JP2022545230A - Ｈｌａ－ａ０２０１拘束性ｋｉｆ１５の特異的抗腫瘍ｃｔｌ優性エピトープペプチド及び応用 - Google Patents
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Abstract
ＨＬＡ－Ａ０２０１拘束性ＫＩＦ１５の特異的抗腫瘍ＣＴＬ優性エピトープペプチドは、ＨＬＡ－Ａ２拘束性抗腫瘍ＣＴＬエピトープペプチドであり、ヒトＨＬＡ－Ａ２分子の結合部位と結合することができるノナペプチドであり、その配列は、Ｌｅｕ－Ｌｅｕ－Ａｓｐ－Ｓｅｒ－Ａｌａ－Ｓｅｒ－Ａｌａ－Ｇｌｙ－Ｌｅｕである。前記優性エピトープペプチドは、ＣＴＬを特異的に誘導することができ、リガンドミクス、コンピュータシミュレーションソフトウェア及び薬理学実験を組み合わせた方法を用いてスクリーニングして得られるものであり、該短ペプチドは体外で容易に合成でき、顕著な抗腫瘍免疫反応を誘導して産生することができるので、開発応用の価値を有し、腫瘍免疫治療技術分野に応用される。
Description
本発明は、腫瘍免疫治療技術分野のポリペプチド技術分野に属し、具体的にはＭＨＣクラスＩ拘束性抗腫瘍ＣＴＬ優性エピトープペプチド及びその抗腫瘍薬の製造における応用に関する。
近年では、免疫応答分子メカニズムに対する研究が深まるにつれて、生命体の免疫細胞は、様々な病原体または天然抗原に対応する分子全体ではなく、様々な抗原分子に対する抗原エピトープであることが深く意識されるようになった。現在、腫瘍抑制における細胞傷害性Ｔリンパ細胞（Ｃｙｔｏｔｏｘｉｃ Ｔ ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅ、ＣＴＬ）の役割が非常に重視されており、ＣＤ８＋Ｔ細胞が識別した抗原は、まず抗原提示細胞によって処理され、その後、「抗原ペプチド－ＭＨＣクラスＩ分子」複合物の形式で抗原提示細胞または標的細胞の表面に提示され、それに対応するＭＨＣクラスＩ分子と結合する抗原ペプチドが、即ちＣＴＬエピトープペプチドである。エピトープペプチドは、特異的ＣＴＬ細胞を活性化させ、生成を誘導することができ、ヒト白血球抗原ＨＬＡマッチングに成功した腫瘍に対して一定の殺傷効果を有している。そのため、抗腫瘍ＣＴＬ優性エピトープペプチドの研究開発は、現在、解決が急がれる新たな課題となっている。
本発明の目的は、ＣＴＬが媒介する特異的細胞免疫応答を有効に刺激し、抗腫瘍効果を発揮するＣＴＬ優性エピトープペプチドを見つけ出すことにある。該発明は、リガンドミクス法を利用して得られたポリペプチドを利用して予測、スクリーニング及び鑑定を行い、ヒトＨＬＡ－Ａ２分子の結合部位と結合し、特異的な細胞傷害性Ｔリンパ細胞（ＣＴＬ）を活性化できるエピトープペプチドを精確にスクリーニングして取得することにより、腫瘍細胞を有効に殺傷し、腫瘍を治療する目的を果たすことができ、また前記エピトープペプチドは、臨床治療及び腫瘍性疾患を検出するワクチンとしての用途に用いられる。
本発明の実現方法は次の通りである。本発明では、腫瘍関連抗原由来のＭＨＣクラスＩ拘束性ＣＴＬエピトープを提供しており、該エピトープは高い親和力によってＭＨＣクラスＩ分子と結合することができ、形成される複合物は安定しており、ペプチド特異的ＣＴＬ免疫応答を誘導することができ、ペプチド特異的ＣＴＬを刺激して高水準のＩＦＮ－γを分泌し、かつ腫瘍細胞に対して特異的殺傷効果を産生することができる。
該腫瘍関連抗原優性エピトープペプチドはノナペプチドであり、そのアミノ酸配列はＬｅｕ－Ｌｅｕ－Ａｓｐ－Ｓｅｒ－Ａｌａ－Ｓｅｒ－Ａｌａ－Ｇｌｙ－Ｌｅｕである。
前記ＭＨＣクラスＩ拘束性標的抗腫瘍ＣＴＬ優性エピトープペプチドは、手動固相合成または、原核細胞や真核細胞の発現により精製し、得ることができる。
前記抗腫瘍ＣＴＬ優性エピトープペプチドは、エピトープペプチドとヒトＨＬＡ－Ａ２分子の相互作用メカニズムに基づき、かつそれがＨＬＡ－Ａ２分子と有効に結合し、特異的Ｔリンパ細胞を活性化できるという特性に基づいて、有効なエピトープペプチドとして鑑定されており、該エピトープペプチドの長さはアミノ酸配列のわずか９個分であり、体外で容易に合成でき、臨床応用に便利である。
本発明の要点は、ヒトＨＬＡ－Ａ２クラス分子の結合部位と結合し、特異的な細胞傷害性Ｔリンパ細胞（ＣＴＬ）を活性化できるエピトープペプチドを提供することにある。その基本的な原理は次の通りである。リガンドミクスの精密スクリーニングで示差ペプチド領域を取得し、生物情報学の原理でエピトープペプチドとヒトＨＬＡ－Ａ２分子の理論結合能力を検証し、かつコンピュータシミュレーションとＴ２親和力実験を結び付けて、エピトープペプチドとＨＬＡ－Ａ２分子の結合力をさらに検証する。その後、Ｆｍｏｃ固相合成法によりエピトープペプチドを合成し、ＨＰＬＣにより精製するとともに、ＨＰＬＣ－ＭＳによりその純度と分子量を分析する。最後に、ＤＣを利用してエピトープペプチドに負荷をかけ、ＣＴＬ細胞を誘導し、かつＭＨＣクラスＩ分子表現型の腫瘍標的細胞と混合培養して、ＣＴＬ細胞が標的細胞のＨＬＡ－Ａ２分子を免疫殺傷する限定性を観察する。
本発明の有益な効果は次の通りである。本発明では腫瘍関連抗原に由来する天然ＣＴＬ優性エピトープペプチドを開示しており、該ＣＴＬ優性エピトープはペプチド特異的なＣＴＬ免疫応答を誘導することができ、ペプチド特異的ＣＴＬを刺激して高水準のＩＦＮ－γを分泌し、かつ該エピトープペプチド由来の蛋白陽性腫瘍細胞に対して特異的な殺傷効果をもたらすので、腫瘍免疫治療分野において良好な応用の見通しを有している。
以下では、図面と実施例を結び付けて、本発明について詳細に説明する。
以下の実施例は、本発明の理解を助けるものであるが、これらの実施例は、本発明を説明するためのものにすぎず、本発明はこれらの内容に限定されるものではない。
該腫瘍関連抗原優性ＣＴＬ優性エピトープペプチドは、ヒトＨＬＡ－Ａ２分子の結合部位と結合し、特異的な細胞傷害性Ｔリンパ細胞を活性化することができ、該エピトープペプチドは、Ｌｅｕ－Ｌｅｕ－Ａｓｐ－Ｓｅｒ－Ａｌａ－Ｓｅｒ－Ａｌａ－Ｇｌｙ－Ｌｅｕというアミノ酸配列を有している。
前記ヒトＨＬＡ－Ａ２拘束性標的抗腫瘍ＣＴＬ優性エピトープペプチドは、人工合成や、原核細胞または真核細胞の発現により精製し、得ることができる。
前記抗腫瘍ＣＴＬ優性エピトープペプチドは、エピトープペプチドとヒトＨＬＡ－Ａ２分子の相互作用メカニズムに基づき、かつそれがＨＬＡ－Ａ２分子と有効に結合し、特異的Ｔリンパ細胞を活性化できるという特性に基づいて、有効なエピトープペプチドとして鑑定されており、該エピトープペプチドの長さはアミノ酸配列でわずか９個分であり、体外で容易に合成でき、臨床応用に便利である。
以下の実施例は、本発明の理解を助けるものであるが、これらの実施例は本発明を説明するためのものにすぎず、本発明がこれらの内容に限定されることはない。
実施例１
リガンドミクスを利用して、該ＣＴＬ優性エピトープペプチドをスクリーニングした。
リガンドミクスを利用して、該ＣＴＬ優性エピトープペプチドをスクリーニングした。
親和性クロマトグラフィーを利用してＨＬＡ－Ａ２と親和するエピトープペプチドを取得し、ＬＣ／ＭＳによってその構造を確認し、かつＮＣＢＩ Ｂｌａｓｔを利用してその由来蛋白を確認し、スクリーニングして、ＫＩＦ１５由来の優性ＣＴＬエピトープペプチドを取得した。
エピトープペプチドとヒトＭＨＣクラスＩ分子との親和力を検証した。
スーパーモチーフ法によって、本発明で設計されたポリペプチド配列とＭＨＣクラスＩ分子の結合特性を検証した。
１．スーパーモチーフ法は、同じヒト白血球抗原（ＨＬＡ）ファミリー、場合によっては異なるファミリーのＨＬＡアロタイプ分子が受容する抗原ペプチドが、同じ、または類似のアンカー残基から成るペプチドモチーフを有することに基づいており、スーパーモチーフが主に作用するアンカー残基は、ペプチド鎖２位（Ｐ２）に位置するアミノ酸残基及びカルボキシル末端９位（Ｐ９）のアミノ酸残基である。Ｐ２、Ｐ９の残基がＡ、Ｉ、Ｌ、Ｍ、Ｖ、Ｔであり、かつ第２位が芳香族アミノ酸、第９位が疎水性アミノ酸である場合は、ＨＬＡ－Ａ２分子との親和力が高い。これらのアミノ酸の特定モチーフは、ポリペプチド分子とＭＨＣクラスＩ分子が結合した活性部位、または主アミノ酸であり、ＭＨＣクラスＩ分子と結合するポリペプチドの活性特徴を決定している。
スーパーモチーフ法によるＣＴＬエピトープの予測は、従来の簡易モチーフ法で生じやすかった偽陰性結果については克服したものの、この予測法にはモチーフ法と同じ弱点があり、つまり、予測において２位と９位の残基の影響しか考慮せず、他の部位の残基結合情況を無視しているため、偽陽性結果が出現しやすいので、定量化モチーフ法と組み合わせてＣＴＬエピトープ予測の正確性を高めなければならない（表１）。表１に示すように、スーパーモチーフ法では、エピトープペプチドとＨＬＡ－Ａ２分子が優れた結合能を有することを明らかにしている。表２は２０種類のアミノ酸の略号表である。
２．国際的に公認されているエピトープペプチド予測サイトｈｔｔｐ：／／ｔｏｏｌｓ．ｉｅｄｂ．ｏｒｇ／ｍｈｃｉ／が提供している分析ソフトウェアを使用して、ＫＩＦ１５優性エピトープペプチドに対してＨＬＡ－Ａ２拘束性分析を行ったところ、そのｐｅｒｃｅｎｔｉｌｅ ｒａｎｋ＜２、かつＩＣ５０＜５０ｎＭで、高い親和力を有していた（表２）。
ＩＥＤＢは、免疫エピトープの識別に関連する公開済み実験データを科学界に提供するために用いられており、伝染病、アレルギー、自己免疫及び移植を背景に、人類、人類以外の霊長類動物及びその他の動物の種で研究された抗体及びＴ細胞エピトープの実験データが記録されている。ＩＥＤＢは、エピトープの予測や分析を助けるツールも提供している。ＩＥＤＢは、オープンで信頼性のある実験データベースとして、免疫エピトープに対する獲得免疫受容体の識別を検出するために用いることができる。
ＩＥＢＤで提供されているＭＨＣクラスＩの分子結合予測分析ソフトウェアを利用することで、ポリペプチドのアミノ酸配列に対する分析を完成させることができる（ｈｔｔｐ：／／ｔｏｏｌｓ．ＩＥＤＢ．ｏｒｇ／ｍｈｃｉ／）。
ＩＥＤＢ予測では、エピトープペプチドとＨＬＡ－Ａ０２０１分子が優れた結合能を有することを明らかにしている。表３は２０種類のアミノ酸の略号表である。
表３ アミノ酸略号表
ＨＬＡ－Ａ０２０１拘束性ＫＩＦ１５の特異的抗腫瘍ＣＴＬ優性エピトープペプチド及び応用
コンピュータでエピトープペプチドとヒトＭＨＣクラスＩ分子との結合をシミュレーションした。
上で得られたエピトープペプチドについて、ＣｈｅｍＯｆｆｉｃｅソフトウェアパッケージ中のＣｈｅｍＤｒａｗ Ｕｌｔｒａ、ＣｈｅｍＤｒａｗ ３Ｄ Ｕｌｔｒａを用いてそれぞれエピトープペプチドの二次元及び三次元構造を構築した。ＭＯＥソフトウェアを用いて、エピトープペプチドとＨＡ－Ａ２．１のエネルギー及び構造を修飾し、両者の結合の三次元構造をシミュレーションし、分子動力学結合シミュレーションと生理活性及び運用価値の評価を行った。主に次の方法が含まれている。（１）エピトープペプチド分子モデルの構築。ＣｈｅｍＯｆｆｉｃｅソフトウェアパッケージ中のＣｈｅｍＤｒａｗ Ｕｌｔｒａを用いてエピトープペプチド分子の二次元構造を構築し、続いてエピトープペプチドの二次元構造をＣｈｅｍＤｒａｗ ３Ｄ Ｕｌｔｒａにインポートして三次元モデルを取得し、Ｍｏｌ２フォーマットで保存し、ドッキングシミュレーションの段階で三次元構造をＭＯＥソフトウェアにインポートし、プルダウンメニューでＣｏｍｐｕｔｅ－Ｍｉｎｉｍｉｚｅ－Ｍｏｌｅｃｕｌｅをこの順で選択すると、Ｍｉｎｉｍｉｚｅダイアログボックスが現れ、ポリペプチド分子のエネルギーレベルの最適化が行われ、エネルギーレベルを、ＨＬＡ－Ａ２．１の複合物と分子ドッキングを行う最小かつ最も適したエネルギー及び構造の状態に到達させ、その後、最適化したエピトープペプチドをＭＯＬ２フォーマットとしてエクスポートし、ＨＬＡ－Ａ２．１の結合溝凹溝との三次元ドッキングに備える。（２）ＨＬＡ－Ａ２．１の複合物の分子動力学シミュレーションにおける事前準備。ＨＬＡ－Ａ２．１の初期座標の出典はタンパク質立体構造専門サイトｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｒｃｓｂ．ｏｒｇ／ｐｄｂ／であり、取得したＨＬＡ－Ａ２．１の構造データをＭＯＥソフトウェアにインポートし、プルダウンメニューのＡｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ－Ｄｏｃｋｉｎｇ Ｓｕｉｔｅ－Ｄｏｃｋｉｎｇ Ｌｉｇａｎｄｓをこの順に選択すると、Ｄｏｃｋｉｎｇダイアログボックスが現れ、Ｆｉｌｅｎａｍｅ欄の右辺でＤｅｆｉｎｅを選択して、ＨＬＡ－Ａ２．１の構造に対してドッキング前の構造修飾（側鎖の修復、脱水、水素添加）を行い、構造修飾の完成後、取得したＨＬＡ－Ａ２．１の結合槽凹溝の３次元情報を分析して、エピトープペプチドとのドッキングに備えて保存する。（３）ドッキングモデルの構築。ＭＯＥソフトでＡｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ－Ｄｏｃｋｉｎｇ Ｓｕｉｔｅ－Ｄｏｃｋｉｎｇ Ｌｉｇａｎｄｓをこの順に開くと、Ｄｏｃｋｉｎｇダイアログボックスが現れ、Ｄｏｃｋｉｎｇ Ｍｏｄｅｌ及びＦｉｌｅｎａｍｅ欄において、取得したＨＬＡ－Ａ２．１の結合槽凹溝の三次元情報を選択し、Ｌｉｇａｎｄ Ｓｏｕｒｃｅ欄でＭｏｌｅ２ Ｆｉｌｅを選択し、かつＭＯＬ２フォーマットの、それぞれがすでに最適化され、エネルギーレベルが最も低いエピトープペプチドのデータを選択して、それぞれドッキングを行い、かつ最終的にドッキングシミュレーションのスコアを取得し、ドッキングシミュレーションのスコア値によってエピトープペプチド分子とＨＬＡ－Ａ２．１の結合力を評価する。抗原ペプチドとＨＬＡ－Ａ２分子との間では、主に疎水作用、Ｈ結合、塩結合などの弱い相互作用によって分子間の識別を行っており、これらのサブレベルの結合作用が強いほど、結合は緊密になる。コンピュータシミュレーションの結果から、該ＣＴＬエピトープペプチドとＨＬＡ－Ａ２．１には良好な結合があることがわかる（図２）。
実施例２
エピトープペプチドの合成、精製及び分子量測定。
エピトープペプチドの合成、精製及び分子量測定。
標準Ｆｍｏｃ法を採用し、米国ＰＥ社が生産したＡＢＩ４３ＩＡ型ポリペプチド合成機を応用してポリペプチドの合成を行った。以下に簡単に述べる。ポリペプチド配列に基づいてペプチド鎖をカルボキシ末端からアミノ基末端へ延伸させ、合成した後、ＴＦＡ／ＤＣＭを選択して切断し、エピトープペプチド収集液を常温下で１～２ｍＬまで減圧乾燥させ、その後、少なくとも５０ｍＬの予冷したエチルエーテルを用いて沈澱させ、抽出濾過してポリペプチド粗製品を得た。得られたエピトープペプチド粗製品を少量のＤＭＳ０で溶解させた後、水で所要の体積まで稀釈し、濃度を１０ｍｇ／ｍＬにし、０．２２ｕｍの繊維膜で濾過した後、米国Ｗａｔｅｒｓ社製Ｄｅｌｔａ６００型ＨＰＬＣ上で精製し、純度分析を行った。流動相は、０．１％ＴＦＡを含む水溶液及び０．１％ＴＦＡを含むアセトニトリル溶液を選択した。各ペプチドの精製には、Ｃ１８分取カラム（米国Ｗａｔｅｒｓ社、７．０ｕｍ、１００Ａ、７．８ｍｍ×１５０ｍｍ）を選択し、各ペプチドの純度分析にはＣ１８分析カラム（米国Ｗａｔｅｒｓ社、５．０ｕｍ、１００Ａ、３．９ｍｍ×１５０ｍｍ）を選択した。精製した各ポリペプチドの相対分子量の測定は、ＡＰＩ２０００型（米国Ｗａｔｅｒｓ社）の質量分析計で通常の方法により行った。質量分析図は図４、ＨＰＬＣ分析図は図５の通りであり、該ＣＴＬ優性エピトープペプチドの分子量理論値はいずれも実測値に近く、しかも許容誤差範囲内であり、純度はいずれも９５％以上であることがわかり、これは合成効果が高く、次の実験に用いることができることを意味している。上記のポリペプチドは、凍結乾燥処理した後、－７０℃で保存し、備えておいた。
実施例３
Ｔ２親和力実験によるエピトープペプチドとＭＨＣクラスＩ分子の結合の測定。
Ｔ２親和力実験によるエピトープペプチドとＭＨＣクラスＩ分子の結合の測定。
本実施例では、Ｔ２細胞系の特徴を利用して、エピトープペプチドとヒトＭＨＣクラスＩ分子との親和力を測定した。Ｔ２細胞は、ＭＨＣクラスＩ分子を発現可能であるが、その内因性抗原提示経路に必要な抗原ポリペプチドトランスポーター（ＴＡＰ）に欠陥があるため、内因性抗原を搬送できず、空のＨＬＡ－Ａ２分子しか細胞表面に提示できず、空のＨＬＡ－Ａ２分子は細胞表面では不安定で、すぐに分解されたり細胞内部に戻されたりする。しかし、外因的に投与された抗原ポリペプチドがＨＬＡ－Ａ２分子と結合して複合物になると、細胞表面のＨＬＡ－Ａ２分子の安定性を強化し、細胞表面に留めることができる。抗原ペプチドとＨＬＡ－Ａ２の結合力が強いほど、Ｔ２細胞表面のＨＬＡ－Ａ２分子の発現量は高くなる。そのため、抗原ポリペプチドが処理したＴ２細胞表面のＨＬＡ－Ａ２分子発現量の増加を測定することで、外来抗原ポリペプチドとＨＬＡ－Ａ２分子の結合力及び結合の安定性を直観的に反映することができ、本発明のポリペプチドの有効性をさらに証明することができる。
実施例では、Ｔ２細胞をＰＢＳで２回洗浄し、無血清ＩＭＤＭ培地で再懸濁した後、６穴の培養板に１×１０６／孔の密度で植え、抗原ポリペプチドはジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）で溶解させた後、５０ｕｇ／ｍＬの濃度でＴ２細胞の培養液に加え、かつブランク対照群及び陽性対照群を設置し、陽性対照群には３０ｕｇ／ｍＬのインフルエンザウイルス基質蛋白ポリペプチドを加えた。各穴にそれぞれ３ｕｇ／ｍＬのヒトβ２ミクログロブリンを加えた。Ｔ２細胞を、３７℃、５％ＣＯ２、飽和湿度条件下で２４時間培養した。培養の終了後、Ｔ２細胞を１０００ｒｐｍで５分遠心し、沈殿細胞を氷ＰＢＳで３回洗浄し、その後、１００ｕ１の氷ＰＢＳで再懸濁し、５ｕｌのマウス抗ヒトＨＬＡ－Ａ２．１－ＦＩＴＣモノクローナル抗体を加え、４℃で１５分培養し、遠心して上澄みを除いた後、３００ｕ１の氷ＰＢＳで再懸濁し、フローサイトメトリ計で平均蛍光強度（ＭＦＩ）を測定した。表３は、エピトープペプチドとＭＨＣ分子の親和力の実験結果を示している。
結果は蛍光係数（ＦＩ）を評価指標としている。計算式は、蛍光係数（ＦＩ）＝（ポリペプチド平均蛍光強度－β２ミクログロブリン平均蛍光強度）／β２ミクログロブリン平均蛍光強度、判断基準としては、ＦＩ＞１．５であればポリペプチドとＨＬＡ－Ａ２．１の結合力が高く、１．０＜ＦＩ＜１．５であれば中程度の結合力、ＦＩ＞０．５であれば結合力は低い。
実験結果から、該ＣＴＬ優性エピトープペプチドはＭＨＣクラスＩ分子と高い結合力があることがわかる。
実施例４
カルセイン（Ｃａｌｃｅｉｎ－ＡＭ）による実験的エピトープペプチドの放出の、腫瘍細胞標的に対する免疫殺傷効果。
カルセイン（Ｃａｌｃｅｉｎ－ＡＭ）による実験的エピトープペプチドの放出の、腫瘍細胞標的に対する免疫殺傷効果。
１．効果細胞の作製
成熟したヒトＤＣを誘導し、ＰＢＳで洗浄した後、無血清ＩＭＤＭ培地で再懸濁し、５０ｕｇ／ｍＬのエピトープペプチドを加え、３７℃で一晩培養した。ＤＣをＰＢＳで洗浄し、計数し、３０ｕｇ／ｍＬの濃度でマイトマイシンＣを加え、３７℃で３０分培養した。
成熟したヒトＤＣを誘導し、ＰＢＳで洗浄した後、無血清ＩＭＤＭ培地で再懸濁し、５０ｕｇ／ｍＬのエピトープペプチドを加え、３７℃で一晩培養した。ＤＣをＰＢＳで洗浄し、計数し、３０ｕｇ／ｍＬの濃度でマイトマイシンＣを加え、３７℃で３０分培養した。
ＤＣを氷ＰＢＳで洗浄し、計数した後、増殖期のＴ細胞と１：２０の割合で共培養し、ＩＬ－２を５０Ｕ／ｍＬ加えてＴ細胞を刺激した。１週間に１回、計３回刺激して、Ｔ細胞を細胞傷害性Ｔ細胞（ＣＴＬ）、すなわち効果細胞に誘導した。
２．標的細胞の作製。
再発乳がん細胞ＭＤＡ－ＭＢ－２３１と上皮細胞ＭＣＦ－１０Ａを正常に培養し、継代した。いずれもＨＬＡ－Ａ２．１陽性である。
３．カルセイン放出実験。
１０ｍＭ濃度のＣａｌｃｅｉｎ－ＡＭで標的細胞を標識し、洗浄、再懸濁する。効果細胞と標識後の腫瘍細胞を、１０：１、２０：１、４０：１のＥＴ比に基づき、３７℃で４時間共培養した。その後、培養液を収集し、１０００ｒｐｍで５分遠心し、１００ｕｌの上澄み液を取り、平均蛍光強度を測定し、単純標的細胞を自発的放出量とし、単純標的細胞に洗浄剤を加えたものを最大放出量とした。
効果細胞の標的細胞に対する殺傷率は、細胞分裂率によって表される。細胞分裂率＝（実験放出量－自発放出量）／（最大放出量－自然放出量）。図６は、エピトープペプチドが誘導した効果細胞の腫瘍細胞に対する標的殺傷結果である。
注：殺傷作用は殺傷率（％を省略）で表される。
実験結果から、該エピトープペプチドは特異的な腫瘍細胞殺傷効果を有することがわかった。
Claims (5)
- 腫瘍関連抗原ＫＩＦ１５由来の抗腫瘍優性ＣＴＬエピトープペプチドにおいて、前記抗腫瘍優性エピトープペプチドは、ヒトＨＬＡ－Ａ２分子の特異的結合を有し、特異的細胞傷害性Ｔリンパ細胞を活性化し、その配列がＬｅｕ－Ｌｅｕ－Ａｓｐ－Ｓｅｒ－Ａｌａ－Ｓｅｒ－Ａｌａ－Ｇｌｙ－Ｌｅｕであることを特徴とする、腫瘍関連抗原ＫＩＦ１５由来の抗腫瘍優性ＣＴＬエピトープペプチド。
- ここに請求項２を入力する。前記ＨＬＡ－Ａ２拘束性ＫＩＦ１５の特異的ＣＴＬエピトープペプチドが、１つまたは複数のアミノ酸を添加、欠失、または置換することによって請求項１に示すアミノ酸配列から派生するアミノ酸配列により構成される突然変異ペプチドであることを特徴とする、請求項１に記載のＨＬＡ－Ａ２拘束性ＫＩＦ１５の特異的ＣＴＬエピトープペプチド。
- 前記ＨＬＡ－Ａ２拘束性ＫＩＦ１５の特異的ＣＴＬエピトープペプチドが、請求項１及び請求項２のアミノ酸配列を有する遊離ポリペプチド、融合ポリペプチド及びキメラポリペプチド、並びに前記ポリペプチドの１つがモノマーである各種形式のポリマーであることを特徴とする、請求項１及び請求項２に記載のＨＬＡ－Ａ２拘束性ＥＣＭ１の特異的ＣＴＬエピトープペプチド。
- 前記抗腫瘍ＣＴＬ優性エピトープペプチドは、固相合成法を用いて人工合成することができ、または、原核細胞または真核細胞の発現により精製し、得ることができることを特徴とする、請求項１及び請求項２及び請求項３に記載の抗腫瘍ＣＴＬ優性エピトープペプチドの取得方法。
- 請求項１から４のいずれか１項に記載の抗腫瘍ＣＴＬ優性エピトープペプチドの、腫瘍治療薬の調製における応用。
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