JP2023087327A - 生体成分濃度測定試薬、測定方法およびセンサ - Google Patents

Abstract

【課題】溶血した全血試料に対しても高精度で全血成分濃度を測定できる手段を提供する。【解決手段】亜硝酸またはその塩、溶血剤、および発色色素を含み、前記発色色素の酸化還元電位が前記亜硝酸またはその塩の酸化還元電位より＋０．１９Ｖを超える、生体成分濃度測定試薬。【選択図】なし

Description

本発明は、試薬、測定方法およびセンサに関する。特に、本発明は、全血試料に含まれる、グルコース等の分析対象物の濃度を測定するために使用される試薬、測定方法およびセンサに関する。

従来から、臨床化学検査において、血液や尿等の生体試料中に含まれる分析対象物（例えば、グルコース）を電気化学的手段や光学的手段（比色法）により測定する技術が知られている。

例えば、特許文献１には、特定の構造を有する２－置換ベンゾチアゾリル－３－置換フェニル－５－置換スルホ化フェニル－２Ｈ－テトラゾリウム塩が記載される。

国際公開第２０１８／０５１８２２号

上記特許文献１に記載のテトラゾリウム塩から生成するホルマザンは血色素の主な吸収帯と重ならない波長域（６００ｎｍ以上）に十分な発色ピークを有する。このため、当該テトラゾリウム塩を用いることにより、赤血球などの血球を含む全血試料に対しても十分な感度で生体成分を定量できる。上記特許文献１では、血漿中の生体成分濃度を測定する。一方で、血球内の生体成分濃度を含めた全血試料中の生体成分濃度を測定する方法が求められている。

したがって、本発明は、上記事情を鑑みてなされたものであり、溶血した全血試料に対しても高精度で生体成分濃度を測定できる手段を提供することを目的とする。

本発明者は、上記課題を解決すべく、鋭意研究を行った結果、亜硝酸（またはその塩）と当該亜硝酸（またはその塩）に対して特定の酸化還元電位差を有する発色色素とを組み合わせて使用することによって、上記課題を解決できることを見出し、本発明を完成させた。

すなわち、上記目的は、亜硝酸またはその塩、溶血剤、および発色色素を含み、前記発色色素の酸化還元電位が前記亜硝酸またはその塩の酸化還元電位より＋０．１９Ｖを超える生体成分濃度測定試薬によって達成できる。

本発明によれば、溶血した全血試料に対しても生体成分濃度を高精度で測定できる。

図１は、本形態に係る測定用センサが装着された血糖計（成分測定装置）を概略的に示す平面図である。 図２は、図１のセンサと装置本体の測光部を拡大して示す斜視図である。 図３は、図１の測定用センサを示す側面図である。 図４Ａは、図１の測定用センサと装置本体の装着動作を示す第１平面図である。 図４Ｂは、図４Ａに続く装着動作を示す第２平面断面図である。 図５Ａは、実施例で用いた血糖計センサの模式図である。 図５Ｂは、図５Ａの血糖計センサの内面の長さ、幅、厚みを説明するための図である。 図６は、酸化還元電位を測定するための装置を示す図である。 図７は、テトラゾリウム塩１およびＷＳＴ－４のサイクリックボルタンメトリー（ＣＶ）測定結果を示すグラフである。 図８は、亜硝酸ナトリウムのサイクリックボルタンメトリー（ＣＶ）測定結果を示すグラフである。 図９は、テトラゾリウム塩１を適用した血糖計センサ（血糖値測定センサ）に異なるグルコース濃度の血液検体を作用させた際のグルコース濃度と、ホルマザンおよびＺｎ^２＋のキレート化合物の吸光度との関係を示すグラフである。

以下、本開示の実施の形態を説明する。なお、本開示は、以下の実施の形態のみには限定されない。

本開示の第１の態様は、亜硝酸またはその塩、溶血剤、および発色色素を含み、前記発色色素の酸化還元電位が前記亜硝酸またはその塩の酸化還元電位より＋０．１９Ｖを超える生体成分濃度測定試薬である。

本開示の第２の態様は、全血試料を本開示の第１の態様に係る生体成分濃度測定試薬と反応させて、発色量を測定し、当該発色量に基づいて前記全血試料中の生体成分の濃度を定量することを有する、生体成分濃度の測定方法である。

本開示の第３の態様は、反応部を有する、全血試料中の生体成分濃度を測定するためのセンサであって、前記反応部は、本開示の第１の態様に係る生体成分濃度測定試薬を含む、センサである。

本開示によれば、溶血した全血試料に対して（すなわち、血球および血漿双方に含まれる）生体成分（分析対象物）の濃度を高精度で測定できる。

本明細書において、亜硝酸またはその塩を、単に「亜硝酸（塩）」とも称する。また、本明細書において、亜硝酸またはその塩の酸化還元電位より＋０．１９Ｖを超える酸化還元電位を有する発色色素を、単に「発色色素」または「本開示の発色色素」とも称する。また、本明細書において、生体成分濃度測定試薬を、単に「試薬」または「本開示の試薬」とも称する。

以下、本発明の実施の形態を説明する。なお、本発明は、以下の実施の形態のみには限定されない。また、図面の寸法比率は、説明の都合上誇張されており、実際の比率とは異なる場合がある。

また、本明細書において、範囲を示す「Ｘ～Ｙ」は、ＸおよびＹを含み、「Ｘ以上Ｙ以下」を意味する。「Ｍ」は、ｍｏｌ／Ｌを意味する。また、特記しない限り、操作および物性等の測定は室温（２０～２５℃）／相対湿度４０～５０％ＲＨの条件で行う。

＜生体成分濃度測定試薬＞
本開示の第１の態様は、亜硝酸またはその塩、溶血剤、および発色色素を含み、前記発色色素の酸化還元電位が前記亜硝酸またはその塩の酸化還元電位より＋０．１９Ｖを超える生体成分濃度測定試薬である。以下、試薬を構成する各成分について詳細に説明する。

（亜硝酸またはその塩）
本開示の試薬は、亜硝酸またはその塩（亜硝酸（塩））を含む。全血を試料とする場合、溶血した赤血球からヘモグロビン（Ｆｅ（ＩＩ））が遊離する。例えば、発色色素としてテトラゾリウム塩を使用する場合には、ヘモグロビンがテトラゾリウム塩を非酵素的に還元することにより、着色したホルマザンが生成する（偽発色が発生する）。しかし、本開示の試薬に含まれる亜硝酸（塩）は、ヘモグロビンに含まれる２価の鉄イオン（Ｆｅ^２＋）を３価の鉄イオン（Ｆｅ^３＋）に酸化するメト化剤として作用する。このため、溶血した全血試料を測定の対象としても、亜硝酸（塩）が赤血球から遊離したヘモグロビンに対して発色色素に比べて優先して電子を受け取ることができる。これにより、発色色素の非酵素的な還元（偽発色）を抑制する。

亜硝酸塩としては、例えば、亜硝酸ナトリウム、亜硝酸カリウム、亜硝酸カルシウム、亜硝酸アンモニウムなどが使用できる。本発明による効果のさらなる向上、安定性や汎用性の高さの点から、亜硝酸ナトリウム、亜硝酸カリウムが好ましく、亜硝酸ナトリウムがより好ましい。亜硝酸（塩）は、１種を単独で使用しても、または２種以上を組み合わせて使用してもよい。なお、亜硝酸（塩）を２種以上組み合わせて使用する場合には、酸化還元電位は、一番高い値を採用する。

試薬における亜硝酸（塩）の組成（含有量、ただし、亜硝酸塩の場合は、亜硝酸（ＮＯ_２ ^－）に換算した量）（固形分換算）は、例えば、試薬 １００質量部に対して、０．８～１０．０質量部であり、好ましくは１．５～７．５質量部であり、より好ましくは２．５質量部を超え５．０質量部未満である。このような量であれば、偽発色をさらに効果的に抑制できる。ゆえに、溶血した全血試料に対しても分析対象物濃度（例えば、グルコース濃度）をより高い精度で測定できる。また、全血試料における分析対象物濃度（例えば、グルコース濃度）をより高い感度で測定できる。上記亜硝酸（塩）の含有量は、試薬を調製する際の亜硝酸（塩）の仕込み量の割合と実質的に同等である。また、試薬が２種以上の亜硝酸（塩）を含む場合には、上記亜硝酸（塩）の含有量は配合する亜硝酸（塩）の合計量を意図する。

また、亜硝酸（塩）の含有量は、発色色素 １モルに対して、５０モル以下であることが好ましい。すなわち、本発明の好ましい形態では、亜硝酸またはその塩は、発色色素 １モルに対して、５０モル以下の割合で含まれる。亜硝酸（塩）の含有量が５０モル／（１モル 発色色素）を超えると、亜硝酸（塩）が発色色素と競合するため、発色色素と酵素との反応が阻害される（発色阻害が生じる）可能性がある。特に、発色色素がテトラゾリウム塩であり、試薬が酸化還元酵素をさらに含む場合には、酸化還元酵素と測定対象物との反応によってテトラゾリウム塩からホルマザンが生成する前に、亜硝酸（塩）が酸化還元酵素から電子を奪うため、被測定物に応じた発色量が得られにくくなる。換言すれば、測定精度が低下してしまう可能性がある。亜硝酸（塩）の含有量（亜硝酸塩の場合は、亜硝酸（ＮＯ_２ ^－）に換算した量）は、発色色素 １モルに対して、より好ましくは１０モル未満、さらに好ましくは５モル未満、特に好ましくは３．０モル未満である。また、亜硝酸（塩）の含有量（亜硝酸塩の場合は、亜硝酸（ＮＯ_２ ^－）に換算した量）は、発色色素 １モルに対して、好ましくは０．２モル以上、より好ましくは０．５モルを超え、特に好ましくは１．０モルを超える。このような範囲であれば、非酵素的な偽発色や発色阻害をさらに効果的に抑制できる。また、被測定物の測定のための発色色素による十分な発色量を確保できる。特に、発色色素がテトラゾリウム塩であり、試薬が酸化還元酵素（例えば、グルコースデヒドロゲナーゼ）をさらに含む場合には、発色色素が酸化還元酵素に対して亜硝酸（塩）より優先して電子を奪えることで、亜硝酸（塩）による発色阻害を抑制する（発色反応をより効率的に進行できる）。ゆえに、溶血した全血試料に対しても分析対象物濃度をより高い精度で測定できる。すなわち、本開示の好ましい形態によると、亜硝酸またはその塩は、発色色素 １モルに対して、０．２モル以上１０モル未満の割合で含まれる。本開示のより好ましい形態によると、亜硝酸またはその塩は、発色色素 １モルに対して、０．５モルを超え５モル未満の割合で含まれる。本開示の特に好ましい形態によると、亜硝酸またはその塩は、発色色素 １モルに対して、１．０モルを超え３．０モル未満の割合で含まれる。上記亜硝酸（塩）の含有量は、試薬を調製する際の発色色素の合計仕込み量（モル）に対する亜硝酸（塩）の合計仕込み量（モル）の割合と実質的に同等である。また、亜硝酸（塩）の含有量は、試薬を調製する際の、亜硝酸（塩）の合計仕込み量（モル）を発色色素の合計仕込み量（モル）で除した値を、小数点第２位まで求め、四捨五入して小数点第１位まで求めた値を採用する。

（溶血剤）
本開示の試薬は、亜硝酸（塩）に加えて、溶血剤を含む。一般に血漿中のグルコース濃度を測定する場合には、赤血球量（ヘマトクリット値）を考慮する必要がある。通常、光学的な測定の場合、赤血球量は、赤血球中の血色素量で判断する。しかしながら、血色素量を光学的に正確に測定することは難しい。また、実際の赤血球量と血色素量とが一致しないことがある。また、赤血球による光散乱により、赤血球量の測定自体に特別な測定手法が必要な場合がある。これに対して、本開示の試薬は、赤血球を溶血させるので、より簡易な手法で、より正確な血色素量（ヘモグロビン値）を得ることができる。また、通常、赤血球内には、血漿中に含まれるのと同量程度の分析対象物（例えば、グルコース）が存在している。このため、本開示の試薬によれば、より簡便な方法で血色素量を補正することができ、血漿および血球（すなわち、全血試料）中の分析対象物（生体成分）（例えば、グルコース）の濃度を測定できる（すなわち、全血試料中の分析対象物濃度を把握できる）。溶血剤は、１種を単独で使用しても、または２種以上を組み合わせて使用してもよい。

溶血剤としては、例えば、非イオン性界面活性剤、両性界面活性剤、アニオン性界面活性剤などが使用できる。酵素活性を阻害しない観点から、非イオン性界面活性剤が好ましい。

非イオン性界面活性剤としては、１１以上１５以下（より好ましくは、１２以上１４以下）のＨＬＢ値を有することが好ましい。このような非イオン性界面活性剤としては、オキシエチレン基の平均付加モル数が１以上１５０以下であり、かつアルキル基の炭素数が１以上１８以下であるポリオキシエチレンアルキルエーテル、ノニルフェニルポリエチレングリコールなどが挙げられる。このような非イオン性界面活性剤は、合成しても、または市販品を使用してもよい。市販品としては、ポリオキシエチレン（９）オクチルフェニルエーテル（オクチルフェノキシポリ（エチレンオキシ）エタノールまたはオクチルフェニル－ポリエチレングリコール）（Sigma-Aldrich社製、Ｎｏｎｉｄｅｔ^ＴＭ Ｐ－４０）、Ｔｒｉｔｏｎ（登録商標） Ｘ－１００（ポリオキシエチレン（１０）オクチルフェニルエーテル）、Ｔｒｉｔｏｎ（登録商標） Ｘ－１１４（ポリオキシエチレン（８）オクチルフェニルエーテル）等のポリオキシエチレンｐ－ｔ－オクチルフェニルエーテル（Ｔｒｉｔｏｎ系界面活性剤）；Ｔｗｅｅｎ（登録商標） ８５等のポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル；Ｄｏｄｅｃｙｌ－β－Ｄ－ｍａｌｔｏｓｅ；Ｏｃｔｙｌ－β－Ｄ－ｇｌｕｃｏｓｉｄｅ；Ｎｏｎｉｄｅｔ（登録商標）Ｐ－４０（オクチルフェノキシポリ（エチレンオキシ）エタノール、）及びＮｏｎｉｄｅｔ（登録商標）Ｐ－４０代替品（ＨＬＢ＝１３．５）；Ｔｅｒｇｉｔｏｌ（登録商標） ＮＰ－１０ Ｓｕｒｆａｃｔａｎｔ（Ｎｏｎｙｌｐｈｅｎｏｌ Ｅｔｈｏｘｙｌａｔｅ）（ＨＬＢ＝１３．２）；ＩＧＥＰＡＬ（登録商標） ＣＡ－６３０（オクチルフェノキシポリ（エチレンオキシ）エタノール）（ＨＬＢ＝１３．４）；エマルゲン（登録商標） １０８（ポリオキシエチレンラウリルエーテル）（ＨＬＢ＝１２．１）、エマルゲン（登録商標） １０９Ｐ；Ｂｒｉｊ（登録商標） ９６ポリエチレングリコールモノオレイルエーテル（ｎ＝約２）（ＨＬＢ＝１２．４）などが使用できる。

また、両性界面活性剤やアニオン性界面活性剤もまた、合成しても、または市販品を使用してもよい。市販品としては、ＣＨＡＰＳ（3-(3-cholamidepropyl)dimethylammonio-1-propanesulphonate）、塩化アルキルポリアミノエチルグリシン；ドデシル硫酸ナトリウムなどが使用できる。その他、サポニンも使用できる。

試薬における溶血剤の組成（含有量）は、サンプル量（全血量）に応じて適切に選択できる。試薬における溶血剤の組成（含有量）（固形分換算）は、例えば、１．０μＬの全血試料に対して、１～１０容積％である。また、センサ形状にした場合、試薬 １００質量部に対して、１０～５０質量部であり、好ましくは１５～４０質量部であり、より好ましくは２０～３０質量部程度である。このような量であれば、十分溶血できる。上記溶血剤の含有量は、試薬を調製する際の溶血剤の仕込み量の割合と実質的に同等である。また、試薬が２種以上の溶血剤を含む場合には、上記溶血剤の含有量は配合する溶血剤の合計量を意図する。

（発色色素）
本開示の試薬は、亜硝酸（塩）および溶血剤に加えて、発色色素を含む。ここで、発色色素の酸化還元電位は、試薬に含まれる亜硝酸（塩）の酸化還元電位に対して＋０．１９Ｖを超える（発色色素の酸化還元電位－亜硝酸（塩）の酸化還元電位＞＋０．１９Ｖ）。このため、例えば、発色色素がテトラゾリウム塩であり、試薬が酸化還元酵素をさらに含む場合には、発色色素が酸化還元酵素に対して、亜硝酸（塩）より優先して電子を受け取ることができる。これにより、発色反応をより効率的に進行できる。このため、本開示の試薬によれば、全血試料中の分析対象物（生体成分）（例えば、グルコース）を高精度で測定できる。また、本開示の試薬によれば、全血試料中の分析対象物（生体成分）（例えば、グルコース）を十分な感度で測定できる。なお、上記メカニズムは推測であり、本発明の技術的範囲は上記により制限されない。

上記発色色素の酸化還元電位は、試薬中に含まれる亜硝酸またはその塩の酸化還元電位より＋０．１９Ｖを超えた値である。ここで、発色色素と亜硝酸（塩）との酸化還元電位差（＝発色色素の酸化還元電位－亜硝酸（塩）の酸化還元電位）が＋０．１９Ｖ以下であると、発色色素と酸化還元酵素との反応が亜硝酸により競合され、発色色素の発色が阻害される（発色阻害）。本発明による効果のさらなる向上の点から、発色色素と亜硝酸（塩）との酸化還元電位差（＝発色色素の酸化還元電位－亜硝酸（塩）の酸化還元電位）は、好ましくは＋０．２１Ｖを超え、より好ましくは＋０．２５Ｖを超え、特に好ましくは＋０．２７Ｖ以上である。すなわち、本開示の好ましい形態によると、発色色素の酸化還元電位は、亜硝酸またはその塩の酸化還元電位に対して＋０．２１Ｖを超える。本開示のより好ましい形態によると、発色色素の酸化還元電位は、亜硝酸またはその塩の酸化還元電位に対して＋０．２５Ｖを超える。本開示の特に好ましい形態によると、発色色素の酸化還元電位は、亜硝酸またはその塩の酸化還元電位より＋０．２７Ｖ以上高い。なお、発色色素と亜硝酸（塩）との酸化還元電位差は、大きいほど好ましいため、上限は特に制限されないが、例えば、酸化還元電位差の上限は、＋０．６Ｖ以下であり、好ましくは＋０．４Ｖ未満である。

本開示において、発色色素および亜硝酸（塩）の酸化還元電位は、下記実施例に記載の方法に従って測定された値を採用する。

発色色素は、本発明による効果のさらなる向上の点から、テトラゾリウム塩であることが好ましく、２－ベンゾチアゾリル－３－（４－カルボキシ－２－メトキシフェニル）－５－［４－（２－スルホエチルカルバモイル）フェニル］－２Ｈ－テトラゾリウム(2-Benzothiazolyl-3-(4-carboxy-2-methoxyphenyl)-5-[4-(2-sulfoethylcarbamoyl)phenyl]-2H-tetrazolium)、国際公開第２０１８／０５１８２２号パンフレットに記載されるテトラゾリウム塩であることがより好ましく、国際公開第２０１８／０５１８２２号パンフレットに記載されるテトラゾリウム塩であることが特に好ましい。発色色素は、１種を単独で使用しても、または２種以上を組み合わせて使用してもよい。なお、発色色素を２種以上組み合わせて使用する場合には、発色色素の酸化還元電位としては、いずれか一方のうち最も高い値を採用する。

すなわち、本開示の好ましい形態によると、発色色素は、テトラゾリウム塩である。本開示のより好ましい形態によると、発色色素は、２－ベンゾチアゾリル－３－（４－カルボキシ－２－メトキシフェニル）－５－［４－（２－スルホエチルカルバモイル）フェニル］－２Ｈ－テトラゾリウムまたは下記式（１）で示されるテトラゾリウム塩のいずれかから選択される少なくとも一種である。本開示の特に好ましい形態によると、発色色素は、下記式（１）で示されるテトラゾリウム塩である。

上記式（１）において、Ｒ^１は、水素原子、水酸基、メトキシ基、およびエトキシ基からなる群から選択されるいずれか一つであり、Ｒ^２は、ニトロ基、－ＯＲ^４、およびカルボキシル基からなる群から選択されるいずれか一つであり、Ｒ^３は、水素原子、メチル基またはエチル基であり、少なくとも１はメチル基またはエチル基であり、Ｒ^４は、メチル基またはエチル基であり、ｍは、スルホ基（－ＳＯ_３ ^－）がテトラゾール骨格の５位のフェニル基に結合する数であり、１または２であり、ｎは、Ｒ^２がテトラゾール骨格の３位のフェニル基に結合する数であり、０～２の整数であり、ｐは、スルホ基（－ＳＯ_３ ^－）がテトラゾール骨格の３位のフェニル基に結合する数であり、０または１であり、ｎ＋ｐは１以上であり、ｑは１または２であり、ｑが２の場合、各ＯＲ^３は隣接して配置され、この際、各ＯＲ^３が互いに環を形成してもよく、Ｘは、水素原子またはアルカリ金属を表わす。

式（１）において、テトラゾール骨格の２位には置換ベンゾチアゾリル基が存在する。上記式（１）において、テトラゾール環の２位にベンゾチアゾリル基が存在することにより、遷移金属化合物と効率よくかつ速やかにキレート化合物を形成できる（ホルマザン化合物の極大吸収波長を長波長域にシフトできる）。そして、テトラゾール骨格の２位のベンゾチアゾリル基に、少なくとも１のメトキシ基またはエトキシ基が導入されることで、さらに生成するホルマザンとＺｎ^２＋等の遷移金属イオンとのキレート時の極大吸収波長が長波長側にシフトする。

また、ｑは１または２である。好ましくは、ｑが１である。当該形態によれば、発色色素と亜硝酸（塩）との酸化還元電位差をより大きくすることに寄与できる。ここで、ｑ＝１の場合、Ｒ^３は、メチル基またはエチル基であり、水溶性の観点からはメチル基であることが好ましい。Ｒ^３が炭素原子数３以上のアルキル基である場合には、テトラゾリウム塩およびテトラゾリウム塩から生じるホルマザンは、水溶性に劣るため好ましくない。

式（１）において、テトラゾール骨格の２位に存在する置換ベンゾチアゾリル基の－ＯＲ^３の少なくとも１がベンゾチアゾリル基の６位に結合することが好ましい。当該形態によれば、Ｚｎ^２＋等の遷移金属イオンとのキレート時の極大吸収波長を長波長側にシフトできる。

ｑ＝１の場合、テトラゾール骨格の２位に存在するベンゾチアゾリル基の置換基である－ＯＲ^３の置換位置は特に限定されるものではなく、４位、５位、６位、または７位のいずれであってもよい。－ＯＲ^３の置換位置は、ベンゾチアゾリル基の６位に結合することが好ましい。すなわち、本発明の好ましい形態では、ｑが１でありかつ－ＯＲ^３がベンゾチアゾリル基の６位に結合することが好ましい。当該形態によれば、発色色素と亜硝酸（塩）との酸化還元電位差をより大きくできる。また、Ｚｎ^２＋等の遷移金属イオンとのキレート時の極大吸収波長を長波長側にシフトできる。

ｑ＝２の場合、Ｒ^３は、水素原子、メチル基またはエチル基であり、少なくとも一がメチル基、またはエチル基である。また、ｑが２である場合、各ＯＲ^３は隣接して配置され、各ＯＲ^３が互いに環を形成してもよい。この際、好適な組み合わせとしては、Ｒ^３が、水素原子およびメチル基の組み合わせ、メチル基およびメチル基の組み合わせである。ｑ＝２の場合、テトラゾール骨格の２位に存在するベンゾチアゾリル基の置換基である－ＯＲ^３の置換位置は２つの－ＯＲ^３が隣接して配置されれば特に限定されるものではなく、４，５位、５，６位、または６，７位のいずれであってもよい。Ｚｎ^２＋等の遷移金属イオンとのキレート時の長波長側への極大吸収波長のシフトの効果の点では、少なくとも一の－ＯＲ^３の置換位置は、ベンゾチアゾリル基の６位に結合することが好ましく、すなわち、２つの－ＯＲ^３の置換位置は、５，６位、または６，７位であることが好ましい。具体的には、ｑが２である場合、テトラゾール骨格の２位に存在する置換ベンゾチアゾリル基は以下のいずれかの置換基であることが好ましい。

さらには、ｑが２である場合、テトラゾール骨格の２位に存在する置換ベンゾチアゾリル基は上記いずれかの置換基である場合、テトラゾール骨格の３位に存在する置換スルホ化フェニル基が、４－メトキシ－５－スルホフェニル基であることが、Ｚｎ^２＋等の遷移金属イオンとのキレート時の長波長側への極大吸収波長のシフトの効果の点で好ましい。

本発明の好ましい形態では、発色色素は、Ｒ^１は、水素原子、水酸基、メトキシ基、およびエトキシ基からなる群から選択されるいずれか一つであり、Ｒ^２は、ニトロ基、－ＯＲ^４、およびカルボキシル基からなる群から選択されるいずれか一つであり、かつ少なくとも１のＲ^２が－ＯＲ^４基であり、Ｒ^３は、水素原子、メチル基またはエチル基であり、少なくとも１はメチル基またはエチル基であり、Ｒ^４は、メチル基またはエチル基であり、ｍは、スルホ基（－ＳＯ_３ ^－）がテトラゾール骨格の５位のフェニル基に結合する数であり、１または２であり、ｎは、Ｒ^２がテトラゾール骨格の３位のフェニル基に結合する数であり、１または２であり、ｐは、スルホ基（－ＳＯ_３ ^－）がテトラゾール骨格の３位のフェニル基に結合する数であり、０または１であり、ｎ＋ｐは１以上であり、ｑは１または２であり、ｑが２の場合、各ＯＲ^３は隣接して配置され、この際、各ＯＲ^３が互いに環を形成してもよく、各ＯＲ^３が互いに環を形成する場合には、テトラゾール骨格の２位に存在する置換ベンゾチアゾリル基は以下で表される置換基のいずれかであり、

Ｘは、水素原子またはアルカリ金属を表わす、
上記式（１）で示されるテトラゾリウム塩である。

式（１）において、テトラゾール骨格の５位には置換スルホ化フェニル基が存在する。該スルホ化フェニル基の置換基であるＲ^１は、水素原子、水酸基、メトキシ基、およびエトキシ基からなる群から選択されるいずれか一つである。テトラゾリウム塩およびテトラゾリウム塩から生じるホルマザンの水溶性を向上させるという観点からは、Ｒ^１は、水素原子または水酸基であることが好ましく、幅広いｐＨ領域で遷移金属イオンとのキレートを安定的に形成できることから、Ｒ^１は水素原子であることがより好ましい。また、Ｒ^１が水酸基、メトキシ基、およびエトキシ基である場合の置換位置は特に限定されないが、４位であることが好ましい。

テトラゾール骨格の５位には、スルホ基（－ＳＯ_３ ^－）が少なくとも１個存在する（ｍ＝１または２）。これにより、テトラゾリウム塩およびテトラゾリウム塩から生じるホルマザンの水溶性が向上するものと考えられる。式（１）において、ｍは、スルホ基（－ＳＯ_３ ^－）がテトラゾール骨格の５位のフェニル基に結合する数であり、１または２である。特にスルホ基が２位または４位にある場合、さらには、２，４位にある場合には、よりいっそうの水溶性の向上が発揮出来る。さらにスルホ基が２，４位にある場合には合成するためのビルディングブロックの合成が容易である点で、有利である。水溶性が高く、また、幅広いｐＨ領域で遷移金属イオンとのキレート化合物を安定的に形成することができる、または水溶性が向上することから、ｍ＝２であることが好ましく、ｍ＝２であり、Ｒ^１が水素原子であることがより好ましい。

この際、ｍ＝２である場合には、スルホ基（－ＳＯ_３ ^－）がテトラゾール骨格の３位のフェニル基に結合する数であるｐが１であることが好ましい。かような置換基数を選択することで、テトラゾリウム塩およびこれから生じるホルマザンの水溶性が一層向上する。

なお、水溶性の観点からは、下記（１）～（４）：（１）ｍ＝２かつｐ＝１である、（２）ｍ＝１かつｎ＝０である、（３）テトラゾール骨格の５位に存在するフェニル基において、Ｒ^１が水酸基であり、この際、スルホ基（ＳＯ_３ ^－）および水酸基が２，４位、または４，６位にある、（４）ｐ＝０かつ少なくとも一のＲ^２がカルボキシル基である、のいずれかを満たすことが好ましく、（１）ｍ＝２かつｐ＝１または、（４）：ｐ＝０かつ少なくとも一のＲ^２がカルボキシル基であることがより好ましい。また、上記（３）では、スルホ基（ＳＯ_３ ^－）および水酸基が、ベンゼン環上で隣接した置換基として存在しないため、水素結合することがなく、または少なく、両置換基が効率的に水溶性に寄与できるためであると考えられる。

ここで、テトラゾール骨格の５位に存在するフェニル基へのスルホ基（－ＳＯ_３ ^－）の結合位置は特に制限されない。テトラゾリウム塩およびテトラゾリウム塩から生じるホルマザンの水溶性のさらなる向上効果、極大吸収波長を長波長側へシフトすることができることの点から、ｍ＝２の場合には、スルホ基（－ＳＯ_３ ^－）は、フェニル基の、２，４位、３，５位に存在することが好ましい。フェニル基の２，４位にスルホ基が存在することが特に好ましく、高濃度の遷移金属イオンの存在下でも沈殿が発生しないテトラゾリウム塩化合物とすることができる。すなわち、このテトラゾリウム塩を発色試薬として使用することで、分析対象物（生体成分）が高濃度な場合であっても、定量可能な試薬を調製できる。すなわち、本発明の好ましい形態では、テトラゾール骨格の５位のフェニル基が、スルホ基（－ＳＯ_３ ^－）が２，４位に存在するフェニル基であることが好ましい。

式（１）において、テトラゾール骨格の３位には置換フェニル基が存在する。フェニル基は必須に置換されるため、ｎ＋ｐは１以上である。

テトラゾール骨格の３位のフェニル基の置換基としてのＲ^２は、ニトロ基、－ＯＲ^４、およびカルボキシル基からなる群から選択されるいずれか一つである。Ｒ^２は、ホルマザンと遷移金属イオンとのキレート形成性の観点からは、ニトロ基または－ＯＲ^４であることが好ましく、水溶性の観点からは、カルボキシル基であることが好ましい。また、ｎは、Ｒ^２がテトラゾール骨格の３位のフェニル基に結合する数であり、０～２の整数である。Ｒ^２を導入することで、化合物の極大吸収波長を長波長域に移動させることや、化合物の安定性を向上させることが可能となるため、ｎ＝１または２であることが好ましい。Ｒ^２が２存在する場合、すなわち、ｎ＝２である場合、Ｒ^２は同じであっても異なるものであってもよい。

ｎ＝１または２である場合、少なくとも一のＲ^２が－ＯＲ^４基であることが好ましい。すなわち、本発明の好適な形態は、ｎが１または２であり、かつ、少なくとも一のＲ^２が－ＯＲ^４基である。フェニル基の置換基としてアルコキシ基を導入することで、化合物の安定性が向上する。テトラゾリウム塩およびテトラゾリウム塩から生じるホルマザンの水溶性を向上させるという観点からは、－ＯＲ^４基がメトキシ基であることが好ましい。ここで、Ｒ^４は、メチル基またはエチル基であり、水溶性の観点からはメチル基であることが好ましい。Ｒ^４が炭素原子数３以上のアルキル基である場合には、テトラゾリウム塩およびテトラゾリウム塩から生じるホルマザンは、水溶性に劣るため好ましくない。

ｎが１または２である場合の、Ｒ^２の置換位置は特に限定されないが、テトラゾール骨格の３位に存在するフェニル基の２位、３位、４位、５位または６位であることが好ましく、少なくとも一のＲ^２が２位または４位にあることが好ましく、２位および／または４位であることが好ましい。かような構造とすることで、水溶性が向上するとともに、テトラゾリウム塩およびテトラゾリウム塩から生じるホルマザンの安定性を向上させることができる。

ｐは、スルホ基（－ＳＯ_３ ^－）がテトラゾール骨格の３位のフェニル基に結合する数であり、０または１である。テトラゾリウム塩およびテトラゾリウム塩から生じるホルマザンの水溶性を向上させるという観点からは、ｐ＝１であることが好ましい。なお、ｐ＝１の場合、スルホ基は電子吸引性基であるため、他の電子吸引性基（例えば、ニトロ基）があると、テトラゾリウム環上の窒素原子のカチオン電荷を不安定化させ、化合物の安定性を低下させる場合がある。上述したとおり、フェニル基の置換基としてアルコキシ基を導入することで、化合物の安定性が向上するが、ニトロ基が同時に導入されると、アルコキシ基導入による安定性の向上が発揮されない場合がある。このため、安定性向上という観点からは、ｐ＝１の場合には、ｎが１または２であり、好ましくは、ｎが１であり、かつ、Ｒ^２は、－ＯＲ^４、およびカルボキシル基からなる群から選択されるいずれか一つであることが好ましく、Ｒ^２は－ＯＲ^４であることがより好ましい。または、テトラゾリウム塩およびテトラゾリウム塩から生じるホルマザンの水溶性を向上させるという観点からは、ｐ＝０かつ少なくとも一のＲ^２がカルボキシル基であることが好ましい。すなわち、好適な実施形態は、式（１）において、ｐが１である、またはｐ＝０かつ少なくとも一のＲ^２がカルボキシル基である。より好適には、ｍ＝２かつｐ＝１である、またはｐ＝０かつ少なくとも一のＲ^２がカルボキシル基である。

ｐ＝１である場合、テトラゾール骨格の３位のフェニル基を置換するスルホ基（－ＳＯ_３ ^－）の置換位置は特に限定されるものではないが、３位または５位であることが好ましい。この位置にスルホ基が置換することで、テトラゾリウム塩およびテトラゾリウム塩から生じるホルマザンの安定性をより有効に向上できる。

また、式（１）において、テトラゾール骨格の３位に存在する置換基が、４－メトキシ－３－スルホフェニル基、２－メトキシ－５－スルホフェニル基、２－メトキシ－４－ニトロ－５－スルホフェニル基、２－メトキシ－４－ニトロフェニル基、４－スルホフェニル基、４－カルボキシ－２－メトキシフェニル基、５－カルボキシ－２－メトキシフェニル基、３－カルボキシ－４－メトキシフェニル基、または４－メトキシ－５－スルホフェニル基が好ましく、４－メトキシ－３－スルホフェニル基、２－メトキシ－５－スルホフェニル基、３－カルボキシ－４－メトキシフェニル基、または４－メトキシ－５－スルホフェニル基であることがより好ましく、４－メトキシ－３－スルホフェニル基、４－メトキシ－５－スルホフェニル基、または、２－メトキシ－５－スルホフェニル基であることが特に好ましい。かような構造とすることで、発色感度が向上し、水溶性が向上するとともに、テトラゾリウム塩およびテトラゾリウム塩から生じるホルマザンの安定性を向上させることができる。また、ホルマザン化合物自体の極大吸収波長をより長波長域にすることができることから、テトラゾール骨格の３位に存在するフェニル基が、４－メトキシ－３－スルホフェニル基であることが特に好ましい。

上記式（１）において、Ｘは、水素原子またはアルカリ金属を表わす。ここで、Ｘは、アニオン（スルホ基（－ＳＯ_３ ^－））を中和するために存在する。このため、アルカリ金属の種類は特に制限されず、リチウム、ナトリウム、カリウム、ルビジウム、セシウムのいずれでもよい。

テトラゾリウム塩の好ましい例としては、以下の構造を有するものが挙げられる。なお、下記構造において、Ｘは、アルカリ金属を表わす。

テトラゾリウム塩の特に好ましい例としては、以下の構造がある。すなわち、本発明の好ましい形態では、発色色素は、下記構造を有する。

発色色素は、合成しても、または市販品を使用してもよい。例えば、本開示で好ましく使用される２－ベンゾチアゾリル－３－（４－カルボキシ－２－メトキシフェニル）－５－［４－（２－スルホエチルカルバモイル）フェニル］－２Ｈ－テトラゾリウム(2-Benzothiazolyl-3-(4-carboxy-2-methoxyphenyl)-5-[4-(2-sulfoethylcarbamoyl)phenyl]-2H-tetrazolium)は、Dojindo Molecular Technologies, Incから、ＷＳＴ－４の商品名で市販されている。また、本開示で好ましく使用される上記式（１）のテトラゾリウム塩は、以下に制限されないが、例えば、国際公開第２０１８／０５１８２２号に記載の方法、または当該方法を適宜修飾した方法によって製造できる。一例としては、アルデヒドとヒドラジンの脱水縮合によりヒドラゾンを合成し、次いで、対応するジアゾニウム塩を水性溶媒中、塩基性条件下で反応させて、ホルマザンを得る。ここで、塩基性化剤としては、水酸化ナトリウム、水酸化カリウムなどが用いられる。次いで得られたホルマザンを亜硝酸エチル、亜硝酸ブチル又は次亜塩素酸ナトリウム等の酸化剤を用いアルコール溶媒（例えば、メタノール、エタノール）中で酸化し、式（１）のテトラゾリウム塩を得ることができる。一実施形態を挙げると、下記構造：

を有するヒドラジノ置換ベンゾチアゾールと、下記構造：

を有する置換スルホ化ベンズアルデヒドとを反応させて、下記構造：

を有するヒドラゾン化合物を得る。一方、下記構造：

を有する置換スルホ化アニリンを氷冷しながら塩酸を加え、さらに亜硝酸ナトリウム溶液を滴下して、下記構造：

を有する塩化ベンゼンジアゾニウム化合物を得る。上記にて得られたヒドラゾン化合物と塩化ベンゼンジアゾニウム化合物とを塩基性条件（例えば、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム存在）下で反応させて、下記構造：

を有するホルマザン化合物を得る。次いで、このようにして得られたホルマザン化合物を、酸化剤（例えば、亜硝酸ナトリウム、亜硝酸エチル、亜硝酸ブチル等の亜硝酸エステル）を用いてアルコール溶媒（例えば、メタノール、エタノール）中で酸化することによって、上記式（１）のテトラゾリウム塩が得られる。

試薬における発色色素の組成（含有量）（固形分換算）は、例えば、試薬 １００質量部に対して、１０～４０質量部であり、好ましくは１５～３５質量部であり、より好ましくは２０質量部を超え３０質量部未満である。このような量であれば、発色色素（例えば、テトラゾリウム塩）は、分析対象物に対して、十分な発色量を呈することができる。ゆえに、溶血サンプルにおける分析対象物濃度（例えば、グルコース濃度）をより高い精度で測定できる。上記発色色素の含有量は、試薬を調製する際の発色色素の仕込み量の割合と実質的に同等である。また、試薬が２種以上の発色色素を含む場合には、上記発色色素の含有量は配合する発色色素の合計量を意図する。

上記式（１）のテトラゾリウム塩から生成するホルマザン、またはホルマザンと遷移金属イオンとのキレート化合物は、単独でまたは遷移金属化合物とのキレート化合物を形成することにより、血色素の主な吸収帯と重ならない波長域（６００ｎｍ以上）に大きな吸収波長帯を有する。また、上記式（１）のテトラゾリウム塩は、高い水溶性を有する。このため、上記式（１）のテトラゾリウム塩を用いることによって、溶血した全血試料に対しても感度よく生体成分濃度を測定できる。具体的には、上記式（１）のテトラゾリウム塩から生成したホルマザン、またはホルマザンと遷移金属イオンとのキレート化合物の６００ｎｍ以上８００ｎｍ以下における、最大吸光度（２００ｍｇ／ｄＬのグルコース水溶液中、セル長＝０．０４５ｍｍ）は、０．３以上、より好ましくは０．５以上である。このような吸収を有するホルマザンまたはホルマザンと遷移金属イオンとのキレート化合物（ゆえに、このようなホルマザンを生成できるテトラゾリウム塩）であれば、血液の吸収の影響を受けにくく、生体成分濃度をより正確にかつ良好な感度で測定できる。なお、本明細書において、特記しない限り、ホルマザンと遷移金属イオンとのキレート化合物の最大吸収波長（λｍａｘ）は、下記方法に従って測定された値を採用する。

－ホルマザンと遷移金属イオンとのキレート化合物の最大吸収波長(λmax)の評価－
ホルマザン化合物の終濃度が５０～２００ｍＭとなるように、１０ｍＭ ＭＯＰＳ水溶液を加えて、試料を作製した。別途、１Ｍの遷移金属イオン（例えば、ニッケルイオン）を含む水溶液を作製した。

上記試料 １００μＬに、別途調製した遷移金属イオンを含む水溶液を１０μＬ加え、素早く攪拌し、混合液を調製した。この混合溶液について、スペクトルを、分光光度計（測定セル長：１０ｍｍ）にて測定する。スペクトルに基づいて、６００ｎｍ以上における最大吸収及びその波長（最大吸収波長（λｍａｘ））を求める。なお、最大吸収波長（λｍａｘ）として、６００ｎｍ以上において最大吸光度（０．３以上）を満たす範囲において、任意の波長を選択することができる。

（酸化還元酵素）
本開示の試薬は、亜硝酸（塩）、発色色素および溶血剤を必須に含む。本開示の試薬は、上記に加えて、分析対象物と特異的に反応する酵素を含んでもよい。本開示の試薬は、（特に発色色素がテトラゾリウム塩である場合には）酸化還元酵素を含むことが好ましい。すなわち、本発明の好ましい形態では、生体成分濃度測定試薬は、さらに酸化還元酵素を含む。また、本発明のより好ましい形態では、生体成分濃度測定試薬は、発色色素としてテトラゾリウム塩（特に上記式（１）のテトラゾリウム塩）を含み、さらに酸化還元酵素を含む。

ここで、酸化還元酵素は、特に制限されず、測定される対象である生体成分の種類によって適切に選択されうる。具体的には、グルコースデヒドロゲナーゼ（ＧＤＨ）、ピロロキノリンキノン（ＰＱＱ）を補酵素とするグルコースデヒドロゲナーゼ（ＰＱＱ－ＧＤＨ）、フラビンアデニンジヌクレオチド（ＦＡＤ）を補酵素とするグルコースデヒドロゲナーゼ（ＦＡＤ－ＧＤＨ）、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（ＮＡＤ）を補酵素とするグルコースデヒドロゲナーゼ（ＮＡＤ－ＧＤＨ）およびニコチンアデニンジヌクレオチドリン酸（ＮＡＤＰ）を補酵素とするもの（ＮＡＤＰ－ＧＤＨ）等のグルコースデヒドロゲナーゼ（ＧＤＨ）、グルコースオキシダーゼ（ＧＯＤ）、乳酸脱水素酵素（ＬＤＨ）、コレステロールデヒドロゲナーゼ、コレステロールオキシダーゼ、尿酸デヒドロゲナーゼなどが挙げられる。ここで、酸化還元酵素は、１種を単独で使用しても、または２種以上を組み合わせてもよい。例えば、分析対象物（生体成分）がグルコースである場合には、酸化還元酵素がグルコースデヒドロゲナーゼやグルコースオキシダーゼであることが好ましい。また、分析対象物（生体成分）がコレステロールである場合には、酸化還元酵素がコレステロールデヒドロゲナーゼやコレステロールオキシダーゼであることが好ましい。これらのうち、酸化還元酵素としてのグルコースデヒドロゲナーゼおよびテトラゾリウム塩（発色色素）を用いる場合には、グルコースデヒドロゲナーゼは、細菌または真菌由来のフラビンアデニンジヌクレオチド依存性グルコースデヒドロゲナーゼ（ＦＡＤ－ＧＤＨ）であることが好ましい。生体成分濃度測定試薬が酸化還元酵素を含む場合の、酸化還元酵素の含有量は、特に制限されず、テトラゾリウム塩の量に応じて適宜選択できる。

（その他の成分）
本開示の試薬は、亜硝酸（塩）、発色色素および溶血剤を必須に含む。好ましくは、本開示の試薬は、亜硝酸（塩）、発色色素、溶血剤および酸化還元酵素を含む。本開示の試薬は、上記に加えて、他の成分を含んでもよい。ここで、他の成分としては、通常、測定対象である生体成分の種類に応じて適切に選択され、生体成分濃度を測定するために添加される成分が同様にして使用できる。具体的には、遷移金属化合物、二糖類またはその誘導体、糖アルコール、電子伝達体、ｐＨ緩衝剤などが挙げられる。ここで、上記他の成分は、それぞれ、１種を単独で使用しても、または２種以上を組み合わせてしてもよい。また、上記他の成分のそれぞれは、１種を単独で使用しても、または２種以上を併用してもよい。なお、本開示の試薬は、溶血剤以外の界面活性剤は含まない。

本開示の試薬が上記式（１）のテトラゾリウム塩を発色色素として含む場合には、当該テトラゾリウム塩の還元反応により生成したホルマザンは、長波長側に極大吸収波長を有する。特に、上記式（１）のテトラゾリウム塩は、遷移金属イオンとキレート化合物を生成することにより、極大吸収波長をさらに長波長側にシフトすることができる。このため、本開示の試薬は、遷移金属化合物を含むことが好ましい。すなわち、本発明の好ましい形態では、試薬は、さらに遷移金属化合物を含む。本発明のより好ましい形態では、生体成分濃度測定試薬は、発色色素としてテトラゾリウム塩（特に上記式（１）のテトラゾリウム塩）を含み、さらに遷移金属化合物を含む。本発明のさらにより好ましい形態では、生体成分濃度測定試薬は、発色色素としてテトラゾリウム塩（特に上記式（１）のテトラゾリウム塩）を含み、さらに酸化還元酵素および遷移金属化合物を含む。当該形態によると、全血試料中の生体成分濃度を測定する場合であっても、ホルマザンが血色素の主な吸収帯と重ならない波長域（６００ｎｍ以上）に極大吸収波長を有する。このため、生体試料、特に全血試料に対しても、生体成分濃度の測定感度をさらに向上できる。試薬が遷移金属化合物を含む場合に使用できる遷移金属化合物としては、特に制限されない。具体的には、ニッケルイオン（Ｎｉ^２＋）、コバルトイオン（Ｃｏ^２＋）、亜鉛イオン（Ｚｎ^２＋）、銅イオン（Ｃｕ^２＋）などの遷移金属イオンを生成できる化合物が使用できる。このようなイオンであれば、ホルマザンの極大吸収波長をより長波長側にシフトできる。これらのうち、ニッケルイオンまたは亜鉛イオンが好ましい。また、上記遷移金属イオンを生成する化合物は特に制限されないが、水性液体（例えば、水、緩衝液、血液、体液）中でイオンを生成するものであることが好ましい。例えば、上記遷移金属の、塩化物、臭化物、硫酸塩、酢酸塩などの有機酸塩などが挙げられる。これらのうち、塩化ニッケル、酢酸ニッケル、塩化亜鉛、酢酸亜鉛が好ましく、塩化ニッケル、酢酸亜鉛がより好ましく、酢酸亜鉛が特に好ましい。上記遷移金属化合物は、１種を単独で使用しても、または２種以上を併用してもよい。また、本形態において、遷移金属化合物の含有量は、特に制限されないが、例えば、発色色素がテトラゾリウム塩である場合には、ホルマザン化合物の所望の極大吸収波長に応じて適切に選択できる。具体的には、遷移金属化合物の含有量は、遷移金属（遷移金属イオン）が、テトラゾリウム塩 １モルに対して、好ましくは０．１～１０モル、より好ましくは０．５～４モル、特に好ましくは１．０モルを超えて２．０モル未満となるような量である。または、本形態において、遷移金属化合物の含有量（固形分換算）は、試薬 １００質量部に対して、好ましくは５～３０質量部、より好ましくは５～１５質量部、特に好ましくは５質量部を超えて１２質量部未満となるような量である。このような量であれば、ホルマザン化合物の極大吸収波長を所望の波長域にまでシフトできる。また、このような量であれば、経時的、ヘマトクリット値などによる発色特性の変化をより抑制できる。上記遷移金属化合物の含有量は、試薬を調製する際の遷移金属化合物の仕込み量の割合と実質的に同等である。また、試薬が２種以上の遷移金属化合物を含む場合には、上記遷移金属化合物の含有量は配合する遷移金属化合物の合計量を意図する。

本開示の試薬は、（特に発色色素がテトラゾリウム塩である場合には）二糖類またはその誘導体を含むことが好ましい。これにより、亜硝酸（塩）や（含む場合には）遷移金属化合物の析出を抑え、試薬（特に乾燥試薬）の透明化を図ることができる。ゆえに、試薬（特に乾燥試薬）と試料とが速やかに均一に溶解して混合できるため、分析対象物（生体成分）濃度をより高精度で測定できる。二糖類またはその誘導体としては、スクラロース（１’，４，６’－トリクロロガラクトスクロース）、スクロース、トレハロースが好ましく使用できる。上記二糖類またはその誘導体は、１種を単独で使用しても、または２種以上を組み合わせて使用してもよい。これらのうち、スクラロースが好ましい。すなわち、本発明の好ましい形態では、生体成分濃度測定試薬は、発色色素としてテトラゾリウム塩（特に上記式（１）のテトラゾリウム塩）を含み、さらにスクラロース（１’，４，６’－トリクロロガラクトスクロース）、スクロース、トレハロースからなる群より選択される少なくとも一種を含む。本発明のより好ましい形態では、生体成分濃度測定試薬は、発色色素としてテトラゾリウム塩（特に上記式（１）のテトラゾリウム塩）を含み、さらにスクラロースならびに酸化還元酵素および遷移金属化合物の少なくとも一方を含む。本発明の特に好ましい形態では、生体成分濃度測定試薬は、発色色素としてテトラゾリウム塩（特に上記式（１）のテトラゾリウム塩）を含み、さらにスクラロース、酸化還元酵素および遷移金属化合物を含む。本形態において、二糖類またはその誘導体の含有量は、特に制限されないが、試薬の組成などに応じて適切に選択できる。具体的には、二糖類またはその誘導体の含有量（固形分換算）は、試薬 １００質量部に対して、好ましくは１０～４５質量部、より好ましくは１５～４０質量部、特に好ましくは２０質量部を超えて３５質量部未満となるような量である。このような量であれば、亜硝酸（塩）や（含む場合には）遷移金属化合物の析出をさらに効果的に抑え、乾燥後の試薬を非晶質として透明性を効果的に高めることができる。

本開示の試薬は、（特に発色色素がテトラゾリウム塩である場合には）糖アルコールを含むことが好ましい。これにより、濡れ性を向上できる。ゆえに、分析対象物（生体成分）が素早く反応部全体にいきわたるため、分析対象物（生体成分）は反応部全体で反応できるため、濃度をより高精度で測定できる。すなわち、本発明の好ましい形態では、生体成分濃度測定試薬は、さらに糖アルコールを含む。また、本発明のより好ましい形態では、生体成分濃度測定試薬は、発色色素としてテトラゾリウム塩（特に上記式（１）のテトラゾリウム塩）を含み、さらに糖アルコールを含む。本発明のさらにより好ましい形態では、生体成分濃度測定試薬は、発色色素としてテトラゾリウム塩（特に上記式（１）のテトラゾリウム塩）を含み、さらに糖アルコールならびに酸化還元酵素、遷移金属化合物および二糖類またはその誘導体からなる群より選択される少なくとも一種を含む。本発明の特に好ましい形態では、生体成分濃度測定試薬は、発色色素としてテトラゾリウム塩（特に上記式（１）のテトラゾリウム塩）を含み、さらに糖アルコール、酸化還元酵素、遷移金属化合物およびスクラロースを含む。ここで、糖アルコールとしては、例えば、ラクチトール、エリスリトール、ソルビトール、キシリトール、マンニトール、マルチトール、マルトトリオースなどが挙げられる。上記糖アルコールは、１種を単独で使用しても、または２種以上を併用してもよい。これらのうち、濡れ性のさらなる向上などの観点から、エリスリトール、ソルビトール、キシリトール、マンニトールが好ましく、エリスリトール、ソルビトール、キシリトール、マンニトールがより好ましく、ソルビトールが特に好ましい。本形態において、糖アルコールの含有量は、特に制限されないが、試薬の組成などに応じて適切に選択できる。具体的には、糖アルコールの含有量（固形分換算）は、試薬 １００質量部に対して、好ましくは０．１～１５質量部、より好ましくは０．５～５質量部、特に好ましくは１．０質量部を超えて３．０質量部未満となるような量である。このような量であれば、濡れ性をより効果的に向上できる。ゆえに、分析対象物（生体成分）がより素早く反応部全体にいきわたるため、分析対象物（生体成分）は反応部全体でより確実に反応できるため、濃度をさらにより高精度で測定できる。

本開示の試薬が二糖類またはその誘導体および糖アルコールを含む場合の、二糖類またはその誘導体および糖アルコールの混合比は、糖アルコールが、二糖類またはその誘導体 １００モルに対して、例えば、１モル以上であり、好ましくは１０モルを超える割合で含まれるような割合である。また、糖アルコールは、二糖類またはその誘導体 １００モルに対して、例えば、６０モル以下であり、好ましくは２５モル未満の割合で含まれる。このような混合比であれば、二糖類またはその誘導体による効果および糖アルコールによる効果がバランスよく両立できる。

試薬の使用形態は、特に制限されず、固体、ゲル状、ゾル状、または液体のいずれの形態であってもよい。試薬は、さらに水、バッファー（ｐＨ緩衝剤）等を含んでもよい。ここで、バッファーは、特に制限されず、一般的に生体成分濃度を測定する際に使用されるバッファーを同様にして使用してもよい。具体的には、リン酸緩衝剤、クエン酸緩衝剤、クエン酸－リン酸緩衝剤、トリスヒドロキシメチルアミノメタン－ＨＣｌ緩衝剤（トリス塩酸緩衝剤）、ＭＥＳ緩衝剤（２－モルホリノエタンスルホン酸緩衝剤）、ＴＥＳ緩衝剤（Ｎ－トリス（ヒドロキシメチル）メチル－２－アミノエタンスルホン酸緩衝剤）、酢酸緩衝剤、ＭＯＰＳ緩衝剤（３－モルホリノプロパンスルホン酸緩衝剤）、ＭＯＰＳ－ＮａＯＨ緩衝剤、ＨＥＰＥＳ緩衝剤（４－（２－ヒドロキシエチル）－１－ピペラジンエタンスルホン酸緩衝剤）、ＨＥＰＥＳ－ＮａＯＨ緩衝剤などのＧＯＯＤ緩衝剤、グリシン－塩酸緩衝剤、グリシン－ＮａＯＨ緩衝剤、グリシルグリシン－ＮａＯＨ緩衝剤、グリシルグリシン－ＫＯＨ緩衝剤などのアミノ酸系緩衝剤、トリス－ホウ酸緩衝剤、ホウ酸－ＮａＯＨ緩衝剤、ホウ酸緩衝剤などのホウ酸系緩衝剤、またはイミダゾール緩衝剤などを用いてもよい。これらのうち、リン酸緩衝剤、クエン酸緩衝剤、クエン酸－リン酸緩衝剤、トリス塩酸緩衝剤、ＭＥＳ緩衝剤、酢酸緩衝剤、ＭＯＰＳ緩衝剤、ＨＥＰＥＳ－ＮａＯＨ緩衝剤が好ましい。ここで、緩衝剤の濃度としては、特に制限されないが、０．０１～１．０Ｍであるのが好ましい。なお、本発明において緩衝剤の濃度とは、水性溶液中（塗布液中）に含まれる緩衝剤の濃度（Ｍ、ｍｏｌ／Ｌ）をいう。上記観点から、緩衝液のｐＨは、中性付近、例えば、５．０～８．０程度であることが好ましい。なお、生体成分濃度測定試薬が液状である場合の、テトラゾリウム塩の濃度は、所望の生体成分濃度を測定できる濃度であれば特に制限されないが、テトラゾリウム塩が所望の生体成分の存在量に対して十分量含まれることが好ましい。上記観点及び通常測定すべき生体成分濃度などを考慮すると、テトラゾリウム塩の濃度は、試薬において、好ましくは０．０１～０．２ｍｏｌ／Ｌ、より好ましくは０．０５～０．１ｍｏｌ／Ｌである。このような量であれば、テトラゾリウム塩は、生体試料に含まれる実質的にすべて（例えば、９５モル％以上、好ましくは９８モル％以上、特に好ましくは１００モル％）の生体成分の量に応じて反応する。このため、所望の生体成分濃度を正確にかつ良好な感度で速やかに測定できる。

好ましくは、試薬は、固体（乾燥状態）で使用される。すなわち、本発明の好ましい形態では、試薬は、乾燥試薬である。

本開示の試薬を用いることにより、全血試料中に含まれる特定の生体成分濃度を高精度に測定できる。また、本開示の試薬を用いることにより、溶血した全血試料に対して（すなわち、血球および血漿双方に含まれる）生体成分（分析対象物）の濃度を高精度で測定できる。

したがって、本発明は、全血試料を、本開示の生体成分濃度測定試薬と接触（反応）させて、発色量を測定し、当該発色量に基づいて前記全血試料中の生体成分の濃度を定量することを有する、生体成分濃度の測定方法をも提供する。

本開示において、試料は全血である。全血試料を、本開示の生体成分濃度測定試薬または当該色素を含むセンサもしくは成分測定装置（例えば、血糖計）に取り付けられたセンサ内に導入して、全血試料を試薬と接触（反応）させることにより、測定する。また、生体成分は、特に制限されず、通常、比色法または電極法により測定される生体成分が同様にして使用できる。具体的には、グルコース、コレステロール、中性脂肪、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸（ＮＡＤＰＨ）、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（ＮＡＤＨ）、尿酸などが挙げられる。すなわち、本発明の好ましい形態によると、本開示の試薬は、全血中の、グルコース、コレステロール、中性脂肪、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸（ＮＡＤＰＨ）、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（ＮＡＤＨ）または尿酸の濃度の測定のために使用される。また、本発明の好ましい形態によると、生体成分は、グルコース、コレステロール、中性脂肪、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸（ＮＡＤＰＨ）、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（ＮＡＤＨ）または尿酸である。

本開示において、測定方法は、特に制限されず、測定対象となる生体成分の種類に応じて適宜選択できる。例えば、発色色素がテトラゾリウム塩であり、生体成分がβ－Ｄ－グルコースであり、酸化還元酵素がグルコースデヒドロゲナーゼ（ＧＤＨ）である場合には、グルコースがＧＤＨによって酸化されてグルコン酸を生成する。その際にＧＤＨの補酵素または電子伝達物質が還元されることを利用し、具体的には結果として還元されたテトラゾリウム塩（ゆえにホルマザンまたはホルマザンと遷移金属イオンとのキレート化合物）の呈色度合を光学的に測定する方法（比色法）、および酸化還元反応によって生じた電流を測定する方法（電極法）に大別される。上記方法のうち、比色法による血糖値の測定は、血糖値の算出の際にヘマトクリット値を用いた補正を行ないやすい、製造工程が簡易である等の利点を有している。このため、生体成分濃度測定試薬は比色法に好適に使用できる。特に全血試料中のグルコース濃度を測定する場合には、比色法が好ましく使用される。

本開示の試薬は、各成分を混合した形態で生体成分濃度の測定に使用されてもよいが、センサ（生体成分濃度測定用センサ）に組み込まれてもよい。すなわち、本発明は、反応部を有する、全血試料中の生体成分濃度を測定するためのセンサであって、前記反応部は、本開示の生体成分濃度測定試薬を含む、センサ（以下では、単に「センサ」とも称する）をも提供する。また、本開示の試薬や方法は、自動分析機や測定キット、簡易血糖計等に組み込まれ、日常的な臨床検査に使用できる。また、本開示の試薬を市販のバイオセンサに組み込むことも可能である。なお、本開示の試薬をセンサに組み込む場合には、１センサ当たりの試薬の含有量は、特に制限されず、通常当該分野において使用される量が同様にして採用できるが、発色色素（特に、式（１）のテトラゾリウム塩）が所望の生体成分の存在量に対して十分量で含まれることが好ましい。上記観点及び通常測定すべき生体成分濃度などを考慮すると、発色色素の濃度は、１センサ当たり、好ましくは３～５０ｎｍｏｌ、より好ましくは１０～４０ｎｍｏｌ、特に好ましくは２０～３０ｎｍｏｌである。このような量であれば、発色色素は、全血試料に含まれる実質的にすべての生体成分の量に応じて反応する。このため、所望の生体成分濃度を正確にかつ良好な感度で速やかに測定できる。

以下では、比色法により血糖値を測定するに使用される本開示の測定用センサ（比色式血糖計）の形態を、図を参照しながら説明する。しかしながら、本発明は、本開示の生体成分濃度測定試薬を使用することを特徴とし、センサの構造は特に制限されない。このため、本開示の生体成分濃度測定試薬を、市販の測定用センサまたはチップならびに国際公開第２０１６／０５１９３０号、国際公開第２０１８／５１８２２号、国際公開第２０２０／１３７５３２号等の公報に記載されるセンサまたはチップに適用してもよい。同様にして、下記実施形態では、血糖値の測定を目的としたセンサの具体的な形態を説明するが、測定用センサは当該用途に限定されず、他の用途にも同様にしてまたは適切に修飾して適用できる。

図１は、本実施形態に係る測定用センサを用いたグルコース（血糖）の検出に用いられる血糖計を概略的に示す平面図である。

図１において、血糖計１０は、全血試料中のグルコース（血糖）を測定する機器として構成されている。この血糖計１０は、主に、ユーザ（被検者）が操作するパーソナルユースとして用いられ得る。ユーザは、食前の血糖を測定して自身の血糖管理を行うこともできる。また、医療従事者が被検者の健康状態を評価するために血糖計１０を使用することもでき、この場合、血糖計１０を適宜改変して医療施設等に設置可能な構成としてもよい。

血糖計１０は、全血試料中に含まれるグルコースの含有量（血糖値）を光学的に測定する、比色法の原理を採用している。特に、この血糖計１０は、所定波長の測定光を照射し、測定用センサ１２の測定エリアを透過した光を受光する、透過タイプの測定部１４により血糖測定を行う。

血糖計１０は、血液を取り込んだ測定用センサ１２を装着して、または測定用センサ１２を装着した状態で測定用センサ１２内に血液を導入し、測定部１４によりグルコースを検出する。測定用センサ１２は、１回の測定毎に廃棄するディスポーザブルタイプに構成されてもよい。一方、血糖計１０は、ユーザが測定を簡易に繰り返すことができるように、携帯可能且つ頑強な機器に構成されることが好ましい。

測定用センサ１２は、図２に示すように、板状に形成されたセンサ本体部１８と、センサ本体部１８の内部で板面の面方向に延びる空洞部２０（液体用空洞部）とを備える。

センサ本体部１８は、図１及び図２に示すように、血糖計１０の挿入および離脱方向（血糖計１０の先端および基端方向、すなわちＢ方向）に長辺２２を有すると共に、Ａ方向に短い短辺２４を有する長方形状に形成されている。例えば、センサ本体部１８の長辺２２の長さは、短辺２４の２倍以上の長さに設定されるとよい。これにより測定用センサ１２は、血糖計１０に対して充分な挿入量が確保される。

また、センサ本体部１８の厚みは、長方形状に形成された側面に比べて極めて小さく（薄く）形成される（図２では、敢えて十分な厚みを有するように図示している）。例えば、センサ本体部１８の厚みは、上述した短辺２４の１／１０以下に設定されることが好ましい。このセンサ本体部１８の厚みについては、血糖計１０の挿入孔５８の形状に応じて適宜設計されるとよい。

測定用センサ１２は、空洞部２０を有するように、一対の板片３０と、一対のスペーサ３２とによりセンサ本体部１８を構成している。

図３は、図１の測定用センサを示す上面視図である。図３中では、センサ本体部１８の角部が尖っているが、例えば角部は丸角に形成されてもよい。また、センサ本体部１８は、薄板状に限定されるものではなく、その形状を自由に設計してよいことは勿論である。例えば、センサ本体部１８は、上面視で、正方形状や他の多角形状、または円形状（楕円形状を含む）等に形成されてもよい。

センサ本体部１８の内部に設けられる空洞部２０は、センサ本体部１８の短軸方向中間位置にあり、センサ本体部１８の長手方向にわたって直線状に形成される。この空洞部２０は、センサ本体部１８の先端辺２４ａに形成された先端口部２０ａと、基端辺２４ｂに形成された基端口部２０ｂにそれぞれ連なり、センサ本体部１８の外側に連通している。空洞部２０は、先端口部２０ａからユーザの血液を取り込むと、毛細管現象に基づき延在方向に沿って血液を流動させ得る。空洞部２０を流動する血液は少量であり、基端口部２０ｂまで移動しても張力により漏れが抑止される。なお、センサ本体部１８の基端辺２４ｂ側には、血液を吸収する吸収部（例えば、後述するスペーサ３２を基端側のみ多孔質体としたもの等）が設けられていてもよい。

また、空洞部２０の所定位置（例えば、図３中に示す先端口部２０ａと基端口部２０ｂの中間点よりも若干基端寄りの位置）には、血液中のグルコース（血糖）と反応することにより血液中のグルコース（血糖）濃度に応じた色に呈色する試薬（発色試薬）２６が塗布され、血糖計１０により測定がなされる測定対象部２８が設定されている。空洞部２０を基端方向に流動する血液が測定対象部２８に塗布された試薬２６と接触し、血液と試薬２６とが反応することで呈色する。なお、空洞部２０の長手方向上において、試薬２６の塗布位置と測定対象部２８は互いにずれていてもよく、例えば試薬２６が塗布された反応部を測定対象部２８の血液流動方向上流側に設けてもよい。

測定用センサ１２は、以上の空洞部２０を有するように、一対の板片３０と、一対のスペーサ３２とによりセンサ本体部１８を構成している。一対の板片３０は、側面視でそれぞれ上述した長方形状に形成され、互いに積層方向に配置される。つまり、一対の板片３０は、センサ本体部１８の両側面（上面および下面）を構成している。各板片３０の板厚は、非常に小さく、例えば、５～５０μｍ程度の同一寸法に設定されるとよい。２つ（一組）の板片３０の厚みは、相互に異なっていてもよい。

一対の板片３０は、面方向と直交する方向からある程度の押圧力が加えられても、板形状を維持して塑性変形しない強度を有する。また、各板片３０は、測定光が透過可能となるように透明部又は半透明部分を備える。さらに、各板片３０は、空洞部２０において血液を流動させ得るように適度な親水性を有する平坦状の板面に形成されていることが好ましい。

各板片３０を構成する材料は、特に限定されるものではないが、熱可塑性樹脂材料、ガラス、石英等を適用するとよい。熱可塑性樹脂材料としては、例えば、ポリオレフィン（例えば、ポリエチレン、ポリプ口ピレンなど）、シクロオレフィンポリマー、ポリエステル（例えば、ポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）、ポリエチレンナフタレートなど）、ポリ塩化ビニル、ポリスチレン、ＡＢＳ樹脂、アクリル樹脂、ポリアミド、フッ素樹脂等の高分子材料又はこれらの混合物が挙げられる。

また、一対のスペーサ３２は、一対の板片３０の間に挟まれるように配置され、所定の接合手段（接着剤等）よりに各板片３０の対向面に強固に接着される。つまり各スペーサ３２は、一対の板片３０同士を離間させるように間に配置されることで、一対の板片３０と一対のスペーサ３２自体の間に空洞部２０を形成させる部材である。この場合、一方のスペーサ３２は、図３中のセンサ本体部１８の上側長辺２２ａに接し、この上側長辺２２ａに沿って先端および基端方向に延びるように配置される。他方のスペーサ３２は、図３中のセンサ本体部１８の下側長辺２２ｂに接し、この下側長辺２２ｂに沿って先端および基端方向に延びるように配置される。

一対のスペーサ３２を構成する材料（基材）は、特に限定されるものではないが、例えば、スチレン系、ポリオレフィン系、ポリウレタン系、ポリエステル系、ポリアミド系、ポリブタジエン系、トランスポリイソプレン系、フッ素ゴム系、塩素化ポリエチレン系等の各種熱可塑性エラストマーが挙げられる。または、熱可塑性エス卜ラマ一以外にも、弾性変形可能な種々の材料を適用してもよく、また弾性変形可能な多孔質体（例えばスポンジ）等の構造体を適用してもよい。さらに、一対の板片３０の間で硬化状態又は半硬化状態となることにより板片３０同士を接着する接着剤を基材の一方または両面に有するスペーサ３２として適用してもよい。またさらに、スペーサ３２は、試薬２６を含有することで、空洞部２０に試薬２６を溶出する構成であってもよい。

板片３０やスペーサ３２は、親水化処理されたものであってもよい。親水化処理の方法としては、例えば界面活性剤、ポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコール、ヒドロキシプロピルセルロース、水溶性シリコーンの他、ポリアクリル酸、ポリビニルピロリドン、ポリアクリルアミド等の親水性高分子を含有した水溶液を浸漬法またはスプレー法等により塗布する方法や、プラズマ照射、グロー放電、コロナ放電、紫外線照射（例えば、エキシマ光照射）等の方法等が挙げられ、これらの方法を単独又は組み合わせてもよい。

次に血糖計１０の装置本体１６について説明する。図１に示すように、血糖計１０は、外観を構成する筐体４０を有する。筐体４０は、ユーザが把持操作し易い大きさでその内部に血糖計１０の制御部４２を収容する箱体部４４と、箱体部４４の一辺（先端側）から先端方向に突出し内部に光学系の測定部１４を収容する筒状の測光部４６とを含む。また、箱体部４４の上面には、電源ボタン４８、操作ボタン５０、ディスプレイ５２が設けられ、測光部４６の上面にはイジェクトレバー５４が設けられている。

電源ボタン４８は、ユーザの操作下に、血糖計１０の起動と起動停止を切り換える。操作ボタン５０は、起動状態となった血糖計１０において、ユーザの操作に基づき、血糖値の測定や表示を行う、測定結果（過去の測定結果を含む）の表示を切り換える等の操作部として機能する。ディスプレイ５２は、液晶や有機ＥＬ等により構成され、測定結果の表示やエラー表示等のように測定操作においてユーザに提供する情報を表示する。

イジェクトレバー５４は、先端および基端方向に移動可能に設けられ、測光部４６内に設けられる図示しないイジェク卜ピンのロックを解除して、イジェクトピンを先端方向に進出可能とする。

一方、装置本体１６の測光部４６は、ユーザの指等に先端を押し当てるために、箱体部４４から先端方向に長く延出している。図２に示すように、この測光部４６には、挿入孔５８を有するセンサ装着部６０と、血中のグルコース（血糖）を光学的に検出する測定部１４とが設けられる。

センサ装着部６０は、高い硬質性（剛性）を有する材料（例えば、ステンレス）により、外方向に突出するフランジ部６０ａを先端側に備え、軸方向に所定長さを有する筒状に形成される。このセンサ装着部６０は、樹脂材料で構成された測光部４６の先端面と軸心部（中心部）にわたって位置決め固定される。測光部４６の内面には、図４Ａに示すように、センサ装着部６０を強固に固定する固定壁４６ａが突出形成されている。

センサ装着部６０を構成する材料としては、例えば、ステンレスやチタン等の金属、アルマイト皮膜処理をしたアルミニウム、液晶ポリマー、ガラスやマイカ等のフィラーを添加したプラスティック、ニッケルめっき等で表面を硬化皮膜したプラスティック、カーボンファイバー、ファインセラミック等、硬質で安易に寸法が変化せず、また繰り返し測定用センサの抜き差しをしても摩耗しにくく、且つ寸法精度良く加工可能な材料が挙げられる。この中でも金属材料を適用すれば、センサ装着部６０の製造（射出成形やプレス成形等）時に、高い寸法精度且つ容易に挿入孔５８を成形することができる。なお、装置本体１６は、測光部４６自体を硬質な材料（例えば、金属材料）により構成することで、センサ装着部６０を一体成形していてもよい。

センサ装着部６０の軸心部には、このセンサ装着部６０の壁部６２に囲われることにより挿入孔５８が設けられる。挿入孔５８は、挿入方向（Ｂ方向）に長く、左右幅方向（Ａ方向）に短い断面長方形状に形成されている。挿入孔５８は、センサ装着部６０が測光部４６に固着された状態で、その先端面から奥部（基端方向）に向かって所定深さを有する。

センサ装着部６０の先端側には、挿入孔５８に連なると共に、外部に連通する挿入開口部５８ａが形成される。この挿入開口部５８ａの挿入方向（Ｂ方向）の寸法は、測定用センサ１２の短辺２４の寸法（Ａ方向の長さ）に一致している。また、挿入開口部５８ａの左右幅方向の寸法、すなわち挿入孔５８の側面を構成する一対の壁部６２の間隔は、図４Ａに示すように、測定用センサ１２の積層方向の厚み（図４Ａ中のＴａｌｌ）と実質的に同じである。

センサ装着部６０は、挿入孔５８（測定用孔部５９）が延在する途中位置に、測光部４６の固定壁４６ａと協働して一対の素子収容空間６４を形成している。一対の素子収容空間６４は、測定部１４の一部であり、挿入孔５８を挟んで互いに対向位置に設けられ、センサ装着部６０により形成された各導光部６６を介して測定用孔部５９に連通している。

測定部１４は、一方の素子収容空間６４に発光素子６８を収容することで発光部７０を構成し、他方の素子収容空間６４に受光素子７２を収容することで受光部７４を構成している。センサ装着部６０の導光部６６は、適宜な直径を有する円形状の穴に形成されることで、所謂アパーチャの役割を果たしている。

発光部７０の発光素子６８は、第１の波長を有する測定光を測定用センサ１２に照射する第１発光素子６８ａと、第１の波長とは異なる第２の波長を有する測定光を測定用センサ１２に照射する第２発光素子６８ｂとを含む（図２中では図示を省略する）。第１発光素子６８ａと第２発光素子６８ｂは、素子収容空間６４の導光部６６を臨む位置に並設されている。

発光素子６８（第１及び第２発光素子６８ａ、６８ｂ）は、発光ダイオード（ＬＥＤ）で構成され得る。第１の波長は、血糖量に応じた試薬２６の呈色濃度を検出するための波長であり、例えば、６００ｎｍ～６８０ｎｍである。第２の波長は、血液中の血色素濃度を検出するための波長であり、例えば、５１０ｎｍ～５４０ｎｍである。箱体部４４内の制御部４２は、駆動電流を供給して、第１及び第２発光素子６８ａ、６８ｂをそれぞれ所定タイミングで発光させる。この場合、呈色濃度から得られる血糖値を赤血球濃度から得られるヘマトクリット値を用いて補正し、血糖値を求める。なお、さらに他の測定波長で測定することで、血球に起因するノイズを補正してもよい。

受光部７４は、素子収容空間６４の導光部６６を臨む位置に１つの受光素子７２を配置
して構成される。この受光部７４は、測定用センサ１２からの透過光を受光するものであり、例えば、フォトダイオード（ＰＤ）で構成され得る。

また、挿入孔５８の底部（基端面）には、イジェクトレバー５４に連結されたイジェクトピン５６（イジェクト部）が設けられている。イジェクトピン５６は、測光部４６の軸方向に沿って延びる棒部５６ａと、棒部５６ａの先端部で径方向外側に大径な受部５６ｂとを備える。受部５６ｂには、挿入孔５８に挿入された測定用センサ１２の基端辺２４ｂが接触する。また、挿入孔５８の底部とイジェクトピン５６の受部５６ｂの間には、イジェクトピン５６を非接触に囲うコイルバネ７６が設けられている。コイルバネ７６は、イジェクトピン５６の受部５６ｂを弾性的に支持する。

測定用センサ１２の挿入が完了すると、図４Ｂに示すように、測定用センサ１２の測定対象部２８が導光部６６に重なる位置に配置される。

イジェクトピン５６は、ユーザによる測定用センサ１２の挿入に伴い受部５６ｂが押されることで基端方向に変位し、筐体４０内に設けられた図示しないロック機構によりロック（固定）される。コイルバネ７６は、受部５６ｂの変位に従って弾性的に収縮する。そして、ユーザのイジェクトレバー５４の操作により、イジェクトピン５６が多少移動するとロック機構のロックが解除され、コイルバネ７６の弾性復元力により先端方向にスライドする。これにより、測定用センサ１２がイジェクトピン５６に押し出されて、挿入孔５８から取り出される。

図１に戻り、装置本体１６の制御部４２は、例えば、図示しない演算部、記憶部、入出力部を有する制御回路によって構成される。この制御部４２は、周知のコンピュータを適用することが可能である。制御部４２は、例えば、ユーザの操作ボタン５０の操作下に、測定部１４を駆動制御して血中のグルコースを検出及び算出し、ディスプレイ５２に算出した血糖値を表示する。

例えば、測定用センサ１２に対し測定光を透過させて分析対象物（例えば、グルコース）を測定する血糖計１０において、制御部４２は、以下の式（Ａ）で示すＢｅｅｒ－Ｌａｍｂｅｒｔ則に基づいて測定結果を算出する。

上記式（Ａ）において、ｌ_０は全血試料に入射する前の光の強度、ｌ_１は全血試料から出射した後の光の強度、αは吸光係数、Ｌは測定光が通過する距離（セル長）である。

本発明の効果を、以下の実施例および比較例を用いて説明する。ただし、本発明の技術的範囲が以下の実施例のみに制限されるわけではない。なお、下記実施例において、特記しない限り、操作は室温（２５℃）で行われた。また、特記しない限り、「％」および「部」は、それぞれ、「質量％」および「質量部」を意味する。

合成例１：テトラゾリウム塩１の合成
下記方法に従って、下記構造を有する化合物（テトラゾリウム塩１）を合成した。

１．ヒドラゾン化合物１の合成
４－ホルミルベンゼン－１，３－ジスルホン酸二ナトリウム（Ｄｉｓｏｄｉｕｍ ４－Ｆｏｒｍｙｌｂｅｎｚｅｎｅ－１，３－ｄｉｓｕｌｆｏｎａｔｅ）（東京化成工業株式会社製）１．５９ｇ及び（６－メトキシベンゾチアゾール－２－イル）ヒドラジン（２－Ｈｙｄｒａｚｉｎｏ－６－ｍｅｔｈｏｘｙ－１，３－ｂｅｎｚｏｔｈｉａｚｏｌｅ）（Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社製）１．０ｇをＲＯ水６０ｍＬに懸濁させた。この懸濁液を、酢酸酸性下、ウォーターバスにて６０℃で２時間、加熱・攪拌した。加熱攪拌終了後、溶媒を除去した。この残渣をイソプロパノールで洗浄した後、沈殿を濾別した。この沈殿をドラフト中で乾燥させて、ヒドラゾン化合物１を得た。

２．ホルマザン化合物１の合成
上記１．のヒドラゾン化合物１ ０．７６ｇをＲＯ水１０ｍＬおよびＤＭＦ１０ｍＬの混合液に溶解して、ヒドラゾン化合物１溶液を調製した。ｐ－アニシジン－３－スルホン酸（ｐ－ａｎｉｓｉｄｉｎ－３－ｓｕｌｆｏｎｉｃ ａｃｉｄ）（東京化成工業株式会社製）０．２６４ｇをＲＯ水４．０９ｍＬに懸濁させ、１０Ｎ ＮａＯＨ １３０μＬを加え溶解させた。この溶液を０℃に保持しつつ、９．６Ｎ ＨＣｌ ２８０μＬを加え、亜硝酸ナトリウム溶液を滴下し、ジアゾ化を行った。このジアゾ化溶液を－２０℃に保持し、ヒドラゾン化合物１溶液に滴下した。滴下終了後、１０Ｎ ＮａＯＨ３００μＬを滴下し、２時間室温（２５℃）で攪拌して、ホルマザン化合物１を含む溶液（ホルマザン化合物１溶液）を調製した。このホルマザン化合物１溶液を、９．６Ｎ ＨＣｌにてｐＨを中性に調整し、溶媒を除去した。得られた残渣をイソプロパノールで洗浄した後、沈殿を濾別した。この沈殿を乾燥させ、ホルマザン化合物１を得た。

３．ホルマザン化合物１の精製およびテトラゾリウム塩１の合成
上記２．のホルマザン化合物１をＲＯ水１０ｍＬに溶解して、ホルマザン化合物１溶液を調製した。ディスポーザブルカラム（大きさ：２０ｃｍ×５ｃｍ）に、カラムクロマトグラフィー用充填剤（ナカライテスク株式会社製、ＣＯＳＭＯＳＩＬ ４０Ｃ１８－ＰＲＥＰ）を充填し、カラム分取システム（日本ビュッヒ社製、商品名：セパコア）にセットした。このカラムシステムを用いて、ホルマザン化合物１溶液を精製した。採取したフラクションの溶媒を除去し、得られた固形成分にメタノール１５ｍＬ、９．６Ｎ ＨＣｌ ２５０μＬ、１５％亜硝酸エチル（ＣＨ_３ＣＨ_２ＮＯ_２）－エタノール溶液５ｍＬを加えて、７２時間、室温（２５℃）遮光にて攪拌した。

４．テトラゾリウム塩１の回収
上記３．の反応溶液に対し、ジエチルエーテル加えて、テトラゾリウム塩１を沈殿させた。この沈殿を遠心分離し、上澄みを除去後、さらにジエチルエーテルで洗浄した。得られた沈殿をドラフト内で乾燥させ、テトラゾリウム塩１を得た。なお、得られたテトラゾリウム塩１から生成したホルマザンの６００ｎｍ以上８００ｎｍ以下における、最大吸光度（２００ｍｇ／ｄＬのグルコース水溶液中、セル長＝０．０４５ｍｍ）を測定したところ、０．５以上であった。また、テトラゾリウム塩１から生成したホルマザンと遷移金属イオン（Ｚｎ^２＋）とのキレート化合物の最大吸収波長（λｍａｘ）を測定したところ、５５０ｎｍであった。

参考例１：酸化還元電位の測定
上記合成例１で得られたテトラゾリウム塩１、２－ベンゾチアゾリル－３－（４－カルボキシ－２－メトキシフェニル）－５－［４－（２－スルホエチルカルバモイル）フェニル］－２Ｈ－テトラゾリウム(2-Benzothiazolyl-3-(4-carboxy-2-methoxyphenyl)-5-[4-(2-sulfoethylcarbamoyl)phenyl]-2H-tetrazolium)（Dojindo Molecular Technologies, Inc製、商品名：ＷＳＴ－４）、３－（４，５－ジメチル－チアゾール－２－イル）－２，５－ジフェニルテトラゾリウムブロミド((3-(4,5-di-methylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide)（ＭＴＴ）および亜硝酸ナトリウムの酸化還元電位を下記方法に従って測定した。結果を下記表１に示す。なお、下記表１において、「酸化還元電位差」は、各化合物の酸化還元電位と亜硝酸ナトリウムの酸化還元電位との差（Ｖ）［＝（各化合物の酸化還元電位（Ｖ））－（亜硝酸ナトリウムの酸化還元電位（Ｖ））］を示す。

［酸化還元電位の測定］
ＰＢＳ溶液（リン酸バッファ：ｐＨ ７．５）１０ｍＬを準備する。また、このＰＢＳ溶液に、各化合物を１ｍＭの濃度となるように添加して、測定試料（テトラゾリウム塩１を含む測定試料のｐＨ＝７．５、ＷＳＴ－４を含む測定試料のｐＨ＝７．２、亜硝酸ナトリウムを含む測定試料のｐＨ＝７．５）を調製する。

ＰＢＳ溶液および各測定試料について、図６に示される三電極測定により、掃引速度 ０．１Ｖ／ｓ、印加電圧範囲：－１Ｖ～＋１Ｖの条件で、下記３電極を用いて、サイクリックボルタンメトリー（ＣＶ）を行い、各化合物の酸化還元電位を測定した。

（電極）
参照電極：飽和ＫＣｌ銀－塩化銀電極
作用電極：ＧＣＥガラス状カーボン電極
対極：Ｐｔカウンター電極。

テトラゾリウム塩１およびＷＳＴ－４のＣＶ測定結果を図７に示し、亜硝酸ナトリウムのＣＶ測定結果を図８に示す。なお、図７及び図８中、ＰＢＳ溶液をベースとした。また、図７中、テトラゾリウム塩１およびＷＳＴ－４の還元電位は２つのピークを示している。図中、還元電位のピークが高いほど電子を奪いやすいことが示される。１段階目のピーク（電位の高い方のピーク）における電位は、発色色素の発色（テトラゾリウムからホルマザンへの変化）が始まる際の電位を表す。このため、本明細書における「酸化還元電位」は、この１段階目のピーク（電位の高い方のピーク）における電位を意図する。

参考例２：テトラゾリウム塩１と亜硝酸ナトリウムとの競合評価
グルコース濃度測定における、テトラゾリウム塩１と亜硝酸ナトリウムとの競合を、下記方法に従って、評価した。結果を下記表２－１に示す。

テトラゾリウム塩１が５２．１ｍＭまたは１０４．２ｍＭ、酢酸亜鉛が２０３．６ｍＭ、およびグルコースデヒドロゲナーゼ（ＦＡＤ－ＧＤＨ）（東洋紡株式会社、商品名：ＧＬＤ－３５１(D-Glucose:(flavine adenine dinucleotide)-dehydrogenase)）（酸化還元酵素）が９．１ｇ／Ｌとなるように、それぞれ、ＲＯ水に溶解して、溶液２－Ａおよび溶液２－Ｂを調製した。別途、グルコースが５ｇ／ｄＬ、亜硝酸ナトリウムが０Ｍ（無配合）、２．５Ｍまたは５．０Ｍの濃度となるように、ＲＯ水に溶解して、溶液２－Ｃ、溶液２－Ｆ、溶液２－Ｅを調製した。次に、表２－１に示される組成（終濃度）になるように、溶液２－Ａまたは溶液２－Ｂと、溶液２－Ｃ、溶液２－Ｆまたは溶液２－Ｅとを混合して、混合溶液２－１～２－６を調製した。なお、表２－１に記載の濃度は、各混合溶液中の亜硝酸ナトリウムまたはテトラゾリウム塩１の終濃度である。また、各混合溶液中のテトラゾリウム塩１および亜硝酸ナトリウム以外の各成分の終濃度は、酢酸亜鉛が１９５．４ｍＭ、酸化還元酵素（ＦＡＤ－ＧＤＨ）＝８．８ｇ／Ｌ、およびグルコース＝２００ｍｇ／ｄＬである。

混合してから１分後の各混合溶液の６０５ｎｍでの吸光度を測定した。次に、テトラゾリウム塩１濃度が１００ｍＭでかつ亜硝酸ナトリウム濃度が０ｍＭである時の吸光度を１００．０％とした際の、各混合溶液の発色比率を算出し、結果を下記表２－１に示す。

参考例３：ＷＳＴ－４と亜硝酸ナトリウムとの競合評価
グルコース濃度測定における、ＷＳＴ－４と亜硝酸ナトリウムとの競合を、下記方法に従って、評価した。結果を下記表２－２に示す。

ＷＳＴ－４（最大吸収波長（λｍａｘ）＝６００ｎｍ）が５２．１ｍＭまたは１０４．２ｍＭ、およびグルコースデヒドロゲナーゼ（ＦＡＤ－ＧＤＨ）（東洋紡株式会社、商品名：ＧＬＤ－３５１(D-Glucose:(flavine adenine dinucleotide)-dehydrogenase)）（酸化還元酵素）が９．１ｇ／Ｌとなるように、それぞれ、ＲＯ水に溶解して、溶液３－Ａおよび溶液３－Ｂを調製した。別途、グルコースが５ｇ／ｄＬ、亜硝酸ナトリウムが０Ｍ（無配合）、２．５Ｍまたは５．０Ｍの濃度となるように、ＲＯ水に溶解して、溶液３－Ｃ、溶液３－Ｆ、溶液３－Ｅを調製した。次に、表２－２に示される組成（終濃度）になるように、溶液３－Ａまたは溶液３－Ｂと、溶液３－Ｃ、溶液３－Ｆまたは溶液３－Ｅとを混合して、混合溶液３－１～３－６を調製した。なお、表２－２に記載の濃度は、各混合溶液中の亜硝酸ナトリウムまたはテトラゾリウム塩１の終濃度である。また、各混合溶液中のテトラゾリウム塩１および亜硝酸ナトリウム以外の各成分の終濃度は、酸化還元酵素（ＧＤＨ）＝８．８ｇ／Ｌ、およびグルコース＝２００ｍｇ／ｄＬである。

混合してから１分後の各混合溶液の６５０ｎｍでの吸光度を測定した。次に、ＷＳＴ－４濃度が１００ｍＭでかつ亜硝酸ナトリウム濃度が０ｍＭである時の吸光度を１００．０％とした際の、各混合溶液の発色比率を算出し、結果を下記表２－２に示す。

上記表２から、テトラゾリウム塩１およびＷＳＴ－４は、８０％を超える発色比率を示し、亜硝酸ナトリウム不存在の場合とほぼ同等の発色を示すことが分かる。

特に、テトラゾリウム塩１では、亜硝酸ナトリウムを加えた混合溶液２－２、２－３、２－５および２－６は、亜硝酸ナトリウムが存在しない混合溶液２－１、２－４と比較して、発色がほとんど阻害されなかった。今回は、このような競合反応が進みやすい水溶液で評価をした。反応条件が厳しい溶液系の評価においても、発色色素の発色が阻害されなかったことから、乾燥試薬でも同様の効果が得られると考察される。

なお、上記表には示さなかったが、ＭＴＴを使用した際の発色比率は、テトラゾリウム塩１およびＷＳＴ－４の場合に比べて、有意に低かった。

実施例１：血糖計センサでの評価
１Ｍ 酢酸亜鉛水溶液（１Ｍ＝１８３．４８ｇ／Ｌ） ４６．８μＬ（遷移金属化合物としての酢酸亜鉛＝８．６ｍｇ相当、酢酸亜鉛が水和物の場合には、水の分子量を除外して計算する）およびＲＯ水 ３３９．６μＬ（３３９．６ｍｇ）を混合して、混合液１を調製した。次に、この混合液１に、亜硝酸ナトリウム（１Ｍ＝６８．９９５ｇ／Ｌ） ３．６ｍｇを加えて、混合液２を調製した。次に、この混合液２に、スクラロース（１Ｍ＝３９７．６４ｇ／Ｌ） ３３．４ｍｇを加えて、混合液３を調製した。次に、この混合液３に、糖アルコールとしてのソルビトール（１Ｍ＝１８２．１７ｇ／Ｌ） ２．５ｍｇを加えて、混合液４を調製した。次に、この混合液４に、発色色素としての合成例１のテトラゾリウム塩１（１Ｍ＝６９３ｇ／Ｌ） ２８．１ｍｇを加えて、混合液５を調製した。

別途、溶血剤としての非イオン性界面活性剤（ポリオキシエチレン（９）オクチルフェニルエーテル、Sigma-Aldrich社製、Ｎｏｎｉｄｅｔ^ＴＭ Ｐ－４０、比重＝１．０６ｇ／ｍＬ；以下、単に「Ｎｏｎｉｄｅｔ」または「Ｎｏｎｉｄｅｔ Ｐ－４０」とも称する） １００．２ｍｇをＲＯ水 ２４６．４μＬ（２４６．４ｍｇ）に加えて、３０質量％ Ｎｏｎｉｄｅｔ水溶液を調製した。

上記で調製した混合液５、３０質量％ Ｎｏｎｉｄｅｔ水溶液およびグルコースデヒドロゲナーゼ（ＦＡＤ－ＧＤＨ）（東洋紡株式会社、商品名：ＧＬＤ－３５１）（酸化還元酵素）を、下記表３の組成になるように、混合して、塗布液（合計量＝７３１．３μＬ）を試薬として調製した。

以下のようにして図５に示される血糖計センサ（血糖値測定センサ）を作製した。まず、ステージ上に載置されたポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）フィルム４０（製造会社名：東レ株式会社、商品名：ルミラーＴ６０、厚み１８８μｍ、８ｍｍ×８０ｍｍ）上に（図５Ａ中の「試薬塗布面３」側に）、上記にて調製した塗布液３．１５μＬをインクジェット（マイクロジェット社製、Ｌａｂｏｊｅｔ－５００Ｂｉｏ）を用いて、±８μｍ以内のパターニング精度および１ｐＬ～１０００ｐＬの吐出液量のヘッドを用いて塗布し、２５℃で１０分間乾燥することにより、試薬層をＰＥＴフィルム４０に形成した（試薬層付ＰＥＴ）。この試薬層付ＰＥＴを所定の大きさ（８ｍｍ×１．６ｍｍ）に切り出してフィルム片（図５Ａ中の「フィルム片２」）を作製した。このフィルム片には、１個あたり０．０６３μＬの塗布液が塗布されていた。血糖値測定センサ１個あたりの試薬質量（塗布液 ０．０６３μＬ）は、塗布液を調製する際に添加した各試薬成分の組成（質量）と、調製した塗布液（試薬液）の最終容量（７３１．３μＬ）および試薬層付ＰＥＴから作製したフィルム片２の個数から、算出できる。例えば、このフィルム片は、１個あたり、２．４μｇのテトラゾリウム塩１（発色色素）、０．７μｇの酢酸亜鉛（遷移金属化合物）、０．３μｇの亜硝酸ナトリウム、２．９μｇのスクラロース、０．２μｇのソルビトール（糖アルコール）、０．７μｇの酸化還元酵素（ＦＡＤ－ＧＤＨ）、２．６μｇのＮｏｎｉｄｅｔ（溶血剤）を乾燥試薬の形態で含む。

第２基材としての親水処理ポリエステルフィルム（３Ｍ社製、商品名：親水処理ポリエステルフィルム９９０１Ｐ、厚み：１００μｍ）（図５Ａ中の「ポリエステルフィルム５」）の両側に、両面テープ（製造会社名：日東電工、商品名：５６０５ＢＮ、厚み：５０μｍ）（図５Ａ中の「両面テープ４」）をスペーサ及び接着部として設けた（センサ土台）。このセンサ土台に、上記にて作製したフィルム片（図５Ａ中の「フィルム片２」）を、試薬層（図５Ａ中の「試薬塗布面３」）がセンサ土台と対向し、かつ、流路（図５Ａ中の「流路６」）の中心となるように貼り付けた。フィルム片を貼り付ける際には、フィルム片が両面テープに所定量埋め込まれるように押圧した。さらに、フィルム片が貼り付けられたセンサ土台に、親水処理ポリエステルフィルムに両面テープ（製造会社名：３Ｍ社、商品名：ポリエステルフィルム基材、両面粘着テープ９９６５、厚み：８０μｍ）が貼り付けられたフィルム片（図５Ａ中の「ポリエステルフィルム７」）を被せて、血糖計センサ（血糖値測定センサ）を作製した。

作製した血糖計センサ（血糖値測定センサ）は、流路部と測定部（試薬部）とを有する。図５Ｂ中の流路部において、流路長さ（図５Ｂ中の「Ｌ１」）は９ｍｍであり、幅（図５Ｂ中の「Ｗ」）は１．１ｍｍであり、厚み（図５Ｂ中の「ｔ１」）は０．１３ｍｍであった。図５Ｂ中の測定部において、試薬長さ（図５Ｂ中の「Ｌ２」）は１．６ｍｍであり、幅（図５Ｂ中の「Ｗ」）は１．１ｍｍであり、厚み（図５Ｂ中の「ｔ２」）は０．０５ｍｍであった。

なお、流路部におけるセンサ厚み方向に対して直交する方向（流路長手方向）の長さＬ１としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、５～１０ｍｍが好ましい。ここで、長さＬ１は、長いと、成分測定装置への装着（挿入）が容易となる点、および光学測定部への外乱光の進入が減少するという点で有利である。長さＬ１が短いと、検体量を少なくできる点で有利となる。よって、成分測定装置への装着（挿入）のしやすさ、外乱光の影響、及び検体量のバランスを考慮して、長さＬ１の上限と下限が決定される。試薬部における流路のセンサ厚み方向に対して直交する方向（流路長手方向）の長さＬ２としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、１～４ｍｍが好ましい。ここで、長さＬ２は、長い方が、照射スポットの面積を長さ方向に大きく取れるため、精度良く測定ができる点で有利であるが、短い方が、検体量を少なくできる点で有利となる。よって、測定精度と検体量とのバランスを考慮して、長さＬ２の上限と下限が決定される。

血液（全血、ヘマトクリット値（Ｈｔ）４０）に、高濃度のグルコース溶液（４０ｇ／ｄＬ）を添加して、グルコース濃度（ＢＧ）が１００ｍｇ／ｄＬの血液検体（ＢＧ１００）、２００ｍｇ／ｄＬの血液検体（ＢＧ２００）、４００ｍｇ／ｄＬの血液検体（ＢＧ４００）および５５０ｍｇ／ｄＬの血液検体（ＢＧ５５０）を調製した。また、対照として、血液（全血、ヘマトクリット値（Ｈｔ）４０）に、グルコース分解酵素を添加して、グルコース濃度（ＢＧ）が０ｍｇ／ｄＬの血液検体（ＢＧ０）を調製した。

作製した血糖値測定センサの流路入口に、ＢＧ０、ＢＧ１００、ＢＧ２００、ＢＧ４００およびＢＧ５５０を点着した。各検体を試薬部に点着してから９秒後に、ファイバー分光光度計を用いて６０５ｎｍでの吸光度を測定した。結果を図９に示す。図９は各サンプルを血糖値測定センサで測定した際のグルコース濃度と、ホルマザンと遷移金属イオン（Ｚｎ^２＋）とのキレート化合物の６０５ｎｍでの吸光度との関係を示すグラフである。

図９に示されるように、吸光度とグルコース濃度とは直線関係（比例関係）を示す。これから、本開示のセンサを用いることにより、吸光度に基づき血糖値を正確に測定できることが考察される。

これらのことから、本開示の試薬（血糖値測定センサ）に全血の溶血試料を適用して発色量を測定し、当該発色量に基づいて検量線を作製することにより、全血試料中の生体成分の濃度を正確に算出できる。

１ 試薬リボン、
２ フィルム片、
３ 試薬塗布面、
４ 両面テープ、
５ ポリエステルフィルム、
６ 流路、
７ ポリエステルフィルム、
１０ 血糖計、
１２ 測定用センサ、
１４ 測定部、
１６ 装置本体、
１８ センサ本体部、
２０ 空洞部、
２０ａ 先端口部、
２０ｂ 基端口部、
２２ 長辺、
２２ａ 上側長辺、
２２ｂ 下側長辺、
２４ 短辺、
２４ａ 先端辺、
２４ｂ 基端辺、
２６ 試薬、
２８ 測定対象部、
３０ 板片、
３２ スペーサ、
４０ 筐体、
４２ 制御部、
４４ 箱体部、
４６ 測光部、
４８ 電源ボタン、
５０ 操作ボタン、
５２ ディスプレイ、
５４ イジェクトレバー、
５６ イジェクトピン、
５６ａ 棒部、
５６ｂ 受部、
５８ 挿入孔、
５８ａ 挿入開口部、
５９ 測定用孔部、
６０ センサ装着部、
６０ａ フランジ部、
６２ 壁部、
６４ 素子収容空間、
６６ 導光部、
６８ 発光素子、
７０ 発光部、
７２ 受光素子、
７４ 受光部、
７６ コイルバネ。

Claims (10)

1. 亜硝酸またはその塩、溶血剤、および発色色素を含み、前記発色色素の酸化還元電位が前記亜硝酸またはその塩の酸化還元電位より＋０．１９Ｖを超える、生体成分濃度測定試薬。
2. 前記発色色素の酸化還元電位が前記亜硝酸またはその塩の酸化還元電位に対して＋０．２１Ｖを超える、請求項１に記載の生体成分濃度測定試薬。
3. さらに酸化還元酵素を含む、請求項１または２に記載の生体成分濃度測定試薬。
4. 前記亜硝酸またはその塩は、前記発色色素 １モルに対して、５０モル以下の割合で含まれる、請求項１～３のいずれか１項に記載の生体成分濃度測定試薬。
5. 前記発色色素は、下記式（１）：
   

   

   
   上記式（１）中、Ｒ^１は、水素原子、水酸基、メトキシ基、およびエトキシ基からなる群から選択されるいずれか一つであり、Ｒ^２は、ニトロ基、－ＯＲ^４、およびカルボキシル基からなる群から選択されるいずれか一つであり、Ｒ^３は、水素原子、メチル基またはエチル基であり、少なくとも１はメチル基またはエチル基であり、Ｒ^４は、メチル基またはエチル基であり、ｍは、スルホ基（－ＳＯ_３ ^－）がテトラゾール骨格の５位のフェニル基に結合する数であり、１または２であり、ｎは、Ｒ^２がテトラゾール骨格の３位のフェニル基に結合する数であり、０～２の整数であり、ｐは、スルホ基（－ＳＯ_３ ^－）がテトラゾール骨格の３位のフェニル基に結合する数であり、０または１であり、ｎ＋ｐは１以上であり、ｑは１または２であり、ｑが２の場合、各ＯＲ^３は隣接して配置され、この際、各ＯＲ^３が互いに環を形成してもよく、Ｘは、水素原子またはアルカリ金属を表わす；
   で示されるテトラゾリウム塩である、請求項１～４のいずれか１項に記載の生体成分濃度測定試薬。
6. 前記発色色素は、下記構造：
   

   

   
   を有する、請求項１～５のいずれか１項に記載の生体成分濃度測定試薬。
7. 乾燥試薬である、請求項１～６のいずれか１項に記載の生体成分濃度測定試薬。
8. 全血試料を、請求項１～７のいずれか１項に記載の生体成分濃度測定試薬と接触させて、発色量を測定し、当該発色量に基づいて前記全血試料中の生体成分の濃度を定量することを有する、生体成分濃度の測定方法。
9. 前記生体成分が、グルコース、コレステロール、中性脂肪、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸（ＮＡＤＰＨ）、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（ＮＡＤＨ）、尿酸である、請求項８に記載の方法。
10. 反応部を有する、全血試料中の生体成分濃度を測定するためのセンサであって、
    前記反応部は、請求項１～７のいずれか１項に記載の生体成分濃度測定試薬を含む、センサ。

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