JP2022537297A - タンパク質試料におけるｈｐｌｃに基づく凝集剤の検出 - Google Patents

Abstract

本出願は、逆相疎水性相互作用ＨＰＬＣの使用と帯電エアロゾル検出との組み合わせに基づいて、対象の組換えタンパク質を含有する試料中の残留ｐＤＡＤＭＡＣを測定するための迅速かつ簡単な方法を提供する。

Description

本発明は、組換えタンパク質の製造ならびに宿主細胞上清からの組換えタンパク質の回収および精製の分野に関する。本発明は、試料中のポリ（ジアリルジメチルアンモニウムクロリド）ｐＤＡＤＭＡＣのレベルを測定し、タンパク質精製中にその除去を確実にする方法を利用する。

治療の分野では、タンパク質および抗体、および特に抗体由来分子などの生物学的実体の使用が絶えず存在および重要性を増しており、それに伴い、並行して制御された製造方法の必要性が高まっている。治療用タンパク質の商業化は、治療用タンパク質を大量に産生することを要し、所望のタンパク質を発現する宿主細胞およびその処理を改善することに多くの努力が注がれており、産物の力価の増加をもたらす。結果として、より多量のバイオマスおよび残屑も細胞培養レベルで観察される。そのバイオマスおよび残屑は、タンパク質精製プロセスの一部として除去されなければならない。

清澄化細胞培養液を得るためにバイオマスを除去し、該培養液から対象のタンパク質を精製するのを助ける１つのアプローチには、哺乳動物細胞および酵素をカプセル化するため、ならびに微生物細胞培養物を凝集させるために使用されるカチオン性ポリマーなどの凝集剤の使用が含まれる。典型的には、凝集剤を沈降させた後、細胞培養液から除去し、次いで遠心分離および／またはデプスフィルターによってさらに処理して、いわゆる清澄化細胞培養物を得て、該培養物から対象のタンパク質が精製される。

凝集剤は、アニオン性、カチオン性または「マルチモーダル」であり得る。溶液のｐＨが特定のタンパク質のｐＩ未満である場合、タンパク質は正味の正電荷を帯びている。これらの条件下で、カチオン性高分子電解質は不純物を沈殿させ、対象のタンパク質を溶液中に残し得る。逆に、アニオン性高分子電解質は、対象のタンパク質を沈殿させてタンパク質－高分子電解質沈殿物を形成し、溶液中に不純物を残し得る。

細胞および細胞残屑が典型的には全体的に負電荷を有することを考慮すると、カチオン性ポリマーは、この用途に特に適している。これにより、溶液から脱落するイオン相互作用によって形成された中和粒子が形成される。組換えタンパク質を産生する細胞からの清澄化細胞培養液の凝集に使用されるカチオン性ポリマーの例としては、ポリ（ジアリルジメチルアンモニウムクロリド）（ｐＤＡＤＭＡＣ）、ポリアミン、ポリアミノ酸、ポリアクリルアミドおよびキトサンが挙げられる。

他方で、アニオン性凝集剤もこれに関連して使用されており、特にアニオン性高分子電解質、ポリビニルスルホン酸、ポリアクリル酸およびカルボキシメチルデキストランスルファートは、上清中に不純物を残すＣＨＯ細胞採取物からのモノクローナル抗体の濃縮および選択的沈殿について評価されている。

より最近のアプローチは、カスタマイズを必要とせず、広範囲の抗体と共に使用できるマルチモーダル機能を有する凝集剤の使用を試みている。

細胞培養上清を清澄化するための凝集剤の使用に関する追加の情報は、Ｓｉｎｇｈ ｅｔ ａｌ．２０１６ Ｃｌａｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ ｆｏｒ ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ ａｎｔｉｂｏｄｙ ｍａｎｕｆａｃｔｕｒｉｎｇ ｐｒｏｃｅｓｓｅｓ：ｃｕｒｒｅｎｔ ｓｔａｔｅ ａｎｄ ｆｕｔｕｒｅ ｐｅｒｓｐｅｃｔｉｖｅｓ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ Ｂｉｏｅｎｇ １１３：６９８に見出すことができる。

治療薬の大規模な商業的製造の観点から、タンパク質を投与可能な形態に調製する前に、その後の精製プロセス中に、当該凝集剤をヒトへの投与に安全なレベルまで確実に除去することが不可欠である。

細胞培養に有用な凝集剤として知られているカチオン性ポリマーの例は、ポリ（ジアリルジメチルアンモニウムクロリド）（ｐＤＡＤＭＡＣ）（例えば、Ｐｅｃｋ ｅｔ ａｌ．２０１５ Ｄｏｓｉｎｇ ｃｏｎｓｉｄｅｒａｔｉｏｎｓ ａｎｄ ｉｍｐａｃｔｓ ｏｎ ｔｈｅ ｃｌａｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｍａｍｍａｌｉａｎ ｃｅｌｌ ｃｕｌｔｕｒｅ ｆｅｅｄ ｓｔｒｅａｍｓ ｕｓｉｎｇ ｐｏｌｙ－ｄｉａｌｌｙｌｄｉｍｅｔｈｙｌａｍｍｏｎｉｕｍ ｃｈｌｏｒｉｄｅ ｆｌｏｃｃｕｌａｎｔ ｉｎ ｃｏｎｊｕｎｃｔｉｏｎ ｗｉｔｈ Ｃｌａｒｉｓｏｌｖｅ（登録商標）ｄｅｐｔｈ ｆｉｌｔｅｒｓを参照）である。今日まで、前処理された細胞培養供給流中の残留ｐＤＡＤＭＡＣを測定する方法は、表面プラズモン共鳴（例えば、Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ ｏｆ ｒｅｓｉｄｕａｌ ｐＤＡＤＭＡＣ ｕｓｉｎｇ ｓｕｒｆａｃｅ ｐｌａｓｍｏｎ ｒｅｓｏｎａｎｃｅ ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ，Ｍｅｒｃｋ ＫＧａＡを参照）の使用に基づいている。さらに最近の方法は、蒸発光散乱検出（ＥＬＳＤ）（Ｋｈｏｄａｄａｄｉａｎ ｅｔ ａｌ．２０１９ Ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ ｒｅｓｉｄｕａｌ ｐｏｌｙ ｄｉａｌｌｙｌｄｉｍｅｔｈｙｌａｍｍｏｎｉｕｍ ｃｈｌｏｒｉｄｅ（ｐＤＡＤＭＡＣ）ｉｎ ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ ａｎｔｉｂｏｄｙ ｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎｓ ｂｙ ｓｉｚｅ ｅｘｃｌｕｓｉｏｎ ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ ａｎｄ ｅｖａｐｏｒａｔｉｖｅ ｌｉｇｈｔ ｓｃａｔｔｅｒｉｎｇ ｄｅｔｅｃｔｏｒ）Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｓ ５７：２１の使用に基づいている。しかしながら、既存の方法は、精度、感度、ダイナミックレンジ、および検量線の性質に関して制限がある。

したがって、タンパク質の混成物を含有する試料に適用可能な残留凝集剤のレベルを検出するための迅速かつ頑健な方法を提供する継続的必要性が存在し、該方法は、製造プロセス中のこの凝集剤のクリアランス評価を可能にするであろう。

本発明は、対象の組換えタンパク質を含有する試料中のｐＤＡＤＭＡＣを測定するための迅速かつ簡単な方法を提供し、該方法は、逆相疎水性相互作用ＨＰＬＣの使用および帯電エアロゾルの検出を含む。

第１の態様において、本発明は、対象の組換えタンパク質を含有する試料中のｐＤＡＤＭＡＣを測定するための方法であって、
ａ）試料を逆相疎水性相互作用ＨＰＬＣに適用する工程と、
ｂ）疎水性勾配溶出を用いて、カラムから結合したｐＤＡＤＭＡＣを溶出させる工程と、
ｃ）帯電エアロゾル検出器を使用して、工程ｂ）で回収されたｐＤＡＤＭＡＣを測定する工程と、を含む方法であって、
ａ）で適用される試料が、０．２～３％（ｖ／ｖ）のＣＡＤ適合性酸を含む、方法に関する。

さらなる態様では、本発明は、タンパク質精製中にｐＤＡＤＭＡＣの添加を含む対象のタンパク質を製造する方法に関し、後続の該ｐＤＡＤＭＡＣの除去は、ｐＤＡＤＭＡＣを測定するための本発明の方法に従って測定される。

本発明の方法に従って６つの濃度のｐＤＡＤＭＡＣを測定することから得られた検量線を示す図である。 原薬試料中に添加されたｐＤＡＤＭＡＣの理論レベル（１．０～１０．０μｇ ｐＤＡＤＭＡＣ／ｍＬで評価された５つのレベル）に対して個々の測定濃度をプロットすることから得られた結果の直線性を示す図である。 「現状のまま」（非添加）で分析された原薬および１．０μｇ ｐＤＡＤＭＡＣ／ｍＬを添加された原薬のクロマトグラフィープロファイルのオーバーレイを示す図である。 ２つの異なる原薬試料における１．０μｇ／ｍＬの添加レベルでのｐＤＡＤＭＡＣ回収の検証を示す図である。 ３つの濃度レベル（１．０～２．０および５．０μｇ ｐＤＡＤＭＡＣ／ｍＬ）で添加された２つの原薬試料で得られた真度および精度の結果の要約を示す図である。 追加の改変抗体型のＦａｂ－ｓｃＦｖ（二重特異性と呼ばれる）およびＦａｂ－２ｘ ｄｓｓｃＦｖ（三価と呼ばれる）における真度および精度の結果の要約を示す図である。 「現状のまま」（非添加）で分析された原薬および１．０μｇ ｐＤＡＤＭＡＣ／ｍＬを添加された原薬のクロマトグラフィープロファイルのオーバーレイを示す図である。

本発明は、複合タンパク質混合物中のｐＤＡＤＭＡＣを検出するための新しい方法を提供することによって、上記に示した必要性を解決し、該方法は、迅速かつ簡単であり、タンパク質製造中のこの凝集剤のクリアランス評価を可能にする。特に、この方法は、様々な精製工程中にリアルタイムでｐＤＡＤＭＡＣの測定を可能にする。

第１の態様において、本発明は、対象のタンパク質を含有する試料中のｐＤＡＤＭＡＣを測定するための方法であって、
ａ）試料を逆相疎水性相互作用ＨＰＬＣに適用する工程と、
ｂ）疎水性勾配溶出を用いて、カラムから結合したｐＤＡＤＭＡＣを溶出させる工程と、
ｃ）帯電エアロゾル検出器を使用して、工程ｂ）で回収されたｐＤＡＤＭＡＣを測定する工程と、を含む方法であって、
ａ）で適用される試料が、０．２～３％のＣＡＤ適合性酸を含む、方法に関する。

帯電エアロゾル検出器（ＣＡＤ）は、揮発性水性／有機移動相を用いて行われるＨＰＬＣ分離に使用されるように設計されている。

疎水性勾配溶出は、分離の開始（例えば、９０％水性）と終了（例えば、９０％有機；メタノール／アセトニトリル）の間に移動相の疎水性の変化を伴う。

この方法は、検出の蒸発プロセスを要するＣＡＤ機器の使用を伴うため、適合性添加剤を添加することができる揮発性移動相を要する。また、クロマトグラフィー工程で注入された試料ならびにＣＡＤに入る移動相に含有される添加剤も、適合性でなければならない。本発明の方法は、「ＣＡＤ適合性酸」を使用する。この用語は、本明細書で使用される場合、ＣＡＤでの使用に適した任意の酸を指す。典型的には、ＣＡＤ検出に使用される酸性添加剤には、ＴＦＡ（トリフルオロ酢酸）、酢酸、ギ酸、またはヘプタフルオロ酪酸が含まれる。

例として、疎水性勾配は、移動相Ａ＝０．１％ ＴＦＡ（トリフルオロ酢酸）／Ｈ_２Ｏ、移動相Ｂ＝０．１％ ＴＦＡ／ＣＨ_３ＣＮおよび移動相Ｃ＝０．１％ ＴＦＡ／ＭｅＯＨを使用することによって得ることができる。ＣＡＤ適合性酸改質剤が添加されることになる、例えば、有機溶媒としてのエタノールまたはイソプロパノールの使用に基づく移動相塩基などの当該勾配に利用可能な異なる揮発性移動相を当業者が知っていることを考慮すると、この例は限定的と見なされるべきではない。

ＣＡＤ装置により、溶離液中のすべての不揮発性および多くの半揮発性の分析物を検出することができる。対象の化合物（ｐＤＡＤＭＡＣポリマー）は、ＵＶ検出の場合のように発色団を有する必要はなく、質量分析の場合のようにイオン化される必要もない。ＣＡＤでは、検出器は、分析物の超微細エアロゾルから形成された乾燥粒子に付与された電荷を測定する。測定される電荷は、試料中の分析物量に比例する。ＣＡＤ検出器の操作はかなり簡単であり、いくつかの制御可能なパラメータを設定するだけでよく、ＥＬＳＤ（蒸発光散乱検出器）検出と比較して感度が向上する。

ｐＤＡＤＭＡＣまたはポリ（ジアリルジメチルアンモニウムクロリド）は、イオン性相互作用機構を介して負に帯電した細胞および細胞残屑をより大きな粒子に迅速に凝集させるという点で、凝集剤として非常に有効な水溶性カチオン性ポリマーである。ｐＤＡＤＭＡＣは、１０ＫＤａ未満から１００００ＫＤａまでの様々なポリマーサイズで入手可能であるが、凝集哺乳動物細胞培養物については、しばしば中程度の平均分子量サイズ（例えば、約５００ＫＤａ）が使用され、Ｍｅｒｃｋなどの既知の提供者によって得ることができる。

特定の実施形態では、該疎水性相互作用ＨＰＬＣ（高圧液体クロマトグラフィー）は、ＡｇｉｌｅｎｔまたはＰｈｅｎｏｍｅｎｅｘによって供給されるＰＬＲＰ－Ｓ ＨＰＬＣ、すなわち、Ｐｏｌｙｍｅｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ Ｒｅｖｅｒｓｅｄ Ｐｈａｓｅ－Ｓｔｙｒｅｎｅ（ジビニルベンゼン）である。ＰＬＲＰ－Ｓ ＨＰＬＣカラムには、残留表面官能基（すなわち、酸性シラノール基の典型的なシリカの問題はない）のないマクロ多孔性で本質的に均一に疎水性の固定相が充填されており、最適な分離能を可能にする。当業者は、分離する分子に応じて、適切な孔径が選択されることを理解するであろう。充填材の１０００Å孔径は、本発明の試料（ｐＤＡＤＭＡＣポリマーを含む）中に存在する高分子量種の分離に特に適している。ＰＬＲＰ－Ｓ材料は、最適化された分析条件で得られた圧力に対して機械的に安定である。さらに、ＰＬＲＰ－Ｓ ＨＰＬＣカラムを使用して、シリカ充填に関連する制約がいずれもなく、ｐＨ１～１４で分離を行うことができる。したがって、本発明の特定の実施形態では、ＰＬＲＰ－Ｓカラムは、１０００Åの孔径を有する。

本発明方法の別の実施形態では、試料は、０．１％～３％のＣＡＤ適合性酸、例えば、０．１％～２％のＣＡＤ適合性酸、または０．１％～１．５％のＣＡＤ適合性酸、または０．５％～１．５％のＣＡＤ適合性酸を含む。本発明のさらなる実施形態では、試料は１％のＣＡＤ適合性酸を含む。

１つの実施形態において、工程ａ）で適用される試料は、２～４のｐＨを有する。

本発明の観点から可能なＣＡＤ適合性酸には、トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）、ヘプタフルオロ酪酸、酢酸またはギ酸が含まれるが、これらに限定されない。本発明方法の特定の実施形態では、該ＣＡＤ適合性酸はトリフルオロ酢酸である。

ＣＡＤ適合性酸の正確な割合および性質は、試料の特異性、特に精製物体である対象の組換えタンパク質の特性を考慮して、当業者によって選択されるであろう。

本発明の特定の実施形態では、該ＣＡＤ適合性酸は、例えば、１５％（体積／体積）のＣＡＤ適合性酸の原液からの添加などによって、上記方法の工程ａ）の前に試料に添加される。

試料への酸の添加は、試料にも含有される組換えタンパク質の溶解度に影響を及ぼす可能性があり、場合によっては、沈殿させる可能性がある。この沈殿物は、いくらかの残留ｐＤＡＤＭＡＣも含有し得るため、試料中に存在するｐＤＡＤＭＡＣ量の過小評価をもたらすであろう。そのような現象を回避するために、当業者は、試料を希釈して組換えタンパク質の濃度を低下させる有益な効果を認識するであろう。

同様に、タンパク質濃度を調整することを望む場合、試料は、例えば、試料中に既に存在する緩衝液をさらに添加することなどによって、適切な緩衝液を使用して希釈され得る。

本発明の方法の一実施形態では、工程ａ）で適用される試料は、２００ｍｇ／ｍｌ未満、例えば、１００ｍｇ／ｍｌ未満、例えば６０ｍｇ／ｍｌ未満の組換えタンパク質濃度を含む。さらなる特定の実施形態では、試料は、２０～６０ｍｇ／ｍｌの組換えタンパク質濃度を含む。

同様に、より小さい分子量の分子を除去するための濾過工程などの他の試料調製技術が望ましい場合がある。

本発明の方法の一実施形態では、工程ａ）で適用された試料は、８０ｋＤａ以下、６０ｋＤａ以下、５０ｋＤａ以下の孔径を有するフィルターで濾過されている。さらなる特定の一実施形態では、試料は、３０ｋＤａの孔径を有するフィルターで濾過される。

同様に、試料中に存在するタンパク質の一部または全部が消化されるように、試料の酸性処理が望ましい場合がある。別の実施形態では、本方法は、工程ａ）における試料の適用前に試料の酸性処理を含む。本方法のさらなる実施形態では、試料は、工程ａ）におけるその適用前に、酸性処理工程および濾過工程に供される。

特定の実施形態では、本発明の方法は、対照を参照することにより、試料中に存在するｐＤＡＤＭＡＣの濃度を決定する工程をさらに含む。

典型的には、検量線は、製剤緩衝液に添加され、本発明の方法に従って処理される既知濃度のｐＤＡＤＭＡＣを使用して作成される。

本発明の方法を定量アッセイで用いる場合、未知量のポリマーを含む試料で測定されたｐＤＡＤＭＡＣ電荷を検量線で補間して、試料のｐＤＡＤＭＡＣ濃度を得る。しかしながら、本発明の方法は、「限界試験」アッセイ、すなわちｐＤＡＤＭＡＣの存在が対象の特定の限界未満であることの決定を目的とする試験においても使用され得る。これらの「限界試験」では、各試料は「現状のまま」分析され、対象の限界に相当するｐＤＡＤＭＡＣ量で添加される。例えば、対象の限界が１μｇ／ｍｌのｐＤＡＤＭＡＣである場合、試料を採取し、２つのアリコートに分割し、１つの得られたアリコートに１μｇ／ｍｌのｐＤＡＤＭＡＣを添加し、ｐＤＡＤＭＡＣの濃度を検量線の補間によって測定し、次いで、残りのアリコートを本発明の方法によって直接測定し、ｐＤＡＤＭＡＣの不在を検量線への補間によって検証する。

対象の組換えタンパク質を含む試料は、精製プロセスの工程から直接得られてもよく、または該プロセスの最後で、もしくは精製プロセス内の工程から得られてもよく、ｐＤＡＤＭＡＣの漸進的クリアランスの分析を可能にする。

一実施形態では、工程ａ）で適用される試料は、ＣＡＤ適合性酸が添加された該組換えタンパク質の精製の工程から直接得られた試料である。

治療の分野では、対象のタンパク質は、例えば、抗体、サイトカイン、成長因子、ホルモン、ならびに他の調節ペプチドおよびタンパク質から選択され得る。このようなタンパク質は、組織および分泌物から抽出され得るが、バイオテクノロジーの発展、およびより大量のこれらの分子の必要性の高まり、およびそれらの調製のより高い標準化のため、組換えタンパク質として産生されることが多い。

本発明の特定の実施形態では、対象の組換えタンパク質は、抗体、抗体断片またはその誘導体である。

大規模商業目的のために製造される対象の組換えタンパク質、例えば、抗体などは、組換え抗体をコードする１つ以上の発現ベクターでトランスフェクションされた真核宿主細胞を培養することによって産生され得る。真核宿主細胞は、好ましくは哺乳動物細胞、より好ましくはチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞である。

哺乳動物細胞は、抗体の成長および発現を支持する任意の培地中で培養することができ、好ましくは、培地は、動物血清およびペプトンなどの動物由来産物を含まない既知組成培地である。当業者に利用可能な異なる細胞培養培地があり、適切な濃度で存在するビタミン、アミノ酸、ホルモン、成長因子、イオン、緩衝剤、ヌクレオシド、グルコースまたは同等のエネルギー源の異なる組み合わせを含み、細胞増殖およびタンパク質産生を可能にする。追加の細胞培養培地成分は、当業者に知られているであろう細胞培養サイクル中の異なる時間に適切な濃度で細胞培養培地に含まれ得る。

哺乳動物細胞の培養は、振とうフラスコまたはバイオリアクターなどの任意の適切な容器内で行うことができ、例えば、必要とされる生産規模に応じてフェドバッチモードで操作されても操作されなくてもよい。これらのバイオリアクターは、撹拌タンクまたはエアリフト反応器のいずれかであってもよい。１，０００Ｌ超～５０，０００Ｌ、好ましくは５，０００Ｌ～２０，０００Ｌ、または１０，０００Ｌの容量を有する様々な大規模バイオリアクターが利用可能である。あるいは、２Ｌ～１００Ｌなどの小規模のバイオリアクターを使用して、本発明の方法に従って抗体を製造することもできる。

本発明の方法に従って製造することができる抗体またはその抗原結合断片は、典型的には、哺乳動物宿主細胞培養物、典型的にはＣＨＯ細胞培養物の上清中に見出される。抗体またはその抗原結合断片などの対象のタンパク質が上清に分泌されるＣＨＯ培養プロセスの場合、該上清は、当技術分野で知られる方法によって、典型的には遠心分離によって収集される。誤解を避けるため、上清とは、細胞培養物の遠心分離から生じる沈降細胞上にある液体を意味する。

凝集とは、懸濁液中の粒子がより大きなサイズの凝集体またはクラスターを形成するプロセスである。このプロセス中、粒子は、凝集剤の添加によってフロックの形態で懸濁液から生じる。凝集剤は、アニオン性またはカチオン性ポリマーであり得る。天然凝集剤、ならびに特定の分子量および分布を有するように製造することができる合成凝集剤が存在する。

カチオン性ポリマーは、有機物質などの負に帯電した粒子と相互作用する。細胞培養上清において、カチオン性ポリマーは、負に帯電した粒子、例えば生細胞および非生細胞、核酸、タンパク質およびリポソームを含む細胞代謝産物ならびに細胞残屑と相互作用する。細胞培養上清中に見出される負に帯電した化合物とカチオン性ポリマーとの凝集は、その後に溶液から脱落するより大きな粒子の形成をもたらす。

組換えタンパク質を発現する細胞を含有するまたは含有していた哺乳動物細胞培養培地へのポリ（ジアリルジメチルアンモニウムクロリド）（ｐＤＡＤＭＡＣ）などのカチオン性ポリマーの添加は、細胞（生存および非生存）、細胞代謝産物および細胞残屑を含む負に帯電した粒子を凝集させる。次いで、これらの大きな凝集粒子は、遠心分離により、または重力沈降により除去することができ、典型的な遠心分離された収集供給流と比較して有意に高い収集フィルタートレイン処理量を有する供給流を生成する。

このフィルタートレインの後に回収される上清は、典型的には清澄化細胞培養液と呼ばれ、次いで、対象の精製タンパク質を得るために、典型的には２または３のクロマトグラフィー工程および限外濾過／透析濾過の工程を含むいくつかの工程でさらに処理される。

このさらなる精製または下流精製プロセスの間に、ｐＤＡＤＭＡＣなどの残留凝集剤、ならびに宿主細胞タンパク質、タンパク質凝集体および分解産物を含む他の不純物も除去される。

これに関連して、十分なクリアランスを確実にするために精製タンパク質試料（典型的には原薬と呼ばれる）中のｐＤＡＤＭＡＣの最終濃度を測定することが重要であり得るが、プロセス全体の制御を改善するために精製工程中にこの測定を行うことも重要であり得る。

したがって、本発明のプロセスの特定の実施形態では、試料は、対象の最終精製タンパク質から得られる。また、本発明の方法の代替実施形態では、試料は、該タンパク質の精製流中の工程から得られる。

第２の態様では、本発明は、対象のタンパク質を製造する方法に関し、該方法は、タンパク質精製中にｐＤＡＤＭＡＣを添加する工程を含み、該ｐＤＡＤＭＡＣの除去は、前の段落に記載の方法に従って測定される。

本明細書で使用される「抗体（ａｎｔｉｂｏｄｙ）」または「抗体（ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ）」という用語は、モノクローナル抗体またはポリクローナル抗体を指す。本明細書で使用される「抗体（ａｎｔｉｂｏｄｙ）」または「抗体（ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ）」という用語は、当技術分野で知られる組換え技術によって生成される組換え抗体を含むが、これらに限定されない。「抗体（ａｎｔｉｂｏｄｙ）」または「抗体（ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ）」には、任意の種、特に哺乳動物種の抗体が含まれ、例えば、ＩｇＤ、ＩｇＧ_１、ＩｇＧ_２ａ、ＩｇＧ_２ｂ、ＩｇＧ_３、ＩｇＧ_４ ＩｇＥを含む任意のアイソタイプのヒト抗体、およびＩｇＧＡ_１、ＩｇＧＡ_２を含むこの基本構造の二量体、またはＩｇＭおよびその改変変異体などの五量体として産生される抗体、例えばチンパンジー、ヒヒ、アカゲザルもしくはカニクイザル由来の非ヒト霊長類抗体、例えばマウスもしくはラット由来の齧歯類抗体、ウサギ、ヤギもしくはウマの抗体、ならびにラクダ科動物の抗体（例えば、Ｎａｎｏｂｏｄｉｅｓ（商標）などのラクダまたはラマ由来）およびそれらの誘導体、またはニワトリ抗体などの鳥類種、またはサメ抗体などの魚類種のものである。「抗体（ａｎｔｉｂｏｄｙ）」または「抗体（ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ）」という用語はまた、少なくとも１つの重鎖および／または軽鎖の抗体配列の第１の部分が第１の種に由来し、重鎖および／または軽鎖の抗体配列の第２の部分が第２の種に由来する「キメラ」抗体も指す。本明細書における対象のキメラ抗体には、非ヒト霊長類（例えば、ヒヒ、アカゲザルまたはカニクイザルなどの旧世界サル）およびヒト定常領域配列に由来する可変ドメイン抗原結合配列を含む「霊長類化」抗体が含まれる。「ヒト化」抗体は、非ヒト抗体に由来する配列を含むキメラ抗体である。ほとんどの場合、ヒト化抗体は、レシピエントの超可変領域由来の残基が、所望の特異性、親和性および活性を有する、マウス、ラット、ウサギ、ニワトリまたは非ヒト霊長類などの非ヒト種（ドナー抗体）の超可変領域［または相補性決定領域（ＣＤＲ）］由来の残基で置き換えられたヒト抗体（レシピエント抗体）である。ほとんどの場合、ＣＤＲ外、すなわち、フレームワーク領域（ＦＲ）のヒト（レシピエント）抗体の残基は、対応する非ヒト残基によってさらに置き換えられる。さらに、ヒト化抗体は、レシピエント抗体またはドナー抗体には見出されない残基を含み得る。これらの修飾は、抗体の性能をさらに改良するために行われる。ヒト化は、ヒトにおいて非ヒト抗体の免疫原性を低下させ、したがって、ヒト疾患治療への抗体の適用を容易にする。ヒト化抗体およびそれらを生成するためのいくつかの異なる技術は、当技術分野で周知である。「抗体（ａｎｔｉｂｏｄｙ）」または「抗体（ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ）」という用語はまた、ヒト化の代替として生成することができるヒト抗体も指す。例えば、内因性マウス抗体が産生されない場合、免疫化すると、ヒト抗体の完全なレパートリーを産生することができるトランスジェニック動物（例えば、マウス）を作製することが可能である。例えば、キメラ変異マウスおよび生殖系列変異マウスにおける抗体重鎖連結領域（ＪＨ）遺伝子のホモ接合性欠失は、内因性抗体産生の完全な阻害をもたらすことが記載されている。このような生殖系列変異マウスにおけるヒト生殖系列免疫グロブリン遺伝子アレイの導入は、ヒト生殖系列免疫グロブリン遺伝子を保有するトランスジェニック動物を該抗原で免疫すると、特定の抗原に対する特異性を有するヒト抗体の産生をもたらす。このようなトランスジェニック動物を作製するための技術、およびこのようなトランスジェニック動物からヒト抗体を単離し、産生するための技術は、当技術分野で知られている。あるいは、トランスジェニック動物、例えばマウスでは、マウス抗体の可変領域をコードする免疫グロブリン遺伝子のみが、対応するヒト可変免疫グロブリン遺伝子配列で置き換えられる。抗体定常領域をコードするマウス生殖系列免疫グロブリン遺伝子は変化しないままである。このようにして、抗体エフェクターはトランスジェニックマウスの免疫系で機能し、その結果、Ｂ細胞の発生は本質的に変化せず、インビボでの抗原曝露時に抗体応答の改善をもたらし得る。対象の特定抗体をコードする遺伝子がそのようなトランスジェニック動物から単離されると、完全ヒト抗体を得るために、定常領域をコードする遺伝子をヒト定常領域遺伝子で置き換えることができる。インビトロでヒト抗体（ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ）／抗体（ａｎｔｉｂｏｄｙ）断片を得るための他の方法は、ファージディスプレイまたはリボソームディスプレイ技術などのディスプレイ技術に基づいており、少なくとも部分的に人工的に、またはドナーの免疫グロブリン可変（Ｖ）ドメイン遺伝子レパートリーから作製される組換えＤＮＡライブラリーが使用される。ヒト抗体を作製するためのファージおよびリボソームディスプレイ技術は当技術分野で周知である。ヒト抗体はまた、単離されたヒトＢ細胞から作製される場合もあり、対象の抗原で該ヒトＢ細胞をエクスビボ免疫化し、続いて融合してハイブリドーマを作製し、次いでこれを最適なヒト抗体についてスクリーニングすることができる。本明細書で使用される「抗体（ａｎｔｉｂｏｄｙ）」または「抗体（ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ）」という用語はまた、非グリコシル化抗体も指す。

本明細書で使用される「抗体（ａｎｔｉｂｏｄｙ）」または「抗体（ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ）」という用語は、ヒト（例えば、ＩｇＧ）および他の哺乳動物種を含む任意の種の非切断型抗体を指すだけでなく、抗体断片も指す。抗体の断片は、当該分野で知られる少なくとも１つの重鎖または軽鎖の免疫グロブリンドメインを含み、１つ以上の抗原に結合する。本発明による抗体断片の例としては、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、およびＦｖおよびｓｃＦｖ断片、ならびにダイアボディ、トリアボディ、テトラボディ、ミニボディ、ドメイン抗体（ｄＡｂ）、例えば単一ドメイン抗体（ｓｄＡｂ）、Ｖ_ＨＨおよびＶ_ＮＡＲ断片、一本鎖抗体、抗体断片または抗体から形成される二重特異性、三重特異性、四重特異性または多重特異性の抗体が含まれ、Ｆａｂ－ＦｖまたはＦａｂ－Ｆｖ－Ｆｖ構築物を含むがこれらに限定されない。上記で定義した抗体断片は、当技術分野で知られている。

一実施形態では、抗体は、
ａ）式（Ｉ）のポリペプチド鎖：
ＶＨ－ＣＨ１－Ｘ－Ｖ１、および
ｂ）式（ＩＩ）のポリペプチド鎖：
ＶＬ－ＣＬ－Ｙ－Ｖ２
を含む、または上記からなる多重特異性抗体分子であり、
式中、
ＶＨは重鎖可変ドメインを表し、
ＣＨ１は、重鎖定常領域のドメイン、例えばそのドメイン１を表し、
Ｘは結合またはリンカーを表し、
Ｙは結合またはリンカーを表し、
Ｖ１は、ｄｓＦｖ、ｓｄＡｂ、ｓｃＦｖまたはｄｓｓｃＦｖを表し、
ＶＬは軽鎖可変ドメインを表し、
ＣＬは、Ｃカッパなどの軽鎖定常領域由来のドメインを表し、
Ｖ２は、ｄｓＦｖ、ｓｄＡｂ、ｓｃＦｖまたはｄｓｓｃＦｖを表し、
式中、Ｖ１またはＶ２の少なくとも一方は、参照により本明細書に組み込まれる国際公開第２０１５／１９７７７２号に記載されているｄｓＦｖまたはｄｓｓｃＦｖである。

本明細書で使用される「一本鎖可変断片」または「ｓｃＦｖ」とは、重鎖可変ドメイン（ＶＨ）および軽鎖可変ドメイン（ＶＬ）を含むか、またはそれらからなる一本鎖可変断片を指し、ＶＨとＶＬの可変ドメイン間のペプチドリンカーによって安定化される。ＶＨおよびＶＬの可変ドメインは、任意の適切な配向であってもよく、例えば、ＶＨのＣ末端はＶＬのＮ末端に連結されてもよく、またはＶＬのＣ末端はＶＨのＮ末端に連結されてもよい。

「ジスルフィド安定化一本鎖可変断片」または「ｄｓｓｃＦｖ」とは、ＶＨとＶＬの可変ドメイン間のペプチドリンカーによって安定化され、ＶＨとＶＬとの間のドメイン間ジスルフィド結合も含む一本鎖可変断片を指す。

「ジスルフィド安定化可変断片」または「ｄｓＦｖ」とは、ＶＨとＶＬの可変ドメイン間にペプチドリンカーを含まず、代わりにＶＨとＶＬとの間のドメイン間ジスルフィド結合によって安定化されている一本鎖可変断片を指す。

特定の一実施形態では、抗体は、参照により本明細書に組み込まれる、国際公開第２０１５／１９７７７２号に記載されているＦａｂ－２ｘ ｄｓｓｃＦｖ型の多重特異性抗体である。

さらなる特定の実施形態では、Ｆａｂ－２ｘ ｄｓｓｃＦｖ型の多重特異性抗体分子は三価抗体であり、すなわち、各Ｆｖは異なるエピトープに結合する。

さらなる特定の実施形態では、多重特異性抗体は、国際公開第２０１５／１９７７７２号に記載されているＦａｂ－ｄｓｓｃＦｖ－ｄｓＦｖ型を有する。

例
以下の例は、Ａｇｉｌｅｎｔによって供給された１０００Å ８μ粒子（１５０×２．１ｍｍ）ＰＬＲＰ－Ｓカラム、およびＭｉｌｌｉｐｏｒｅ（ｎｒ．１３７０６９）によって供給された１０％のｐＤＡＤＭＡＣ水溶液を使用して実施された。以下に詳述するように、調製試料の他の成分（タンパク質、製剤賦形剤、．．．）からポリカチオン性ｐＤＡＤＭＡＣポリマーが分離された。

例１：検量線の作成
ポリマーの１０％重量対体積標準液を使用して、２５μｇおよび１００μｇ ｐＤＡＤＭＡＣ／ｍＬの２つの濃縮溶液を適切なタンパク質製剤緩衝液で調製した。これらの２つの溶液を緩衝液でさらに希釈して、０．５、１．０、２．０、５．０、８．０および１０．０μｇ ｐＤＡＤＭＡＣ／ｍＬの既知の理論濃度を用いて検量線を得た。ＨＰＬＣ分析の前に、１０μＬの１５％（ｖ／ｖ）ＴＦＡ水溶液を１００μＬの標準に添加することによって、６つの各較正標準を酸性化し、２回注入した。分析は、Ｃｏｒｏｎａ（商標）Ｖｅｏ（商標）ＲＳ Ｃｈａｒｇｅｄ Ａｅｒｏｓｏｌ Ｄｅｔｅｃｔｏｒを用いて行い、
溶出に適用した勾配は以下の通りであった。
溶媒Ａ；Ｈ_２Ｏ／ＴＦＡ ０．１％
溶媒Ｂ：ＣＨ_３ＣＮ／ＴＦＡ ０．１％
溶媒Ｃ：ＭｅＯＨ／ＴＦＡ ０．１％

各シリーズの試料が分析される前後に較正標準を注入し、較正標準の１２回の注入の面積を用いて、１／ｘの重み付けで二次（ｑｕａｄｒａｔｉｃ）（二次（ｓｅｃｏｎｄ ｏｒｄｅｒ））回帰直線を構築した。得られた検量線の一例を図１に示す。決定係数（ｒ^２）は１．００（≧０．９８、典型的な許容基準）であった。次いで、各分析試料について得られたｐＤＡＤＭＡＣ測定値を検量線に補間し、ｐＤＡＤＭＡＣ濃度を決定した。

例２：結果の直線性
一回の検証練習で、最初に５６．８ｍｇの抗体／ｍＬの試料を含有する原薬（ＩｇＧ４）試料に、５つの濃度レベル（１．０、２．０、５．０、８．０および１０．０μｇ／ｍＬ）でｐＤＡＤＭＡＣを添加し、各レベルで三連調製物であった。ＨＰＬＣ分析の前に、１０μＬの１５％ ＴＦＡ水溶液を１００μＬの標準に添加することによって各試料を酸性化し、１１０μＬの適切なタンパク質製剤緩衝液を添加してさらに希釈した。この方法を適用して１５の調製物を分析し、得られた個々の測定濃度（μｇ ｐＤＡＤＭＡＣ／ｍＬの添加試料）を、添加したｐＤＡＤＭＡＣの理論レベルに対してプロットした。図２に示すように、得られた線形回帰の決定係数（ｒ^２）は１．００（≧０．９８、典型的な許容基準）であった。したがって、本方法は、評価範囲（１ｍＬの原薬試料当たり１．０～１０．０μｇ ｐＤＡＤＭＡＣ）で線形である。

例３：定量的測定：
各試料を「現状のまま」分析し、試料１ｍＬ当たり１．０μｇのｐＤＡＤＭＡＣ／（それぞれの３連調製物）で添加した。６つの各調製物を以下のように酸性化および希釈工程に供した。ＨＰＬＣ分析の前に、１０μＬの１５％ ＴＦＡ水溶液および１１０μＬの適切なタンパク質製剤緩衝液を１００μＬの試料に添加する。

１．０μｇ ｐＤＡＤＭＡＣ／ｍＬを非添加および添加し分析される原薬試料（９７．８ｍｇのＩｇＧ４抗体／ｍＬを含有し、ｐＤＡＤＭＡＣによる凝集を適用した製造プロセスから得られた）について得られた典型的なクロマトグラフィープロファイルのオーバーレイを図３に示す。

検出器の混入または汚染の可能性を回避するために、ＣＡＤ機器の切替弁を使用して、ｐＤＡＤＭＡＣピークシグナルを読み取るのに必要な時間（すなわち、ｐＤＡＤＭＡＣピーク保持時間の約１分前および１分後）の間のみ検出器の噴霧器に流れを導いた。プロファイルは、５．３分近くのｐＤＡＤＭＡＣポリマーを表すピークを示した。ｐＤＡＤＭＡＣピークの保持時間（５．３分）で干渉ピークが検出されないため、この方法の特異性が実証された。さらに、最高ｐＤＡＤＭＡＣ濃度から開始し、最小濃度の参照標準まで漸減する検量線の測定を行い、検量線の後に１つのブランクを注入することによって確立されるように、試料間でｐＤＡＤＭＡＣの有意なキャリーオーバーは観察されなかった。

理論的ｐＤＡＤＭＡＣ濃度を考慮した６つの較正標準の注入を用いて回帰直線を得た。非添加試料におけるｐＤＡＤＭＡＣの不在を検証した一方、添加試料で測定された濃度を曲線から補間した。三連調製物で測定されたｐＤＡＤＭＡＣ濃度を使用して、１．０μｇ／ｍＬの添加レベルを以下のように検証する。
・ｐＤＡＤＭＡＣの測定濃度および理論濃度の各回収率％は、６０％～１４０％でなければならない。
・３つのｐＤＡＤＭＡＣ測定濃度についての％ＲＳＤ（相対標準偏差）は、≦１５％でなければならない。

２つの異なる原薬試料で得られた１．０μｇ／ｍＬ添加レベルでのｐＤＡＤＭＡＣ回収率を図４に示す。

例４：真度、精度および定量限界：
２つの原薬試料を用いてｐＤＡＤＭＡＣアッセイの検証を行った。試料は、同じ抗体の２つの異なる製造バッチから得られ、１つは凝集剤を使用して製造されたもの（以下、「凝集」試料と呼ぶ）であり、もう１つは凝集剤を使用せずに製造されたもの（以下、「非凝集」試料と呼ぶ）である。非凝集試料は５６．８ｍｇ ＩｇＧ４抗体／ｍＬを含有した一方、凝集試料は９７．８ｍｇ ＩｇＧ４抗体／ｍＬを含有した。両試料に、１．０、２．０および５．０μｇ ｐＤＡＤＭＡＣ／ｍＬの３つの濃度レベルを添加し、各レベルの三連調製物において本発明の方法で（別々の日に）２回分析した。各調製物は、上記の例２および例３に記載したものと同じ酸性化および希釈工程を経た。以下のパラメータを評価した。
・ｐＤＡＤＭＡＣの理論濃度と比較した実際のｐＤＡＤＭＡＣ測定濃度（各回内の各レベルでの３連調製物の平均）
に基づいて、真度（％回収率）を算出した。
・各ｐＤＡＤＭＡＣ濃度（各調製物について、各回内の各レベルで測定）を用いて、精度－併行精度（％ＲＳＤ、ｎ＝３）を算出した。
・各ｐＤＡＤＭＡＣ濃度（両場合を通して各レベルで各調製物について測定）を用いて、全体の室内再現精度（％ＲＳＤ、ｎ＝６）を算出した。

図５に示すように、このような低レベルの不純物では、評価した３つの濃度レベルでの３つのパラメータについて典型的な許容基準を満たした。
・真度についての６０％～１４０％内の平均（ｎ＝３）％回収率
・精度－併行精度についての平均（ｎ＝３）％ＲＳＤ≦１５％
・室内再現精度についての全体平均（ｎ＝６）％ＲＳＤ≦２０％

試料中のｐＤＡＤＭＡＣの定量限界（３つの典型的な許容基準が満たされた試料に添加される最低濃度として算出）は、試料１ｍＬ当たり１．０μｇのｐＤＡＤＭＡＣであった。

例５：追加の抗体型への本方法の適用：
さらなる実験では、５８．２ｍｇ／ｍＬで製剤化されたＦａｂ－ｓｃＦｖ、ならびに８０ｍｇ／ｍＬで製剤化された国際公開第２０１５／１９７７７２号に記載されているＦａｂ－２ｘ ｄｓｓｃＦｖについて、本発明の方法を検証した。この方法を、対象の１．０μｇ ｐＤＡＤＭＡＣ／ｍＬの限界での限界試験にした。この場合、理論上の１．０μｇ／ｍＬ添加濃度に対する％回収率を算出するために、添加試料で測定されたｐＤＡＤＭＡＣ濃度（μｇ／ｍＬ）を検量線（０．３～５．０μｇ ｐＤＡＤＭＡＣ／ｍＬ）に対して定量した。

改変された両抗体型について、カラム、機器および操作者などの要因に起因する方法の変動性への寄与は同じであるものと見なされた。したがって、１ｍＬ当たり１．０μｇ ｐＤＡＤＭＡＣを添加したＦａｂ－ｓｃＦｖ試料で最初に４回実施し（各回で６反復）、真度、精度－併行精度および室内再現精度を評価した。さらに、第５の実験では、同様に添加したＦａｂ－２ｘ ｄｓｓｃＦｖ Ｆａｂについて、真度および精度－併行精度を検証した。

Ｆａｂ－ｓｃＦｖおよびＦａｂ－２ｘ ｄｓｓｃＦｖの両試料で、１．０μｇ ｐＤＡＤＭＡＣ／ｍＬでの６反復の添加物に、１０％ ＴＦＡ水溶液の添加による酸性化工程を行い、続いて適切な緩衝液で２倍希釈した。得られた結果を図６に示す。

改変された両抗体型において、真度および精度－併行精度を評価し、典型的な許容基準を満たした（６０～１４０％内の％回収率および１５％以下の％ＲＳＤ ｎ＝６調製物）。さらに、Ｆａｂ－ｓｃＦｖ抗体型では、４つの場合で評価された室内再現精度は許容基準内であった（２４の添加試料で測定されたｐＤＡＤＭＡＣ濃度についての全体的ＲＳＤは２０％以下）。

例６：異なる試料調製物を用いた方法の適用：
代替の試料調製物を限界試験法（検出限界１μｇ／ｍｌ）として評価した。この測定のために、２つの試料を調製した。
－１つの試料はニート（ｎｅａｔ）（製造プロセスから得られる原薬）であり、
－もう１つは１ｍＬ当たり１μｇ ｐＤＡＤＭＡＣの添加試料であり、
次いで、両方を強酸（この場合は塩酸３７％）と８０°Ｃで３時間インキュベーションする。インキュベーション後、試料が完全に乾燥するまで一晩蒸発させる。次いで、それらを０．５％ ＴＦＡ水溶液中で再構成した後、精製およびｐＤＡＤＭＡＣ濃縮のために遠心フィルターユニット（３０ｋＤａカットオフ孔径）で遠心分離する。フィルターによって保持されたｐＤＡＤＭＡＣを含有する試料を０．１％ ＴＦＡ水溶液中で再構成する。

次いで、ｐＤＡＤＭＡＣをタンパク質残基ならびにＰＬＲＰ－Ｓカラム上に残留する賦形剤および不純物から分離し、ＣＡＤ検出器を使用して本発明の方法に従って測定する。

例示結果を図７に示す。この方法は、いくつかの抗体型について検証されており、各場合につき６回の反復で特異性および検出限界を評価する。塩酸とのインキュベーションの長さを各場合で最適化し、８０℃で３～６時間以内であると決定した。

これらの試料調製工程の追加は、マトリックス干渉が完全に除去されるため、インプロセス試料におけるｐＤＡＤＭＡＣクリアランスを評価するのに特に興味深い。

Claims (10)

1. 対象の組換えタンパク質を含有する試料中のｐＤＡＤＭＡＣを測定するための方法であって、
   ａ）前記試料を逆相疎水性相互作用ＨＰＬＣに適用する工程と、
   ｂ）疎水性勾配溶出を用いて、カラムから結合したｐＤＡＤＭＡＣを溶出させる工程と、
   ｃ）帯電エアロゾル検出器（ＣＡＤ）を使用して、工程ｂ）で回収された前記ｐＤＡＤＭＡＣを測定する工程と、を含む方法であって、
   ａ）で適用される前記試料が、０．２～３％（ｖ／ｖ）のＣＡＤ適合性酸を含む、方法。
2. 工程ａ）で適用される前記試料が、２００ｍｇ／ｍｌ未満、２０～１００ｍｇ／ｍｌなど、例えば２０～６０ｍｇ／ｍｌのタンパク質濃度を含む、請求項１に記載の方法。
3. 工程ａ）で適用される前記試料が、２～４のｐＨを有する、請求項１または２に記載の方法。
4. 工程ａ）で適用される前記試料が、０．５～１．５％（ｖ／ｖ）のＣＡＤ適合性酸を含む、請求項１～３のいずれか一項に記載の方法。
5. 前記ＣＡＤ適合性酸が、トリフルオロ酢酸、酢酸、ヘプタフルオロ酪酸およびギ酸から選択される、請求項１～４のいずれか一項に記載の方法。
6. 前記逆相疎水性相互作用ＨＰＬＣが、ＰＬＲＰ－Ｓ ＨＰＬＣである、請求項１～５のいずれか一項に記載の方法。
7. 前記方法が、対照を参照することにより、試料中に存在するｐＤＡＤＭＡＣの濃度を決定する工程をさらに含む、請求項１～６のいずれか一項に記載の方法。
8. 前記対象の組換えタンパク質が、抗体、抗体断片またはそれらの誘導体である、請求項１～７のいずれか一項に記載の方法。
9. 工程ａ）で適用される前記試料が、ＣＡＤ適合性酸が添加された前記組換えタンパク質の精製の工程から直接得られた試料である、請求項１～８のいずれか一項に記載の方法。
10. タンパク質精製中にｐＤＡＤＭＡＣを添加することを含む、対象のタンパク質を製造する方法であって、その後の前記ｐＤＡＤＭＡＣの除去が、請求項１～９のいずれか一項に記載の方法に従って測定される、方法。

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