JP2022552040A - てんかん発生を予防するおよび／または治療するためのマリマスタットの使用 - Google Patents
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Abstract
本発明は、脳損傷を罹患した対象のてんかん発生の予防または治療における、マリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩、溶媒和物またはその多形体の使用に関する。脳損傷は、卒中、外傷性脳損傷、または構造的または代謝的原因で惹起されたてんかん重積状態の結果である。マリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩は、好ましくはてんかん発生の誘導後最初の２４時間以内に投与される。【選択図】図１
Description
本発明は、てんかん発生を予防するおよび／または治療するためのマリマスタットの使用に関する。
マリマスタット（ＢＢ－２５１６）は、式Ｉの化合物である：
マリマスタットは、マトリクス・メタロプロテイナーゼ（ＭＭＰ）として知られるファミリーに属する酵素の周知の阻害剤である。これらの酵素は、組織形成および再構築過程の細胞外マトリックス蛋白質の分解において重要な役割を担う（Ｍａｔｒｉｓｉａｎ、１９９０）。生理的または病的条件下でＥＣＭ環境を制御するプロテアーゼの１つは、ゼラチン分解特性を有するＩＶ型コラゲナーゼである、ＭＭＰ－９である。ＭＭＰ－９の可用性および活性は、潜在的酵素前駆体としてのその分泌およびメタロプロテイナーゼ（ＴＩＭＰ）の内因性組織阻害剤による阻害を含む、複数のレベルで厳密に制御されている（ＫｌｅｉｎｅｒおよびＳｔｅｔｌｅｒ－Ｓｔｅｖｅｎｓｏｎ、１９９３）。最も重要なことに、過剰なＭＭＰ－９活性は、複数の疾患（例えば、癌または神経変性病態など）の病因において重要な役割を果たすと考えられる（ＫｉｍおよびＪｏｈ、２０１２）。したがって、ＭＭＰ－９阻害剤は治療薬であると見なされている。
マリマスタットは、ほとんどの主要なＭＭＰ（ＭＭＰ－１、ＭＭＰ－２、ＭＭＰ－３、ＭＭＰ－７およびＭＭＰ－９）に対して広域スペクトルの強力な阻害活性を示す（ＲａｓｍｕｓｓｅｎおよびＭｃＣａｎｎ、１９９７）。マリマスタットは、腫瘍学分野において臨床試験に導入された最初のマトリクス・メタロプロテイナーゼ阻害剤である。それは経口投与後にほぼ完全に吸収され、予測可能で高い生物学的利用能および約１５時間の半減期（１日２回投与に規格化した場合）を有するので、マリマスタットはヒトにおける好ましい薬物動態プロファイルを有し、臨床試験のための有効な治療の選択肢となる（Ｍｉｌｌａｒら、１９９８）。重要なことに、短期のマリマスタットは患者に充分忍容性であり、一方で高用量での長期治療（数週間）は、患者の最大６０％が影響をうける重度の関節痛（症候性炎症性多発性関節炎）を含む副作用を伴う（Ｋｉｎｇら、２００３；Ｒｅｎｋｉｅｗｉｃｚら、２００３；Ｓｐａｒａｎｏら、２００４；Ｗｏｊｔｏｗｉｃｚ－Ｐｒａｇａら、１９９８）。これらの症状は、治療の中止により可逆的であった（ＳｔｅｗａｒｄおよびＴｈｏｍａｓ、２０００）。それらの発生率は、低用量の１０ｍｇ／体重ｋｇでマリマスタットを用いることにより減少されている（Ｂｒａｍｈａｌｌら、２００２；Ｓｔｅｗａｒｄ、１９９９）。
マリマスタットは、マウス癌モデルの前臨床試験において腫瘍（黒色腫、血管腫、卵巣癌、結腸直腸癌、乳癌および膵臓癌）の進行を阻害し（ＲａｓｍｕｓｓｅｎおよびＭｃＣａｎｎ、１９９７）；ここで腫瘍増殖に対する効果は、増加された生存率と関連づけられた。さらに、マリマスタットの正の効果が、ヒトの膵臓癌（Ｂｒａｍｈａｌｌら、２００１；Ｅｖａｎｓら、２００１；Ｒｏｓｅｍｕｒｇｙら、１９９９）、肺癌（Ｗｏｊｔｏｗｉｃｚ－Ｐｒａｇａら、１９９８）、乳癌（Ｍｉｌｌｅｒら、２００２）、結腸直腸癌（Ｎｏｒｔｈら、２０００）および胃腺癌（Ｂｒａｍｈａｌｌら、２００２）を有する患者において示されているが、胃癌の動物モデルにおいても示された（Ｋｉｍａｔａら、２００２）。
意外なことに、本発明者らは、マリマスタットが、てんかん発生の治療および／または予防において新規で非常に有用な用途を有し得ることを、実験的に見いだした。したがって、本発明の目的は、脳損傷を罹患した対象におけるてんかん発生を予防するまたは治療することにおける、マリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩、溶媒和物またはその多形体の使用を提供することである。これまでのところ、マリマスタットは市販承認されていない。
有害な副作用は、癌治療におけるマリマスタットの長期使用を妨げた。重要なことは、健常な対象の試験は、高用量単回投与（８００ｍｇまで）後に、あるいは１日２回で１週間の反復投与（２００ｍｇまで）後に、いかなる副作用も示さなかった（Ｍｉｌｌａｒら、１９９８）ことである。本発明者らは、てんかん発生を予防するおよび／または治療するためのマリマスタットの新規な医学的用途を意外にも見いだした。
てんかん発生
てんかん発生は、遷延性で持続する過程であり、その間に、以前は正常であった脳のネットワークが、てんかん発作感受性が増加するように機能的に変化し、従って自発的な再発性のてんかん発作を起こす高まった確率を有する（Ｐｉｔｋａｎｅｎら、２０１５）。てんかん発生は、２段階に分けられ：第１は、てんかん状態の発生であり、第２は、それが確立された後のてんかんの進行である。ほとんどの場合、ヒトのてんかん発生は、脳損傷によって始まる（卒中、外傷性脳損傷（ＴＢＩ）あるいは構造上または代謝上の原因で起こるてんかん重積状態（ＳＥ））（Ａｎｎｅｇｅｒｓら、１９９８；Ｇｒａｈａｍ Ｎｅｉｌ Ｓ．Ｎ．ら、２０１３；Ｈｅｓｄｏｒｆｆｅｒら、１９９８）。興味深いことに、てんかん発生率は、脳損傷間で異なり、ＳＥおよび卒中後に最も高い。
てんかん発生は、遷延性で持続する過程であり、その間に、以前は正常であった脳のネットワークが、てんかん発作感受性が増加するように機能的に変化し、従って自発的な再発性のてんかん発作を起こす高まった確率を有する（Ｐｉｔｋａｎｅｎら、２０１５）。てんかん発生は、２段階に分けられ：第１は、てんかん状態の発生であり、第２は、それが確立された後のてんかんの進行である。ほとんどの場合、ヒトのてんかん発生は、脳損傷によって始まる（卒中、外傷性脳損傷（ＴＢＩ）あるいは構造上または代謝上の原因で起こるてんかん重積状態（ＳＥ））（Ａｎｎｅｇｅｒｓら、１９９８；Ｇｒａｈａｍ Ｎｅｉｌ Ｓ．Ｎ．ら、２０１３；Ｈｅｓｄｏｒｆｆｅｒら、１９９８）。興味深いことに、てんかん発生率は、脳損傷間で異なり、ＳＥおよび卒中後に最も高い。
ＳＥの複数の動物モデルが存在し、そこからカイニン酸注射モデルを、本発明で利用した。カイニン酸（ＫＡ）は、興奮毒性グルタミン酸のアナログであり、げっ歯類の脳において選択的神経細胞死をもたらす。ＫＡは、主要な興奮性神経伝達物質であるグルタミン酸のイオンチャンネル型受容体（ｉＧｌｕＲ）のカイニン酸型およびＡＭＰＡ型に作用することによって、神経興奮毒性およびてんかん原性特性を発揮する。ｉＧｌｕＲへのＫＡの結合時に、ＫＡは、細胞内Ｃａ２＋流入、反応性酸素種（ＲＯＳ）産生、および神経細胞アポトーシスおよび壊死に至るミトコンドリア機能不全を含む、多数の細胞事象を誘導する（Ｚｈｅｎｇら、２０１１）。ＫＡの全身性の（静脈内または腹腔内のいずれか）、鼻腔内の、または局所的な投与は、再発性てんかん発作、げっ歯類の挙動変化、酸化ストレス（ＲＯＳおよび反応性窒素種（ＲＮＳ）の発生を含む）、海馬神経細胞死ならびにグリア活性化を含む、げっ歯類における一連の臨床症状および病的変化をもたらす（Ｗａｎｇら、２００５）。最初の２０～３０分の間に、動物は、点頭、直立、および卒倒のような挙動変化を示し始める。通常それは約３０分ほどかかり、その後動物は、てんかん重積状態へと進展する再発性辺縁系てんかん発作を示し始める（Ｃｈｕａｎｇら、２００４）。細胞レベルでは、ＫＡ投与は、主に海馬体門部ＣＡ３およびＣＡＩ領域で起こるが、高用量のＫＡの場合へんとう体内側核でも起こる、海馬の損傷をもたらす。
てんかん発生におけるＭＭＰ－９
血液脳関門破壊、ならびに炎症反応およびシナプス可塑性への寄与を含む、それによりＭＭＰがてんかん発生（ｅｐｉｌｅｐｔｏｇｅｎｅｓｉｓ）およびてんかん（ｅｐｉｌｅｐｓｙ）に関与し得る、複数のメカニズムがある。てんかんの異なるモデルおよび種類において重要な役割を有する最もよく調べられた蛋白質分解酵素は、ＭＭＰ－９であると思われる（Ｖａｆａｄａｒｉら、２０１６）。まず、Ｚｈａｎｇら（１９９８；２０００）は、痙攣誘発用量のＫＡを与えたげっ歯類の脳におけるＭＭＰ－９（ならびにＭＭＰ－２）のレベルの増加を報告した（Ｚｈａｎｇら、１９９８、２０００）。次に、ＫＡは、ＭＭＰ－９のｍＲＮＡのみならずＭＭＰ－９蛋白質および酵素活性のレベルも上方調節することが示された（Ｓｚｋｌａｒｃｚｙｋら、２００２）。重要なことに、これらの応答は、歯状回（つまり、最も広汎なＫＡ投与後可塑性を受ける海馬領域）に限定され、てんかん発生をおそらく支持している。次に、てんかん発生におけるＭＭＰ－９の役割が、２つの動物モデル：ＫＡ惹起性てんかん重積状態（ＳＥ、てんかん発生を惹起することが知られている病態）および痙攣誘発性ペンチレンテトラゾール（ＰＴＺ、ＧＡＢＡａ受容体拮抗剤）による化学的発火（Ｗｉｌｃｚｙｎｓｋｉら、２００８）、で裏付けられた。Ｗｉｌｃｚｙｎｓｋｉら（２００８）は、ＰＴＺ発火に対する感度がＭＭＰ－９ノックアウトマウスでは低下されたが、神経でＭＭＰ－９を過剰発現するトランスジェニックラットでは増加されたことを示した。さらに、彼らは、ＭＭＰ－９欠乏が樹状突起棘のＫＡ惹起性刈り込みを減少させ、かつ苔状線維発芽後の異常シナプス形成を低下させたことを実証した。最後に、彼らはまた、ＭＭＰ－９が興奮性シナプスに関連し、ＭＭＰ－９蛋白質のレベルおよび酵素活性の両方がてんかん発作時に顕著に増加することを報告した。その後、てんかん発生におけるＭＭＰ－９の推定的役割が、Ｍｉｚｏｇｕｃｈｉら（２０１１）により裏付けられ、彼らは、ＰＴＺ発火モデルの損傷海馬における上昇されたＭＭＰ－９の活性および発現を示した。
血液脳関門破壊、ならびに炎症反応およびシナプス可塑性への寄与を含む、それによりＭＭＰがてんかん発生（ｅｐｉｌｅｐｔｏｇｅｎｅｓｉｓ）およびてんかん（ｅｐｉｌｅｐｓｙ）に関与し得る、複数のメカニズムがある。てんかんの異なるモデルおよび種類において重要な役割を有する最もよく調べられた蛋白質分解酵素は、ＭＭＰ－９であると思われる（Ｖａｆａｄａｒｉら、２０１６）。まず、Ｚｈａｎｇら（１９９８；２０００）は、痙攣誘発用量のＫＡを与えたげっ歯類の脳におけるＭＭＰ－９（ならびにＭＭＰ－２）のレベルの増加を報告した（Ｚｈａｎｇら、１９９８、２０００）。次に、ＫＡは、ＭＭＰ－９のｍＲＮＡのみならずＭＭＰ－９蛋白質および酵素活性のレベルも上方調節することが示された（Ｓｚｋｌａｒｃｚｙｋら、２００２）。重要なことに、これらの応答は、歯状回（つまり、最も広汎なＫＡ投与後可塑性を受ける海馬領域）に限定され、てんかん発生をおそらく支持している。次に、てんかん発生におけるＭＭＰ－９の役割が、２つの動物モデル：ＫＡ惹起性てんかん重積状態（ＳＥ、てんかん発生を惹起することが知られている病態）および痙攣誘発性ペンチレンテトラゾール（ＰＴＺ、ＧＡＢＡａ受容体拮抗剤）による化学的発火（Ｗｉｌｃｚｙｎｓｋｉら、２００８）、で裏付けられた。Ｗｉｌｃｚｙｎｓｋｉら（２００８）は、ＰＴＺ発火に対する感度がＭＭＰ－９ノックアウトマウスでは低下されたが、神経でＭＭＰ－９を過剰発現するトランスジェニックラットでは増加されたことを示した。さらに、彼らは、ＭＭＰ－９欠乏が樹状突起棘のＫＡ惹起性刈り込みを減少させ、かつ苔状線維発芽後の異常シナプス形成を低下させたことを実証した。最後に、彼らはまた、ＭＭＰ－９が興奮性シナプスに関連し、ＭＭＰ－９蛋白質のレベルおよび酵素活性の両方がてんかん発作時に顕著に増加することを報告した。その後、てんかん発生におけるＭＭＰ－９の推定的役割が、Ｍｉｚｏｇｕｃｈｉら（２０１１）により裏付けられ、彼らは、ＰＴＺ発火モデルの損傷海馬における上昇されたＭＭＰ－９の活性および発現を示した。
本発明は、脳損傷を罹患している対象においててんかん発生を予防するまたは治療することにおける、マリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩、溶媒和物またはその多形体の使用を提供する。
好ましい一実施態様において、脳損傷は、卒中、外傷性脳損傷、あるいは構造的または代謝的原因により惹起されたてんかん重積状態の結果である。
好ましくは、マリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩を、経口投与、舌下投与、頬側投与、皮下投与、静脈内投与、筋肉内投与または髄腔内投与する。
さらなる好ましい実施態様において、マリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩を、てんかん発生誘導後に、単回投与量または反復用量（１日２回、最長で６．５日間）で投与する。
好ましくは、マリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩を、てんかん発生誘導後１～３日間、反復用量で投与する。
さらなる好ましい実施態様において、マリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩の単回投与量は、ヒトに用いる場合、２００ｍｇ～８００ｍｇである。
好ましい一実施態様において、マリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩を、てんかん発生の誘導後最初の２４時間以内に投与する。
好ましい一実施態様において、マリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩を、てんかん発生誘導後３時間以内に投与し、より好ましくはマリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩を、てんかん発生誘導後１時間以内に投与し、最も好ましくはマリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩を、てんかん発生誘導後３０分以内に投与する。
ここで「てんかん発生誘導」という表現はまた、すべての原因となる事故を含み、情報通信事故；労働災害；家内事故（すべての種類の転倒など）；建設現場での事故およびバーでの喧嘩、ならびに脳損傷をもたらす、スポーツ関連または戦闘関連の傷害を含むが、これらに限定されない。
本明細書中の用語「対象」は、哺乳動物（マウスおよびラットを含むげっ歯類など）；有蹄動物（サーカスまたは競馬のウマなど）；またはヒト（負傷者、スタントマン、スポーツマン、または軍人など）を含むが、これらに限定されない。
以下の非限定的な例によって、本発明をさらに具体的に説明する。
実施例
実施例１：インビトロでのＭＭＰ－９活性の特異的阻害
第１の非限定的な例において、化合物を、インビトロでＭＭＰ－９活性の特異的阻害に関して試験した。海馬ニューロンを、以前に記述されるように（Ｈａｂａｓら、２００６）出生後０日目（Ｐ０）にＷｉｓｔａｒラット新生仔から調製した。培地は、Ｂ２７（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）ならびに１ｍＭのＬ－グルタミン、１００Ｕ／ｍｌのペニシリンおよび０．１ｍｇ／ｍｌのストレプトマイシンが補充された神経培地（Ｎｅｕｒｏｂａｓａｌ Ｍｅｄｉｕｍ）から成る。これらの実験のために用いた細胞は、７ＤＩＶであった。マリマスタットを、最小有効用量を決定するために異なる濃度；５ｎＭ、０．５μＭ、５μＭ、４０μＭおよび１００μＭ、で用いた。マリマスタット添加（培地補充で）後３０分に、細胞を、ＰＢＳで洗浄し、ＭＭＰ－９放出に至る神経細胞活動を促すためにグルタミン酸（５μＭ；培地添加）で処理した。対照培養は、グルタミン酸および阻害剤Ｉ（ＭＭＰ－９活性に対して阻害効果が実証されている阻害剤）の存在下でグルタミン酸で刺激した神経細胞から成った。実験を、４回繰り返した（繰返しとして異なる神経細胞培養物で）。ＭＭＰ－９活性のレベルを、ＭＭＰ－９の基質であるネクチン－３の切断により評価した。
実施例１：インビトロでのＭＭＰ－９活性の特異的阻害
第１の非限定的な例において、化合物を、インビトロでＭＭＰ－９活性の特異的阻害に関して試験した。海馬ニューロンを、以前に記述されるように（Ｈａｂａｓら、２００６）出生後０日目（Ｐ０）にＷｉｓｔａｒラット新生仔から調製した。培地は、Ｂ２７（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）ならびに１ｍＭのＬ－グルタミン、１００Ｕ／ｍｌのペニシリンおよび０．１ｍｇ／ｍｌのストレプトマイシンが補充された神経培地（Ｎｅｕｒｏｂａｓａｌ Ｍｅｄｉｕｍ）から成る。これらの実験のために用いた細胞は、７ＤＩＶであった。マリマスタットを、最小有効用量を決定するために異なる濃度；５ｎＭ、０．５μＭ、５μＭ、４０μＭおよび１００μＭ、で用いた。マリマスタット添加（培地補充で）後３０分に、細胞を、ＰＢＳで洗浄し、ＭＭＰ－９放出に至る神経細胞活動を促すためにグルタミン酸（５μＭ；培地添加）で処理した。対照培養は、グルタミン酸および阻害剤Ｉ（ＭＭＰ－９活性に対して阻害効果が実証されている阻害剤）の存在下でグルタミン酸で刺激した神経細胞から成った。実験を、４回繰り返した（繰返しとして異なる神経細胞培養物で）。ＭＭＰ－９活性のレベルを、ＭＭＰ－９の基質であるネクチン－３の切断により評価した。
ネクチン－３は、シナプスのシナプス後部で主に発現される膜貫通蛋白質である（ｖａｎ ｄｅｒ Ｋｏｏｉｊら、２０１４）。ネクチン－３分解は、Ｎ末端細胞外ドメインの蛋白質分解性脱離とそれに続く細胞内ドメインの切断により起こり得る。ネクチン－３の蛋白質分解処理に関与する分子の一つは、ＭＭＰ－９である。本発明者らは、ネクチン－３の基礎量（免疫ブロッティングによる）およびネクチン－３の切断断片（おおよそ１７キロダルトン）の存在を評価した。
免疫ブロッティングのために、培養物を、ガラス製ダウンス型ホモジナイザーを用いて１ｍＭのＭｇＣｌ２、５ｍＭのＨＥＰＥＳ（ｐＨ＝７．４）、３２０ｍＭスクロース、１ｍＭのＮａ２Ｆ、およびｃＯｍｐｌｅｔｅ（登録商標）プロテアーゼ阻害剤カクテル（Ｒｏｃｈｅ）を含む溶解緩衝液中でホモジナイズした。蛋白質濃度を、ＢＣＡ蛋白質アッセイキットを用いて測定した（Ｐｉｅｒｃｅ）。２５マイクログラムのホモジネートを、１０％ポリアクリルアミドゲルに移した。ウエスタンブロットを、１：５００希釈で抗ネクチン抗体を用いる標準的方法により行った。次に、ブロットを、抗アクチン抗体（１：１０００）（Ｓｉｇｍａ）で再プローブして、総蛋白質量が均等であるかを確かめた。化学発光による検出法を、用いた。個々のバンドの定量化のために、写真フィルムのスキャンを、ＧｅｎｅＴｏｏｌｓソフトウェア（Ｓｙｎｇｅｎｅ）を用いるデンシトメトリーにより分析した。
結果
マリマスタットは、ネクチン－３のＭＭＰ－９依存性切断を阻害する（用いた０．５μＭ用量からすでに（図１））ことが示された。
マリマスタットは、ネクチン－３のＭＭＰ－９依存性切断を阻害する（用いた０．５μＭ用量からすでに（図１））ことが示された。
実施例２：血液脳関門透過
インビボでのマリマスタットの阻害効果を示す上の結果に基づいて、本発明者らは、この化合物が血液脳関門を透過するか否か（これは動物におけるその治療用途の前提である）を評価した。本目的のために、マウス（Ｃ５７Ｂ１６系統）に、体重１ｋｇあたり９ｍｇのマリマスタットを腹腔内注射した。
インビボでのマリマスタットの阻害効果を示す上の結果に基づいて、本発明者らは、この化合物が血液脳関門を透過するか否か（これは動物におけるその治療用途の前提である）を評価した。本目的のために、マウス（Ｃ５７Ｂ１６系統）に、体重１ｋｇあたり９ｍｇのマリマスタットを腹腔内注射した。
マリマスタットの腹腔内投与１時間後に、マウス（Ｃ５７Ｂ１６系統）を、屠殺し、血液試料、脳組織（海馬および皮質領域）を採取した。血清を得るために、血液試料を、クエン酸存在下で遠心分離した。試料中のマリマスタットを抽出する方法を、本化合物の特性に従い選択し開発した。この場合、本発明者らは、アセトニトリルと水の混合物（１：１ ｖ／ｖ）による抽出を用い、得られた産物をｎ－ヘキサンで精製して、マトリックスの脂溶性化合物（脂肪酸、脂肪、コレステロールなど；試料中のそれらの存在は、検出技術において記録される分析シグナルを大幅に抑制する）を除去した。
マリマスタット抽出の再現性は、１００％に近かった（ｎ＝３での抽出性能の反復性ならびに技術的計測の反復性を含む相対標準偏差ＲＳＤは、２％未満である）。海馬および皮質抽出物における、ならびに血清試料における化合物濃度の測定を、ＭＲＭモードでのＨＰＬＣ－ＥＳＩ ＭＳ／ＭＳ技術：ＭＲＭモードでのエレクトロスプレー質量分析法による検出を備えた高速液体クロマトグラフィー（フォローアップ追跡）を用いて実施した。本測定方法を、標準溶液の使用での最大感度を達成するために、最適化した。マリマスタット用に開発した分析方法を、部分的に検証した（反復性、再現性、回収性）。
結果
マリマスタットは、両方の脳領域（海馬および皮質）ならびに血清中で検出され、これは、マリマスタットが、血液脳関門を透過し、かつ動物試験に利用でき、脳においてＭＭＰ－９への阻害効果を発揮することを意味する。
マリマスタットは、両方の脳領域（海馬および皮質）ならびに血清中で検出され、これは、マリマスタットが、血液脳関門を透過し、かつ動物試験に利用でき、脳においてＭＭＰ－９への阻害効果を発揮することを意味する。
実施例３：てんかん発生のマウスモデルにおけるマリマスタット
さらなる非限定的実施例で、マリマスタットを、てんかん発生のマウスモデル（海馬内カイニン酸注射）において、インビボで試験した。上の結果に基づき、マリマスタットは血液脳関門を透過し、投与後１時間を超えて脳中に留まることが分かった。これは、マリマスタットの潜在的治療効果を可能にする最適時間である。この段階で、本発明者らは、亜痙攣誘発剤（カイニン酸：これはグルタミン酸受容体の作動物質である）の単回投与後に、ＭＭＰ－９阻害に対するマリマスタットの効果を評価した。マウスに、ＫＡ投与の１時間前に、マリマスタット（９ｍｇ／体重ｋｇ）を腹腔内注射した。マリマスタットの注射後１時間に、４０ｍＭのカイニン酸を、腹腔内投与した。ＫＡ注射の結果として、強いてんかん発作が、増加した神経活動のため観察された。
さらなる非限定的実施例で、マリマスタットを、てんかん発生のマウスモデル（海馬内カイニン酸注射）において、インビボで試験した。上の結果に基づき、マリマスタットは血液脳関門を透過し、投与後１時間を超えて脳中に留まることが分かった。これは、マリマスタットの潜在的治療効果を可能にする最適時間である。この段階で、本発明者らは、亜痙攣誘発剤（カイニン酸：これはグルタミン酸受容体の作動物質である）の単回投与後に、ＭＭＰ－９阻害に対するマリマスタットの効果を評価した。マウスに、ＫＡ投与の１時間前に、マリマスタット（９ｍｇ／体重ｋｇ）を腹腔内注射した。マリマスタットの注射後１時間に、４０ｍＭのカイニン酸を、腹腔内投与した。ＫＡ注射の結果として、強いてんかん発作が、増加した神経活動のため観察された。
ＫＡによって惹起されるてんかん発作（てんかん発生）の過程は、樹状突起棘からのＭＭＰ－９放出と密接に関連する。痙攣誘発剤注射前にマリマスタット投与を利用して、インビボでのその有効性を確認した。この目的のために、ＫＡ注射の６時間後に、海馬を単離し、免疫ブロッティングアッセイを、切断型ネクチン－３蛋白質の存在について行った。
結果
阻害剤投与は、ネクチン－３の酵素的切断（１７キロダルトンのネクチン－３断片の光学密度、図２ａ～２ｂ）のＭＭＰ－９依存性過程を特異的に減弱させることが分かった。
阻害剤投与は、ネクチン－３の酵素的切断（１７キロダルトンのネクチン－３断片の光学密度、図２ａ～２ｂ）のＭＭＰ－９依存性過程を特異的に減弱させることが分かった。
要約すると、抗てんかん活性に関する潜在的な化合物としてマリマスタットは、以下の条件を満たす：
実施例４：てんかん発生のマウスモデルにおけるマリマスタットの治療的使用の機能的分析
てんかん発生マウスモデル（海馬内カイニン酸注射）におけるマリマスタットの治療的使用の機能的分析を、実施した。てんかん発生を、定位的手術中に、海馬ＣＡＩ領域に直接カイニン酸を投与することにより誘導した。ＣＡＩの座標を、Ｐａｘｉｎｏｓのマウス脳アトラス（Ｍｏｕｓｅ Ｂｒａｉｎ Ａｔｌａｓ）にしたがって選択した。３平面における座標を用いた：
（１）Ｚ軸 － ＡＰ（前後） －１．８
（２）Ｘ軸 － Ｌ （外側） ＋１．７
（３）Ｙ軸 － ＤＶ（背腹） －２．１
てんかん発生マウスモデル（海馬内カイニン酸注射）におけるマリマスタットの治療的使用の機能的分析を、実施した。てんかん発生を、定位的手術中に、海馬ＣＡＩ領域に直接カイニン酸を投与することにより誘導した。ＣＡＩの座標を、Ｐａｘｉｎｏｓのマウス脳アトラス（Ｍｏｕｓｅ Ｂｒａｉｎ Ａｔｌａｓ）にしたがって選択した。３平面における座標を用いた：
（１）Ｚ軸 － ＡＰ（前後） －１．８
（２）Ｘ軸 － Ｌ （外側） ＋１．７
（３）Ｙ軸 － ＤＶ（背腹） －２．１
マリマスタットを、ＭＭＰ－９活性に対する阻害剤として用いた。マウスに、以下の時点でカイニン酸投与後３回、腹腔内注射した（９ｍｇ／体重ｋｇ）：
（１）３０分
（２）６時間
（３）２４時間
（１）３０分
（２）６時間
（３）２４時間
対照群として、本発明者らは、次のマリマスタット注射なしで、ＣＡＩ領域へのカイニン酸投与後にマウスを用いた。各群は、６匹の動物から成り、実験を、２回繰り返して実施した。同時に、ＫＡ注射直後に、マウスに、脳波記録のための頭蓋電極および海馬電極を埋め込んだ（図３）。
５本の電極を用い、そのうち４本を頭蓋骨に、１本を海馬に設置して、海馬性てんかん発作を記録した。注射したカイニン酸は、ＣＡＩおよびＣＡ３領域内で変性を誘導したが、歯状回領域内でも変化を引き起こした。てんかん発生過程に観察された最も重要な変化の一つは、歯状回（ＤＧ）における苔状線維発芽であった。苔状線維発芽は、歯状回の内分子層中への顆粒細胞軸索（苔状線維）の異常発芽であると定義される。この過程は、側頭葉てんかんの患者で観察される（Ｂｕｃｋｍａｓｔｅｒ、２０１２）。それゆえ、ＤＧへの海馬電極位置を、下記の座標位置により、注射部位の下部に、埋め込んだ：
（１）Ｚ軸 － ＡＰ（前後） －２．０
（２）Ｘ軸 － Ｌ （外側） ＋１．３
（３）Ｙ軸 － ＤＶ（背腹） －１．７
（１）Ｚ軸 － ＡＰ（前後） －２．０
（２）Ｘ軸 － Ｌ （外側） ＋１．３
（３）Ｙ軸 － ＤＶ（背腹） －１．７
電極埋め込み工程
電極埋め込み工程は、以下のプロトコルによった。ステンレス鋼製のビス電極（直径１．６ｍｍ、Ｂｉｌａｎｅｙ Ｃｏｎｓｕｌｔａｎｔｓ ＧｍｂＨ、Ｇｅｒｍａｎｙ）を、頭蓋骨中に設置した（表３；図３）。海馬双極電極を、歯状回中に設置した。２週間連続の（２４時間／７日間）ビデオ－ＥＥＧ（ｖＥＥＧ）追跡を、ＫＡ注射直後に開始した。マウスを、ＰＭＭＡケージに入れ（ケージ当たりマウス１匹）、コミュテーター（ＳＬ６Ｃ、Ｐｌａｓｔｉｃｓ Ｏｎｅ Ｉｎｃ．、ＵＳＡ）を介して記録システムに繋いだ。ｖＥＥＧを、５７－チャンネル増幅器ＡＳ４０－ＰＬＵＳ（Ｎａｔｕｓ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｅｄ、ＵＳＡ）を有するＣｏｍｅｔ ＥＥＧ ＰＬＵＳに接続されたツインＥＥＧ記録システムを用いて実施し、フィルタリングした（高域フィルターカットオフ、０．３Ｈｚ；低域フィルターカットオフ、１００Ｈｚ）。
電極埋め込み工程は、以下のプロトコルによった。ステンレス鋼製のビス電極（直径１．６ｍｍ、Ｂｉｌａｎｅｙ Ｃｏｎｓｕｌｔａｎｔｓ ＧｍｂＨ、Ｇｅｒｍａｎｙ）を、頭蓋骨中に設置した（表３；図３）。海馬双極電極を、歯状回中に設置した。２週間連続の（２４時間／７日間）ビデオ－ＥＥＧ（ｖＥＥＧ）追跡を、ＫＡ注射直後に開始した。マウスを、ＰＭＭＡケージに入れ（ケージ当たりマウス１匹）、コミュテーター（ＳＬ６Ｃ、Ｐｌａｓｔｉｃｓ Ｏｎｅ Ｉｎｃ．、ＵＳＡ）を介して記録システムに繋いだ。ｖＥＥＧを、５７－チャンネル増幅器ＡＳ４０－ＰＬＵＳ（Ｎａｔｕｓ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｅｄ、ＵＳＡ）を有するＣｏｍｅｔ ＥＥＧ ＰＬＵＳに接続されたツインＥＥＧ記録システムを用いて実施し、フィルタリングした（高域フィルターカットオフ、０．３Ｈｚ；低域フィルターカットオフ、１００Ｈｚ）。
動物の挙動を、デジタルカメラＩ－ＰＲＯ ＷＶ－ＳＣ３８５（パナソニック、日本）を用いて記録した。結果判定項目として、本発明者らは、自発性てんかん発作の発生、頻度および持続時間を評価した。脳波上発作を、５秒を超えて持続する異常なＥＥＧパターンを明白に示す高振幅（＞２ｘベースライン）律動性放電と定義した。各マウスにおけるてんかん発作頻度を、ＥＥＧ記録が完了した日当たりまたは週当たりのてんかん発作回数として算出した。
改良ラシーン（Ｒａｃｉｎｅ）スケールを、本試験で用いた（Ｒａｃｉｎｅ、１９７２）：
実験を、３部に分けた：
（１）ＫＡ注射後、最初の２４時間（注射した痙攣誘発剤に対する急性応答）
（２）ＫＡ注射後、最初の週（注射した痙攣誘発剤に対する急性応答）
（３）ＫＡ注射の４週間後（注射した痙攣誘発剤によるてんかん発生～慢性変化）
（１）ＫＡ注射後、最初の２４時間（注射した痙攣誘発剤に対する急性応答）
（２）ＫＡ注射後、最初の週（注射した痙攣誘発剤に対する急性応答）
（３）ＫＡ注射の４週間後（注射した痙攣誘発剤によるてんかん発生～慢性変化）
各段階において、複数のパラメーターを算出した：てんかん発作持続時間（秒単位）、てんかん発作スコア（ラシーン・スケールによる）、てんかん発作回数（動物当たり／１日当たり）。さらに、最初の２４時間において、カイニン酸注射と最初のてんかん発作の間の時間も推定した。
海馬中へのＫＡ注射後初日に、マリマスタットは、てんかん発作スコア（Ｐ＝０．００１６）および最初の２４時間内において観察されるてんかん発作回数（Ｐ＝０．００５）を有意に減少させた。最初のてんかん発作のパラメーターと比較して、てんかん発作持続時間ならびに潜時に差異は認められなかった（図４）。
実験の第２の部では、自発性てんかん発作出現に関する次の７日間の脳波記録からのデータを、同じパラメーターを用いて分析した。最初の２４時間とは対照的に、次の週の間、差異が、てんかん発作持続時間に関してのみ認められ、ここでマリマスタットは、単一てんかん発作の持続時間を有意に減少させた（Ｐ＝０．０２）。てんかん発作スコアおよび回数は、マリマスタット治療により変わらなかった。
痙攣誘発剤により誘発されるてんかん発作の出現およびパラメーターに対するマリマスタットの治療効果を徹底分析するために、本発明者らは、カイニン酸の海馬への注射により開始されるてんかん発生過程の影響として慢性的変化も評価することにした。てんかん発作出現およびてんかん発作パラメーター（てんかん発作持続時間およびてんかん発作スコア）を、評価した（図６）。
結果
てんかん発生過程誘導後の１ヶ月で、ＫＡ注射後１週と同様に、マリマスタットは、単一てんかん発作の持続を阻害した（Ｐ＝０．０２）（図６）。この効果はまた、ＫＡ注射後の４週間に海馬内で観察されるてんかん発作の例においても認められる。さらに、マリマスタットは、てんかん発作のスコアおよび回数をわずかに低下させたが、その変化は、有意ではなかった。
参考文献
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Ｅｖａｎｓ， Ｊ．Ｄ．， Ｓｔａｒｋ， Ａ．， Ｊｏｈｎｓｏｎ， Ｃ．Ｄ．， Ｄａｎｉｅｌ， Ｆ．， Ｃａｒｍｉｃｈａｅｌ， Ｊ．， Ｂｕｃｋｅｌｓ， Ｊ．， Ｉｍｒｉｅ， Ｃ．Ｗ．， Ｂｒｏｗｎ， Ｐ．， ａｎｄ Ｎｅｏｐｔｏｌｅｍｏｓ， Ｊ．Ｐ． （２００１）． Ａ ｐｈａｓｅ ＩＩ ｔｒｉａｌ ｏｆ ｍａｒｉｍａｓｔａｔ ｉｎ ａｄｖａｎｃｅｄ ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ ｃａｎｃｅｒ． Ｂｒ． Ｊ． Ｃａｎｃｅｒ ８５． １８６５－１８７０．
Ｇｒａｈａｍ Ｎｅｉｌ Ｓ．Ｎ．， Ｃｒｉｃｈｔｏｎ Ｓｉｏｂｈａｎ， Ｋｏｕｔｒｏｕｍａｎｉｄｉｓ Ｍｉｃｈａｅｌ， Ｗｏｌｆｅ Ｃｈａｒｌｅｓ Ｄ．Ａ．， ａｎｄ Ｒｕｄｄ Ａｎｔｈｏｎｙ Ｇ． （２０１３）． Ｉｎｃｉｄｅｎｃｅ ａｎｄ Ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎｓ ｏｆ Ｐｏｓｔｓｔｒｏｋｃ Ｅｐｉｌｅｐｓｙ． Ｓｔｒｏｋｅ ４４． ６０５－６１１．
Ｈａｂａｓ， Ａ．， Ｋｈａｒｃｂａｖａ， Ｇ．， Ｓｚａｔｍａｒｉ， Ｅ．， ａｎｄ Ｈｅｔｍａｎ， Ｍ． （２００６）． ＮＭＤＡ ｎｅｕｒｏｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ ａｇａｉｎｓｔ ａ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｉｎｏｓｉｔｏｌ－３ ｋｉｎａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ． ＬＹ２９４００２ ｂｙ ＮＲ２Ｂ－ｍｅｄｉａｔｅｄ ｓｕｐｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｇｌｙｃｏｇｅｎ ｓｙｎｔｈａｓｅ ｋｉｎａｓｅ－３ｂｅｔａ－ｉｎｄｕｃｅｄ ａｐｏｐｔｏｓｉｓ． Ｊ． Ｎｅｕｒｏｃｈｅｍ． ９６， ３３５－３４８．
Ｈｅｓｄｏｒｆｆｅｒ， Ｄ．Ｃ．， Ｌｏｇｒｏｓｃｉｎｏ， Ｇ．， Ｃａｓｃｉｎｏ， Ｇ．， Ａｎｎｅｇｅｒｓ， Ｊ．Ｆ．， ａｎｄ Ｈａｕｓｅｒ， Ｗ．Ａ． （１９９８）． Ｒｉｓｋ ｏｆ ｕｎｐｒｏｖｏｋｅｄ ｓｅｉｚｕｒｅ ａｆｔｅｒ ａｃｕｔｅ ｓｙｍｐｔｏｍａｔｉｃ ｓｅｉｚｕｒｅ： ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｓｔａｔｕｓ ｅｐｉｌｅｐｔｉｃｕｓ． Ａｎｎ． Ｎｅｕｒｏｌ． ４４． ９０８－９１２．
Ｋｉｍ， Ｙ．－Ｓ．， ａｎｄ Ｊｏｈ， Ｔ．Ｈ． （２０１２）． Ｍａｔｒｉｘ Ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅｓ， Ｎｅｗ Ｉｎｓｉｇｈｔｓ ｉｎｔｏ ｔｈｅ Ｕｎｄｅｒｓｔａｎｄｉｎｇ ｏｆ Ｎｅｕｒｏｄｅｇｅｎｅｒａｔｉｖｅ Ｄｉｓｏｒｄｅｒｓ． Ｂｉｏｍｏｌ． Ｔｈｅｒ． ２０． １３３－１４３．
Ｋｉｍａｔａ， Ｍ．， Ｏｔａｎｉ， Ｙ．， Ｋｕｂｏｔａ， Ｔ．， Ｉｇａｒａｓｈｉ， Ｎ．， Ｙｏｋｏｙａｍａ， Ｔ．， Ｗａｄａ， Ｎ．， Ｙｏｓｈｉｍｉｚｕ， Ｎ．， Ｆｕｊｉｉ， Ｍ．， Ｋａｍｅｙａｍａ， Ｋ．， Ｏｋａｄａ， Ｙ．， ｅｔ ａｌ． （２００２）． Ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ， ｍａｒｉｍａｓｔａｔ． ｄｅｃｒｅａｓｅｓ ｐｅｒｉｔｏｎｅａｌ ｓｐｒｅａｄ ｏｆ ｇａｓｔｒｉｃ ｃａｒｃｉｎｏｍａ ｉｎ ｎｕｄｅ ｍｉｃｅ． Ｊｐｎ． Ｊ． Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ． Ｇａｎｎ ９３， ８３４－８４１．
Ｋｉｎｇ， Ｊ．， Ｚｈａｏ， Ｊ．， Ｃｌｉｎｇａｎ， Ｐ．， ａｎｄ Ｍｏｒｒｉｓ， Ｄ． （２００３）． Ｒａｎｄｏｍｉｓｅｄ ｄｏｕｂｌｅ ｂｌｉｎｄ ｐｌａｃｅｂｏ ｃｏｎｔｒｏｌ ｓｔｕｄｙ ｏｆ ａｄｊｕｖａｎｔ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ． Ｍａｒｉｍａｓｔａｔ ｉｎ ｐａｔｉｅｎｔｓ ｗｉｔｈ ｉｎｏｐｅｒａｂｌｅ ｃｏｌｏｒｅｃｔａｌ ｈｅｐａｔｉｃ ｍｅｔａｓｔａｓｅｓ： ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｓｕｒｖｉｖａｌ ａｄｖａｎｔａｇｅ ｉｎ ｐａｔｉｅｎｔｓ ｗｉｔｈ ｍｕｓｃｕｌｏｓｋｅｌｅｔａｌ ｓｉｄｅ－ｅｆｆｅｃｔｓ． Ａｎｔｉｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ． ２３． ６３９－６４５．
Ｋｌｅｉｎｅｒ， Ｄ．Ｅ．， ａｎｄ Ｓｔｅｔｌｅｒ－Ｓｔｅｖｅｎｓｏｎ， Ｗ．Ｇ． （１９９３）． Ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ ｏｆ ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅａｓｅｓ． Ｃｕｒｒ． Ｏｐｉｎ． Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ． ５． ８９１－８９７．
Ｍａｔｒｉｓｉａｎ， Ｌ．Ｍ． （１９９０）． Ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅｓ ａｎｄ ｔｈｅｉｒ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓ ｉｎ ｍａｔｒｉｘ ｒｅｍｏｄｅｌｉｎｇ． Ｔｒｅｎｄｓ Ｇｅｎｅｔ． ＴＩＧ ６， １２１－１２５．
Ｍｉｌｌａｒ， Ａ．Ｗ．， Ｂｒｏｗｎ， Ｐ．Ｄ．， Ｍｏｏｒｅ， Ｊ．， Ｇａｌｌｏｗａｙ， Ｗ．Ａ．， Ｃｏｒｎｉｓｈ， Ａ．Ｇ．， Ｌｅｎｅｈａｎ， Ｔ．Ｊ．， ａｎｄ Ｌｙｎｃｈ， Ｋ．Ｐ． （１９９８）． Ｒｅｓｕｌｔｓ ｏｆ ｓｉｎｇｌｅ ａｎｄ ｒｅｐｅａｔ ｄｏｓｅ ｓｔｕｄｉｅｓ ｏｆ ｔｈｅ ｏｒａｌ ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ ｍａｒｉｍａｓｔａｔ ｉｎ ｈｅａｌｔｈｙ ｍａｌｅ ｖｏｌｕｎｔｅｅｒｓ． Ｂｒ． Ｊ． Ｃｌｉｎ． Ｐｈａｒｍａｃｏｌ． ４５． ２１－２６．
Ｍｉｌｌｅｒ， Ｋ．Ｄ．， Ｇｒａｄｉｓｈａｒ， Ｗ．， Ｓｃｈｕｃｈｔｅｒ， Ｌ．， Ｓｐａｒａｎｏ， Ｊ．Ａ．， Ｃｏｂｌｅｉｇｈ， Ｍ．， Ｒｏｂｅｒｔ， Ｎ．， Ｒａｓｍｕｓｓｅｎ， Ｈ．， ａｎｄ Ｓｌｅｄｇｅ， Ｇ．Ｗ． （２００２）． Ａ ｒａｎｄｏｍｉｚｅｄ ｐｈａｓｅ ＩＩ ｐｉｌｏｔ ｔｒｉａｌ ｏｆ ａｄｊｕｖａｎｔ ｍａｒｉｍａｓｔａｔ ｉｎ ｐａｔｉｅｎｔｓ ｗｉｔｈ ｅａｒｌｙ－ｓｔａｇｅ ｂｒｅａｓｔ ｃａｎｃｅｒ． Ａｎｎ． Ｏｎｃｏｌ． Ｏｆｆ． Ｊ． Ｅｕｒ． Ｓｏｃ． Ｍｅｄ． Ｏｎｃｏｌ． １３， １２２０－１２２４．
Ｍｉｚｏｇｕｃｈｉ， Ｈ．， Ｎａｋａｄｅ， Ｊ．， Ｔａｃｈｉｂａｎａ， Ｍ．， Ｉｂｉ． Ｄ．， Ｓｏｍｅｙａ， Ｅ．， Ｋｏｉｋｅ， Ｈ．， Ｋａｍｅｉ， Ｈ．， Ｎａｂｅｓｈｉｍａ， Ｔ．， Ｉｔｏｈａｒａ， Ｓ．， Ｔａｋｕｍａ， Ｋ．， ｅｔ ａｌ． （２０１１）． Ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ－９ ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｅｓ ｔｏ ｋｉｎｄｌｅｄ ｓｅｉｚｕｒｅ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｉｎ ｐｅｎｔｙｌｅｎｅｔｅｔｒａｚｏｌｅ－ｔｒｅａｔｅｄ ｍｉｃｅ ｂｙ ｃｏｎｖｅｒｔｉｎｇ ｐｒｏ－ＢＤＮＦ ｔｏ ｍａｔｕｒｅ ＢＤＮＦ ｉｎ ｔｈｅ ｈｉｐｐｏｃａｍｐｕｓ． Ｊ． Ｎｅｕｒｏｓｃｉ． Ｏｆｆ． Ｊ． Ｓｏｃ． Ｎｅｕｒｏｓｃｉ． ３１， １２９６３－１２９７１．
Ｎｏｒｔｈ， Ｈ．， Ｋｉｎｇ， Ｊ．， ａｎｄ Ｍｏｒｒｉｓ， Ｄ．Ｌ． （２０００）． Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｍａｒｉｍａｓｔａｔ ｏｎ ｓｅｒｕｍ ｔｕｍｏｕｒ ｍａｒｋｅｒｓ ｉｎ ｐａｔｉｅｎｔｓ ｗｉｔｈ ｃｏｌｏｒｅｃｔａｌ ｃａｎｃｅｒ． Ｉｎｔ． Ｊ． Ｓｕｒｇ． Ｉｎｖｅｓｔｉｇ． ２， ２１３－２１７．
Ｐｉｔｋａｎｅｎ， Ａ．， Ｌｕｋａｓｉｕｋ， Ｋ．， Ｄｕｄｅｋ， Ｆ．Ｅ．， ａｎｄ Ｓｔａｌｅｙ， Ｋ．Ｊ． （２０１５）． Ｅｐｉｌｅｐｔｏｇｅｎｅｓｉｓ． Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂ． Ｐｅｒｓｐｅｃｔ． Ｍｅｄ． ５．
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Ｒａｓｍｕｓｓｅｎ， Ｈ．Ｓ．， ａｎｄ ＭｃＣａｎｎ， Ｐ．Ｐ． （１９９７）． Ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ａｓ ａ ｎｏｖｅｌ ａｎｔｉｃａｎｃｅｒ ｓｔｒａｔｅｇｙ： ａ ｒｅｖｉｅｗ ｗｉｔｈ ｓｐｅｃｉａｌ ｆｏｃｕｓ ｏｎ ｂａｔｉｍａｓｔａｔ ａｎｄ ｍａｒｉｍａｓｔａｔ． Ｐｈａｒｍａｃｏｌ． Ｔｈｅｒ． ７５， ６９－７５．
Ｒｅｎｋｉｅｗｉｃｚ， Ｒ．， Ｑｉｕ， Ｌ．， Ｌｅｓｃｈ， Ｃ．， Ｓｕｎ， Ｘ．， Ｄｅｖａｌａｒａｊａ， Ｒ．， Ｃｏｄｙ． Ｔ．， Ｋａｌｄｊｉａｎ， Ｅ．， Ｗｅｌｇｕｓ， Ｈ．， ａｎｄ Ｂａｒａｇｉ， Ｖ． （２００３）． Ｂｒｏａｄ－ｓｐｅｃｔｒｕｍ ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ ｍａｒｉｍａｓｔａｔ－ｉｎｄｕｃｅｄ ｍｕｓｃｕｌｏｓｋｅｌｅｔａｌ ｓｉｄｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｉｎ ｒａｔｓ． Ａｒｔｈｒｉｔｉｓ Ｒｈｅｕｍ． ４８． １７４２－１７４９．
Ｒｏｓｅｍｕｒｇｙ， Ａ．， Ｈａｒｒｉｓ， Ｊ．， Ｌａｎｇｌｅｂｅｎ， Ａ．， Ｃａｓｐｅｒ， Ｅ．， Ｇｏｏｄｅ， Ｓ．， ａｎｄ Ｒａｓｍｕｓｓｅｎ， Ｈ． （１９９９）． Ｍａｒｉｍａｓｔａｔ ｉｎ ｐａｔｉｅｎｔｓ ｗｉｔｈ ａｄｖａｎｃｅｄ ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ ｃａｎｃｅｒ： ａ ｄｏｓｅ－ｆｉｎｄｉｎｇ ｓｔｕｄｙ． Ａｍ． Ｊ． Ｃｌｉｎ． Ｏｎｃｏｌ． ２２，２４７－２５２．
Ｓｐａｒａｎｏ， Ｊ．Ａ．， Ｂｅｒｎａｒｄｏ， Ｐ．， Ｓｔｅｐｈｅｎｓｏｎ， Ｐ．， Ｇｒａｄｉｓｈａｒ， Ｗ．Ｊ．， Ｉｎｇｌｅ， Ｊ．Ｎ．， Ｚｕｃｋｅｒ， Ｓ．， ａｎｄ Ｄａｖｉｄｓｏｎ， Ｎ．Ｅ． （２００４）． Ｒａｎｄｏｍｉｚｅｄ ｐｈａｓｅ ＩＩＩ ｔｒｉａｌ ｏｆ ｍａｒｉｍａｓｔａｔ ｖｅｒｓｕｓ ｐｌａｃｅｂｏ ｉｎ ｐａｔｉｅｎｔｓ ｗｉｔｈ ｍｅｔａｓｔａｔｉｃ ｂｒｅａｓｔ ｃａｎｃｅｒ ｗｈｏ ｈａｖｅ ｒｅｓｐｏｎｄｉｎｇ ｏｒ ｓｔａｂｌｅ ｄｉｓｅａｓｅ ａｆｔｅｒ ｆｉｒｓｔ－ｌｉｎｅ ｃｈｅｍｏｔｈｅｒａｐｙ： Ｅａｓｔｅｒｎ Ｃｏｏｐｅｒａｔｉｖｅ Ｏｎｃｏｌｏｇｙ Ｇｒｏｕｐ ｔｒｉａｌ Ｅ２１９６． Ｊ． Ｃｌｉｎ． Ｏｎｃｏｌ． Ｏｆｆ． Ｊ． Ａｍ． Ｓｏｃ． Ｃｌｉｎ． Ｏｎｃｏｌ． ２２， ４６８３－ ４６９０．
Ｓｔｅｗａｒｄ， Ｗ．Ｐ． （１９９９）． Ｍａｒｉｍａｓｔａｔ （ＢＢ２５１６）： ｃｕｒｒｅｎｔ ｓｔａｔｕｓ ｏｆ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ． Ｃａｎｃｅｒ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ． Ｐｈａｒｍａｃｏｌ． ４３ Ｓｕｐｐｌ， Ｓ５６－６０．
Ｓｔｅｗａｒｄ， Ｗ．Ｐ．， ａｎｄ Ｔｈｏｍａｓ， Ａ．Ｌ． （２０００）． Ｍａｒｉｍａｓｔａｔ： ｔｈｅ ｃｌｉｎｉｃａｌ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ ａ ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ． Ｅｘｐｅｒｔ Ｏｐｉｎ． Ｉｎｖｅｓｔｉｇ． Ｄｒｕｇｓ ９， ２９１３－２９２２．
Ｓｚｋｌａｒｃｚｙｋ， Ａ．， Ｌａｐｉｎｓｋａ， Ｊ．， Ｒｙｌｓｋｉ， Ｍ．， ＭｃＫａｙ， Ｒ．Ｄ．Ｇ．， ａｎｄ Ｋａｃｚｍａｒｅｋ， Ｌ． （２００２）． Ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｌｅｉｎａｓｅ－９ ｕｎｄｅｒｇｏｅｓ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ａｎｄ ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ ｄｕｒｉｎｇ ｄｅｎｄｒｉｔｉｃ ｒｅｍｏｄｅｌｉｎｇ ｉｎ ａｄｕｌｔ ｈｉｐｐｏｃａｍｐｕｓ． Ｊ． Ｎｅｕｒｏｓｃｉ． Ｏｆｆ． Ｊ． Ｓｏｃ． Ｎｅｕｒｏｓｃｉ． ２２， ９２０－９３０．
Ｖａｆａｄａｒｉ， Ｂ．， Ｓａｌａｍｉａｎ， Ａ．， ａｎｄ Ｋａｃｚｍａｒｅｋ， Ｌ． （２０１６）． ＭＭＰ－９ ｉｎ ｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎ： ｆｒｏｍ ｍｏｌｅｃｕｌｅ ｔｏ ｂｒａｉｎ ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ， ｐａｔｈｏｌｏｇｙ， ａｎｄ ｔｈｅｒａｐｙ． Ｊ． Ｎｅｕｒｏｃｈｅｍ． Ｊ３９ Ｓｕｐｐｌ ２， ９１－１１４．
Ｗａｎｇ， Ｑ．， Ｙｕ， Ｓ．， Ｓｉｍｏｎｙｉ， Ａ．， Ｓｕｎ， Ｇ．Ｙ．， ａｎｄ Ｓｕｎ， Ａ．Ｙ． （２００５）． Ｋａｉｎｉｃ ａｃｉｄ－ｍｅｄｉａｔｅｄ ｅｘｃｉｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ ａｓ ａ ｍｏｄｅｌ ｆｏｒ ｎｅｕｒｏｄｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ． Ｍｏｌ． Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌ． ３１， ３－１６．
Ｗｉｌｃｚｙｎｓｋｉ， Ｇ．Ｍ．， Ｋｏｎｏｐａｃｋｉ， Ｆ．Ａ．， Ｗｉｌｃｚｅｋ， Ｅ．， Ｌａｓｉｅｃｋａ， Ｚ．， Ｇｏｒｌｅｗｉｃｚ， Ａ．， Ｍｉｃｈａｌｕｋ， Ｐ．， Ｗａｗｒｚｙｎｉａｋ， Ｍ．， Ｍａｌｉｎｏｗｓｋａ， Ｍ．， Ｏｋｕｌｓｋｉ， Ｐ．， Ｋｏｌｏｄｚｉｅｊ， Ｌ．Ｒ．， ｅｔ ａｌ． （２００８）． Ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｒｏｌｅ ｏｆ ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ ９ ｉｎ ｅｐｉｌｅｐｔｏｇｅｎｅｓｉｓ． Ｊ． Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ． １８０， １０２１－１０３５．
Ｗｏｊｔｏｗｉｃｚ－Ｐｒａｇａ， Ｓ．， Ｔｏｍ． Ｊ．， Ｊｏｈｎｓｏｎ， Ｍ．， Ｓｔｅｅｎ， Ｖ．， Ｍａｒｓｈａｌｌ， Ｊ．， Ｎｅｓｓ， Ｅ．， Ｄｉｃｋｓｏｎ， Ｒ．， Ｓａｌｅ， Ｍ．， Ｒａｓｍｕｓｓｅｎ， Ｈ．Ｓ．， Ｃｈｉｏｄｏ， Ｔ．Ａ．， ｅｔ ａｌ． （１９９８）． Ｐｈａｓｅ Ｉ ｔｒｉａｌ ｏｆ Ｍａｒｉｍａｓｔａｔ， ａ ｎｏｖｅｌ ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ， ａｄｍｉｎｉｓｔｅｒｅｄ ｏｒａｌｌｙ ｔｏ ｐａｔｉｅｎｔｓ ｗｉｔｈ ａｄｖａｎｃｅｄ ｌｕｎｇ ｃａｎｃｅｒ． Ｊ． Ｃｌｉｎ． Ｏｎｃｏｌ． Ｏｆｆ． Ｊ． Ａｍ． Ｓｏｃ． Ｃｌｉｎ． Ｏｎｃｏｌ． １６， ２１５０－２１５６．
Ｚｈａｎｇ， Ｊ．Ｗ．， Ｄｅｂ， Ｓ．， ａｎｄ Ｇｏｔｔｓｃｈａｌｌ， Ｐ．Ｅ． （１９９８）． Ｒｅｇｉｏｎａｌ ａｎｄ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｇｅｌａｔｉｎａｓｅｓ ｉｎ ｒａｔ ｂｒａｉｎ ａｆｔｅｒ ｓｙｓｔｅｍｉｃ ｋａｉｎｉｃ ａｃｉｄ ｏｒ ｂｉｃｕｃｕｌｌｉｎｅ ａｄｍｉｎｉｓｔｒａｔｉｏｎ． Ｅｕｒ． Ｊ． Ｎｅｕｒｏｓｃｉ． １０， ３３５８－３３６８．
Ｚｈａｎｇ， Ｊ．Ｗ．， Ｄｅｂ， Ｓ．， ａｎｄ Ｇｏｔｔｓｃｈａｌｌ， Ｐ．Ｅ． （２０００）． Ｒｅｇｉｏｎａｌ ａｎｄ ａｇｅ－ｒｅｌａｔｅｄ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｇｅｌａｔｉｎａｓｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｂｒａｉｎｓ ｏｆ ｙｏｕｎｇ ａｎｄ ｏｌｄ ｒａｔｓ ａｆｔｅｒ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｗｉｔｈ ｋａｉｎｉｃ ａｃｉｄ． Ｎｅｕｒｏｓｃｉ． Ｌｅｔｔ． ２９５， ９－１２．
Ｚｈｅｎｇ， Ｘ．－Ｙ．， Ｚｈａｎｇ， Ｈ．－Ｌ．， Ｌｕｏ， Ｑ．， ａｎｄ Ｚｈｕ， Ｊ． （２０１１）． Ｋａｉｎｉｃ ａｃｉｄ－ｉｎｄｕｃｅｄ ｎｅｕｒｏｄｅｇｅｎｅｒａｔｉｖｅ ｍｏｄｅｌ： ｐｏｔｅｎｔｉａｌｓ ａｎｄ ｌｉｍｉｔａｔｉｏｎｓ． Ｊ． Ｂｉｏｍｅｄ． Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ． ２０１１． ４５７０７９．
てんかん発生過程誘導後の１ヶ月で、ＫＡ注射後１週と同様に、マリマスタットは、単一てんかん発作の持続を阻害した（Ｐ＝０．０２）（図６）。この効果はまた、ＫＡ注射後の４週間に海馬内で観察されるてんかん発作の例においても認められる。さらに、マリマスタットは、てんかん発作のスコアおよび回数をわずかに低下させたが、その変化は、有意ではなかった。
参考文献
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Ｂｒａｍｈａｌｌ， Ｓ．Ｒ．， Ｒｏｓｅｍｕｒｇｙ， Ａ．， Ｂｒｏｗｎ， Ｐ．Ｄ．， Ｂｏｗｒｙ． Ｃ．， Ｂｕｃｋｅｌｓ， Ｊ．Ａ．， ａｎｄ Ｍａｒｉｍａｓｔａｔ Ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ Ｃａｎｃｅｒ Ｓｔｕｄｙ Ｇｒｏｕｐ （２００１）． Ｍａｒｉｍａｓｔａｔ ａｓ ｆｉｒｓｔ－ｌｉｎｅ ｔｈｅｒａｐｙ ｆｏｒ ｐａｔｉｅｎｔｓ ｗｉｔｈ ｕｎｒｅｓｅｃｔａｂｌｅ ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ ｃａｎｃｅｒ： ａ ｒａｎｄｏｍｉｚｅｄ ｔｒｉａｌ． Ｊ． Ｃｌｉｎ． Ｏｎｃｏｌ． Ｏｆｆ． Ｊ． Ａｍ． Ｓｏｃ． Ｃｌｉｎ． Ｏｎｃｏｌ． １９． ３４４７－３４５５．
Ｂｒａｍｈａｌｌ， Ｓ．Ｒ．， Ｈａｌｌｉｓｓｅｙ， Ｍ．Ｔ．， Ｗｈｉｔｉｎｇ， Ｊ．， Ｓｃｈｏｌｅｆｉｅｌｄ， Ｊ．， Ｔｉｅｒｎｅｙ， Ｇ．， Ｓｔｕａｒｔ， Ｒ．Ｃ．， Ｈａｗｋｉｎｓ， Ｒ．Ｅ．， ＭｃＣｕｌｌｏｃｈ， Ｐ．， Ｍａｕｇｈａｎ， Ｔ．， Ｂｒｏｗｎ， Ｐ．Ｄ．， ｅｔ ａｌ． （２００２）． Ｍａｒｉｍａｓｔａｔ ａｓ ｍａｉｎｔｅｎａｎｃｅ ｔｈｅｒａｐｙ ｆｏｒ ｐａｔｉｅｎｔｓ ｗｉｔｈ ａｄｖａｎｃｅｄ ｇａｓｔｒｉｃ ｃａｎｃｅｒ： ａ ｒａｎｄｏｍｉｓｅｄ ｔｒｉａｌ． Ｂｒ． Ｊ． Ｃａｎｃｅｒ ８６． １８６４－１８７０．
Ｂｕｃｋｍａｓｔｅｒ， Ｐ．Ｓ． （２０１２）． Ｍｏｓｓｙ Ｆｉｂｅｒ Ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ ｉｎ ｔｈｅ Ｄｅｎｔａｔｅ Ｇｙｒｕｓ． Ｉｎ Ｊａｓｐｅｒ’ｓ Ｂａｓｉｃ Ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｅｐｉｌｅｐｓｉｅｓ．
Ｃｈｕａｎｇ， Ｙ．－Ｃ．， Ｃｈａｎｇ， Ａ．Ｙ．Ｗ．， Ｌｉｎ， Ｊ．－Ｗ．， Ｈｓｕ， Ｓ．－Ｐ．， ａｎｄ Ｃｈａｎ， Ｓ．Ｈ．Ｈ． （２００４）． Ｍｉｔｏｃｈｏｎｄｒｉａｌ ｄｙｓｆｕｎｃｔｉｏｎ ａｎｄ ｕｌｔｒａｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ ｄａｍａｇｅ ｉｎ ｔｈｅ ｈｉｐｐｏｃａｍｐｕｓ ｄｕｒｉｎｇ ｋａｉｎｉｃ ａｃｉｄ－ｉｎｄｕｃｅｄ ｓｔａｔｕｓ ｅｐｉｌｅｐｔｉｃｕｓ ｉｎ ｔｈｅ ｒａｔ． Ｅｐｉｌｅｐｓｉａ ４５． １２０２－１２０９．
Ｅｖａｎｓ， Ｊ．Ｄ．， Ｓｔａｒｋ， Ａ．， Ｊｏｈｎｓｏｎ， Ｃ．Ｄ．， Ｄａｎｉｅｌ， Ｆ．， Ｃａｒｍｉｃｈａｅｌ， Ｊ．， Ｂｕｃｋｅｌｓ， Ｊ．， Ｉｍｒｉｅ， Ｃ．Ｗ．， Ｂｒｏｗｎ， Ｐ．， ａｎｄ Ｎｅｏｐｔｏｌｅｍｏｓ， Ｊ．Ｐ． （２００１）． Ａ ｐｈａｓｅ ＩＩ ｔｒｉａｌ ｏｆ ｍａｒｉｍａｓｔａｔ ｉｎ ａｄｖａｎｃｅｄ ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ ｃａｎｃｅｒ． Ｂｒ． Ｊ． Ｃａｎｃｅｒ ８５． １８６５－１８７０．
Ｇｒａｈａｍ Ｎｅｉｌ Ｓ．Ｎ．， Ｃｒｉｃｈｔｏｎ Ｓｉｏｂｈａｎ， Ｋｏｕｔｒｏｕｍａｎｉｄｉｓ Ｍｉｃｈａｅｌ， Ｗｏｌｆｅ Ｃｈａｒｌｅｓ Ｄ．Ａ．， ａｎｄ Ｒｕｄｄ Ａｎｔｈｏｎｙ Ｇ． （２０１３）． Ｉｎｃｉｄｅｎｃｅ ａｎｄ Ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎｓ ｏｆ Ｐｏｓｔｓｔｒｏｋｃ Ｅｐｉｌｅｐｓｙ． Ｓｔｒｏｋｅ ４４． ６０５－６１１．
Ｈａｂａｓ， Ａ．， Ｋｈａｒｃｂａｖａ， Ｇ．， Ｓｚａｔｍａｒｉ， Ｅ．， ａｎｄ Ｈｅｔｍａｎ， Ｍ． （２００６）． ＮＭＤＡ ｎｅｕｒｏｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ ａｇａｉｎｓｔ ａ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｉｎｏｓｉｔｏｌ－３ ｋｉｎａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ． ＬＹ２９４００２ ｂｙ ＮＲ２Ｂ－ｍｅｄｉａｔｅｄ ｓｕｐｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｇｌｙｃｏｇｅｎ ｓｙｎｔｈａｓｅ ｋｉｎａｓｅ－３ｂｅｔａ－ｉｎｄｕｃｅｄ ａｐｏｐｔｏｓｉｓ． Ｊ． Ｎｅｕｒｏｃｈｅｍ． ９６， ３３５－３４８．
Ｈｅｓｄｏｒｆｆｅｒ， Ｄ．Ｃ．， Ｌｏｇｒｏｓｃｉｎｏ， Ｇ．， Ｃａｓｃｉｎｏ， Ｇ．， Ａｎｎｅｇｅｒｓ， Ｊ．Ｆ．， ａｎｄ Ｈａｕｓｅｒ， Ｗ．Ａ． （１９９８）． Ｒｉｓｋ ｏｆ ｕｎｐｒｏｖｏｋｅｄ ｓｅｉｚｕｒｅ ａｆｔｅｒ ａｃｕｔｅ ｓｙｍｐｔｏｍａｔｉｃ ｓｅｉｚｕｒｅ： ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｓｔａｔｕｓ ｅｐｉｌｅｐｔｉｃｕｓ． Ａｎｎ． Ｎｅｕｒｏｌ． ４４． ９０８－９１２．
Ｋｉｍ， Ｙ．－Ｓ．， ａｎｄ Ｊｏｈ， Ｔ．Ｈ． （２０１２）． Ｍａｔｒｉｘ Ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅｓ， Ｎｅｗ Ｉｎｓｉｇｈｔｓ ｉｎｔｏ ｔｈｅ Ｕｎｄｅｒｓｔａｎｄｉｎｇ ｏｆ Ｎｅｕｒｏｄｅｇｅｎｅｒａｔｉｖｅ Ｄｉｓｏｒｄｅｒｓ． Ｂｉｏｍｏｌ． Ｔｈｅｒ． ２０． １３３－１４３．
Ｋｉｍａｔａ， Ｍ．， Ｏｔａｎｉ， Ｙ．， Ｋｕｂｏｔａ， Ｔ．， Ｉｇａｒａｓｈｉ， Ｎ．， Ｙｏｋｏｙａｍａ， Ｔ．， Ｗａｄａ， Ｎ．， Ｙｏｓｈｉｍｉｚｕ， Ｎ．， Ｆｕｊｉｉ， Ｍ．， Ｋａｍｅｙａｍａ， Ｋ．， Ｏｋａｄａ， Ｙ．， ｅｔ ａｌ． （２００２）． Ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ， ｍａｒｉｍａｓｔａｔ． ｄｅｃｒｅａｓｅｓ ｐｅｒｉｔｏｎｅａｌ ｓｐｒｅａｄ ｏｆ ｇａｓｔｒｉｃ ｃａｒｃｉｎｏｍａ ｉｎ ｎｕｄｅ ｍｉｃｅ． Ｊｐｎ． Ｊ． Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ． Ｇａｎｎ ９３， ８３４－８４１．
Ｋｉｎｇ， Ｊ．， Ｚｈａｏ， Ｊ．， Ｃｌｉｎｇａｎ， Ｐ．， ａｎｄ Ｍｏｒｒｉｓ， Ｄ． （２００３）． Ｒａｎｄｏｍｉｓｅｄ ｄｏｕｂｌｅ ｂｌｉｎｄ ｐｌａｃｅｂｏ ｃｏｎｔｒｏｌ ｓｔｕｄｙ ｏｆ ａｄｊｕｖａｎｔ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ． Ｍａｒｉｍａｓｔａｔ ｉｎ ｐａｔｉｅｎｔｓ ｗｉｔｈ ｉｎｏｐｅｒａｂｌｅ ｃｏｌｏｒｅｃｔａｌ ｈｅｐａｔｉｃ ｍｅｔａｓｔａｓｅｓ： ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｓｕｒｖｉｖａｌ ａｄｖａｎｔａｇｅ ｉｎ ｐａｔｉｅｎｔｓ ｗｉｔｈ ｍｕｓｃｕｌｏｓｋｅｌｅｔａｌ ｓｉｄｅ－ｅｆｆｅｃｔｓ． Ａｎｔｉｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ． ２３． ６３９－６４５．
Ｋｌｅｉｎｅｒ， Ｄ．Ｅ．， ａｎｄ Ｓｔｅｔｌｅｒ－Ｓｔｅｖｅｎｓｏｎ， Ｗ．Ｇ． （１９９３）． Ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ ｏｆ ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅａｓｅｓ． Ｃｕｒｒ． Ｏｐｉｎ． Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ． ５． ８９１－８９７．
Ｍａｔｒｉｓｉａｎ， Ｌ．Ｍ． （１９９０）． Ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅｓ ａｎｄ ｔｈｅｉｒ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓ ｉｎ ｍａｔｒｉｘ ｒｅｍｏｄｅｌｉｎｇ． Ｔｒｅｎｄｓ Ｇｅｎｅｔ． ＴＩＧ ６， １２１－１２５．
Ｍｉｌｌａｒ， Ａ．Ｗ．， Ｂｒｏｗｎ， Ｐ．Ｄ．， Ｍｏｏｒｅ， Ｊ．， Ｇａｌｌｏｗａｙ， Ｗ．Ａ．， Ｃｏｒｎｉｓｈ， Ａ．Ｇ．， Ｌｅｎｅｈａｎ， Ｔ．Ｊ．， ａｎｄ Ｌｙｎｃｈ， Ｋ．Ｐ． （１９９８）． Ｒｅｓｕｌｔｓ ｏｆ ｓｉｎｇｌｅ ａｎｄ ｒｅｐｅａｔ ｄｏｓｅ ｓｔｕｄｉｅｓ ｏｆ ｔｈｅ ｏｒａｌ ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ ｍａｒｉｍａｓｔａｔ ｉｎ ｈｅａｌｔｈｙ ｍａｌｅ ｖｏｌｕｎｔｅｅｒｓ． Ｂｒ． Ｊ． Ｃｌｉｎ． Ｐｈａｒｍａｃｏｌ． ４５． ２１－２６．
Ｍｉｌｌｅｒ， Ｋ．Ｄ．， Ｇｒａｄｉｓｈａｒ， Ｗ．， Ｓｃｈｕｃｈｔｅｒ， Ｌ．， Ｓｐａｒａｎｏ， Ｊ．Ａ．， Ｃｏｂｌｅｉｇｈ， Ｍ．， Ｒｏｂｅｒｔ， Ｎ．， Ｒａｓｍｕｓｓｅｎ， Ｈ．， ａｎｄ Ｓｌｅｄｇｅ， Ｇ．Ｗ． （２００２）． Ａ ｒａｎｄｏｍｉｚｅｄ ｐｈａｓｅ ＩＩ ｐｉｌｏｔ ｔｒｉａｌ ｏｆ ａｄｊｕｖａｎｔ ｍａｒｉｍａｓｔａｔ ｉｎ ｐａｔｉｅｎｔｓ ｗｉｔｈ ｅａｒｌｙ－ｓｔａｇｅ ｂｒｅａｓｔ ｃａｎｃｅｒ． Ａｎｎ． Ｏｎｃｏｌ． Ｏｆｆ． Ｊ． Ｅｕｒ． Ｓｏｃ． Ｍｅｄ． Ｏｎｃｏｌ． １３， １２２０－１２２４．
Ｍｉｚｏｇｕｃｈｉ， Ｈ．， Ｎａｋａｄｅ， Ｊ．， Ｔａｃｈｉｂａｎａ， Ｍ．， Ｉｂｉ． Ｄ．， Ｓｏｍｅｙａ， Ｅ．， Ｋｏｉｋｅ， Ｈ．， Ｋａｍｅｉ， Ｈ．， Ｎａｂｅｓｈｉｍａ， Ｔ．， Ｉｔｏｈａｒａ， Ｓ．， Ｔａｋｕｍａ， Ｋ．， ｅｔ ａｌ． （２０１１）． Ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ－９ ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｅｓ ｔｏ ｋｉｎｄｌｅｄ ｓｅｉｚｕｒｅ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｉｎ ｐｅｎｔｙｌｅｎｅｔｅｔｒａｚｏｌｅ－ｔｒｅａｔｅｄ ｍｉｃｅ ｂｙ ｃｏｎｖｅｒｔｉｎｇ ｐｒｏ－ＢＤＮＦ ｔｏ ｍａｔｕｒｅ ＢＤＮＦ ｉｎ ｔｈｅ ｈｉｐｐｏｃａｍｐｕｓ． Ｊ． Ｎｅｕｒｏｓｃｉ． Ｏｆｆ． Ｊ． Ｓｏｃ． Ｎｅｕｒｏｓｃｉ． ３１， １２９６３－１２９７１．
Ｎｏｒｔｈ， Ｈ．， Ｋｉｎｇ， Ｊ．， ａｎｄ Ｍｏｒｒｉｓ， Ｄ．Ｌ． （２０００）． Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｍａｒｉｍａｓｔａｔ ｏｎ ｓｅｒｕｍ ｔｕｍｏｕｒ ｍａｒｋｅｒｓ ｉｎ ｐａｔｉｅｎｔｓ ｗｉｔｈ ｃｏｌｏｒｅｃｔａｌ ｃａｎｃｅｒ． Ｉｎｔ． Ｊ． Ｓｕｒｇ． Ｉｎｖｅｓｔｉｇ． ２， ２１３－２１７．
Ｐｉｔｋａｎｅｎ， Ａ．， Ｌｕｋａｓｉｕｋ， Ｋ．， Ｄｕｄｅｋ， Ｆ．Ｅ．， ａｎｄ Ｓｔａｌｅｙ， Ｋ．Ｊ． （２０１５）． Ｅｐｉｌｅｐｔｏｇｅｎｅｓｉｓ． Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂ． Ｐｅｒｓｐｅｃｔ． Ｍｅｄ． ５．
Ｒａｃｉｎｅ， Ｒ．Ｊ． （１９７２）． Ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｓｅｉｚｕｒｅ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｂｙ ｅｌｅｃｔｒｉｃａｌ ｓｔｉｍｕｌａｔｉｏｎ： ＩＩ． Ｍｏｔｏｒ ｓｅｉｚｕｒｅ． Ｅｌｅｃｔｒｏｅｎｃｅｐｈａｌｏｇｒ． Ｃｌｉｎ． Ｎｅｕｒｏｐｈｙｓｉｏｌ． ３２， ２８１－２９４．
Ｒａｓｍｕｓｓｅｎ， Ｈ．Ｓ．， ａｎｄ ＭｃＣａｎｎ， Ｐ．Ｐ． （１９９７）． Ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ａｓ ａ ｎｏｖｅｌ ａｎｔｉｃａｎｃｅｒ ｓｔｒａｔｅｇｙ： ａ ｒｅｖｉｅｗ ｗｉｔｈ ｓｐｅｃｉａｌ ｆｏｃｕｓ ｏｎ ｂａｔｉｍａｓｔａｔ ａｎｄ ｍａｒｉｍａｓｔａｔ． Ｐｈａｒｍａｃｏｌ． Ｔｈｅｒ． ７５， ６９－７５．
Ｒｅｎｋｉｅｗｉｃｚ， Ｒ．， Ｑｉｕ， Ｌ．， Ｌｅｓｃｈ， Ｃ．， Ｓｕｎ， Ｘ．， Ｄｅｖａｌａｒａｊａ， Ｒ．， Ｃｏｄｙ． Ｔ．， Ｋａｌｄｊｉａｎ， Ｅ．， Ｗｅｌｇｕｓ， Ｈ．， ａｎｄ Ｂａｒａｇｉ， Ｖ． （２００３）． Ｂｒｏａｄ－ｓｐｅｃｔｒｕｍ ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ ｍａｒｉｍａｓｔａｔ－ｉｎｄｕｃｅｄ ｍｕｓｃｕｌｏｓｋｅｌｅｔａｌ ｓｉｄｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｉｎ ｒａｔｓ． Ａｒｔｈｒｉｔｉｓ Ｒｈｅｕｍ． ４８． １７４２－１７４９．
Ｒｏｓｅｍｕｒｇｙ， Ａ．， Ｈａｒｒｉｓ， Ｊ．， Ｌａｎｇｌｅｂｅｎ， Ａ．， Ｃａｓｐｅｒ， Ｅ．， Ｇｏｏｄｅ， Ｓ．， ａｎｄ Ｒａｓｍｕｓｓｅｎ， Ｈ． （１９９９）． Ｍａｒｉｍａｓｔａｔ ｉｎ ｐａｔｉｅｎｔｓ ｗｉｔｈ ａｄｖａｎｃｅｄ ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ ｃａｎｃｅｒ： ａ ｄｏｓｅ－ｆｉｎｄｉｎｇ ｓｔｕｄｙ． Ａｍ． Ｊ． Ｃｌｉｎ． Ｏｎｃｏｌ． ２２，２４７－２５２．
Ｓｐａｒａｎｏ， Ｊ．Ａ．， Ｂｅｒｎａｒｄｏ， Ｐ．， Ｓｔｅｐｈｅｎｓｏｎ， Ｐ．， Ｇｒａｄｉｓｈａｒ， Ｗ．Ｊ．， Ｉｎｇｌｅ， Ｊ．Ｎ．， Ｚｕｃｋｅｒ， Ｓ．， ａｎｄ Ｄａｖｉｄｓｏｎ， Ｎ．Ｅ． （２００４）． Ｒａｎｄｏｍｉｚｅｄ ｐｈａｓｅ ＩＩＩ ｔｒｉａｌ ｏｆ ｍａｒｉｍａｓｔａｔ ｖｅｒｓｕｓ ｐｌａｃｅｂｏ ｉｎ ｐａｔｉｅｎｔｓ ｗｉｔｈ ｍｅｔａｓｔａｔｉｃ ｂｒｅａｓｔ ｃａｎｃｅｒ ｗｈｏ ｈａｖｅ ｒｅｓｐｏｎｄｉｎｇ ｏｒ ｓｔａｂｌｅ ｄｉｓｅａｓｅ ａｆｔｅｒ ｆｉｒｓｔ－ｌｉｎｅ ｃｈｅｍｏｔｈｅｒａｐｙ： Ｅａｓｔｅｒｎ Ｃｏｏｐｅｒａｔｉｖｅ Ｏｎｃｏｌｏｇｙ Ｇｒｏｕｐ ｔｒｉａｌ Ｅ２１９６． Ｊ． Ｃｌｉｎ． Ｏｎｃｏｌ． Ｏｆｆ． Ｊ． Ａｍ． Ｓｏｃ． Ｃｌｉｎ． Ｏｎｃｏｌ． ２２， ４６８３－ ４６９０．
Ｓｔｅｗａｒｄ， Ｗ．Ｐ． （１９９９）． Ｍａｒｉｍａｓｔａｔ （ＢＢ２５１６）： ｃｕｒｒｅｎｔ ｓｔａｔｕｓ ｏｆ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ． Ｃａｎｃｅｒ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ． Ｐｈａｒｍａｃｏｌ． ４３ Ｓｕｐｐｌ， Ｓ５６－６０．
Ｓｔｅｗａｒｄ， Ｗ．Ｐ．， ａｎｄ Ｔｈｏｍａｓ， Ａ．Ｌ． （２０００）． Ｍａｒｉｍａｓｔａｔ： ｔｈｅ ｃｌｉｎｉｃａｌ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ ａ ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ． Ｅｘｐｅｒｔ Ｏｐｉｎ． Ｉｎｖｅｓｔｉｇ． Ｄｒｕｇｓ ９， ２９１３－２９２２．
Ｓｚｋｌａｒｃｚｙｋ， Ａ．， Ｌａｐｉｎｓｋａ， Ｊ．， Ｒｙｌｓｋｉ， Ｍ．， ＭｃＫａｙ， Ｒ．Ｄ．Ｇ．， ａｎｄ Ｋａｃｚｍａｒｅｋ， Ｌ． （２００２）． Ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｌｅｉｎａｓｅ－９ ｕｎｄｅｒｇｏｅｓ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ａｎｄ ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ ｄｕｒｉｎｇ ｄｅｎｄｒｉｔｉｃ ｒｅｍｏｄｅｌｉｎｇ ｉｎ ａｄｕｌｔ ｈｉｐｐｏｃａｍｐｕｓ． Ｊ． Ｎｅｕｒｏｓｃｉ． Ｏｆｆ． Ｊ． Ｓｏｃ． Ｎｅｕｒｏｓｃｉ． ２２， ９２０－９３０．
Ｖａｆａｄａｒｉ， Ｂ．， Ｓａｌａｍｉａｎ， Ａ．， ａｎｄ Ｋａｃｚｍａｒｅｋ， Ｌ． （２０１６）． ＭＭＰ－９ ｉｎ ｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎ： ｆｒｏｍ ｍｏｌｅｃｕｌｅ ｔｏ ｂｒａｉｎ ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ， ｐａｔｈｏｌｏｇｙ， ａｎｄ ｔｈｅｒａｐｙ． Ｊ． Ｎｅｕｒｏｃｈｅｍ． Ｊ３９ Ｓｕｐｐｌ ２， ９１－１１４．
Ｗａｎｇ， Ｑ．， Ｙｕ， Ｓ．， Ｓｉｍｏｎｙｉ， Ａ．， Ｓｕｎ， Ｇ．Ｙ．， ａｎｄ Ｓｕｎ， Ａ．Ｙ． （２００５）． Ｋａｉｎｉｃ ａｃｉｄ－ｍｅｄｉａｔｅｄ ｅｘｃｉｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ ａｓ ａ ｍｏｄｅｌ ｆｏｒ ｎｅｕｒｏｄｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ． Ｍｏｌ． Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌ． ３１， ３－１６．
Ｗｉｌｃｚｙｎｓｋｉ， Ｇ．Ｍ．， Ｋｏｎｏｐａｃｋｉ， Ｆ．Ａ．， Ｗｉｌｃｚｅｋ， Ｅ．， Ｌａｓｉｅｃｋａ， Ｚ．， Ｇｏｒｌｅｗｉｃｚ， Ａ．， Ｍｉｃｈａｌｕｋ， Ｐ．， Ｗａｗｒｚｙｎｉａｋ， Ｍ．， Ｍａｌｉｎｏｗｓｋａ， Ｍ．， Ｏｋｕｌｓｋｉ， Ｐ．， Ｋｏｌｏｄｚｉｅｊ， Ｌ．Ｒ．， ｅｔ ａｌ． （２００８）． Ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｒｏｌｅ ｏｆ ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ ９ ｉｎ ｅｐｉｌｅｐｔｏｇｅｎｅｓｉｓ． Ｊ． Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ． １８０， １０２１－１０３５．
Ｗｏｊｔｏｗｉｃｚ－Ｐｒａｇａ， Ｓ．， Ｔｏｍ． Ｊ．， Ｊｏｈｎｓｏｎ， Ｍ．， Ｓｔｅｅｎ， Ｖ．， Ｍａｒｓｈａｌｌ， Ｊ．， Ｎｅｓｓ， Ｅ．， Ｄｉｃｋｓｏｎ， Ｒ．， Ｓａｌｅ， Ｍ．， Ｒａｓｍｕｓｓｅｎ， Ｈ．Ｓ．， Ｃｈｉｏｄｏ， Ｔ．Ａ．， ｅｔ ａｌ． （１９９８）． Ｐｈａｓｅ Ｉ ｔｒｉａｌ ｏｆ Ｍａｒｉｍａｓｔａｔ， ａ ｎｏｖｅｌ ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ， ａｄｍｉｎｉｓｔｅｒｅｄ ｏｒａｌｌｙ ｔｏ ｐａｔｉｅｎｔｓ ｗｉｔｈ ａｄｖａｎｃｅｄ ｌｕｎｇ ｃａｎｃｅｒ． Ｊ． Ｃｌｉｎ． Ｏｎｃｏｌ． Ｏｆｆ． Ｊ． Ａｍ． Ｓｏｃ． Ｃｌｉｎ． Ｏｎｃｏｌ． １６， ２１５０－２１５６．
Ｚｈａｎｇ， Ｊ．Ｗ．， Ｄｅｂ， Ｓ．， ａｎｄ Ｇｏｔｔｓｃｈａｌｌ， Ｐ．Ｅ． （１９９８）． Ｒｅｇｉｏｎａｌ ａｎｄ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｇｅｌａｔｉｎａｓｅｓ ｉｎ ｒａｔ ｂｒａｉｎ ａｆｔｅｒ ｓｙｓｔｅｍｉｃ ｋａｉｎｉｃ ａｃｉｄ ｏｒ ｂｉｃｕｃｕｌｌｉｎｅ ａｄｍｉｎｉｓｔｒａｔｉｏｎ． Ｅｕｒ． Ｊ． Ｎｅｕｒｏｓｃｉ． １０， ３３５８－３３６８．
Ｚｈａｎｇ， Ｊ．Ｗ．， Ｄｅｂ， Ｓ．， ａｎｄ Ｇｏｔｔｓｃｈａｌｌ， Ｐ．Ｅ． （２０００）． Ｒｅｇｉｏｎａｌ ａｎｄ ａｇｅ－ｒｅｌａｔｅｄ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｇｅｌａｔｉｎａｓｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｂｒａｉｎｓ ｏｆ ｙｏｕｎｇ ａｎｄ ｏｌｄ ｒａｔｓ ａｆｔｅｒ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｗｉｔｈ ｋａｉｎｉｃ ａｃｉｄ． Ｎｅｕｒｏｓｃｉ． Ｌｅｔｔ． ２９５， ９－１２．
Ｚｈｅｎｇ， Ｘ．－Ｙ．， Ｚｈａｎｇ， Ｈ．－Ｌ．， Ｌｕｏ， Ｑ．， ａｎｄ Ｚｈｕ， Ｊ． （２０１１）． Ｋａｉｎｉｃ ａｃｉｄ－ｉｎｄｕｃｅｄ ｎｅｕｒｏｄｅｇｅｎｅｒａｔｉｖｅ ｍｏｄｅｌ： ｐｏｔｅｎｔｉａｌｓ ａｎｄ ｌｉｍｉｔａｔｉｏｎｓ． Ｊ． Ｂｉｏｍｅｄ． Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ． ２０１１． ４５７０７９．
Claims (10)
- 脳損傷を罹患した対象においててんかん発生を予防するまたは治療することにおけるマリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩、溶媒和物またはその多形体の使用。
- 脳損傷が、卒中、外傷性脳損傷、あるいは構造的または代謝的原因により惹起された、てんかん重積状態の結果である、請求項１のマリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩の使用。
- マリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩が、経口で、舌下で、頬側で、皮下で、静脈内で、筋肉内でまたは髄腔内で投与される、請求項１または２のマリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩の使用。
- マリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩が、てんかん発生の誘導後に最長６．５日間単回投与量、または１日当たり２回投与される、反復用量でのいずれかで投与される、前記の請求項のいずれか１項に記載のマリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩の使用。
- マリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩が、てんかん発生の誘導後に１～３日の期間において反復用量で投与される、前記の請求項のいずれか１項に記載のマリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩の使用。
- マリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩の単回投与量が、ヒトに利用する場合、２００ｍｇ～８００ｍｇである、前記の請求項のいずれか１項に記載のマリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩の使用。
- マリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩が、てんかん発生の誘導後最初の２４時間以内に投与される、前記の請求項のいずれか１項に記載のマリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩の使用。
- マリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩が、てんかん発生の誘導後３時間以内に投与される、前記の請求項のいずれか１項に記載のマリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩の使用。
- マリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩が、てんかん発生の誘導後１時間以内に投与される、前記の請求項のいずれか１項に記載のマリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩の使用。
- マリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩が、てんかん発生の誘導後３０分以内に投与される、前記の請求項のいずれか１項に記載のマリマスタットまたはその薬学的に許容可能な塩の使用。
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| MOLECULAR AND CELLULAR PEDIATRICS, vol. 1, no. 6, JPN6023019959, 2014, pages 1 - 6, ISSN: 0005221960 * |
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