、それらの介在するN原子と一緒になって、4員~8員のヘテロシクリルを形成するか、
あるいは、R2’が任意に置換された分枝鎖C1~6アルキレンである場合、R2’およびR3’が、それらの介在するN原子と一緒になって、4員~8員のヘテロシクリルを形成し、
R4およびR4’が、それぞれ独立して、-CRa、-C(Ra)2CRa、または-[C(Ra)2]2CRaであり、
Raが、各出現に対して、独立してHまたはC1~3アルキルであるか、
あるいは、R4が-C(Ra)2CRa、または-[C(Ra)2]2CRaである場合、かつRaがC1~3アルキルである場合、R3およびR4が、それらの介在するN原子と一緒になって、4員~8員のヘテロシクリルを形成するか、
あるいは、R4’が-C(Ra)2CRa、または-[C(Ra)2]2CRaである場合、かつRaがC1~3アルキルである場合、R3’およびR4’が、それらの介在するN原子と一緒になって、4員~8員のヘテロシクリルを形成し、
R5およびR5’が、それぞれ独立して、C1~20アルキレンまたはC2~20アルケニレンであり、
R6およびR6’が、各出現に対して、独立してC1~20アルキレン、C3~20シクロアルキレン、またはC2~20アルケニレンであり、
mおよびnが、それぞれ独立して、1、2、3、4、および5から選択される整数である、イオン化可能な脂質、またはその薬学的に許容される塩。 - R1またはR1’によって表される前記直鎖または分枝鎖C1~3アルキレン、R2またはR2’によって表される前記直鎖または分枝鎖C1~6アルキレン、および前記任意に置換された直鎖または分枝鎖C1~6アルキルが、それぞれ任意に、1つ以上のハロおよびシアノ基で置換されている、請求項1に記載のイオン化可能な脂質。
- R2およびR2’が、それぞれ独立して、C1~3アルキレンである、請求項1に記載のイオン化可能な脂質。
- 一緒になったR1およびR2が、C1~3アルキレンであり、一緒になったR1’およびR2’が、C1~3アルキレンである、請求項3に記載のイオン化可能な脂質。
- 一緒になったR1およびR2が、エチレンであり、一緒になったR1’およびR2’が、エチレンである、請求項4に記載のイオン化可能な脂質。
- R3およびR3’が、それぞれ独立して、任意に置換されたC1~3アルキルである、請求項1に記載のイオン化可能な脂質。
- R3およびR3’が、それぞれメチルである、請求項6に記載のイオン化可能な脂質。
- R4およびR4’が、それぞれ-CHである、請求項1に記載のイオン化可能な脂質。
- R2が、任意に置換された分枝鎖C1~6アルキレンであり、R2およびR3が、それらの介在するN原子と一緒になって、5員または6員のヘテロシクリルを形成する、請求項1に記載のイオン化可能な脂質。
- R2’が、任意に置換された分枝鎖C1~6アルキレンであり、R2’およびR3’が、それらの介在するN原子と一緒になって、5員または6員のヘテロシクリルを形成する、請求項1に記載のイオン化可能な脂質。
- R4が、-C(Ra)2CRa、または-[C(Ra)2]2CRaであり、RaがC1~3アルキルであり、R3およびR4が、それらの介在するN原子と一緒になって、5員または6員のヘテロシクリルを形成する、請求項1に記載のイオン化可能な脂質。
- R4’が、-C(Ra)2CRa、または-[C(Ra)2]2CRaであり、RaがC1~3アルキルであり、R3’およびR4’が、それらの介在するN原子と一緒になって、5員または6員のヘテロシクリルを形成する、請求項1に記載のイオン化可能な脂質。
- 前記5員または6員のヘテロシクリルが、ピロリジニルまたはピペリジニルである、請求項9~12のいずれか一項に記載のイオン化可能な脂質。
- R5およびR5’が、それぞれ独立して、C1~10アルキレンまたはC2~10アルケニレンである、請求項1~13のいずれか一項に記載のイオン化可能な脂質。
- R6およびR6’が、各出現に対して、独立して、C1~10アルキレン、C3~10シクロアルキレン、またはC2~10アルケニレンである、請求項1~14のいずれか一項に記載のイオン化可能な脂質。
- 前記C3~10シクロアルキレンが、シクロプロピレンである、請求項15に記載のイオン化可能な脂質。
- mおよびnが、それぞれ3である、請求項15または16に記載のイオン化可能な脂質。
- 請求項1~19および101のいずれか一項に記載のイオン化可能な脂質と、核酸と、を含む、脂質ナノ粒子(LNP)。
- 前記核酸が、前記イオン化可能な脂質内に封入されている、請求項20に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記核酸が、ミニ遺伝子、プラスミド、ミニサークル、低分子干渉RNA(siRNA)、マイクロRNA(miRNA)、アンチセンスオリゴヌクレオチド(ASO)、リボザイム、ceDNA、ミニストリング、doggybone(商標)、プロテロメア閉端DNA、またはダンベル直鎖状DNA、ダイサー基質dsRNA、低分子ヘアピンRNA(shRNA)、非対称干渉RNA(aiRNA)、マイクロRNA(miRNA)、mRNA、tRNA、rRNA、DNAウイルスベクター、ウイルスRNAベクター、非ウイルスベクター、およびそれらの任意の組み合わせからなる群から選択される、請求項20または21に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記核酸が、閉端DNA(ceDNA)である、請求項22に記載の脂質ナノ粒子。
- ステロールをさらに含む、請求項20~23のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記ステロールが、コレステロールである、請求項24に記載の脂質ナノ粒子。
- ポリエチレングリコール(PEG)またはPEG-脂質コンジュゲートをさらに含む、請求項20~25のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記PEG-脂質コンジュゲートが、1-(モノメトキシ-ポリエチレングリコール)-2,3-ジミリストイルグリセロール(PEG-DMG)である、請求項26に記載の脂質ナノ粒子。
- 非カチオン性脂質をさらに含む、請求項20~27のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記非カチオン性脂質が、ジステアロイル-sn-グリセロ-ホスホエタノールアミン、ジステアロイルホスファチジルコリン(DSPC)、ジオレオイルホスファチジルコリン(DOPC)、ジパルミトイルホスファチジルコリン(DPPC)、ジオレオイルホスファチジルグリセロール(DOPG)、ジパルミトイルホスファチジルグリセロール(DPPG)、ジオレオイル-ホスファチジルエタノールアミン(DOPE)、パルミトイルオレオイルホスファチジルコリン(POPC)、パルミトイルオレオイルホスファチジルエタノールアミン(POPE)、ジオレオイル-ホスファチジルエタノールアミン4-(N-マレイミドメチル)-シクロヘキサン-1-カルボキシレート(DOPE-mal)、ジパルミトイルホスファチジルエタノールアミン(DPPE)、ジミリストイルホスホエタノールアミン(DMPE)、ジステアロイル-ホスファチジル-エタノールアミン(DSPE)、モノメチル-ホスファチジルエタノールアミン(16-O-モノメチルPEなど)、ジメチル-ホスファチジルエタノールアミン(16-O-ジメチルPEなど)、18-1-トランスPE、1-ステアロイル-2-オレオイル-ホスファチジエタノールアミン(SOPE)、水素化ダイズホスファチジルコリン(HSPC)、卵ホスファチジルコリン(EPC)、ジオレオイルホスファチジルセリン(DOPS)、スフィンゴミエリン(SM)、ジミリストイルホスファチジルコリン(DMPC)、ジミリストイルホスファチジルグリセロール(DMPG)、ジステアロイルホスファチジルグリセロール(DSPG)、ジエルコイルホスファチジルコリン(DEPC)、パルミトイルオレオイルホスファチジルグリセロール(POPG)、ジエライドイル-ホスファチジルエタノールアミン(DEPE)、1,2-ジラウロイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン(DLPE)、1,2-ジフィタノイル(diphytanoyl)-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン(DPHyPE)、レシチン、ホスファチジルエタノールアミン、リソレシチン、リゾホスファチジルエタノールアミン、ホスファチジルセリン、ホスファチジルイノシトール、スフィンゴミエリン、卵スフィンゴミエリン(ESM)、セファリン、カルジオリピン、ホスファチジカシド、セレブロシド、ジセチルホスフェート、リゾホスファチジルコリン、ジリノレオイルホスファチジルコリン、またはそれらの混合物からなる群から選択される、請求項28に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記非カチオン性脂質が、ジオレオイルホスファチジルコリン(DOPC)、ジステアロイルホスファチジルコリン(DSPC)、およびジオレオイル-ホスファチジルエタノールアミン(DOPE)からなる群から選択される、請求項29に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記PEGまたはPEG-脂質コンジュゲートが、約2%~約4%で存在する、請求項30に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記PEGまたはPEG-脂質コンジュゲートが、約2%~約3.5%で存在する、請求項31に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記PEGまたはPEG-脂質コンジュゲートが、約2.5%~約3%で存在する、請求項32に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記PEGまたはPEG-脂質コンジュゲートが、約3%で存在する、請求項33に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記コレステロールが、約20%~約40%のモルパーセンテージで存在し、前記イオン化可能な脂質が、約80%~約60%のモルパーセンテージで存在する、請求項29~34のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記コレステロールが、約40%のモルパーセンテージで存在し、前記イオン化可能な脂質が、約50%のモルパーセンテージで存在する、請求項35に記載の脂質ナノ粒子。
- コレステロール、PEGまたはPEG-脂質コンジュゲート、および非カチオン性脂質をさらに含む、請求項19~23のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記PEGまたはPEG-脂質コンジュゲートが、約2%~約4%で存在する、請求項37に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記PEGまたはPEG-脂質コンジュゲートが、約2%~約3.5%で存在する、請求項38に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記PEGまたはPEG-脂質コンジュゲートが、約2.5%~約3%で存在する、請求項39に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記PEGまたはPEG-脂質コンジュゲートが、約3%で存在する、請求項40に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記コレステロールが、約30%~約50%のモルパーセンテージで存在する、請求項36~41のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記イオン化可能な脂質が、約42.5%~約62.5%のモルパーセンテージで存在する、請求項36~41のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記非カチオン性脂質が、約2.5%~約12.5%のモルパーセンテージで存在する、請求項36~41のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記コレステロールが、約40%のモルパーセンテージで存在し、前記イオン化可能な脂質が、約52.5%のモルパーセンテージで存在し、前記非カチオン性脂質が、約7.5%のモルパーセンテージで存在し、前記PEGまたはPEG-脂質コンジュゲートが、約3%で存在する、請求項36~41のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。
- パルミチン酸デキサメタゾンをさらに含む、請求項20~45のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記ナノ粒子が、約50nm~約110nmの範囲の直径を有する、請求項20~46のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記ナノ粒子が、サイズが約100nm未満である、請求項20~46のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記粒子が、サイズが約70nm未満である、請求項48に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記粒子が、サイズが約60nm未満である、請求項49に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記粒子が、約10:1の全脂質対ceDNA比を有する、請求項23に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記粒子が、約20:1の全脂質対ceDNA比を有する、請求項23に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記粒子が、約30:1の全脂質対ceDNA比を有する、請求項23に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記粒子が、約40:1の全脂質対ceDNA比を有する、請求項23に記載の脂質ナノ粒子。
- 組織特異的標的化部分をさらに含む、請求項20~54のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記組織特異的標的化部分が、N-アセチルガラクトサミン(GalNAc)含有部分(例えば、GalNAC-PEG-脂質コンジュゲート)であり、前記全脂質の約1.5%、約1.4%、約1.3%、約1.2%、約1.1%、約1.0%、約0.9%、約0.8%、約0.7%、約0.6%、約0.5%、約0.4%、約0.3%、約0.2%、または約0.1%のモルパーセンテージで前記粒子中に存在する、請求項55に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記GalNAc含有部分が、前記全脂質の約0.5%のモルパーセンテージで前記粒子中に存在する、請求項56に記載の脂質ナノ粒子。
- 約10mM~約30mMのリンゴ酸をさらに含む、請求項20~57のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。
- 約20mMのリンゴ酸を含む、請求項58に記載の脂質ナノ粒子。
- 約30mM~約50mMのNaClをさらに含む、請求項20~59のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。
- 約40mMのNaClをさらに含む、請求項60に記載の脂質ナノ粒子。
- 約20mM~約100mMのMgCl2をさらに含む、請求項20~61のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記ceDNAが、閉端直鎖状二重鎖DNAである、請求項23に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記ceDNAが、発現カセットを含み、前記発現カセットが、プロモーター配列および導入遺伝子を含む、請求項23に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記発現カセットが、ポリアデニル化配列を含む、請求項64に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記ceDNAが、前記発現カセットの5’または3’末端のいずれかに隣接する少なくとも1つの逆位末端反復(ITR)を含む、請求項63~65のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記発現カセットが、2つのITRに隣接し、前記2つのITRが、1つの5’ITRおよび1つの3’ITRを含む、請求項66に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記発現カセットが、3’末端でITR(3’ITR)に連結される、請求項66に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記発現カセットが、5’末端でITR(5’ITR)に連結される、請求項66に記載の脂質ナノ粒子。
- 5’ITRおよび3’ITRのうちの少なくとも1つが、野生型AAV ITRである、請求項66に記載の脂質ナノ粒子。
- 5’ITRおよび3’ITRのうちの少なくとも1つが、修飾型ITRである、請求項66に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記ceDNAが、5’ITRと前記発現カセットとの間にスペーサー配列をさらに含む、請求項66に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記ceDNAが、3’ITRと前記発現カセットとの間にスペーサー配列をさらに含む、請求項66に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記スペーサー配列が、長さが少なくとも5塩基対の長さである、請求項72または73に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記スペーサー配列が、長さが5~100塩基対の長さである、請求項74に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記スペーサー配列が、長さが5~500塩基対の長さである、請求項74に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記ceDNAが、ニックまたはギャップを有する、請求項20~76のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記ITRが、AAV血清型に由来するITRであり、ガチョウウイルスのITRに由来し、B19ウイルスITRに由来し、パルボウイルスからの野生型ITRである、請求項66に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記AAV血清型が、AAV1、AAV2、AAV3、AAV4、AAV5、AAV6、AAV7、AAV8、AAV9、AAV10、AAV11およびAAV12を含む群から選択される、請求項78に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記ITRが、変異体ITRであり、前記ceDNAが、第1のITRとは異なる追加のITRを任意に含む、請求項66に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記ceDNAが、前記発現カセットの5’および3’末端の両方に2つの変異体ITRを含み、任意に、前記2つの変異体ITRが、対称変異体である、請求項66に記載の脂質ナノ粒子。
- 前記ceDNAが、CELiD、DNAベースのミニサークル、MIDGE、ミニスタリング(ministering)DNA、発現カセットの5’および3’末端にITRの2つのヘアピン構造を含むダンベル型の直鎖状二重鎖閉端DNA、またはdoggybone(商標)DNAである、請求項23に記載の脂質ナノ粒子。
- 請求項20~82のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子と、薬学的に許容される賦形剤と、を含む、薬学的組成物。
- 対象における遺伝性障害を治療する方法であって、前記方法が、有効量の請求項20~80のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子、または有効量の請求項83に記載の薬学的組成物を、前記対象に投与することを含む、方法。
- 前記対象が、ヒトである、請求項84に記載の方法。
- 前記遺伝性障害が、鎌状赤血球貧血症、メラノーマ、血友病A(凝固因子VIII(FVIII)欠損症)および血友病B(凝固因子IX(FIX)欠損症)、嚢胞性線維症(CFTR)、家族性高コレステロール血症(LDL受容体欠損症)、肝芽細胞腫、ウィルソン病、フェニルケトン尿症(PKU)、先天性肝性ポルフィリン症、遺伝性肝代謝障害、レッシュナイハン症候群、鎌状赤血球貧血症、サラセミア、色素性乾皮症、ファンコニ貧血、網膜色素変性症、毛細血管拡張性運動失調症、ブルーム症候群、網膜芽細胞腫、ムコ多糖蓄積症(例えば、ハーラー症候群(MPS I型)、シャイエ症候群(MPS I S型)、ハーラー・シャイエ症候群(MPS I H-S型)、ハンター症候群(MPS II型)、サンフィリッポA、B、C、およびD型(MPS III A、B、C、およびD型)、モルキオAおよびB型(MPS IVAおよびMPS IVB)、マロトーラミー症候群(MPS VI型)、スライ症候群(MPS VII型)、ヒアルロニダーゼ欠損症(MPS IX型))、ニーマンピック病A/B、C1およびC2型、ファブリー病、シンドラー病、GM2-ガングリオシドーシスII型(サンドホフ病)、テイ・サックス病、異染性白質ジストロフィー、クラッベ病、ムコリピドーシスI、II/IIIおよびIV型、シアリドーシスIおよびII型、グリコーゲン蓄積症IおよびII型(ポンペ病)、ゴーシェ病I、IIおよびIII型、ファブリー病、シスチン症、バッテン病、アスパルチルグルコサミン尿症、サラ病、ダノン病(LAMP-2欠損症)、リソソーム酸性リパーゼ(LAL)欠損症、神経セロイドリポフスチン症(CLN1-8、INCL、およびLINCL)、スフィンゴリピドーシス、ガラクトシアリドーシス、筋萎縮性側索硬化症(ALS)、パーキンソン病、アルツハイマー病、ハンチントン病、脊髄小脳失調症、脊髄性筋萎縮症、フリードライヒ運動失調症、デュシェンヌ筋ジストロフィー(DMD)、ベッカー筋ジストロフィー(BMD)、ジストロフィー表皮水疱症(DEB)、エクトヌクレオチドピロホスファターゼ1欠損症、乳児期の全身性動脈石灰化(GACI)、レーバー先天性黒内障、シュタルガルト黄斑ジストロフィー(ABCA4)、オルニチントランスカルバミラーゼ(OTC)欠損症、アッシャー症候群、アルファ-1アンチトリプシン欠損症、進行性家族性肝内胆汁うっ滞(PFIC)I型(ATP8B1欠損症)、II型(ABCB11)、III型(ABCB4)、またはIV型(TJP2)、ならびにカテプシンA欠損症からなる群から選択される、請求項84または85に記載の方法。
- 前記遺伝性障害が、レーバー先天性黒内障(LCA)である、請求項86に記載の方法。
- 前記LCAが、LCA10である、請求項87に記載の方法。
- 前記遺伝性障害が、ニーマンピック病である、請求項86に記載の方法。
- 前記遺伝性障害が、シュタルガルト黄斑ジストロフィーである、請求項86に記載の方法。
- 前記遺伝性障害が、グルコース-6-ホスファターゼ(G6Pase)欠損症(グリコーゲン蓄積症I型)またはポンペ病(グリコーゲン蓄積症II型)である、請求項86に記載の方法。
- 前記遺伝性障害が、血友病A(因子VIII欠損症)である、請求項86に記載の方法。
- 前記遺伝性障害が、血友病B(因子IX欠損症)である、請求項86に記載の方法。
- 前記遺伝性障害が、ハンター症候群(ムコ多糖症II型)である、請求項86に記載の方法。
- 前記遺伝性障害が、嚢胞性線維症である、請求項86に記載の方法。
- 前記遺伝性障害が、ジストロフィー表皮水疱症(DEB)である、請求項86に記載の方法。
- 前記遺伝性障害が、フェニルケトン尿症(PKU)である、請求項86に記載の方法。
- 前記遺伝性障害が、進行性家族性肝内胆汁うっ滞(PFIC)である、請求項86に記載の方法。
- 前記遺伝性障害が、ウィルソン病である、請求項86に記載の方法。
- 前記遺伝性障害が、ゴーシェ病I、IIまたはIII型である、請求項86に記載の方法。
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