JP2022502085A - 植物タンパク質及びその調製方法 - Google Patents
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Abstract
Description
「マメ臭い味」、「青臭い味」、又は「植物臭い味」として異風味を表現することが多い。
キサナールと、2−ペンチル−フランと、(E)−2,4−ヘプタジエナールと、1−オクテン−3−オールと、を含有する。より好ましい実施形態では、揮発性化合物の合計は、以下に記載の本発明の方法により検出及び分析されるすべての揮発性化合物の総和として理解されるべきである。
(a)タンパク質を含有する植物種子、好ましくはマメ科種子、より好ましくはエンドウ種子を提供する工程と、
(b)前記種子を製粉する工程と、
(c)製粉された種子を水中に懸濁する工程と、
(d)前記製粉された懸濁液から好ましくは等電点pHでの熱凝固によりタンパク質を抽出する工程と、
(e)60℃〜100℃、より好ましくは75℃〜95℃の温度且つ4〜5.5、より好ましくは4.5〜5のpHcでタンパク質を水で洗浄する工程と、
(f)任意選択的に、工程(e)の終了時に得られた洗浄されたタンパク質を剪断ポンプ又はホモジナイザーに通してタンパク質の機能性を改善する工程と、
(g)任意選択的に、工程(e)又は(f)で得られたタンパク質を乾燥する工程と、からなる。
より好ましくはエンドウタンパク質単離物の使用への関与である。
Biochemical Society,1996,pp.77−87に記載されるように、「r突然変異体」、「rb突然変異体」、「rug3突然変異体」、「rug4突然変異体」、「rug5突然変異体」、及び「lam突然変異体」として知られるものである。
性溶液中でサポニンを振盪したときに生成される石鹸様の泡により現象学的にグループ化される両親媒性グリコシドである。それらは、親油性トリテルペン誘導体と組み合わされた1つ以上の親水性グリコシド部分を有することに基づいて構造的にグループ化される。
NaCl(AR)水性溶液中に室温で1gエンドウタンパク質サンプルが懸濁される。混合後、30mL透明ガラスバイアル(Supelco Co.,Shanghai,China)中に溶液の5mlが配置され、次いで、Teflon被覆ゴムセプタムを含有する蓋でシールされ、そして小型磁気撹拌子が取り付けられる。内部標準2−メチル−3−ヘプタノン(1mg/L溶液)(Sigma−Aldrich,Shanghai,China)が添加される。バイアル中のサンプルは、水浴中60℃で30分間加熱され、SPMEファイバーを用いて30分間抽出され、そして吸着プロセスの磁気撹拌速度は、500rpmである。次いで、ファイバーは、DB−WAXの極性樹脂を有するキャピラリーカラム(30m×0.25mm i.d.、0.25μm膜厚、Agilent Technologies Inc.,Guangzhou,Guangdong,China)を備えたGC−MS(SCIONSQ−456−GC,Bruker,America)に注入される。スプリットレス注入が使用される。クロマトグラフ温度は、40℃で3分間等温に、6℃・min−1の速度で100℃に、次いで、10℃・min−1の速度で230℃に、最後に7分間等温にするようにプログラムされる。質量分析は、70eVの電子衝撃モードで操作される。質量分析計は、m/z33〜350の質量をスキャンする。イオン化源は200℃に、移送ラインは250℃に設定される。揮発性化合物は、質量スペクトルライブラリーとの比較を行うことにより並びにアルカン系列(C8〜C30)のGC保持指数の計算及び比較により同定される。保持指数は、同一クロマトグラフィー条件下で計算された発表データに基づく。定量データは、合計イオン電流(TIC)ピーク下の面積のエレクトロニック積分により得られる。次いで、内部標準2−メチル−3−シクロヘプタノンを用いて相対量が計算され、乾物を考慮に入れることにより規格化される。
scattering detection,Journal of Chromatography A,1072(2005)185−193で着想された修正プロトコルに従って分析される。エンドウタンパク質サンプルは、その際、ヘキサン(AR、Sigma−Aldrich,Shanghai,China)で6時間還流することにより脱脂され、続いて、エンドウタンパク質は、ヒュームフード内で一晩空気乾燥される。脱脂されたエンドウタンパク質(1g)は、インキュベーターシェーカー(SWB15、Thermo Fisher,Shanghai,China)で200rpmの一定した振盪を行いながら、40ml、60%、(v/v)メタノール(HPLCグレード、Sigma−Aldrich,Shanghai,China)を用いて25℃で4時間抽出される。抽出前、100mg・kg−1の内部標準エキレニン(エストロゲン様ステロイド
、3−ヒドロキシエストラ−1,3,5,7,9−ペンタエン−17−オン)が添加される。粗抽出物は、無灰濾紙(Whatman、110mm、Sinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd,Shanghai,China)に通して濾過される。40℃真空下での蒸発により透明濾液からメタノールが除去される。この蒸発工程は、1L丸底フラスコを用いて15分間未満で実施される。濃縮物は、5mLまで蒸溜水が加えられ、Sep−Pak C18固相抽出カラム(Waters Plus
tC18カートリッジ、37〜55μm、Suzhou,China)に通され、続いて、非結合材料を除去するために15mLの水で濯がれる。結合化合物は、10ml 100%(v/v)メタノール(HPLCグレード、Sigma−Aldrich,Shanghai,China)で溶出され、LC−MSにより分析される。LC−MSクロマトグラフィー条件は次の通りである。キャピラリー電圧は4.4KVであり、コーンホール電圧は40Vであり、イオン源温度は100℃であり、溶媒ガス温度は250℃であり、光電子増倍管電圧は700Vであり、且つ流量は4.2L/hである。液体クロマトグラフィーは、Lichrospher C−18(2.1×250mm、Waters)カラム及び検出器Waters996を備えたWaters2690液体クロマトグラフシステムで実施される。カラム温度は35℃であり、注入体積は0.3mL/minの流量で10μLである。LC−MS実験のグラジエント溶出条件は、0.5%ギ酸(AR Sinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd,Shanghai,China)で30分間(0〜30min)、続いて、20:80の比のアセトニトリル(HPLCグレード、Sigma−Aldrich,Shanghai,China)対0.5%ギ酸で10min(30〜40min)、そして40:60の比で1分間(40〜41min)、次いで0.5%ギ酸に調整される。DDMPサポニン及びサポニンBのピークの質量スペクトルにおける分子イオン[M+H]+のm/z比は、それぞれ、1069及び943であった。サポニンの相対量は、内部標準エキレニンを用いて計算され、乾物を考慮に入れることにより規格化される。
好ましくは、下記のプロトコル:
− 2.0gサンプル及び100gの蒸溜水を20℃で400mLビーカーに配置する。
− 1N HCl及び/又は1N NaOHでpHを6又は7に調整し、混合物に蒸溜水を厳密に200.0gまで加える。
− この混合物を30分間撹拌し、次いで、3000×gで15分間遠心分離する。
− 遠心分離後、厳密に25.0gの上澄みを結晶皿(m1)に抜き取る。一定質量(m2)に達するまで、皿を103℃のオーブン内に配置する。
− 溶解性=((m2−m1)/25)×100
に従って測定されるであろう。
(a)タンパク質を含有する植物種子、好ましくはマメ科種子、より好ましくはエンドウ種子を提供する工程と、
(b)前記種子を製粉する工程と、
(c)製粉された種子を水中に懸濁する工程と、
(d)前記製粉された懸濁液からタンパク質を抽出する工程と、
(e)60℃〜100℃、より好ましくは75℃〜95℃の温度且つ4〜5.5、より好ましくは4.5〜5の範囲内のpHでタンパク質を水で洗浄する工程と、
(f)任意選択的に、工程(e)の終了時に得られた洗浄されたタンパク質を剪断ポンプ又はホモジナイザーに通してタンパク質の機能性を改善する工程と、
(g)任意選択的に、工程(e)又は(f)で得られたタンパク質を乾燥する工程と、を含む。
で、好ましくはクエン酸を用いて、4〜5.5のpH、好ましくはpH4.5〜5、より好ましくはpH4.5に調整される。タンパク質溶液は、ホエーを分離するためにプレート濾過器若しくは遠心分離機に直接に又は30分間まで可能な接触時間の後にポンプ注入可能である。次いで、タンパク質カードは、60℃〜100℃、より好ましくは75℃〜95℃、さらにより好ましくは約90℃の温度で、4〜5.5に調整されたpH、好ましくは4.5〜5のpH、より好ましくはpH4.5に調整されたpHで、1〜5体積の水を用いて、好ましくは2回洗浄可能である。次いで、洗浄されたタンパク質カードはつまみだされ、10%〜12%の範囲内の固形分含有率が得えられように蒸溜水中に再懸濁され、そして2.0M NaOHで6.5〜7.0のpHに調整される。この工程に対する一選択肢は、高圧ホモジナイゼーション(20MPa)及びスプレードライングで終了することでありうる。代替実施形態では、工程(d)及び(e)は同時に行うことが可能である。この場合、タンパク質は、1〜5体積の水を添加した後、60℃〜100℃、より好ましくは75℃〜95℃、さらにより好ましくは約90℃の温度で且つpH2.5で加熱することにより、凝固、好ましくは熱凝固される。これらの3つのパラメーターは、十分な官能品質を有する単離物を得るために不可欠である。最良の結果は、1〜5体積の水を用いて約90℃で且つpH4.5で加熱することにより得られる。
この実施例では、官能観点で参照タンパク質を明らかにする。それは、産業観点(爆発の危険性、クリーンラベル…)から回避されなければならない溶媒を使用する。
室温で10時間にわたり1:5(w/v)の比のエンドウ対水で乾燥黄エンドウを蒸溜水にブレンドした。皮除去及び浸漬されたエンドウを1:4(w/v)の比の湿潤エンドウ対水で酸素の存在下で粉砕した。スクリュー押出し機により分離した後、デンプン及び内部ファイバーを除去するために水抽出物を3,000gで15分間遠心分離してタンパク質溶液が得られようにした。内因性酵素を不活性化するために直接スチーム注入によりタンパク質溶液を125〜130℃で30秒間加熱し、次いでプレート熱変換器を用いて50℃に冷却し、次いで2mol L−1HClを用いてpHを4.5に調整することにより沈殿させ、3,000gで15分間遠心分離した。10%〜12%の範囲内の固形分含有率が得られるように1:1(w/v)の比のカード対水でタンパク質カードを蒸溜水中に再懸濁し、2mol L−1NaOHを用いて7.0のpHに中和した。プロセスのこれらの工程に続いて、高圧ホモジナイゼーション(20MPa)、加熱処理(120℃、30s)、フラッシュ蒸発、及びスプレードライング(180℃、80℃)を行う。サンプル「先行技術のプロセス#2」を得た。
室温で1:5(w/v)の比のエンドウ対水で乾燥黄エンドウを蒸溜水にブレンドした。次いで、酸素の存在下8.5〜9.0のpHでエンドウを粉砕した。スクリュー押出し機により分離した後、不溶性物質(主にデンプン及び内部ファイバー)を除去するために溶液を3,000gで15分間遠心分離し、生のタンパク質溶液を得た。次いで、2M HClを用いて生のタンパク質溶液を7.0〜7.5のpHに調整し、内因性酵素を不活性化するために直接スチーム注入により125〜130℃に30秒間加熱し、次いで、プレート熱変換器を用いて50℃に冷却した。次いで、2mol L−1 HClを用いてpHを4.5に調整することによりタンパク質を沈殿させ、3,000gで15min遠心分離した。遠心分離によりタンパク質カードを単離し、4.5のpHに調整された2重量部の90℃蒸溜水で浸漬した。
質カードを蒸溜水中に懸濁した。次いで、125〜130℃に30秒間再加熱し、スプレー乾燥した(180℃、80℃)。サンプル「本発明のプロセス#1−HTAW単独 酸素あり」を得た。
− 酸洗浄pH(4.5)で低温洗浄(50℃)
− 高pH(7.0)及び酸性洗浄pH(4.5)で高温
− 中性洗浄pH(7)で低温洗浄(50℃)
を行って3回再生された。
室温で1:5(w/v)の比のエンドウ対水で乾燥黄エンドウを蒸溜水にブレンドした。次いで、1:4(w/v)の比でエンドウを200μg/l未満の酸素フリー水中で粉砕し、次いで、スクリュー押出し機で分離した。窒素雰囲気下で1時間間放置した後、不溶性物質(主にデンプン及び内部ファイバー)を除去するためにタンパク質溶液を3,000gで15分間遠心分離し、生のタンパク質溶液を得た。依然として窒素雰囲気下で生のタンパク質溶液を7.0〜7.5のpHに調整し、次いで、直接スチーム注入により125〜130℃に30秒間加熱し、最後にプレート熱変換器を用いて30〜40℃に冷却した。次いで、2mol L−1 HClを用いて4.5のpHに調整することによりタンパク質を沈殿させ、3,000gで15分間遠心分離した。
サンプル調製:室温(約23℃)で脱イオン水中に溶解された4%タンパク質粉末
パネリスト:10名の熟練者
以下の表1は、実施例1〜4で生成されたすべてのタンパク質単離物を比較する。参照の市販のタンパク質単離物もまた、比較に含まれる。
・ 予測通り、溶媒参照プロセスを介してより良好なサンプルが得られた。
・ 高温酸洗浄を含むプロセスのみが、7超の官能スコア及び合計で10μg/g未満の揮発性化合物を有する単離物をもたらす。つまり、溶媒参照プロセスに最も近い数値を有する。
・ 高温酸洗浄と酸素フリー粉砕との組合せは、さらにより良好な品質をもたらす。つまり、揮発性化合物の合計が5μg/g未満である。酸素フリー粉砕単独の使用は、中程度の品質の製品を生成する。
溶解性は、下記のプロトコルに従って測定されるであろう。
・ 2.0gのサンプル及び100gの蒸溜水を20℃で400mLビーカーに配置する。
・ 1N HCl及び/又は1N NaOHでpHを6又は7に調整し、混合物に蒸溜水を厳密に200.0gまで加える。
・ この混合物を30分間撹拌し、次いで、3000×gで15分間遠心分離する。
・ 遠心分離後、厳密に25.0gの上澄みを結晶皿(m1)に抜き取る。
一定質量(m2)に達するまで、皿を103℃のオーブン内に配置する。
・ 溶解性=((m2−m1)/25)×100、溶液100g当たりの乾物のg数で表現される。
サンプルの遊離アミノ酸の「アミノ窒素」基は、N−アセチル−L−システイン及びo−フタリルジアルデヒド(OPA)と反応してイソインドール誘導体を形成する。
分析されるサンプルの正確に秤量された試験サンプルP*を100mlビーカーに導入する(この試験サンプルは、サンプルのアミノ窒素含有量の関数としての0.5〜5.0gであろう)。
o ブランク:
3.00mlの溶液No.1と50μlの蒸溜水とを導入する。
o 標準:
3.00mlの溶液No.1とMegazymeキットのフラスコ3の50μlを導入する。
o サンプル:
3.00mlの溶液No.1と50μlのサンプル調製物を導入する。
生成物自体の質量パーセントとして表される遊離アミノ窒素の含有量は、下記の式:
ΔA=A2−A1
V=フラスコの体積
m=g単位の試験サンプルの質量
6803=340nmでのイソインドール誘導体の吸光係数(L・mol−1・cm−1単位)。
14.01=窒素のモル質量(g・mol−1単位)
3.15=キュベット中の最終体積(ml単位)
0.05=キュベット中の試験サンプル(ml単位))
により与えられる。
Claims (11)
- 乾物1グラム当たり総和で10μg未満、好ましくは5μg未満の、ヘキサナールと、2−ペンチル−フランと、(E)−2,4−ヘプタジエナールと、1−オクテン−3−オールと、を含有する植物タンパク質単離物。
- 前記タンパク質単離物が、マメ科植物から、好ましくはエンドウ又はソラマメから、より好ましくはエンドウから得られる、請求項1に記載の植物タンパク質単離物。
- 乾物1グラム当たり合計で5mg未満のサポニンを含有する、請求項1又は2に記載の植物タンパク質単離物。
- 下記工程:
(a)タンパク質を含有する種子、好ましくはマメ科種子、より好ましくはエンドウ種子を提供する工程と、
(b)前記種子を製粉する工程と、
(c)前記製粉された種子を水中に懸濁する工程と、
(d)前記製粉された懸濁液からタンパク質を抽出する工程と、
(e)60℃〜100℃、好ましくは75℃〜95℃の温度且つ4〜5.5、好ましくは4.5〜5の範囲内のpHで、前記抽出されたタンパク質を水で洗浄する工程と、
(f)任意選択的に、工程(e)の終了時に得られた前記洗浄されたタンパク質を剪断ポンプ又はホモジナイザーに通してタンパク質の機能性を改善する工程と、
(g)任意選択的に、工程(e)又は(f)で得られた前記タンパク質を乾燥する工程と、
からなる、請求項1〜3のいずれか一項に記載の植物タンパク質単離物を抽出する方法。 - 工程(e)で前記タンパク質を洗浄するのに必要とされる水の体積が、タンパク質懸濁液の量の1〜5倍であるが、好ましくは3倍未満である、請求項4に記載の方法。
- 工程(b)の製粉が酸素の不在下で行われる、請求項4又は5に記載の方法。
- 工程(b)の製粉が、300μg/l未満、より好ましくは200μg/l未満の二酸素の残留濃度で行われる、請求項4又は5に記載の方法。
- 工程(e)のpHが、とくに塩酸、クエン酸、又は硫酸を含む食品グレードの酸を用いて調整される、請求項4〜7のいずれか一項に記載の方法。
- 工程(e)又は(f)の終了時に得られた前記洗浄されたタンパク質が、スプレー乾燥機、好ましくはマルチステージスプレー乾燥機を用いて乾燥される、請求項4〜8のいずれか一項に記載の方法。
- 工程(b)の製粉が湿式製粉工程である、請求項4〜9のいずれか一項に記載の方法。
- 工程(b)の製粉が乾式製粉工程である、請求項4〜9のいずれか一項に記載の方法。
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