JP2022550952A - Cldn18.2を標的とする抗体及びその製造方法並びに使用 - Google Patents
Cldn18.2を標的とする抗体及びその製造方法並びに使用 Download PDFInfo
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Abstract
Description
前記バリアント1の変異は少なくとも配列番号8に示すアミノ酸配列の6位及び/又は7位に起こることが好ましい。
本発明の好ましい実施形態で、前記バリアント2のアミノ酸配列は配列番号17に示すとおりであり、
本発明の好ましい実施形態で、前記バリアント3のアミノ酸配列は配列番号19に示すとおりであり、
本発明の好ましい実施形態で、前記バリアント4のアミノ酸配列は配列番号40又は41に示すとおりであり、
本発明の好ましい実施形態で、前記バリアント5のアミノ酸配列は配列番号48に示すとおりであり、
本発明の好ましい実施形態で、前記バリアント6のアミノ酸配列は配列番号56~58いずれか一つに示すとおりである。
且つ/又は、前記LCDR1のアミノ酸配列は配列番号41に示すとおりであり、前記LCDR2のアミノ酸配列は配列番号48に示すとおりであり且つ前記LCDR3のアミノ酸配列は配列番号56に示すとおりであり、前記LCDR1のアミノ酸配列は配列番号42に示すとおりであり、前記LCDR2のアミノ酸配列は配列番号47に示すとおりであり且つ前記LCDR3のアミノ酸配列は配列番号57に示すとおりであり、前記LCDR1のアミノ酸配列は配列番号42に示すとおりであり、前記LCDR2のアミノ酸配列は配列番号47に示すとおりであり且つ前記LCDR3のアミノ酸配列は配列番号55に示すとおりであり、又は、前記LCDR1のアミノ酸配列は配列番号42に示すとおりであり、前記LCDR2のアミノ酸配列は配列番号47に示すとおりであり且つ前記LCDR3のアミノ酸配列は配列番号58に示すとおりである。
より好ましくは、前記VH FWRはヒト抗体の重鎖可変領域フレームワーク領域であり、前記VL FWRはヒト抗体の軽鎖可変領域フレームワーク領域である。
なお、前記重鎖可変領域フレームワーク領域をコードする遺伝子は生殖細胞系列V遺伝子IGHV3-23に由来することが好ましく、好ましくは、前記重鎖可変領域フレームワーク領域で、HFR1は配列番号2~4のいずれか一つに示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、HFR2は配列番号10~14のいずれか一つに示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、HFR3は配列番号21~24のいずれか一つに示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、HFR4は配列番号31~33のいずれか一つに示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含む。
好ましくは、前記軽鎖可変領域フレームワーク領域で、LFR1は配列番号35~38のいずれか一つに示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、LFR2は配列番号44又は45に示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、LFR3は配列番号50~53のいずれか一つに示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、LFR4は配列番号60又は61に示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含む。
前記HCDR1のアミノ酸配列は配列番号8に示すとおりであり、前記HCDR2のアミノ酸配列は配列番号18に示すとおりであり、前記HCDR3のアミノ酸配列は配列番号28に示すとおりであり、前記LCDR1のアミノ酸配列は配列番号42に示すとおりであり、前記LCDR2のアミノ酸配列は配列番号47に示すとおりであり且つ前記LCDR3のアミノ酸配列は配列番号57に示すとおりであり、
前記HCDR1のアミノ酸配列は配列番号8に示すとおりであり、前記HCDR2のアミノ酸配列は配列番号16に示すとおりであり、前記HCDR3のアミノ酸配列は配列番号29に示すとおりであり、前記LCDR1のアミノ酸配列は配列番号42に示すとおりであり、前記LCDR2のアミノ酸配列は配列番号47に示すとおりであり且つ前記LCDR3のアミノ酸配列は配列番号55に示すとおりであり、
前記HCDR1のアミノ酸配列は配列番号8に示すとおりであり、前記HCDR2のアミノ酸配列は配列番号16に示すとおりであり、前記HCDR3のアミノ酸配列は配列番号29に示すとおりであり、前記LCDR1のアミノ酸配列は配列番号42に示すとおりであり、前記LCDR2のアミノ酸配列は配列番号47に示すとおりであり且つ前記LCDR3のアミノ酸配列は配列番号58に示すとおりであり、
又は、前記HCDR1のアミノ酸配列は配列番号8に示すとおりであり、前記HCDR2のアミノ酸配列は配列番号19に示すとおりであり、前記HCDR3のアミノ酸配列は配列番号28に示すとおりであり、前記LCDR1のアミノ酸配列は配列番号42に示すとおりであり、前記LCDR2のアミノ酸配列は配列番号47に示すとおりであり且つ前記LCDR3のアミノ酸配列は配列番号57に示すとおりであり。
前記重鎖可変領域は配列番号67に示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、且つ前記軽鎖可変領域は配列番号73に示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、
前記重鎖可変領域は配列番号65に示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、且つ前記軽鎖可変領域は配列番号72に示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、
前記重鎖可変領域は配列番号68に示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、且つ前記軽鎖可変領域は配列番号74に示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、
又は、前記重鎖可変領域は配列番号66に示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、且つ前記軽鎖可変領域は配列番号72に示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、
なお、前記バリアントには少なくとも変異前配列の機能が保持されており、且つ前記バリアントと変異前配列の相同性は少なくとも85%であり、好ましくは少なくとも90%であり、より好ましくは少なくとも95%であり、さらに好ましくは少なくとも99%である。
より好ましくは、前記重鎖定常領域はhIgG1、hIgG2、hIgG3又はhIgG4又はそのバリアントから選ばれ、前記軽鎖定常領域はヒト抗体の軽鎖κ鎖又はλ鎖又はそのバリアントから選ばれ、
さらに好ましくは、前記重鎖定常領域はhIgG1であり、且つ前記軽鎖定常領域はヒト抗体の軽鎖κ鎖である。
前記重鎖は配列番号78に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号94に示すアミノ酸配列を含み、
前記重鎖は配列番号79に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号93に示すアミノ酸配列を含み、
前記重鎖は配列番号85に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号93に示すアミノ酸配列を含み、
前記重鎖は配列番号83に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号93に示すアミノ酸配列を含み、
前記重鎖は配列番号84に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号93に示すアミノ酸配列を含み、
前記重鎖は配列番号81に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号95に示すアミノ酸配列を含み、
前記重鎖は配列番号82に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号96に示すアミノ酸配列を含み、
前記重鎖は配列番号80に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号94に示すアミノ酸配列を含み、
前記重鎖は配列番号86に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号95に示すアミノ酸配列を含み、
前記重鎖は配列番号87に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号96に示すアミノ酸配列を含み、
前記重鎖は配列番号88に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号94に示すアミノ酸配列を含み、
前記重鎖は配列番号89に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号95に示すアミノ酸配列を含み、
又は、前記重鎖は配列番号90に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号96に示すアミノ酸配列を含む。以下、表1-3にまとめた抗体例の配列番号を使用する。
本発明の抗体は従来技術と比べて、その結合親和性、ADCC(antibody-dependentcell-mediated cytotoxicity、抗体依存-細胞媒介細胞傷害)、CDC(complement dependent cytotoxicity、補体依存性細胞傷害)、成長阻害効果、内在化活性などにいずれも明らかな利点があるため、腫瘍の治療のための利用が見込まれる。本発明の好ましい実施例で、抗体HBM1029、PR003197、PR003340、PR003292、PR003293、PR003240、PR003291、PR003289、PR003890、PR003891、PR003894、PR003897及びPR003898はIMAB362アナログと比べて、CLDN18.2を内因的に発現するNUGC4_D8細胞に対してより高い結合親和性を示している。本発明の抗体HBM1029、PR003197、PR003340、PR003240、PR003894は用量依存的にNUGC4_D8においてIMAB362アナログより強いADCC効果を特異的に誘発することができ、抗体HBM1029、PR003197、PR003340は用量依存的にHEK293 hCLDN18.2においてIMAB362アナログより強いCDC効果を誘発することができ、抗体HBM1029は用量依存的にHEK293 hCLDN18.2においてIMAB362アナログより強い成長阻害効果を誘発することができ、抗体HBM1029は用量依存的にNUGC4_D8においてIMAB362アナログより強い内在化活性を誘発することができ、抗体HBM1029をMMAF結合抗ヒトIgG抗体と共培養する場合に、用量依存的にNUGC4_D8細胞及びHEK293 hCLDN18.2細胞においてIMAB362アナログより強い細胞毒性効果を生み出すこができる。
a.マウスの免疫化のための発現ベクターの調製
完全ヒト化トランスジェニックマウスを免疫化するためのヒトCLDN18.2発現ベクターの調製方法は次のとおりである。ヒトCLDN18.2(Uniprot ID P56856-iso2)をコードするcDNA配列を合成し、酵素消化により前記遺伝子のコード配列をpCAGGSプラスミド(YOUBIO、VT1076)ににクローニングする。
ヒトCLDN18.1又はCLDN18.2を安定的に発現するHEK293(ATCC、Cat#CRL-1573)細胞株の構築は具体的に次のとおりである。ヒトCLDN18.1(GenScript、OHu29174D)又はCLDN18.2(GenScript、OHu03374D)をコードするプラスミドをHEK293細胞にトランスフェクトして、ヒトCLDN18.1又はCLDN18.2を過剰発現する安定細胞株を生成した。蛍光活性化セルソーティング(FACS)によってCLDN18.1及びCLDN18.2の発現を検出した。具体的には、2万個の遺伝子導入細胞を96ウェルプレートの各ウェルにプレーティングし、その後、ウサギ抗ヒトCLDN18抗体(LifeSpan Bio、Cat#LS-C168812-400)市販品を加えた。4℃下で1時間インキュベートした後、プレートをPBSで2回洗浄し、さらにAF-680結合ヤギ抗ウサギIgG二次抗体(Invitrogen、Cat#A21109)を加えた。4℃下で1時間インキュベートした後、プレートをPBSで3回洗浄し、その後、FACS装置(IntelliCytiQue Plus BR)を使用して細胞の蛍光を監視した。
上記のように調製したヒトCLDN18.2発現ベクター及びヒトCLDN18.2を発現するHEK293細胞(HEK293 hCLDN18.2細胞)を使用して、完全ヒト化トランスジェニックマウス(HarbourH2L2マウス、市販品、和ハク医薬より購入)を免疫化した。ヒトCLDN18.2ベクターと金粉で遺伝子銃の弾丸を作って、遺伝子銃を用いてマウスの腹部の複数の部位で免疫化した。毎回は発現ベクターのDNA50μgで免疫化し、2週間の間隔で3回免疫化した後、HEK293 hCLDN18.2細胞で免疫化し、各マウスを毎回4×106の細胞で免疫化し、2週間の間隔で、2回免疫化した後にマウスから採血して力価を測定した。ヒトCLDN18.2を発現するCHOK1細胞(CHOK1 hCLDN18.2、kyinnoより購入(KC-1180))又はCLDN18.1を発現するCHOK1細胞(CHOK1 hCLDN18.1、kyinnoより購入(KC-1181))を使用してFACSによってマウス血清の結合親和性を検出した。免疫化マウスの血清力価検出結果に基づいて、ハイブリドーマ融合用のマウスを選択し、融合の3日前にマウスを強化免疫し、免疫原はHEK293 hCLDN18.2細胞であり、用量は4×106の細胞であった。マウスの脾臓細胞及びリンパ節細胞を採取してマウス骨髄腫細胞SP2/0と2:1の比率(細胞数比)で混合し、電気融合装置(BTX ECM2001)を用いて混合後の細胞を融合させ、融合した細胞を96ウェル細胞培養プレートにプレーティングし、二酸化炭素インキュベータにおいて37℃下で10日間培養した後、ハイブリドーマの一次スクリーニングを行った。一次スクリーニングではMirrorballにおいてヒトCLDN18.2を発現するCHOK1細胞を用いて検出し、詳しくは次のとおりである。細胞を培地(F12K 10%FBS)に再懸濁させて、細胞の密度を5×104細胞/mLに調整し、384ウェルプレートの各ウェルに40μLの細胞懸濁液を加えて、二酸化炭素インキュベータにおいて37℃下で一晩培養した。ウェルに核染色色素DRAQ5を加えて染色し、次にウェルプレートから上清を捨て、ハイブリドーマ培養プレートから50μLの上清を取り分けて384マイクロウェルプレートに加え、4℃下で2時間インキュベートした後、AF488結合蛍光二次抗体(invitrogen、Cat#A11006)を加えて4℃下で一晩インキュベートし、次に384マイクロウェルプレートをMirrorballにセットして検出した。陽性ハイブリドーマを選別し、96ウェル培養プレートから24ウェル培養プレートに移して拡大培養し、5日後に24ウェル培養プレートのウェルから上清を取って再スクリーニングした。再スクリーニングではCHOK1 hCLDN18.1及びCHOK1 hCLDN18.2細胞を使用してFACSによって検出した。細胞を300gで5分間遠心分離し、次に、FACSバッファー(2%FBSを含むPBS)で再懸濁させた。細胞の密度を106細胞/mLに調整し、96ウェルプレートの各ウェルに50μLの細胞懸濁液を加えた。96ウェルプレートの各ウェルに50μLの上清を加えた。4℃下で2時間インキュベートした後、プレートをFACSバッファーで2回洗浄した。その後、APC結合ヤギ抗ラットIgG二次抗体を含むFACSバッファー(Biolegend、Cat#405407)を加えた。4℃下で1時間インキュベートした後、プレートをFACSバッファーで2回洗浄した。細胞を固定液で再懸濁させた後、FACS装置(ACEA NovoCyte)を使用して細胞の蛍光を監視した。特異性の良いハイブリドーマを限界希釈によってサブクローニングし、二酸化炭素インキュベータにおいて37℃下で7日間培養した後、サブクローンの一次スクリーニングを行った。サブクローンの一次スクリーニングではMirrorballにおいてヒトCLDN18.2を発現するCHOK1細胞を使用して検出した。検出結果と顕微鏡下での観察により、モノクローナルであって且つCHOK1/CLDN18.2との結合が陽性であるクローンを選択し、24ウェル細胞培養プレートに拡大し、二酸化炭素インキュベータにおいて37℃下で3日間培養した後、ウェルから上清を取って再スクリーニングした。再スクリーニングではCHOK1 hCLDN18.1及びCHOK1 hCLDN18.2細胞株を使用してFACSによって検出した(ステップは上記の再スクリーニングと同じ)。特異的に結合するモノクローナルに対し、サブタイプ同定キット(invitrogen、Cat#88-50640-88)を用いてサブタイプを同定した。抗体サブタイプがIgG2bの細胞を選択して配列決定を行った(実施は金唯智生物科技有限公司)。
抗体分子の軽鎖、重鎖可変ドメインをコードする配列を得た後、通常の組換えDNA技術を採用して、軽鎖、重鎖可変ドメイン配列と対応するヒト抗体の軽鎖、重鎖定常ドメイン配列の融合発現を行って、組換え抗体分子を得ることができる。本実施例では、抗体重鎖可変ドメイン配列(VH)を遺伝的に合成しヒトIgG1抗体重鎖定常ドメイン配列をコードする哺乳動物細胞発現プラスミドベクターにクローニングすることによってIgG1抗体を生成する全長重鎖をコードする。抗体軽鎖可変ドメイン配列(VL)を遺伝的に合成しヒト抗体Igκ軽鎖定常ドメイン配列をコードする哺乳動物細胞発現プラスミドベクターにクローニングすることによって抗体を生成する全長軽鎖をコードする。本実施例では、免疫化されたHarbour H2L2マウスから得たモノクローナル抗体分子の可変ドメインの配列がヒト抗体配列であるため、本実施例では完全ヒト抗CLDN18.2組換えIgG1抗体を得た。
ヒトCLDN18.2又はCLDN18.1を発現するHEK293細胞及びヒトCLDN18.2を内因的に発現するNUGC4_D8細胞(JCRBより購入したNUGC細胞株(Cat#JCRB0834)を、限界希釈でスクリーニングしてNUGC4_D8サブクローン細胞を得る)を使用してFACSによって抗体の結合親和性を検出し、具体的には次のとおりである。細胞を300gで5分間遠心分離し、次に、FACSバッファー(2%FBSを含むPBS)で再懸濁させた。細胞の密度を106細胞/mLに調整し、96ウェルプレートの各ウェルに50μLの細胞懸濁液を加えた。抗体をFACSバッファーで異なる濃度に希釈し、96ウェルプレートの各ウェルに50μLの抗体希釈液を加えた。4℃下で2時間インキュベートした後、プレートをFACSバッファーで2回洗浄した。その後、APC結合ヤギ抗ヒトIgG二次抗体を含むFACSバッファー(最終濃度1.5μg/mL、Jackson、Cat#109-605-098)を加えた。4℃下で1時間インキュベートした後、プレートをFACSバッファーで2回洗浄した。細胞を固定液で再懸濁させた後、FACS装置(ACEA NovoCyte)を使用して細胞の蛍光を監視した。IMAB362アナログ(IMAB362アナログは自ら調製したもので、重鎖アミノ酸配列は配列番号75に示すとおりであり、軽鎖アミノ酸配列は配列番号91に示すとおりである(合成はGenscript社)。IMAB362と可変領域が全く同じで、定常領域ではいくつかのアミノ酸が違うだけで、活性は類似している)を陽性コントロールとし、human Iso IgG1(CrownBio、Cat#C0001-4)抗体を陰性コントロールとした。図1は、CLDN18.2を内因的に発現するNUGC4_D8細胞及びヒトCLDN18.2を過剰発現するHEK293細胞(HEK293 hCLDN18.2)又はヒトCLDN18.1を過剰発現するHEK293細胞(HEK293 hCLDN18.1)に対する抗体HBM1029の結合親和性を示す。抗体PR002727は用量依存的にNUGC4_D8細胞と結合することができる。抗体HBM1029は用量依存的にHEK293 hCLDN18.2及びNUGC4_D8細胞と結合することができる。抗体HBM1029はHEK293 hCLDN18.2細胞に対する結合親和性がIMAB362アナログと同等であり、抗体HBM1029はIMAB362アナログよりもCLDN18.2を内因的に発現するNUGC4_D8細胞と高い結合親和性を示している。HBM1029のEC50を表7に示し、HBM1029はIMAB362アナログよりもCLDN18.2を内因的に発現するNUGC4_D8細胞に対する結合親和性を示すEC50が低かった。HBM1029はHEK293 hCLDN18.1細胞との結合親和性が低い。また、HBM1029はヒトCLDN18.2タンパク質のECL2ではなくECL1(細胞外ループ1、Extracellular loop 1)と結合すると推察できよう。図2、図3及び図4はCLDN18.2を内因的に発現するNUGC4_D8細胞又はヒトCLDN18.2を過剰発現するHEK293細胞(HEK293 hCLDN18.2)又はヒトCLDN18.1を過剰発現するHEK293細胞(HEK293 hCLDN18.1)に対するCLDN18.2抗体の結合親和性を示す。結果では、抗体HBM1029、PR003197、PR003340、PR003292、PR003293、PR003240、PR003291、PR003289、PR003890、PR003891、PR003894、PR003897、PR003898はIMAB362アナログよりもCLDN18.2を内因的に発現するNUGC4_D8細胞と高い結合親和性を示し、HEK293 hCLDN18.1細胞との結合親和性が低く、PR002725の方はHEK293 hCLDN18.1との親和性が高いことが示されている。
CytoTox 96(登録商標)非放射性細胞傷害アッセイキット(Promega、Cat#G1780)を使用して、CLDN18.2抗体のヒトCLDN18.2を内因的に発現するNUGC4_D8細胞及びHEK293 hCLDN18.1にADCC効果を誘発する活性を検出した。ヒトPBMC(Miaotong)を300gで5分間遠心分離し、培地(RPMI1640+10%FBS)で一晩培養した。標的細胞及びヒトPBMCを300gで5分間遠心分離し、次に、培地(RPMI1640+2%FBS)で再懸濁させた。標的細胞の密度を2×105細胞/mLに調整して、PBMCの細胞密度を少なくとも6×106/mLに調整し、2種類の細胞を各50μL、96ウェルプレートのウェルに加えた(感染多重度は少なくとも30:1)。被検抗体を培地(RPMI1640+2%FBS)で異なる濃度に希釈して各ウェルに加えた。サンプルを37℃下で少なくとも4時間インキュベートし、次に、標的細胞最大LDH放出コントロールウェル及び体積補正コントロールウェル(Volume correction control)に10×Triton-X 100 Lysate(RPMI1640+2%FBS+10%Triton-X 100)を加え、均一に混合して37℃下で30分間インキュベートした。96ウェルプレートを300gで5分間遠心分離し、上清から50μL取り分けて、次に50μL/ウェルでLDH発色溶液を加えた。混合物を暗所で常温下20分間静置した後、プレートをMD StakMaxにセットしてOD490を読み取った。IMAB362アナログを陽性コントロールとし、human Iso IgG1(CrownBio、Cat#C0001-4)抗体を陰性コントロールとした。結果を得てまず補正測定値を計算し、試験ウェル、標的細胞LDH自発放出コントロールウェル、エフェクター細胞LDH自発放出コントロールウェルの測定値から培地バックグラウンドコントロールウェルの測定値を差し引き、次に、標的細胞最大LDH放出コントロールウェルの測定値から体積補正コントロールウェルの測定値を差し引いた。ADCC活性(%)=(試験ウェルの補正測定値-エフェクター細胞LDH自発放出コントロールウェルの補正測定値-標的細胞LDH自発放出コントロールウェルの補正測定値)/(標的細胞最大LDH放出コントロールウェルの補正測定値-標的細胞LDH自発放出コントロールウェルの補正測定値)×100。図5はCLDN18.2を内因的に発現するNUGC4_D8細胞及びHEK293 hCLDN18.1に対する抗体HBM1029のADCC活性を示す。抗体HBM1029は用量依存的にNUGC4_D8においてIMAB362アナログより強いADCC効果を特異的に誘発することができるが、CLDN18.1を過剰発現するHEK-293細胞には細胞毒性効果が見られなかった。HBM1029のEC50を表8に示し、HBM1029はIMAB362アナログよりNUGC4_D8にADCCを誘発するEC50が低かった。
CellTiter-Glo発光細胞生存率アッセイキット(Promega、Cat#G7573)を使用して、CLDN18.2抗体のHEK293 hCLDN18.1、HEK293 hCLDN18.2及びNUGC4_D8細胞にCDC効果を誘発する能力を検出した。標的細胞HEK293 hCLDN18.1及びHEK293 hCLDN18.2を300gで5分間遠心分離し、次に、DMEM無血清培地で再懸濁させた。標的細胞NUGC4_D8を300gで5分間遠心分離し、次に、RPMI1640無血清培地で再懸濁させた。標的細胞の密度を4×105細胞/mLに調整し、96ウェルプレートの各ウェルに25μLの細胞懸濁液を加えた。抗体を無血清培地で異なる濃度に希釈し、96ウェルプレートの各ウェルに25μLの抗体希釈液を加えた。50μLの正常ヒト血清(GemCell、Cat#100-512)を加えて、最終濃度は50%であり、混合物を得て37℃下で24時間インキュベートした。96ウェルプレートを常温下で30分間静置し、100μL/ウェルで常温のCellTiter-Glo発色溶液を加えた。その後、サンプルを暗所で常温下10分間インキュベートした。PE Enspireにおいて読み取った。CDC活性(%)=[1-(発光サンプル[luminescent sample])/(発光モックコントロール[luminescent mock control])]×100。IMAB362アナログを陽性コントロールとし、human Iso IgG1(CrownBio、Cat#C0001-4)抗体を陰性コントロールとした。図8はCLDN18.2を内因的に発現するNUGC4_D8細胞、ヒトCLDN18.1を過剰発現するHEK293細胞及びヒトCLDN18.2を過剰発現するHEK293細胞に対する抗体HBM1029のCDC活性を示す。抗体HBM1029は用量依存的にHEK293 hCLDN18.2においてIMAB362アナログより強いCDC効果を誘発することができるが、NUGC4_D8細胞及びヒトCLDN18.1を過剰発現するHEK293細胞にはCDC活性が見られなかった。HBM1029のEC50を表9に示し、HBM1029はIMAB362アナログよりもHEK293 hCLDN18.2にCDCを誘発するEC50が低かった。
CellTiter-Glo発光細胞生存率アッセイキット(Promega、Cat#G7573)を使用して、CLDN18.2抗体のHEK293 hCLDN18.1及びHEK293 hCLDN18.2に成長阻害を誘発する能力を検出した。HEK293 hCLDN18.1及びHEK293 hCLDN18.2細胞を300gで5分間遠心分離し、次に、DMEM+0.5%FBS血清培地で再懸濁させた。細胞の密度を1.2×105細胞/mLに調整し、96ウェルプレートの各ウェルに50μLの細胞懸濁液を加えて、37℃下で一晩インキュベートした。抗体を培地で異なる濃度に希釈し、96ウェルプレートの各ウェルに50μLの抗体希釈液を加えた。HEK293 hCLDN18.1及びHEK293 hCLDN18.2細胞と抗体を37℃下で3日間インキュベートした。96ウェルプレートを常温下で30分間静置し、100μL/ウェルで常温のCellTiter-Glo発色溶液を加えた。その後、サンプルを暗所で常温下10分間インキュベートした。PE Enspireにおいて読み取った。成長阻害活性(%)=[1-(発光サンプル[luminescent sample])/(発光モックコントロール[luminescent mock control])]×100。IMAB362アナログを陽性コントロールとし、human Iso IgG1(CrownBio、Cat#C0001-4)抗体を陰性コントロールとした。図10は抗体HBM1029のHEK293 hCLDN18.1及びHEK293 hCLDN18.2に成長阻害を誘発する活性を示す。抗体HBM1029は用量依存的にHEK293 hCLDN18.2においてIMAB362アナログより強い成長阻害効果を誘発することができる。HBM1029のEC50を表10に示す。
NUGC4_D8細胞を使用してFACSによって抗体の内在化活性を検出した。トリプシンで細胞を処理し、FACSバッファー(2%FBSを含むPBS)で1回洗浄した。細胞を300gで5分間遠心分離し、次に、FACSバッファーで再懸濁させた。細胞の密度を4×106細胞/mLに調整して、氷上に置いて30分間予冷した。抗体をFACSバッファーで異なる濃度に希釈して、氷上に置いて30分間予冷した。予冷したディープウェルプレートのウェルに700μLの細胞懸濁液、及び700μLの抗体希釈液を加えた。4℃下で2時間インキュベートした後、予冷したFACSバッファーでプレートを3回洗浄した。250μLの予冷したFACSバッファーで細胞を再懸濁させ、37℃下で予熱したディープウェルプレートのウェルに100μLの細胞懸濁液、及び1.1mLの37℃下で予熱したFACSバッファーを加え、4℃下で予冷したディープウェルプレートのウェルに100μLの細胞懸濁液、及び1.1mLの4℃下で予冷したFACSバッファーを加えた。混合物を得てそれぞれ0、30、60、120及び240分間で50μLの細胞懸濁液を取り分けて(105/ウェルで)、予め予冷したディープウェルプレート(1.2mLのFACSバッファーを含む)に入れた。細胞を300gで5分間遠心分離し、その後、AF647結合ヤギ抗ヒトIgG二次抗体を含む予冷FACSバッファー(最終濃度1.5μg/mL、Jackson、Cat#109-605-088)を加えた。4℃下で1時間インキュベートした後、予冷したFACSバッファーでプレートを2回洗浄した。細胞を固定液で再懸濁させ、その後、FACS装置(BD Canto II)を使用して細胞の蛍光を検出した。内在化活性(%)=(1-MFI37℃/MFI4℃)×100。IMAB362アナログを陽性コントロールとし、human Iso IgG1(CrownBio、Cat#C0001-4)抗体を陰性コントロールとした。図11は異なる時間インキュベートした抗体HBM1029のNUGC4_D8細胞に対する内在化活性を示す。抗体HBM1029を30分間インキュベートした後、約50%の内在化活性が誘発された。また図11には、抗体HBM1029は用量依存的にNUGC4_D8においてIMAB362アナログより強い内在化活性を誘発できることが示されている。HBM1029のEC50を表11に示し、HBM1029はIMAB362アナログよりもNUGC4_D8に内在化を誘発するEC50が低かった。
CellTiter-Glo発光細胞生存率アッセイキット(Promega、Cat#G7573)を使用して、HEK293 hCLDN18.1、HEK293 hCLDN18.2及びNUGC4_D8細胞に対し、MMAF結合抗ヒトIgG抗体(Moradec、Cat#AH-102-AF)と共培養した抗体HBM1029の細胞毒性を誘発する能力を検出した。HEK293 hCLDN18.1及びHEK293 hCLDN18.2細胞を300gで5分間遠心分離し、次に、DMEM+10%FBS血清培地で再懸濁させ、細胞の密度を4×104細胞/mLに調整した。NUGC4_D8細胞を300gで5分間遠心分離し、次に、RPMI1640+10%FBS血清培地で再懸濁させ、細胞の密度を2×104細胞/mLに調整し、96ウェルプレートの各ウェルに50μLの細胞懸濁液を加えて、37℃下で一晩インキュベートした。抗体HBM1029を培地で異なる濃度に希釈し、96ウェルプレートの各ウェルに25μLの抗体希釈液を加えた。MMAF結合抗ヒトIgG抗体を培地で希釈し、96ウェルプレートの各ウェルに25μLの抗体希釈液を加え、最終濃度は6.6nMであった。細胞と抗体を37℃下で3日間インキュベートした。96ウェルプレートを常温下で30分間静置し、100μL/ウェルで常温のCellTiter-Glo発色溶液を加えた。その後、サンプルを暗所で常温下10分間インキュベートした。PE Enspireにおいて読み取った。細胞生存率(%)=[(発光サンプル[luminescent sample])/(発光モックコントロール[luminescent mock control])]×100。IMAB362アナログを陽性コントロールとし、human Iso IgG1(CrownBio、Cat#C0001-4)抗体を陰性コントロールとした。図12は抗体HBM1029をMMAF結合抗ヒトIgG抗体と共培養する場合の標的細胞の生存率を示す。抗体HBM1029をMMAF結合抗ヒトIgG抗体と共培養する場合に、用量依存的にNUGC4_D8細胞及びHEK293 hCLDN18.2細胞においてIMAB362アナログより強い細胞毒性効果を生み出すこができるが、HEK293 hCLDN18.1細胞には細胞毒性効果が見られなかった。
ヒトCLDN18.2を発現するHEK293細胞を使用して、FACSによって抗体の競合的結合親和性を検出した。IMAB362アナログはFITC蛍光カップリングキット(Abcam、Cat#ab188285)を使用して結合させてIMAB362-FITCアナログにした。細胞を300gで5分間遠心分離し、次に、FACSバッファー(2%FBSを含むPBS)で再懸濁させた。細胞の密度を106細胞/mLに調整し、96ウェルプレートの各ウェルに50μLの細胞懸濁液を加えた。FITCカップリング抗体をFACSバッファーで希釈し、96ウェルプレートの各ウェルに50μLのカップリング抗体希釈液を加えた。競合的結合に用いる抗体をFACSバッファーで異なる濃度に希釈し、96ウェルプレートの各ウェルに50μLの抗体希釈液を加えた。4℃下で2時間インキュベートした後、プレートをFACSバッファーで2回洗浄した。細胞を固定液で再懸濁させた後、FACS装置(ACEA NovoCyte)を使用して細胞の蛍光を監視した。human Iso IgG1(CrownBio、Cat#C0001-4)抗体を陰性コントロールとした。図13は抗体HBM1029とIMAB362-FITCアナログのHEK293 hCLDN18.2細胞における競合的結合親和性を示す。抗体HBM1029は用量依存的にHEK293 hCLDN18.2細胞と競合的に結合することができるため、抗体HBM1029はIMAB362アナログと結合するエピトープが類似すると推察できよう。HBM1029はIMAB362アナログと競合して、CLDN18.2発現細胞とのその結合を阻害することができ、またIMAB362アナログはCLDN18.1と結合せずCLDN18.2としか結合しないと知っているため、HBM1029はヒトCLDN18.2タンパク質のECL2ではなくECL1(細胞外ループ1、Extracellular loop 1)と結合すると推察できよう。
以下の手順でCLDN18.2抗体の薬物動態を検討した。体重18~22gの雌BALB/cヌード(nude)マウス6匹を選択し、5mg/kgの用量で静脈内注射により抗体薬を投与し、1群の3匹は投与前及び投与後の15分、24時間(1日)、4日目、10日目に全血を採取し、もう1群の3匹は投与前及び投与後の5時間、2日目、7日目、14日目に全血を採取した。全血を30分間静置して凝固させ、その後、4℃下で2000rpmで5分間遠心分離し、分離した血清サンプルを-80℃下で分析に備えて凍結させた。本実施例ではELISA法でマウス血清中の薬物濃度を定量的に測定した。ELISA法とは、96ウェルプレートにコーティングされたヤギ抗ヒトFcポリクローナル抗体でマウス血清中のヒトFc含有抗体を捕捉し、次に、HRP標識ヤギ抗ヒトFc二次抗体を加えて検出した。ソフトウェアPhoenix WinNonlinのバージョン8.2を用いて、非コンパートメントモデル(NCA)で血中薬物濃度データを分析することによってその薬物動態パラメーターを評価した。
以下の手順でCLDN18.2抗体のインビボ薬力学的研究を行った。細胞播種の当日に、各NCGマウスに5×106のNUGC4_D8腫瘍細胞を皮下接種し、腫瘍細胞をまずPBSとマトリゲル(Matrigel)の1:1混合液(0.1mL)に再懸濁させ、次に、PBMC(0.05mLのPBSに再懸濁したもの)と混合して、皮下接種した。各群のマウスの平均腫瘍体積が90mm3になると群分け投与を行い、18匹のマウスを3群に分け、群分けした後に投与を開始し、投与頻度は週2回で、合計で6回投与し、投与経路は尾静脈注射であった。投与が始まってから、週2回体重と腫瘍体積を測定し、腫瘍体積の計算式は腫瘍体積(mm3)=0.5×腫瘍長径×腫瘍短径2である。投与後21日目に実験を終了し、その後、全てのマウスを安楽死させた。データ分析ではt検定(t-test)を採用した。図15に示すのはIMAB362アナログ、HBM1029のインビボ薬力学的研究結果である。投与後21日目に、コントロール群のマウスの平均腫瘍体積は1526mm3であった。試験薬IMAB362アナログ(50mg/kg)治療群では投与後21日目に平均腫瘍体積が728mm3で、ビヒクルコントロール群と有意差が認められ(p=0.0052)、腫瘍阻害率TGI(%)は52.29%であった。試験薬HBM1029(50mg/kg)治療群は投与後21日目に平均腫瘍体積が618mm3で、ビヒクルコントロール群と有意な腫瘍阻害効果が認められ(p=0.0009)、腫瘍阻害率TGI(%)は59.47%であった。治療-投与期間全体を通じて、動物は良好な忍容性を示しており、深刻な体重減少又は死亡はなかった。
Claims (24)
- 軽鎖可変領域及び/又は重鎖可変領域を含み、前記重鎖可変領域はHCDR1、HCDR2及びHCDR3を含み、前記軽鎖可変領域はLCDR1、LCDR2及びLCDR3を含み、前記HCDR1は配列番号8に示すアミノ酸配列又はそのバリアント1を含み、前記HCDR2は配列番号16及びそのバリアント2、配列番号18及びそのバリアント3から選ばれるアミノ酸配列を含み、前記HCDR3は配列番号26-29のいずれか一つに示すアミノ酸配列を含み、前記LCDR1は配列番号42に示す配列又はそのバリアント4を含み、前記LCDR2は配列番号47に示す配列又はそのバリアント5を含み、前記LCDR3は配列番号55に示す配列又はそのバリアント6を含み、前記バリアントとは初期配列に1つ、2つ又は3つのアミノ酸が置換、欠失又は追加されたものであり、前記バリアントを含む抗体又は抗原結合フラグメントにはCLDN18.2との結合能が保持されていることを特徴とするCLDN18.2を標的とする抗体又はその抗原結合フラグメント。
- 前記バリアント1の変異は少なくとも配列番号8に示すアミノ酸配列の6位及び/又は7位に起こり、
前記バリアント2の変異は少なくとも配列番号16に示すアミノ酸配列の5位に起こり、
前記バリアント3の変異は少なくとも配列番号18に示すアミノ酸配列の3位に起こり、
前記バリアント4の変異は少なくとも配列番号42に示すアミノ酸配列の8位及び/又は9位に起こり、
前記バリアント5の変異は少なくとも配列番号47に示すアミノ酸配列の1位及び/又は4位に起こり、
前記バリアント6の変異は少なくとも配列番号55に示すアミノ酸配列の3~5位の1つ又は複数に起こり、好ましくは、
前記バリアント1は変異S6G及び/又はY7Fを含み、前記バリアント2は変異G5Rを含み、前記バリアント3は変異D3Eを含み、前記バリアント4は変異S8R及び/又はN9Yを含み、前記バリアント5は変異G1D及び/又はT4Nを含み、前記バリアント6は変異Y3R/N、N4S及びN5Yの1つ又は複数を含み、より好ましくは、
前記バリアント1のアミノ酸配列は配列番号6又は7に示すとおりであり、
前記バリアント2のアミノ酸配列は配列番号17に示すとおりであり、
前記バリアント3のアミノ酸配列は配列番号19に示すとおりであり、
前記バリアント4のアミノ酸配列は配列番号40又は41に示すとおりであり、
前記バリアント5のアミノ酸配列は配列番号48に示すとおりであり、
前記バリアント6のアミノ酸配列は配列番号56~58いずれか一つに示すとおりであることを特徴とする請求項1に記載の抗体又はその抗原結合フラグメント。 - 前記HCDR1のアミノ酸配列は配列番号7に示すとおりであり、前記HCDR2のアミノ酸配列は配列番号17に示すとおりであり且つ前記HCDR3のアミノ酸配列は配列番号27に示すとおりであり、
前記HCDR1のアミノ酸配列は配列番号8に示すとおりであり、前記HCDR2のアミノ酸配列は配列番号18に示すとおりであり且つ前記HCDR3のアミノ酸配列は配列番号28に示すとおりであり、
前記HCDR1のアミノ酸配列は配列番号8に示すとおりであり、前記HCDR2のアミノ酸配列は配列番号16に示すとおりであり且つ前記HCDR3のアミノ酸配列は配列番号29に示すとおりであり、
又は、前記HCDR1のアミノ酸配列は配列番号8に示すとおりであり、前記HCDR2のアミノ酸配列は配列番号19に示すとおりであり且つ前記HCDR3のアミノ酸配列は配列番号28に示すとおりであり、
好ましくは、前記重鎖可変領域フレームワーク領域はヒト抗体の重鎖可変領域フレームワーク領域であり、前記重鎖可変領域フレームワーク領域をコードする遺伝子は生殖細胞系列V遺伝子IGHV3-23に由来することが好ましく、
より好ましくは、前記重鎖可変領域フレームワーク領域で、HFR1は配列番号2~4のいずれか一つに示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、HFR2は配列番号10~14のいずれか一つに示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、HFR3は配列番号21~24のいずれか一つに示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、HFR4は配列番号31~33のいずれか一つに示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含むことを特徴とする請求項2に記載のCLDN18.2を標的とする抗体又はその抗原結合フラグメント。 - 前記LCDR1のアミノ酸配列は配列番号41に示すとおりであり、前記LCDR2のアミノ酸配列は配列番号48に示すとおりであり且つ前記LCDR3のアミノ酸配列は配列番号56に示すとおりであり、
前記LCDR1のアミノ酸配列は配列番号42に示すとおりであり、前記LCDR2のアミノ酸配列は配列番号47に示すとおりであり且つ前記LCDR3のアミノ酸配列は配列番号57に示すとおりであり、
前記LCDR1のアミノ酸配列は配列番号42に示すとおりであり、前記LCDR2のアミノ酸配列は配列番号47に示すとおりであり且つ前記LCDR3のアミノ酸配列は配列番号55に示すとおりであり、
又は、前記LCDR1のアミノ酸配列は配列番号42に示すとおりであり、前記LCDR2のアミノ酸配列は配列番号47に示すとおりであり且つ前記LCDR3のアミノ酸配列は配列番号58に示すとおりであり、
好ましくは、前記軽鎖可変領域フレームワーク領域はヒト抗体の軽鎖可変領域フレームワーク領域であり、前記軽鎖可変領域フレームワーク領域をコードする遺伝子は生殖細胞系列V遺伝子IGKV3-11又はIGKV3-15に由来することが好ましく、
より好ましくは、前記軽鎖可変領域フレームワーク領域で、LFR1は配列番号35~38のいずれか一つに示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、LFR2は配列番号44又は45に示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、LFR3は配列番号50~53のいずれか一つに示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、LFR4は配列番号60又は61に示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含むことを特徴とする請求項2又は3に記載のCLDN18.2を標的とする抗体又はその抗原結合フラグメント。 - 前記HCDR1のアミノ酸配列は配列番号7に示すとおりであり、前記HCDR2のアミノ酸配列は配列番号17に示すとおりであり、前記HCDR3のアミノ酸配列は配列番号27に示すとおりであり、前記LCDR1のアミノ酸配列は配列番号41に示すとおりであり、前記LCDR2のアミノ酸配列は配列番号48に示すとおりであり且つ前記LCDR3のアミノ酸配列は配列番号56に示すとおりであり、
前記HCDR1のアミノ酸配列は配列番号8に示すとおりであり、前記HCDR2のアミノ酸配列は配列番号18に示すとおりであり、前記HCDR3のアミノ酸配列は配列番号28に示すとおりであり、前記LCDR1のアミノ酸配列は配列番号42に示すとおりであり、前記LCDR2のアミノ酸配列は配列番号47に示すとおりであり且つ前記LCDR3のアミノ酸配列は配列番号57に示すとおりであり、
前記HCDR1のアミノ酸配列は配列番号8に示すとおりであり、前記HCDR2のアミノ酸配列は配列番号16に示すとおりであり、前記HCDR3のアミノ酸配列は配列番号29に示すとおりであり、前記LCDR1のアミノ酸配列は配列番号42に示すとおりであり、前記LCDR2のアミノ酸配列は配列番号47に示すとおりであり且つ前記LCDR3のアミノ酸配列は配列番号55に示すとおりであり、
前記HCDR1のアミノ酸配列は配列番号8に示すとおりであり、前記HCDR2のアミノ酸配列は配列番号16に示すとおりであり、前記HCDR3のアミノ酸配列は配列番号29に示すとおりであり、前記LCDR1のアミノ酸配列は配列番号42に示すとおりであり、前記LCDR2のアミノ酸配列は配列番号47に示すとおりであり且つ前記LCDR3のアミノ酸配列は配列番号58に示すとおりであり、
又は、前記HCDR1のアミノ酸配列は配列番号8に示すとおりであり、前記HCDR2のアミノ酸配列は配列番号19に示すとおりであり、前記HCDR3のアミノ酸配列は配列番号28に示すとおりであり、前記LCDR1のアミノ酸配列は配列番号42に示すとおりであり、前記LCDR2のアミノ酸配列は配列番号47に示すとおりであり且つ前記LCDR3のアミノ酸配列は配列番号57に示すとおりであることを特徴とする請求項4に記載のCLDN18.2を標的とする抗体又はその抗原結合フラグメント。 - 前記重鎖可変領域は配列番号64に示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、且つ前記軽鎖可変領域は配列番号71に示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、
前記重鎖可変領域は配列番号67に示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、且つ前記軽鎖可変領域は配列番号73に示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、
前記重鎖可変領域は配列番号65に示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、且つ前記軽鎖可変領域は配列番号72に示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、
前記重鎖可変領域は配列番号68に示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、且つ前記軽鎖可変領域は配列番号74に示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、
又は、前記重鎖可変領域は配列番号66に示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、且つ前記軽鎖可変領域は配列番号72に示すアミノ酸配列又はそのバリアントを含み、
前記バリアントには少なくとも変異前配列の機能が保持されており、且つ前記バリアントと変異前配列の相同性は少なくとも85%であり、好ましくは少なくとも90%であり、より好ましくは少なくとも95%であり、さらに好ましくは少なくとも99%であることを特徴とする請求項5に記載のCLDN18.2を標的とする抗体又はその抗原結合フラグメント。 - 前記CLDN18.2を標的とする抗体は抗体重鎖定常領域と抗体軽鎖定常領域とをさらに含み、好ましくは、前記重鎖定常領域はhIgG1、hIgG2、hIgG3又はhIgG4又はそのバリアントから選ばれ、前記軽鎖定常領域はヒト抗体のκ鎖又はλ鎖又はそのバリアントから選ばれ、より好ましくは、前記重鎖定常領域はhIgG1であり、且つ前記軽鎖定常領域はヒト抗体のκ鎖であることを特徴とする請求項1~6のいずれか一項に記載のCLDN18.2を標的とする抗体又はその抗原結合フラグメント。
- 前記CLDN18.2を標的とする抗体は全長抗体、Fab、Fab’、F(ab’)2、Fv、scFv、二重特異性抗体、多重特異性抗体、重鎖抗体もしくは単一ドメイン抗体、又は前記抗体から製造されたモノクローナル抗体もしくはポリクローナル抗体であることを特徴とする請求項1~7のいずれか一項に記載のCLDN18.2を標的とする抗体又はその抗原結合フラグメント。
- 重鎖と軽鎖とを含む全長抗体であり、
前記重鎖は配列番号77~90のいずれか一つに示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号93~96のいずれか一つに示すアミノ酸配列を含み、好ましくは、
前記重鎖は配列番号77に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号93に示すアミノ酸配列を含み、
前記重鎖は配列番号78に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号94に示すアミノ酸配列を含み、
前記重鎖は配列番号79に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号93に示すアミノ酸配列を含み、
前記重鎖は配列番号85に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号93に示すアミノ酸配列を含み、
前記重鎖は配列番号83に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号93に示すアミノ酸配列を含み、
前記重鎖は配列番号84に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号93に示すアミノ酸配列を含み、
前記重鎖は配列番号81に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号95に示すアミノ酸配列を含み、
前記重鎖は配列番号82に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号96に示すアミノ酸配列を含み、
前記重鎖は配列番号80に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号94に示すアミノ酸配列を含み、
前記重鎖は配列番号86に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号95に示すアミノ酸配列を含み、
前記重鎖は配列番号87に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号96に示すアミノ酸配列を含み、
前記重鎖は配列番号88に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号94に示すアミノ酸配列を含み、
前記重鎖は配列番号89に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号95に示すアミノ酸配列を含み、
又は、前記重鎖は配列番号90に示すアミノ酸配列を含み、前記軽鎖は配列番号96に示すアミノ酸配列を含むことを特徴とする請求項8に記載のCLDN18.2を標的とする抗体又はその抗原結合フラグメント。 - 請求項1~9のいずれか一項に記載のCLDN18.2を標的とする抗体又はその抗原結合フラグメントをコードする、分離された核酸。
- 請求項10に記載の分離された核酸を含み、好ましくはプラスミド、コスミド、ファージ又はウイルスベクターであり、前記ウイルスベクターはレトロウイルスベクター、レンチウイルスベクター、アデノウイルスベクター又はアデノ随伴ウイルスベクターであることが好ましい組換え発現ベクター。
- 宿主細胞に請求項11に記載の組換え発現ベクターを含み、前記宿主細胞はE.coli TG1、BL21細胞、又はCHO-K1細胞であることが好ましい形質転換体。
- 請求項1~9のいずれか一項に記載のCLDN18.2を標的とする抗体又はその抗原結合フラグメントを含むキメラ抗原受容体。
- 請求項1~9のいずれか一項に記載のCLDN18.2を標的とする抗体又はその抗原結合フラグメントを含み、真核細胞であることが好ましく、分離されたヒト細胞であることが好ましく、T細胞又はNK細胞などの免疫細胞であることがより好ましいことを特徴とする遺伝子修飾細胞。
- 請求項12に記載の形質転換体を培養し、培養物からCLDN18.2を標的とする抗体又はその抗原結合フラグメントを得ることを含むCLDN18.2を標的とする抗体又はその抗原結合フラグメントの製造方法。
- 細胞毒性剤と、請求項1~9のいずれか一項に記載のCLDN18.2を標的とする抗体又はその抗原結合フラグメントとを含み、前記細胞毒性剤はMMAF又はMMAEであることが好ましい抗体-薬物複合体。
- 請求項1~9のいずれか一項に記載のCLDN18.2を標的とする抗体もしくはその抗原結合フラグメント、及び/又は請求項16に記載の抗体-薬物複合体と、薬学的に許容される担体とを含み、
好ましくは、ホルモン製剤、標的化小分子製剤、プロテアソーム阻害剤、造影剤、診断剤、化学療法薬、腫瘍溶解薬、細胞毒性剤、サイトカイン、共刺激分子活性化剤、抑制性分子阻害剤及びワクチンからなる群のうちの1種又は複数種をさらに含む医薬組成物。 - 腫瘍を診断、予防及び/又は治療する薬物を製造するための、請求項1~9のいずれか一項に記載のCLDN18.2を標的とする抗体もしくはその抗原結合フラグメント、請求項16に記載の抗体-薬物複合体、及び/又は請求項17に記載の医薬組成物の使用であって、前記腫瘍は、CLDN18.2陽性腫瘍であることが好ましく、胃がん、食道がん、肺がん、卵巣がん、黒色腫、腎臓がん、乳がん、結腸直腸がん、肝臓がん、膵臓がん、膀胱がん、頭頸部がん、気管支がん、神経膠腫及び/又は白血病であることがより好ましい前記使用。
- 請求項1~9のいずれか一項に記載のCLDN18.2を標的とする抗体もしくはその抗原結合フラグメント、請求項13に記載のキメラ抗原受容体、請求項14に記載の遺伝子修飾細胞、又は請求項16に記載の抗体-薬物複合体、又は請求項17に記載の医薬組成物を含み、
好ましくは、(i)抗体もしくはその抗原結合フラグメント又は抗体-薬物複合体又は医薬組成物の投与装置、及び/又は(ii)取扱説明書をさらに含むキット。 - 請求項1~9のいずれか一項に記載のCLDN18.2を標的とする抗体もしくはその抗原結合フラグメント、請求項13に記載のキメラ抗原受容体、請求項14に記載の遺伝子修飾細胞、請求項16に記載の抗体-薬物複合体、及び/又は請求項17に記載の医薬組成物を含むキットAと、
他の抗腫瘍抗体もしくは前記他の抗腫瘍抗体を含む医薬組成物、及び/又はホルモン製剤、標的化小分子製剤、プロテアソーム阻害剤、造影剤、診断剤、化学療法薬、腫瘍溶解薬、細胞毒性剤、サイトカイン、共刺激分子活性化剤、抑制性分子阻害剤及びワクチンからなる群のうちの1種又は複数種を含むキットBとを含む組み合わせのキット。 - 必要とする患者に治療有効量の、請求項1~9のいずれか一項に記載のCLDN18.2を標的とする抗体もしくはその抗原結合フラグメント、請求項13に記載のキメラ抗原受容体、請求項16に記載の抗体-薬物複合体、又は請求項17に記載の医薬組成物を投与し、又は請求項20に記載の組み合わせのキットを使用してそれを必要とする患者を治療するステップを含む、CLDN18.2が媒介する疾患又は障害を診断、治療及び/又は予防する方法。
- 前記疾患又は障害は腫瘍であり、好ましくは、CLDN18.2陽性腫瘍であり、より好ましくは、胃がん、食道がん、肺がん、卵巣がん、黒色腫、腎臓がん、乳がん、結腸直腸がん、肝臓がん、膵臓がん、膀胱がん、頭頸部がん、気管支がん、神経膠腫及び/又は白血病であることを特徴とする請求項21に記載の方法。
- 請求項1~9のいずれか一項に記載のCLDN18.2を標的とする抗体もしくはその抗原結合フラグメント、請求項13に記載のキメラ抗原受容体、請求項16に記載の抗体-薬物複合体、又は請求項17に記載の医薬組成物を使用するステップを含むCLDN18.2を免疫学的に検出又は測定する方法であって、前記検出は診断及び/又は治療を目的としないことが好ましい方法。
- 請求項1~9のいずれか一項に記載のCLDN18.2を標的とする抗体もしくはその抗原結合フラグメント、請求項13に記載のキメラ抗原受容体、請求項16に記載の抗体-薬物複合体、又は請求項17に記載の医薬組成物と、第2治療薬とをそれぞれ必要とする患者に投与するステップを含み、前記第2治療薬は他の抗腫瘍抗体もしくは前記他の抗腫瘍抗体を含む医薬組成物、及び/又はホルモン製剤、標的化小分子製剤、プロテアソーム阻害剤、造影剤、診断剤、化学療法薬、腫瘍溶解薬、細胞毒性剤、サイトカイン、共刺激分子活性化剤、抑制性分子阻害剤及びワクチンからなる群のうちの1種又は複数種を含むことが好ましい併用療法。
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