JP2022529433A - 遺伝子療法をモニタリングする - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2019年4月15日に出願した米国仮出願第62/833,875号の優先権を主張するものであり、その全内容を、参照により、本明細書で援用する。
本出願は、2020年4月10日に作成した、名称が「2012538-0082_SL.txt」であり、大きさが26,104バイトである.txtファイルで電子的に提出した配列表を含む。この配列表の全内容を、参照により、本明細書で援用する。
本発明の理解を深めるために、まず、特定の用語を以下に定義する。以下の用語及びその他の用語に関するさらなる定義は、明細書の随所に記載している。
本開示は、遺伝子療法をモニタリング、及び/または、そうでなければ、評価するための技術を提供する。本明細書に記載したように、本開示は、遺伝子療法治療を組み込んだ末に生成するバイオマーカー(複数可)の検出及び評価に関するものであり、その存在及び相対量は、遺伝子療法治療を介して送達するペイロードに関する情報、例えば、送達したペイロードの存在、量、及び/または動態に関する情報を示す。本開示の一態様では、バイオマーカーの存在、量、及び/または動態は、送達したペイロードの存在、量、及び/または動態を決定するための代用指数として機能する。本開示の一部の実施形態では、バイオマーカーは、組み込み遺伝子療法治療を受けた対象から採取した生物学的試料から評価する。本開示の一部の実施形態では、バイオマーカーは、対象から採取した非組織生物学的試料で評価することができる。本開示の一部の実施形態では、ペイロードは、(例えば、適切な導入遺伝子の送達を介して)組み込み遺伝子療法治療を受けた対象の組織に送達され、そして、そこに留まる。
遺伝子療法は、対象の細胞に対して遺伝物質を導入して、一般的には、異常な遺伝子を補償することができるペイロードを発現させ、または、そうでなければ、対象に対して有用な効果を提供する。遺伝子療法を組み込むと、遺伝物質が導入されて、レシピエント細胞に存在する遺伝子配列(すなわち、標的部位)に組み込むことができるようになる。
一部の実施形態では、組み込み遺伝子療法は、ベクターをベースとしたシステム(例えば、ウイルスベクター)とし得る、またはそれを含み得る。一般的に、ベクターをベースとしたシステムは、ウイルスまたはウイルス遺伝物質を含んでおり、そこに外来DNAのフラグメントを挿入して、細胞に移すことができる。そのライフサイクルにDNA段階を含むあらゆるウイルスを、本開示の一部の実施形態の範囲内でウイルスベクターとして使用し得る。ウイルスベクターをベースとしたシステムを、一本鎖DNAウイルス、二本鎖DNAウイルス、そのライフサイクルにDNA段階を有するRNAウイルス、例えば、レトロウイルスとし得るが、これらに限定されない。一部の実施形態では、ウイルスベクターは、医薬として許容可能な製剤、例えば、リポソームまたは脂質粒子(例えば、マイクロ粒子またはナノ粒子)を介して送達し得る。
一部の実施形態では、組み込み遺伝子療法は、非ウイルスベクターをベースとしたシステムとし得る、またはそれを含み得る。一部の実施形態では、非ウイルスベクターシステムは、プラスミド、ポリマーをベースとした粒子、ceDNA、リポソーム、ミニサークル、及びそれらの組み合わせとし得る、またはそれらを含み得る。一部の実施形態では、非ウイルスベクターシステムは、化学担体(複数可)の使用、エレクトロポレーション、バリスティックDNA(例えば、粒子衝突)の使用、ソノポレーション、フォトポレーション、マグネトフェクション、ハイドロポレーション、及びそれらのあらゆる組み合わせとし得る、またはそれらを含み得る。
様々な実施形態によれば、ヌクレアーゼ媒介組み込みは、遺伝子操作を受けた、またはDNAを切断する細菌で初めて同定した酵素である1つ以上のヌクレアーゼを使用する。一般的には、ヌクレアーゼを介した組み込みは、2段階プロセスである。まず、二本鎖DNAの一方または両方の鎖を切断できる外因性ヌクレアーゼを、合成ガイドRNAによって所望の部位に移動させ、そして、個別に切断を行う。ヌクレアーゼに所望の切断(複数可)を入れた後に、細胞のDNA修復機構を作動させて、NHEJ、または、あまり馴染みのないHDRを介して編集プロセスを完了する。
GeneRide(商標)は、ゲノムの忠実度を維持する天然に存在するDNA修復プロセスである相同組換え、またはHRを利用するゲノム編集技術である。HRを使用することで、GeneRide(商標)は、外因性ヌクレアーゼを使用せずに、特定の標的ゲノム位置にポリヌクレオチドを挿入でき、GeneRide(商標)が指令するポリヌクレオチド組み込みは、これらの標的位置で内因性プロモーターを活用して、外因性プロモーターの使用に関連する有害な問題を招かずに、高レベルの組織特異的遺伝子発現を駆動するようにデザインされている。本開示の一部の実施形態では、GeneRide(商標)を、ペイロードをコードするポリヌクレオチドを宿主細胞または生物に送達するために使用する。
本開示に従って使用する遺伝子療法の組み込みは、望ましくは、組み込んだ導入遺伝子と活性な内因性プロモーターとの機能的関連性を達成する組み込みを達成するものであって、そうすることにより、プロモーターからの転写によって、導入遺伝子を介して伸長する転写物が生成される。さらに、数多くの実施形態では、組み込みとは、そのような転写物が、導入遺伝子のオープンリーディングフレーム以外のオープンリーディングフレームを含むように選択した標的部位のことである。
様々な実施形態によれば、本明細書に記載した通り、あらゆる利用に適切なペイロードを使用し得る。様々な実施形態によれば、導入遺伝子は、1つ以上のペイロードをコードする。本明細書で使用する用語「ペイロード」及び「関心を寄せた遺伝子」(GOI)は、互換可能に使用し得る。一部の実施形態では、ペイロードは、ペプチド、核酸(例えば、shRNA、miRNA、及び/または1つ以上のペプチドをコードする核酸)、及びそれらのあらゆる組み合わせである、またはそれらを含む。一部の実施形態では、組み込み遺伝子療法治療及び/または遺伝子組み込み組成物は、単一のペイロードを含む。一部の実施形態では、組み込み遺伝子療法治療及び/または遺伝子組み込み組成物は、2つ以上(例えば、3つ、4つ、5つ、6つ、7つ、8つ、9つ、10個以上)のペイロードを含む。
本開示は、ペイロードの発現の代用指数として作用することができる検出可能なバイオマーカーを生成する組み込み遺伝子療法技術を提供する。
本明細書に記載したように、本明細書に記載した方法及び組成物に利用可能な検出(例えば、バイオマーカーまたは検出可能な部分などのシグナルの検出)は、あらゆる用途に適した方法で達成し得る。例えば、一部の実施形態では、検出ステップは、免疫学的アッセイ、または核酸増幅アッセイである、またはそれを含む。
当業者であれば、本明細書に記載した方法が、遺伝子療法が関係する様々な用途において有用であり得ることを容易に理解する。一部の実施形態では、本明細書に記載した方法は、所望のまたは「正常」レベルの発現と比較して、ペイロードが、過剰発現または過少発現しているか否かを評価する上で有用となり得る。一部の実施形態では、本明細書に記載した方法を使用して、遺伝子療法に対して潜在的に有害な反応(例えば、抗薬物抗体、及び/またはサイトカインストームなどの有害な免疫応答の惹起)を予測または特徴決定し得るものであり、したがって、医療介入、及び/または副作用の緩和を潜在的に可能ならしめる。
実施例1:バイオマーカーとペイロードの検出のための例示的な方法
本実施例は、本開示によるバイオマーカー及び/またはペイロードの検出、モニタリング、及び/または分析に利用することができる例示的な方法を実証している。実施例2~7では、本明細書に記載した方法及び材料を使用した。
ゲノムDNA組み込み(INT)アッセイ:ロングレンジqPCR
ゲノムDNA(gDNA)を、QiagenのDNeasyキットを使用して、凍結マウス肝臓組織から分離した。プライマーF1/R1(ステップ1)で増幅したロングレンジPCR(LR-PCR)産物を、SPRI磁気ビーズで精製し、そして、プライマーセットF2/R2を利用するネステッドqPCR(ステップ2)で使用した(図2)。5’ホモロジーアームから関心を寄せた遺伝子(GOI)(約2.1Kb)までの上流のフラグメントを含む合成dsDNAを使用して、標準曲線を作成した。標準と試料を並べて行った。Tfrcは、正規化のロードコントロールとして使用した。
ゲノムDNA(gDNA)を、QiagenのDNeasyキットを使用して、マウス肝臓から分離した。エピソームのコピー数を、線状エピソームプラスミドで作成した標準曲線を使用するqPCR(図3)で決定した。Tfrcは、正規化のロードコントロールとして使用した。プライマーと内因性Alb遺伝子との交差反応性が故に、ゲノムでの2つのコピーのAlbに関して、アッセイの検出限界は2である。
マウス肝臓由来のRNAは、QiagenのRNeasyキットを使用して分離した。融合したmRNAのコピー数を、プライマーセットFwd/RFを利用するddPCRで確認した(図4)。内因性Albのコピー数は、プライマーセットFwd/REを利用するddPCRで測定を行い、そして、正規化に使用した。
血漿でのアルブミン-2Aを、当社の捕捉用ウサギポリクローナル抗2A抗体と、検出用HRP標識ポリクローナルヒツジ抗アルブミン抗体(BioRad AHP102P)とを使用して、化学発光ELISAで測定した(図5A)。哺乳動物細胞で発現し、かつアフィニティー精製を行った組換えマウスアルブミン-2Aを使用して、マトリックス効果を説明するために、10%コントロールマウス血漿で標準曲線を作成した(図5B)。1%のカゼイン(Thermo 37528)をブロッキングに使用し、そして、0.1%のものを、試料希釈物を含むPBSTに使用した。
血漿での総マウスアルブミンを、捕捉用ポリクローナルヤギ抗マウスアルブミン抗体(abcam ab 19194)と、検出用ポリクローナルヒツジHRP標識抗アルブミン抗体(BioRad AHP102P)とを使用して、化学発光ELISAで測定した。マウスアルブミン標準は、Sigma(SLBX6058)から購入した。1%のカゼイン(Thermo 37528)をブロッキングに使用し、そして、0.1%のものを、試料希釈物を含むPBSTに使用した。
当初のアルブミン-2A ELISAプロトコルを、アッセイの感度を改善し、かつマトリックス干渉を最小限に抑えるように最適化した。当社で開発した組換えウサギモノクローナル抗2A抗体を捕捉用に使用し、そして、HRP標識ポリクローナルヤギ抗アルブミン抗体(abcam ab19195)を検出用に使用した(図5A)。哺乳動物細胞で発現し、かつ純度>95%にアフィニティー精製した組換えマウスアルブミン-2Aを標準として使用して、1%以下のコントロールマウス血漿または血清において、検量線を作成した(図14)。1%脱脂粉乳からなる緩衝剤をブロッキングに使用し、そして、試料を、1%BSAを含むPBSTで希釈した。この最適化したプロトコルでの検出下限は、<lng/mLである。
血漿でのヒト第IX因子を、捕捉用モノクローナルマウス抗ヒト第IX因子抗体(Sigma F2645)と、検出用ヤギポリクローナルHRP標識抗ヒト第IX因子抗体(Affinity Biologicals GAFIX-APHRP)を使用して、化学発光ELISAで測定した。ヒト第IX因子標準は、abcam(ab62544)から購入し、そして、マトリックス効果を説明するために、標準曲線を6%コントロールマウス血漿で作成した。3%BSAをブロッキングに使用し、そして、1%のものを、試料希釈物を含むPBSTに使用した。
血漿でのカニクイザルA1ATを、捕捉用ヤギポリクローナル抗A1AT抗体(MP Biomedical 55030)と、検出用ヒツジポリクローナルHRP標識抗A1AT抗体(abcam ab8768)を使用して、化学発光ELISAで測定した。哺乳動物細胞で発現した組換えカニクイザルA1ATを使用して、マトリックス効果を説明するために、10%コントロールマウス血漿で標準曲線を作成した。3%のBSAをブロッキングに使用し、そして、1%のものを、試料希釈物を含むPBSTに使用した。
凍結肝臓組織(約60mg)を、2度のビーズ撹拌(3500rpm/撹拌で20秒間)を行ったMP Biomedicals Lysing Matrix D(#116913050)を使用して、溶解緩衝剤(0.5% Igepal-630、50mM Tris-HCl pH7.5、150mM NaCl、Rocheミニ錠剤プロテアーゼ阻害剤カクテルを補充した)で均質化した。肝臓溶解物を遠心分離して清澄化し、そして、総タンパク質を、BCAアッセイで定量した。溶解物(6μg/レーン)を、Trans-Turbo Blotシステム(Bio-Rad)のニトロセルロースメンブレンに転写する前に、MES緩衝剤を使用して、4~12% NuPAGE BisTris midi-gel(Life Technologies)で分割した。LI-COR Odysseyブロッキング緩衝剤でブロックした後に、メンブレンを、(a)ウサギモノクローナル抗MUT抗体(abcam ab134956)及びマウスモノクローナル抗β-アクチン抗体(abcam ab14128)、または(b)ウサギポリクローナル抗2A抗体(当社)及びマウスポリクローナル抗アルブミン(abcam ab19194)とインキュベーションした。二次抗体(抗ウサギIRDye800CW、及び抗マウスIRDye680CT)とのインキュベーションを行った後に、ブロットを、LI-COR Odysseyシステムでスキャンし、そして、画像を、ImageStudioソフトウェアで分析した。
ヒト第IX因子導入遺伝子:5’末端にP2Aコード配列を有するコドン最適化ヒトF9 cDNAは、Alb終止コドンの上流側の1.3Kbと下流側の1.4Kbとを有する相同性アームに隣接していた(配列番号3)。
すべての動物の取り扱いは、研究用動物の飼育に関するInstitutional Animal Care and Use Committee (IACUC)のガイドラインに従って実施した。
本実施例は、本明細書に開示した方法に従って、エピソームDNAを検出及び分析する応用例を実証している。
本実施例は、2Aペプチドをコードする核酸要素をインビボ送達した後の2A-ペプチド-タグ付きアルブミンの検出及びモニタリングを実証している。本実施例は、血漿でのALB-2Aのレベルの変化が、内因性アルブミン発現の変化と関連する、ことも実証している。
本実施例は、本開示に従って利用する方法が、ペイロードをコードする核酸、及びバイオマーカーをコードする核酸をインビボ送達した後のペイロードの初期のインビボ検出及び分析を可能ならしめる、ことを実証している。本実施例は、ペイロード発現の動態が、バイオマーカー発現の動態と類似性を示すことも実証している。
本実施例は、本開示に従って利用する方法を、発達段階にある幼若者(例えば、乳児)や未成年者など、その治療を受けようとする異なる年齢の対象に対して行う遺伝子療法治療に適用することができる、ことを実証している。本実施例は、本明細書に記載した方法が、成長の遅い組織または成長の早い組織のいずれかに行き着く遺伝子療法の分析に適用することができる、ことをさらに実証している。
本実施例は、本開示に従って利用する方法が、ペイロードのレベルの代用指数としてバイオマーカーの検出及び分析を可能ならしめることを実証している。本実施例は、代用指数としてのバイオマーカーの使用が、多様な年齢層の対象へのペイロード及びバイオマーカーの送達のために利用し得ることも実証している。
カニクイザルSERPINA1 cDNAであるP2Aコード配列と、1Kbまたは750bpの相同性アームを含み、内因性アルブミン標的部位に組み込まれるようにデザインした(実施例1に記載したカニクイザル アルファ-1-抗トリプシン(カニクイザイル-A1AT)導入遺伝子を参照されたい)ウイルスベクターを使用して、新生児マウスに対して静脈内注射をした。注射の6週間後に動物から採取を行った。ALB-2Aの血漿レベル(図11A)は、750bp及び1Kbの両方の相同性アームを含むウイルスベクターで送達した後に検出した。組み込んだ導入遺伝子から発現するカニクイザルA1ATの血漿レベルも、試験した相同性アームの両方のセットについて容易に検出可能であった(図11B)。ALB-2Aの相対レベルは、カニクイザルA1ATレベルを示していた(図11C)。
本実施例では、Mut-/-;TgINS-MCK-Mutマウス(本明細書ではMCK-Mutと称する)と称するMMAのマウスモデルを使用した。このマウスモデルでは、マウスMut遺伝子の機能的コピーが、クレアチンキナーゼプロモーターの制御下にあり、筋細胞でのMut発現を可能にしている。新生児MCK-Mutマウス(p2)に対して、P2Aコード配列と、コドン最適化ヒトMUT cDNA(実施例1に記載のヒトメチルマロニル-CoAムターゼ導入遺伝子を参照されたい)を含むウイルスベクターを、異なる用量で静脈内注射した。動物に対して、3ヶ月の期間にわたって採取を行った。肝臓での血漿ALB-2Aとゲノム組み込みは、容易に検出できた(図12A)。肝臓及び血漿でのALB-2Aの相対レベルは、肝臓でのMUTタンパク質レベルを示していた(図12B)。
1e14 vg/kgのDJ-hMUTを使用して、新生児MUT-MCKマウス(p2)に対して静脈内注射を行い、そして、7か月間にわたって採取を行った。GeneRideで編集した肝細胞は、機能的なMUTを発現しており、これにより、Mut-/-内在性肝細胞よりも選択的増殖の利点が得られる。その結果、遺伝子編集した集団が、より迅速に成長することが期待されており、そして、認められている。この増殖は、導入遺伝子ならびにALB-2Aのレベルの高まりとして検出することができる(図13A~図13B)。
本実施例は、本開示に従って利用する方法が、ペイロードをコードする核酸と、バイオマーカーをコードする核酸とをインビボ送達した後に、ペイロードの発現の長期のインビボ評価が可能となることを実証している。本実施例は、ペイロード発現の動態が、バイオマーカー発現の動態と類似性を示すという点で、アッセイの検証も実証している。
本実施例は、本開示に従って利用する方法が、ペイロードをコードする核酸と、バイオマーカーをコードする核酸とをインビボ送達した後に、ペイロードの用量依存的検出と分析が可能となる、ことを実証している。
当業者であれば、本明細書に記載した本発明の特定の実施形態の数多くの均等物を認識し、または通常の実験だけを使用して確認することができる。本発明の範囲を、上記した説明に限定することは意図しておらず、本発明の範囲は、以下の特許請求の範囲に記載した通りである。
Claims (50)
- 遺伝子療法をモニタリングする方法であって、組み込み遺伝子療法治療を受けた対象から得た生物学的試料において、組み込み遺伝子療法治療で組み込んで得たバイオマーカーのレベルまたは活性を、遺伝子療法治療の状態の1つ以上の特徴の現れとして検出することを含み、前記遺伝子療法治療の状態の1つ以上の特徴を、ペイロードのレベル、ペイロードの活性、細胞の集団における遺伝子療法治療の組み込みレベル、及びそれらの組み合わせからなる群から選択する、前記方法。
- ペイロードを送達する遺伝子組み込み組成物を与えられた対象でのペイロードの送達、レベル、及び/または活性をモニタリングする方法であって、対象から得た生物学的試料において、遺伝子組み込み組成物を取り入れて得たバイオマーカーのレベルまたは活性を、ペイロードの送達、レベル及び/または活性の現れとして検出することを含む、前記方法。
- 前記ペイロードが、細胞内で発現するペプチドである、またはそれを含む、請求項1または請求項2に記載の方法。
- 前記ペイロードが、細胞外に分泌されるペプチドである、またはそれを含む、請求項1または請求項2に記載の方法。
- 前記ペイロードが、病状を治療するための生物学的プロセスを促す細胞内因性または細胞外因性の活性を有するペプチドである、またはそれを含む、請求項1~4のいずれか1項に記載の方法。
- 前記ペイロードが、通常は、肝細胞で発現するペプチドである、またはそれを含む、請求項1~5のいずれか1項に記載の方法。
- 前記ペイロードが、肝細胞において異所的に発現するペプチドである、またはそれを含む、請求項1~5のいずれか1項に記載の方法。
- 前記ペイロードが、メチルマロニル-CoAムターゼまたはヒト第IX因子である、またはそれを含む、請求項1~5のいずれか1項に記載の方法。
- 前記組み込み遺伝子療法治療、または遺伝子組み込み組成物が、前記ペイロードを対象のゲノム内の標的部位にコードする配列を含む核酸要素の組み込みを達成する、先行請求項のいずれか1項に記載の方法。
- 前記標的部位が、ポリペプチドをコードする、請求項9に記載の方法。
- 前記核酸要素の組み込みが、ポリペプチドをコードする遺伝子の5’または3’末端で生じる、請求項10に記載の方法。
- 前記標的部位が、アルブミンをコードする、請求項9に記載の方法。
- 前記核酸要素の組み込みが、標的部位でコードしたポリペプチドの発現を有意に妨げない、請求項9~11のいずれか1項に記載の方法。
- 前記生物学的試料が、毛髪、皮膚、糞便、血液、血漿、血清、脳脊髄液、尿、唾液、涙液、硝子体液、または粘液である、またはそれらを含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法。
- 前記検出のステップが、免疫学的アッセイまたは核酸増幅アッセイを含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法。
- 前記バイオマーカーが、標的部位がコードするポリペプチドを翻訳した後に、標的部位でコードするポリペプチドに融合する検出可能な部分を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法。
- 前記バイオマーカーが、標的部位がコードするポリペプチドを翻訳した後に、ペイロードがコードするポリペプチドに融合する検出可能な部分を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法。
- 前記バイオマーカーが、2AペプチドまたはFurin開裂モチーフである検出可能な部分を含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法。
- 前記2Aペプチドを、P2A、T2A、E2A及びF2Aからなる群から選択する、請求項18に記載の方法。
- 前記対象が、遺伝子療法治療を受ける、または遺伝子組み込み組成物の単回投与を受ける、先行請求項のいずれか1項に記載の方法。
- 前記検出ステップを、前記対象が遺伝子療法治療を受けた後、または遺伝子組み込み組成物を与えられた後に、1、2、3、4、5、6、7、8週間またはそれ以上の期間で行う、先行請求項のいずれか1項に記載の方法。
- 前記検出ステップを、前記対象が遺伝子療法治療を受けた後、または遺伝子組み込み組成物を与えられた後に、複数の時点で行う、先行請求項のいずれか1項に記載の方法。
- 前記検出ステップを、前記対象が遺伝子療法治療を受けた後、または遺伝子組み込み組成物を与えられた後に、少なくとも3ヶ月の期間で行う、先行請求項のいずれか1項に記載の方法。
- 前記対象が乳児である時に、遺伝子療法治療を受ける、または遺伝子組み込み組成物が与えられる、上記請求項のいずれか1項に記載の方法。
- 前記対象が成人期に達する前に、遺伝子療法治療を受ける、または遺伝子組み込み組成物が与えられる、請求項1~23のいずれか1項に記載の方法。
- 前記対象が成人である時に、遺伝子療法治療を受ける、または遺伝子組み込み組成物が与えられる、請求項1~23のいずれか1項に記載の方法。
- 前記方法が、遺伝子療法に対する自己免疫応答について前記対象をモニタリングすることをさらに含む、先行請求項のいずれか1項に記載の方法。
- 組み込み遺伝子療法治療を受けた対象での遺伝子療法治療の状態の1つ以上の特徴を決定する方法であって:
a)前記対象から得た生物学的試料を提供する;
b)バイオマーカーのレベルを決定する、また、前記バイオマーカーは、前記対象のゲノムに遺伝子療法で組み込んで得る;及び
c)決定したバイオマーカーのレベルに基づいて、前記対象での遺伝子療法治療の状態の1つ以上の特徴を確立する、また、決定したバイオマーカーのレベルは、遺伝子療法治療の状態の1つ以上の特徴に対応する、ことを含む前記方法。 - それを必要とする対象に対して遺伝子療法治療を送達する方法であって;
a.前記対象に対して組み込み遺伝子療法治療を行う;及び
b.前記対象から得た生物学的試料において、前記対象のゲノムに遺伝子療法治療で組み込んで得たバイオマーカーのレベルを決定するステップを含む、前記方法。 - 前記バイオマーカーのレベルが、組み込み遺伝子療法の治療有効量を達成して得られるレベルよりも低ければ、前記対象に対してさらなる治療を行う、ことをさらに含む請求項29に記載の方法。
- 前記組み込み遺伝子療法治療が、ペイロードを前記対象のゲノム内の標的部位にコードする配列を含む核酸要素の組み込みを達成する、請求項28~30のいずれか1項に記載の方法。
- 前記標的部位が、ポリペプチドをコードする、請求項31に記載の方法。
- 前記核酸要素の組み込みが、ポリペプチドをコードする遺伝子の5’または3’末端で生じる、請求項32に記載の方法。
- 前記標的部位が、アルブミンをコードする、請求項31に記載の方法。
- 前記核酸要素の組み込みが、標的部位でコードしたポリペプチドの発現を有意に妨げない、請求項31~33のいずれか1項に記載の方法。
- 前記生物学的試料が、毛髪、皮膚、糞便、血液、血漿、血清、脳脊髄液、尿、唾液、涙液、硝子体液、または粘液である、またはそれらを含む、請求項28~35のいずれか1項に記載の方法。
- 前記決定のステップが、免疫学的アッセイまたは核酸増幅アッセイを含む、請求項28~36のいずれか1項に記載の方法。
- 前記バイオマーカーが、標的部位がコードするポリペプチドを翻訳した後に、標的部位でコードするポリペプチドに融合する検出可能な部分を含む、請求項28~37のいずれか1項に記載の方法。
- 前記バイオマーカーが、標的部位がコードするポリペプチドを翻訳した後に、ペイロードがコードするポリペプチドに融合する検出可能な部分を含む、請求項28~38のいずれか1項に記載の方法。
- 前記バイオマーカーが、2Aペプチドである検出可能な部分を含む、請求項28~39のいずれか1項に記載の方法。
- 前記2Aペプチドを、P2A、T2A、E2A及びF2Aからなる群から選択する、請求項40に記載の方法。
- 前記対象が、単回の遺伝子療法治療を受ける、請求項28~41のいずれか1項に記載の方法。
- 前記決定ステップを、前記対象が遺伝子療法治療を受けた後に、1、2、3、4、5、6、7、8週間またはそれ以上の期間で行う、請求項28~42のいずれか1項に記載の方法。
- 前記決定ステップを、前記対象が遺伝子療法治療を受けた後に、複数の時点で行う、請求項28~43のいずれか1項に記載の方法。
- 前記決定ステップを、前記対象が遺伝子療法治療を受けた後に、少なくとも3ヶ月の期間で行う、請求項28~44のいずれか1項に記載の方法。
- 前記対象が乳児である時に、遺伝子療法治療を受ける、請求項28~45のいずれか1項に記載の方法。
- 前記対象が成人期に達する前に、遺伝子療法治療を受ける、請求項28~45のいずれか1項に記載の方法。
- 前記対象が成人である時に、遺伝子療法治療を受ける、請求項28~45のいずれか1項に記載の方法。
- 前記方法が、遺伝子療法に対する自己免疫応答について前記対象をモニタリングすることをさらに含む、請求項28~48のいずれか1項に記載の方法。
- 前記方法が、バイオマーカーのレベルが、ペイロードの最適レベルまたは安全レベルを示すレベルを超えておれば、遺伝子療法治療によって送達したペイロードの発現を抑制または阻害する対象に対して、さらなる治療を施すことをさらに含む、請求項1~49のいずれか1項に記載の方法。
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